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FISIOLOGIA DELLA EMOPOIESI

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FISIOLOGIA DELLA

EMOPOIESI

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EMOPOIESI definizione

L’insieme dei processi che regolano il

mantenimento del numero fisiologico

di cellule circolanti del sangue in

condizioni di omeostasi e intervengono

come compenso in situazioni di

perdita/distruzione, o per rispondere

adeguatamente ad un aumento della

richiesta da parte dell’organismo

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EMOPOIESI meccanismi di regolazione

CELLULARE: Presenza di cellule con diverse

potenzialità proliferative e

maturative

INTERCELLULARE: Interazione delle cellule

emopoietiche con elementi

cellulari e proteine dello stroma

ESOGENO:

Cell nonautonomous

Fattori di crescita (citochine) ed

altre molecole non citochiniche

(es. ormoni) che hanno la

proprietà sia di stimolare che di

inibire, a diversi livelli,

l’emopoiesi

ENDOGENO:

Cell autonomous

Molecole di regolazione

intracellulare, come le cascate

dei secondi messaggeri ed i

fattori di trascrizione nucleari.

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SCF/cKit proteine della matrice/

recettori

citochine

prodotte

distalmente

cellule dello stroma

osteoblasti Notch/Jagged

HSC

CLP CMP

maturazione

stimolatorie

inibenti

sinusoidi midollari

citochine

prodotte

in loco

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IL TURNOVER DELLE CELLULE DEL SANGUE

ERITROCITI GRANULOCITI

NEUTROFILI

PIASTRINE

5 x 106 / l

3.6x 103 / l

2 x 105 / l

5 x 1012 / L 3.6x 109 / L 2 x 1011 / L

25 x1012 / PERSONA 18 x 109 / PERSONA 2 x 1011 / PERSONA

120 GIORNI 12 ORE ~ 10 GIORNI

2 x 1011 / DIE 0.36 x 1011 / DIE 1 x 1011 / DIE

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IL-7Ra- c-mpl+

LT-HSC

CLP

ST-HSC

Pro-T Pre-T

Pro-B Pre-B

MPP

B/Mf

NK

IL-7Ra+ c-mpl-

CMP

GMP

CFU-M

CFU-G

Epo-R-

Epo-R+

MEP CFU-Meg

BFU-E CFU-E

DC

DC

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CELLULE

STAMINALI PROGENITORI PRECURSORI ELEMENTI

MATURI

NUMERO DI CELLULE

SPECIALIZZAZIONE FUNZIONALE

PLASTICITA’ FUNZIONALE

ATTIVITA’ MITOTICA

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differenziazione

apoptosi

espansione

differenziazione/

automantenimento

quiescenza

HSC

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SELF-RENEWAL DIFFERENTIATION

The capacity to

reproduce themselves

The capacity to

generate terminally-differentiated

specialized cells

…..

“Stemness”

genes ON OF

Tumor

suppressor

genes

OFF ON

Differentiation

genes OFF ON

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CELLULA STAMINALE

EMOPOIETICA markers

c-kit

CD34

Thy1

Non espresse

CD10

CD14

CD15

CD16

CD19

CD20

CD38

Fenotipo staminale

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CELLULE CD34+

• 1-2% nel midollo

• 0.05% nel sangue periferico

• 0.3-0.5% nel sangue cordonale

• 0.5-3% nel sangue periferico mobilizzato

• >> in condizioni patologiche (IM)

• LTR dopo terapia mieloablativa

• Proteina transmembrana

• Funzione non nota (adesione?)

• 105-120 kD

• Altamente glicosilata

• 3 epitopi diversi (mAb di tre classi)

• Varianti molecolari

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IN VIVO IN VITRO

CFU-GEMM

CFU-GM

CFU-Mk

CFU-G

CFU-M

BFU-E CFU-E

16-14 gg 14 gg 7 gg

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SISTEMI DI ASSAY DELLE CELLULE

STAMINALI E DEI PROGENITORI:

CELLULE STAMINALI:

in vivo: animali subletalmente irradiati, NOD/SCID,

pazienti sottoposti a trapianto allogenico

in vitro: ?? Colture long-term

PROGENITORI COMMISSIONATI:

in vitro: CFU

SIDE POPULATION:

In vitro: trasportatori della famiglia ABC altamente espressi nella membrana

dei progenitori immaturi estrudono il

colorante Heochst

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• La capacità proliferativa e differenziativa delle

CD34+Lin- da PB è inferiore rispetto a BM

• Il # di cellule necessario per la ricostituzione

emopoietica in trapianti xenogenici da PB è

superiore rispetto a BM

• La long-term repopulation ability in trapianti

secondari e terziari delle cellule da PB è inferiore

rispetto a BM

• Non vi è evidenza di senescenza patologica delle

cellule staminali (lunghezza telomerica) in riceventi

di BM vs PB

• L’aggiunta di SCF a G-CSF incrementa il numero di

cellule LTR in topi

CELLULE CD34+

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MODELLI DI STRUTTURA DEL

SISTEMA EMOPOIETICO

STOCASTICO

I processi di proliferazione e turnover e

differenziamento delle HSC sono guidati da

fenomeni probabilistici

DETERMINISTICO

Potenziale predeterminato: fenomeno

programmato a priori a livello genetico

Controllo Extracellulare: effetto induttivo del

microambiente midollare e dal particolare milieu

citochinico in cui le cellule si vengono a trovare

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OSTEOBLASTI

NICCHIA OSTEOBLASTICA

LT-HSCs

I processi di automantenimento e differenziazione

delle HSC richiedono uno specifico microambiente,

formato da elementi cellulari e molecole, noto come la

“nicchia” emopoietica

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Ligands in stem cell

niche

Receptors in

HSCs Function

N-Cad N-Cad Cell adhesion

VCAM Integrin Cell adhesion

Ang-1 Tie-2 Stem cell maintenance

Jagged1 Notch Positive regulator of self-

renewal

Wnt3a Frizzled Positive regulator of self-

renewal

Ca2+ CAR Stem cell homing

Some of the important molecules within the HSC

niche and their corresponding receptors on HSCs

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Avecilla ST, 2004

NICCHIA VASCOLARE

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Stem cell niche Circulation

STEM CELL CIRCULATION

Extrinsic Intrinsic

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REGOLAZIONE INTRINSECA

• egr-1 transcription factor gene (Early

Growth Response Factor-1) gene is highly

expressed by HSC and strongly repressed

during HSC mobilization. It functions by

restricting HSC entry into the cell cycle and

limiting HSC migration through a CXCR4-

SDF-1 independent mechanism. It seems to

act predominantly through a transcriptional

repression mechanism

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REGOLAZIONE ESTRINSECA

Osteoblastic niche

Cycloph

G-CSF

Proliferation

Chemokine

circulation

SDF1

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REGOLAZIONE DELL’EMOPOIESI

• Controllo esogena

• Controllo endogena

Fattori di crescita(CSF)

Interleuchine

citochine

Fattori Trascrizionali

Meccanismi epigenetici

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IL-6

IL-11

SCF

LIF

FL...

GM-CSF

G-CSF

TPO

EPO

IL-2

IL-7, -4

IL-7

IL-3

SCF

CITOCHINE SORGENTE

CELLULARE BERSAGLIO CELLULARE FUNZIONE

IL-4 Linfociti T,

Mastociti

Linfociti T e B, Progenitori

emopoietici precoci

Stimola la proliferazione dei linfociti B, lo sviluppo di

cellule TH2, lo switch isotipico verso la classe IgE e

promuove la crescita dei mastociti

IL-5 Linfociti T,

Mastociti Eosinofili Stimola la proliferazione e l’attivazione degli eosinofili

IGF-1 Fegato Progenitori eritroidi Induce la formazione di CFU-E; possiede un effetto

anti-apoptotico.

GM-CSF

Cellule stromali

Linfociti T,

Mastociti

Progenitori emopoietici,

Precursori della linea

granulocitaria e monocitaria

Stimola l’emopoiesi precoce, la proliferazione e

l’attività di monociti, granulociti e mastociti

G-CSF

Cellule stromali,

Macrofagi,

Monociti

Progenitori granulocitari,

Granulociti maturi

Stimola l’emopoiesi precoce, la proliferazione e

l’attività dei granulociti.

M-CSF

Cellule stromali,

Macrofagi,

Monociti

Progenitori monocitari, Monociti Stimola la proliferazione e l’attività dei monociti

Eritropoietina Reni, Fegato Progenitori e Precursori eritroidi Fattore di regolazione della eritropoiesi

Trombopoietina Fegato, Reni Cellula staminale, Megacariociti,

Progenitori eritroidi

Fattore di regolazione della megacariocitopoiesi;

attivo sulle cellule staminali; interviene in alcune fasi

della eritropoiesi; stimola l’adesione dei progenitori

emopoietici alla fibronectina

CONTROLLO ESOGENO CITOCHINE

SORGENTE

CELLULARE BERSAGLIO CELLULARE FUNZIONE

IL-3 Linfociti T Progenitori emopoietici precoci

Fattore di crescita multipotente che stimola la

crescita dei progenitori emopoietici precoci e

induce l’espressione di M-CSF dai macrofagi

IL-6

Fibroblasti,

Linfociti T,

Macrofagi,

Epatociti,

Cellule

somatiche

Linfociti T, Megacariociti

Stimola la sintesi delle proteine di fase acuta negli

epatociti; induce il differenziamento del linfocita B

verso la plasmacellula; stimola la

megacariocitopoiesi; ha un’azione sinergica con

IL-3, IL-4, IL-1 e IL-2

IL-7 Cellule

stromali Progenitori linfoidi precoci Stimola la proliferazione dei precursori linfoidi

IL-11

Fibroblasti,

cellule

stromali

Megacariociti, Progenitori

eritroidi, Linfociti B

Interviene durante la megacariocitopoiesi e nelle

fasi terminali dell’eritropoiesi .

SCF

(kit

ligand)

Cellule

stromali,

Fibroblasti,

Epatociti

Mastociti, Progenitori

pluripotenti, Progenitori

mieloidi, eritroidi e linfoidi

Fattore di crescita delle cellule staminali

pluripotenti; interviene sinergicamente con IL-3,

GM-CSF e Epo nelle fasi terminali dell’emopoiesi;

stimola la proliferazione, il diffenziamento e la

chemiotassi dei mastociti

Flt-3L Fibroblasti

stromali

Cellule staminali e progenitori

emopoietici

Fattore di crescita delle cellule staminali e dei

progenitori emopoietici

LIF Cellule

stromali

Progenitori emopoietici

multipotenti

Riduce la capacità proliferativa; induce il

differenziamento dei progenitori emopoietici;

stimola la piastrinopoiesi

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• Il differenziamento di linea si spiega in

maniera convincente con il profilo di

espressione di fattori di trascrizione critici

per le diverse linee

• I FT critici agiscono in maniera coordinata,

contesto-dipendente, e interattiva

• Molti di questi FT sono stati scoperti per il

loro coinvolgimento in traslocazioni

cromosomiche in pazienti con leucemia

CONTROLLO ENDOGENO

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Geni del “differenziamento”

La specificità di azione dello stesso FT in linee diverse

può essere spiegato con 2 meccanismi diversi:

1. La presenza di co-fattori linea-specifici

es. FOG-1 e GATA1. FOG-1 presenta regioni diverse in grado di

influenzare il differenziamento verso le diverse filiere

emopoietiche .

2. La presenza di differenti livelli di espressione del FT.

Es. GATA1 in cui il differenziamento megacariocitario richiede

livelli di espressione più elevati rispetto a quello eritrocitario .

Es. PI.1 in cui elevati livelli indirizzano verso la differenziazione

macrofacica, livelli intermedi verso quella granulocitaria e livelli

minimi verso il differenziamento B-linfocitario.

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Antagonismo funzionale dei FT

CMP

MEP GMP

RBC MK GN Mo/MAc

PU.1

GATA-1

EKLF

Fli

Gfi-1

PU.1

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Cell lineage reprogramming:

single-factor activity

GATA-1

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Induction of megakaryocytic differentiation in primary human erythroblasts

Goldfarb AN, Am J Pathol 2001; 158:1191

Green: HbA

Red: GPIIb Purified GPA+ erythroblasts

+ HEL conditioned medium

+ Thrombopoietin

Day 2

Day 5

Day 0

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PRIMITIVE EMBRYONIC

Yolk sac E7.5 to E11

DEFINITIVE

Liver E9.5

to newborn

ADULT

DISTINCT STAGES OF ERYTHROPOIESIS

DURING DEVELOPMENT

Shimizu R, 2001; Zang H, 2001

E 9.5

Bone Marrow E15

throughout life

E 12.5

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DISTINCT STAGES OF ERYTHROPOIESIS

DURING DEVELOPMENT

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PRIMITIVE EMBRYONIC DEFINITIVE

DEVELOPMENTAL BLOCK OF

ERYTHROPOIESIS

8.5 9 10-11 11.5 12.5

SCL LMO2

GATA-2

GATA-1

FOG1

16

EKLF

13.5

WT WT KO KO

c-Myb “bloodless mice”

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PRIMITIVE EMBRYONIC

DEFINITIVE

8.5 9 10-11 11.5 12.5 16 13.5

Bcl-X

WT WT KO KO

EpoR

Stat5a

Jak2

Lyn

GRdim/dim

DEVELOPMENTAL BLOCK OF

ERYTHROPOIESIS

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FL

SCF

IL-3

GM-CSF

Epo

Tpo

Mpl Kit Flt3

Epo

GM-CSFR IL-3Rα

gp130

Mpl Kit

Epo

GM-CSFR IL-3Rα

gp130

Mpl

Epo gp130

Mpl

Epo

Stem cell BFU-E CFU-E Erythr

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ERITROPOIESI

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L’ ERITRONE

Costituisce l’ unità anatomo-funzionale dell’ eritropoiesi e comprende l’ intera popolazione cellulare che va dalle cellule staminali orientate in senso eritroide fino agli eritrociti circolanti .

Si disstinguono :

• Progenitori eritroidi ( BFU-E, CFU-E ), non individuabili morfologicamente

• Precursori eritroidi, morfologicamente riconoscibili ( proeritroblasto, eritroblasto basofilo, eritroblasto policromatofilo, eritroblasto ortocromatico )

• Reticolociti

• Eritrociti

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La più precoce cellula eritroide è chiamata BFU-E

(burst forming unit erythroid). Essa è in grado di

dare origine, in terreno di coltura semisolido (es.

metilcellulosa), ad aggregati cellulari che dopo 14-

16 giorni di incubazione danno origine a

macrocolonie (burst), di 30.000-40.000 cellule:

eritroblasti (ortocromatici e policromatofili) ed

eritrociti maturi ricchi

di emoglobina.

Un progenitore più maturo è il CFU-E (colony

forming unit erythroid), che genera in coltura dopo

7 giorni aggregati più piccoli di cellule

emoglobinizzate (8-65 cellule).

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I “precursori” sono più maturi dei progenitori e sono identificabili senza

essere messi in coltura. Nella serie eritroide essi comprendono

proeritroblasti, eritroblasti basofili, policromatofili ed ortocromatici. Questi

perdono il nucleo e non contengono più DNA.

La “progenie” è invece rappresentata dai reticolociti che poi diventano

eritrociti.

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ERITROPIESI

Tempo di produzione – 5 giorni

• Nucleo sempre più piccolo

• Cromatina sempre più aggregata

Il citoplasma cambia dal blu all’arancione

• diminuzione di RNA

• aumento in emoglobina

PROERITROBLASTO ERITROBLASTO BASOFILO I ERITROBLASTO

BASOFILO II

ERITROBLASTO POLICROMATOFILO

I

ERITROBLASTO POLICROMATOFILO II

ERITROBLASTO ORTOCROMATICO

RETICOLOCITA

GLOBULI ROSSI

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Fe

-O2 Fe

ERITROPOIETINA EPO

mRNA

Goldberg MA et al, 1988

SINTESI DELLA EPO •Cellule del sistema monocito-macrofagico intorno ai tubuli prossimali nella corticale del rene •Cellule renali peritubulari •Cellule epatiche (epatociti e cellule di Ito)

•Progenitori eritroidi

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ERITROPOIETINA

PERCHE’ NEL RENE? IL FLUSSO EMATICO RENALE E’ PARI AL 20%

DEL TOTALE E IL CONSUMO DI O2 NELLA CORTICALE DEL RENE E’

PRESSOCHE’ COSTANTE (PROPORZIONALE AL RIASSORBIMENTO DEL

Na). QUINDI NON VI SONO ELEMENTI LOCALI CHE MODIFICHINO LA

pO2. LA pO2 DIPENDE DALLA QUANTITA’ DI O2 TRASPORTATA DAGLI

ERITROCITI. LE CELLULE PERITUBULARI “SENTONO” LA pO2

ATTRAVERSO UN SISTEMA DI PROTEINE EMICHE LA CUI

CONFIGURAZIONE OSSI/DESOSSI REGOLA LA SINTESI DI UN

FATTORE DI TRASCRIZIONE (HYPOXIA INDUCIBLE FACTOR, HIF) CHE

REGOLA LA SINTESI DI EPO.

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La visione “classica” del sistema eritropoietico

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La visione “classica” del sistema eritropoietico

stimolo

sensore prodotto

bersaglio

Epo Epo-R

effetto

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JAK2 JAK2 P

EPO

P

P P

P

P

P

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JAK2 JAK2 P

EPO

P

P P

STAT5 STAT5

P

P P

P P

STA

T5

STA

T5

P

Transcription

PI-3 K RAS

LYN

MAP/ERK Kinase

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JAK2 JAK2 P

EPO

P

P P

P

P P

Transcription

STA

T5

STA

T5

P X

EPO

STA

T5

STA

T5

P

SHP

1

SHP

1

P P

JAK2 JAK2 P P

P

P P

JAK2 JAK2 P P

P

P

R129C

SOCS

PIAS

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Bcl-XL prom

immediate

delayed

Motoyama 1995; Merika 1985; Gregory 1999; Wagner 2000; Haughn 2003; Vannucchi 2002

APOPTOSIS X

GATA-2 prom PROLIFERATION

X

β-globin prom -globin