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UNIVERSIDAD RICARDO PALMA

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

ESCUELA ACADEMICO PRFESIONAL DE BIOLOGÍA

Avance del trabajo sobre: “Ensayo de Evaluación de Impacto Ambiental en Las

Lomas de Lúcumo, Lima”

“Sector Flora”

Curso: Taller de Evaluación del Impacto Ambiental

Responsable del Estudio: Hidalgo Nicho, Eduardo Alejandro

Lima, Junio 2010

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INDICE:

6.2. Entorno Biológico 3

6.2.1. Flora 3

6.2.1.1. Introducción 3

2.2.1.2. Objetivos 3

6.2.1.3. Métodos 3

6.2.1.4. Resultados 4

6.2.1.4.1. Diversidad presente y potencial 4

6.2.1.4.2. Especies amenazadas 5

6.2.1.4.3. Hábitats sensibles 5

6.2.1.4.4. Propuesta de especie o grupo indicador 6

6.2.1.4.4.1. Justificación 6

6.2.1.4.4.2. Metodología de Propuesta 7

6.2.1.4.4.2.1. Toma de datos/laboratorio 8

6.2.1.4.4.2.2. Análisis de Datos 8

6.2.1.4.4.2.3. Cronograma de evaluaciones 10

6.2.1.5. Recomendaciones 10

Referencias Bibliográficas 11

Anexos 13

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6.2. Entorno Biológico

6.2.1. Flora

6.2.1.1. Introducción

Moseley et al (1981) mencionan que los pueblos indígenas han utilizado las

formaciones de lomas como un recurso temporal hace más de 500 años. En su estado

original, las lomas han proporcionado lugares esenciales para forraje y la siembra

periódica de los cultivos hasta la actualidad. De muchas especies de las lomas, aún se

desconocen su potencial importancia, como su valor alimenticio, industrial, medicinal,

etc. o simplemente su valor ornamental (Mendoza, 2006).

Además, los taxones presentes en las formaciones de lomas, son una fuente

potencial de germoplasma para la agricultura y la horticultura; por ejemplo, los géneros

de importancia económica Solanum y Lycopersicum contienen especies endémicas de

las lomas con características ecofisiológicas potencialmente útiles (Peralta & Spooner,

2001).

2.2.1.2. Objetivos

El objetivo específico del presente informe es la caracterización de la contaminación

causada por la Industria Cementos Lima, proponiendo la recolección de datos a través

de los líquenes como especie indicadora.

6.2.1.3. Métodos

Se revisó la información disponible sobre la flora de las Lomas del Perú. Esta

compilación incluyó la revisión de literatura especializada, revistas científicas e

información no publicada disponible (bases de datos), enfocando la búsqueda en la flora

de las Lomas de la Región Lima. No se encontró bases de datos sobre la flora de las

Lomas de Lúcumo. Adicionalmente, se realizó una salida de campo en abril de 2010

(época seca).

El taxón clave, se seleccionó tomando en cuenta la gradiente regional (latitudinal)

y la gradiente local (altitudinal) siendo los líquenes el grupo que mejor refleja el estrés a

las emisiones que son liberadas al aire por la Industria de Cementos Lima.

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Para la identificación de especies amenazadas se consideró la Clasificación

Oficial de Especies Amenazadas de Flora Silvestre en el Perú (MINAG, 2006) y El

Libro Rojo de Especies de Flora Endémica (León B. et al., 2006), que tienen como

base los criterios de categorías de la Unión Mundial de la Conservación-IUCN, dentro

del cual se encuentran las principales categorías de amenaza. Ellas son: Extinto (EX),

Extinto en Estado Silvestre (EW), en Peligro Critico (CR), en Peligro (EN), Vulnerable

(VU), Casi Amenazado (NT), Preocupación Menor (LR), Datos Insuficientes, (DD) y

No Evaluado (NE). Las especies listadas en las categorías CR, EN y VU se consideran

“amenazadas”.

6.2.1.4. Resultados

6.2.1.4.1. Diversidad presente y potencial

El tipo de vegetación característica son las Lomas, que presenta un relieve de

pampas, tablazos, terrazas, conos de deyección, cerros, colinas, espolones rocosos y

puntas con acantilados que pasan de 1000 m.s.n.m. (Ferreyra R., 1983). En la

vegetación, dentro de las categorías de las formas de crecimiento, las hierbas están

fuertemente representadas (78%) en comparación con las otras categorías. Los arbustos

y árboles están débilmente representados con 18% y 4% respectivamente.

La flora de las Lomas en el país, registra casi 600 especies de plantas (con

flores, gimnospermas y helechos) distribuidos en 72 familias y 284 géneros (Dillón,

resultados sin publicar). Las familias presentes son Asteraceae (57 géneros, 147 spp.);

Cactaceae (14 géneros, 92 spp.); Nolanaceae (dos géneros, 79 spp.); Leguminosae (26

géneros, 71 spp.); Solanaceae (19 géneros, 64 spp.); Malvaceae (nueve géneros, 56

spp.); Apiaceae (13 géneros, 51 spp.); y Boraginaceae (siete géneros, 51 spp.)

El endemismo bordea el 42% de las comunidades individuales (22% en la

parte central del Perú), siendo los géneros endémicos más comunes Ambrosia

(Asteraceae), Argylia (Bignoniaceae), Astragalus (Fabaceae), Nolana (Solanaceae),

Palaua (Malvaceae), Calceolaria (Scrophulariaceae), Cristaria (Malvaceae), Tiquilia

(Boraginaceae), Leptoglossis (Solanaceae) y Eremocharis (Apiaceae).

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La vegetación perenne llega a ser más diversa a partir de los 300 m, donde se

producen comunidades con características especiales en las laderas o las pendientes

rocosas en los cañones. Las bromelias terrestres (Tillandsia latifolia, Puya ferruginea)

se apoyan en las pendientes rocosas al igual que los líquenes. Los micro-hábitats de

estas laderas son húmedos y sustentan una flora muy diversa con muchas plantas

perennes herbáceas. Los cañones y valles en la zona de las lomas están caracterizadas

por tener una relativa densidad de árboles pequeños, en particular Caesalpinia spinosa,

Capparis prisca, Senna birostris y Carica candicans. Una característica de estos

pequeños bosques es que resguardan las comunidades de plantas epífitas, musgos,

líquenes y helechos.

6.2.1.4.2. Especies amenazadas

De acuerdo a la legislación peruana, Decreto Supremo Nº 043-2006-AG, se

han registrado cinco especies que han sido categorizadas siguiendo los criterios de la

IUCN, de la siguiente manera: uno como en Peligro Crítico (CR), dos como vulnerable

(VU) y dos como casi amenazado (NT) (Ver Tabla 1).

De acuerdo al El Libro Rojo de Especies de Flora Endémica, se han

registrado ocho especies que han sido categorizadas siguiendo los criterios de la IUCN,

de la siguiente manera: uno como en Peligro Crítico (CR), cuatro como Vulnerable

(VU), tres como Casi Amenazado (NT) (Ver Tabla 1).

6.2.1.4.3. Hábitats sensibles

Se consideran como áreas sensibles de vegetación aquellos lugares expuestos

a la acción del hombre que tienen un paisaje ecológico representativo y son el resultado

de la combinación única de clima, geología suelos, agua y flora del lugar, y donde

además habitan las especies endémicas, raras, sensibles o representativas de la región

incluyendo las especies clave (Golder Associates, 2009). Por la ubicación tan cercana de

la Fábrica de Cementos Lima, toda el área es vulnerable a las emisiones que esta

produce.

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6.2.1.4.4. Propuesta de especie o grupo indicador

Para poder investigar la zona, debe de escogerse a ciertas especies o

comunidades de plantas que sean representativas de valores científicos y públicos. Estas

especies o comunidades representan o afectan la integridad de las funciones del

ecosistema, y por lo tanto influyen en el valor social, cultural y/o económico de un área

(Golder Associates, 2010).

Becker & Utermöhlen (1997) mencionan que los sitios de selección deben

considerarse siguiendo los criterios de escoger una gradiente regional (latitudinal) y una

gradiente local (altitudinal). Además, la especie o especies indicadoras deben reflejar el

estrés múltiple al que son sometidos. Gloder Associates (2010) menciona que la especie

indicadora debe ser endémica o de la región y sensible ecológicamente. Los parámetros

a tomar en cuenta en la vegetación están basados en la composición florística,

abundancia (números de individuos por área), dominancia (porcentaje de cobertura por

área), la vitalidad y el estado fenológico.

En el área de estudio, la Industria de Cementos Lima realiza constantemente

sus actividades, lo que genera una gran cantidad de emisiones que son liberadas al

medio y posteriormente asimiladas por la flora del lugar. Es por eso que la evaluación

del aire se convierte en un requisito esencial para conocer el estado de las poblaciones

vegetales de las Lomas.

6.2.1.4.4.1. Justificación

Los líquenes son extremadamente sensibles a la contaminación aérea, no

poseen raíces por lo que dependen de las fuentes aéreas para obtenerlos. Pueden

almacenar grandes cantidades de químicos letales y retenerlos indefinidamente, lo que

les permite obtener una enorme resistencia a las condiciones adversas (Fonturbel, 2002).

Anze (1996) plantea que los líquenes son especialmente útiles para realizar monitoreos

de la contaminación del aire por sustancias como el SO2, el NO2, el HF, el O3, el PAN

(peroxiacetilnitrato),el HCl, los metales pesados o algunos gases tóxicos. Los efectos de

la contaminación por estas sustancias pueden verse en las características morfológicas y

fisiológicas de los líquenes (Anze, 1996; Canseco et al., 2006). Varios estudios han

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mostrado que la abundancia y diversidad de líquenes disminuye a medida que aumenta

el desarrollo urbano y la actividad industrial (Kett et al., 2005).

La causa de la resistencia o tolerancia de los líquenes hacia los distintos

contaminantes depende fundamentalmente de la resistencia del protoplasma de la célula,

de la fase metabólica y de la vitalidad y capacidad de inhibición de los efectos. En este

sentido, la madurez del talo, es una de las razones primordiales del descenso en la

diversidad y biomasa de líquenes en zonas contaminadas, porque simplemente no se

pueden reproducir o los talos más jóvenes dejan de progresar (Ferre R., 1999).

Ammann et al. (1987) refieren que los métodos desarrollados para

utilizar líquenes como bioindicadores y biomonitores de contaminación atmosférica

tienden a relacionar la presencia o ausencia de especies, su densidad, frecuencia de

aparición, porcentaje de cobertura y/o presencia y nivel de síntomas de daños externos o

internos, con el grado de pureza del aire. Además, Hawksworth et al. (2009) citan a los

líquenes como bioindicadores de lectura inmediata, de los cambios climáticos y de la

estabilización del suelo.

6.2.1.4.4.2. Metodología de Propuesta

Se utilizará la metodología de García & Rubiano (1984) mencionada por

Canseco et al. (2006) desarrollándose las siguientes actividades:

a) Efectuar estudios taxonómicos para identificar y determinar las especies de líquenes

presentes en las Lomas de Lúcumo.

b) Elección de forófitos (sustratos para las comunidades de líquenes), utilizando los

siguientes criterios:

Adultos sanos, con un mínimo de 50 cm. de perímetro.

Individuos de corteza rugosa con pH neutro.

Se excluirán árboles inclinados, dañados, pintados y de corteza lisa.

La unidad de muestreo se definirá por 10 árboles de la misma especie, en este

caso se utilizará Carica candicans (Gray) debido a que cumple un rol como

hábitat y nicho ecológico de varios organismos, teniendo un papel importante

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en el funcionamiento del ecosistema natural de las lomas costeras (Eusebio et

al., 2006). En caso de que el número de árboles no llegue a 10, los parámetros

medidos dentro del método mencionado, serán extrapolados a 10 y en los

lugares donde se sobrepasen los 10 árboles requeridos para la aplicación del

método, se utilizará la regla de tres simple para transformar y usar el

equivalente a 10 árboles.

c) Se seleccionaran 21 lugares de muestreo tomando en cuenta los siguientes

criterios:

Presencia de forófitos seleccionados portadores de líquenes.

Establecimiento de un transecto, determinado por la principal vía de tráfico

vehicular, incluyendo las distintas zonas geográficas.

Tipificación de las actividades de la zona (comercial, residencial e industrial).

Condiciones ambientales (zonas contaminadas y zonas sin contaminación).

6.2.1.4.4.2.1. Toma de datos/laboratorio

En cada área de muestreo, se aplicará la metodología propuesta por la

norma VDI-3799 (cartografía de líquenes) a cada forófito seleccionado. De acuerdo con

esta norma, se utiliza una rejilla de relevamiento de líquenes, siendo la altura del

muestreo de 1.50 m. de altura.

Se utiliza una rejilla de 1/10 m2 en cada árbol, obteniéndose así una

superficie de estudio de 1 m2 para cada lugar de muestreo, donde cada cuadrado de la

rejilla tiene un área de 10x10 cm2.

Los parámetros medidos en cada forófito, serán: a) frecuencia (número

de cuadrados en los que se encuentra una especie en estudio); b) cobertura (porcentaje

de dicha especie en la superficie cubierta); c) presencia de la especie en los 10 árboles

estudiados.

6.2.1.4.4.2.2. Análisis de Datos

Con los datos obtenidos se calculará el IAP para cada lugar de muestreo,

utilizando la siguiente fórmula, propuesta por García & Rubiano y mencionada por

Canseco et al. (2006):

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Donde:

IAP = Índice de Pureza Atmosférica de la estación j.

f i = Grado de frecuencia más grado de cobertura, más el número de los árboles

examinados cubiertos por la especie en cuestión. El valor f se modifica de estación

aestación.

Q i = Factor de tolerancia de la especie i, que se determina analizando el número de

especies acompañantes como promedio en todas las estaciones. El valor de Q resulta ser

una constante para cada especie, en el área de investigación, siendo inversamente

proporcional a la contaminación. Se lo determina con la relación:

donde:

Q i = Factor de resistencia de la especie i.

A j = Número de especies presentes en cada estación ( j ) donde se encuentra la especie i.

N j = Número de estaciones ( j ) donde se encuentra la especie i.

Con los valores de IAP obtenidos, se utilizará la metodología propuesta por García &

Rubiano, sobre la base de la relación entre el IAP Máximo Teórico sobre el IAP

Máximo Observado, para el establecimiento de rangos de IAP que permiten la

zonificación del área de estudio en función a los diferentes posibles niveles de

contaminación existente. Se aplica la siguiente relación:

Donde:

S = número total de especies de líquenes estudiadas

10

Con el cociente calculado se realiza la agrupación de los rangos y su respectiva

clasificación de nivel de contaminación (Ver tabla 2).

6.2.1.4.4.2.3. Cronograma de evaluaciones

Se realizarán dos salidas de campo por mes, siendo un total de 21

salidas (una por cada estación de muestreo) tanto en la época seca (10 salidas de campo)

como en la época húmeda (11 salidas de campo), indicando la fecha y la ubicación

exacta (Sistema GPS). Los datos serán analizados el mismo día de la recolección y el

proceso de análisis de estos se realizarán al finalizar todos los muestreos.

6.2.1.5. Recomendaciones

En el estudio, deben considerarse los tipos de vegetación en las Lomas de

Lúcumo, registrando las especies de interés para la conservación y las especies de

importancia socio-económica (uso medicinal, uso como leña, forraje, etc).

Así mismo, se deben realizar más salidas de campo antes de realizar el muestreo,

evaluando la presencia de Carica candicans en el área (que es propuesto como sustrato

del taxón indicador) y de otras especies tanto en la época seca como en la época

húmeda. En caso de no contar con los suficientes individuos de Carica candicans para

el muestreo, se adaptará el método propuesto por García & Rubiano (1984) mencionada

por Canseco et al. (2006), escogiendo otro sustrato en el que el taxón indicador se

encuentre presente.

11

Referencias Bibliográficas:

Ammann K.; Kerzig R.; Liebendorfer L. & Urech M. 1987. Correlation multivariée

entre les dones de position de 8 differents pollutants de l´air celles issues de releves de

la vegetation lechenique dans une petite ville suisse. Advances in Aerobiologý. Basel.

Anze, R. 1996. Líquenes del Valle de La Paz como bioindicadores de contaminación

atmosférica. Ecología en Bolivia, 28: 65–80 p.

Becker B. & Utermöhlen H. 1997. Identificación de Especies Indicadoras en la Flora

Acompañante en Campos de Cultivo de los Andes. Editorial Inst. Ecología

Canseco A.; Anze R. & Franken M. 2006. Comunidades de líquenes: Indicadoras de la

calidad del aire en la ciudad de la Paz, Bolivia. Acta Nova vol. 3 (2): 286 – 307 p.

Dillón M. Diversidad Florística del Norte del Perú. Disponible en la world wide web:

http://www.nolana.com/books/Diversidad_Tomo5.htm

Eusebio L.; Mendoza A. & Manco M. 2006. Autoecología de Carica candicans (Gray)

de las Lomas de Lúcumo. Biologist vol 4(2): 11 – 13 p.

Ferre, R. 1999. Líquenes y calidad del aire. Utilización de los líquenes como

bioindicadores. Seminario de Biología y Geología del I. E. S. "Padre Eduardo Vitoria"

ALCOY Proyecto Europeo.

Ferreyra R. 1983. Tipos de Vegetación de la Costa Peruana. Anales Fard. Bot. Madrid

40 (1): 241 – 256 p.

Fontúrbel F. 2002. Especies de Plantas de Valor Científico Específico. Ciencia Abierta

Vol.19. Disponible en la world wide web:

http://cabierta.uchile.cl/revista/19/articulos/pdf/paper1.pdf

12

Golder Associates. 2009. Estudio de Impacto Ambiental Proyecto Antapaccay –

Expansión Tintaya. Anexo F9. Línea Base de Flora y Vegetación. Informe preparado

para Xstrata Tintaya S.A. 71 p.

Golder Associates, 2010. Estudio de Impacto Ambiental. Proyecto Minero las Bambas.

Anexo H11, Línea Base Flora. Preparado para Xstrata Tintaya S.A. 215 p.

Hawksworth D.; Iturriaga T. & Crespo A. 2009. Líquenes como bioindicadores

inmediatos de la contaminación y cambios medio-ambientales en los trópicos. Revista

Iberoamericana de Micología Vol 22(2): 71- 82 p.

Kett A.; Dong S.; Andrachuck H. & Graig B. 2005. Learning With Lichens: Using

Epiphytic Lichens As Bio-Indicators of Air Pollution. 10 p. Disponible en la world wide

web: http://www.greenteacher.com/articles/Lichens.pdf

León B, Roque J, Ulloa-Ulloa C, Pitman N, Jorgensen PM, Cano A, editores. 2006. El

Libro Rojo de las Plantas Endémicas del Perú. Revista Peruana de Biología Número

Especial 13(2).

Mendoza A. 2006. Biodiversidad y Sustentabilidad de las Ciudades Costeras. Necesidad

de mantener áreas de vida silvestre en la ciudad. Biologist 4 (1): 5 p.

(MINAG) Ministerio de Agricultura. 2006. Decreto Supremo N° 043-2006-AG.

Aprueban Categorización de Especies Amenazadas de Flora Silvestre. Publicado el 6

de julio de 2006.

Moseley, M.E., Feldman, R.A. & Ortloff, C.R. 1981. Living with crisis: human

perception of process and time. In Nitecki, M. (ed.), Biotic crises in ecological and

evolutionary time. Academic Press, New York. Pp. 231-267 p.

Peralta I. & Spooner D. 2001. GBSSI gene phylogeny of wild tomatoes (Solanum L.

section Lycopersicon [Mill.] Wettst. subsection Lycopersicon). Amer J Bot, 88:1888-

1902 p.

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ANEXOS

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TABLA 1. Lista de especies de flora silvestre amenazadas en las Lomas

FAMILIA NOMBRE CIENTÍFICO

Decreto

Supremo 043-

2006-AG

Libro Rojo (León

et al. 2006) FORMA DE

CRECIMIENTO ENDÉMICA

Amaryllidaceae Ismene amancaes (Ruiz, López y Pavón) VU H X

Asteraceae Ophryosporus pubescens (Sm.) EN S X

Asteraceae Philoglossa peruviana DC. NT H

Asteraceae Senecio abadianus DC CR S X

Asteraceae Senecio lomincola Cabrera NT S X

Begoniaceae Begonia octopetala subsp. Ovaloformis EN EN H X

Cactaceae Armatocerus mutacanensis Backeberg NT S X

Caricaeae Carica candicans Gray CR S/T

Caryophyllaceae

Drymaria divaricata Kunth var. reflexiflora

Duke NE

H X

Fabaceae Caesalpina spinosa (Molina) VU S/T X

Fabaceae Acacia macracantha Humb & Bonp. NT S/T X

Geraniaceae Geranium limae R. Knuth VU H X

Malvaceae * Palaua rhombifolia R. Graham LC H X

Plantaginaceae Plantago limensis Pers. LC H X

Solanaceae * Jaltomata umbellata (Ruiz & Pav.) VU S X

Solanaceae Nicotiana paniculata L. LC H

Solanaceae * Nolana gayana (Gaudich.) VU H

Solanaceae Nolana humifusa (Gouan) NT H X

Urticaceae Pilea lamioides Wedd. VU H X

H = hierba; S= Arbusto, subarbusto o cactoide; T = árbol; * = Exclusivo Lomas

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Tabla 2. Valores para la zonificación

Rangos

Clasificación

min - I Contaminación muy alta

- II Contaminación alta

- III Contaminación media

- IV Contaminación baja

- V Contaminación muy

baja

Máx. observado VI Sin contaminación

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Tabla 3. Familias y Especies de la Flora Vascular de Lomas de Lachay entre 1997-98

17

18

19

GRÁFICOS:

Graf. 1. Porcentaje de familias incluida en alguna categoría de amenaza.

6%

21%

6%

5%

5%

5%11%

5%

5%

5%

21%

5%

Amaryllidaceae Asteraceae Begoniaceae Cactaceae

Caricaeae Caryophyllaceae Fabaceae Geraniaceae

Malvaceae Plantaginaceae Solanaceae Urticaceae