3 sabado 13 julio stres-sales vg
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Estrés Salino
Hay 330’ ha suelos salinos 240’ ha muy salinos
Salinización del suelo produce pérdida de
fertilidad, perjudicando el cultivo agrícola.
Para frenar o revertir el proceso, se realizan
costosos lavados de los suelos para lixiviar las
sales
O cultivar plantas que toleren mejor la salinidad.
Distribución de Suelos Salinos en el
Mundo (FAO/UNESCO)
Región has (Millones)
África 69.5
Oriente Medio 53.1
Asia 19.5
América Latina 59.4
Australia 84.7
América del Norte 16.0
Europa 20.7
Mayor problema en gricultura: acumulación de sales en aguas de riego.
Pobre calidad del agua en regiones áridas y semiáridas.
Sales pueden alcanzar niveles que son dañinos para las especies sensibles a sales, cuando el agua de riego tiene alta concentración de solutos y no pueden ser eliminadas las sales acumuladas en un sistema de drenaje
1/3 de las regiones irrigadas en la Tierra es afectada por salinidad.
Altas [Na]: Sodicidad, y altas [sales totales]: Salinidad.
Ca2+, Mg2+, SO4= y NaCl contribuyen a la
salinidad en los suelos.
Alta [Na] en suelo sódico no solo daña a las
plantas sino también degrada la estructura del
suelo: disminuye la porosidad y la
permeabilidad.
Contenido de sales de un río puede llegar a 50
mg/L al inicio; y a 900 mg/L, a 2,000 Km abajo,
suficiente para impedir el crecimiento de cultivos
sensibles a las sales.
Agua de algunos pozos contiene 2,000-3,000
mg/L de sales. Un riego (1 m) con esta agua,
puede agregar 20-30 ton de sales al suelo por
hectárea.
Suelos Sódicos: degradan la estructura del suelo, disminuyendo
la porosidad; se vuelven impermeables al agua.
Efectos de la salinidad • Deprime el crecimiento • Afecta la fotosíntesis • Pérdida de la turgencia de las células • Expansión lenta de la pared celular Estrategias para evitar el estrés salino • Excretar sales por el meristema • Ajustar el potencial hídrico • Acumulación de iones en la vacuola y solutos compatibles (glicina, prolina, sorbitol y sacarosa) en el citosol
Potencial de agua del sustrato muy negativo: mayor esfuerzo de la planta para obtener agua
Yacón (Smallanthus sonchifolius)
+ sales
- sales
Plantas de anacardo de 21 días cultivadas con diferentes CE
Efecto de la salinidad sobre el crecimiento de plantas de anacardo
De Abreu, et al. 2008
De Abreu, et al. 2008
De Abreu, et al. 2008
Efecto de la salinidad sobre la senescencia de la hoja
en plantas de camote
Hsien-Jung Chen, et al., 2012
Efecto de la salinidad sobre el contenido de H2O2 en
hojas de camote
Hsien-Jung Chen, et al., 2012
Efecto de la salinidad sobre el contenido de Clorofila en
hojas de camote
Hsien-Jung Chen, et al., 2012
CCI: razón entre la Transmisión a 931 nm a 653 nm a través de una hoja
Salinidad Deprime el Crecimiento y
Fotosíntesis en Especies Sensibles
Plantas se dividen en respuesta a la [sales]:
HALOFITAS: nativas de suelos salinos y completan su ciclo de vida en estos ambientes.
GLICOFITAS (“plantas dulces”) o NO HALOFITAS, no son capaces de resistir altas [sales].
altamente sensibles a sales: maíz, cebolla, cítricos, pecana, lechuga, fréjol
moderadamente tolerantes: algodón, cebada.
altamente tolerantes a sales: betarraga, dátiles, coco
Especies altamente tolerantes a sales muestran estimulación del crecimiento a [Cl-] varias veces mayores que el nivel letal para especies sensibles.
Da Silva , et al., 2011
Halofita: Festuca rubra
Halofita: Puccinellia peisonis
Halofita: Spartina densiflora
Halofita: Sueda maritima
Halofita: Atriplex nummularia
Cl- (mM) en el medio externo
Cre
cim
ien
to
(% d
el C
on
tro
l a b
aja
co
ncen
tració
n d
e C
l-)
Crecimiento de Plantas Halofitas y No Halofitas
IA Halofitas
IB Halofitas
II Halofitas y No Halofitas
III No Halofitas Sueda maritima
Atriplex nummularia
Festuca rubra
Puccinellia peisonis
Algodón, cebada
Spartina sp
betarraga
Taiz y Zeiger, 2010
Alta [Na+] desplaza el Ca2+ de la membrana plasmática: cambio en la permeabilidad.
Se inhibe Fotosíntesis cuando se acumulan en cloroplastos alta [Na+] y/o Cl-: Metabolismo del C y la fotofosforilación son afectados.
Enzimas extraídas de especies tolerantes a sales son sensibles a la presencia de ClNa como lo son las enzimas de las glicofitas.
Tolerancia a salinidad en halofitas no es una consecuencia de una maquinaria metabólica resistente a las sales.
Daño por Sales Involucra Efectos
Osmóticos y de Iones Específicos
Solutos disueltos en la zona radicular generan un bajo π que disminuye el ψ del suelo. Efecto similar al de un déficit hídrico del suelo.
Muchas plantas realizan ajuste osmótico cuando crecen en suelos salinos, previniendo la pérdida de turgencia.
Efectos de iones específicos ocurre cuando concentraciones dañinas de Na, Cl- o SO4
= se acumulan en las células.
Bajo condiciones no salinas, el citosol de células vegetales contiene 100-200 mM de K+ y, 1-10 mM de Na+, ambiente iónico donde las enzimas funcionan óptimamente.
Razón anormal de Na+ y K+ y altas [sales totales] inactivan enzimas e inhiben la síntesis de proteínas.
Plantas usan Diferentes Estrategias para
Evitar Daño por Sales
Minimizan daño por sales excluyendo sales desde los meristemas, principalmente en vástagos y desde las hojas que están activamente en expansión y fotosintetizando.
Halofitas tienen mayor capacidad para acumular iones en células de los brotes que Glicofitas.
Na+ entra a las raíces pasivamente; las células deben usar energía para su transporte activo de retorno hacia la rizosfera.
Cloruro es excluido por la baja permeabilidad de las membranas plasmáticas de la raíz.
Algunas plantas tienen glándulas salinas en la superficie de las hojas, donde los iones son transportados y las sales se cristalizan y no son dañinas.
Células vegetales ajustan su π en respuesta al estrés osmótico, disminuyendo el ψ:
acumulación de iones en vacuolas
síntesis de solutos compatibles en el citosol.
La cantidad de C usado para la síntesis de estos solutos orgánicos representa el 10% del peso de la planta.
Halofitas exhiben crecimiento óptimo a niveles moderados de salinidad. Tienen capacidad de acumular iones en vacuolas, sin dañar enzimas sensibles a sales.
El balance de agua es mantenido entre el citoplasma y las vacuolas por la síntesis de compuestos orgánicos (prolina, sacarosa) que se acumulan en el citosol.
Glándulas de sales en Diplachne uninervia
Apóstolo, N, 2005
Glándulas de sales en Atriplex oficcinalis
Tan, et al. 2010
cutícula (cu), células epidermis (epc). Células secretoras
(sc) célula base (st). Células colectoras (cc)
Barra = 20 μm.
Distichlis spicata
Extrusión de sales en Distichlis spicata
Kizes, J., 2003
Osmosis
Membrana
Semipermeable
Efecto del
estrés salino
en Arroz
Efecto del
estrés salino
en Durazno
Cierre de estomas
Potencial de Agua (MPa)
Agua pura Plantas
bien
regadas
Plantas clima
áridos,
desiertos
Plantas
bajo
estrés
medio
Cambios Fisiológicos debido a la deshidratación
Acumulación de ABA
Acumulación de
solutos
Fotosíntesis
Conductancia
Estomatal
Síntesis de Proteínas
Síntesis pared celular
Expansión celular
Propiedades del agua de mar y agua de
riego de buena calidad
[iones] (mM) Agua de mar Agua de riego
Na+ 457 <2.0
K+ 10 <1.0
Ca2+ 10 0.5-2.5
Mg2+ 56 0.25-1.0
Cl- 536 <2.0
SO4= 28 0.25-2.5
HCO3- 2.3 <1.5
Potencial Osmótico (MPa) -2.4 -0.039
Sales Totales Disueltas (ppm) 32,000 500
Invernaderos Hidropónicos del Perú, Lurín
Análisis de Agua (Pachacamac)
Agua 1 Agua 2 Agua 3
pH 6.49 6.36 6.61
CE dS/m 1.65 1.48 1.51
Ca2+ meq/L 8.35 8.05 8.20
Mg2+ meq/L 2.50 2.25 2.33
K+ meq/L 0.04 0.04 0.04
Na+ meq/L 4.65 3.74 4.26
Suma cationes 15.54 14.08 14.83
NO3- meq/L 0.25 0.17 0.25
CO3= meq/L 0.00 0.00 0.00
HCO3- meq/L 4.87 4.41 4.70
SO4= meq/L 2.24 2.41 2.23
Cl- meq/L 8.30 7.50 7.70
Suma Aniones 15.66 14.49 14.88
Sodio % 29.92 26.56 28.73
RAS 2.00 1.65 1.86
Boro ppm 0.56 0.51 0.45
Clasificación C3-S1 C3-S1 C3-S1
Análisis de Agua (Lurin)
pozo 1 pozo 2
pH 7.16 7.52
CE dS/m 0.84 1.24
Ca2+ meq/L 3.91 5.80
Mg2+ meq/L 1.15 2.16
K+ meq/L 0.09 0.50
Na+ meq/L 2.56 4.74
Suma cationes 7.71 13.20
NO3- meq/L 0.01 0.09
CO3= meq/L 0.00 0.00
HCO3- meq/L 3.83 3.46
SO4= meq/L 1.58 3.21
Cl- meq/L 2.50 6.40
Suma Aniones 7.92 13.16
Sodio % 33.20 35.91
RAS 1.61 2.38
Boro ppm 0.13 0.39
Clasificación C3-S1 C3-S1
Invernaderos Hidropónicos del Perú, Lurín