situación actual de leptospirosis en humanos, caninos y
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Trabajo de grado para optar por el título de Medicina Veterinaria y Zootecnia:
Situación actual de Leptospirosis en humanos, caninos y fauna
Silvestre de Latinoamérica
Genny Leandra Sepúlveda Quintero
Asesores: Juan Carlos Rincón
Juan Carlos González
Universidad Tecnológica de Pereira
Facultad de Ciencias de la Salud
Programa de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Pereira – Risaralda
Año 2017
2
INDICE
1. RESUMEN
2. ABSTRACT
3. INTRODUCCION
4.
5. MATERIALES Y MÉTODOS
6. RESULTADOS Y DISCUSION
7. BIBLIOGRAFIA
3
Situación actual de Leptospirosis en humanos, caninos y fauna
silvestre de Latinoamérica
Genny Leandra Sepúlveda Quintero
Resumen
El presente trabajo es una revisión de literatura que busca dar una idea clara de
la situación en la que se encuentra Latinoamérica frente a enfermedades
zoonoticas como la leptospira y el problema de salud pública que genera, la
importancia que tienen los animales como reservorio principal de la enfermedad,
los roedores por ser la fuente principal de diseminación de la leptospira hacia
otras especies como los caninos, bovinos, equinos y porcinos, de estos depende
en gran medida el contagio hacia los humanos. Se encontró que uno de los
problemas radica en el mal diagnostico que se le está dando a esta enfermedad
y a su fácil diseminación por medio de los animales.
Palabras claves: espiroqueta, epidemiología, zoonosis, Leptospira sp,
Abstract
The present work is a review of the literature that seeks to give a clear idea of
the situation in which Latin America is faced with zoonotic diseases such as
leptospira and the problem of public health that the genera, the importance of
animals As the main reservoir of bovine, equine and porcine, of these depends
to a large extent the contagion towards humans. It was found that one of the
problems lies in the malignant diagnosis that is being given a disease and an
easy dissemination by means of the animals.
Keywords: spirochaete, epidemiology,zoonosis, Leptospira sp.
4
Introducción
En Latinoamérica se han reportado casos de enfermedades trasmitidas de
animales a humanos entre ellas la leptospira que es una enfermedad bacteriana
que tiene como reservorio natural los roedores y caninos, se trasmite por medio
de agua contaminada con orina de animales infectados causando gran riesgo de
contagio. Existen algunos trabajos de prevalencia de la enfermedad en
diferentes países donde también se desconoce la frecuencia de la enfermedad
en caninos y fauna silvestre. Sin embargo, esta información está dispersa, lo que
dificulta entender la gravedad y la dinámica de la enfermedad en la zona. Por
este motivo el objetivo de este trabajo fue recopilar información actualizada y
elaborar un informe escrito sobre la prevalencia de leptospirosis en humanos,
caninos y fauna silvestre en Latinoamérica.
Materiales y Métodos
Se recopilo información de las siguientes fuentes, en bases de datos como:
-ScienceDirect
-Scielo
-Pubmed
Generalidades
La leptospirosis es una enfermedad zoonotica producida por una espiroqueta del
genero leptospira (del griego leptos: delgado y del latín spira: espiral). Tiene un
periodo de incubación de 7-14 días Fue descubierta por primera vez en 1886
por Adolph Weil del cual toma el nombre de enfermedad de Weil en humanos
(1,2). Se divide en cepas patógenas Leptospira alexanderi, Leptospira fainei,
Leptospira kirschneri, Leptospira meyeri, Leptospira borgpetersenii, Leptospira
anadai, Leptospira weillii, Leptospira noguchi, Leptospira santarosai,
genomospecies 1, genomospecies 4, genomospecies 5 y la principal cepa
patógena Leptospira interrogans que a su vez tiene aproximadamente 23
serogrupos y 218 serovares. Y cepas no patógenas Leptospira wolbachi,
genomospecies 3 y Leptospira biflexa que tiene aproximadamente 28
serogrupos y 60 serovares (3). Un serovar se define como microorganismos que
5
comparten características antigénicas específicas, y un Serogrupo como la
agrupación de serovares según sus principales afinidades antigénicas reveladas
en la prueba de aglutinación cruzada(4,5). Los serovares se clasifican según la
especie a la que afectan y la región en la que pueden encontrarse; en caninos la
más común es la Canicola, en cerdos Pomona, Tarassovi y Bratislava y en
Bovinos Pomona, Hardjo y Grippotyphosa (6). En Colombia los serogrupos
encontrados más frecuente en humanos son Australis Hebdomadis y Sejroe y
los departamentos de mayor incidencia Barranquilla, Guaviare, San Andrés,
Santa Marta y Risaralda (7).
Tabla 1 Clasificación taxonómica Leptospira, principales especies de
importancia. (3)
Especie
Patógenas
Serogrupo Serovar Especie afectada
Leptospira interrogans icterohaemorrhagiae Icterohaemorrhagiae Rata, Humanos
icterohaemorrhagiae Copenhageni Rata
Australis Bratislava Equinos, Humanos
Canicola Canicola Caninos
Sejroe Hardjo Ovinos, Bovinos
Pomona Pomona Porcinos
Leptospira
borgpetersenii
Tarassovi Tarassovi Porcinos
Leptospira kirschneri Grippotyphosa Grippotyphosa Bovinos
No patógenas
Leptospira biflexa Semaranga Patoc
Leptospira wolbachii Códice Códice
Genomospecies 3 Holland Holland
La supervivencia de la leptospira depende de las condiciones del medio
ambiente donde se encuentre, debe tener un pH entre 6 y 8 y una temperatura
entre 10°C Y 34°C, esta no se replica por fuera del huésped (8).
Es una bacteria Gram negativa; morfológicamente son bacilos móviles,
helicoidales, aerobios, que tienen un diámetro de 0,1 µm y una longitud de 6-12
µm. El reservorio y trasmisor más importante de la leptospira es el roedor; esta
6
bacteria se ubica en los túbulos renales de los animales portadores y es
excretada por medio de la orina. Su contagio se da por medio de la ingesta de
agua contaminada con dicha orina, también se presenta contagio por las
mucosas o por medio de heridas. En Latinoamérica, se han reportado casos de
enfermedades trasmitidas de los animales a los humanos entre ellas la leptospira
que es una de las enfermedades zoonoticas de mayor importancia a nivel
mundial (6,9).La Organización Mundial de la Salud (OMS) define zoonosis como
la trasmisión de cualquier enfermedad o infección de animales vertebrados a
humanos(10).
Esta espiroqueta tienen afinidad por las zonas de clima templado y tropical, ya
que estas condiciones le permiten sobrevivir en el agua y el suelo y así ser un
foco de contagio para los animales y los humanos que se puedan encontrar en
las zonas rurales (11). También en las ciudades se pueden encontrar
poblaciones vulnerables al contagio de esta zoonosis, entre los factores
importantes que se presentan en estas poblaciones es un estrato
socioeconómico bajo, personas que caminan descalzas y que presentan algún
tipo de lesión en la piel; también es común encontrar que personas que
recientemente hayan realizado algún viaje puedan adquirir esta enfermedad
(12).
Signos y Síntomas
En los países tropicales genera una mayor importancia el control de la
leptospirosis y que su clima y humedad facilita la supervivencia y propagación
de esta bacteria, a su vez por tener signos y síntomas clínicos inespecíficos, en
la mayoría de los casos presentes en humanos es mal diagnosticada, los signos
y síntomas que se pueden presentar dependen del serovar que esté produciendo
esta infección, estos pueden varias desde síntomas gripales hasta una
enfermedad febril ictérica (Enfermedad de Weil) (13).
Entre los síntomas que presenta la enfermedad podemos destacar, fiebre, dolor
de cabeza, mialgia, con tendencia a progresar, también puede llegar a un punto
más grave produciendo insuficiencia renal, insuficiencia orgánica multisistemica
y síndrome hemorrágico pulmonar severo (14). Los síntomas que se presentan
7
pueden ser benignos y ser confundidos fácilmente con otras infecciones y al ser
tratadas pueden desaparecer los síntomas o en el peor de los casos la
enfermedad puede tomar un curso grave y tener desenlace fatal, entre estas
complicaciones se puede ver alterada la función hepática (15). En Brasil también
se ha identificado el síndrome pulmonar hemorrágico severo asociado a
Leptospira spp. Serotipo Copenhageni (16). La presencia de hemorragia alveolar
presente con signos de disnea y hemoptisis son manifestaciones clínicas
pulmonares de Leptospirosis (17).
Otras especies animales como los caninos, bovinos, equinos y porcinos son
considerados reservorios de leptospira, también está presente en algunos
animales silvestres lo que hace que la prevalencia de esta enfermedad este
aumentando y a su vez mas difícil su control. Los signos y síntomas que pueden
presentar los animales también son inespecíficos y esto hace que sea difícil
diagnosticarlos y por ese mal diagnostico los humanos se vean afectados ya que
los productos de algunas de estas especies son utilizadas para consumo
humano y genera una fuente importante de contagio (18). La infestación en los
caninos se puede presentar por una amplia gama de serovares que se asocia a
una enfermedad severa y con un alto índice de mortalidad, esta provoca lesiones
agudas en riñones e hígado, signos respiratorios y miocarditis caninos, estos
síntomas dependen de la edad y el estado inmunológico del paciente (19). En
perros el serovar Canicola puede causar nefritis, nefrosis o esclerosis renal que
puede llegar a ocasionar daño renal, también ocasiona ulceras en la cavidad oral
al desencadenarse una azoemia y uremia por el daño provocado (20). En los
gatos la leptospira puede causar fiebre, dolor e inflamación de las articulaciones,
vasculitis, deshidratación y dificultad respiratoria. Estos contraen la enfermedad
por medio de roedores o de los caninos con los que estos se encuentren en
contacto (21). La leptospirosis en bovinos puede producir abortos, baja en la
producción y una disminución en la ganancia de peso lo que constituye un papel
importante para el contagio a los humanos, aparte de ser un factor que afecta la
economía de la producción(22).
En algunas especies de animales silvestres como en los cocodrilos también se
ha diagnosticado la presencia de Leptospira sp. El contagio es debido al contacto
que tienen animales infectados con el agua donde estos se encuentran, no se
8
conoce los síntomas que estos puedan presentar(23). También hay reportes de
presencia de leptospirosis en mapaches de Estados Unidos, en los cuales se
diagnostico la especies Leptospira Kirchner, Serogrupo Grippotyphosa(24)
Transmisión
La leptospira se encuentra albergada en los túbulos renales del portador y de allí
se excreta por medio de la orina, esta transmisión puede ser directa cuando por
medio de la orina o de fluidos corporales entra en contacto con el cuerpo del
nuevo huésped, también se puede transmitir por medio de la leche materna o se
puede dar una transmisión transplacentaria tanto en humanos como animales o
indirecta cuando un animal o persona entra en contado con orina de algún
portador (25). Se ha identificado que los casos positivos a leptospira están
asociados al género, al estrato socioeconómico, al nivel de educación y al
contacto con animales, también puede estar asociado a viajes nacionales que
realizaron las personas infectadas (26).
En México la población de la zorra gris (Urocyon cinereoargenteus) y de coyote
(Canis latrans) han ido aumentando y por la cercanía que los humanos y algunos
animales domésticos han tenido con estos han hecho que el contagio de
diferentes enfermedades sea más frecuente (27). Otro de los países en los que
se observa cercanía de animales silvestres a zonas urbanas es en ecuador
donde la presencia zorro andino (Lycalopex culpaeus) es cada vez más
frecuente al igual que el contacto que estos tienen con animales domésticos
como los caninos, aunque en estos no se ha comprobado que sean portadores
de enfermedades zoonoticas como la leptospira (28).
En Colombia se tiene información de un brotes de leptospira, se notificó de uno
que fue en el año de 1995 en el departamento de Atlántico con 47 casos
confirmados y 284 sospechosos de los que se tuvo una mortalidad del 17 %, en
las pruebas diagnósticas aislaron Leptospira icterohaemorrhagiae.(29). El
reporte de casos positivos a leptospira en humanos es de reporte obligatorio ya
que con esta información se pueden tomar medidas preventivas y correctivas
para el control de la enfermedad (30). Se ha encontrado que las personas que
tienen algún tipo de vínculo con el sector agropecuario o que se encuentran en
situación de desplazamiento son más susceptibles a contraer esta enfermedad,
9
por el contacto directo en el que se encuentran con animales que pueden ser
posibles portadores o por aguas contaminadas que pueden estar cerca a sus
viviendas (31).
Tabla 2. Factores de riesgo para la trasmisión de leptospirosis
Referencia País Edad Sexo Ubicación Contacto directo con
animales
Joven
0 a 20
Adulto
˃20
Femenino Masculino Rural Urbana Si No
Jaramillo L et al
2014 (29)
Colombia X X X X
Romero-vivas
CM, et al 2016(6)
Colombia X X X X
Restrepo B, et al
2016 (32)
Colombia X X X X X
Alvarado-
Esquivel C, et al
2015 (26)
México X X X X X
Muñoz-zanzi C ,
et all 2014(11)
Chile x X X X X X
Restrepo-
jaramillo BN, et
al 2007 (33)
Colombia X X X X
Carvajal MP, et
al, 2015 (14)
Costa
Rica
X X X X X
Instituto
Nacional de
Salud INS , 2009
(31)
Colombia X X X X X
10
Los factores de riesgo tanto en humanos como en caninos están asociados al
contacto directo que estos tengan con animales que posiblemente estén
infectados, en humanos uno de los factores que tienen más relevancia es que la
presencia de la enfermedad en su mayoría se da en hombres adultos con una
edad mayor a 20 años. También está asociado al estrato socioeconómico, a las
condiciones donde habita la persona ya que en climas cálidos y con malas
condiciones de vivienda se aumentan los casos de Leptospira por la presencia
de roedores y de agua contaminada. En los animales no se puede observar que
los que se ven más afectados son los caninos domésticos ya que con los caninos
callejeros no se han hecho estudios relevantes, otro factor que influye en los
casos positivos a leptospira en los caninos es el contacto que estos han tenido
con otros animales posiblemente infectados. Además se debe tener en cuenta el
estado inmunitario del paciente, un paciente con un estado inmunitario bajo es
más propenso a ser positivo a leptospira desarrollando una etapa grave de la
enfermedad.(6,20)
Referencia País Edad Sexo Ubicación Contacto directo con
otros animales
Cachorro Adulto Hembra Macho Domestico Callejero Si No
Medrano C, et al
2011 (34)
Colombia X - - X - -
Aires B ,
2011(35)
Argentina X - - X X
Luna A, et al,
2008(20)
México X X X X X X
Raghavan RK, et
al, 2012 (36)
Estados
Unidos
X X X X X X
Fink JM , et al
2015 (37)
Estados
Unidos
- - X X X X
Medina A. Z , et
al 2010(38)
Venezuela - - - - X X
M JS , et al, 2015
(39)
Perú x x x x x X
11
Diagnostico
El diagnóstico de la leptospirosis se hace por medio de exámenes de laboratorio,
la técnica más utilizada es la aglutinación microscópica (MAT) por medio de esta
se detectan anticuerpos para el variado grupo de serovares que tiene la
leptospira, esta técnica consiste en observar la aglutinación antígeno anticuerpo
para los diferentes serovares de Leptospira en un campo oscuro. También en los
últimos años se ha implementado el uso de técnicas de ELISA modificadas como
el Dot- Elisa, que es un ensayo inmunoenzimático que emplea anticuerpos
marcados con una enzima para revelar el reactivo complementario en distintos
fluidos biológicos (9,34). Otro de los métodos diagnósticos utilizados es el PCR
(Reacción en cadena de la polimerasa) y aunque no es tan específico como el
MAT también es efectivo. Para el diagnóstico de un paciente canino positivo a
leptospira se pueden observar títulos superiores o iguales a 800; en casos donde
los pacientes hayan sido vacunados los títulos pueden alcanzar un umbral de
600 y estos son difícil distinguirse cuales fueron por procesos vacunales o cuales
fueron por contagio. Hasta el 2013 la prueba de aglutinación microscópica (MAT)
era la más utilizada para detectar casos positivos, después de esta fecha se
implementó también el uso de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) ya
que con esta se puede diagnosticar exitosamente la fase aguda de la
enfermedad (14). Una de las complicaciones que tiene el uso de la prueba MAT
es su difícil interpretación y la experiencia que requiere para ser realizada (40).
Otra técnica utilizada es el PCR en tiempo real con sondas TaqMan que se utiliza
para diagnosticar leptospirosis por medio de la orina codificando especies
patógenas y no patógenas (41,42).
Tratamiento
El tratamiento inicial es de soporte, se debe estabilizar el paciente, regular el
equilibrio hidroelectrolítico y acido básico los primeros días después de
presentar los síntomas se debe empezar con antibióticos como Eritromicina, en
casos leves a graves se recomienda Penicilina G, Ampicilina o Ceftriaxona, con
esto se disminuye la infección y se evita un daño en los órganos que pueden
estar afectados como el hígado y los riñones (15)(43). Se debe tener en cuenta
12
que estos tratamientos son sintomáticos, ayudando a que disminuya la
mortalidad, adicional al tratamiento antibiótico que se le dé al paciente se debe
tener un control sobre la dieta en pacientes con insuficiencia renal aguda y en
casos graves se le debe realizar hemodiálisis (6).
Tabla 3. Protocolo medicamentos indicados en Leptospirosis.
Nombre
medicamento
Humanos Caninos
Niños Adultos
Penicilina G x X X
Amoxicilina x X
Eritromicina x X
Ampicilina X
Ceftriaxona X
Tetraciclina x
Doxiciclina x
Estreptomicina x
Tanto en humanos como en caninos se inicia con un tratamiento de soporte, que
incluye fluidoterapia y según el estado de animal lo que sea necesario para
estabilizarlo y después dependiendo de los síntomas que presente el paciente
y según el Serogrupo que sea diagnosticado se inicia tratamiento antibiótico. En
caninos se recomienda el uso de estreptomicina por su efectividad pero en los
casos donde el paciente no tenga alteración renal, y a nivel que el paciente vaya
mostrando mejoría se puede cambiar el tratamiento de elección (20).
Prevención y control
En los países en los que las enfermedades zoonoticas como la leptospira no
tienen tanta relevancia son en los que se ejercen mejores medidas de control y
prevención, ya que son en los que se destinan mayor parte de recursos para
estudios científicos (44). Además se debe tener en cuenta los factores externos
como el cambio climático y las consecuencias que traen consigo las lluvias,
deslizamientos por inundaciones y por nuevas áreas urbanizadas, las malas
prácticas en la industria pecuaria hacen que el riesgo de ser una enfermedad
13
reemergente sea mayor (45). Una complicación a la hora de realizar una
adecuado control de la leptospirosis es el diagnostico ya que en la mayoría de
las ocasiones no es especifico y para ser especifico y seguro requiere de tiempo
mientras se pueden realizar los demás exámenes de laboratorio para su
diagnóstico definitivo, en la práctica este tiempo no se espera ya que se debe
tratar la enfermedad sintomática que presente el paciente (25).
Otra forma de prevención de la enfermedad es la vacunación, que tiene como
inconveniente que solo actúa frente a la serovariedad para la que fue creada,
además solo cubre a los humanos y a los animales un corto periodo de tiempo
por esto se debe hacer revacunación (6).
TABLA 4: Prevalencia de leptospira en humanos, caninos y fauna silvestre.
14
Referencia País/ Región Serovares/
serogrupos
Especie N° de pacientes
estudiados
Prevalencia Técnica
Libertador DP, et al
2009 (31)
Colombia /
Córdoba
L.
icterohaemorrhagiae
L. hardjo y L bratislava
Humanos 78 67.9% MAT
Echeverri LM, et al
2009 (15)
Medellín/ Colombia Leptospira spp. Humanos 14 100 % Inmunoglobulina M
(IgMELISA-
PanBio®,)
Jaramillo L, et al 2014
(29)
-Carepa
-Necoclí
-San pedro de
Urabá / Colombia
L.
icterohaemorrhagiae
Humanos 27,3%
25%
25%
-ELISA
-Dot- ELISA
Carvajal MP, et al
2011 (14)
Costa Rica Leptospira spp. Humanos 5056 10.6% MAT
PCR
Slands N 2008
(25)
México
Leptospira spp. Humanos 400 14.25% MAT
Restrepo B, et al.
2016 (32)
Alto Sinú-Córdoba
Colombia
Serogrupo L. Australis
Bratislava,
Icterohaemorrhagiae y
Panamá
Humanos 391 18.1% MAT
15
Referencia País / región Serovares/
Serogrupos
Especie N° de pacientes
estudiados
Prevalencia Técnica
Silva LA, et al.
2016(46)
Ciudad de Manaus
– Brasil 2016
Serovares
Icterohaemorrhagiae,
cynopteri hed,
Australis y
copenhague
Humanos 1000 4,3% MAT
Arboleda M, et al.
2016 (47)
Urabá – Colombia
2016
Serovares
grippothyposa y
Bratislava
Humanos 126 58,7% MAT
16
Referencia País / Región Serotipo/
Serogrupos
Especie N° pacientes
estudiados
Prevalencia Técnica
Jimenez-Coello
M, et al. 2008(48)
Yucatán –
México
Serogrupos Canicola e
icterohaemorrhagiae
Caninos 400 35% MAT
ELISA
Silva RF, et al.
2007 (49)
Valdivia- Chile Serovares ballum,
canicola e
icterohaemorrhagiae
Caninos 400 14,8 MAT
Scialfa E, et al.
2013 (50)
Buenos Aires-
Argentina 2013
Serovares L. interrogans,
Canicola, hebdoma y
hardjo
Zorros grises 25 29% MAT
Blum
Domínguez
SDC, et al
2013(51)
Campeche/
México
Canicola , hardjo Caninos 323 21.3% MAT
Medina A. Z, et
al 2010 (38)
Aragua /
Venezuela
icterohaemorrhagiae,
canicola y hardjo
Caninos 53 100% MAT
17
Referencia País / Región Serotipo/
Serogrupo
Especie Numero
animales/
Personas
Prevalencia Técnica
(24) Estados
Unidos
Grippotyphosa Mapaches 34 47.1% PCR
MAT
18
La información recopilada de la presencia de leptospira sp. En Colombia nos indica
que hay una alta prevalencia de esta enfermedad con casos reportados de hasta un
100% de prevalencia, aunque no tiene una cantidad representativa de personas
muestreadas (15). No se ha reportado la prevalencia de Leptospira sp. en animales
silvestres de Latinoamérica y la información con la que se cuenta no da indicios de
los signos y síntomas que presentan los animales al entrar en contacto con esta
enfermedad, como es el caso de los zorros(28).
Conclusiones
Por medio de este trabajo se concluyó que la presencia de leptospira en los países
de Latinoamérica ha ido incrementando en los últimos años, se ha reportado
presencia en animales silvestres sin presentar síntomas de enfermedad, lo que
puede ser un problema a la hora de establecer controles ya que evitar el contacto
de estos animales con las zonas rurales es difícil y hace que el contagio con
animales domésticos se incremente.
Bibliografía
1. Para G, Equipo EL. enfermedades infecciosas GUIA PARA EL EQUIPO DE
SALUD. 2014;
2. Zunino M E, Pizarro P R. Leptospirosis: Puesta al día. Rev Chil infectología.
2007;24(3):220–6.
3. Manuel Céspedes. Leptospirosis : Enfermedad Zoonótica Reemergente. Rev
Peru Med Exp Salud Publica. 2005;22(4):290–307.
4. Julián Pérez Porto y Ana Gardey. DEFINICION DE SEROTIPO. 2014.
5. Llop A, Valdez M. MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA MEDICAS. CAP
37.
19
6. Romero-vivas CM, Falconar AK. Leptospira spp . and human leptospirosis.
2016;32(5):123–43.
7. Bello S, Rodríguez M, Paredes A, Mendivelso F, Walteros D, Rodríguez F, et
al. Comportamiento de la vigilancia epidemiológica de la leptospirosis
humana en Colombia , 2007-2011. 2013;33.
8. Mayors L. Leptospirosis en caninos.
9. Pulido-villamarín A, Carreño-beltrán G, Mercado-reyes M, Ramírez-bulla P.
Situación epidemiológica de la leptospirosis humana en Centroamérica ,
Suramérica y el Caribe. 2014;19(3):247–64.
10. Zoonoses [Internet]. world health organization. Available from:
http://www.who.int/topics/zoonoses/en/
11. Muñoz-zanzi C, Mason MR, Encina C, Astroza A. Leptospira Contamination
in Household and Environmental Water in Rural Communities in Southern
Chile. 2014;22:6666–80.
12. Osorio L. Seroprevalence and factors associated with Leptospira infection in
an urban district of Cali , Colombia Seroprevalencia y factores asociados a la
infección por Leptospira en un distrito urbano de Cali , Colombia
Soroprevalência da infecção por Leptospira . 2017;33(5):1–14.
13. Saad C, Parra E, Higuera L, Pacheco A. LEPT OSPIR OSIS HUMANA :
LEPTOSPIR OSPIROSIS HALLAZGOS CLÍNICOS E HIS T OP A T
OLÓGICOS HIST. 2006;51–63.
14. Carvajal MP, Fagerstrom KA. Epidemiology of Leptospirosis in Costa Rica
2011 – 2015. 2017;41–6.
15. Echeverri LM, Atehortúa S, Ospina S. Leptospirosis con inmunoglobulina M
positiva en pacientes hospitalizados en una institución de tercer nivel de
Medellín, Colombia, en 2009. Infectio [Internet]. 2011;15(2):118–23.
Available from:
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0123939211707512
20
16. Gouveia EL, Metcalfe J, Carvalho ALF De, Aires TSF. Leptospirosis
associated Severe Pulmonary Hemorrhagic Syndrome,Salvador, Brazil.
2008;14(3):1–4.
17. Dolhnikoff M, Mauad T, Bethlem EP, Roberto C, Carvalho R. Pathology and
Pathophysiology of Pulmonary Manifestations in Leptospirosis. 2007;11:142–
8.
18. Laverde LM. Caso Clinico De Leptospirosis En Un Canino. 2012;1:12–58.
19. Spiri AM, Rodriguez-campos S, Matos JM, Glaus TM, Riond B, Reusch CE,
et al. Clinical , serological and echocardiographic examination of healthy field
dogs before and after vaccination with a commercial tetravalent leptospirosis
vaccine. 2017;1–10.
20. Luna A, Moles C, Gavaldón R. La leptospirosis canina y su problemática en
México. Rev Salud … [Internet]. 2008;30(1):1–11. Available from:
http://scielo.sld.cu/pdf/rsa/v30n1/rsa01108.pdf
21. Beaudu-Lange C, Lange E. Unusual clinical presentation of leptospirosis in a
cat. Rev Vet Clin [Internet]. 2014;49(3):115–22. Available from:
http://dx.doi.org/10.1016/j.anicom.2014.05.001
22. Garcia L, Forster K, Jorge S, Rodrigues N, Drawanz D, Gonc M, et al.
Comparative Immunology , Microbiology and Infectious Diseases
Immunological and molecular characterization of Leptospira interrogans
isolated from a bovine foetus. 2015;40:41–5.
23. Fornazari F. Letter to the Editor Are Reptiles Reservoirs of Leptospirosis ? A
Brief Discussion Based on Serological Studies. Ecohealth. 2017;
24. Taylor P, Tan CG, Dharmarajan G, Beasley J, Jr OR, Moore G, et al.
Neglected leptospirosis in raccoons ( Procyon lotor ) in. (October 2014):37–
41.
25. Islands N. Leptospirosis : an emerging global public health problem.
2008;33(November):557–69.
21
26. Alvarado-Esquivel C, Hernandez-Tinoco J, Sanchez-Anguiano LF.
Seroepidemiology of Entamoeba histolytica Infection in General Population
in Rural Durango, Mexico. J Clin Med Res [Internet]. 2015;7(6):435–9.
Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25883706
27. Zamora-ledesma S, Hernández-camacho N, Olvera- AM. Perfil sanguíneo y
análisis de la seroprevalencia de Leptospira interrogans en zorra gris (
Urocyon cinereoargenteus ) y coyote ( Canis latrans ) en dos zonas
suburbanas de la ciudad de Querétaro Blood profile and seroprevalence
analysis of Leptospira int. 2016;1737(3):279–85.
28. Veintimilla N. Presencia de enfermedades parasitarias e infecciosas
(Leptospirosis, distemper y brucelosis) en zorros andinos (Lycalopex
culpaeus) que habitan en los páramos de la Hacienda Antisanilla (Pintag-
Ecuador). 2015;
29. Jaramillo L, Arboleda M, García V, Agudelo-Flórez P. Coinfección
brucelosis-leptospirosis, Urabá, Colombia. Reporte de caso. Infectio
[Internet]. 2014;18(2):72–6. Available from:
http://dx.doi.org/10.1016/j.infect.2014.02.002
30. Instituto Nacional de Salud INS et al. Protocolo Leptospirosis. Guias INS.
2009;1–16.
31. Libertador DP, Paternina LG. Prevalencia de leptospirosis en humanos en la
zona urbana. 2009;0(1):23–8.
32. Restrepo B, Rodas JD, Montoya-ruiz C. Evidencia serológica retrospectiva
de infecciones por Leptospira spp ., dengue , hantavirus y arenavirus en
indígenas. 2016;33(4):472–3.
33. Restrepo-jaramillo BN, Arboleda-naranjo M. Situación de la leptospirosis en
el Urabá antioqueño colombiano : estudio seroepidemiológico y factores de
riesgo en población general urbana Leptospirosis in Uraba , Antioquia ,
Colombia : a seroepidemiological and risk factor survey in the urban populat.
2007;23(9):2094–102.
22
34. Medrano C, César G, Díaz A, Ernesto R, Dalmau A. Diagnóstico de
leptospirosis canina por medio de las técnicas Dot-ELISA y MAT en perros
con enfermedad renal en Bogotá *. 2011;(10).
35. Aires B. R E V I S TA A R G E N T I N A D E. 2014;46(3):201–4.
36. Raghavan RK, Brenner KM, Higgins JJ, Hutchinson JMS, Harkin KR.
Evaluations of hydrologic risk factors for canine leptospirosis : 94 cases (
2002 – 2009 ). Prev Vet Med [Internet]. 2012;107(1–2):105–9. Available
from: http://dx.doi.org/10.1016/j.prevetmed.2012.05.004
37. Fink JM, Moore GE, Landau R, Vemulapalli R. Evaluation of three 5′
exonuclease–based real-time polymerase chain reaction assays for
detection of pathogenic Leptospira species in canine urine [Internet]. Vol. 27,
Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2015. p. 159–66. Available
from: http://journals.sagepub.com/doi/10.1177/1040638715571360
38. Medina A. Z, Guerra B. M, Veliz N. Serological study of leptospirosis in
canines from a shelter in the state of Aragua. Rev la Fac Ciencias Vet Univ
Cent Venez [Internet]. 2010;51(2):93–7. Available from:
http://www.scielo.org.ve/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-
65762010000200004&lng=en&nrm=iso&tlng=es
39. M JS, E SC, J CEP, S GP, R GS. Identificación de Serogrupos Patógenos
de Leptospira en Canes Domésticos Identification of Pathogenic Leptospira
Serogroups in Domestic Dogs. 2015;26(4):664–75.
40. Vanasco NB, Lottersberger J, Schmeling MF, Gardner IA. Diagnóstico de
leptospirosis : evaluación de un enzimoinmunoensayo en fase sólida en
diferentes etapas de la enfermedad. 2007;21(6):388–95.
41. Andr?? Sedano S, Chris E, Pinto J, Juan Siuce M, Sonia Calle E.
Estandarizaci??n de una T??cnica de PCR en Tiempo Real con Sondas
TaqMan para la Detecci??n de Leptospira spp Pat??genas en Orina de
Canes Dom??sticos. Rev Investig Vet del Peru. 2016;27(1):158–68.
23
42. Giry C, Roquebert B, Li-pat-yuen G, Gasque P. Simultaneous detection of
chikungunya virus , dengue virus and human pathogenic Leptospira
genomes using a multiplex TaqMan ® assay. 2017;1–10.
43. García, R., Reyes, A., Basilio, D., Ramírez, M., & Rivas B. Leptospirosis; un
problema de salud pública. Rev Latinoam Patol Clínica y Med Lab [Internet].
2013;60(1):57–70. Available from:
http://www.medigraphic.com/suscriptores/pt131_completo.pdf#page=58
44. Jones KE, Patel NG, Levy MA, Storeygard A, Balk D, Gittleman JL, et al.
Global trends in emerging infectious diseases. Nature [Internet].
2008;451(7181):990–3. Available from:
http://www.nature.com/doifinder/10.1038/nature06536
45. La EN, Amazónica R, Perú DEL, Donaires LF, Céspedes MJ, Sihuincha MG,
et al. DETERMINANTES AMBIENTALES Y SOCIALES PARA LA
REEMERGENCIA DE LA LEPTOSPIROSIS ENVIRONMENTAL AND
SOCIAL DETERMINANT FACTORS FOR THE. 2012;29(2):280–4.
46. Silva LA, Maria K, Celeste O, Fernandes C, Balassiano IT, Eliane K, et al.
Short Communication Seroprevalence of and risk factors for leptospirosis in
the City of Manaus , State of Amazonas , Brazil. 2016;49(August):628–31.
47. Perez-Garcia, Arboleda M, Florez PA. Leptospirosis infantil en pacientes con
sindrome febril en la region de uraba, Colombia. Rev Peru Med Exp Salud
Publica. 2016;33(4):745–50.
48. Jimenez-Coello M, Vado-Solis I, Cárdenas-Marrufo MF, Rodríguez-Buenfil
JC, Ortega-Pacheco A. Serological survey of canine leptospirosis in the
tropics of Yucatan Mexico using two different tests. Acta Trop.
2008;106(1):22–6.
49. Silva RF, Riedemann S. Seroprevalencia de leptospirosis canina en perros
atendidos en clínicas veterinarias , mediante aglutinación microscópica y
comparación con las técnicas de aislamiento e inmunofluorescencia
indirecta Frequency of canine leptospirosis in dogs attending vet. 2007;269–
24
74.
50. Scialfa E, Brihuega B, Venzano A, Morris WE, Bolpe J, Schettino M. First
Isolation of Leptospira interrogans from Lycalopex griseus (South American
Gray Fox) in Argentina Shows New MLVA Genotype. J Wildl Dis [Internet].
2013;49(1):168–72. Available from:
http://www.jwildlifedis.org/doi/10.7589/2011-07-219
51. Blum Domínguez SDC, Chi Dzib MY, Maldonado Velázquez MG, Nuñez
Oreza L a, Gómez Solano MI, Caballero Poot RI, et al. Detection of reactive
canines to Leptospira in Campeche City, Mexico. Rev Argent Microbiol
[Internet]. 2013;45(1):34–8. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23560786