zoos and biodiversity

Сборник материалов

V международной научно-практической конференции «роль зоопарков в сохранении биоразнообразия»

ColleCtion of works

of the 5th international scientific and Practical Conference «The role of Zoos in the Conservation of Biodiversity»

19-22 мая 2009г. киев, Украина

19-22 May 2009kiev, Ukraine

Сборник материаловV Международной научно-практической конференции

«Роль зоопарков в сохранении биорзнообразия»

В сборнике материалов V Международной научно-практической конференции «Роль зоопарков в сохранении биорзнообразия» опубликованы тезисы докладов лучших отечественных специалистов, а также специалистов стран-членов Европейского Союза, России, Беларуси.

Конференция приурочена к 100-летию со дня основания Киевского зоологического парка и проходила по следующим основным направлениям:

система управления в зоопарках и аквариумах; содержание и разведение диких животных в неволе; реинтродукция диких животных для возобновления естественных популяций;

поведение диких животных в неволе; современные подходы к проектированию зоопарков и аквариумов;примеры лучшей ветеринарной практики и исследований;информационно-просветительская деятельность природоохранного

направления в зоопарках и аквариумах.Сборник включает рисунки, схемы, таблицы и диаграммы.

Главный редактор и ответственный за выпуск генеральный директор киевского зоологического парка общегосударственного значения

берзина С.в.

редакторы-составители:Марунчин А.А.Шульга А.В.Качан Т.Г.Бузан Г.С.Иванова Е.В.

Орфография и стиль подачи материалов сохранен в авторском варианте. Оргкомитет не несет ответственность за допущенные авторами тезисов докладов грамматические и орфографические ошибки.

@ Киевский зоологический парк

3

V Международная научно-практическая конференция«Роль зоопарков в сохранении биоразнообразия»

СОДЕРЖАНИЕ

РАЗДЕЛ 1. ПРОЕКТИРОВАНИЕ ЗООПАРКОВИ ОТДЕЛЬНЫХ ЭКСПОЗИЦИЙ .............................................................................................. 5мударисов а. р. Перспективы развития Казанского зооботсада ..................................... 5Гильмутдинов р. Я., малев а. в., мударисов а. р. Оптимизация размеровпомещений для содержания в неволе экзотических хищников ......................................... 8Дузь С. л. Проблемы и перспективы развития выставочной деятельностина базе Одесского культурно-оздоровительного комплекса «Немо» ............................. 12РАЗДЕЛ 2. СОДЕРЖАНИЕ И РАЗВЕДЕНИЕ ДИКИХ ЖИВОТНЫХ В НЕВОЛЕ ...... 15Домашлинец в. Г. Роль зоопарков в сохранении биоразнообразия .............................. 15остапенко в. а. Программы ЕАРАЗА по сохранению редких видов животных ....... 17ильчин в. Тренинг слонов: полный контакт и контакт под защитой.На основе наблюдений тренировки азиатских слонов (Elephas maximus)в Аюттхае (Тайланд) и в Честерском зоопарке ..................................................................... 21Жарких т. л., Ясинецкая н. и., Смаголь в. а. Веточный корм в кормлениикопытных в зоопарке «Аскания-Нова» .................................................................................. 28базаров и. в. Размножение Южных (Патагонских) морских львов (Otaria byronia(Blainville, 1820) в цирковых условиях за период 1997 – 2004 г.г. ..................................... 36орлов к. Г., качан т. Г. Опыт содержания бурых медведей в открытых вольерахна экспозиции «Медвежий континент» Киевского зоопарка ........................................... 40илзе Д. в. Опыт Рижского зоопарка разведения земноводных в неволе ..................... 47вахрушев в. Аспекты содержание широкого плавунца Dytiscus latissimusLinnaeus, 1758 (Dytiscidae, Coleoptera) в условиях лаборатории ...................................... 50РАЗДЕЛ 3. НАУЧНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ В ЗООПАРКАХ.РЕИНТРОДУКЦИЯ ДИКИХ ЖИВОТНЫХ, ВОССТАНОВЛЕНИЕПРИРОДНЫХ ПОПУЛЯЦИЙ .................................................................................................. 56нежевенко в. в., вильмовский т. Создание питомника с целью содержанияи разведения сайгака (Saiga tatarica) ........................................................................................ 56Стекленев е. П. Воспроизводительная способность винторогого козла(Capra falconeri Wagn. 1839) в условиях полувольного содержанияна юге Украины ............................................................................................................................. 61ковтун С. и. Криоконсервация эпидидимальных сперматозоидов самцовкак метод сохранения генофонда сельскохозяйственных и диких животных ............. 64Пупиня а., Пупиньш м. Опыт Латгальского зоопарка (Даугавпилс, Латвия)в изучении и сохранении природных популяций Bombina bombina и Emysorbicularis в Латвии ...................................................................................................................... 67Петрова н. а., курбашкина С. а. Динамика изменения поведения у молоднякальва (Panthera leo) в раннем постнатальном периоде при искусственномвыкармливании в Казанском зооботсаду .............................................................................. 71Шишова н. в., максудов Г. Ю., Утешев в. к. Сохранениежизнеспособности постмортальных сперматозоидов травяной лягушки

4

Содержание

Rana temporaria и значение феномена для создания криобанка амфибий .................... 76мезинов а. С. Роль зоопарка «Аскания-Нова» в восстановлении огаря Tadorna ferruginea) на юге Украины ....................................................................................... 80РАЗДЕЛ 4. ИНФОРМАЦИОННО-ПРОСВЕТИТЕЛЬСКАЯДЕЯТЕЛЬНОСТЬ ПРИРОДООХРАННОГО НАПРАВЛЕНИЯ В ЗООПАРКАХИ АКВАРИУМАХ ........................................................................................................................ 84моисеева т. С., лебедева а. м. Год лягушки в Тульском экзотариуме ......................... 84богдан о.Д. Внедрение информационно-познавательной игры дляшкольников «Зоо Квест» в Киевском зоопарке.................................................................... 85РАЗДЕЛ 5. ВЕТЕРИНАРНАЯ ПРАКТИКА ........................................................................... 88Шульга A. B., толстоухов о. а., марунчин A. A., левченко в. І.Морфобіохімічні показники крові антилоп нільгау ........................................................... 88толстоухов о. а., Шульга а. в., марунчин а. а., Іздепський в., левченко в. І.,Сеєдзавош аббасзаде. Загальна анестезія антилоп Нільгау(Boselaphus tragocamelus) в умовах Київського зоопарку .................................................. 93марунчин а. а., калиновська І., ложкіна о., толстоухов о. а., Шульга а. в.,Сеєдзавош аббасзаде. Актиномікома у самця ігуани (iguana iguana).Клінічний випадок ..................................................................................................................... 100марунчин а. а. Анестезіологічні аспекти диких тварин родини Felidae ................... 107марунчин а. A. Анестезіологічне забезпечення оперативнихвтручань у ведмедів ................................................................................................................... 111Шульга а. в. Іммобілон і еторфін-ксилазиновий наркоз оленів Давида(Elaphurus davidianus) – вплив на якість анестезії, кардіоваскулярнута дихальну системи .................................................................................................................. 122альшинецкий м. в. Применение золетила у диких и зоопарковскихживотных ..................................................................................................................................... 126васильев Д. б., Швед в. С. Микозы рептилий и амфибий ............................................. 132Юнчис о. н. Профилактика болезней рыб при карантинировании ........................... 137вестбери а. Первый зарегистрированный в Великобритании случайкоровьей оспы у пумы, содержащейся в неволе ................................................................ 140Жорина л., Шулешко а., богомаз а., лесная а. Анатомические особенностиосевого скелета бегемота .......................................................................................................... 142Шулешко о., Жорина л., маковська о., васьковська І. Лікуваннятоксоплазмозу у єнотоподібних собак. Клінічний випадок ............................................ 148Шаламова Г. Г., Гильмутдинов р. Я., буракова а. в., мударисов а. р.Влияние паразитарной инвазии на гематологические показатели копытных животных Казанского зооботсада ........................................................................................ 155leon J fourie, Josef Heine. Оценка эффективности препарата Адвокат®(10% имидаклоприда и 2,5% моксидектина) при лечении генерализованногодемодекоза у собак .................................................................................................................... 156Полатайко о. р. Актуальные проблемы анестезии и седации лошадей ...................... 163

5


РАЗДЕЛ 1. ПРОЕКТИРОВАНИЕ ЗООПАРКОВИ ОТДЕЛЬНЫХ ЭКСПОЗИЦИЙ

ПерСПективЫ раЗвитиЯ каЗанСкоГо ЗооботСаДа

мударисов а.р., директор казанского зооботсада

Руководство мэрии и Исполнительного комитета МО г. Казани (глава исполкома М.Ф.Загидуллов) решилось на масштабную реконструкцию Зооботсада, не имеющую аналогов в мировой практике. Для разработки проекта реконструкции и расширения старейшего в России Зооботанического сада дали задание ЗАО «Инвестсити» (директор И.Л.Моисеев) найти архитекторов. После рассмотрения нескольких кандидатов выбор был сделан на международную архитектурно-проектную компанию «Аткинс» из Великобритании. Под руководством директора отдела проектных решений этой компании Валерии Эванс был создан работоспособный творческий коллектив специалистов, куда вошла группа архитекторов во главе с известным британским архитектором, автором знаменитого отеля «Парус» в Дубаи, Томом Райтом, с привлечением экспертов Зоологического Общества Лондона (председатель Ник Линдзи) и его членов правления, в том числе всемирно известного зоолога Брайна Бертрама. В этой работе также активное участие приняли специалисты Казанского зооботсада.

Зодчие с туманного Альбиона представили 15.11.2007 г. в городской Ратуше мастер-план на суд премьер-министра РТ Рустама Минниханова, мэра Казани Ильсура Метшина.

Гигантская стрекоза с двумя парами крыльев – так неожиданно и фантастически красиво будет выглядеть с высоты птичьего полета новый архитектурный

6

Раздел 1. Проектирование зоопарков и отдельных экспозиций

ансамбль Казанского зооботсада. Пара больших «крыльев» - два корпуса торгово-развлекательного центра, вторая пара – каскад подсвеченных фонтанов на озере. Тело «стрекозы» - легкий, изящный пешеходный мост из стекла через озеро Кабан, по которому посетители смогут попасть в зоопарк. Животные и растения получат новые комфортные условия. Для них создадут привычную среду обитания, а безопасность посетителям обеспечат невидимые глазу «электропастухи», прозрачные стеклянные витрины и глубокие рвы. На реализацию данного проекта потребуется 110 миллионов долларов США, но со временем все затраты должны окупиться.

Реконструкция Казанского зооботсада предполагается в три очереди. Первая очередь – строительство самого Зооботсада и его перенос на противоположный берег Ботанической протоки озера Кабан. Ориентировочная стоимость этапа – 30 млн.долларов. Вторая очередь – строительство семейного развлекательного центра с ориентировочной стоимостью в 80 млн.долларов. Третья очередь – строительство Саванна-парка на берегу озера Средний Кабан за железной дорогой, ориентировочная стоимость которого находится на стадии калькуляции.

Предполагается, что в результате реализации проекта, появится многоэтажный торгово-развлекательный центр, имеющий вид стрекозы. В рамках концепции проекта тема «флоры и фауны» будет использована во всем здании для подчеркивания связи с Зооботсадом, что позволит реализовать уникальную торговую стратегию.

Торгово-развлекательный комплекс будет связан с Зооботсадом крытым мостом, пролегающим над озером, навигация по которому будет осуществляться сопровождающими для более комфортного передвижения посетителей. Инфраструктура Зоопарка будет включать в себя 60 тысяч квадратных метров торговых и развлекательных площадей, 9-ти зальный кинотеатр, ресторанные дворики, игровые зоны для детей и многое другое.

7


Главный вход в Зооботсад останется на своем историческом месте и будет осуществляться рядом со зданием Оранжереи, которое станет также главным украшением комплекса. Оранжерея сохранит все существующие на сегодняшний день ботанические коллекции, также пополнится новыми. Вольеры и помещения для животных в зоопарке спроектированы в соответствии с требованиями 21-го века и включают комфортные условия работы для персонала, а также значительное улучшение условий для посетителей.

Реализация данного проекта предполагает увеличение числа животных. Планируется, что коллекция Казанского зооботсада увеличится вдвое, появятся новые питомцы. В коллекции Казанского зооботсада на 50 процентов станет больше млекопитающих и птиц. Все животные будут размещены по зонам, соответствующим их среде обитания. При этом, холодостойкие виды будут находиться в северной части зоопарка, а теплолюбивые – в центре.

Проектный институт «Аткинс», ориентируясь на опыт Лондонского зоопарка, предложил Казанскому зоопарку приобрести новых животных и сформировать на территории зоопарка тематические зоны – для морозостойких, теплолюбивых и устойчивых к средней полосе животных. На основе предложенного тематического деления строится проект реконструкции зоопарка и его ботаническое оформление. Например, зону с морозостойкими животными предлагается дополнить горными растениями. А в зоне с экзотическими животными, соответственно, высадить бамбук и тропические растения.

8


Авторы мастер-плана предлагают сохранить большую часть деревьев на обоих берегах протоки и небольшое озеро, в котором сегодня на территории зоопарка размещены пеликаны и лебеди, а также расширить парковую зону вокруг комплекса зоопарка.

Предполагается, что оба корпуса семейного развлекательного комплекса будут включать большие застекленные атриумы, в которых развернутся экспозиции, рассказывающие о зоопарке и его истории, будет установлена сцена для детей и гигантский морской аквариум.

Разработчики надеются, что в год Зооботсад станут посещать до одного миллиона человек, причем не только жители Казани, но и всей Республики и даже соседних регионов. Свою роль по привлечению посетителей должен сыграть торгово-развлекательный центр, где будут созданы все условия для семейного отдыха.

оПтимиЗациЯ раЗмеров Помещений ДлЯ СоДерЖаниЯ в неволе экЗотичеСких хищников

Гильмутдинов р.Я., малев а.в.*, мударисов а.р. *ФГоУ вПо «казанская государственная академия ветеринарной медицины»,* мУк «казанский зооботсад»

При разработке нормативов размеров помещений для содержания животных, в том числе и экзотических видов, интересы их собственников и самих животных зачастую не только не совпадают, но и противоречат. Кроме того, метрические параметры этих помещений определяются видом животных и целями, которые преследует их владелец. Для экспозиции требуются одни размеры, для разведения, или транспортировки – другие. В идеале для размещения животных в зоопарке (неволе) необходимо наличие наружных и внутренних вольеров с убежищем (родильное помещение) для самок и детенышей, либо пересадник для самцов.

Хищные млекопитающие в условиях отечественных зоопарков размножаются не очень активно. Мы проанализировали состояние данного вопроса в 2006-2007 годах согласно материалам Информационного сборника ЕРАЗА за 2007 и 2008 годы.

Наряду с различными факторами окружающей среды, немаловажной причиной низкой интенсивности размножения рассмотренных животных является, на наш взгляд, и неадекватные метрические характеристики помещений для их содержания, вследствие чего животные подвергаются большей стрессовой нагрузке.

Нами были разосланы анкеты - опросники, включавшие данные по площадям наружных, внутренних вольеров и родильных камер, а также интенсивности размножения и причинах, отрицательно сказывающихся на данном процессе в 25 зоопарков России и 15 зоопарков ближнего зарубежья.

Анкеты прислали следующие зоопарки: Казанский (Курбашкина С.А.), Красноярский (Махров Ю.А.), Ленинградский (Косорыгира К.), Пермский (Комкова И.),

9


Рижский (Иващенко Т.), Сахалинский (Кондратьева Т.Л.), Читинский (Кибалин А.С.) за что искренне благодарим их руководство. Учитывая видовой спектр имеющихся в перечисленных зоопарках животных, для корректности мы для анализа использовали информацию только по тем видам, которые имелись во всех вышеперечисленных зоопарках. В результате были рассмотрены из кошачьих амурский тигр и рысь, из медвежьих – медведь бурый, полученные данные представлены в таблице №1.

Амурские тигры, как и все кошачьи, могут приносить приплод ежегодно. Половозрелые пары данного вида в 2006 году содержались в 17 зоопарках России (Большеречье, Екатеринбург, Иваново, Казань, Калининград, Красноярск, Липецк, Москва, Н. Новгород, Новосибирск, Пермь, Ростов на Дону, Санкт-Петербург, Саранск, Северск, Хабаровск, Челябинск), а размножение наблюдалось только в 5 (Казань, Абакан, Красноярск, Пермь, Челябинск).

В 2007 году половозрелые пары амурских тигров имелись в 19 зоопарках России (Большеречье, Екатеринбург, Иваново, Казань, Калининград, Красноярск, Липецк, Москва, Н. Новгород, Новосибирск, Пенза, Пермь, Ростов на Дону, Санкт-Петербург, Саранск, Северск, Улан-Удэ, Хабаровск, Челябинск), а размножились также только в 5 (Абакан, Иваново, Казань, Красноярск, Москва).

Половозрелые пары рысей в 2006 году содержались в 14 зоопарках России (Екатеринбург, Железногорск, Иваново, Калининград, Красноярск, Липецк, «Орловское полесье», Н.Новгород «Лимпопо», Н.Новгород «Швейцария», Пермь, Саранск, Северск, Тамбов, Хабаровск, Чита), в 2007 году - уже в 16 зоопарках (Воронеж, «Орловское полесье»). Размножались в 2006 году в 5 зоопарках (Иваново, Красноярск, Липецк, Санкт-Петербург, Северск), а в 2007 году - в 8 зоопарках (Екатеринбург, Иваново, Красноярск, Липецк, «Орловское полесье», Саранск, Северск, Хабаровск).

В 2006 году из 23 зоопарков России, где имелись половозрелые пары бурых медведей (Абакан, Белгород, Большеречье, Екатеринбург, Железногорск, Иваново, Зеленогорск, Калининград, Красноярск, Липецк, Нальчик, Н.Новгород «Швейцария», Новосибирск, «Орловское полесье», Пермь, Саранск, Северск, Тамбов, Хабаровск, Челябинск, Чита, Южно-Сахалинск, Якутск) размножение отмечалось только в 7 (Белгород, Большеречье, Иваново, Липецк, Новосибирск, Тамбов, Хабаровск).

В 2007 году спектр зоопарков, имеющих пары бурых медведей несколько изменился за счет Воронежа, Улан-Удэ, при этом из списка выпали Белгород, Большеречье. Таким образом, общее количество зоопарков не изменилось, а размножение отмечалось также в 7, но в других, зоопарках (Абакан, Белгород, Иваново, Липецк, Нальчик, Саранск, Хабаровск).

На основании выше изложенного следует, что размножение амурских тигров отмечалось примерно в 30 % (2006), 26,3 % (2007) отечественных зоопарков, рысей в 35,7 % (2006), 50 % (2007) зоопарков. Учитывая то, что самки бурых медведей рожают раз в 2 года, согласно представленным данным размножение их имело место примерно в 30,4 % (ежегодно) зоопарков, поэтому данный процент можно увеличить в два раза.

10


Основным руководством для сотрудников отечественных зоопарков при конструировании вольеров животных по сегодняшний день остаются изданные 35 лет назад «Правила техники безопасности и производственной санитарии для зоопарков СССР, 1974». Тем не менее, даже среди ограниченного числа зоопарков, откликнувшихся на нашу просьбу и приславших заполненные анкеты, бросается в глаза значительная вариабельность в размерах вольеров (табл.1).

Из представленного материала следует, что вариабельность параметров вольер только по нескольким зоопаркам России колеблется в ряде случаев более чем в 7 раз. Родильная камера в некоторых зоопарках (Читинский) отсутствует, а в других ее размеры варьируют более чем в 10 раз. Возможно именно из-за недостаточной проработанности данного вопроса и неоптимальных параметров вольер, в том числе из-за отсутствия родильных камер, в исследованных нами зоопарках в последние годы не размножаются амурские тигры, рыси и бурые медведи.

Таблица 1. – Площади (м2) вольер для хищных млекопитающих в разных зоопарках.

Видживотного Тип вольера

Зоопарки

Крас

нояр

ск

Рига

Каза

нь

Сах

алин

Чит

а

Пер

мь

Сан

кт-

Пет

ербу

рг

Тигр

Внутренний 50* 40 16-27* 10 32 9* 36,6**

Наружный 50 1000 116 100 45 9 34,4

Родильная камера 6 - 1,8 - 8 3 Родильная

«загородка»

Рысь

Внутренний -* -** -** 4 20 -** -*Наружный 15-25 - 13 100 30 150 9,5-17

Родильная камера 1,5 - 0,5 - 6 1,5 0,52

Медведьбурый

Внутренний -* 10** -** 23** 30** -* -**Наружный 72 420 32-50 150 35 40 30,34-61,42Родильная

камера 4 - 2,6-2,3 - 8 6 5,7

Примечание: * обозначены зоопарки, где данный вид размножался в 2006-2007г.г.,** зоопарки, где размножение было ранее.Площади вольеров для содержания амурских тигров, рысей и бурых медведей,

рекомендуемые зарубежным источникам (3,4) также сильно колеблются (табл.2).

11


Таблица 2. – Площади вольер (м2), рекомендуемые различными зарубежными источниками для содержания хищных млекопитающих в условиях зоопарка.

Видживотного Тип вольера

Источник информацииCode of practice, 2001 EEP Ursid Husbandry…, 1998

Тигр

ВнутреннийНаружный 200Родильная

камера

Рысь

ВнутреннийНаружный 60Родильная

камера

Медведьбурый

Внутренний 3,4Наружный 300 12,5Родильная

камера 1,0-2,3

Вышеизложенное свидетельствует о недостаточной проработанности исследованного нами вопроса и требуется дальнейшее, более глубокое его изучение.

Литература: 1. Информационный сборник Евроазиатской региональной ассоциации зоопарков

и аквариумов. М. – вып.26. – 2007.2. Информационный сборник Евроазиатской региональной ассоциации зоопарков

и аквариумов. М. – вып.27. – 2008.3. Code of practice for the public display exhibition of animals. AG0977. - 2008.4. EEP Ursid Husbandry Guidelines. Zoologischer Garten Koln. – 1998 (переведено

Киевским зоопарком в 2002 году).5. Правила техники безопасности и производственной санитарии для зоопарков

СССР. М.: Реклама, 1974, 176 стр.

Гильмутдинов рустам Якубович доктор - биологических наук, заведующий кафедрой паталогической физиологии ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины».

Мударисов Альберт Робертович - директор МУК «Казанский Зооботсад».Малеев Александр Васильевич - кандидат биологических наук, заместитель

директора по зооветеринарной части МУК «Казанский Зооботсад».е-mail: kaz-zoo @ mail.ru

12


ПроблемЫ и ПерСПективЫ раЗвитиЯ вЫСтавочной ДеЯтельноСти на баЗе оДеССкоГо кУльтУрно-

оЗДоровительноГо комПлекСа «немо»

Дузь С.л., заведующий океанариумом при одесском культурно-оздоровительном комплексе «немо»; илясов м.в., ведущий специалист океанариума по аквакультуре

На сегодняшний день помимо государственных зоопарков и других учреждений (Севастопольский аквариум, зооуголок в Запорожье при детской железной дороге и др.) на Украине существует около 20 крупных и средних выставок экзотических животных, из которых подавляющее большинство – сезонные (в основном, работают в июле-августе в курортных городах). Специфика работы сезонных передвижных выставок не позволяет им соответствовать современному уровню как по видовому составу, так и по оформлению экспозиции. Кроме того, обилие практически однотипных выставок вызвало снижение интереса зрителей. Именно этим объясняется значительное (более чем в 2 раза) сокращение количества подобных выставок за последние 5 лет.

Исходя из вышеизложенного, с нашей точки зрения перспективными являются именно постоянно действующие экспозиции, которые привлекают зрителей не столько набором экзотических животных, но и, главным образом, эффектным оформлением экспозиции и уровнем сервиса. Основываясь на нашей практической деятельности (первая наша выставка «Удивительный мир насекомых» была организована в Одессе в 2000 году) и анализируя опыт лучших выставок подобного рода в Москве, Туле, Риге, Даугавпилсе, Киеве, мы считаем, что при подготовке подобной экспозиции помимо определения целей и задач, необходимо прежде всего разработать общую концепцию выставки, в соответствии с которой и будет создаваться коллекция, оформляться экспозиция, проводиться работа с посетителями.

4 июня 2004 года в Одессе был открыт круглогодичный дельфинарий «Немо», а 9 июня 2007 года при дельфинарии была открыта экспозиция «Океанариум», состоящая из двух отделов: аквариума и экзотариума. В первом представлены обитатели пресных и морских вод, более 100 видов рыб и более 50 видов беспозвоночных. Основой экзотариума стала частная коллекция Дузя С. Л., включающая более 40 видов амфибий и рептилий и свыше 60 видов наземных беспозвоночных.

Экспозицию оформили профессиональные декораторы Илясов М. В. и Радолова В. В. при участии биологов Дузя С. Л., Горбачёвой Н. В. и Ищука А. В.

Целью создания выставки было удовлетворение растущих культурно-образовательных потребностей населения, формирование экологического мировоззрения. В основу создания экспозиции легла концепция «Friend Eco Zoo», разработанная нашими коллегами из Даугавпилса Пупиньш М. Ф. и Пупиньш А. О., а

13


также те принципы, которые были определены, исходя из личного опыта выставочной деятельности, и нашли отражение в нашей статье «О некоторых образовательных аспектах экспозиций беспозвоночных», доложенной на Втором семинаре ЕАРАЗА в 2004 году.

Учитывая невозможность на ограниченной площади познакомить посетителей со всем разнообразием экзотических животных, мы стремились продемонстрировать самых ярких и эффектных представителей, которые наиболее интересны с точки зрения внешнего вида или биологии, тем самым формируя непредвзятое отношение к различным группам живых организмов. При формировании экспозиции мы намеренно ограничивали количество потенциально опасных видов, а также соблюдали определённые пропорции в соотношении экспонируемых видов. При этом комфортные условия содержания животного сочетаются у нас с реальной возможностью наблюдения за ним. Под руководством специалистов-биологов посетителям океанариума предоставляется возможность не только визуального, но и непосредственного контакта с нашими питомцами, значение которого в создании и закреплении позитивных образов представителей различных групп живых организмов трудно переоценить.

Кроме пояснительных планшетов и сопроводительных надписей с характеристиками видов, в океанариуме проводятся обзорные и тематические экскурсии для различных возрастных групп, которые, по нашему мнению, являются наиболее эффективной формой подачи информации. В ходе экскурсий мы стараемся не только сообщить общие сведения об экспонируемых животных, но и освещаем вопросы экологических взаимосвязей живых организмов, формируя представление о целостности биосферы и важности любого её компонента.

Также на выставке ведётся научная деятельность, в частности, по воспроизводству экспонируемых и кормовых видов (у нас регулярно размножается более 40% видов). Большое внимание уделяется и вопросам оптимизации условий содержания животных, разработке методик лечения и профилактики заболеваний. Мы сотрудничаем со специалистами Одесского национального университета имени И. И. Мечникова, Института биологии южных морей, с коллегами из зоопарков Киева, Донецка, Москвы, Тульского зооэкзотариума, Риги, Даугавпилса. Специалисты океанариума выступали с докладами на конференциях «Беспозвоночные в коллекциях зоопарков» и «Аквариум как средство познания мира», которые проходили в Москве в 2007-2008годах, участвовали в работе семинара по содержанию и разведению амфибий, проходившего в Риге в 2008 году под патронатом Джерсийского треста охраны дикой природы им. Дж. Даррелла.

Создание океанариума было закономерным этапом развития дельфинария как культурно-развлекательного центра и результатом деятельности энтузиастов-коллекционеров. За период работы экспозиции океанариум стал одним из самых

14

Раздел 2. Содержание и разведение диких животных в неволе

популярных мест отдыха в Одессе и своеобразным консультационным центром по вопросам декоративной аквакультуры и террариумного содержания беспозвоночных, амфибий и рептилий. Однако, несмотря на восторженные отзывы посетителей и высокий уровень реализации проекта, мы не намерены останавливаться на достигнутом и будем продолжать работу по увеличению коллекции и расширению экспозиции, для чего предусмотрено строительство отдельного комплекса площадью более 1000 м2, где мы сможем полнее реализовать свои замыслы по созданию масштабной экспозиции океанариума.

15


РАЗДЕЛ 2. СОДЕРЖАНИЕ И РАЗВЕДЕНИЕ ДИКИХ ЖИВОТНЫХ В НЕВОЛЕ

роль ЗооПарков в Сохранении биораЗнообраЗиЯ

биораЗнообраЗие, ЗооПарки, реДкие и иСчеЗаЮщие виДЫBiodiVersity, Zoos, rAre And endAngered sPeCies

Домашлинец в.Г., кандидат биологических наук, начальник отдела охраны и сохранения животного мира министерства охраны окружающей природной среды Украины

[email protected]

Антропогенное влияние на окружающую среду в последние десятилетия приобрело угрожающие размеры, что привело и приводит к значительному увеличению скорости исчезновения видов животных и растений. Размах негативных изменений в природе вынудил мировое сообщество разработать и заключить целый ряд международных инструментов, призванных остановить и повернуть вспять процессы деградации экосистем, восстановить численность популяции животных и растений, а также функциональность экосистем.

Важнейшим международным договором в области комплексного подхода к сохранению и устойчивому использованию богатства живой компоненты природы является Конвенция о биологическом разнообразии, открытая для подписания 5 января 2992 года в Рио-де-Жанейро.

Целями Конвенции являются: сохранение биологического разнообразия, неистощительное (устойчивое) использование компонентов биологического разнообразия; совместное использование на справедливой и равной основе выгод, связанных с использованием генетических ресурсов, в том числе путем обеспечения доступа к генетическим ресурсам и путем передачи соответствующих технологий с учетом всех прав на такие ресурсы и технологии, а также путем соответствующего финансирования.

Кроме Конвенции о биологическом разнообразии заключено несколько специализированных международных договоров в области сохранения видов животных и растений, решающих более узкие задачи.

Конвенция о международной торговле видами дикой фауны и флоры, находящиеся под угрозой исчезновения (СИТЕС), регулирует вопросы перемещения объектов животного и растительного мира, которые интенсивно эксплуатируются человеком, через границы национальной юрисдикции по правилам и процедурам, общими для Сторон этого договора.

16


Конвенция о сохранении мигрирующих видов диких животных носит глобальный характер и имеет целью осуществление скоординированных совместных мероприятий Сторон Конвенции, направленные на охрану и восстановление тех групп животных, которые в определенные периоды своего жизненного цикла совершают миграции, пересекая территории многих стран. В рамках этой конвенции заключено несколько региональных соглашений, ставящие перед собой задачи по охране определенных групп животных. Такими договорами, Стороной которых есть и Украина, являются, в частности, Соглашение о сохранении афро-евразийских мигрирующих водно-болотных птиц, Соглашение об охране китообразных Черного моря, Средиземного моря и прилегающей акватории Атлантического океана, Соглашение об охране летучих мышей в Европе меморандумы взаимопонимания о сохранении дрофы (Otis tarda), тонкоклювого кроншнепа (Numenius tenuirostris), вертлявой камышевки (Acrocephalus paludicola) и другие.

Конвенция об охране водно-болотных угодий международного значения, главным образом, как места обитания водоплавающих птиц (Рамсарская конвенция) ставит целью сохранение уникальных экосистем водно-болотного комплекса, в которых часто основным компонентом биоразнообразия выступают птицы.

На европейском континенте заключена Конвенция об охране дикой фауны и флоры и природной среды обитания в Европе (Бернская конвенция), которую рассматривают как один из основных инструментов сохранения биоразнообразия на европейском уровне.

Перечень международных договоров в области сохранения дикой фауны можно продолжить, но из приведенного перечня становится очевидным то внимание, которое уделяют вопросам сохранения животного мира на мировом и региональном уровнях.

Вместе с тем, нередки ситуации, когда, несмотря на усилия стран даже в рамках международных договоров, численность популяций редких видов животных может достичь такого уровня, когда нужно предпринять специальные усилия, чтобы восстановить их численность в природе, в частности путем разведения в искусственно созданных условиях. Именно здесь решающее значение могут сыграть зоопарки, обладающие богатым опытом содержания и разведения различных видов диких животных.

Восстановление численности в природе зубров, арабского орикса, калифорнийского кондора и других животных – это примеры роли зоопарков в спасении исчезающих видов диких животных. Достигая успехов в восстановлении дикой фауны в зоопарках, одновременно накапливается уникальный опыт по содержанию и разведению самых различных видов. Наработанные в зоопарках методы разведения диких животных позволяют впоследствии наладить воспроизводство в искусственных условиях коммерческих видов. Это ведет к уменьшению уровня эксплуатации человеком природных популяций таких видов, что, в конечном итоге, способствует сохранению биоразнообразия в целом.

17


Другой важной задачей зоопарков является изучение биологии диких животных. Полученные знания помогают глубже понять роль животных в природных экосистемах, позволяют качественнее планировать и осуществлять меры по охране их природных популяций.

Несомненна эколого-просветительская роль зоопарков, поскольку ежедневно их посещают тысячи людей, получающие там представление о разнообразии дикой фауны, особенностях образа жизни животных, их роли в природе и жизни человека.

На базе зоопарков могут проходить практику школьники и студенты биологических или ветеринарных специальностей, таким образом, они являются существенным подспорьем для вузов.

Зоопарки служат своеобразными генетическими резерватами, выполняя определенную роль в сохранении генетического разнообразия животных.

Во время осуществления мер по контролю выполнения СИТЕС нередки случаи задержания нелегально перемещаемых через границу живых диких животных. При этом обычно возникает проблема временной передержки животных во время расследования обстоятельств правонарушения либо необходимость поиска места для размещения конфискованных животных. Наиболее подходящим решением таких задач являются передача животных в зоопарки.

Еще одно направление деятельности зоопарков – изучение болезней диких животных, что может помочь в предупреждении вспышек эпидемий среди диких животных, а также способствовать разработке методов лечения различных заболеваний.

Упомянутые выше некоторые задачи, которые решают зоопарки, являются, среди прочего, и существенным вкладом в выполнение государствами положений международных договоров в области сохранения дикой фауны и биоразообразия в целом.

ПроГраммЫ еараЗа По СохранениЮ реДких виДов ЖивотнЫх

остапенко в. а., докт. биол. наук, профессор, московский зоопарк [email protected]

Ключевые слова: искусственная популяция, реинтродукция, мониторингArtificial population, reintroduction, monitoring

В последние годы в пределах севера Евроазиатского региона на постсоветском пространстве начали возникать новые зоопарки и небольшие учреждения, содержащие коллекции диких животных (экзотариумы, аквариумы, зооуголки и пр.). В 2004 году Евроазиатская региональная ассоциация зоопарков и аквариумов (ЕАРАЗА) стала коллективным членом Всемирной зоопарковской организации (WAZA), что требует от членов нашей ассоциации следованию основополагающим

18


принципам этой организации. Целый ряд зоопарков, членов ЕАРАЗА, участвуют в программах EAZA–ЕЕР, объединивших зоопарки Европейской ассоциации зоопарков и аквариумов (EAZA) в деле сохранения и управления популяциями редких видов, содержащихся в зоопарках. Программы эти охватывают все группы животных, от беспозвоночных до млекопитающих и птиц. С ними можно познакомиться на сайте ЕАЗА www.eaza.net. Особое значение среди них имеет программа по сохранению амурских тигров (Panthera tigris altaica) и дальневосточных леопардов (P. pardus orientalis), адаптированная к нашему региону.

Евроазиатская ассоциация зоопарков и аквариумов сравнительно молода – она была основана на базе Московского зоопарка в 1994 году. К настоящему времени ассоциация насчитывает 53 члена из 12 стран и курирует работу около сотни учреждений региона. На сайте ЕАРАЗА можно познакомиться с ее научно-производственными программами: www.earaza.ru. Среди них важное место занимает программа, посвященная сохранению эндемика России белоплечего, или тихоокеанского орлана (Haliaeetus pelagicus). Это первая программа, начавшая свое существование в рамках ассоциации практически с момента ее организации. В ней участвует Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова в лице к.б.н. В.Б. Мастерова. Ареал белоплечего орлана тесно связан с регионом, где в последние годы многократно увеличилась хозяйственная деятельность. Самая угрожаемая в настоящее время популяция белоплечих орланов находится на севере Сахалина. Там разворачивается широкомасштабная разработка нефтяных месторождений. Усилия ЕАРАЗА способствуют необходимому в настоящее время мониторингу этой популяции. Орланы были отловлены в низовьях Амура в 1980, 1983 и в начале 90-х годов. Всего из природы изъято 36 птиц. Впервые в мире потомство орланов было получено в Московском зоопарке в 1987 году, а в дальнейшем их стали размножать Алматинский, Новосибирский, Таллинский, Ленинградский зоопарки и ряд зоопарков Европы. Согласно Европейской племенной книге (Studbook № 10), которую ведет Московский зоопарк, искусственная популяция белоплечих орланов на 1 января 2007 года составляет 162 (78.80.4) птиц, содержащихся в 51 зоопарке и центре разведения. В результате, в системе зоопарков ассоциации создана вольерная группировка орланов этого вида, способная в будущем, при необходимости, поддержать природные популяции.

В нашем регионе обитает 7 из 15 видов журавлей (Gruidae) мировой фауны. Пять из них входят в число охраняемых видов, природные популяции которых постоянно сокращаются в связи с антропогенным прессом. В настоящее время ведется программа по сохранению редких журавлей и реинтродукции их в угасающие природные популяции. Архарьинский заповедник при участии Окского заповедника, Московского и других зоопарков развивает исследования по репатриации японских (Grus japonensis) и даурских (Grus vipio) журавлей в Амурской области, полученных и выращенных в искусственно созданных условиях. Работа идет с явным успехом. Способствуют этому несколько факторов: квалифицированный штат и местоположение

19


Архарьинского заповедника, короткий миграционный путь журавлей к местам зимовок и достаточно эффективная охрана китайскими коллегами зимующих птиц. В то же время, усилия по сохранению и восстановлению западносибирской популяции стерха (Grus leucogeranus) пока не увенчались положительным результатом. За два десятка лет было выпущено в природу более сотни стерхов, рожденных в вольерных условиях Окского заповедника, Московского зоопарка и питомника Международного Журавлиного Фонда в США. К настоящему времени популяция практически прекратила свое существование. Вероятно, имеет смысл начать работу по созданию новой резервной популяции стерха, гнездящейся на севере европейской части России и зимующей на юго-западе Европы. Миграционный маршрут европейской популяции стерха станет не так продолжителен, а пролегать он будет через страны с налаженной охраной живой природы. Следует также уделить внимание поддержанию вольерной популяции черного журавля (Grus monacha), для чего необходимо отловить в природе несколько особей с целью прилития «новой крови» популяции птиц, содержащихся в зарубежных зоопарках (Европа, США), создавая параллельно и собственную группировку этого вида. Рекомендовано продолжать разводить и менее редкие виды журавлей, как фауны Евразии, так и других континентов.

Семейство дрофиных (Otidae) в фауне севера Евразии представлено тремя видами. Под угрозой исчезновения находятся природные популяции обыкновенной дрофы (Otis tarda – оба подвида: O. t. tarda, O. t. dybowski), а также, джека (Chlamydotis undulata macqueenii) и стрепета (Tetrax tetrax). Это совершенно особая группа птиц, еще нуждающаяся в разработке методов разведения в искусственно созданных условиях. Трудность заключается как в освоении искусственных методов разведения (осеменение, инкубация, выращивание), так и в разработке способов естественного разведения дрофиных птиц в зоопарках и питомниках. Начальные этапы этого процесса выполняются в Московском и Новосибирском зоопарках, где построены питомники по разведению дроф. Птицы семейства дрофиных также содержатся в зоопарках Алматы, Киева, Липецка, Пензы, Ташкента и Парка птиц «Воробьи» Калужской области. Новосибирский зоопарк на Карасукском стационаре имеет в коллекции все эти виды птиц. В Московском зоопарке на сегодняшний день содержатся обыкновенные дрофы и стрепеты.

Дикуша (Falcipennis falcipennis) обитает лишь на крайнем востоке Азии, в зоне тайги. В связи с ограниченным ареалом и возрастающим антропогенным влиянием на природные местообитания, встает проблема создания генетического банка птиц этого вида в условиях зоопарков и питомников. Первые опыты по содержанию дикуш, отловленных в природе, проводились еще в начале 1980-х годов Центральной научно-исследовательской лабораторией Главохоты РСФСР, однако они не дали положительного результата. Позже, этим видом занялся Новосибирский зоопарк. На его Карасукском стационаре было начато стабильное разведение этого вида. Получено 12 генераций дикуш в неволе. Осуществлены опыты по экспериментальному выпуску птиц в природу. Было выпущено более 100 молодых птиц в таежные леса Новосибирской

20


области. Эта работа проводится под научным кураторством Института систематики и экологии животных СО РАН. Первые опыты уже дали положительные результаты. В 2008 году встречен выводок дикуш. Расширение ареала и создание новых резервных популяций азиатской дикуши, позволит снизить угрозу вымирания этого ценного вида птиц – реликта эпохи плейстоцена.

В 2005 году совместно с Рабочей группой по гусеобразным Евразии, нами была подготовлена Международная комплексная научно-производственная программа «Сохранение редких гусеобразных Евразии». Помимо ряда других видов гусей, лебедей и уток, в нее вошел и сухонос (Anser cygnoides) – самый редкий вид гусей России (не более 500 особей), который за последние полвека резко сократил ареал и численность. Поэтому, мы воспользовались разрешением монгольских природоохранных органов и в 1981 году отловили 10 молодых птиц. Отлов производился в Восточном аймаке Монголии. Эти гуси и дали начало стабильно размножающейся группе сухоносов Московского зоопарка. За более чем двадцатилетний период в Московском зоопарке было выращено свыше 300 сухоносов. Часть их была передана в Таллинский, Новосибирский и другие зоопарки региона, а также в некоторые европейские зоопарки. Позже получено еще два выводка молодых сухоносов из бассейна Амура, что позволит избежать инбридинга в ближайшие годы. Помимо сухоноса в Программе уделяется внимание пискульке (Anser erythropus), особенно западным ее популяциям. Начиная с 2005 года, ведется совместная работа со шведскими коллегами по восстановлению дикой популяции пискульки в Скандинавии. Алеутская казарка (Branta canadensis leucopareia) – эндемик Курильских (в прошлом) и Алеутских островов. Под г. Петропавловском-Камчатским более 15 лет существует Питомник по разведению этого вида гусей. Он создан по инициативе к.б.н. Н.Н. Герасимова – сотрудника Тихоокеанского института географии ДВО РАН. Исходное маточное поголовье было получено из чистокровных птиц, содержащихся в США и Японии. Несмотря на постоянные финансовые трудности, которые испытывал Питомник все эти годы, казарки регулярно размножаются в масштабах достаточных для проведения работ по реинтродукции. Она осуществляется на Северных Курильских островах, где отсутствует местное население и песцы. В последние годы получены данные о встречах стай алеутских казарок на зимовке в Японии. В программу включены также малый, или тундровый лебедь (Cygnus columbianus bewickii) и савка (Oxyura leucocephala).

Горные копытные Евразии – винторогий, безоаровый и сибирский козлы, кавказские туры, алтайский и каратауский горные бараны, баран Марко Поло, ряд других видов и подвидов горных копытных представляет собой уникальный биологический комплекс, находящийся под угрозой исчезновения. Основные причины этого и лимитирующие факторы: разрушение естественных местообитаний в результате выпаса домашнего скота, нелегальная охота, негативные ситуации, возникающие в ходе вооруженных конфликтов, изменение климата. Многолетним опытом разведения различных горных копытных обладают Московский, Таллинский, Новосибирский и ряд других зоопарков ассоциации. Основная цель Программы:

21


создание устойчивых, стабильно размножающихся и генетически полноценных вольерных популяций (группировок) горных копытных Евразии, где особое внимание следует уделить редким видам. Это же относится и к другим Программам ЕАРАЗА. В перспективе планируются программы по восстановлению лошади Пржевальского, редким осетровым рыбам и другие. Мы надеемся, что совместная работа зоопарков нашего региона принесет свои плоды – будут созданы устойчивые искусственные популяции редких видов животных, тот резервный фонд, который позволит при необходимости осуществлять поэтапную реинтродукцию в природные места обитания, поддержать биоразнообразие биосферы.

тренинГ Слонов: ПолнЫй контакт и контакт ПоД Защитой.на оСнове наблЮДений тренировки аЗиатСких Слонов (elePHAs MAxiMUs) в аЮттхае (тайланД) и в чеСтерСком

ЗооПарке

ильчин в., смотритель слоновбудапештский Зоологический и ботанический Парк[email protected]

elePHAnt MAnAgeMent systeMs: free And ProteCted ContACt.on tHe BAsis of oBserVing AsiAn elePHAnt (elePHAs MAxiMUs)

trAining in AyUttHAyA (tHAilAnd) And CHester Zoo ilchyn Vasyl elephant keeperBudapest Zoological and Botanical [email protected]

Тренинг слонов: полный контакт и контакт под защитой.На основе наблюдений тренировки азиатских слонов (Elephas maximus)

в Аюттхае (Таиланд) и в Честерском зоопарке

Содержания слонов в неволеСлоны, учитывая их размеры, огромную физическую силу, интеллект и

социальные потребности всегда являлись особо трудными в содержании животными. Тем не менее, благодаря тому, что эксплуатация слонов началась более чем 4000 лет тому назад они были представлены уже в самых первых коллекциях.

Большинство слонов прибывало в западные коллекции уже тренированными. Благодаря этому метод их тренировки в зоопарках долгое время был основан на традиционном методе, разработанном в течении многих сотен лет в странах Юго-Восточной Азии.

22


Традиционный метод тренировки со временем развивался и изменялся, но сегодня, когда зоопарки стараются содержать слонов в естественных для них семейных группах с целью создания самоподдерживающейся популяции в неволе, тренеры встретились с проблемами, которые требуют радикальное изменение традиционного подхода или скорее разработку новой системы.

Основы тренировки слоновТренинг слонов основан на классическом и оперативном обусловливании.

Обусловливание это процесс во время обучения, на протяжении которого животное ассоциирует в начале важный для него раздражитель с вначале неважным для него раздражителем и ответом. Обусловленный ответ запоминается животным при помощи многократного подкрепления.

Во время классического обусловливания ассоциация происходит между вначале неважным и важным раздражителем. Классический пример этого собака Павлова, вначале совершенно неважный раздражитель, звук звонка, после многократных кормежек с предшествующим звуком уже сам стал достаточным для того, чтоб собака начала выделять слюну, без корма. Это также хороший пример положительного подкрепления. Обусловливание можно достичь и с помощью отрицательного подкрепления. Пример отрицательного подкрепления применение анка при дрессировке слона подать ногу, острие анка заставляет слона поднять ногу, т.е. устранить боль.

Классическое кондиционирование используется тренерами для создания мостов. Мостом мы называем явление, когда происходит связь между кое-каким раздражителем, как напр. свист, кликкер и т. д. и какой-то вещественной или первичной наградой, как напр. корм. Термин называется мостом потому что он как бы связывает время между получением награды и воспроизведением желаемого поведения. Со временем эти сигналы сами становятся наградой для животного, уже без первичной награды, и в дальнейшем происходит условное подкрепление.

При классическом обусловливании ассоциация происходит между двумя независимыми явлениями. При оперативном обусловливании ассоциация происходит между собственным, добровольным поведением животного и наличием внешнего происшествия. Пример этого когда слон добровольно поднявший ногу к указке (таргет) получает награду.

Для изменения какого-либо поведения животного тренеры используют положительного подкрепление, отрицательное подкрепление и наказание. Положительное и отрицательное подкрепление используется для выработки или достижения желаемого поведения, наказание используется лишь когда поведение животного нежелаемое. Особый тип наказания так называемый time out, суть его в удалении приятного раздражителя.

23


При тренинге слонов множество факторов влияет на результат как напр. социальная структура стада, окружение, количество тренеров, здоровье и актуальное самочувствие слона, и т. д. Точное знание воздействия этих факторов на животного необходимо для успеха работы с животным. Так например намного эффективнее тренинг если слон на время работы извлечен из стада и если обучение новым ответам проводится одним единственным тренером с последующим включением остальных лишь уже после того как животное начало исполнять желаемое поведение в совершенстве.

Еще один важный аспект тренировки знание пределов животного, своевременное завершение сессий.

Работа, в том числе тренинг, должна быть положительной для животного и должна строить доверие животного к тренеру и уверенность в себе. Неверные методы тренировки приводят до замешательства животного, которое в конечном итоге может стать результатом агрессии.

Полный контактНаблюдения тренировки под полным контактом проводились в Королевском

слоновом краале в Аюттхае (Таиланд).При полном контакте тренер находится в одном пространстве с животными,

имеет с ними полный физический контакт и поддерживает высокую позицию в социальной структуре слонов. Поведение слонов контролируется с помощью оперативного обусловливания, лишением свободы движений и доминированием над животными. Используется как и положительное так и отрицательное подкрепление а также наказание. Используются разные типы анка главным образом для управления слоном, для подачи помощи при исполнении команд и для наказания.

Работа со слонами при таком близком контакте требует высшую степень понимания поведения слонов, огромный опыт и наличие исключительного таланта со стороны тренера.

Полный контакт благодаря его многим преимуществам практикуется в многих зоопарках мира а также на месте своего рождения в Юго-Восточной Азии.

Азиатский стиль тренировки слонов развивался на протяжении тысячелетий. В свое время искусные тренеры, Махуты, были элитой данных обществ и имели свой собственный общественный строй от новичков до мастеров, которые в зависимости от своего ранга могли работать то ли лишь со слонихами, то ли с самцами даже в периоде маста, или сразу после поимки со взрослыми самцами. Махуты имели свою хорошо построенную образовательную систему где было множество рангов строящихся на друг-друга с серьезными практическими экзаменами и суровой системой квалификации где даже мастер мастера провалившегося студента терял

24


свой ранг, звание и право работы со своими животными. Слоны считались, как и считаются по сей день, божественными животными, а короли некоторых стран не заслуживали уважения своих подчиненных пока не могли управлять «королевским слоном» во время полного маста. Слон для этих людей был священным животным, а подход к традиционной тренировке был настолько серьезен как подход к атомной физике в нашем обществе.

Основа традиционной тренировки слонов - полное доминирование над животным на протяжении всего времени. Хорошо тренированный самец имеет одного единственного махута, это единственное существо на свете стоящее над ним и он не будет повиноваться ни одному другому махуту пока его собственный махут не находится в близи. Махут находится в ежедневном контакте с животным, они нередко проводят вместе целый день а на ночь особо ценные слоны прикованные вблизи жилища своих махутов. Полное доминирование над животным вначале происходит с использованием цепей, анка, голода и жажды. После того как слон начинает интерпретировать появление своего махута как положительного раздражителя и понимает что есть и пить он может только при согласии своего махута начинается настоящая тренировка в конечном итоге которой искусный махут способен управлять своим слоном с расстояния просто подачей команд, или верхом на слоне легонькими прикосновениями пальцев. Анк, даже если в конечном итоге тренированности уже и не используется как орудие управление всегда находится у махута и является главным орудием дисциплины. Махут в присутствии своего слона должен вести себя самоуверенно, верхом на своем слоне должен двигаться проворно всегда сохраняя полный баланс и самоуверенность своих движений. Слон привыкший к махуту умело сохраняющему свой баланс верхом принимает несбалансированность как слабость и теряет уважение в сторону такого тренера.

Поддерживается высокая степень дисциплины, каждое движение слона должно быть согласованно с волей махута. При исполнении самостоятельных движений во время работы, при не исполнении команды, или при недостаточном исполнении команды немедленно следует наказание: удар тупой стороной анка. При случае больших повиновений используется как наказание голод, жажда и долговременная привязь на цепь.

При попытке слона сбежать махут догоняет его и на месте наказывает несколькими ударами анка, после этого махут ведет слона «домой» где при прибытии положительным укреплением слону дают знать, что возвращение всегда приветствуется, но после этого следует несколько дней голодовки и жажды.

Со слонихами обращаются иначе, слонихи имеют нескольких тренеров и с ними похожей степени тренированности как с самцами не достигают. Главное орудие

25


управления самкой навсегда остается анк при частом пользовании которого на голове многих слонов остаются незаживаемые гноящиеся раны. Исключение составляют только психически особенно сильные, опасные «матриархи» которые имеют тоже только одного или двух тренеров.

Доминирование над животными принимает невероятной степени что хорошо наблюдается при спаривании, махут нередко остается верхом на слоне при спаривании, самцы забираются на самку только при подаче команды и толчковые движения начинаются тоже только после последующей команды махута. Самка при этом стоит неподвижно, махут успокаивает ее и держит анк за ее ухом чтоб та не двигалась. Прекращение акта также происходит по команде.

Тренер должен поддерживать вокруг себя пространство которое животные должны уважать в высшей мере и не позволять поведение которое напр. принято слонами между собой. Как и при других системах тренировки тренер не должен допускать слону уйти во время работы или не обращать внимание на нежелаемые выходки животного.

Социальный контакт между животными минимален, слоны свое «свободное время» проводят прикованными, при передвижении всегда находятся под контролем махутов, хотя слоны и знают друг-друга и некоторые социальные интеракции все-таки происходят это далеко не такая связь как та которая строится при долговременном сожительстве животных с возможностью вольных интеракций между собой.

Слонята пользуются полной волей передвижения приблизительно до 3-х летнего возраста, после которого начинается их обучение, полная отлучка от матери и регулярный тренинг а на ночь после этого регулярно ставят их на цепь.

Работа со слонами при полном контакте влечет за собой некоторый риск, который резко увеличивается при практике неподходящих методов тренировки и несоответствующем поведением тренера при занятии места в социальном ранге слонов. В Азии практиковалось и практикуется особо сильное, иногда безжалостное доминирование над животными не напрасно, полу дружеские соотношения многих западных тренеров со слонами неслучайно приводят к печальным результатам.

По данным Ленгхарта (Lehnhardt, 1991) в Северной Америке самой опасной профессией владели смотрители слонов. Эта профессия была в три раза опасней чем следующая по опасности: шахтер при добыче угля. По некоторым исследованиям риск увеличивался при появлении новых сотрудников, с введением добавочного свободного времени смотрителей а также при работе с большими, похожими на естественные, матриархальными группировками слонов и в присутствии в группе самцов (Ruther & Olsen, 1993). Подсчет несчастных случаев в зоопарках, сделанный Европейской группой по слонам также не радует, при работе в прямом контакте в

26


зоопарках Европы за десятилетний период времени погибло 17 человек, с цирками вместе эта цифра поднимается до 33. Многие коллекции считают подобный риск неприемлемым, и как результат этого в 1991. г. в Сан-Диего была выработана система контакта под защитой.

Контакт под защитойНаблюдения тренировки контакта под защитой проводились в Честерском

Зоологическом Парке (Великобритания).При контакте под защитой между тренером и животным всегда находится система

защиты, тренер не заходит в одно помещение с животными и не занимает никакого места в социальной структуре стада. Во время работы между тренером и животным находится защитный барьер а животное не ограниченно в движении и при желании может оставить тренера и уйти. Хотя между тренером и животным находится барьер но поведение животного контролируется с помощью разных предметов и техник. При контакте под защитой используется исключительно положительное обусловливание и сотрудничество животного полностью добровольное. Положительное обусловливание достигается с помощью положительного подкрепления кормом и голосом. При подобном контакте совместная работа между животным и тренером имеет полностью положительный тон. Слону представлена возможность заслужить награждение исполняя желаемые движения. Содействие слона полностью добровольное. Контроль слона и ежедневная забота о животном проводится с использованием указок и положительных раздражителей с наружи, из пространства которое находится вне территории жизни животного. Единственный метод наказания это time out – внимание тренера на некоторое время отводится от слона, и у слона нет больше возможности заслужить награду.

Слон на протяжении всего времени может сделать выбор и при желании оставить тренера, животное сотрудничает и отвечает желанным поведением только при большом умении талантливого тренера. При контакте под защитой все еще много физического контакта между животным и тренером напр. при обработке ступней и т. д. Тренер притрагивается многократно к животному с помощью указки и подача самых разных частей тела может быть затренерованной как напр. ушей, хвоста, передних и задних ног, хобота, бивней и т. д.

Тренинг указкой полностью противоположен тренингу анком, пока при последнем животное учится разнообразным движениям избегая острия анка при тренинге указкой животное научено самостоятельно прикосатся к безобидной указке и исполнять желаемые движения.

В начале тренировки животное учится прикосатся к указке только головой это немедленно укрепляется с помощью корма, шаг за шагом слон учится притрагиваться

27


к указке любой, близкой частью тела. В конечном итоге тренер вольно может двигать слона вдоль тренировочной стены а с помощью второй указки может изменять позицию слона на месте и достичь демонстрации разных частей тела для самых разных целей: чистки, медосмотра, лечения, обработки ступней, получения образца крови, прикрепления цепей и т. д.

Перетренировать слона с вольного на контакт под защитой намного проще чем тренировать слона который не имел никакого контакта со смотрителями, но с достаточным терпением каждый слон может быть тренированным под подобным контактом от агрессивных самцов и старых слоних привыкших к вольному контакту до самых молодых слонят.

На месте наблюдения целое стадо слонов, всего 10 животных находилось при контакте под защитой, каждый слон был готов сотрудничать и был в той или иной мере тренирован, основная обработка ступней была возможна у каждого слона. Тренировочные сессии проходили в отдельном тренировочном помещении которое не использовалось слонами в течении дня. Каждый слон принимал участие в тренировке отдельно от остальных.

Все старые слонихи были перетренированные с вольного контакта и работали в новой системе.

Слонята с момента рождения участвуют в тренировочных сессиях своей матери и тренеры постепенно достигает того, что слонята согласны работать в другом углу тренировочного помещения, потом в другом помещении с открытой дверью и с возможностью в любой момент вернутся к матери а в конечном итоге полностью отделенными от матери, и все это добровольно.

Итак, главные отличия между двумя системами контакта это:

1. При вольном контакте тренер находится в одном и том же пространстве как и животное, при контакте под защитой между тренером и животным находится защитный барьер.

2. При вольном контакте тренер является членом стада, при контакте под защитой тренер не имеет места в социальной структуре животных.

3. При вольном контакте допущено как положительное так отрицательное укрепление а также наказание, при контакте под защитой употребляется исключительно положительное укрепление а физическое дисциплинирование животного никогда не допустимо.

4. При вольном контакте сотрудничество животного принужденное и обязательное, при контакте под защитой сотрудничество животного добровольное.

28


Литература:1. Lehnhardt, J. 1991. Elephant handling: a problem of risk management and resource

allocation. In: AAZA Annual Conference Proceedings, pp. 569-575.2. Ruther, D. & Olsen, T. 1993. Management of the Asian elephant, Elephas maximus, at

Houston Zoological Gardens. Internationla Zoo Yearbook 32, 253-257.

УДк 599.6/.73:639.084:59.006

веточнЫй корм в кормлении коПЫтнЫх в ЗооПарке«аСканиЯ-нова»

Жарких т.л., науч. сотрудник, Ясинецкая н.и., зам. директора по научной работе, к.б.н., Смаголь в.а., мл. науч. сотрудник

биосферный заповедник «аскания-нова» Уаан

В литературе по содержанию животных в зоопарках неоднократно подчёркивалась важность веточного корма в кормлении животных, в частности, копытных (Остапенко, 1997, 2005). В зоопарке «Аскания-Нова» рацион кормления копытных много десятилетий включал сено и/или свежескошенную траву, зерновые корма (ячмень, овёс и др.), соль, мел (Треус, 1968). В последние 25 лет животным начали периодически давать различные овощи (свёклу, морковь, капусту, тыкву, кабачки, лук). Веточный корм никогда не вводился в рацион на регулярной основе, поскольку целью зоопарка с начала его существования было приучение животных к обитанию в местных климатических условиях на естественных степных кормах (Фальц-Фейн, 1997). В довоенный период для оленей в зоопарк поставлялся веточный корм из днепровских плавней, но потом обнаружилось, что они могут существовать на степных пастбищах без древесной подкормки и её перестали применять (Салганский и др., 1963).

В 2007 году в зоопарке «Аскания-Нова» изучалась поедаемость разных видов древесно-кустарниковой растительности представителями лошадиных, быков и антилоп. Опыты с использованием свежесрезанных веток проводились с 13 июня по 18 июля. Взрослым животным, содержавшимся в вольерах экскурсионного маршрута, предлагались пучки веток с листьями, весом приблизительно 1,5 кг на одну особь, диаметр веток у основания составлял 0,5–1 см, длина – до 80 см. Кроме веток, животные получали обычный рацион, состоящий из сена, комбикорма, небольшого количества овощей, мела, соли. Поедаемость веток проверялась через сутки, несъеденные остатки взвешивались. Охотность поедания оценивалась по 3-бальной шкале: 2 – хорошая поедаемость, съедено всё или больше половины; 1 – поедается неохотно, не больше

29


половины заданного, 0 – растение не поедалось. Результаты опытов представлены в таблицах 1–3.

Таблица 1. Поедаемость веточного корма быковыми

Вид животного, количество, пол

Пое

даем

ость

%

Вид растения

Бизо

н1 Зу

бр 1 Як 1

Каф

рски

й бу

йвол

1

Дома

шни

й бу

йвол

1 , 1

Га

ял1

, 1

Вату

сси

1

Сер

ый

укр.

скот

1

, 1

Ясень обыкновен 2 2 2 2 2 2 2 2 100Робиния (акация белая) 2 2 2 2 2 2 2 2 100Липа 2 2 2 2 2 2 2 2 100Клён остролистный 1 100Шелковица 2 2 2 100Свидина (дёрен) 2 2 2 2 2 2 2 2 100Дуб черешчатый 2 100Берёза 2 100Орех грецкий 2 2 2 2 2 2 2 2 100Бузина чёрная 2 100Скумпия 2 2 2 2 2 1 1 2 100Клён полевой 2 2 2 0 2 2 2 2 88Биота восточная 0 0% поедаемых видов 100 88 100 86 100 100 100 100

Примечание: пустые ячейки – растение не предлагалось

Таблица 2. Поедаемость веточного корма антилопами


Пое

даем

ость

%


Канн

а1

Нил

ьгау

1 , 1

Гну

голу

бой,

1

Ори

кс с

абле

роги

й,

1 Гарн

а2

, 2

Сит

атун

га,

1

Сай

гак

1

1 2 3 4 5 6 7 8 9Робиния (акация белая) 2 2 2 2 2 2 2 100Тополь 2 2 100Берест 2 2 2 2 2 100

30


1 2 3 4 5 6 7 8 9Клён татарский 2 2 100Каркас западный 2 2 2 2 2 100Шелковица 2 2 1 100Свидина (дёрен) 2 2 2 2 2 2 2 100Дуб черешчатый 2 100Тёрн 2 100Боярышник 2 100Бузина чёрная 2 1 100Ясень обыкновен 2 2 0 1 1 1 1 86Липа 2 2 0 2 1 1 1 86Орех грецкий 2 2 0 2 2 2 2 86Скумпия 2 2 0 2 2 2 2 86Клён полевой 2 2 2 0 0 60Клён остролистный 2 1 2 0 0 0 50% поедаемых видов 100 100 50 100 89 80 80

Примечание: пустые ячейки – растение не предлагалось

Таблица 3. Поедаемость веточного корма лошадиными


Пое

даем

ость

%


Зебр

а Гр

еви

1

Зебр

а ра

внин

ная

1

Лош

адь

Прж

евал

ьско

го1

, 2

Кула

н1

, 3

Пон

и ш

етле

ндск

ий1

, 3

Осё

л до

маш

ний

1 , 2

1 2 3 4 5 6 7 8Ясень обыкновен 1 1 2 1 2 2 100Ива 2 100Клён ясенелистный 2 2 100Аморфа 0 2 1 1 1 2 83Робиния (акация белая) 2 2 2 0 2 80Каркас западный 1 0 2 0 2 2 67Клён татарский 0 0 1 1 2 2 67Клён полевой 2 0 2 0 2 60Тополь 0 0 2 0 1 2 50Липа 0 0 0 1 2 2 50Вяз, берест 0 1 0 0 2 2 50Клён остролистный 0 0 2 0 2 2 50Свидина (дёрен) 0 0 2 0 2 40Тёрн 0 0 0 0 2 1 33Шелковица 0 0 2 0 25Слива Писарда (алыча) 0 0% поедаемых видов 31 36 77 29 100 100

Примечание: пустые ячейки – растение не предлагалосьВсего использовалось 23 вида древесно-кустарниковых растений. В опыте

31


отмечена определённая разница в поедаемости отдельных видов растений разными особями одного вида, что, возможно, зависело от их индивидуальных вкусовых предпочтений. Если один вид растений предлагался два и более раз, иногда отмечалась разница в поедаемости в зависимости от дня.

В целом, как и следовало ожидать, парнокопытные поедали веточный корм больше и охотнее, чем лошадиные. Наилучшая поедаемость была у быковых – они съедали практически все предложенные виды растений (табл. 1). Биота восточная (Biota orientalis), была предложена всего один раз зубру и осталась нетронутой. Этот вид, как и другие хвойные, может вызвать отравление у скота и лошадей из-за содержащихся в нём эфирных масел, смол, лигнола, микотоксинов (Гусынин, 1962; Knight, Walter, 2001).

Хорошо поедались ветки антилопами, особенно канной, нильгау и ориксом (табл. 2). Поскольку сайгак содержался в одном вольере с ситатунгой, по нашим данным нельзя точно установить его предпочтения в выборе корма – возможно, большую часть веток съедала ситатунга. Однако ручные сайгаки в Аскании-Нова с удовольствием поедают листья ясеня (Fraxinus excelsior), робинии (акация белая) (Robinia pseudacacia) и грецкого ореха (Juglans spp.). Из всех парнокопытных в этом опыте только у гну был наименьший выбор растений – 50%. Среди лошадиных выбор растений был наибольшим у пони и ослов – полностью или частично они съели все предложенные виды, наименьшим – у кулана и зебр Чапмана – съедено около трети видов (табл. 3). Лошадиным не предлагался грецкий орех, поскольку он также считается для них ядовитым, в частности, может вызвать ламинит (True, Lowe, 1980).

Среди всех видов древесно-кустарниковой растительности два хорошо поедались всеми животными – ясень и робиния (белая акация). В литературе указывается, что листья ясеня хорошо поедаются только в сухом виде (Раменский и др., 1956), что может объяснить неполное поедание свежих веток ясеня лошадиными и антилопами в нашем опыте. Робиния считается ядовитой для животных из-за алкалоидов, фитотоксинов и эфирных масел, отравления чаще всего происходят при обгладывании коры, реже – при объедании ветвей (Гусынин, 1962; Cooper, Johnson, 1984; Veterinary Toxicology, 1999). К действию робина – вещества белкового характера, отлагающегося преимущественно в коре растения, особенно чувствительны лошади; более устойчивы к этому яду жвачные (Гусынин, 1962). В зоопарке Штутгарта листья и ветви робинии – излюбленный корм жирафов, однако там были зарегистрированы случаи отравления зебр и бабирусс опавшими стручками (Rietschel, 2002).

В нашем опыте лошадиные также неплохо поедали различные клёны, тополь, каркас западный, липу, вяз. Следует знать, что некоторые завозные виды клёнов, использующиеся для озеленения в нашей стране, ядовиты для лошадей – клён красный (Acer rubrum), особенно сухие листья (Plumlee, 1991). Описан случай отравления красным клёном двух зебр Греви в зоопарке Сент-Луиса (Weber, Miller, 1997).

Европейские программы разведения эквидов (ЕЕР…, 2000) рекомендуют для диких лошадиных иву, тополь, ольху, ясень, березу, бук.

32


Из-за малого количества произрастающей в Акании-Нова ивы (Salix spp.) её предлагали в данном опыте только равнинной зебре. Известно, что ива – один из излюбленных кормов для копытных, грызунов и приматов во многих зоопарках (Rietschel, 2002), хорошо поедаются не только листья и тонкие ветки, но и кора. По примеру Кёльнского зоопарка в вольер лошадей Пржевальского клали целые ивовые брёвна, оставшиеся после расчистки зарослей в хозяйственной зоне зоопарка. За несколько недель животные полностью обгрызли кору и частично – древесину. Ивы не относятся к токсичным растениям, однако листья содержат салициловую кислоту, которая может привести к нефрозу при употреблении в большом количестве. Предполагают, что это привело к гибели нескольких окапи в некоторых зоопарках (Hanichen, Rietschel, 2001). Всё же, ивовые веники можно рекомендовать ввести в рацион в ограниченном количестве, особенно, в период линьки, поскольку в листьях и коре повышенное содержание незаменимых аминокислот и минералов (Ткачёва и др., 1997). Единственное ограничение – цветущая верба («котики») ядовита для всех животных.

Сливы (Prunus spp.), листья которых являются источником цианида, также могут быть опасны для животных (Kingsbury, 1964). Поэтому виды этого рода (слива Писарда и тёрн) в опыте предлагались в очень небольшом количестве. Большинство животных не тронули ветки, съели больше половины только пони и орикс (табл. 2, 3).

В некоторых зоопарках парнокопытных животных кормят ветками дуба (Остапенко, 2005). В нашем опыте мы не предлагали лошадиным этот вид, поскольку давно известно, что для них дуб (Quercus spp.) ядовит (Duncan, 1961; Дрейпер, 1997). Из остальных дубовые ветки только один раз получили и охотно съели ватусси и гну (табл. 1, 2). Однако в литературе описаны случаи отравления парнокопытных листьями и плодами дуба, причиной является содержание в ветках большого количества азотнокислого натрия, восстанавливающегося при благоприятных условиях в более ядовитый азотистокислый натрий, и танина, содержащегося в значительных количествах в желудях (особенно в зелёных), который может вызвать тяжелое отравление вследствие прямого дубящего действия на слизистую оболочку желудка и кишок и повреждение почек продуктами ферментативного разложения (Гусынин, 1962; Sandusky et al., 1977). Отравление и гибель животных могут наступить от 2 кг веточного корма, наиболее чувствительны к отравлению дубом коровы, затем лошади, менее чувствительны овцы, почти нечувствительны свиньи (Гусынин, 1962). Есть указания, что листья и побеги могут использоваться в корм скоту в сухом виде (Раменский и др., 1956).

Из-за содержания дубильных веществ считается, что скумпия (Cotinus coggygria) и кизил (свидина, дёрен) Cornus spp. имеют невысокую кормовую ценность для скота (Эрнст и др., 2006), но в нашем опыте её охотно поедали антилопы и быки.

Бузина (Sambucus spp.) обычно не поедается ни одним видом животных. Но, в нашем опыте её охотно съел як, канна и попробовал орикс (табл. 1, 2). Из-за содержащихся в ней циогенных гликозидов растение умеренно ядовито для

33


млекопитающих, описаны случаи отравления крупного рогатого скота и свиней, а также лошадей при обгрызании коры (Cooper, Johnson, 1984).

В зимний период группам животных предлагали сухие веники – смесь веток вышеперечисленных видов древесно-кустарниковой растительности. Полностью объедали листья канны (29 особей), нильгау (24), гну голубые (6), гарны (6), ситатунги (5), ориксы аравийские (2), зубр (1). Буйволы кафрские (8 особей) и домашние (3), ватусси (9), гаялы (16), як (1), орикс саблерогий (1), сайгак (1) съедали половину и меньше. Равнинные зебры (10 особей) практически не трогали сухие веники в декабре; но в январе и, особенно, в марте, они стали объедать листья. Из трёх зебр Греви совсем немного ела одна кобыла, отказались от них полностью лошади Пржевальского (3 особи). Только пони (4) и ослы (8) хорошо поедали веники.

Несмотря на то, что опыт был проведен на небольшом количестве животных и с малой повторностью, можно сделать некоторые предварительные выводы. Было выявлено очень мало видов растений, универсальных с точки зрения заготовки древесно-кустарникового корма, поскольку у лошадиных и жвачных наблюдается заметная разница в предпочитаемости разных видов растительности и в количестве съеденного корма. Хотя у домашних животных обмен веществ может отличаться от такового у диких копытных, всё же, в качестве веточного корма в зоопарках можно рекомендовать только проверенные на отсутствие токсичных веществ растения – ясени (Fraxinus spp.), ольха (Alnus spp.), тополя, в т.ч. осина (Populus spp.), вязы (Ulmus spp.), бук (Fagus spp.), граб (Carpinus spp.), большинство видов клёнов (Acer spp.) (кроме красного), ивы (Salix spp.) в умеренном количестве (Раменский и др., 1956). Поедаемость сухих веников, возможно, будет лучше, если веники замачивать и, после размягчения листьев, немного подсушивать перед раздачей.

То, что безвредно для парнокопытных, может быть опасно для лошадиных и наоборот. Веники березы (Betula spp.) рекомендуется скармливать ограниченно, чередуя с другими породами деревьев, иначе они могут вызвать воспаление почек. Плоды рябины (Sorbus spp.) опасны для лошадей (Хермсен, 2001). Хотя хвойные могут быть источником витаминов в зимний период, их потребление ограничено из-за повышенной смолистости (Эрнст и др., 2006). В частности, поедание сосновой хвои (Pinus) может вызывать аборты у скота (MacDonald, 1952). Боярышник (Crataegus) можно скармливать только без цветков и плодов, лещина (орешник) (Corylus) содержит дубильные вещества (Эрнст и др., 2006). В любом случае, не рекомендуется кормить животных завозными декоративными растениями, особенно, красиво цветущими или с необычными листьями.

В заключение можно дополнительно указать некоторые растения, которые не должны попадать в корм животным ни в каком виде, поскольку они целиком или частично ядовиты: тисс (Taxus), олеандр (Nerium oleander), рододендрон (Rhododendron), самшит (Buxus), можжевельник (Juniperus), лавр (Lauras), туя

34


(Thuja), софора японская (Sophora), черёмуха (Padus (Prunus), черешня, слива птичья (Cerasus (Prunus) avium), сливы виргинская и японская (Prunus serrulata, P. virginiana), лавровишня (P. laurocerasus), бересклет (Euonymus), крушина, черноягодник (Rhamnus), каштаны конские (Aesculus), кипарис (Cupressus), гледичия (Gleditschia), падуб (Ilex), ракитник (Cytisus), жимолость (Lonicera), дереза (Lycium), жасмин (Jasminum), подбел (Andromeda), вереск (Calluna), абрикос (Prunus) (косточки), клещевина (Ricinus), кальмия (Kalmia), ирга (Amelanchier), глициния (Wisteria), бобовник «золотой дождь» (Laburnum), бирючина (Ligustrum) и некоторые другие (Pardee, 1847; Reynard, Norton, 1942; Гусынин, 1962; Kingsbury, 1964; Majak et al., 1978; Kornheiser, 1983; Cooper, Johnson, 1984; Scimeca, Oehme, 1985; Hamilton, Mitchell, 1994; Дрейпер, 1997; Veterinary Toxicology, 1999; Oehme, Pickrell, 2004).

Выражаем благодарность лаборантам В. Натаровой, Т. Анохиной, В. Говянович за помощь в проведении опыта.

Литература:1. Гусынин И.А., 1962. Токсикология ядовитых растений, 4 изд. – М.: Изд-во с.-х.

лит-ры, журналов и плакатов. – 229 с.2. Дрейпер Дж., 1997. Лошади и уход за ними. Энциклопедическое издание о

лошадях и пони с кратким руководством по их содержанию. – Минск: Белфакс. – 256 с.

3. Остапенко В.А., 1997. О значении веточного корма при содержании диких животных // Научные исследования в зоологических парках. – М.: Изд-во Моск. зоопарка. – Вып. 9. – С. 181–185.

4. Остапенко В.А., 2005. Полифункциональное значение веточного корма // Межвед. сб. науч. и науч.-метод. трудов «Кормление диких животных». – М.: Изд-во Моск. зоопарка. – С. 30–34.

5. Раменский Л.Г., Цаценкин И.А., Чижиков О.Н., Антипин Н.А., 1956. Экологическая оценка кормовых угодий по растительному покрову. – М.: Гос. изд-во с.-х. лит-ры. – 472 с.

6. Салганский А.А., Слесь И.С., Треус В.Д., Успенский Г.А., 1963. Зоопарк «Аскания-Нова» (опыт акклиматизации диких копытных и страусов). – К.: Изд-во с.-х. лит-ры УССР. – 308 с.

7. Ткачева Е.Ю., Лифанова О.Б., 1997. Химический состав некоторых нетрадиционных кормов, используемых в зоопарке // Научные исследования в зоологических парках. – М.: Изд-во Моск. зоопарка. – Вып. 9. – С. 181–185.

8. Треус В.Д., 1968. Акклиматизация и гибридизация животных в Аскании-Нова. 80-летний опыт культурного освоения диких копытных и птиц. – К.: Урожай. – 316 с.

9. Фальц-Фейн В.Э., 1997. Аскания-Нова. – К.: Аграрна наука. – 352 с.10. Хермсен Дж., 2001. Лошади. Иллюстрированная энциклопедия. – М.: Лабиринт-

Пресс. – 312 с.

35


11. Эрнст Л.К., Науменко З.М., Ладинская С.И., 2006. Кормовые ресурсы леса. – М.: РАСХН. – 369 с.

12. Cooper M.R., Johnson A.W., 1984. Poisonous plants in Britain and their effects on animals and man. – London: Her Majesty’s Stationery Office. – 305 p.

13. Duncan C.S., 1961. Oak leaf poisoning in two horses // Cornell Vet. – Vol. 51. – P. 159–162.

14. EEP African Equids: Husbandry guidelines. 2nd proposal, 2000.15. EEP Asiatic Equids: Husbandry guidelines. Edited by Waltraut Zimmermann. Published

2000 by © Zoologischer Garten Koln. ISBN 3-934849-60-1 Schilling Verlag Munster, 2000.

16. Hamilton G.W., Mitchell J.R., 1994. Poisonous Plants in a Pasture Setting. New Hampshire Cooperative Extension, Durham, NH.

17. Hanichen T., Rietschel W., 2001. Post mortem findings in the Okapi // Verh. ber Erkrg Zootiere. – Vol. 40. – P. 99–105.

18. Kingsbury J.M., 1964. Poisonous plants of the United States and Canada. – Englewood Cliffs–N.J.: Prentice-Hall Inc. – 626 p.

19. Knight A.P., Walter R.G., 2001. A Guide to Plant Poisoning of Animals in North America. – Wyoming: Teton NewMedia, 2001. – 367 p.

20. Kornheiser K.M., 1983. Buckeye poisoning in cattle // Vet. Med. Small Anim. Clin. – Vol. 78. – P. 769–770.

21. MacDonald M.A., 1952. Pine needle abortion in range beef cattle // J. Range Manage. – Vol. 5. – P. 150–155.

22. Majak W., Bose R.J., Quinton D.A., 1978. Prunasin, the cyanogenic glycoside in Amelanchier alnifolia // Phytochemistry (Oxf.). – Vol. 17. – 803 р.

23. Oehme F.W., Pickrell J.A., 2004. Plants may be hazardous to livestock this fall // Kansas Veterinary Quarterly Newsletter. – Vol. 7, No 3. – P. 4–6.

24. Pardee G.K., 1847. Case of poisoning by the wild cherry // West. Lancet. – Vol. 6. – P. 289–291.

25. Plumlee K.H., 1991. Red maple toxicity in a horse // Vet. Hum. Toxicol. – Vol. 33. – P. 66–67.

26. Reynard G.B., Norton J.B., 1942. Poisonous plants of Maryland in relation to livestock // Univ. MD. Agric. Exp. Stn. Bull. – A10. – 312 p.

27. Rietschel W., 2002. Plant poisoning of zoo animals or an unsuspicious method of population control in zoo collections // European Association of Zoo- and Wildlife Veterinarians (EAZWV) 4th scientific meeting, joint with the annual meeting of the European Wildlife Disease Association (EWDA), May 8–12, Heidelberg, Germany.

28. Sandusky G.E., Fosnaugh C.J., Smith J.B., Mohan R., 1977. Oak poisoning of cattle in Ohio // J. Am. Vet. Med. Assoc. – Vol. 171. – P. 627–629.

29. Scimeca J.M., Oehme F.W., 1985. Postmortem guide to common poisonous plants of livestock // Vet. Hum. Toxicol. – Vol. 27. – 189–199.

36


30. True R.G., Lowe J.E., 1980. Induced juglone toxicosis in ponies and horses // Am. J. Vet. Res. – Vol. 41. – P. 944–945.

31. Veterinary Toxicology, 1999. Beasley V., Poppenga R.H. (Eds). – Ithaca-New York: International Veterinary Information Service [http://www.ivis.org/advances/Beasley/toc.asp].

32. Weber M., Miller R.E., 1997. Presumptive red maple (Acer rubrum) toxicosis in Grevy’s zebra (Equus grevyi) // J. Zoo Wildl. Med. – Vol. 28, No 1. – P. 105–108.

SummaryBROWSE FOOD FOR SOME UNGULATES AT ASKANIA NOVA ZOO. T.L. Zharkikh,

N.I. Yasynetska, V.A. Smagol. Branches and leaves of 23 species of trees and shrubs were offered to 6 species of equids (Przewalski horse, Grevy’s zebra, plain zebra, kulan, donkey, Shetland pony) and 15 species of bovids (eland, nilgai, blue wildebeest, scimitar-horned orix, blackbuck, sitatunga, saiga antelope, American bison, wisent, yak, Cape buffalo, water buffalo, gayal, watussi cattle, Ukrainian grey cattle) to discover their preferences for the plants. In general, bovids ate more plants than equids. A short literature review of trees and shrubs which are toxic for animals is presented. Some recommendations for enrichment of rations with browse food for zoo ungulates is given.

раЗмноЖение ЮЖнЫх (ПатаГонСких) морСких львов (otAriA ByroniA (BlAinVille, 1820) в цирковЫх УСловиЯх

За ПериоД 1997 – 2004 Г.Г.

базаров и.в., начальник отдела зоотехнической и ветеринарной работы, охраны животных и передвижных зооцирков

ФкП «российская государственная цирковая компания»

Доклад подготовлен на основе анализа практических данных, накопленных руководителем номера «Идиллия с морскими львами» народной артисткой России И.Н. Запашной за период с 1994 по 2005 год.

Указанный номер был создан в Сочинском госцирке. Для этого Росгосцирком были приобретены четыре Патагонских морских льва (1 самец и 3 самки) одного возраста, которые были ввезены в Россию 14 июля 1994 года из Нидерландов, где они содержались около месяца на ферме в одном бассейне в группе из 15 животных одного возраста, куда морские львы ранее были доставлены из Уругвая. На момент отгрузки животные сами поедали рыбу с разной степенью приученности, они были средней упитанности, а их возраст определялся в интервале 0,5 – 1,5 года. Все эти животные были изъяты из природной среды.

Хотя на ферме в Нидерландах все эти животные в той или иной мере поедали рыбу, предлагаемую из рук человека или из воды, после транспортировки в Россию

37


в Сочинский госцирк (после 7-дневного переезда) одна самка под кличкой «Ника» совсем отказалась от рыбы. Её пришлось снова искусственно «раскармливать», начиная с кормления фаршем через зонд.

До октября 1997 года животные находились на содержании в Сочинском госцирке. Они содержались вместе в одном металлическом бассейне с соленой водой емкостью 13 куб.м. С животными репетировали цирковые трюки в течение 2-х лет. После этого они начали выступать на манеже Сочинского госцирка перед зрителями. После октября 1997 года номер стал переезжать по циркам Европейской части России, периодически возвращаясь в г. Сочи в 1999, 2000 и 2001 годах. После этого животные в Сочинский госцирк более не привозились. Нахождение животных номера в каждом из цирков, как правило, составляло срок от 1 до 3 месяцев. Лишь в отдельных случаях такой срок составлял 5 - 7 месяцев.

По литературным данным половая зрелость у данного вида животных наступает у самок к концу 4-го года жизни, у самцов к 6-ти годам. Продолжительность беременности около 330 дней, лактации 6 – 12 месяцев. Сроки родов и последующего спаривания приходятся на декабрь – февраль.

В нашем случае первые спаривания произошли осенью 1997 года, когда возраст животных достиг 3,5 – 4,5 лет. Причем самец под кличкой «Тимофей» в первый период спаривался только с двумя самками: под кличкой «Ника» и под кличкой «Зайка». Третья самка под кличкой «Майя» не проявляла типичного поведения самки и тот год в спаривании не участвовала.

Первые роды произошли в мае 1998 года у «Зайки» в Московском цирке на Цветном бульваре. Детеныш родился мертвым. Он был явно не доношен. В этот же год 24 августа родила «Ника». Роды были благополучные. Родился самец, которого назвали «Георгий». «Ника» с детенышем сразу же была отделена во второй металлический бассейн, емкостью 4,5 куб.м., где они содержались около года. Бассейны оборудовались в одном помещении и разгораживались вольерной решеткой.

Осенью 1998 года «Тимофей» спаривался с «Майей». 23 августа 1999 года в Сочинском госцирке она благополучно родила самца, которого назвали «Рома». Для того чтобы в будущем не создавать конфликтную ситуацию между самцами, «Рому» в возрасте около 5 месяцев, когда он начал поедать рыбу, отделили от матери и передали в Утришский дельфинарий, откуда его перевезли в г. Санкт-Петербург в дельфинарий на Крестовском острове, где он и живет.

Осенью 1999 года «Майя и «Ника» были изолированы от спаривания с самцом, так как содержались с приплодом. Была покрыта только «Зайка».

4 сентября 2000 года в Московском цирке на Цветном бульваре «Зайка» благополучно родила самку, которую назвали «Соня». Через 4 месяца у «Зайки» пропало молоко. При этом животное не теряло аппетита и не проявляло признаков какого-либо заболевания. Но в начале марта 2001 года состояние здоровья самки морского льва резко ухудшилось, она перестала есть, была крайне угнетена. Вслед за этим

38


произошел выкидыш недоразвитого мацерированного плода. К сожалению, только после этого была правильно понята причина заболевания животного. Проводилось лечение эндометрита и сопутствующих заболеваний, но болезнь оказалась запущена и 4 апреля 2001 года «Зайка» пала. Результатами вскрытия было подтверждено, что у этой самки была беременность двойней, но в какой-то момент беременности развитие плода во втором роге матки остановилось, плод мумифицировался и не был рожден вместе с нормально развитой самкой. Со временем началась мацерация плода, развились гнилостные процессы, что привело к эндометриту, воспалительным процессам в соседствующих органах и в самой брюшной полости. Что и явилось причиной смерти животного.

«Соню», после прекращения лактации у «Зайки», кормили через зонд фаршем, затем, в возрасте около 6 месяцев она стала поедать рыбу самостоятельно.

«Ника» и «Майя» осенью 2000 года спаривались с самцом и в 2001 году произошли роды. 28 июля «Майя» в Сочинском госцирке благополучно родила самца, которого назвали «Гера», а 1 августа отошли воды и начались слабые схватки у «Ники». Но родить самостоятельно она не могла, вела себя крайне агрессивно, что очень осложнило родовспоможение, хотя ей были введены окситоцин для стимуляции схваток и сердечные препараты. В ночь с 3 на 4 августа родовспоможение было оказано, отделен послед. Плод был уже мертвый. Это был очень крупный самец, нормально развитый. В начале схваток он был живым. Через несколько часов после этого «Ника» пала.

Оставшаяся самка «Майя» была допущена к спариванию с самцом только осенью 2003 года при длительном нахождении в Московском цирке на Цветном бульваре. 30 октября 2004 года в Тульском госцирке она благополучно родила самку, названную «Ика». К этому времени в номер был изготовлен третий пластиковый бассейн емкостью 4,5 куб.м., для того чтобы отделять самку с детенышем и одновременно разделять остальных животных.

Осенью 2005 г. спаривание не проводилось. Самка с приплодом содержалась отдельно от остальных животных. Старший из полученного приплода – самец «Георгий» (7 лет) содержался в одном бассейне вместе с отцом, самок ещё не покрывал и конфликтов из-за самок между ним и отцом не наблюдалось. При этом размеры сына были сопоставимы с размерами отца.

Таким образом, за период с 1998 по 2004 годы в номере под руководством Ирины Запашной от 1 самца у 3 самок было зафиксировано 7 беременностей, причем одна – двойней. Получено и выращено 5 живых детёнышей. Одна беременность (первая) завершилась ранними родами мертвого детеныша. Одна беременность завершилась смертью матери и смертью приплода в процессе родов. Беременность двойней дала одного жизнеспособного детёныша. Второй плод перестал развиваться, не был рожден в естественный срок, а его дальнейшее разложение в роге матки привело к гибели матери.

39


Из общих моментов содержания родительского стада и приплода патагонских морских львов необходимо отметить следующие.

Все беременные самки, за исключением первого случая преждевременных родов, где-то за месяц до предполагаемых родов и в период около шести месяцев или более после родов освобождались от участия в работе номера и репетициях на манеже.

Приучение приплода к поеданию рыбы происходило в 4 – 6 месячном возрасте наряду с продолжающимся кормлением материнским молоком. Исключение составили «Рома» и «Соня», которые в силу сложившихся обстоятельств были переведены на кормление только одной рыбой в возрасте около 4-х месяцев. Остальные детеныши продолжали сосать материнское молоко наряду с поеданием рыбы до годовалого и более возраста. В частности «Гера» продолжать сосать молоко у матери «Майи» почти до 3-х летнего возраста. Последний год лактации «Майя» уже была беременна «Икой». Разрыв между лактациями у неё составил только 4 месяца. Лактация у «Майи» при кормлении «Ики» продолжалась около двух лет.

Все животные номера, кроме корма, регулярно получают витаминные препараты (группу В, «Юникап»), а также препарат – «морской кальций». По мере необходимости используются и другие препараты.

Соленость воды в бассейнах поддерживается на уровне 5 – 8 промилей, при сменяемости воды раз в два – три дня, в зависимости от времени года и температуры окружающего воздуха.

В Российской государственной цирковой компании размножение патагонских морских львов не единственный случай размножения ушастых тюленей, но единственный случай размножения животных этого вида. В разные годы и в разных номерах получали приплод сивучей и благополучно его выращивали. Но все случаи рождения приплода у сивучей не носили планомерного характера, в отличие от данного случая.

За период 2002-2005 г.г. в двух номерах с сивучами было рождено и выращено три сивученка.

40


оПЫт СоДерЖаниЯ бУрЫх меДвеДей в открЫтЫх вольерах на экСПоЗиции «меДвеЖий континент» киевСкоГо ЗооПарка

орлов к.Г., заведующий сектором «медвежий континент» киевского зоологического парка

качан т.Г., консультант по вопросам рационализации производства киевского зоологического парка

ВведениеПара бурых уссурийских медведей Ursus arctos Lasiotus (Елик и Бона) были

привезены в Киевский зоологический парк 15.03.1989 г., из в/о «Хабаровскпромохота», р. Хор, ключ Эльбан в возрасте приблизительно трёх месяцев. С момента прибытия до 2003 года они содержались в помещениях старого медвежатника, который представлял собой кирпичное сооружение с 9-ю клетками, тремя берлогами и тремя открытыми вольерами с бетонными полами для выгула животных. Так же в вольерах располагались небольшие бассейны (в среднем 3х2 м глубиной 3 м). Общая площадь одного из вольеров, в котором и содержалась пара бурых уссурийских медведей, составляла 212,8 м кв. Обустройство вольера для животных, было представлено деревянными колодами различной формы и длины, покрышками (большого диаметра). В качестве обогащение среды для животных использовались корма, ветки различных пород деревьев, собранные на территории зоопарка орехи, жёлуди, рябина и т.п.

1. Описание нового комплекса «Медвежий континент»В 2003 году было завершено строительство нового комплекса «Медвежий

континент» (рис 1, 2).

41


Новый комплекс представляет собой сооружение с двумя большими открытыми вольерами (площадью 1100 и 800 м.кв.) для содержания животных семейства медвежьих, ограждение – задекорированная под камни бетонная стена, с глубиной закладки фундамента - 1,5м). Шесть небольших вольеров, в виде пристроек по периметру ограждения комплекса (площади вольеров 15 – 16 м кв.), предназначены для содержания мелких животных. Помещения хозяйственной зоны представлены: двумя клетками для временного содержания медведей, с площадями 50,6 и 33 м.кв.; перегонной клеткой, для перевода животных в наружный вольер – 10,3 м.кв.; берлогой – 16 м.кв. Перемещение животных осуществляется через вертикальные шибера, оборудованные тросо-блочной системой с автоматической фиксацией шиберов (рис. 1). Так же в состав хозяйственной зоны входят три складских помещения.

В передней части экспозиционных вольеров расположены бассейны с площадями поверхности водяного зеркала 80 и 60 м.кв. Вдоль всего вольера №1 (предназначенного для содержания бурых уссурийских медведей) обустроена искусственная река с порогами и участками различной ширины и глубины. Возле искусственной реки на стене вольера обустроен небольшой водопад.

При постройке нового комплекса были сохранены все растения. На данный момент в вольере растительность представлена 25-деревьями 5 различных пород: ясень обыкновенный, липа сердцелистная, граб обыкновенный, вяз, клен остролистый (преобладают стволы деревьев с диаметром больше 20см). С целью предохранения от повреждения животными, часть деревьев защищена металлическим каркасом в виде решётки.

Осмотр экспозиции посетителями осуществляется через смотровые окна, оборудованные стеклом повышенной прочности.

42


2. Подготовка вольера перед запуском животных.С целью обеспечения проявления у животных различных типов поведения в

новом вольере, была искусственно создана имитация бурелома из веток и небольших древесных стволов, колод. С этой же целью были обустроены участки территории вольера, засыпанные корой лиственных пород деревьев, высажены кусты смородины, малины, ежевики.

С целью приучения медведей к новым ограждающим конструкциям, на окна вольера были наклеены горизонтальные сигнальные полосы шириной 10см. (создание имитации преграды).

Предварительно (8.07.2003г), до переведения медведей в новый вольер, они были переселены в клетки для временного содержания медведей (рис 3) нового комплекса «Медвежий континент».

43


В этих помещениях на протяжении семи дней проводилась адаптация животных к новым клеткам. Постоянно рядом с медведями находился опытный кипер, который обеспечивал кормление, наблюдение за состоянием животных, обогащение среды и тренировку животных (переход через шибер из клетки в клетку).

За период содержания медведей в новых клетках, наблюдалось значительное увеличение уровня проявления стереотипного поведения (таблица 1), а именно: удары лапой в шибер; передвижение вперед-назад перед ограждением клетки с одновременным покачиванием головы (самка); маятниковые движения головой перед металлическими прутьями ограждения клетки (самец).

Все попытки отвлечь медведей от подобных действий с помощью кормов или предложенных вербовых веток, были не достаточно результативными и отвлекали животных лишь на незначительный промежуток времени (10 – 15 минут). Лишь после скармливания основной массы кормов животные немного успокаивались, а самка даже ложилась отдыхать. Подобное поведение животных наблюдалось на протяжении 5 дней.

3. Адаптация животных к новым условиям содержания. Особенности поведения животных в новом вольере.

Первый выпуск животных в новый вольер был осуществлен 14.07.2003г. После содержания на протяжении 14 лет в довольно стесненных условиях старого медвежатника (вольер – 212 м.кв, клетки – 14 – 16 м. кв) первые дни пребывания в новом вольере животные находились в шоковом состоянии.

Перед запуском животных, по предварительно разработанной схеме (принцип которой используется по сегодняшний день), в вольере были разложены корма (в искусственных буреломах, в высокой траве, разбросаны по территории вольера). Тем не менее, в первые дни животные поедали корма плохо. На начальной стадии адаптации к новому вольеру (первый и второй дни, проведенные в новых условиях) было отмечено, что животные мечутся по вольеру, совершая длительные пробежки вдоль его территории. По истечении нескольких часов животные уставали и успокаивались. До конца дня, более 30% времени, проведённого в вольере, в их поведении занимали элементы исследовательского характера и около 20% стереотипное поведение (особенно у самки). Подобная картина наблюдалась в течении 5 – 6 дней (таблица 1).

Уже через 8 дней (с 22.07.2003г) содержания животных в новом вольере возникла новая проблема. Поначалу самка «Бона», а затем и самец «Элик», начали активно копать, подготавливая себе укрытия – берлоги. С одной стороны это был положительный результат, которого мы ожидали – медведи проявляли один из аспектов природного поведения к тому же, значительно уменьшилась степень проявления стереотипного поведения. Но с другой стороны их активность была настолько интенсивной (в среднем дно подобных берлог располагалось на глубине более 2-ух метров от поверхности грунта), что возникали опасения возможности подкопа и выхода, животных, за

44


пределы вольера (таблица 2). Тем более что большинство берлог располагалось прямо возле стен вольера. Поэтому практически все они, на особенно опасных участках, бетонировались.

Выкапывание медведями берлог наблюдалось постоянно в течении 5 лет. А в 2005 и 2007 годах имел место факт зимовки медведей в выкопанных и подготовленных ими берлогах прямо в вольере.

Сезонность года не имела никакого влияния – медведи начинали копать берлоги даже в мае месяце. Места, где копали животные, располагались в основном под стенами вольера, но все они находились на участках наиболее удаленных от окон, через которые просматривается экспозиция посетителями. И значит, подобное поведение можно расценивать как факт избегания, поиск укрытия в вольере. Все попытки разнообразить поведение животных, отвлечь их внимание путем применения различных методов обогащения среды, были недостаточно эффективными.

Подобная ситуация оставалась неизменной до 2008 года. После зимовки самца в практически природных условиях, берлоге выкопанной под руслом искусственной реки, животные избрали именно это место для дальнейших действий в плане подготовки своего укрытия. За период весна 2008 года – лето 2009 года медведи не сделали, практически, ни единой попытки выкапывания берлоги в каком либо другом месте. И поэтому после недолгих попыток приостановить их деятельность, путем увеличения внимания к применению различных методов обогащения среды, было принято решение летом 2009 года предоставить животным возможность заниматься подготовкой берлоги без излишнего вмешательства со стороны человека.

Результат был получен положительный. Согласно наблюдениям 2009 года в летний период медведи периодически лишь чистили свою берлогу. Причём подобная потребность наблюдалась в основном у самки. Поведение животных в вольере практически полностью стабилизировалось и носило довольно предсказуемый характер. При использовании основных методов обогащения среды (о которых будет упомянуто ниже) у животных проявлялись, в достаточной мере, практически все виды природного поведения. Единственным дополнительным условием, которое необходимо было применить с целью устранения элементов стереотипного поведения, было изменение графика перемещения животных в экспозиционный вольер и из него в клетки для временного содержания животных, на протяжении суток. Изменение графика экспозиции животных в вольере, было осуществлено на основании длительных наблюдений, с учетом индивидуальных особенностей в поведении каждой особи.

4. Основные методы обогащения среды, используемые для медведей в условиях Киевского зоологического парка.

В разработке методов обогащения среды, применяемых для медведей в Киевском зоологическом парке, использовались литературные данные опыта не только

45


зарубежных зоопарков, но и собственные многолетние наблюдения за животными. Предпочтения, по глубокому убеждению наших сотрудников, отдавались использованию природных материалов и конструкций при условии минимизации использования предметов изготовленных из синтетических материалов.

Основными применяемыми методами обогащения среды в Киевском зоопарке для животных семейства Ursidae являются:1. Кормовое обогащение – применение различных схем размещения кормов

на территории вольера, использование сезонных дополнительных кормов, использование головоломок (природные конструкции и материалы), создание условий для поиска кормов медведями (буреломы, спрятанные в грунте корма и.т.д).

2. Предметное обогащение – применение колод, небольших стволов деревьев, коры лиственных пород деревьев, щепы изготовленной из дробленых веток (всё это в различных комбинациях).

3. Сенсорное обогащение – в основном используются различные природные запахи (отвары пряных трав; сами травы; фекальные массы от других животных (потенциальные жертвы и враги) и т.д.), нанесенные на стволы деревьев, подстилочные материалы и другие предметы окружения животных. Внимание: использование фекальных масс и других материалов, полученных от животных, должно быть согласованно с ветеринарными врачами!

4. Комбинированное обогащение - конгломерат, смесь различных видов обогащения среды в одном элементе.

Обобщение опыта содержания медведей в новых вольерах Опираясь на данные, полученные в результате пятилетних наблюдений за парой

бурых уссурийских медведей при содержании в вольере открытого типа на большой территории, можно сделать следующие обобщающие выводы:1. Адаптация медведей к новым условиям – длительный и сложный процесс.

Продолжительность его может составлять несколько лет, при этом крайне необходимо проведение серии наблюдений для определения индивидуального психологического статуса каждой особи в отдельности.

2. Наряду с использованием различных методов обогащения среды, необходимо предоставлять животным свободу действий при четком контроле человека.

3. Использование вольеров, с условиями максимально приближёнными к природным, в комбинации с подробно разработанной и правильно подобранной (с учётом индивидуальных особенностей животных) схемой обогащения среды, а так же методикой экспонирования животных в вольере, дают возможность свести до минимума, а иногда даже полностью исключить некоторые виды, стереотипного поведения у животных.

46


Таблица 1. Бюджет времени медведей по типам поведения.

Дата

% от общего времени наблюденийЭлик Бона

Типы поведения Типы поведенияИ К В С Коп Т Д К В С Коп Т

9.07.03* – 33 15 45,9 – – – 26,3 13,4 49,5 – –14.07.03** 67,7 7,6 19,8 4,49 – – 56,6 7 9,7 20,4 – –15.07.03 40,3 26,2 13,1 13,1 – – 30 24,6 9,2 29,7 – –16.07.03 34,5 9,7 24,1 – – – 34,5 1,7 21,8 27,5 – –21.07.03 – 47,2 39,6 13,1 – – – 45,4 34,5 20 – –22.07.03 – 56,6 10,7 24,8 2,3 – – 41,8 1,1 43,3 13,7 –25.07.03 7,1 15,5 25,7 4,4 1,7 45,3 10,2 28 12,4 3,1 0,8 43,5

Примечание: И – исследовательское поведение; К – кормовое поведение; О – отдых; С – стереотипное поведение; Коп – копание; Т – территориальное поведение; *- медведи находились в клетке для временного содержания; ** - первый запуск животных в новый вольер.

Таблица 2. Параметры берлог выкопанных медведями в 2003 году

Дата

Затраты времени на выкапывание берлог (ч, мин) Размеры берлог (см.).

Елик Бона Длина Ширина Глубина (высота)

22.07.03. - 40 мин. 200 160 14028.07.03. - 25 мин. 100 100 9023.08.03. 60 мин. 80 мин. 100 120 10025.08.03. 2 ч. 30 мин. 3 ч. 200 120 13026.08.03. 2 ч. 3 ч. 200 130 14029.08.03.* 2 ч. 42 мин. 10 мин. 390 122-170 154

47


оПЫт риЖСкоГо ЗооПарка раЗвеДениЯ ЗемновоДнЫх в неволе

exPerienCe of rigA Zoo of AMPHiBiAn Breedingилзе Дунце витальевна, заведующая отделом земноводных рижского

зоопаркаilze dunce Vitaljevna, Msc Biol, curator of Amphibian department, riga [email protected]ключевые слова: земноводные, разведениеkey words: amphibians, breeding

В последние годы разведение земноводных в неволе становится всё более популярной как среди любителей, так и в зоопарковских коллекциях. Главная причина – катастрофическое сокращение популяций этих животных в природе, вызванная совокупностью нескольких факторов (Gascon et al., 2007). Для многих видов единственным шансом сохранеиния осталось создание стабильных и жизнеспособных популяций в неволе, что невозможно без регулярного разведения животных.

Двадцатилетний опыт отдела земноводных (раньше – Лаборатория Экологии) Рижского зоопарка показал, что успех в разведении земноводных в нескольких поколениях достигается не столько стимуляцией самого нереста, сколько правильным выращиванием и содержанием производителей.

Обычно получение первого поколения потомства от производителей, пойманных в природе, является самой легкой задачей, но с каждым следующим поколением возникают всё больше проблем. Часто это последствия неправильного выращивания молодняка. Опыт, проведённый в Рижском зоопарке с шлемоголовой жабой Bufo galeatus показал, что повышение средней суточной температуры воды головастикам на 5оС привело к гибели около 95% молодняка в течении 30 дней после метаморфоза. Сеголетки разных видов лягушек также отличались жизнеспособностью, размерами и темпами роста в зависимости от кормов, на которых выращивались головастики.

На последующее размножение могут повлиять также ошибки во время послеметаморфозного периода. При недостаточном кормлении или слишком плотной посадке молодые животные часто не достигают нормальной величины. Наблюдается сокращение размеров тела с каждым следующим поколением, изменения в окраске, уменьшение количества оплодотворенной икры. Это могут быть последствиями как инбридинга, так и неправильного выращивания, содержания или разных болезней животных.

Далеко не всегда старания полностью иммитировать естественную среду приводят к желаемым результатам. Часте всего необходимо обеспечить лиш несколько необходимых для данного вида условий, нпример, влажности, режима освещения, кормов, мест для откладки икры и пр.

48


Размер террариума имеет значение в основном при разведении территориальных видов, например, древолазов Dendrobates. Но даже в этом случае, по нашим наблюдениям, большее значение имеет устроиство террариума (наличие мест для откладки икры, укрытия, возвышения), чем его величина. Для других видов мы не наблюдали прямую связь между успехом разведения и размерами террариума.

Качество воды важно в основном для развития икры и головастиков. Использование дистиллированной воды не лучший выход, так как она не содержит никаких макро и микроэлементов, необходимых для нормального развития животных. Лучше использовать водопроводную воду, при необходимости отстоянную или фильтрованную бытовыми фильтрами (Аквафор, Бритта и др.). Хорошие резултаты в Рижском зоопарке были получены, добавляя в воду дубовые листья или пучки сфагнума.

Сезональность. Чем дальше находиться естественное местообытание данного вида от экватора, тем большее значение для успешного разведения имеет соблюдение сезональности. Разведение видов умеренных широт практически невозможно без подходящих условий зимовки. В Рижском зоопарке после периода зимовки без дополнительной стимуляции разводятся такие виды как камышёвая жаба Bufo calamita, краснобрюхая жерлянка Bombina bombina, озерная лягушка Rana ridibunda, остромордая лягушка Rana arvalis, гребенчатый тритон Triturus cristatus.

Кормление животных один из наиболее важных факторов. Набор выращиваемых кормовых животных невелик, поэтому особое внимание уделяется кормовым добавкам. Наш опыт показал, что их нужно подбирать для каждого вида или по крайней мере семейства земноводных, так как потребности к витаминам и минеральным веществам отличаются. Опыты с древолазами Dendrobates показали, что определённый подбор кормовых добавок почти вдвое увеличивает количество икры. Кроме того, при полноценном кормлении у животных практически не наблюдается ожирения, даже если корм доступен постоянно.

Места для откладки икры важны как для брачного поведения , так и для откладки и развития икры. Например, для древолазов необходимы укрытия, и заманивание одним из производителей другого на место нереста является частью брачного ритуала. В р.з. для этого используються не только чашки петри, накрытые кокосовой скорлупой, но и толстый слой дубовых листьев на дне террариума, при том большинство наших видов отдаёт предпочтение последним. Для мантелл Mantellа aurantiaca и веслонога Rhacophorus appendiculatus наилучшим субстратом оказался сфагнум, в котором эти животные делают ямки для икры. В случае последних в террариум ставятся горшки с сфагнумом, что значительно облегчает удаление икры для последующей инкубации.

Живые или искусственные водные растения служат субстратом для тритонов, шпорцевых лягушек. Некоторые виды древесных лягушек нерестятся на ветках или листьях растений, но последних часто можно с успехом подменить листами стекла (красноглазые квакши Agaluchnis callidrias).

49


Влажность. Поднятие влажности большинству земноводных является мощным стимулом для размножения. В Рижском зоопарке влажность при разведении большинства видов земноводных колеблится от 80% до 95%. Повысить влажность можно разными способами, в том числе уменьшением вентиляции террариума, опрыскиванием террариума водой несколько раз в день, обеспечением слабого движения воды в террариуме при помощи небольшого насоса или фильтра, подогревом террариума или бассейна снизу, добавлением живых растений в террариум. Эффективно также устроить «водопад» в террариуме, для этого достаточно просто пустить струю воды по одной из стенок террариума.

Особым случаем можно ститать дождевание призводителей. Это включает несколько стимулов – поднятие влажности, «массаж» животных каплями воды, а также звуковую стимуляцию (некоторые виды реагируют на звук лющейся воды). По мнению автора, гораздо лучше проводить дождевание в террариуме, так как стресс при перемещении животных в специальные дождевые камеры может сказаться отрицательно. В Р.з. пересадка производителей в специальную дождевую камеру успешно применялась для таких видов как помидоры Dyscophus guineti, рогатки Ceratophrys ornata, австралийские квакши Litoria caerulea и др.

Гормональная стимуляция в Рижском зоопарке применяется в тех случаях, когда не удается получить потомство естественным путем. Инекции гормонов могут служить как для стимуляции созревания производителей (инекции делают как непосредственно перед нерестом, а в некоторых случаях 1-2 месяца до разведения) так и для синхронизации производителей (непосредственно перед нерестом, эффективно только хорошо подготовленным животным). В Р.з используется сурфагон, в зависимости от размеров и степени готовности животных 3 – 20 μг для одной иньекции. При этом создаются все условия, чтобы стимулировать размножение. Если через две сутки не призошло икрометания, то иньекция повторяется. Если результата нет и после второй иньекции, то попытка разведения прекращается. Наш опыт показал, что дальнейшее применение гормонов неэффективно и может привести к гибели производителей. Те же нежелаемые последствия могут возникнуть при слишком высоких дозах гормонов.

Литература.1. Gascon, C., Collins, J. P., Moore, R. D., Church, D. R., McKay, J. E. and Mendelson,

J. R. III (eds). 2007. Amphibian Conservation Action Plan. IUCN/SSC Amphibian Specialist Group. Gland, Switzerland and Cambridge, UK. 64pp.

50


аСПектЫ СоДерЖание ШирокоГо ПлавУнца dytisCUs lAtissiMUs linnAeUs, 1758 (dytisCidAe, ColeoPterA) в УСловиЯх лаборатории

вахрушев в. ** латгальский зоопарк (latgales zoodārzs), Даугавпилс, латвияe-mail: [email protected]

Содержание Dytiscus latissimus в искусственно созданных условиях с одной стороны не прядставляет труда. (если идет речь об имаго). С другой стороны, содержание личинок становится весьма затруднительным процессом. Это объясняется морфологическими особенностями разных стадий развития и приспособленности вида к иным условиям обитания, а также, сложившимися стереотипами у исследователей, построенных на базе развития тепловодной аквариумистики и террариумистики. Являясь палеарктическим гидробионтом, данный вид, очень требователен к определенному температурному режиму, который в большинстве случаев может не соответствовать микроклимату необорудованных лабораторных помещений. Сезонная жизненная активность Dytiscus latissimus в природе «процветает» в пределах от +2ºС (зимой) до + 22°С (летом) D. latissimus в стадии имаго является амфибиальным видом. И может переносить достаточно экстремальные параметры качества воды с наличием большого количества нитратов и пониженным содержанием кислорода растворенного в воде. Личинка же, напротив, очень требовательна к качеству воды. Её цикл развития происходит в воде. Поэтому, для дыхания, она использует как атмосферный кислород (дыхание осуществляется через пару дыхалец, расположенных на конце тела), так и растворенный в воде (кожное дыхание, характерное для личинок, имеющих небольшие размеры, особенно первых возрастов). При содержании личинок, также нужно рассматривать тот фактор, что пищеварение у них наружного типа, т.е., пищеварительный секрет, выделяемый личинкой в добычу и первичное её переваривание происходит вне организма хищника. При содержании в неволе этот момент необходимо учитывать. И вода, находящаяся в садках для содержания личинок, должна хорошо отфильтровываться, «вентилироваться» или регулярно подмениваться на свежую. (см Оборудование) Также, поверхность воды не должна иметь бактериальную, или жирную пленку натяжения. Это может привести к затруднению дыхания и возможной гибели животных на разных стадиях развития. Взрослых насекомых можно содержать в общем аквариуме при достаточно высокой плотности заселения. Например: в летний период, в 200 литровом объеме легко уживаются 10-15 экземпляров. При таком содержании соотношение полов не столь важно. Внутривидовая агрессия у данного вида не выявлена.

Период размножения у широкого плавунца в природе, начинается поздней осенью и продолжается до начала лета следующего года. Т.е. начиная с поздней осени жуки

51


могут активно спариваться.. Нами не установлено, спариваются ли жуки в скованном ледяным покровом водоеме, но наши наблюдения в природе подтверждают брачную активность Dytiscus latissimus и способность его отыскивать пищу при температуре + 2°С а это как известно, температура воды верхних и средних слоев большинства мелководных водоемов в зимний период скованных льдом. Многие водные животные при таких температурах перестают питаться. Поэтому, в лаборатории, содержание Dytiscus latissimus условно можно разделить на следующие этапы:

Зимний период - зимовка: Декабрь – январь – февраль - март. Содержание при низкой температуре раздельно самцов и самок. Кормление умеренное. Корм мотыль живой или замороженный. Искусственная имитация зимнего периода, может составлять, от +5 до + 7 °С, с постепенным повышением температур и параллельным увеличением продолжительности светового дня для достижении, в последствии, весеннего цикла. В зимний период жуков желательно содержать разнополыми группами, плотностью заселения, 3-4 жука на 10 литров воды. Аквариум должен обязательно оборудоваться «насестами». Ими могут быть любые тонущие предметы, позволяющие насекомым удерживаться под водой. В этой роли хорошо подходят всевозможные пластиковые сетки или пластиковые растения. Насесты должны размещаться, так чтобы обеспечить легкий доступ насекомых к поверхности воды и атмосферному воздуху. Все емкости должны плотно закрываться. К моменту зимовки, обычно, самки должны быть оплодотворенными. Если по какой то причине самки в процессе зимовки скинули яйца в воду, то, со временем, к весне, спаривание можно повторить. Освещение должно быть приглушённым и составлять примерно 5-6 часов светового дня. Очевидно, сроки зимней «диапаузы» могут варьировать и колебаться в пределах 1-2 месяцев в зависимости от запланированных и поставленных задач.

Весенний период: Март – апрель – май – июнь Размножение (подбор субстрата для откладки яиц). Инкубация яиц и развитие личинок. Кормление умеренное. С повышением температуры, нормальное. Корм: мотыль живой или замороженный и др. Содержания включает в себя постепенное увеличение светового дня с 6 до 8 часов и постепенное повышение температуры воды до +10-12°С, т.е. той температуры, при которой жуки начинают откладывать яйца. Оплодотворенных самок лучше содержать раздельно, обеспечив их выбором «насестов», укрытий, растений для откладки яиц. Также, с повышением температур жукам необходимо обеспечить выход на сушу. С этого момента, аквариум переоборудуется под «акватеррариум». В аквариуме должна быть небольшая надводная часть в виде островка. Сушей может служить плавающая коряжка, любой предмет, на который насекомое при желании сможет легко выбраться для, того чтобы обсушить покровы и может быть попытаться взлететь. В природе ранней весной у жуков наблюдается лёт. Во избежание побега насекомых ..садки должны плотно закрываться. Оптимальной температурой для содержания имаго и личинок в весенне-летний период, может являться диапазон от +17до +20°С.

52


Летний период: Июнь – июль – август – сентябрь – октябрь. Окукливание личинок, метаморфоз, свободное содержание имаго в общем акватеррариуме.

Окукливание и метаморфоз у Dytiscus latissimus в природе, по всей вероятности, подобен близким видам сем. Dytiscidae. Личинка третьего возраста, достигнув необходимого физиологического состояния, покидает водоем и устраивает в прибрежной зоне (в почве, во мху, между корней растений и пр.) колыбельку, где окукливается. Фаза куколки может длиться до 30 дней. После выхода из куколки, имаго остается в колыбельке еще несколько дней до более или менее полной склеротизации покровов, затем покидает ее, возвращаясь в водоем. (3) В лаборатории, окукливание Cybister lateralimarginalis и других близких видов рода Dytiscus. происходит следующим образом. Личинка третьего возраста перестает принимать пищу и пытается выбраться на сушу. На этой стадии её помещают в специальный садок с влажным торфом, в котором она зарывается и окукливается. Содержание взрослых насекомых в общем аквариуме при температуре + 18°С. Много насестов и укрытий, хорошая фильтрация и обильное кормление (мотыль, и др.личинки водных насекомых, кусочки пресноводной не жирной рыбы, кусочки говяжьего сердца, и т.п.)обеспечит полноценное существование особей. Продолжительность светового дня 12 часов. Освещение приглушенное.

Осенний период: Октябрь – ноябрь – декабрь. Подготовка к спариванию. Спаривание. Подготовка в зимовке. Кормление умеренное. Постепенное уменьшение светового дня с 12 до 8 часов и постепенное понижение температуры с 18°С до 10°С, в совокупности, являются пусковыми механизмами для проявления брачного поведения D.latissimus. Похожее поведение, также наблюдалось на примере содержания близких видов, таких как D. circumflexus, D. Dimidiatus и др. При содержании в общем летнем аквариуме понижали температуру с подменой воды и жуки тут же начинали активно подбирать партнеров для спаривания. Поэтому для проведения спаривания жуков можно рассадить парами, либо, наблюдать спаривание в общем садке. После спаривания, на брюшной поверхности восьмого сегмента брюшка самки остается замазковидная молочно-белая масса, представляющая «знак оплодотворения». (1.) Оплодотворенных самок сразу же следует изъять и переместить в отдельный аквариум. Иначе, в общем аквариуме, самки будут подвергаться излишнему вниманию со стороны самцов, что приведет их к стрессу. Залогом успеха в осенне-зимний период содержания являются более-менее стабильные показатели температур. Сильные перепады крайне не желательны, т.к. могут вызвать у животных сезонную дезориентацию и нарушение физиологических процессов.

Оборудование. Для содержания жуков могут служить отдельно стоящие аквариумы или, любые другие емкости, объединенные в системы, что очень удобно в обслуживании и экономии полезной площади помещения лаборатории. Последнее, особенно рекомендуется при выращивании личинок, которые очень требовательны

53


к определенным экологическим факторам. Мы предлагаем оборудовать лабораторию специальной стойкой для выращивания личинок по методу Toshio Inoda (4). Прототип слегка адаптирован для наших условий. При необходимости к нему можно подключить специальную холодильную установку.

Планирование холодноводной лаборатории может развиваться в нескольких направлениях:1. Создание отдельной холодной комнаты с установленными кондиционерами,

что позволяет поддержать необходимую температуру в помещении. В таком случае, конструкция аквасистемы ни чем не может отличаться от классического «домашнего» аквариума.;

2. Создание холодноводной аквасистемы в теплом помещении с использованием специальных аквариумных кондиционеров. Однако, возникающие проблемы в последующей эксплуатации, вынуждают уделять особое внимание конструктивной особенности холодного аквариумного комплекса и выполнению для этого следующих работ:

- Установке и подключения к системе холодильного агрегата;- Созданию защитного термоизоляционного слоя систем жизнеобеспечения

аквариумов и сами аквариумы, во избежание температуропотерь и образованию конденсата на конструкциях;

- Установке терморегулирующего устройства, обеспечивающего поддержание температурного режима в системе;

- Установке фильтрующего блока;- Установке светильников с использованием таймеров, позволяющим достичь

необходимую суточную фотопериодичность.Методика сбора материала в естественной среде.Ревизия и отлов жуков может производиться круглый год следующими методами:

- Метод визуального исследования водоема и его береговой линии. Удобен в весенне-осенний период. Не так эффективен;

- Метод кошения сачком. Представляет собой многократное «кошение» специальным - крепким сачком мелководных или прибрежных участков водоема заросших водной или прибрежной растительностью. Годен в любое время года, включая зимний подледный лов.

- Метод установки ловушек. Годен в любой сезон, включая подледный лов. Ловушки-раколовки устанавливаются с приманкой ..(обычно кусочки свежего говяжьего сердца). Один край ловушки должен быть всегда приподнят над водой, для того чтобы насекомые могли дышать. Особое внимание этому вопросу нужно уделять в летнее - теплое время.. Поздней осенью и зимой при низких температурах ловушки можно полностью погружать под воду, так как обмен веществ насекомых проходит не так интенсивно. Метод оправдал себя

54


и позволяет исследовать большие территории и проводить ревизию видового состава данных биоценозов.

- Метод отлова рыболовными сетями. Используются сети из лески с размером ячейки 18-22 мм. Существуют описанные случаи попадания жуков в рыболовные сети. Нами установлено, что самым лучшим сезоном для установки сетей является поздняя осень. Поздней осенью у жуков наблюдается брачное поведение. Самцы активно плавают в поисках самки. Во время спаривания самец удерживает и увлекает за собой самку. В процессе спаривания, плавающая пара может случайно запутаться в сеть. И при грамотной расстановке снастей, эта вероятность достаточно велика. Нужно помнить, что, устанавливая данные снасти, исследователь берет на себя серьезную ответственность за благополучие животных попавших в них. Ибо кроме желаемого плавунца, в ловушках могут оказаться сопутствующие – иные виды животных исследуемого биоценоза. Следовательно, ловушки проверяются не позже раз в двое суток в идеале раз в сутки (в летний сезон). Сети ставятся на ночь и проверяются два раза в сутки.. Данный метод сбора требует серьезной ответственности и санкционированного действия с разрешения природоохранных органов.Отлов личинок может производиться с апреля по июнь методом кошения сачкомСбор яиц происходит в апреле-мае. В этом случае производится сбор предполагаемых растений и последующее их визуальное исследование. Затем, отобранные перспективные растения с яйцекладками (Carex sp., Caltha palustris L, Typha latifolia и т.п.) переносятся в лабораторию и размещаются по емкостям с водой для инкубации. Для каждого вида растения предназначена своя емкость. Данный метод позволяет также установить межвидовую конкурентность Dytiscidae в местах размножения и предпочтительность того или иного вида к определенному видовому составу растений.

Заключение:Направление наших исследований заключается в стремлении изучить биологию

D. latissimus в естественной среде обитания. Определить его положение в биоценозах, с целью дальнейшей отработки концепций охраны экосистем, как единых ландшафтных комплексов. Изучить этологию, размножение и цикл развития в лабораторной среде с последующим возможным введением данного вида в зоокультуру с перспективой реинтродукции его в природе. Данная работа представляет собой еще не сформированный в единую систему «продукт» исследований. Это подборка информации, полученная экспериментальным путем за несколько лет, которую предстоит еще пополнить новыми данными, а может и пересмотреть уже сложившееся мнение. Мы будем безгранично благодарны коллегам, энтузиастам-любителям природы за любые замечания, предложения и поправки к данному материалу, а так же за любую предоставленную информацию по данному виду.

55


Информационные источники:1. Павловский Е.Н., Лепнева С.Г., «Очерки из жизни пресноводных животных», Гос

Изд.«Советская наука» 19482. В Вахрушев // Плавунец Dytiscus latissimus L. (Coleoptera; Dytiscidae), как

перспективный вид для содержания и разведения (характеристика биотопов и биологические особенности) // Второй Международный семинар, // Беспозвоночные в коллекциях зоопарков // Московский государственный зоологический парк, Россия., Москва, 2004.;

3. Елена Шавердо // Научный очерк семейства Dytiscidae (плавунцы)// http:// www. zin.ru/Animalia/Coleoptera/rus/incody.htm

4. Toshio Inoda, Shinji Kamimura, «New open aquarium system to breed larvae of water beetles (Coleoptera: Dytiscvidae)», Department of Life Sciences , Graduate School of Art sand Sciences , The University of Tokyo , Komaba 3 -8-1 , Meguro, Tokyo 1 5 3-8 9 0 2, JAPAN

56

Раздел 3. Научные исследования в зоопарках. Реинтродукция диких животных, восстановление природных популяций

РАЗДЕЛ 3. НАУЧНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ В ЗООПАРКАХ. РЕИНТРОДУКЦИЯ ДИКИХ ЖИВОТНЫХ,

ВОССТАНОВЛЕНИЕ ПРИРОДНЫХ ПОПУЛЯЦИЙ

СоЗДание Питомника С цельЮ СоДерЖаниЯ и раЗвеДениЯ СайГака (sAigA tAtAriCA)

нежевенко в.в., директор Парка Дикой природы «ольхова балка»вильмовский т., программный менеджер харьковского благотворительного

фонда «народне Єднання».61057, Украина, харьков, ул. Сумская 5,[email protected], [email protected]

Сайгак - один из видов антилоп, имеющих наивысшую категорию в Красном списке МСОП - «находящийся на грани исчезновения». Сокращение его численности с миллиона особей в 80-90-х г. до 25 тысяч в настоящее время, представляет достаточно наглядно, ситуацию с этим видом в местах его обитания, и ставит под сомнение дальнейшее выживание вида в ближайшей перспективе и в отдаленном будущем.

Причиной падения численности в первую очередь является совокупность влияния социально-экономической нестабильности, вследствие этого бедности и развитию браконьерства, а спрос на рога в азиатской народной медицине, только усугубляет тревожное положение. Здесь необходимо подчеркнуть, именно спрос на рог сайгака, а значит гибель и истребление самцов. Это ведет к пагубному для популяций и в целом для вида, дисбалансу в соотношении полов, что ведет к уменьшению не только качественного, но количественного воспроизводства.

Ситуация с данным видом нашла понимание во многих организациях и структурах, на международных, национальных и региональных уровнях. Так с 1995 года, вид включен в СИТЕС Приложение 2, и предотвращение нелегальной торговли ведется, однако как это скажется на численности вида в отдаленном будущем пока не ясно и остается открытым.

На протяжении периода с 1995 по 2005 годы состоялись достаточно плодотворные международные собрания, посвященные выработки нормативной базы и стратегии сохранения вида. Результатом подобных встреч, является целый пакет документов о стратегии и международном взаимодействии, трансграничном сотрудничестве, были так же разработаны План действий и Меморандум о взаимопонимании. Одной из важных инициатив, которою удалось воплотить в жизнь, это выпуск международного информационного бюллетеня «Saiga News», призванного распространять информацию о ситуации с видом среди участников его спасения. Примечательно то, что в последние годы бюллетень издается на национальных языках, где данный вид имеет

57


природные ареал. Помимо английского и русского издания, выходят переводы на казахском, узбекском, монгольском и китайском языках. Еще одним успехом является организация международного Альянса по сохранению сайгака. Альянс призван объединить усилия организаций разных стран, скоординировать их действия, в его задачи так же входят информировать общественность и содействовать, в том числе и финансово продвижению к главной цели – сохранить сайгака.

Одним из направлений сохранения данного вида является его содержание и разведение в полувольных условиях или в условиях вольерного содержания с целью создания популяции альтернативной природным. Такая работа уже ведется, в Аскания –Нова, Украина, в Яшкульском центре по разведению сайгака, Калмыкия и Зоопитомнике Московского зоопарка, Россия. Содержатся небольшие группы в Кельнском зоопарке Германия, зоопарке Хамутов ,Чехия, Парк дикой природы в Сан-Диего, США и Синцзянский центр диких животных, Китай. Такое небольшое количество организаций содержащих сайгака, связана, с тем, что для зоопарков данная антилопа является проблемным видом. Прежде всего, это связано с высокой степенью травматизма животных при вольерном содержании, склонность животных к заболеваниям и низкий показатель выживаемости молодняка. Но, не смотря ни на что, работа по содержанию сайгака в неволе продолжается. В конце 2008 года, комитет по природоохранным программам Харьковского областного благотворительного фонда «Народне Єднання» (русс. Народное Объединение), принял решение о создании на территории регионального ландшафтного парка «Парка дикой природы Ольхова балка», питомника по содержанию и разведению сайгака.

РЛП «Парк дикой природы Ольхова балка», был создан на землях принадлежащих Минобороны, по инициативе и финансировании благотворительного фонда «Народне Єднання». В ландшафтном отношении парк представляет собой типичную территорию лесостепной зоны Украины. Здесь имеется молодой лиственный лес, вторичная степь с небольшим байрачным лесом.

58


Спутниковая фотосъемка. Степной участок, окруженный по периметру лесом. В центре степного участка расположен байрачный лес. Территория РЛП «Парк дикой природы Ольхова балка»

Степной участок составляет 300 га. В данный момент ведутся работы по рекультивации степного участка парка, подготовлены опытные участки, для посадки и восстановления исконных степных растений данной территории. Параллельно ведутся работы по созданию противопожарной системы степного участка парка с целью предотвращения пожаров сухой травы в осенний и весенний периоды, которые, к сожалению, являются частым явлением из-за несознательности местного населения.

Степной участок в летний период. Территория РЛП «Парк дикой природы Ольхова балка».

На территории степного участка планируется создание двух питомников и одной экспозиции для посещения посетителями парка на специальном автотранспорте, по типу сафари-парка.

Первый питомник по разведению сайгака, второй по реабилитации и разведению хищных птиц (орла могильника, сокола-балобана, сипа и черного грифа).

Питомник по содержанию и разведению сайгака будет состоять из двух основных загонов. Первый загон предназначен для содержания только сайгака, тогда как второй представляет собой огороженный участок степи со смешанной группой животных (сайгак, муфлон, кулан). Этот загон будет доступен посетителям на специальном автотранспорте который принадлежит парку. Предусмотрены так же вольеры для ветеринарных нужд и искусственного выкармливания сайгачат.

Основной задачей питомника для сайгаков является не количественное, а качественное содержание и размножение животных, при этом в обязательные условия взяты не только высокие стандарты благополучия животных, но и прямой

59


генетический контроль за содержащейся группой. Дополнительной функциональной задачей питомника планируется, прежде

всего, его интеграция в международный стратегический план сохранения сайгака, популяризация и информирование общественности об Украине как исторической родине сайгака, и распространении идеи о возможном содержании данного вида в других природных степных парках и заповедниках на Юге и Юго-востоке Украины.

Формы работы питомника базируются на следующих принципах:А. Соблюдение законодательства как основа законного приобретения и

разведения. Парк как собственник питомника берет на себя обязательства соблюдения международного и национального права в области приобретения, перевозки, легальности мероприятий связанных с изъятием животных из природных условий.

Б. Условия для содержания и разведения. Загоны размером 150 и 100 га на степном участке парка планируются из сетчатого ограждения с элементами электроизгороди. Животным будет предоставлен полувольный режим содержания, с принципами не вмешательства. В зимний период планируется установка разборных, мобильных укрытий от снега, дождя и ветра.

В. Пищевые потребности. Основной рацион животных будет составлять естественный корм с возможностью пастись, а так же свободно выбирать для этого время и место. Предусмотрена подкормка животных в различные периоды года, вплоть до перехода на полнорационное кормление в зимний период. Разработаны методы постоянного присутствия в загонах воды и минеральных, а при необходимости и витаминных подкормок. Разработаны системы мониторинга за растительным покровом в загонах, а так же методы снижения нагрузки на растительность.

Г. Управление группой. Ведение племенной книги, а так же работ по идентификации особей. Генетический контроль посредством молекулярно-генетического анализа каждой особи. Работы по уменьшению инбридинга, подтверждение отцовства. Планирование рождаемости.

Д. Этологические исследования. Максимально использовать возможность наблюдения и исследования поведения животных. Создание возможности проведения специфических этологических исследований. Использование для нужд ученных возможностей видеонаблюдения.

Е. Ветеринария. Организация ветеринарного контроля и ветеринарной помощи, как основы благополучия. Ветеринарные исследования.

Ж. Образовательная деятельность. Привлечение студентов к работам связанных с осуществлением целей и задач питомника.

Нам предстоит достаточно сложная и кропотливая работа, с надеждой, что удастся внести свой вклад в дело спасения и сохранения символа евразийской степи сайгака

60


Литература.1. Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М.: ИКЦ «Академкнига».

2003. 431 с.2. Жирнов Л.В., Бекенов А.Б., Грачев Ю.А. Численность и ее изменение в историческое

время и современный период. Сайгак: Филогения, систематика, экология, охрана и использование (ред. В.Е. Соколов, Л.В. Жирнов). М.: Рссельхозакадемия. 1998. С. 216-232. 141

3. Холодова М.В., Неронов В.М. Опыт содержания сайгаков в зоопарках мира.4. Сайгак: Филогения, систематика, экология, охрана и использование (ред. В.Е.

Соколов, Л.В. Жирнов). М.: Рссельхозакадемия. С. 289-301.5. Банников А.Г., Жирнов Л.В., Лебедева Л.С., Фандеев А.А. Биология сайгака. М.:

Изд-во сельскохоз. лит-ры, журналов, плакатов, 1961. 336 с.6. Бекенов А.Б., Поле С.Б., Хахин Г.В., Грачёв Ю.А. Гибель от болезней и паразитарных

инвазий. //Сайгак. М., 1998, с. 247-252.7. Давлетова Л.В., Петрищев Б.И., Абатуров Б.Д. и др. Европейский сайгак: развитие,

морфология, экология. М.: Наука, 1997. – 191 с.8. Жирнов Л.В., Бекенов А.Б., Грачёв Ю.А., Проняев А.В. Размножение // Сайгак. М.,

1998, с.156-179.9. Треус М.Ю. Итоги реинтродукции антилопы сайга в Аскании-Нова // Тр.

Биосферного заповедника Аскания-Нова. 1998. С.100-101.10. Фадеев В.А. Сайгак в Казахстане (численность, промысел) // 4 съезд Всес. Териол.

Об-ва. М. 1986, т.3, с. 182-183.11. Фадеев В.А., Слудский А.А. Сайгак в Казахстане. Алма-Ата. 1982. 160 с.12. Хахин Г.В., Седов В.А. Пастереллёз у сайгаков // Болезни и паразиты диких

животных. М. 1992, с. 105-111.13. Spielman D., Brook B.W., Frankham R. Most species are not driven to extinction be-

fore genetic factors impact them// Proc.of Nat.Acad. Sci. USA. 2004. Vol.101. N 42. P. 15261-15264.

14. Saiga News (русская редакция бюллетеня) выпуск 1-8, 2005-2009

61


Удк 599.7.35.5: 591.166

воСПроиЗвоДительнаЯ СПоСобноСть винтороГоГо коЗла (CAPrA fAlConeri wAgn. 1839) в УСловиЯх ПолУвольноГо

СоДерЖаниЯ на ЮГе УкраинЫ

Стекленев е.П., доктор биологических наук, профессорбиосферный заповедник «аскания нова»

reProdUCtion ABility of MArkHor (CAPrA fAlConeri wAgn., 1839) in seMi – freely Conditions in tHe soUtH of UkrAine

steklenev e.P., doctor of biological science, professorBiospher reserve Askania novaключевые слова: винторогий козел, половой сезон, репродукция

Винторогий козел – житель лесной полосы Гималайских гор, горных хребтов юга средней Азии, Кашмира. Пенджаба. В естественных условиях животные этого вида спариваются в ноябре-декабре и рождают потомство в апреле-мае, когда начинает таять снег и появляется зеленая трава. Половой сезон в условиях зоопарков Европы ограничен 2-3 осенними месяцами (Hafez, 1952). В наше время заслуживает внимание дальнейшее изучение особенностей размножения этого вида животных в несвойственных для него условиях, что даст возможность более детально определить его акклиматизационные возможности, и будет способствовать целенаправленному проведению работ по обогащению его генофонда..

В результате наблюдений за половым поведением винторогого козла в условиях полувольного содержания на юге Украины установлено, что начало сезона половой активности у него почти совпадает с таковым в естественных условиях его проживания. Первые случаи проявления половой активности у взрослых самок и их спаривания отмечены в первой декаде декабря. Максимальное количество самок (35,5% при n=166) проявило половую активность и оплодотворилось в третьей декаде декабря. Несколько меньше самок (25,9%) оплодотворилось в первой декаде января. На протяжении второй и третьей декады января оплодотворилось еще 3,01% самок и это в основном молодые самки, которые в этот период достигли половой зрелости. В летний и ранне-осенний период самки винторогого козла в условиях юга Украины половой активности не проявляют, хотя, судя за состоянием яичников исследованных в этот период самок (n=9), их гормональная активность не прекращается полностью и с интервалами, равными одному половому циклу происходит развитие фолликулов, которые не овулируют, а, достигнув определенной стадии развития, дегенерируют

62


с образованием островков лютеиновой ткани. Соответственно периоду половой активности и спаривания, рождение потомства также проходит в довольно сжатые сроки, которые охватывают в основном ІІ и ІІІ декаду мая и І-ІІ декаду июня. За этот период рожает до 90% самок; у остальных самок роды происходят в июле-августе.

Сроки проявления половой активности самками винторогого козла и их плодотворного спаривания в большой мере определяется климатическими и кормовыми условиями того или иного года, степеню их упитанности, подготовкой к спариванию. Судя по половому поведению самок, сроками их спаривания и рождения потомства на протяжении 11-ти смежных лет (1992-2003гг), сезонность их размножения имеет довольно стабильный характер. Зачатие у них в большинстве случаев проходит в сравнительно короткий период, равный примерно одному половому циклу. Наиболее ранние сроки проявления половой активности отмечены в 1992 году, в котором подопытные самки начали проявлять половую активность уже в начале І декады декабря (учтено 9 особей) и оплодотворились на протяжении 16-ти дней. На протяжении 8-ми последующих лет все подопытные самки начали проявлять половую активность и спариваться в ІІ декаде декабря. Хотя только в 1993, 1995, 1999 и 2001 году они оплодотворились за период, равный одному половому циклу. В другие годы проявления половой активности и зачатие у большинства самок началось в такие же сроки, хотя их завершение осуществлялось на протяжении значительно большего периода времени (25-60 дней).

Будучи малоплодными животными, самки винторогого козла в естественных условиях рожают одного-двух козлят. В условиях заповедника «Аскания-Нова» многоплодие самок винторогого козла за учтенный нами 12-летний период составило 135,4%; из 106 учтенных случаев «окота» в 72-х родилось по одному, в 34-х по двое козлят.

Как и проявление половой активности, многоплодие самок винторогого козла в большой степени определяется климатическими и, особенно, кормовыми условиями того или иного года, а следовательно, и состоянием упитанности животных в период их спаривания и беременности. Судя по полученным нами данным, наиболее благоприятным в этом отношении оказался 1992/1993 год, в котором все подопытные самки (n=3) родили по двое козлят. Относительно благоприятными оказались 200/01 и 2002/03 годы, в которых многоплодие подопытных самок достигало соответственно 157,1 и 142,8%. Средним (133,3 – 136,3%) оно оказалось в 1994/95, 1995/96 и 2001/02 годах;. несколько заниженным (122,2 – 125,0%) – 1992/93, 1996/97, 1997/98 и 1999/2000, и явно заниженным (112,5 – 115,4%) – в 1993/94 и 1998/99 годах. Установлено, что годы повышенного многоплодия самок винторогого козла оказались более удачными и для рождения особей женской стати. Их количество в приплоде 1992 года составило 83,3% (1/5). Почти на таком же уровне (75%) оказалось соотношение самцов и самок (2/6) в приплоде 2002 года. Наглядным в этом отношении оказался и 1995 год;

63


количество женских особей в приплоде подопытных самок составило 66,6% (5/10). Довольно заниженным оказался показатель соотношения самцов и самок в 1996 и 2001 году и составил соответственно 53,3 (7/8) и 54,5 (5/6)%. Во все остальные годы отмечено явное превалирование особей мужской стати; особенно большим оно было в 1998 (10/1) и 2000 году (9/2); несколько меньшим - в 1994 (6/3), 1997 (9/6) и 1999 году (9/6). Можно предположить, что в климатическом и кормовом отношении, эти годы в условиях юга Украины оказались не весьма благоприятными.

Все козлята, полученные за опытный период были хорошо развиты; их средняя масса составила 2,36±0,07 кг, в т.ч. самцов 2,46±0,07 и самок 2,27±0,03 кг. Отмечена значительная разница в массе козлят-одиночек и двойнях: по массе самцов-одиночек и двоен она составила 0,19 кг при абсолютных показателях соответственно 2,56±0,08 и 2,37±0,08 кг; по массе самок-одиночек и двоен – 0,34 кг при абсолютных показателях соответственно 2,45±0,06 и 2,11±0,06 кг. Учитывая относительно хорошую молочность матерей, которая в большой мере определяется условиями их полноценного кормления, козлята в послеродовой период развивались довольно успешно.

Самцы винторогого козла в условиях юга Украины первые признаки половой активности начинают проявлять в начале осени, параллельно с активизацией сперматогенеза, который имеет явно выраженный сезонный характер. Первые признаки активизации сперматогенеза отмечены уже в середине лета. Об этом свидетельствуют значительные увеличения массы семенников, обусловленные разрастанием герминативного эпителия извитых канальцев в их строме, появление полноценных спермиев. Концентрация спермиев в хвостовых отделах придатков семенников одного самца, исследованного во ІІ декаде июля, становила уже 2,74 млн/ мм3 при массе семенников 62,9 г. Максимальная концентрация спермиев в хвостовых отделах придатков семенников взрослых самцов отмечена в зимний период (ноябрь-декабрь); она составляла в среднем 7,64 млн/мм3 (n=3) при массе семенников 134 г. Самцы в этот период ведут себя весьма активно. Начиная с середины зимы происходит явное понижение активности сперматогенеза, а в весенний период (март-апрель) он полностью прекращается, хотя депонированный в придатках семенников запас спермиев в анабиотическом состоянии сохраняется еще некоторый период .

Половой зрелости самцы винторогого козла достигают в основном на 3-м году жизни в сезон повышенной половой активности этого вида животных, то есть в осенний период. Активизация сперматогенеза у них начинается значительно позже, чем у взрослых самцов и проходит несколько медленнее. Из 3-х самцов, исследованных в возрасте 2-х лет и 2-х месяцев в летний период, явная активизация сперматогенеза отмечена только у одного, исследованного в ІІІ декаде августа. Небольшое количество спермиев в хвостовых отделах придатков их семенников отмечено только у одного; у двух остальных сперматогенез достигал только стадии сперматид. У одного самца исследованного на месяц позже отмечено уже наличие сравнительно большого

64


количества активных спермиев; их концентрация составляла 0,18 млн/мм3. Физиологическая зрелость таких самцов дает им возможность конкурировать с взрослыми самцами за обладание самками и успешно спариваться с ними.

На основании проанализированных нами данных, можно прийти к выводу, что, несмотря на несовсем благоприятные как в климатическом, так и кормовом отношении условия содержания винторогого козла на юге Украины, его воспроизводство проходит сравнительно успешно при сохранении приплода в пределах 85-95%.

УДк 636.082:57.086.13:591.463.1

криоконСервациЯ эПиДиДимальнЫхСПерматоЗоиДов Самцов как метоД СохранениЯ ГеноФонДа

СельСкохоЗЯйСтвеннЫх и Диких ЖивотнЫх

ковтун С.и., доктор сельскохозяйственных наук, старший научный сотрудник, зав. лаборатории клеточной инженерии института разведения и генетики животных Украинской академии аграрных наук

[email protected]

ключевые слова: эпидидимальные сперматозоиды, генофонд, биотехнологические методы, криоконсервация

CryoPreserVAtion of MAle’s ePididyMAl sPerMAtoZoA As MetHod of fArMing And wild AniMAl’s gene Pool PreserVAtion

kovtun svitlana ivanivna, doctor of Agriculture sciences, senior scientist, Head of Cell engineering laboratory of institute of Animal Breeding and genetics of Ukraine Academy of Agriculture sciences

key words: epididymal spermatozoa, gene poll, biotechnology methods, cryopreservation

С 2004 года на Институт разведения и генетики животных УААН возложены обязанности главного учреждения по организации и выполнению новой научно-технической программы УААН «Сохранение генофонда сельскохозяйственных животных». Постановлением Кабинета Министров Украины от 19.08.02, № 472- р функционирующему при институте банку генетических ресурсов животных присвоен статус национального достояния. Задания программы предусматривают мероприятия по созданию генофондных стад в сочетании с криоконсервацией гамет

65


и эмбрионов, длительным сохранением генетического материала в генофондових банках. Генетический материал в виде замороженных гамет и эмбрионов, который находится в банке генетических ресурсов института, обеспечивает функционирование «виртуального генофондного криостада» и является достаточным для воссоздания полноценного стада животных (Буркат В.П. і ін., 2007).

Современные биотехнологические методы, которые основаны на получении и использовании сперматозоидов из придатков семенников (эпидидимальные), необходимы для более полного использования генетического материала животных. Криоконсервация эпидидимальных гамет самцов является дополнительным методом получения потомства от животного после его естественного использования. Эта технология особенно важна при работе с дикими животными, когда использование эякулируваных сперматозоидов невозможно или животное неожиданно гибнет (Максудов Г.Ю., 2005., Шишова Н.В. и др., 2007).

Проводя исследования на сельскохозяйственных животных, биотехнолог имеет возможность получать для экспериментов достаточно большое количество семенников и изучать при этом физиологические особенности эпидидимальных сперматозоидов. В Институте разведения и генетики животных УААН разработана технология использования эпидидимальных сперматозоидов быков и хряков для получения эмбрионов вне организма и для сохранения генофонда животных (Пат. 33658 Україна, МПК А 61D 19/02). При этом используется в практике воспроизводства животных комплексный подход криоконсервации эпидидимальных сперматозоидов (Ковтун С.И. и др., 2007., Буркат В.П. і ін., 2008). Методология практического применения эпидидимальных сперматозоидов основана на последовательном повышении генетического потенциала животных и одновременном сохранении племенных ресурсов.

Сохранение жизнеспособности эпидидимальными сперматозоидами после размораживания позволяет использовать их для селекционно-племенной, исследовательской работы при создании новых пород, типов и линий. Также особое внимание следует уделить перспективе использования эпидидимальных сперматозоидов для акклиматизации и одомашнивания животных.

Технология криоконсервации эпидидимальных сперматозоидов крупного рогатого скота, свиней (Ковтун С.І., 2007), овцебыков, яков, сайгаков, архаров (Багиров В.А., 2006) открывает новые перспективы сохранения генетических ресурсов редких, уникальных и исчезающих видов животных. Возможность использования эпидидимальных сперматозоидов разных видов животных была установлена в 1910 году И.И. Ивановым на разных видах животных. Также он установил, что на 12 сутки хранения эпидидимальные сперматозоиды были подвижны. Криоконсервация эпидидимальных гамет на сегодня осуществлено также у снежного барана (Шайдулин И.Н., 2004), зубра (Абилов А.И. и др., 1994). В исследованиях

66


Г.Ю. Максудова (2005) установлено, что эпидидимальные сперматозоиды, выделенные из придатков семенников козла после 9 суток хранения при +4°С, пригодны для искусственного осеменения. В наших исследования 65 – 70 % эпидидимальных сперматозоидов, которые выделяли через 3 суток хранения семенников хряков при +5°С, были подвижны. После размораживания 20 % таких гамет сохранили подвижность (Ковтун С.І., 2006). В исследованиях Ю.К. Доронина с соавторами (2005) сперматозоиды из эпидидимисов мышей сохраняли подвижность после 18 суток хранения придатков при +4°С. Таким образом, жизнеспособность эпидидимальных сперматозоидов млекопитающих сохраняется продолжительное время при условии хранения придатков вместе с семенниками при температуре +4°С – +5°С. Это обеспечивает эффективность работы с этими гаметами и позволяет транспортировать биологический материал на большие расстояния.

Нами за последние годы разработан комплексный анализ генетических аспектов эмбриогенеза крупного рогатого скота и свиней in vitro с использованием комплексной характеристики эпидидимальных сперматозоидов. Отработаны подходы криоконсервации таких гамет быков и хряков, проверена их оплодотворяющая способность при получении эмбрионов вне организма. Установлено, что сниженная температура до +4°С предотвращает деструктивные изменения эпидидимальных сперматозоидов хряков и обеспечивает выживание не менее 10 суток со средней активностью гамет 35%.

Не обнаружено негативного влияния наличия остатка сперматидной цитоплазмы на хвостиках эпидидимальных сперматозоидов хряков на формирование зародышей вне организма. Установлено, что при использовании сред «Биоконсан» и «ЛГЖ» для замораживания эпидидимальных сперматозоидов хряков уровень формирования зигот и развитие эмбрионов in vitro составляет 52,9% и 55,2%, а также 16,6% и 21%, соответственно. Получен высокий уровень развития эмбрионов in vitro после использования сперматозоидов, полученных из придатков семенников хряков различных возрастных групп (1,5; 2; 3,5; 4 года).

Разработан комплексный подход при исследовании эпидидимальных сперматозоидов быков. Установлена низкая эффективность использования их для замораживания, когда такие гаметы получали от быков, которых не использовали в качестве производителей. После осеменения in vitro яйцеклеток коров свежеполученными эпидидимальными сперматозоидами уровень формирования зигот более высокий (85,9%), сравнительно с криоконсервированными сперматозоидами (64,3%).

В вышеупомянутых опытах использовали эпидидимальные сперматозоиды, выделенные из хвостовой части придатка семенника (cauda epididimis) животных. Установлено, что 75% зрелых сперматозоидов млекопитающих находятся в хвостовой части эпидидимиса, депонируются до эякуляции и являются функционально

67


полноценными. Разработан метод интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов в яйцеклетки (ICSI). При использовании этого метода успешно применяются эякулированные, эпидидимальные, тестикулярные сперматозоиды, а также сперматиды. Для проведения ICSI вводится один сперматозоид в цитоплазму яйцеклетки, при этом качество и подвижность сперматозоидов не влияет на частоту оплодотворения и развития эмбрионов. Выполнение работ по криоконсервации эпидидимальных сперматозоидов не только из хвоста придатка, а также из головки и тела эпидидимиса создает условия для более полного сохранения и рационального использования генетических ресурсов редких и исчезающих пород сельскохозяйственных животных, а также различных видов диких животных.

УДк 502.74: 591.613: 591.615 оПЫт латГальСкоГо ЗооПарка (ДаУГавПилС, латвиЯ) в

иЗУчении и Сохранении ПрироДнЫх ПоПУлЯций BoMBinA BoMBinA и eMys orBiCUlAris в латвии

Пупиня айя 1, Пупиньш михаилс2

1,2latgale Zoo, 1,2daugavpils University (latvia)[email protected], [email protected]

введение. Краснобрюхая жерлянка Bombina bombina (Linnaeus 1761) и Европейская болотная черепаха Emys orbicularis (Linnaeus 1758) являются охраняемыми видами герпетофауны Европы (Fritz 2003). В Латвии проходит северная граница их ареалов в Европе (Meeske et al. 2006; Kuzmin et al. 2008). В Красной книге Латвии для B.bombina отмечены только две известные в течение многих лет локализации в районах Bauska и Daugavpils, E.orbicularis указана, как уже исчезнувший вид в Латвии, при этом отмечена существующая точка находки болотной черепахи в районе Dobele (Berzins 2003a,b). Редкость этих видов послужила основанием для занесения их в список охраняемых животных Латвии (Ministru kabinets 2000). Одним из главных вероятных лимитирующих факторов для этих двух видов в Латвии является сравнительно холодный климат (LVGMA 2009), особенно холодные и малоснежные зимы, которые являются опасными для зимующих на суше B.bombina и для зимующих после вылупления в почве ювенильных E.orbicularis (Fritz 2003; Mitrus, Zemanek 2003). На популяции B.bombina и E.orbicularis могут негативно влиять и факторы антропогенного происхождения: загрязнение среды, мелиорация, транспорт, инвазивные виды и др. (Fritz 2003; Ayres, Cordero 2004; Drews 2005). Это делает актуальной реaлизацию мер по сохранению этих видов в Латвии.

материалы и методы. Деятельность зоологов Латгальского зоопарка по сохранению B.bombina и E.orbicularis в Латвии начата с момента создания зоопарка

68


и комплексно включает в себя: 1) научные исследования (в сотрудничестве с Даугавпилсским Университетом); 2) видоохранные мероприятия; 3) информирование населения.

Bombina bombina. Научные исследования: 1) исследование распространения; 2) исследование численности; 3) исследование закономерностей распространения в Латвии; 4) описание биотопов и микробиотопов; 5) изучение фенологии; 6) исследование состава трофических объектов методом анализа экскрементов при помощи микроскопа ZEISS SteREO Lumar.V12, программы AxioVision AC, фотокамеры AxioCam MRc5. ZEISS.; 7) исследование вентральных фенокомплексов; 8) морфометрические иссследования; 9) исследование трофических предпочтений в эксперименте. Видоохранная деятельность: 1) частичная зоокультура (сбор в природе яиц и амплексных пар, выведение личинок в лаборатории и содержание их до метаморфоза, подращивание ювенильных особей, создание резервной группы производителей в зоокультуре); 2) пополнение существующих локализаций; 3) создание новых локализаций (выпуск ювенильных особей в новых биотопах); 4) оптимизация биотопов; 5) создание новых биотопов.

Emys orbicularis. Научные исследования: 1) исследование распространения; 2) описание динамики и численности находок; 3) исследование закономерностей распространения в Латвии (сравнение расположения находок с территориями долин рек, климатическими, фитогеографическими и др. зонами; 4) описание биотопов; 5) исследование повреждений в результате нападений хищников и наезда транспорта; 6) сбор данных о репродуктивной экологии; 7) морфометрические иссследования; 9) поиск экзотических видов черепах в природе в Латвии; 10) оценка вылова людьми; 11) экспериментальное исследование терморегулирующей активности черепах при содержании в условиях естественного климата Латвии (55°50’ N; 26°29’ E, H 105 m) (станция Vantage Pro® Plus, программа WheaterLink 5.7. for Vantage Pro). Видоохранная деятельность: 1) сбор ранее пойманных особей E.orbicularis у населения и получение их из Рижского зоопарка; 2) создание и содержание бридинговой группы; 3) разведение и выращивание молодых черепах; 4) экстракция из природы и прием у населения экзотических черепах и аллохтонных E.orbicularis, содержание их в шелтере.

результаты. Bombina bombina. Результаты исследований в 2008 г. : 1) впервые зарегистрированы и картированы 66 новых локализаций и 5 новых субпопуляций; 2) всего в Латвии в 2008 году зарегистрировано 309 вокализирующих самцов; 3) установлены закономерности распространения жерлянок в Латвии; 4) описаны 47 биотопов B.bombina в Латвии; 5) описана фенология вида; 6) выявлено предпочтение как корма наземных насекомых по сравнению с головастиками в эксперименте; 7) исследованы вентральные фенокомплексы у 72 экземпляров; 8) установлена статистически достоверная разница в весе у самцов и самок; 9) определены группы трофических объектов в природе. Видоохранная деятельность: 1) с 2004 г. создана

69


частичная лабораторная зоокультура, в 2008 г. получены 1120 ювенильных особей; 2) с 2006 г. проводится пополнение локализации Ilgas и создание локализации Razna; 3) оптимизированы биотопы Ilgas, Ainavas; 4) создан новый биотоп в локализации Ainavas.

Emys orbicularis. Результаты исследований в 2008 г. : 1) обнаружены и картированы 85 точек находки черепах; 2) исследована динамика и численность находок; 3) установлены взаимосвязь распространения в Латвии с зонами температур; 4) описаны 59 биотопов; 5) исследованы повреждения панциря у 17 черепах; 6) собраны данные о репродуктивной экологии; 7) проведены морфометрические иссследования 17 взрослых особей и 42 яиц, 35 ювенильных особей; 8) впервые регистрированы Trachemys scripta elegans и Pelodiscus sinensis в Латвии; 9) установлена корелляция терморегулирующей активности черепах с климатическими факторами. Видоохранная деятельность: 1) создана и содержится в вольере бридинговая группа; 2) черепахи ежегодно разводятся (в 2008 г. вылупилась 21 особь) и выращиваются в лабораторных условиях; 3) из природы изъяты 8 экзотических черепах; 4) в приюте содержится 57 Trachemys scripta elegans, полученных у населения.

Информационная деятельность: в 2008 году рассказано об охране целевых видов 28450 посетелям зоопарка; рассказано о целевых видах на 322 экскурсиях, 32 уроках биологии, 10 лекциях студентам, 124 консультациях по телефону; нескольких статьях в газетах и телепередачах. Созданы специальные страницы на сайте www.latgalezoo.eu, изданы две книги (Pupina, Pupins 2007; Pupins, Pupina 2007b). На основе проведенных исследований разработаны и утверждены Министерством среды Латвии два официальных Плана охраны видов (Pupins, Pupina 2006; Pupins, Pupina 2007a). Результаты отдельных исследований целевых видов опубликованы в 7 научных статьях; презентованы на 25 международных научных конференциях в Латвии, Германии, Польше, Португалии, России, Эстонии; опубликованы в 8 тезисах в сборниках научных конференций.

Дискуссия. Несомненно, что состояние B.bombina и E.orbicularis в Латвии требует дальнейшей реализации мер по их исследованию, охране и воспроизведению. Такие мероприятия, в пределах своей компетенции и доступного объема ресурсов реализуемые Латгальским зоопарком, в целом близки мерам, принимаемым в других странах Европы (Delavaud et al. 1998; Ferri et al. 1998; Fritz 2003; Cordero, Ayres 2004; Ottonello, Salvidio 2007). Следует отметить, что реализация таких мер Латгальским зоопарком в Латвии осложняется на территориях, принадлежащих частным собственникам.

благодарности. Латгальский зоопарк благодарит за сотрудничество и поддержку в исследовании и сохранении целевых видов: Riga National Zoo; Latvian Environmental Protection Fund; Nature protection board; Daugavpils Municipality; Latgale Ecological Society; Daugavpils University, European Structure Funds: 2004/003/ VPD1/ ESF/ PIAA/ 04/NP/ 3.2.3.1./ 0003/ 0065; Life-Nature Nature 2000: Life-Bombina LIFE04NAT/D/00028; LIFE04NAT/LV/000199.

70


Литература1. Ayres C.F., Cordero R. A. (2004): Asymmetries and accessory scutes in Emys orbicularis

from Northest Spain. -Biologia, Bratislava. 59 / suppl. 14: 85-88.2. Berzins A. (2003a): Purva brunurupucis Emys orbicularis Linnaeus, 1758. -in: Andrusaitis

G. (red.): Latvijas sarkana gramata. - LU Biologijas instituts: 96-97. 3. Berzins A. (2003b): Sarkanvedera ugunskrupis Bombina bombina Linnaeus, 1761. -in:

Andrusaitis G. (red.) Latvijas Sarkana gramata. LU Biologijas instituts: 82-83.4. Cordero R.A., Ayres C.F. (2004): A management plan for the European pond turtle

(Emys orbicularis) populations of the Louro river basin (Northwest Spain). -Biologia, Bratislava, 59/suppl. 14.: 161-171.

5. Delavaud I., Seguin S., Veysset A. (1998): Protection of the European pond turtle in Charente Maritime. -in: Fritz U. et al. (eds): Proceedings of the EMYS symposium Dresden 96. -Mertensiella, 10: 292-295.

6. Drews A. (2005): Gebietfremde amphibien und reptilien in Schleswig-Holstein. –in: Atlas der Amphibien und Reptilien Schleswig-Holsteins. -LANU: 172-176.

7. Ferri V., Di Cerbo A.R., Pellegrini M. (1998): „Serranella Emys Project» - preservation initiatives of Emys orbicularis populations in Abruzzo. -in: Fritz U. et al. (eds): Proceedings of the EMYS Symposium Dresden 96. -Mertensiella, 10: 95-101.

8. Fritz U. (2003): Die Europaishe Sumpfshildkrote (Emys orbicularis). -Laurenti Verlag: 1-224.

9. Kuzmin S.L., A.Pupina, M.Pupins & G.Trakimas (2008): Northern border of the distribution of the red-bellied toad (Bombina bombina). -Zeitshrift fur Feldenherpetologie 15: 1-14.

10. LVGMA («Latvijas Vides, geologijas un meteorologijas agentura») [2009] http://www.meteo.lv

11. Meeske A.C.M., Pupins M., Rybczynski K. (2006): First results on the distribution and condition of the European pond turtle (Emys orbicularis) at the northern edge of its distribution in Lithuania and Latvia. -Zeitshrift fur Feldenherpetoloģie, 13: 1-29.

12. Ministru kabinets (2000): Ministru kabineta 2000.gada 14.novembra noteikumi Nr.396 «Par ipasi aizsargajamo sugu un ierobezoti izmantojamo ipaši aizsargajamo sugu sarakstu» ar grozijumiem, kas izdariti lidz 27.07.2004. -Vestnesis, 413/417.

13. Mitrus S., Zemanek M. (2003): European Pond Tortoise, Emys orbicularis, neonates overwintering in the nest. -Herpetoloģical Journal, Vol.13: 195-198.

14. Ottonello D., Salvidio S. (2007): La conservazione della testuggine palustre Emys orbicularis in Liguria: ol progetto EMYS. -Quad. Staz. Ecol. Civ. Mus. St. nat. Ferrera, 17: 127-131.

15. Pupina A., Pupins M. (2007): Sarkanvedera ugunskrupis Bombina bombina (Linnaeus, 1761) un tā aizsardziba Latvija. - Latgales Ekologiska Biedriba: 1-143.

16. Pupins M., Pupina A. (2006): Sarkanvedera ugunskrupja Bombina bombina (Linnaeus,

71


1761) sugas aizsardzibas plans Latvija. -Dabas aizsardzibas parvalde, Riga: 1-82.17. Pupins M., Pupina A. (2007a): Eiropas purva brunurupuca Emys orbicularis (Linnaeus,

1758) sugas aizsardzibas plans Latvijā. - Latgales Ekologiska Biedriba: 1-104.18. Pupins M., Pupina A. (2007b): Eiropas purva brunurupucis Emys orbicularis (Linnaeus,

1758) un ta aizsardziba Latvija. -Latgales Ekologiska Biedriba: 1-162.

Динамика иЗменениЯ ПовеДениЯ У молоДнЯка льва (PAntHerA leo) в раннем ПоСтнатальном ПериоДе При иСкУССтвенном

вЫкармливании в каЗанСком ЗооботСаДУ

Петрова н.а.,* зооинженеркурбашкина С.а.*, заведующая отделом хищных животных* казанский зооботсад

В русскоязычной литературе мало данных об искусственном выкармливании детенышей кошачьих, хотя эта проблема всегда представляла интерес для сотрудников зоопарков. В связи с этим проведенные нами исследования могут оказаться полезными.

Наблюдения за детенышами льва (Panthera leo) проводились в Казанском зооботсаду. Искусственно выкармливались львята в возрасте от 5 дней до 3 месяцев. Исследования суточной активности проводились методом «временных срезов», где акты поведения регистрировались сплошным протоколированием в течение 24 часов с интервалом в 15 секунд. Бюджет времени рассчитывался по пяти основным поведенческим проявлениям детенышей. Полученные результаты приводятся в таблице № 1.

Таблица 1. Распределение суточного бюджета времени детеныша льва (в возрасте 1 месяц)

Акты

Среднее кол-во

актов за сутки

продолжительность актов за сутки, мин

продолжительность одного акта, мин

min max среднее min max

сон 8,6 547 1065 833,4 2 557подвижность и игры 13,6 72 594 350,3 1 131

питание 6,7 30 251 91,6 2 45самоочищение 5,2 3,15 9,8 5,6 0,5 1,4

дефекация и мочеиспускание 9,3 3,7 10,3 5,4 0,3 1,9

Также нами были рассчитаны и объединены в таблицу № 2 вариабельность и степень варьирования основных поведенческих проявлений детенышей:

72


Таблица 2.Степень варьирования и вариабельность основныхповеденческих проявлений детеныша льва (в возрасте 1 месяц)

акты продолжительность акта за сутки, мин

среднеквадратическое отклонение коэффициент вариации

сон 833,42±13,47 129,29 15,5подвижность и

игры 350,3±17,7 169,84 48,48

питание 91,6±7,27 13,06 26,7самоочищение 5,6±0,3 1,07 17,15

мочеиспускание и дефекация 5,4±0,6 0,92 13,1

Общеизвестно, что главным показателем нормального роста и развития детеныша является стабильный привес. В ходе исследований нами регулярно проводилось взвешивание львят. На основе полученных данных был построен график № 1, который наглядно показывает постоянный и непрерывный прирост массы тела детенышей ежедневно на 80-200 г.

График 1. Изменение массы тела детеныша льва в зависимости от возраста (от 4 дней

до 3 месяцев)

73


В ходе наблюдений мы регулярно отмечали время и продолжительность сна наших детенышей. В результате нами был построен график № 2.

График 2. Изменение продолжительности сна во времени в зависимости от возраста

(от 4 дней до 3 месяцев)

На основании полученных данных можно констатировать, что за время исследований продолжительность сна в течение суток уменьшилась в среднем почти на 6 ча негопадов и ветров детеныши вели себя крайне неспокойно, всюду следовали за человеком, мало и беспокойно спали. То же относится и к дням так называемых «магнитных бурь».

Наряду с измерением продолжительности сна нами постоянно фиксировались и проявления двигательной активности, а также игр. Исследователи, занимающиеся наблюдениями за взрослыми животными, как правило, могут четко разграничить двигательную активность и игру. К сожалению, у детенышей провести такую границу практически невозможно (исключения составляют все те же дни с резкой переменой погоды), так как малыши постоянно придумывают себе новые развлечения и игрушки. Поэтому график № 3, построенный на основе наших наблюдений, отражает одновременно и двигательную активность, и игры детенышей.

74


График 3. Изменение подвижности во времени в зависимости от возраста (от 4 дней до

3 месяцев)

Как видно из данного графика, за три месяца продолжительность активности и игр возросла с 1 до 10 часов, хотя ежесуточные показатели также сильно различались.

Длительные наблюдения за детенышами по мере их взросления позволили нам выяснить изменение соотношения «сон-бодрствование» у детенышей разного возраста. При составлении диаграмм нами использовались усредненные данные за каждый месяц.

Диаграмма 1 Диаграмма 2

Первый месяц

сон;87%

Бодрствование;13%

Второй месяц


сон;75%

75


Диаграмма 3

Третий месяц

сон;60%


Из диаграмм 1-3 следует, что с возрастом от 1 до 3х месяцев процент бодрствования увеличивается с 13% до 40%, в то время как сон уменьшается с 87% до 60%.

Мы надеемся, что результаты, полученные нами, помогут понять изменения в поведении в зависимости от возраста для успешного выкармливания и выращивания детенышей кошачьих.

Список использованной литературы:1. Ердаков Л. Н. Простая методика регистрации суточной активности. Изв. СО

РАН СССР, 1978, с. 16-23, 47-61.2. Лакин Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1968.3. Попов С. В., Ильченко О. Г. Методические рекомендации по этологическим

наблюдениям за млекопитающими в неволе. М., 1990, с. 16-24, 26-27.4. Шило Р. А., Чубыкина Н. Л., Ердаков Л. Н. Сохранение ритма активности в

изменившихся условиях среды. Сборник научных работ: Новосибирский зоопарк. Разведение диких животных. Под ред. Шило Р. А. Новосибирск, 1997, с. 87-88.

5. Altmann J. Observational study of behavior, sampling methods. Behavior, 49, 1974, pp. 227-267.

6. DeCarvalho, C. T.: Comparative Growth Rates of Hand-reared Big Cats; International Zoo Yearbook Vol. 8; Zoological Society of London, 1968, p. 56-59.

76


УДк 597.8; 502.743; 591.463.1

Сохранение ЖиЗнеСПоСобноСти ПоСтмортальнЫх СПерматоЗоиДов травЯной лЯГУШки rAnA teMPorAriA и Значение Феномена ДлЯ СоЗДаниЯ криобанка амФибий

Шишова н.в1., к.б.н., максудов Г.Ю2. к.б.н., Утешев в.к1., к.б.н. 1институт биофизики клетки ран, 2московский Зоопаркключевые слова: криобанки, амфибии, постмортальные сперматозоиды

VitAlity of Post-MortAl sPerMAtoZoA of Brown frog rAnA teM-PorAriA And tHe VAlUe of tHis PHenoMenon for AMPHiBiAn genoM

BAnk

shishova n.V1. Ph.d., Maksudov g.yu. 2 Ph.d.,Uteshev V.k. 1 Ph.d.,1institute of Cell Biophysics of russian Academy of sciences, 2Moscow Zookey words: genome bank, amphibia, postmortem spermatozoa

введениеДревнейшие обитатели суши, амфибии, сохранили ряд архаических черт со

времен девонского периода (около 375-400 млн. лет назад). Возможно, поэтому они оказались так уязвимы сейчас. Численность большинства из 5700 видов земноводных сокращается во всем мире. Так, 1856 видов (32%) амфибий находятся в угрожающем положении, 422 вида (7.4%) из них на грани исчезновения, а 122 вида исчезли за последние 30 лет. (Pounds et al., 2006; Stuart et al. 2004). Нарушение естественной среды обитания, болезни, деятельность человека, являются основными причинами их вымирания. Ситуация такова, что в ближайшем будущем можно ожидать исчезновения сотен видов амфибий. Предпринимаемые меры: охрана территорий, разведение в неволе, борьба с болезнями, экопросвещение и т.п., безусловно способствуют сохранению видов, но гарантии сохранения генофонда амфибий не дают. Спасти генофонд исчезающих видов возможно, создавая криобанки, хранящие при температуре жидкого азота образцы генетического материала. Криобанки дают возможность «застраховаться» от безвозвратной утери генофонда редкого вида и использовать сохраненный материал для восстановления вида даже спустя сотни лет. В современных условиях «криобанкирование» приобретает особую важность.(Uteshev, Gakhova 2004; Максудов, 2004).

В криоконсервации гамет амфибий есть определенные успехи. Для многих видов получены подвижные заморожено-оттаяные сперматозоиды. ( Browne et al., 2002a,b; Michael et al., 2004; Утешев с соавт., 1999). Для Rana temporaria, Bufo bufo (Утешев

77


с соавт., 1999), Bufo marinus (Browne et al.,, 2002b), Xenopus laevis, Xenopus tropicalis (Michael et al., 2004) получены полноценные зародыши после ИО икры заморожено-оттаяной спермой.

В настоящее время сперму бесхвостых амфибий для криоконсервации в основном получают после забоя животных. Это крайне нежелательно при работе с редкими и малочисленными видами амфибий. Прижизненное получение семени путем гормонально-индуцированной спермиации не отработано для диких видов. Важным источником получения сперматозоидов амфибий для криобанков могут стать постмортальные образцы, т.е. сперматозоиды от самцов, погибших в зоопарках или природе. Методы работы с постмортальными сперматозоидами и их использование для криобанкирования в последние десятилетия успешно разрабатываются в териологии (Maksudov et al., 2009).

При внезапной гибели животных редко бывает возможным немедленное извлечение и криоконсервация семени. Поэтому весьма важен вопрос длительности сохранения жизнеспособных сперматозоидов в семенниках погибших животных. Это даст возможность сохранить, казалось бы, безнадежно потерянный генетический материал. В данной работе исследовалось выживание и сохранение оплодотворяющей способности сперматозоидов при хранении их в тушках травяной лягушки (Rana temporaria) при +4°С.

материалы и методыВзрослых половозрелых самцов травяной лягушки (Rana temporaria) отлавливали

в природе и содержали в лаборатории. Лягушек забивали методом декапитации. У контрольных самцов сперматозоиды выделяли сразу после умерщвления, а тушки экспериментальных животных помещали в холодильник и хранили при температуре +40С. Всего было исследовано 34 самца: 12 животных, сперматозоиды которых анализировали сразу после забоя, были контролем. Семенники остальных 22 самцов были исследованы после хранения от 2 до 7 суток. Определяли общую и поступательную подвижность сперматозоидов, состояние клеточных мембран, их оплодотворяющую способность и степень полноценности зародышей, полученных с использованием этих сперматозоидов.

Для анализа состояния сперматозоидов готовили суспензию: один семенник на 0,1 мл воды. Подвижность гамет определяли визуально на микроскопе Сarl Zeiss Axioscop 40 Fl. Состояние клеточных мембран сперматозоидов определялось с помощью флуоресцентного красителя бромистого этидия. Оплодотворяющую способность оценивали по проценту икринок, осеменённых постмортальными сперматозоидами. Осеменение осуществляли по стандартному методу (Объекты биологии развития, М, 1975). Индикатором оплодотворения икринки служило начало дробления. В каждом эксперименте оценивали качество используемой икры, оплодотворяя часть икры суспензией сперматозоидов контрольных животных.

78


Если в контроле обнаруживались низкие показатели оплодотворения (менее 80%) и/или высокий процент патологического развития, данные по оплодотворяющей способности постмортального семени, полученные при использовании такой икры, не учитывались.

результаты и обсуждениеПолученные результаты показывают, что и после 7 суток хранения тушек

постмортальных самцов Rana temporaria при 4°С, в семенниках обнаруживаются жизнеспособные сперматозоиды. Общая подвижность сперматозоидов контрольных самцов составляла 50%, через 2 и 3 дня хранения – 45 и 40%, а через 6 и 7 дней хранения снизилась до 15 и 10%, соответственно. Количество сперматозоидов с поступательной подвижностью, у контрольных животных было равно 20%, а через 5-7 дней хранения постмортальных лягушек наблюдались лишь отдельные сперматозоиды с поступательной подвижностью. Число сперматозоидов с неповрежденной клеточной мембраной за период постмортального хранения падало незначительно. Так, у контрольных самцов оно составляло 85%, через 3 дня хранения оно снизилось до 80%, а через 7 суток – до 75% .

Способность к оплодотворению сперматозоидов достоверно снижалось в процессе хранения. Сперматозоиды контрольных животных оплодотворяли в среднем 54% икринок, через 4 дня хранения сперматозоиды оплодотворяли 22,1% икринок, а после 7 дней пребывания в холодильнике только 1,4%.

Достоверных различий по количеству личинок, развившихся до стадии выклева из икринки после ИО постмортальным материалом, между экспериментальными группами нет. В контроле оно составляло 79,1%. При хранении от 2 до 6 дней, число выклюнувшихся личинок варьировало от 81,7% до 72,2%. Следовательно, постмортальные сперматозоиды давали при ИО полноценных зародышей, а хранение сперматозоидов не отражалось на развитии оплодотворенных икринок.

Корреляционный анализ выявил зависимости между исследуемыми показателями цитофизиологического состояния и оплодотворяющей способностью сперматозоидов. Так, общая подвижность сперматозоидов достоверно коррелирует с их способностью к оплодотворению икры. Высокая корреляция между этими показателями наблюдается и для контрольного семени (0,57) и для постмортальных образцов (0,70). Корреляция между оплодотворяющей способностью и поступательной подвижностью существенно ниже (0,23 в контроле, 0,50 в экспериментах). Корреляция между состоянием клеточной мембраны сперматозоидов и их оплодотворяющей способностью незначительна (0,26 и 0,25 в контроле и в опыте, соответственно).

Деградация подвижности сперматозоидов травяной лягушки при холодовом хранении в целой тушке проходила несколько быстрее, чем это показано для сперматозоидов жабы-аги Bufo marinus при хранении изолированных семенников. Общая подвижность сперматозоидов аги при хранении в течение 6 суток падала менее,

79


чем в 2 раза. (Browne et al., 2002b). Наши результаты близки к данным о способности выделенных сперматозоидов некоторых бесхвостых амфибий переживать в течение недели in vitro при субнулевых температурах (Browne et al., 2002a).

Таким образом, через 2-7 дней хранения постмортального материала часть сперматозоидов сохраняет подвижность и оплодотворяющую способность. При ИО такими сперматозоидами формируется зигота, развивающуюся в полноценную личинку. Следовательно, погибших самцов травяной лягушки, при указанных условиях хранения, можно рассматривать, как источник сперматозоидов пополнения криоколлекций и искусственного осеменения.

Литература.1. Максудов Г.Ю. Криобанки диких видов животных. Цитология, 2004, т.46, N 9, с.

816-817.2. Утешев В.К., Каурова С.А., Врублевская В.В., Гахова Э.Н. Криоконсервация

спермы и зародышевых тотипотентных клеток амфибий. Цитология, 1999 т.41, № 3/4, с.321 .

3. Browne R.K., Davis J, Pomering M., Clulow J. Storage of cane toad (Bufo marinus) sperm for 6 days at 0 degrees C with subsequent cryopreservation. Reprod Fertil Dev 2002а;14(5-6):267-273.

4. Browne R.K., Clulow J., Mahony М. The short-term storage and cryopreservation of spermatozoa from hylid and myobatrachid frogs. Cryo Letters. 2002b, v. 23(2):129-36.

5. Maksudov G. Yu., Shishova N. V., Katkov I. I. In the cycle of life: cryopreservation of post-mortem sperm as a valuable source in restoration of rare and endangered species.// In: Endangered species. New Research, 2009 Nova Science Publishers, pp. 189-240.

6. Michael S.F., Jones C. Cryopreservation of spermatozoa of the terrestrial Puerto Rican frog, Eleutherodactylus coqui. Cryobiology. 2004 ;48(1):90-94.

7. Stuart S.N., Chanson J.S., Cox N.A., Young B.E., Rodrigues A.S.L. Status and trends of amphibian dechines and extinction worldwide. Science, 2004, 306: 1783-1786.

8. Pounds J.A., Bustamante M.R., Coloma L.A., Consuegra J.A. Widespead amphibian extinction from epidemic disease driven by global warming. Nature, 2006 439: 161-167.

9. Uteshev V.K., Gakhova E.N. Gene cryobanks for conservation of endangered amphibian species., Russ.J.Herpetol.,12 (Suppl. Herpetologia Petropolitana), 2005, p. 233-234.

AbstractThe duration of viability of brown frog postmortal spermatozoa was investigated.

Sperm motility, membrane integrity and fertilization ability were assessed for 7-days storage at 4°С . We noted a declining both motility status and fertilization ability. Percent of intact spermatozoa remains nearly constant. Our results indicate that postmortal spermatozoa could be used for cryopreservation and assisted reproduction in zoo breeding program.

80


УДк 598.41:636.082:590.06(477-13)

роль ЗооПарка «аСканиЯ-нова» в воССтановлении оГарЯ (tAdornA ferrUgineA) на ЮГе УкраинЫ

мезинов а.С., заведующий лабораторией сохранения разнообразия диких животных биосферного заповедника «аскания-нова» им. Ф.э. Фальц-Фейна Уаан

mezіnov_alex@maіl.ruключевые слова: огарь, популяция, содержание, реинтродукция

tHe Zoo role «AskAniA noVA» in restorAtion rUddy sHeldUCk (tAdornA ferrUgineA) in tHe soUtH of UkrAine

Mezinov AlexandrBiospher reserve Askania novakeywords: ruddy shelduck, population, the maintenance, reintroduction

Уже больше 50 лет многих ученых и людей не равнодушных к экологической ситуации беспокоит вопрос сохранения редчайших видов животных. Ведь эти виды важный компонент биоразнообразия и особенно те, которые находятся на границах своего ареала. На територии Украины численность многих видов гусеобразных (Anserіformes) сокращается катострафическими темпами. Подрываются гнездовые популяции серого гуся (Anser anser), кряквы (Anas platyrhynchos). Причиной этому стала деятельность человека. Сокращаются гнездовые биотопы, ведется интенсивная охота в местах зимовок, незаконно изымаются животные «черными» поставщиками частных зоопарков, отсутствуют программы создания и поддержки баз дичеразведения. Отличием всему этому остаются зоопарки, которые не только ведут эколого-просветительскую деятельность, но и пытаются любым доступным способом сохранить редких животных и поддерживать местную фауну.

На базе зоопарка Биосферного заповедника «Аскания-Нова» имени Ф.Э. Фальц-Фейна УААН уже более 50 лет ведутся работы по созданию искусственных популяций животных. Примером этому считается популяция огаря (Tadorna ferrugіnea Pall.) – аборигенного вида «Большой Степи» Евразии. Учитывая то, что в мире данный вид представлен 6 популяционными аренами, из которых многочисленными

81


являются центрально- и восточно-азиатские. В Европе численность огаря находится на критическом уровне (Bogdanova, 2000). Поэтому искусственное разведение и реинтродукция в природу огаря в пределах границ ареала есть единым путем сохранения вида.

На наш взгляд, наиболее эффективной системой разведения и восстановление аборигенных птиц затихающих популяций есть полувольное их содержание.

В начале работы по восстановлению огаря на юге Украины в состав ядра входили птицы, которые оставались после «безвозвратного разлета» (Андриевский, 1963). Численность этой группы составляла 15-30 особей, из которых в последние пять лет гнездились лишь 1-3 пары (1972-76 гг.). Разработка и внедрения новой технологии (Зубко, 1989) обеспечили постепенное увеличение численности огаря и дало возможность выпускать подготовленный молодняк в природу (Зубко, 1998; 2001). В последние годы она составляла от 260 до 810 в зимний период, и 360 - 2100 особей в весенне-летний и осенний периоды (Мезинов, 2005).

Основными этапами работы были: подбор нескольких птиц для «привязывания» к местности (Зубко, 1989), формирование выводоков с приемными родителями-воспитателями, обеспечение молодняка полноценным кормом, минимальный импритинг на человека.

За период с 1983 года в природу выпущено 4939 особей (табл. 1).

Таблица 1. Интродукция выращенных птенцов огаря в природу

Воспитатели и назначение Года Всего за

использования птенцов 1983-2000 2001-06 2007-08 весь период

Выпуск в природу с: огарем 1217 646 240 2103уткой мускусной, кряквой 1312 942 582 2839

Всего выпущено 2529 1588 822 4939Из них - для образования оседлой попу-

ляции 622 360 176 1158

Поскольку искусственная популяция огаря создавалась в районе его ареала (Депп, 1898) и в пределах Понтийского миграционного коридора (Кищинский, 1979) с использованием предложенных методик, на сегодня популяции состоит из пяти основных групп полусвободного (летных, но «привязанных» к местности) и свободного содержания (Мезинов, 2005). Птицы способны расселяться, осуществлять миграции на разные расстояния и довольно продолжительно жить в естественных условиях (рис.1, табл.2).

82


Рисунок 1. Разлет огарей выращенных и окольцованных в Аскании-НоваТаблица 2 - Возраст огарей при дальних и близких встречах

Вид Дальние встречи Близкие встречиn M±m lim. n M±m lim.

Огарь 12 11,08±3,42 2-42 238 9,04±0,50 2-72

Часть летных птиц отлетает, но возвращается на гнездование, другая гнездится в других местах Украины. Как видно из рисунка 2, численность огаря есть стабильной, что свидетельствует о хорошем состоянии популяции.

0100200300400500600700800900

1957 1962 1967 1972 1977 1982 1987 1992 1997 2002 2007Год

Огарь

Рисунок 2. Динамика численности огаря в зоопарке Аскания-Нова

83


Разработанная в Биосферном заповеднике «Аскания-Нова» технология разведения и выпуска в природу огаря, что обеспечивает последовательное увеличение местной популяции, а также возвращение на гнездование в зоопарк после выпусков в природу окольцованных особей позволяет утверждать, что можно создавать новые свободные и полусвободные популяции вида вдоль Северного побережья Азовского и Черного морей. Для этого необходимо: завершить обследование территорий на предмет выявления биотопов для реинтродукции вида; определить круг соисполнителей региональной программы сохранения и восстановление огаря на юге Украины; согласовать и утвердить окончательный вариант программы; установить для Аскании-Нова статус основного репродуктора вида в Украине и обеспечить дальнейшее наращивание группировки. Кроме того, необходимо создать новые популяции за наработанными технологиями, обеспечить охрану и научное сопровождение масштабного эксперимента за проектом «Возрождение огаря в Украине».

Литература1. Андриевский И.В. Охотничье-промысловые и декоративные птицы зоопарка

Аскания-Нова / И.В. Андриевский, В.Д. Треус // Работы по акклиматизации и гибридизации диких копытных и птиц. Научные труды, УНИИЖ Аскания-Нова. – 1963. – Т. 13. – С. 30-86.

2. Депп Н. Несколько слов о зоологическом саде Ф.Э. Фальц-Фейна / Н. Депп // Естествознание и география. – 1898, №3. – С. 11-17.

3. Зубко В.Н. Способ создания популяции водоплавающих птиц / В.Н. Зубко, Г.М. Ковтун. Авт. св-во 1459645 СССР МКИ 4 А 01 К 67/02. УкрНИИ животноводства степных районов Аскания-Нова – № 4016852, Заявл. 31.01.86. Опубл. 23.02.89. Бюл. изобр. №7.

4. Зубко В.Н. Популяция огаря в заповеднике «Аскания-Нова»: история формирования и современное состояние / В.Н. Зубко, А.Б. Поповкина, В.С. Гавриленко, Н.Н. Семенов // Казарка. – М.: Россельхозакадемия. – 1998. – № 4. – С. 231-243.

5. Зубко В.М. Реінтродукція вирощених в Асканії-Нова пташенят огара Tadorna ferrugineа Р. у природу / В.М. Зубко, О.С. Мезінов // Наук.. вісник Ужгор-го ун-ту, Серія Біологія, Міжнар.наук.-практ. школа вчен. та спец., «Природні екосистеми Карпат в умовах посиленого антропогенного впливу», м. Ужгород, 4-7 жовтня, №9, 2001. – С.271-273.

6. Кищинский А.А. Миграции огаря - Tadorna ferruginea (Pall.) / А.А. Кищинский // Мигр. птиц Вост. Евр. и Сев. Азии. Аистообразные – Пластинчатоклювые. – М.: Наука, 1979, гл.17 – С.210-214.

7. Мезинов А.С. Структура зимовочного скопления огаря Tadorna ferruginea в Аскании-Нова / А.С. Мезинов // Гусе образные птицы Северной Евразии (Тезисы докладов 3-го международного симпозиума. 6-10 октября. Санкт-Петербург). – Санкт-Петербург: Картографическая фабрика ВСЕГЕИ. – 2005. – С. 193-194.

8. Bogdanova M.I. In the biology of the Ruddy Shelduck in Bolgaria / M.I. Bogdanova, P.H. Zehtindjiev // Казарка. – М.: Россельхозакадемия. – 2000. – T. 6. – C. 243-250.

84

Раздел 4. Информационно-просветительская деятельность природоохранного направления в зоопарках и аквариумах

РАЗДЕЛ 4. ИНФОРМАЦИОННО-ПРОСВЕТИТЕЛЬСКАЯ ДЕЯТЕЛЬНОСТЬ ПРИРОДООХРАННОГО НАПРАВЛЕНИЯ В

ЗООПАРКАХ И АКВАРИУМАХ

ГоД лЯГУШки в тУльСком экЗотариУме

моисеева т.С.*, заместитель директора, лебедева а.м.*, заведующая культурно-просветительным отделом

*тульский экзотариумключевые слова: лягушка, праздник, кампания, экзотариум, земноводное,

мероприятие. frog, campaign, exotarium, event, festival, amphibian.

Тульский областной экзотариум – специализированный зоопарк рептилий и амфибий. В его коллекции содержится и разводится 9 видов амфибий уникального рода Theloderma и, в общем, более 20 видов различных земноводных. В нашем архиве опыт ежегодного проведения выставки «Исчезающие царевны».

Год лягушки, объявленный Европейской Ассоциацией зоопарков и аквариумов оказался для Тульского экзотариума очень благодатным. В этот год впервые были разработаны и проведены такие праздники, как: «ква-ква поцелуй», «лягушачья столовая», «неделя лягушачьей моды», «лягушачий кросс», «мама, папа, я – лягушачья семья».

Самым необычным из них стал «Лягушачий кросс». Для проведения этого мероприятия экзотариум вышел в город, на стадион, и совместно со спортивной школой подготовил спортивно-экологическую эстафету. Поучаствовать в забеге и выразить свою солидарность проблеме исчезновения земноводных пришли учащиеся из семи ближайших к нашему зоопарку школ города. Все участники отлично подготовились: ребята придумали запоминающиеся названия и девизы для своих команд, нарисовали яркие эмблемы с изображением лягушки, а некоторые даже посвятили лягушкам стихи.

Участников эстафеты ожидали веселые задания. Для соревнований были изготовлены специальные эстафетные лягушки. Детям предстояло «спасти» лягушек из загрязненной среды и выпустить в «чистый водоем». Первым этапом детям предлагалось найти эстафетную лягушку в «мусорном баке» среди бытового мусора. Теперь, чтобы донести спасенных земноводных до спасительного водоема, участники должны были вжиться в образ лягушки, показав лягушачье умение прыгать. Пришлось прыгать в длину, через скакалку, с кочки на кочку и даже в мешках.

На лягушачьем кроссе ребятам предстояло не только выполнить физические упражнения, но и продемонстрировать свои знания в интеллектуальном конкурсе капитанов «Лягушковед».

85


Забавным мероприятием стала акция «Ква-ква поцелуй», проходившая во многих зоопарках мира, а также и в Туле. В течение трех дней люди, пришедшие в зоопарк целовали живых земноводных!

Чтобы стимулировать интерес к целованию лягушек мы предложили нашим посетителям замечательные фотографии на память о «Ква-ква поцелуе», а также каждый час разыгрывали перед посетителями своеобразную сказку про Василису, состоящую в обществе охраны природы, мудрую сову и пользу земноводных, которым, к сожалению, грозит полное исчезновение. А чтобы показать свое хорошее отношение к ним, нужно было лягушку поцеловать. Вдохновившись увиденным люди не просто целовали лягушек, а с упоением и обожанием! На самые лучшие фотографии поцелуев (около 30) можно было посмотреть в Экзотариуме после самой акции во время фотовыставки «Ква-ква поцелуй».

«Неделя лягушачьей моды» потребовала от нас минимальных затрат, но очень понравилась нашим посетителям. На открытие недели мы пригласили юных моделей из местного модельного агенства, которые устроили дефиле в моделях желто-коричнево-зеленых цветов. После этого яркого открытия 2 недели посетители, пришедшие в зеленом получали от нас специальные подарки и, конечно, информацию о кампании.

Очень хорошим праздником для всей семьи стал «Мама, папа, я – лягушачья семья». На этом празднике можно было не только пообщаться с живыми земноводными и сказочными персонажами, но и попрыгать как лягушки, пообедать, расселить земноводных, спеть брачную песню и позаботится об икре. Конкурсы были для всех, и для мамы, и для папы, и для детей разных возрастов.

Кроме того, весь год, приходящие посетители активно привлекались к кампании и самые активные из них, посещавшие несколько наших специальных мероприятий получали гордое звание «Земноводников» и носили специально выпущенные нами значки кампании.

внеДрение инФормационно-ПоЗнавательной иГрЫ ДлЯШкольников «Зоо квеСт» в киевСком ЗооПарке

богдан о.Д., волонтер киевского зоологического парка

Справка:квест – это это увлекательная логически-поисковая игра.реликт – часть книги, которая дается учасникам для решения

квест в зоопарке – это : ▶ Уникальный проект ▶ Новые впечатления для каждого школьника

86

Раздел 4. Информационно-просветительская деятельность природоохранного направления в зоопарках и аквариумах

▶ Знакомство с животным миром и познание животного мира путем игры ▶ Развитие наблюдательности и внимания ▶ Общение со специалистами в своей области (зоологами) ▶ Свежый воздух и хорошее настроение ▶ Квест – это вся жизнь вокруг нас.

цель проекта: ▶ Привлечение внимания учеников общеобразовательных учебных заведений города Киева к изучению особенностей животного мира на базе Киевского зоологического парка.

Поставлены задачи: ▶ Дать возможность школьникам в игровой форме овладеть теоретическими и практическими знаниями окружающего их животного мира.

▶ Повышение социально -культурного значения КЗП как просветительского учреждения

▶ Привлечение школьников к сотрудничеству.

Суть игры: ▶ Необходимо собрать «Книгу жизни», состоящую из 7 реликтов(заданий) именно их на протяжении семи месяцев, следует решить, хорошенько ознакомившись с экспозицией зоопарка.

что необходимо для участия: ▶ Собрать команду не менее 5 человек

Структура реликтаЗадание 1:Впишите недостающие буквы в слова.Задание 2: открыв цифры – получаете сочетание слов, которые складываються в

предоложение, а предложение и есть вашим заданием.Задание 3:Творческое. Для каждой возрастной категории свое. И в заключении требуется вклеить фото тех животных, о которых шла речь в

реликте. ▶ Команды, которые по результатам 7 этапов набирают максимальное количество баллов, имеют право участвовать в финальной игре 30 мая 2009 года

▶ Победители финала награждаются ценными призами и дипломами. ▶ Награждение победителей запланировано после окончания финальной игры. И приурочено к празднованию 100-летия со дня основания Киевского зоопарка.

87


Финальная игра ▶ Подвижные конкурсы на этапах ▶ Соревнования самых сильных команд ▶ Контактные задания. Возможность притронуться к животным ▶ Сложные головоломки

Все это под присмотром квалифицированных специалистов в игре.Результаты оценки работ за исполнение заданий реликта каждой из команд

ежемесячно размещались на официальной web- странице Киевского зоопарка www.zoo.net.ua

88

Раздел 5. Ветеринарная практика

РАЗДЕЛ 5. ВЕТЕРИНАРНАЯ ПРАКТИКА

УДк 619: 636: 612. 12:636. 1

морФобІохІмІчнІ ПокаЗники кровІ антилоП нІльГаУ

Шульга A.B., лікар вет. медицини київського зоологічного паркутолстоухов о.а., лікар вет. медицини київського зоологічного паркумарунчин A.A., канд. вет. наук, головний ветеринарний лікар київського

зоологічного паркулевченко в.І., доктор вет. наук, білоцерківський ДаУ

Вперше в Україні визначені біохімічні показники крові, які характеризують функціональний стан печінки і нирок у антилоп Нільгау.

Антилопи Нільгау належать до загону Artiodactyla, родини Bovide порожнисторогі [1]. Вони належать до виду крупних індійських ан тилоп, у природних умовах мешкають у рідколіссі, уникаючи густих заростей. Ці тварини утримуються в багатьох зоопарках Європи, зба гачуючи їхні колекції. За типом нервової системи досить лякливі, легко піддаються стресу, що значно утруднює і навіть унеможливлює виконання клінічного дослідження, хірургічного лікування, щеплен ня, ідентифікацію мікрочипом тощо без застосування загальної анес тезії. Фіксація тварин фізичними методами призводить, як правило, до самотравмування, виникнення стресової злоякісної (летальної) гіпертермії [2-4], а також підвищення ризику травмування людей, оскільки антилопи найчастіше рятуються втечею.

В Україні у ветеринарній літературі не представлена інформація про морфологічний і біохімічний склад крові клінічно здорових антилоп, що не дає можливості проводити діагностику внутрішніх хвороб, які мають субклінічний перебіг.

мета роботи - вивчити морфологічний склад крові і окремі біохімічні показники, які характеризують функціональний стан печінки і нирок.

матеріалом для досліджень була кров 13-ти антилоп (5 самок і 8 самців), яким проводилася загальна анестезія у період 2002-2006 рр. з причини завантаження тварин у транспортні клітки, відлову з території зоопарку, кастрації. Кров відбирали в період толерантності. Водночас проводили моніторинг кардіоваскулярної, дихальної і центральної нервової систем та вимірювали температуру тіла. Частоту серцевих скорочень визначали пальпацією серцевого поштовху, аускультацією тонів серця, електрокардіографом, а також пульсоксиметром (Heart Vision, Oxyvet).

Забір крові проводили з яремної вени. Кількість еритроцитів і лейкоцитів

89


підраховували в камері з сіткою Горяєва, лейкограму виводили підрахунком 200 клітин у мазках, зафарбованих за Романовським-Гімзою, вміст загального білка визначали рефрактометром, гемоглобін - геміглобінціанідним методом, сечовини - за реакцією і діацетилмонооксимом, креатиніну - за колірною реакцією Яффе, білірубіну - за методом Ієндрашика і Гроффа, глюкози - глюкозооксидазним методом, активність аспарагінової (ACT) і аланінової (АЛТ ) трансфераз - за методом Рейтмана і Френкеля [5].

результати досліджень та їх обговорення. Кількість еритроцитів була в межах від 4,0 до 6,5 Т/л (4,9±0,24 Т/л), що значно менше результатів, наведених у літературі (6,3 - 8,5 Т/л) [6]. Лише у двох антилоп Київського зоопарку еритроцитів було 6,5 Т/л. На відміну від еритроцитів, кількість гемоглобіну була вищою за літературні дані (104 - 128 г/л). У антилоп зоопарку гемоглобіну було від 128 до 216 г/л, причому у тварин з максимальною кількістю еритроцитів (6,0 - 6,5 Т/л) рівень гемоглобіну був також максимальним (199-216 г/л). У середньому гемоглобіну було 154±9,62 г/л. Варто зазначити, що в 9-ти антилоп уміст гемоглобіну був у межах від 141 до 156 г/л.

Високий уміст гемоглобіну за відносно незначної кількості еритроцитів зумовлює повне насичення ним кожного еритроцита: вміст гемоглобіну в одному еритроциті становить у середньому 32,7±0,18 пг, причому цей показник досить стабільний і його ліміти складають 31,5-33,3пг. З урахуванням величини середнього квадратичного від хилення (δ =±0,65) за норму слід вважати ВГЕ у межах від 31,4 до 34,0 пг. Для порівняння наведемо дані щодо ВГЕ у великої рогатої худоби – 15-20 пг. Антилопи, як і велика рогата худоба, належать до жуйних, у них також чотирикамерний шлунок. Очевидно, що висо кий ВГЕ є пристосуванням антилоп до швидкого бігу.

Кількість лейкоцитів у межах від 4,2 до 7,4 Г/л, профіль крові — лімфоцитарний.Звертає на себе увагу ще один загальноклінічний показник крові — швидкість

осідання еритроцитів: вона була в межах від 16 до 32 мм за 1 год (у великої рогатої худоби – 0,5-1 мм). Очевидно, це пояснюєть ся деякою відмінністю складу білків крові.

Вміст загального білка в сироватці крові був у межах від 53,8 до 66,5 г/л, проте в 11-ти антилоп із 13-ти ліміти його становили 58,8-64 г/л. У антилопи з низьким умістом білка (53,8 г/л) альбумінів було лише 37 %, вважали, що в цієї тварини порушені білоксинтезувальна та пігментна (загального білірубіну - 9,4 мкмоль/л) функції печінки, тому її показник, як і максимальний, при розрахунках до уваги не брали. Середній уміст білка в антилоп зоопарку становив 61,0±0,47 г/л, а з урахуванням величини середнього квадратичного (δ=±1,5) ліміти загального білка у 66,7 % клінічно здорових антилоп мають бути у межах 59,5-62,5 г/л, у 95% - 58,0-64 г/л (у нашому випадку - 100 %), що значно нижче даних, наведених у літературі (64-83 г/л) [6]. Вра-хувавши результати щодо визначення вмісту білка у всіх 13-ти анти лоп, одержуємо ліміти загального білка в межах 56,0-66,0 г/л, тобто вони незначно відрізняються від попередніх.

Пігментну функцію печінки оцінювали за вмістом загального і кон’югованого білірубіну. Вміст загального білірубіну у 13-ти анти лоп знаходився в межах від 2,1 до

90


3,9 мкмоль/л і лише у двох було значне відхилення від цих показників (8 і 9,4 мкмоль/л). Середній вміст загального білірубіну – 3,0±0,17 мкмоль/л, а з врахуванням се реднього квадратичного відхилення (δ=±0,60) ліміти білірубіну у клі нічно здорових антилоп повинні становити 1,8-4,2 мкмоль/л. У 69,2 % антилоп ліміти білірубіну у межах М±δ, а в 100 % - М±2δ, що під тверджує правильність наших розрахунків щодо норми білірубіну (за даними літератури норма складає 1,7-5,1 мкмоль/л). Кон’югований бі-лірубін у 6-ти з 13-ти антилоп нами не встановлений, у решти його вміст не перевищував 0,2 мкмоль/л, причому максимальна кількість була лише у 2-х тварин. Отже, можна зробити висновок, що ліміти кон’югованого білірубіну знаходяться в межах від 0 до 0,2 мкмоль/л (у середньому 0,07), тобто печінка антилоп досить ефективно поглинає білірубін, кон’югує його і виділяє у просвіт жовчних капілярів.

У двох антилоп виявлена гіпербілірубінемія, причому в одної кон’югованого білірубіну було 1 мкмоль/л. Причин збільшення вмісту білірубіну може бути декілька: а) посилений гемоліз еритроцитів, що мало ймовірно, оскільки кількість їх в обох антилоп була в межах, характерних для тварин зоопарку; б) розвиток патології печінки, при якій вона не може ефективно поглинати і кон’югувати утворений вільний білірубін та виділяти кон’югований у просвіт жовчних капілярів (паренхіматозна жовтяниця), а в антилопи за відсутності кон’югованого білірубіну порушені лише перші дві функції печінки щодо обміну білірубіну.

Отже, вважаємо, що одержані нами результати вмісту загального (1,8-4,2 мкмоль/л) і кон’югованого (0-0,2 мкмоль/л) білірубіну можуть слугувати об’єктивним критерієм для оцінки пігментної функції печінки.

Важливим критерієм оцінки структури гепатоцитів і функціонального стану печінки є активність індикаторних ферментів - аспарагінової (ACT) та аланінової (АЛТ) трансфераз. За даними літератури [6], активність ACT в сироватці крові значно вища (58-66 од/л), ніж АЛТ (8-18 од/л). Ми проводили визначення кількості обох ферментів в інших одиницях - мккат/л. Згідно з літературними даними фізіологічні ліміти ACT повинні бути в межах 0,97-1,1, АЛТ - 0,133-0,3 мккат/л. За результатами наших досліджень, у 11-ти з 13-ти антилоп активність ACT значно нижча за літературні дані: ліміти її в межах від 0,23 до 0,39 мккат/л, і лише у двох тварин активність ферменту виходила за ці межі й становила в антилоп Алі - 0,88 і Роккі - 1,58 мккат/л, що є ознакою патології. Це підтверджується результатами визначення аланінової трансферази: у обох тварин вона була значно більшою зазначеної в літературі максимальної норми і складала відповідно 0,40 і 0,99 мккат/л. В інших 13-ти антилоп активність АЛТ була в межах від 0,17 до 0,26 мккат/л, тобто не перевищувала ліміти, наведені в літера турі [6]. Отже, нами проведені розрахунки активності ACT у 13 антилоп, активність АЛТ у яких не виходила за межі норми (табл. 1).

Середня активність ACT становить 0,3±0,015 мккат/л, а величина середнього квадратичного відхилення (δ) - 0,05. Отже у 2/3 антилоп активність ACT має бути в

91


межах 0,25-0,35 мккат/л, а в 95 % - 0,20-0,40. У нашому випадку таких антилоп було 69,2 і 100 %. Та ким чином, за фізіологічні ліміти вважаємо активність ACT 0,20 - 0,40 мккат/л.

Таблиця 1 - Біохімічні показники сироватки крові антилоп Нільгау

Біом

етри

чний

по

казн

ик

Зага

льни

й бі

лок,

г/л

Зага

льни

й бі

ліру

бін,

мк

моль

/лактивнІСть,

мккат/л

Сеч

овин

а,мм

оль/

л

Креа

тині

н,

мкмо

ль/л

Глю

коза

, мм

оль/

л

ACT алт

n 11 13 13 13 9 13 11Lim 58,8-64,0 2,1-3,9 0,23-0,39 0,17-0,26 5,1-7,5 109-137 3,1-4,4

M±m 61,0±0,47 3,0±0,І7 0,30±0,015 0,22±0,008 6,1±0,29 119±3,26 3,9±0,10δ 1,5 0,6 0,05 0,030 0,8 10,0 0,35

М±δ 59,5-62,5 2,4-3,6 0,25-0,35 0,19-0,25 5,3-6,9 109-129 3,55-4,25М±2δ 58,0-64,0 1,8-4,2 0,20-0,40 0,16-0,28 4,5-7,7 99-139 3,20-4,60

Активність АЛТ була в межах від 0,17 до 0,26 мккат/л і становила в середньому 0,22±0,008. Величина середнього квадратичного відхи лення - 0,03, отже ліміти активності АЛТ для 2/3 тварин повинні складати 0,19 - 0,25 мккат/л, а для 95 % - 0,16-0,28 (за нашими да ними, у межах перших лімітів було 76,9 % тварин, других - 100%).

Одержані результати дають підстави зробити висновок, що літературні дані фізіологічних лімітів активності ACT явно завищені, АЛТ - незначно відрізняються від отриманих.

Для аналізу глибини ураження гепатоцитів у гуманній медицині часто використовують визначення коефіцієнта де-Рітіса, тобто від ношення активності ACT до АЛТ. Якщо цей коефіцієнт зростає, то це вказує на ушкодження не лише цитоплазми, а й мітохондрій, де част ково локалізується ACT, а зменшення коефіцієнта є показником пе реважного ушкодження цитоплазми або плазмолеми.

Згідно з нашими даними, коефіцієнт де-Рітіса знаходиться у ме жах від 0,88 до 1,64 (у середньому 1,37±0,074), з урахуванням вели чини середнього квадратичного відхилення для 2/3 тварин ліміти скла дають 1,08-1,65, а для 95% - 0,80-1,93. Виходячи з проведених роз рахунків, результати наших досліджень наступні: у 10 з 13-ти анти-лоп (76,9 %) показники лімітів знаходяться у межах М±δ, а в 92,3 % - М±2δ. У двох антилоп активність обох ферментів була значно ви щою за фізіологічні ліміти: в антилопи Алі активність ACT становила 0,88, АЛТ - 0,40 мккат/л; у Роккі - відповідно 1,58 і 0,99 мккат/л. Очевидно, що в обох антилоп є ураження печінки з гострим перебі-гом, причому в обох, особливо Алі, уражена не лише цитозольна, а й мітохондріальна мембрани. Зазначимо, що в обох різко виражена гі перглікемія, підвищений уміст

92


креатиніну і сечовини. Причиною патології печінки у антилопи Роккі була механічна травма, яка супроводилася перфорацією грудної і черевної стінок.

Вміст сечовини є важливим показником функіонального стану печінки, де вона синтезується, і нирок, через які екскретується [7]. У антилоп він був у межах від 5,1 до 9,4 ммоль/л, причому значний вміст сечовини був у двох тварин з гіпербілірубінемією, ще у двох - з явною патологією печінки, тому ці показники до уваги не брали. Отже, за нашими даними ліміт вмісту сечовини в антилоп -5,1-7,5 ммоль/л у середньому - 6,1±0,29 ммоль/л, а з урахуванням величини середнього квадратичного він становить 5,3-6,9 ммоль/л для 2/3 тварин і 4,5-7,7 ммоль/л - для 95 %. Отже, можемо вважати за фізіологічні ліміти вміст сечовини від 4,5 до 7,7 ммоль/л. Цей показник дещо відрізняється від одержаних нами в експерименті. Літературних даних стосовно вмісту сечовини у сироватці крові антилоп ми не знайшли.

Об'єктивним показником фільтраційної функції нирок є вмісі креатиніну. У антилоп з гіперферментемією він істотно відрізняється від показників у інших тварин (199 і 221 мкмоль/л), що дає підставу діагностувати у них гепаторенальнний синдром. У решти антилоп вміст креатиніну - у межах від 109 до 137 мкмоль/л, у середньому 119±3,26 мкмоль/л. З урахуванням величини середнього квадратичного (δ=10,0) ліміти М±δ складають 109-129 мкмоль/л, а М±2δ – 99-139 мкмоль/л. За даними літератури [6], вміст креатиніну в сироватці крові антилоп повинен становити 123-167,9 мкмоль/л. Вважаємо, що остання цифра є завищеною.

висновки і перспективи подальших досліджень.1. У крові антилоп Нільгау високий уміст гемоглобіну і помірна кількість

еритроцитів, що зумовлює значну насиченість кожного еритроцита гемоглобіном (31,5-33,5 пг).

2. За одержаними результатами з урахуванням середнього квадратичного відхилення вміст загального білка у сироватці крові антилоп становить 58,0-64,0 г/л, загального білірубіну - 1,8-4,2 мкмоль/л, сечовини - 4,5-7,7 ммоль/л, креатиніну - 109-129 мкмоль/л.

3. Активність ACT в сироватці крові антилоп становить 0,20-0,40, АЛТ - 0,16-0,28 мккат/л.

4. Одержані нами результати фізіологічних коливань біохімічних показників, що характеризують функціональний стан печінки і нирок, можуть бути основою для діагностики патології цих органів.Перспективою подальшої роботи є поглиблення і розширення діапазону

досліджень функціонального стану печінки й нирок та ви вчення змін цих показників при виконанні анестезії.

Cписок літератури5. Дорлинг Киндерсли. Живошые // Большая энциклопедия - Лондон, Нью-

Йорк, Мюнхен, 2001. - 624 с.6. Buch M. Metods of Capture, Handling and Anesthesia // Wild Mammals in Captivity. -

1996.-25 p.

93


7. Козачок B.C. Клиническое исследование животных тропиков и субтропиков с основами топографической анатомии. - К.: Изд. УСХЛ, 1991. - 101 с.

8. Hans-Heinrich M. Hatlapa, Henning Wiesner Die Praxis der Wildtier - immobilization. – Hamburg und Berlin: Verlag, 1995. - 602 p.

9. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочник / И.П. Кондрахин, А.В. Архипов, В.И. Левченко и др.; Под. ред.проф. И.П. Кондрахина. - М.: Колос, 2004. - 520 с.

10. Goltenboth R., Heinz - Georg Klos Krankheiten der Zoo und Wildtiere. - Berlin: Blackwell Wissenschafts - Verlag, 1995. - 602 p.

11. Клінічна діагностика внутрішніх хвороб тварин / B.I. Левченко, В.В. Влізло, І.II. Кондрахін та ін. – Біла Церква, 2004. - 608 с.морфобиохимические показатели крови антилоп нильгау.а.в. Шульга, а.а. толстоухов, а.а. марунчин, в.и. левченкоВпервые в Украине определены биохимические показатели крови, которые

характеризуют функциональное состояние печени и почек у антилоп Нильгау.Morphobiocemical blood indexes of nilgau deerA. shulga, A. tolstoukhov, A. Marunchin, V. levchenkoAt first time in Ukraine biochemical blood indexes are developed, which show the

functional condition of liver and rens in Nilgau deer.

УДк: 619:636.1:616-001.4:002.3:089:615.246.2:276

ЗаГальна анеСтеЗІЯ антилоП нІльГаУ (BoselAPHUs trAgoCAMelUs) в Умовах київСькоГо ЗооПаркУ

толстоухов о., Шульга а., здобувачі луганського наУмарунчин а., кандидат ветеринарних наук, головний ветеринарний лікар

київського зоологічного паркуІздепський в., доктор ветеринарних наук, професор луганського наУлевченко в., академік Уаан, доктор ветеринарних наук білоцерківського

ДаУ Сеєдзавош аббасзаде, магістр ветеринарної медицини, ветеринарний лікар

київського зоологічного парку

Постановка проблеми та актуальність досліджень. Антилопи Нільгау належать до загону Artiodactyla, родини Bovide – порожнисторогі [1]. Це великі індійські антилопи, які у природних умовах мешкають у рідколіссі, уникаючи густих заростей. Вони утримуються в багатьох зоопарках Європи, чим збагачують їхні колекції. За типом нервової системи досить лякливі, легко піддаються стресу, що значно

94


утруднює і навіть унеможливлює клінічне дослідження, виконання хірургічного лікування, щеплення, ідентифікацію мікрочипом без застосування загальної анестезії. Фіксація тварин фізичними методами призводить, як правило, до самотравмування, виникнення стресової злоякісної (летальної) гіпертермії [2, 3], а також підвищення ризику травмування людей, оскільки антилопи найчастіше рятуються втечею.

В Україні у ветеринарній літературі не представлена інформація про анестетики та анестезувальні суміші, методи їх застосування для загального знеболювання антилоп, як і для багатьох видів диких парнокопитних тварин. У матеріалах зарубіжної ветеринарної літератури останнього десятиліття наведено багато даних щодо клінічного досвіду в анестезії антилоп [2, 4, 5], однак не всі результати дають відповіді на практичні питання, а саме: нечітко визначені дози наркотичних засобів; не відображені конкретні схеми та дія наркозу у тварин родини Bovide різних вікових груп; не повною мірою досліджені фізіологічні показники кардіоваскулярної та дихальної систем організму в глибокій стадії наркозу.

мета та завдання роботи – вивчити ефективність застосування анестезувальних сумішей (АС) для загального знеболювання антилоп Нільгау, дослідити перебіг періодів загальної анестезії, проаналізувати вплив анестетиків на життєво важливі системи організму (кардіоваскулярну та дихальну), застосувати неінвазивні методи діагностики (ЕКГ, пульсоксиметрію, термометрію).

матеріал та методи досліджень. Матеріалом для досліджень були антилопи Нільгау Київського зоопарку в кількості 15-ти тварин (5 самок та 10 самців), яким проводилась загальна анестезія у період 2002 – 2006 рр. через виробничу необхідність (завантаження тварин у транспортні клітки для перевезення в інші зоопарки, виконання хірургічного лікування, відловлювання з території зоопарку).

Застосовували три види анестезувальних сумішей: перша група (n=5; 2 самки, 3 самці) – кетаміну гідрохлорид – 5 мг/кг і ксилазин – 3

мг/кг маси тіла;друга група (n=5; 2 самки, 3 самці) – «хелабрунівська суміш» (1 мг/кг кетаміну

гідрохлориду і 1,25 мг/кг маси тіла ксилазину) в дозі 0,01 мл/кг;третя група (n=5; 1 самка, 4 самці) – іммобілон (еторфіну гідрохлориду – 0,02 –

0,03 мг/кг + ацепромазину малеату – 0,1 мг/кг) і ксилазин – 0,05 – 0,1 мг/кг маси тіла.12 антилоп перед загальною анестезією витримували на голодній дієті понад

24 год, водної дієти не дотримувались. Три антилопи анестезували без дотримання дієти, оскільки складались обставини, котрі потребували негайного введення тварин в наркоз (відловлювання з території зоопарку, хірургічне лікування).

АС ін’єктували дистанційним методом, внутрішньом’язово у ділянку шиї, плеча або стегна. Застосовували духові трубки фірми «Telinject» діаметром 14,2 і 16 мм, довжиною 1,2 і 2 м та «літаючі» шприци об’ємом 3,0 і 5,0 мл, діаметр голки 1,2 мм, довжина – 38 мм. Вага «літаючого» шприца, наповненого анестезувальною сумішшю, складала для 5,0 мл – 11,1 г , а 3,0 мл – 8,0 г.

95


Необхідну дозу АС визначали на відстані до антилоп, беручи до уваги приблизну масу тіла тварин, вік, темперамент і загальний стан. Перед процедурою анестезії досліджувану тварину відокремлювали від загальної групи у денник приміщення антилопнику, а декілька – анестезували в польових умовах. Зовнішня температура навколишнього середовища під час виконання досліджень коливалася в межах від + 10 до + 28 0С.

Моніторинг кардіоваскулярної, дихальної і центральної нервової систем та температури тіла [6, 7] проводили в період толерантності [8, 9], коли тварина знаходилась у ІІІ стадії загального наркозу.

Частоту серцевих скорочень (рис. 1) визначали методом пальпації ділянки серця і аускультацією тонів серця, серцевий ритм – аускультацією, електрокардіографією (Heart Mirror 3D-VET, фірми Innomed, Угорщина) і пульсоксиметрією (Heart Vision, OXYVET).

Рисунок 1. Пульсоксиметрія та ЕКГ дослідження

Стан (рівень) кровообігу оцінювали методом тканинної перфузії, після надавлювання пальцем на ясна реєстрували час наповнення капілярів кров’ю.

Частоту дихання та її глибину контролювали протягом всього періоду загальної анестезії шляхом спостереження та аускультації, за допомогою стетофонендоскопа визначали характер і силу шумів, що виникають у грудній клітці; пульсовою оксиметрією – насиченість киснем артеріальної крові (рис. 2).

96


Рисунок 2. Пульсоксиметрія у самця антилопи Нільгау

Глибину анестезії визначали шляхом тестування на наявність та активність поверхневих рефлексів у рефлексогенних ділянках. Досліджували рефлекси шкіри – черевної стінки, кремастера, анальний, хвостовий, вінчика і рефлекси слизових оболонок – рогівки (корнеальний), чхальний (фиркання), кашльовий.

Дослідження внутрішньої температури тіла (РТТ) проводили методом ректального вимірювання під час усього періоду толерантності.

результати досліджень та їх аналіз. При спостереженні за проходженням періоду індукції брали до уваги рухову активність тварин до настання їх повного знерухомлення (табл. 1).

Таблиця 1– Результати моніторингу загальної анестезії, хв

ПоказникПерша група

(n=5)Друга група

(n=5)Третя група

(n=5)Період індукції 22,6±3,55 32,6±8,95 12,2±2,15

Період толерантності 38,8±5,15 28,6±10,73 29,4±2,7Період відновлення 56±6,75 28,4±8,8 1,2±0,2

У тварин першої групи період індукції проходив по-різному. Антилопи, що були більше лякливими, після першої ж ін’єкції починали бігати по деннику, стрибали на огорожу, що призводило до самотравмування різного характеру. Тому для введення всього об’єму АС та досягнення знерухомлення необхідно було застосувати 5 – 6 «літаючих» шприців.

97


У тварин другої групи для досягнення седативного ефекту достатньо було застосувати одну ін’єкцію АС «літаючим» шприцом. Коли реєстрували седацію середнього ступеня, можна було обережно підійти до антилопи та у vena saphena ін’єктувати додаткову дозу анестетику, больова реакція при цьому була відсутньою. Знерухомлення наставало повільно. Весь період індукції проходив м’яко, без стадії збудження з меншим ризиком самотравмування.

У тварин третьої дослідної групи період індукції був коротким. На перших хвилинах реєстрували короткочасну стадію збудження, порушення координації рухів, спотикання грудними кінцівками, після чого швидко наставало знерухомлення.

У всіх тварин трьох досліджуваних груп у період індукції спостерігали ознаки атаксії, порушення орієнтації в просторі, тремор м’язів, гіперсалівацію, тахіпное.

При моніторингу анестезованих антилоп (табл. 2), що знаходилися у ІІІ стадії наркозу і дихали самостійно атмосферним повітрям, реєстрували незадовільну оксигенацію тканин, розвиток артеріальної десатурації, сповільнену перфузію, що було свідченням виникнення гіпоксемії, підвищення тонусу симпатичної нервової системи та звуження судин під дією анестетиків. При сатурації < 80%, подавали кисень у режимі 5 л/хв через пластикову трубку поставлену в носові ходи. У подальшому показники серцево-судинної та дихальної системи нормалізувались, що демонструвало ефективність ендогенних компенсаторних механізмів організму.

Таблиця 2 – Клінічні показники антилоп Нільгау у період толерантності

ПоказникГрупи

І ІІ ІІІЧастота пульсу за 1 хв 64,8±2,6 68±0,75 82,6±3,3

Перфузія тканин, с 1,8±0,2 2,6±0,3 2,2±0,6Частота дихання 19,2±1,5 17±4,0 16,4±2,15

SpO2, % 88,6±0,68 85,6±4,45 83,2±1,6Ректальна температура тіла, 0С 38,8±0,3 37,8±0,46 38,9±0,25

У тварин першої групи (n=5) на початку періоду толерантності реєестрували тахі- та диспное. ЕКГ дослідженням виявили зменшення тривалості інтервалів PQ і QT, що характерно для синусової тахікардії, а в подальшому при поглибленні наркозу показники ЧСС (64,8±2,6) і ЧД (19,2±1,5) були в межах норми, тривалість перфузії тканин – 1,8±0,2 с. Методом пульсоксиметрії реєстрували зменшення насичення гемоглобіну артеріальної крові киснем (88,6±0,68%), пульсова крива на дисплеї пульсоксиметра часто була нерівномірною, що свідчило про виникнення аритмії. Протягом всього періоду толерантності рефлекси слизових оболонок (корнеальний, чхальний) були збережені, поверхневі шкірні та глибокі больові рефлекси відсутні. Внутрішня температура тіла була в межах максимальної норми (38,8±0,3 0С);

98


У тварин другої групи (n=5) реєстрували диспное, ЧД (17±4,0), ЧСС була в межах норми (68±0,75). Пульсоксиметрією визначали зменшення насиченості артеріальної крові киснем (85,6±4,45%), сповільнення перфузії тканин (2,6±0,3 с ). ЕКГ дослідження не виявили суттєвих змін в інтервалах PQ і QT, комплексі QRS. Рефлекси слизових оболонок (корнеальний, чхальний) були збережені, поверхневі шкірні та глибокі больові рефлекси відсутні, внутрішня температура тіла була в межах норми (37,8±0,46 0С);

У тварин третьої групи (n=5) на початку періоду толерантності реєстрували тахіпное, а в подальшому – брадипное, насиченість артеріальної крові киснем (SpO2) становила 83,2±1,6%, що вказувало на розвиток артеріальної десатурації. ЕКГ дослідженням виявляли синусову тахікардію, показник тканинної перфузії становив 2,2±0,6 с. У подальшому спостерігали погіршення оксигенації тканин ротової порожнини.

У декількох тварин у період толерантності реєстрували гіпертермію, що, на нашу думку, було викликано значною м’язово-руховою та психологічною активністю в період індукції.

висновки та перспективи подальших досліджень.1. Результати досліджень доводять, що антилопи Нільгау належать до тварин,

котрих неможливо зафіксувати фізично і які мають високий фактор ризику самотравмування. Деякі тварини, у досліджуваних групах після першого ж пострілу «літаючим» шприцем входили у стан стресу і не зупиняючись бігали по деннику та постійно робили спроби перестрибнути огорожу до настання третьої стадії наркозу.

2. У тварин третьої групи період індукції проходив значно швидше (12,2±2,15 хв), ніж у тварин першої (22,6±3,55) та другої (32,6±8,95) груп, але були більш виражені побічні дії еторфіну на кардіоваскулярну та дихальну системи організму. На початку періоду толерантності була виражена тахікардія, погіршення оксигенації тканин ротової порожнини, а в подальшому спостерігали розвиток брадипное, артеріальної десатурації, сповільнення тканинної перфузії. Такий клінічний стан антилоп вимагав нейтралізації дії еторфіну застосуванням антидоту дипренорфіну. Відновлення відбувалося швидко (1,2±0,2 хв).

3. Пульсоксиметрією було досліджено, що за рівня сатурації < 80% подача чистого кисню в режимі 5 л/хв через трубку, поставлену в носові ходи, відновлювала рівень насиченості артеріальної крові киснем до 90% .

4. При ЕКГ дослідженнях інтервали PQ і ST, комплекс QRS змінювались у фізіологічних межах відповідно до змінн ЧСС.

5. У всіх тварин трьох досліджуваних груп не спостерігали виникнення тимпанії незалежно від дотримання голодної дієти.

6. Характеризуючи перебіг періодів загальної анестезії антилоп, можна зробити

99


висновок, що для швидкого знерухомлення ефективнішою була анестезувальна суміш іммобілону (еторфіну гідро хлорид – 0,02-0,03 мг/кг, ацепромазину малеат – 0,1 мг/кг) і ксилазину – 0,05-0,1 мг/кг маси тіла , але її необхідно нейтралізувати антагоністом еторфіну – дипренорфіном у дозі 0,04 – 0,06мг/кг.

7. Для досягнення седативного ефекту з подальшим поступовим поглибленням наркозу з метою виконання короткотривалих хірургічних операцій або інших лікувально-діагностичних процедур, на нашу думку, краще застосовувати кетамін-ксилазинову анестезію, а саме «хелабрунівську» суміш у дозі 0,01 мл/кг маси тіла.

8. У всіх випадках застосування наркотичних сумішей для загальної анестезії тварин було досягнуто ІІІ стадії наркозу, але перебіг його і тривалість була різною. Це означає, що анестезія антилоп Нільгау залишається дуже ризикованою та відповідальною процедурою. Література

1. «Дорлинг Киндерсли». Животные // Большая энциклопедия. – Лондон, Нью Йорк, Мюнхен, 2001. – С. 624.

2. Buch M. Methods of Capture, Handling and Anesthesia // Wild Mammals in Captivity. – 1996. – 25 p.

3. Козачок В.С. Клиническое исследование животных тропиков и субтропиков с основами топографической анатомии. – К.: Изд-во. УСХА, 1991. – 101 с.

4. Hans-Heinrich M.Hatlapa, Henning Wiesner. Die Praxis der Wildtier – immobilization. – Hamburg und Berlin:Verlag Paul Parey, 1982. – 96 p.

5. Göltenboth R., Heinz – Georg Klös Krankheiten der Zoo und Wildtiere. – Berlin: Blackwell Wissenschafts – Verlag, 1995. – 602 p.

6. Власенко В.М., Рубленко С.В. Моніторинг анестезованих тварин: Методичні рекомендації. – Біла Церква, 2004. – 32 с.

7. Клінічна діагностика внутрішніх хвороб тварин / В.І. Левченко, В.В.Влізло, І.П.Кондрахін та ін. – Біла Церква, 2004. – 608 с.

8. Іммобілізація оленів кетамін-ксилазином (хелабрунівською сумішшю) – вплив на якість анестезії, кардіоваскулярну та дихальну системи / В.Й.Іздепський, А.А.Марунчин, А.В.Шульга та ін. // Вет. медицина України. – 2006. – № 2. – С. 27 – 28.

9. Марунчин А.А., Іздепський В.Й. Застосування пульсоксиметрії для моніторингу загальної анестезії диких тварин //Вісник Полтав. держ. аграр. акад. – 2005. – № 1. – С. 65 – 68.

100


реЗЮмеобщая анестезия антилоп нильгау (Boselaphus tragocamelus) в условиях

киевского зоопарка. а.толстоухов, а. Шульга, а. марунчин и др.Изучали пригодность анестезирующих смесей (АС) (кетамин-ксилазин,

иммобилон-ксилазин) для наркоза антилоп Нильгау. Было исследовано 15 животных, содержащихся в зоопарке. Оценено влияние АС на кардиоваскулярную и дыхательную систему организма животных. Определяли качество анестезии, регистрировали время индукции, толерантности и восстановления. Результаты исследований показывают, что АС изменяют сердечно-сосудистые и дыхательные параметры, которые могут соответствующим образом компенсироваться эндогенными регуляторными механизмами и не вызывают серьёзных клинических осложнений у здоровых животных.

summarygeneral anaesthesia on antelope nylgau (Boselaphus tragocamelus) under the

conditions of kyiv zoo. A. tolstoukhov, A. shulga, A.Marunchyn and others.The usefulness of anaesthetic mixtures (AM) (ketamin-xylazin, immobilon-xylazin) for

anaesthesia on antelope Nylgau was investigated. Fifteen animals that are kept in the zoo were studied. The influence of AM on cardiovascular and respiratory systems of the animals organisms was investigated, the quality of anaesthesia was defined. The time of induction, tolerance and recovery was registered. The results of investigation show that AM changes cardiovascular and respiratory rates which can be accordingly compensated with the help of endogenic regulatory mechanisms and don’t cause serious clinical complications in the healthy animals.

актиномІкома У СамцЯ ІГУани (igUAnA igUAnA). клІнІчний виПаДок

марунчин а., кандидат ветеринарних наук, головний ветеринарний лікар київського зоологічного парку

калиновська І., кандидат ветеринарних наук, доцент наУложкіна о., завідувач патоморфологічним відділом цДлвмтолстоухов о., Шульга а., лікарі ветеринарної медицини київського

зоологічного паркуСеєдзавош аббасзаде, магістр ветеринарної медицини

Описано випадок актиномікоми у самця зеленої ігуани. Застосована комплесна методика діагностування утворення, що включала клінічне, рентгенологічне, ультразвукове та гістологічне дослідження. Відображена схема загального наркозу

101


і моніторингу анастезованої тварини, результати хірургічного лікування та гістологічних досліджень.

Ключові слова: ігуана, актиномікоз, діагностика, лікуванняАктиномікоз – хронічне інфекційне захворювання, яке реєструється досить

широко в усьому світі, і характеризується утворенням локалізованого припухання з нагноєнням, формуванням абсцесу, фіброзом тканини [1, 2]. Збудником актиномікозу є анаеробний променистий гриб роду Actinomyces, який уражує головним чином тварин (велику рогату худобу, синей, овець кіз), рідше – людей [3,4]. Збудники хвороби живуть у грунті, шлунково-кишковому тракті багатьох тварин, на злакових рослинах [3-5]. У людей вони входять до складу нормальної мікрофлори порожнини рота, шлунково-кишкового тракту, верхніх дихальних шляхів [3, 4]. Актиноміцети не можуть проникнути через здорові тканини. Для того, щоб вони стали патогенними повинні бути певні передумови (наприклад порушення цілісності слизової оболонки, шкіри) [6].

У вітчизняній ветеринарній літературі зустрічаються лише поодинокі повідомлення із зоопарків про те, чи інше захворювання, але зовсім не описані випадки пухлин та пухлиноподібних утворень у рептилій, не відображені схеми загального знеболення та методики хірургічного лікування, не опубліковані матеріали щодо гістологічних досліджень.

метою нашого дослідження було діагностування і лікування пухлиноподібного утворення у самця ігуани (Iguana iguana).

об’єкт і методи дослідження. Об’єктом дослідження був самець зеленої ігуани віком 13 років, масою тіла 8,2 кг, довжиною 1,5 м. Протягом чотирьох місяців у нього спостерігали припухлість з лівого боку у ділянці шиї та нижньої щелепи, розміри якої збільшувалися. Попередню діагностику даного утворення проводили шляхом пальпації, ультразвукового та рентгенологічного досліджень, після чого було проведено оперативне лікування і для встановлення діагнозу – гістологічне дослідження.

При пальпації визначали локалізацію, розміри, рухомість та щільність тканини. Ультразвукове дослідження проводили за допомогою приладу Aguila датчиком

5,0 MHz. Для рентгенологічного дослідження використали апарат рентгенівський діагностичний переносний 10Л6-01, при цьому на кнопці керування висталяли 60 кВ та 25 мА с. Відстань від діафрагми рентгенівського апарату до радіографічної касети складала 70 см.

Для проведення хірургічного лікування застосували загальну анестезію 10% -ним розчином кетаміну гідрохлориду у дозі 50 мг/кг маси тіла [7]. У період хірургічної толерантності застосували ендотрахеальну трубку для постійного надходження атмосферного повітря або термінової подачі кисню до легень.

Моніторинг анестезованої рептилії під час операції проводили за допомогою електрокардіографу Heart Mirror 3D-VET, пульсоксиметру Heart Vision, OXYVET, методом термометрії та спостереженням за активністю рефлексів.

102


Хірургічну операцію проводили за методикою пошарового роз’єднання тканин із застосуванням високочастотного електрохіругрічного приладу EXBA-350M/120Б «Надія-2». Рану закрили вузлуватим швом ниткою «Vicryl».

Для гістологічного дослідження вирізали шматочки видаленого утворення завтовшки 2 мм, враховуючи структуру тканини. Шматочки вміщували у пластикові касети і заливали у парафін за допомогою автомату карусельного типу STP – 120. Зрізи завтовшки 5 мкм фарбували гематоксиліном та еозином і за Ван Гізон [8].

результати досліджень та їх обговорення. Пальпаторно встановлено, що припухлість розташована під шкірою зліва у вентральній ділянці шиї та кута нижньої щелепи. Вона нерухома, щільної консистенції, яйцеподібної форми і має значні розміри (6,0 х 5,0 см). Ультразвукове дослідження показало, що вона представлена гетерогенною з ехогенними ділянками щільною тканинною масою (рис.1)

Рисунок 1 - Ультрасонограма утворення Рисунок 2 - Рентгенограма утворення

На рентгенівському знімку припухлість виглядала однорідною (рис. 2).Під час анестезії ігуани період індукції тривав протягом 30 хв. При цьому

спостерігали короткочасну стадію збудження та поступове поглиблення наркозу. Під час моніторингу анестезованої рептилії насиченість киснем артеріальної

крові була в межах норми (93,0±2,6), спостерігали пригнічення глибоких больових рефлексів, що дало можливість провести оперативне втручання, зменшення частоти дихання (до 12± 2 рухів на хвилину) та частоти серцевих скорочень (до 35±5 ударів на хвилину), сповільнення тканевої перфузії.

Хірургічна операція підтвердила, що утворення розташоване під шкірою зліва в ділянці основи шиї та кута нижньої щелепи (рис.3). Воно складається із товстостінної капсули та крихкого гетерогенного вмісту.

103


Після хірургічного лікування фізіологічні функції тварини відновилися вже на другий день. Операційна рана загоювалась добре без ознак набряків і нагноєння. На 20-й день після операції в місці хірургічного доступу залишався лише рубець незначної щільності.

Рисунок 3 – Пальпаторне дослідження ігуани.

Гістологічними дослідженнями встановлено, що стінка капсули утворена щільною колагеновою сполучною тканиною, яка в окремих ділянках проросла між скелетними м’язами (рис.4).

Рисунок 4 – Гістопрепарат. Периферична частина капсули утворення. Гематоксилін та еозин, об.х20

104


У периферичній і центральній ділянках капсула бідна на клітини, серед яких реєструються лише представники фібробластичного ряду та поодинокі лімфоцити. Навколо кровоносних судин капсули спостерігається проліферація лімфоїдних клітин, плазматичних клітин, гістіоцитів, нейтрофілів та значної кількості еозинофілів (рис.5). Останні виявляються і в просвіті розширених кровоносних та лімфатичних капілярів.

Рисунок 5 – Гістопрепарат. Капсула утворення. Гематоксилін та еозин, об.х20

Рисунок 6 – Гістопрепарат. Гігантські клітини у внутрішній частині капсули. Гематоксилін та еозин, об.х40

Кількість усіх зазаначених видів клітин у внутрішній частині капсули значно більша. Серед них виявляються епітеліоїдні та гігантські клітини (рис. 6). Трапляються поодинокі вузлики з друзами гриба, забарвленими у рожевий колір і розташованими радіально у вигляді променів. Вони оточені молодою грануляційною тканиною (рис.7).

105


Рисунок 7 – Гістопрепарат. Друзи гриба у внутрішній частині капсули актиномікоми. Гематоксилін та еозин, об.х10

Вміст видаленого утворення – еозинофільна маса, що містить переважно некротизовані клітини, базофільні колонії бактерій, петрифікати, а також велику кількість вузликів, оточених пучками колагенових волокон та клітинами фібробластичного ряду. В центрі вузликів виявляються друзи гриба (рис.8).

Описана гістологічна картина характерна для актиномікозу [1, 3, 5]. У нашому випадку актиномікома була локалізована у найбільш типовому для неї

місці – у ділянці шиї [9, 10]. За повідомленнями лікарів гуманної медицини, шийно-лицьова форма актиномікозу реєструється у 50% випадків, грудна – у 15%, а черевна – у 20% [6]. Шийно-лицьова форма може нагадувати злоякісну пухлину шиї і голови, хронічне гранульоматозне ураження (як наприклад при туберкульозі чи грибковій інфекції) [11].

Розглянутий випадок показує, що актиномікому (актиномікотичну гранульому) слід мати на увазі при діагностуванні будь-яких хронічних запальних утворень, особливо в ділянці шиї та голови.

Рисунок 8 – Гістопрепарат. Вміст гранульоми: вузлик, з друзами гриба в центрі. Гематоксилін та еозин, об.х40

106


висновки1. Результати дослідження свідчать про те, що застосована методика діагностики

була інформативною, а хірургічне лікування мало позитивний результат. Операційна рана загоювалась добре без ознак набряків і нагноєння. На 20-й день після операції залишався лише незначної щільності рубець по місцю хірургічного доступу. Фізіологічні функції тварини відновились вже на другий день.

2. Під час моніторингу анестезованої рептилії спостерігали артеріальну десатурацію, пригнічення всіх больових рефлексів, зменшення частоти дихання та частоти серцевих скорочень, сповільнення тканевої перфузії, що мало можливість самостійно відновитися, після закінчення подачі анестетику за рахунок ендогенних компенсаційних механізмів організму.

3. Гістологічними дослідженнями встановлено, що видалене утворення є актономікомою.література

12. Боль К.Г., Боль Б.К. Основы патологической анатомии сельскохозяйственных животных.- Москва: Сельхозгиз, 1954.- 606 с.

13. The Merc manual of Diagnosis and therapy. Section 13, infectious diseases. Chapter 157, Bacterial diseases. Actinomycosis.

14. Шлопов В.Г. Патологічна антомія.- Вінниця: Нова книга, 2004.- 768с., іл.15. Case report. Scalp actinomycosis mimicking soft tissue mass /V.Kalioras, L.Thanos,

S.Mylona et al. //Dentomaxillofacial Radiology.- 2006.- 35.- P.117-118.16. Спесивцева Н.А. Микозы и микотоксикозы животных.- М.: Сельхозгиз, 1960.-

455.17. Bennhoff DF. Actinomycosis diagnostic and therapeutic considerations and review of

32 cases /Laryngoscope.- 1984.- 94.- P. 1198-1217 [Medline].18. Марунчин А.А., Шульга А.В. Дистоция у обыкновенных игуан // VETZOO profy.

– 2005. – №2. – С. 36 – 38.19. Горальський Л.П., Хомич В.Т., Коноський О.І. Основи гістологічної техніки і

морфофункціональні методи дослідження у нормі та при патології. – Житомир: Полісся, 2005. – 288 с.Beradi RS. Abdominal actinomycosis //Surg Gynecol Obstet.- 1979.- 149.- P. 257-266.

20. Cranial and intracranial actinomycosis /Sundaram C, Purohit AK, Prasad VS et al.//Clin Nauropathol.- 2004.- 23.- P.173-177.

21. Allen HA 3rd , Scatarige JC, Kim MH. Actinomycosis: CT findings in six patients //AJR Am J Roentgenol.- 1987 Dec.- 149 (6).- P. 1255-1258.

22. Nagler R., Peled M., Laufer D. Cervicofacial actinomycosis: a diagnostic challenge //Oral Surg Med Oral Pathol Oral Radiol Endod.- 1997.- 83.- P. 652-656. [CrossRef] [Medline]

107


summaryACtinoMyCoMA in igUAnA MAle (Iguana iguana). CAse rePort.

A.Marunchyn, i.kalynovska, o.lojkina, o.tolstoukhov, A.shulga, s.AbbaszadeThe case of actinomycoma in green iguana male is described. The complex methodic of

diagnose, including clinical evaluation, X-ray, ultrasonography and histological investigation was applied. The scheme of total narcosis and animal monitoring during anesthesia as well as the results of surgery and histology are represented.

Key words: iguana, actinomycosis, diagnose, treatment

УДк 619:618.212.7:599.742.7

анеСтеЗІолоГІчнІ аСПекти Диких тварин роДини FELIDAE

марунчин а.а., канд. вет. наук, головний ветеринарний лікар київського зоологічного парку

Вперше виконано порівняльну оцінку методів загального знеболення диких тварин родини Felidae при застосуванні «хелабрунівської» та кетамін-доміторової анестезуючих сумішей.

Ключові слова: індукція, ін’єкція, больова толерантність, відновлення, міорелаксація, рефлекторні реакції, сатурація.

Скорочення: анестезуюча суміш (АС), загальна анестезія (ЗА), анестезуючий засіб (АЗ), хірургічна стадія наркозу (ХСН), «хелабрунівська» суміш (ХС), кетамін-доміторова суміш (КДС), частота серцевих скорочень (ЧСС), частота дихання (ЧД), внутрішня температура тіла (РТТ), внутрішньом´язово (в/м), внутрішньовенно (в/в).

Дикі тварини такі, як: тигр, лев, пума, ягуар, леопард та ін., відносяться до родини котячі Felidae. Вони є агресивні та вкрай небезпечні. У зв’язку з цим для виконання ветеринарних процедур, а особливо хірургічних, у всіх випадках необхідно застосувати ЗА.

У попередні роки для наркозу диких котячих використовували моно АЗ 2- та 10 %-ний розчин фенциклідіну (Phencylcidin) [1]. В подальшому ефективнішою себе зарекомендувала АС, яка складалась з 1- 5- та 10%-ного р-ну кетаміну гідрохлориду (Ketamin hydrochlorid) та 2%-ного р-ну ксилазину (Xylazin)[2]. Але для того, щоб знерухомити тварину та досягнути глибокої стадії наркозу, необхідно ін´єктувати значний об’єм АС, що і являється її недоліком.

За повідомленнями [1,2,3,4,5] малим об'ємом ХС можна досягти швидкої індукції та довготривалої ХСН. У багатьох тварин після введення АС спостерігається гіперсалівація, блювота, гіпотонія, дис- та брадіпное, гіпотермія.

108


мета роботи - порівняти ефективність «хелабрунівської» та кетамін-доміторової АС для загальної анестезії диких котячих, які утримуються у зоопарку.

матеріал та методи роботи. Матеріалом для досліджень були дикі тварини Київського зоопарку: амурський

тигр (Panthera tigris altaica) «Іван», леопард (Panthera phardus) «Самурай», левиця (Panthera leo) «Вероніка», три європейські рисі (Felis lincs) «Тиса», «Хуст», «Рікі». Їх необхідно було ввести у наркоз для проведення хірургічного лікування та завантаження у транспортний засіб.

У дослідженнях були застосовані ветеринарні АЗ: Rompun® TS виробництва Bayer Vital GmbH, Ketamidor® 10% - Richter pharma ag., Domitor® - Pfizer GmbH. Для реверсії наркозу – Antisedan Pfizer GmbH.

Моніторинг анестезованих тварин здійснювали загальними методами, а також проводили спеціальні дослідження. Застосували прилади електрокардіограф Heart Mirror 3D-VET і пульсоксиметр Heart Vision (OXYVET) (рис.1).

Рис.1. Моніторинг анестезованого леопарда

109


АС ін’єктували дистанційно «літаючими» шприцами духовою трубкою TELINJECT. Відстань до тварини була 5 метрів.

Хижаків поділили на дві дослідні групи. Перша група (n=3): для загальної анестезії застосували ХС у дозі – амурському

тигру та левиці по 3 мл, амурському леопарду 1 мл. Друга група (n=3): для загальної анестезії рисей застосували КДС у дозі кетамін

5 мг / кг у комбінації з медетомідін 100 µг / кг. результати власних досліджень. Всіх тварин перед ЗА витримували на голодній дієті протягом 24 годин. У тварин першої групи після введення ХС період індукції тривав 15,7±3,1 хв. З

3-ої по 10-ту хв відмічали гіперсалівацію, а в подальшому – блювоту. Седативний ефект проявився швидко, стадія збудження (гіпертонус, активні рухи, дефекація, сечовиділення та ін.) була відсутня. Поступово настала міорелаксація. Реєстрували бради- та диспное. На відстані визначали активність поверхневих рефлексів шкіри (табл.1).

При відсутності рефлекторної чутливості заходили в клітку та досліджували ЧД, по кольору слизових оболонок ротової порожнини визначали оксигенацію, натисканням пальцями на ясна - перфузію, звільнювали гортань та трахею від слизу. Додатково фіксували тварину за допомогою спеціальних мотузок. Виконували хірургічні операції. Анестезованій тварині по ходу хірургічного лікування постійно проводили моніторинг кардіоваскулярної та дихальної систем організму, а також внутрішньої температури тіла.

У тварин другої групи після введення КДС вже на 1-й хв реєстрували атаксію, з 2-ої по 5-ту хв настала глибока седація. Клінічних ознак характерних для стадії збудження не було, гіперсалівація та блювота – відсутні. На відстані визначали, що дихання у тварини поверхневе, рівномірне, брадіпное.

Заходили в клітку, поверхневі та глибокі рефлекси були відсутні повністю, корнеальний та анальний – частково збережені. Проводили моніторинг анестезованої тварини за визначеною схемою. В подальшому завантажували хижака в транспортний засіб і перевозили в інший вольєр.

Таблиця 1 – Періоди ЗА

Показники Перша група (ХС) Друга група (КДС)Індукція, хв. 15,7±3,1 8,7±2,1

Толерантність, хв. 68,3±13,5 64,3±2,5Відновлення, хв. 14,7±1,5 11,7±0,96

Період толерантності у тварин обох груп проходив м’яко, рівномірно, прогнозовано та стабільно (табл.2). Після 15-ти хв тривалості ХСН відмічали пересихання рогівки, тому для її зволоження застосували 0,9% ізотонічний розчин натрію хлориду.

110


Таблиця 2 – Моніторинг ЗА у період толерантності

Показники Перша група (ХС) Друга група (КДС)

Дихання, хв. 17,2±5,5 13,7±1,4SpO2, % 91,8±3,3 95,3±0,97

Пульс, хв. 69,2±13,8 115,3±0,3Перфузія, сек. 2,7±0,4 2,3±0,4

РТТ, 0С 37,6±0,6 38,3±0,2

У анестезованих тварин ХС перфузія тканин складала 2,7±0,4 секунди, що вказувало на підвищення тонусу симпатичної вегетативної нервової системи та гіпотонію. Рівень сатурації становив 91,8±3,3%. Пульсоксиметром також досліджували ЧП, орієнтувались по пульсовій кривій та звуковому сигналу приладу.

Моніторинг ЧД проводили методом спостереження за рухами грудної стінки, оцінювали тенденцію до зміни і величину зусилля дихання [6]. На початку ХСН реєстрували диспное, а в подальшому – брадіпное. При моніторингу РТТ відмічали гіпотермію 37,6±0,60С.

У тварин анестезованих КДС перфузія складала 2,3±0,4 секунди, насичення гемоглобіну артеріальної крові киснем 95,3±0,97%. На початку ХСН та увесь час її тривалості відмічали брадіпное, але дихання було рівномірним, поверхневим, ритмічним. РТТ становила 38,3±0,20С.

Період відновлення починали відраховувати після в/м введення Антиседану у дозі 0,04 мл/кг (200 µг / кг ). На 3 хв дихання ставало глибоким, відмічали тенденцію до тахіпное. Активізувались рефлекси та тонус скелетних м´язів, після чого тварина піднімалась на кінцівки та здійснювала рухи по клітці. Її загальний стан був збуджений, відмічали розширення зіниць і атаксію ще протягом 20 хв.

висновки1. Результати проведених власних досліджень свідчать про те, що у всіх тварин

дослідних груп було досягнуто ХСН.2. Період індукції, як при застосуванні ХС, так і при КДС, проходить швидко.

Клінічних ознак, які характеризують стадію збудження, не спостерігається. 3. При застосуванні КДС для загального знеболення тварин, менше виражені

побічні дії на дихальну систему та загальну температуру тіла.4. Практичними дослідженнями доведено, що при наркозі ХС та КДС можна

проводити великі за об´ємом довготривалі хірургічні втручання. Для продовження дії глибокої стадії наркозу необхідно додатково в/в вводити 1/3 первинної дози кетаміну.

5. Використання Антиседану, як антидоту ксилазину, у дозі 0,04 мл/кг (200 µг / кг ) маси тіла сприяє швидкому виведенню тварини з наркотичного стану.

111


лІтератУра1. Göltenboth R., Heinz – Georg Klös Krankheiten der Zoo und Wildtiere. – Berlin:

Blackwell Wissenschafts – Verlag, 1995. – 602 p.2. Hans-Heinrich M. Hatlapa, Henning Wiesner. Die Praxis der Wildtier -immobilisation

// Verlag Pael Pareu, Hamburg und Berlin. – 1982. – 96 p.3. А.А.Марунчин. Анестезія диких тварин і птахів в умовах зоопарку// Автореферат

дисертації. РВІКВ БДАУ. – Біла Церква. – 2005. – 22 с.4. Buch M. Methods of Capture, Handling and Anesthesia // Wild Mammals in Captivity.

– 1996. – 25 p.5. N.N. Vetalar in Zoological, Wildlife and/or Exotic Species. Michigan: Parke Davis

Company. – 1976.6. Власенко В.М., Рублено С.В. Моніторинг анестезованих тварин // Метод.

рекомендації. – Біла Церква, 2004. – 32 с.

РезюмеМарунчин А.А. Анестезиологические аспекты диких животных семейства Felidae.Выполнена сравнительная оценка методов общей анестезии диких животных

семейства Felidae при применении «хеллабруновской» и кетамин-домиторовой анестезирующих смесей.

SummaryMarunchyn A.A. Anaesthetic aspects of wild animals of family Felidae.Comparison of the methods of general anaesthesia on wild animals of family Felidae

with using of «hellabrun» and ketamin-domitor anaesthetic mixtures has been done first.

УДк 619:616.089.5/.089.8:599.742.2

анеСтеЗІолоГІчне ЗабеЗПеченнЯ оПеративних втрУчань У веДмеДІв

марунчин а.а., канд. вет. наук, головний ветеринарний лікар київського зоологічного парку

Постановка проблеми та актуальність досліджень. Дикі тварини, які належать до родини Ursidae, завжди були проблемними з точки зору анестезіологічного забезпечення захворювань хірургічного профілю. Велика фізична сила тварин, а особливо дорослих, агресивність, особливості анатомічної будови тіла (густе хутро, товста шкіра, значний шар підшкірної жирової клітковини, добре розвинуті м’язи) обмежують можливості фізичної фіксації та введення в наркоз.

112


Практикою доведено, що перебіг наркозу передбачити не завжди можливо. Різні тварини не однаково реагують на анестетики. У ветеринарній літературі описані клінічні випадки, коли зненацька наставало пробудження на фоні глибокого наркотичного сну [1-3].

Моноанестезувальні засоби володіють значною кількістю побічних ефектів. Основні з них: погана міорелаксація, неповна аналгезія та анестезія, судомний синдром, значні порушення функцій серцево-судинної та дихальної системи, негативний вплив на обмін речовин та терморегуляцію. Складності анестезії полягають і в небезпеці для людей при роботі з хижаками [4-6].

Звичайно, тактика, принципи та методи загальної анестезії ведмедів, як і інших видів диких тварин, за останні 10 років змінилась. Пов’язано це з появою на фармацевтичному ринку нових препаратів для наркозу, за допомогою яких можливості знеболення розширились. Застосовуючи комбінації дисоціативних анестетиків, невролептиків довго- та короткотривалої дії, α2-агоністів, наркотичних аналгетиків, інгаляційних наркотичних анестетиків, можна збільшити обсяг хірургічних втручань. Велике значення має і майстерність ветеринара, вміння швидко та плавно не тільки ввести тварину в наркоз, але й вивести з наркотичного стану [7].

метою нашого дослідження було встановити та порівняти ефективність анестезувальних сумішей для наркозу ведмедів (хірургічне лікування), до складу яких входили ветеринарні неінгаляційні анестетики: Ketamin 10% виробництва WDT (Tierärzte eG), Rompun® TS 500 Bayer Vital GmbH, Domitor® Pfizer GmbH, Zoletil® 100 Virbac S.A. Здійснити реверсію наркозу препаратом Antisedan Pfizer GmbH, якщо до наркотичної суміші входили α2-агоністи.

матеріал і методи досліджень. Матеріалом для дослідження були 9 дорослих тварин: три білі ведмеді (Ursus maritimus), які належали засл. арт. Росії Ю. Денисенко, (атракціон «Північне сяйво»); тварини Київського зоопарку: три білогруді гімалайські ведмеді (Ursus thibetanus) та по одному - малайський ведмідь (Helarctor malayanus), бурий ведмідь (Ursus arctos), тянь-шанський бурий ведмідь (Ursus arctor lasiotus).

Всі випадки застосування загальної анестезії були зумовлені виробничою необхідністю та захворюваннями тварин, які потребували планового і екстреного хірургічного втручання.

Ведмедів розділили на три дослідні групи. Тваринам першої групи ін’єктували Хелабрунівську суміш, другої – суміш кетаміну з домітором (діюча речовина медетомідін), третьої – золетіл (діюча речовина тілетамін + золазепам в співвідношенні 1:1).

Щодо операційно-анестезіологічного ризику, то загальний клінічний стан тварин можна було умовно оцінити як стан середньої тяжкості з тенденцією до тяжкого. Впливав на це також фактор відсутності проведення об’єктивного обстеження у переднаркозний період.

113


Оцінки об’єму і характеру операцій були прирівняні до складних й тривалих. Характер анестезії: комбінований наркоз з використанням неінгаляційних засобів та місцевої анестезії зі збереженням самостійного дихання.

Перед введенням у наркоз тварин утримували на голодній дієті 24 години, напування водою не припиняли. Виключення становив випадок з тянь-шанською бурою ведмедицею, яку необхідно було оперувати екстрено.

Анестезувальні суміші вводили внутрішньом’язово «літаючими» шприцами об’ємом 5,0 мл за допомогою духової трубки фірми Telinject. Відстань до тварин становила від 3-х до 7-ми метрів.

Таблиця 1. Робочі схеми анестезії ведмедів.

Вид тварини, статьМаса

тіла, кг (прибл.)

Вік (років)

Анестезувальна суміш

Доза введення в наркоз(мг/кг )

Антидот Доза(мг/кг)

Білий ведмідь, 350 17Хелабрунівська

суміш

3,0 мл/тв

Атипамезоль 0,2

Бурий ведмідь, 600 19 4,0 мл/твТянь-шанський бурий ведмідь, 180 11 1,5 мл/тв

Білий ведмідь, 300 7

Кетамін + медетомідин 4+0,04

Малайський ведмідь, 170 24

Білогрудий гімалайський

ведмідь, 200 3 - -

Білий ведмідь, 350 23

Золетіл 7 - -


ведмідь, 180 3


ведмідь, 150 3

Зміни кардіопульмонарних фізіологічних параметрів досліджували: спостереженням за самостійним диханням та його характером, мануальним методом (пальпація ділянки серця та пульсу), аускультацією тонів серця, електрокардіографією (прилад Heart Mirror 3D-VET), пульсоксиметрією (прилад Heart Vision OXYVET). Визначали активність рефлексів (мигальні та рогівкові, ширина зіниць, їх реакція на світло, реакція на больові стимули у ділянці оперативного втручання, а також

114


активність реакцій на подразнення у рефлексогенних ділянках). Моніторинг за внутрішньою температурою тіла здійснювали методом ректального вимірювання.

Результати власних досліджень.Тварини першої групи. Реакція ведмедів на ін’єкцію літаючого шприца була

спокійною. Активного збудження не виникло, вони оглядали ділянку введення, а потім зубами звільнялись від нього. Індукція тривала задовільно, без стадії збудження. Досить швидко досягли поверхневого ступеня седації, при якому тварина приймала лежаче положення, рухи голови ставали мляві, виникло тахіпное. Загальний стан був сонливий. Потім поступово наставала міорелаксація, але реакції на больові подразнення, які досліджувались на відстані, все ще зберігались. Додаткове введення кетаміну у дозі 1/3 від первинно введеної кількості проводили через 20 – 30 хв. до досягнення глибокого наркозу ( 2-3 рази). При відсутності реакцій на больові стимули та зміни характеру дихання, впевнившись про настання хірургічної стадії наркозу, підходили в безпосередній контакт до тварини. Тампонами видаляли слиз і слину з ротової порожнини, підтягували язик та вводили під контролем зору інтубаційну трубку без надувної муфти у трахею на 5 см нижче голосової щілини. Для контролю за правильністю інтубації двома руками натискали з боку на грудну клітку ведмедя, щоб визначити струмінь повітря, який виходить з інтубаційної трубки. Дану процедуру виконувати нелегко, оскільки голова тварин надто важка, а грудна клітка масивна, тому для цього необхідно було застосувати значні зусилля. При роботі з білим ведмедем застосували роторозширювач. Датчик пульсоксиметру закріпили до язика та досліджували показники частоти пульсу і сатурацію. Спеціальні затискачі (крокодили) електрокардіографа фіксували до шкіри в ділянках ліктьових та колінних суглобів, попередньо намастивши її гелем. ЕКГ досліджували декілька разів впродовж наркозу. Для місцевої інфільтраційної анестезії застосували 2 % розчин новокаїну в кількості 20 мл на тварину.

Виконані хірургічні об’єми: – білий ведмідь: екстракція різців нижньої щелепи внаслідок хронічного пульпіту

та гнійного періодонтиту;– бурий ведмідь: екстирпація епуліса електрохірургічним методом (прилад ЕХВА

«Надія-2»), (рис.1);– тянь-шанський бурий ведмідь: хірургічна обробка та зашивання рваних ран

шкіри, екстракція двох молярів, уражених глибоким карієсом та гнійним пульпітом (рис.2).

115


1. Видалення епуліса нижньої щелепи. 2. Інтубація трахеї ведмедя.

Таблиця 2. Моніторинг тварин першої дослідної групи.

Показники Білий ведмідь Бурий ведмідь Тянь-шанський бурий ведмідь

Період індукції, хв. 47 40 34Період больової толерантності, хв 25 60 64Частота пульсу за 1 хв 48,8±0,4 70,8±1,35 60,2±0,7Перфузія тканин, с 3 2 3Частота дихання за 1 хв 8,2±0,02 10±0,5 9±0,3SpO2 , % 94,4±0,3 92±0,75 95±0,5Ректальна температура тіла, 0С 37,6 36,3±0,02 36,9Період відновлення, хв 12 14 13

Реверсію наркозу здійснили лікувальним засобом Антиседан (атипамезоль) у дозі 0,2 мг/кг м.т. Після закінчення операційних процедур препарат вводили внутрішньом’язово, а за клінічним станом тварини спостерігали на відстані за межами клітки. Через декілька хвилин реєстрували збільшення частоти дихальних рухів, дихання ставало глибоким. Поступово відновилась рефлекторна чутливість, після чого тварина піднімалась на кінцівки. Поверхневий ступінь седації спостерігався протягом двох годин.

Тварини другої групи. Для введення тварин в наркоз застосували суміш препаратів: кетамін з домітором. Першу дозу розраховували таким чином, щоб вона становила 80% від ваги тварини. Реакція на ін’єкцію проявилась так само, як і у тварин першої дослідної групи. Індукція відбулася швидко, м’яко, стадія збудження не проявилась. Слиновиділення було помірним, блювота не виникла. За короткий період часу клінічні ознаки, що виникли у цих тварин, були характерні для середнього ступеня седації. Поступово настав глибокий наркоз, кетамін додатково не вводили.

116


Моніторинг перебігу наркозу здійснювали за попередньою схемою, але інтубацію трахеї не проводили.– Виконані хірургічні об’єми: – білий ведмідь: екстракція обох ікол нижньої щелепи внаслідок старих переломів,

ускладнених хронічним гнійним пульпітом і периостальною гранульомою (рис. 3,4);

– малайський ведмідь: обрізання кігтів та екстракція двох різців нижньої щелепи, ускладнених гнійним пульпітом;

– білогрудий гімалайський ведмідь: імплантація ідентифікаційного мікрочипу, обрізання кігтів, завантаження у транспортний засіб.

3. Анестезований білий ведмідь. 4. Переламані ікла та пульпіт.

Таблиця 3. Моніторинг тварин другої дослідної групи.

Показники Білий ведмідь Малайський ведмідь


ведмідьПеріод індукції, хв 28 27 25

Період больової толерантності, хв 46 52 49

Частота пульсу за 1 хв 65,2±1,1 69,2±0,9 78±0,5Перфузія тканин, с 3 2 3

Частота дихання за 1 хв 25,2±1,1 21,2±1,1 23,6±0,85SpO2 , % 92,4±0,8 90,4±0,8 94±0,5

Ректальна температура тіла, 0С 38,3±0,02 37,9±0,02 38,2±0,02Період відновлення, хв 12 11 70

117


Білому та малайському ведмедям для виведення з наркотичного стану ввели антиседан у дозі 0,2 мг/кг м.т. Через 15 хв. тварини вже вільно пересувалися по вольєру, клінічні ознаки анестезії були відсутні.

Білогрудому гімалайському ведмедю антидот не ін’єктували. Період відновлення тривав 70 хв. Після того як тварина почала ходити у вольєрі впродовж декількох годин ще спостерігали стан, характерний для поверхневого ступеня седації.

Тварини третьої групи. Для введення тварин в наркоз застосували препарат золетіл у дозі, яка становила 80 % анестетика від ваги тварини. У переднаркозний період запобігли стресовим явищам. Після ін’єкції препарату дискоординацію у супроводі тахіпное реєстрували вже з третьої хвилини. Тварини ходили вздовж огорожі, була виражена атаксія. Потім приймали сидяче положення та поступово лягали. При поглибленні анестезії пригнічувалась рефлекторна чутливість, дихання стало рівномірним. Додаткове введення анестетика не проводили.

У хірургічній стадії наркозу моніторинг проводили так само, як і в попередніх дослідженнях, трахею не інтубували.

Виконані хірургічні об’єми:– білий ведмідь: екстракція лівого ікла нижньої щелепи внаслідок хронічного

гнійного пульпіту; – білогрудий гімалайський ведмідь: імплантація ідентифікаційного мікрочипу,

рентгенологічне дослідження на наявність дисплазії кульшових суглобів, відбір крові (рис. 5);

– білогрудий гімалайський ведмідь: імплантація ідентифікаційного мікрочипу, рентгенологічне дослідження на наявність дисплазії кульшових суглобів, відбір крові, лікування дерматиту.

5. Моніторинг перебігу наркозу гімалайського ведмедя.

118


Таблиця 4. Моніторинг тварин третьої дослідної групи.

Показники Білий ведмідьБілогрудий

гімалайський ведмідь


ведмідь

Період індукції, хв 32 25 29

Період больової толерантності, хв 52 58 57

Частота пульсу за 1 хв 69,2±0,6 64,8±1,1 70,8±1,4

Перфузія тканин, с 3 3 3

Частота дихання за 1 хв 23,4±1,15 24,4±0,8 25,6±0,82

SpO2 , % 92,8±0,9 90,4±0,8 91,6±0,4

Ректальна температура тіла, 0С 38,0±0,02 38,1±0,02 37,8±0,02

Період відновлення, хв 152 137 142

Пробудження з наркозу тривало значно довше, ніж у тварин першої та другої групи, і супроводжувалось тремором різного характеру, ністагмом, дис-, тахі- та брадипное. Відмічали депресію свідомості, яка супроводжувалась галюцинаційними включеннями. Після виходу з наркозу тварини ще досить тривалий час ретельно оглядали клітки, винюхували стіни та підстилку. Ймовірно, такий клінічний стан вказував на часткову амнезію. Ознаки анестезії зникли повністю через 3 – 4 години.

обговорення. Практично випробувані анестезувальні суміші вказують на абсолютно новий підхід щодо наркозу ведмедів. Особливу зацікавленість в анестезіологічному аспекті викликають комбінації препаратів, які реверсуються.

У попередні роки загальну анестезію здійснювали наркотичними сумішами, до складу яких входили еторфін, фентаніл або карфентаніл. Цими комбінаціями досягалась глибока фаза наркозу для того, щоб виконати великі й складні операції у різних напрямках хірургії (травматології, онкології, урології та ін.). Але вказані наркотичні анальгетики надзвичайно небезпечні для людей (анестезіолога), а у тварин пригнічують функцію дихання. Є повідомлення ветеринарних анестезіологів про випадки загибелі тварин під час наркозу. Пригнічення дихального центру супроводжується припиненням вентиляції легень (апное). В такому випадку проводили реанімацію: інтубація із штучною вентиляцією легень та введення антагоністів. Виникала загроза розвитку постгіпоксичного набряку головного мозку . Також маніпуляції в ротовій порожнині хижака завжди пов’язані з ризиками для людини.

Проведені нами дослідження вказують на сильний анальгетичний ефект застосованих анестезувальних сумішей. Виконання оперативних втручань в ротовій порожнині, а особливо на зубах у дорослих ведмедів без якісної анестезії не є

119


можливим. Для посилення знеболення ділянки екстракції зубів застосували місцеву інфільтраційну анестезію за методом «щільного повзучого інфільтрату» 0,5% розчином новокаїну. Операцію починали з відокремлення ясен біля основи коронки зуба, затиснувши коронку щипцями (байонетом), поступово розхитували зуб в альвеолі. Для видалення ікла додатково застосували гостре трепанаційне долото і молоток.

Введення у наркоз є одним із найнебезпечніших періодів загальної анестезії. Саме в цей час виникають ускладнення різного характеру та навіть може розвинутися термінальний стан. Надання реанімаційної допомоги ведмедям на даному етапі значно обмежене. Застосовані нами суміші неінгаляційних анестетиків у визначених дозах забезпечили сприятливе введення у наркоз (індукцію), повне вимкнення свідомості й досягнення хірургічної стадії наркозу.

У тварин першої і другої групи на початкових етапах перебігу індукції виникло тахіпное, а впливав на це специфічний ефект кетаміну активізовувати кровообіг та дихальний центр. При поглибленні наркозу дихання вирівнювалося та навіть реєстрували короткотривале диспное, а під дією Хелабрунівської суміші спостерігалось брадипное. Також до досягнення глибокого рівня наркозу очні яблука здійснювали плавальні рухи, зіниці були розширені, відмічали ністагм. Інші компоненти анестезувальних сумішей, такі як ксилазин і медетомідин, являючись α2-агоністами, виключили кетамінові небажані клінічні ефекти – тремор та судоми, що і вказує на вибіркову й пригнічуючу дію препаратів на викликані потенціали в таламічних утвореннях і лімбічній системі. Посилення знеболення та протисудомна дія α2-агоністів пояснюється пригніченням збудливості аферентних та еферентних систем головного мозку.

У тварин третьої групи період індукції тривав приблизно такий самий відрізок часу, як і в попередніх дослідженнях, але були сильніше клінічно виражені побічні дії дисоціативного анестетику – тілетаміну. Після введення препарату спостерігався підвищений тонус м’язів та некоординовані рухи кінцівок і голови. Для оптимізації наркозу додано золазепам, який пригнічує підкіркові ділянки мозку, викликаючи анксіолітичну та седативну дію, володіє міорелаксуючим ефектом.

У хірургічній стадії наркозу у всіх тварин були збережені, але значно пригнічені захисні рефлекси : рогівковий, кашльовий, ковтальний.

Щодо моніторингу дихання, якщо взяти до уваги те, що нормальна величина SpO2 знаходиться в діапазоні 94-98%, а в наших дослідженнях сатурація не знижувалася нижче 90,4±0,8 %, оксигенотерапію не застосували, щоб не викликати пригнічення спонтанного дихання від гіпероксичного синдрому. Також токсичний вплив високих концентрацій кисню може проявитися у післяопераційному періоді у вигляді ателектазів, гнійного трахеобронхіту або респіраторного дистрес-синдрому. У той же час, якби виникло гостре порушення кровообігу або глибока артеріальна гіпоксемія (SpO2 85%), ми були готові збільшити концентрацію кисню у повітрі, що вдихається.

120


Проглядаючи тренди фотоплетизмограми (ФПГ) при оформленні протоколів наркозу тварин першої дослідної групи, ми виявили зниження амплітуди ФПГ і поступове її відновлення під час виконання інтубації трахеї. Впливало на це, ймовірніше, подразнення потужних рефлексогенних зон трахеї та збудження симпатичної системи.

Периферійний вазоспазм та тахікардію реєстрували на перших хвилинах глибокої стадії наркозу, а потім кровообіг нормалізувався, частота серцевих скорочень залишалась в межах фізіологічної норми. Підтримку функції кардіоваскулярної системи можна пов’язати з активацією симпатичної системи та викидом в кров катехоламінів під дією дисоціативних анестетиків. При цьому не можна не брати до уваги і психоемоційний стан тварин у передопераційний період, хоча зовнішні ознаки стресу у них були відсутні.

Після закінчення проведення хірургічного лікування тваринам, які були анестезовані Хелабрунівською та кетамін-доміторовою сумішами, ввели α2-антагоніст - препарат антиседан, діюча речовина якого атипамезоль. Вже через декілька хвилин реєстрували зміни характеру дихання, а саме: глибокий вдих і видих, поява тахіпное. Почалось відновлення поверхневих рефлексів шкіри та тонусу м’язів, активація повікового рефлексу, з’явилось ковтання. Потім настало повне пробудження і тварини були здатні вільно рухатись у вольєрі.

У ведмедів, анестезованих золетілом, період відновлення (пробудження) був довготривалим і супроводжувався підвищеним тонусом м’язів, дискоординацією, дис- та тахіпное, тривалою післянаркозною депресією.

висновки та перспективи подальших досліджень. 1. Практичними дослідженнями встановлено, що застосованими анестезувальними

сумішами неінгаляційних анестетиків (Хелабрунівська, кетамін + домітор, золетіл) можна ввести ведмедів у хірургічну стадію наркозу та виконати складні й тривалі оперативні втручання на поверхні тіла, а також в ротовій порожнині.

2. Даний вид загальної анестезії можна охарактеризувати як комбінований наркоз з використанням неінгаляційних анестетиків зі збереженням самостійного дихання.

3. Перебіг хірургічної стадії наркозу супроводжується помірною артеріальною гіпоксемією при самостійному диханні атмосферним повітрям.

4. Важливим і позитивним є можливість підтримувати дію наркозу протягом декількох годин додатковими введеннями анестетиків у дозі 1/3 від первинної дози.

5. Після закінчення проведення хірургічного лікування можна здійснити реверсію наркозу, що запобігає анестезіологічним ускладненням у післяопераційному періоді.

6. Зважаючи на досягнуту глибину та перебіг наркозів кетамін-домітором, можна

121


зменшити дозу кетаміну з 4 мг/кг до 2-3 мг/кг м.т. для тварин, які утримуються у зоопарку, а дозу золетілу з 7 мг/кг до 5 мг/кг маси тіла.

7. Ризики загальної анестезії та операції зумовлені багатьма чинниками: відсутність об’єктивного клінічного обстеження тварини в передопераційний період, обмежені можливості лікарської допомоги і реанімації в період індукції та пробудження, досвід ветеринарного анестезіолога щодо роботи з дикими тварини, небезпека для людей, анестезіологічно-хірургічні процедури з ведмедями найчастіше виконуються в умовах вольєру. Перспективою подальших досліджень є вивчення можливості застосування

інгаляційного наркозу різним видам ведмедів. Розробити методику та опрацювати техніку маскового і ендотрахеального наркозу попередньо індукованим тваринам неінгаляційними анестетиками. Визначити переваги та недоліки інгаляційного і неінгаляційного наркозів.

Література 1. Buch M. Methods of Capture, Handling and Anesthesia // Wild Mammals in Captivity. –

1996. – 25 p.2. Hans-Heinrich M.Hatlapa, Henning Wiesner. Die Praxis der Wildtier – immobilization. –

Hamburg und Berlin:Verlag Paul Parey, 1982. – 96 p.3. Fower, M.E. (ed). Zoo and Wild Animal Medicine. 2nd edn. W.B. Saunders. (Chapters

on Urside and Procyonidae). – 1986.4. Torgerson, R.W. Polar Bear Biology and Medicine. In: CRC Handbook of Marine

Mammal Medicine, ed. L.A. Dierauf. CRC Prees. – 1990.5. Wallach, J.D. and Boever, W.J. Diseases of Exotic Animals. W.B. Saunders. (Chapters on

Ursidae and Procyonidae). – 1983.6. Carlstead, K., Seidensticker, J. and Baldwin, R. Environmental enrichment for Zoo

Bears. Zoo Biology 10:3-16. – 1991.7. Марунчин А.А. Анестезія диких тварин і птахів в умовах зоопарку: Автореф.

дис... канд. вет. наук. – Біла Церква, 2005 – 22с.

реЗЮмеанестезиологическое обеспечение оперативных вмешательств у медведей.

а.а. марунчин.

В статье отображены результаты общей анестезии разных видов медведей. Определено влияние смесей неингаляционных анестетиков на кардиопульмонарные физиологические показатели животных. Практически исследована возможность проведения оперативных вмешательств у взрослых хищников. Выполнена реверсия наркоза, которая описана впервые в Украине в ветеринарной анестезиологии.

122


sUMMAryAnaesthetic provision with surgical treatment of the bears. A. Marunchyn.

The results of general anaesthesia of different species of bears are described in the article. The effect of mixtures of non-inhalant anaesthetics on the cardiopulmonary physiological indices of the animals was determined. The possibility of carrying out the operative interference of the adult predators was practically proved. The reversion of anaesthesia which was used in the Ukrainian veterinary anaesthesiology for the first time was carried out.

УДк 619:618.212.7:599.735.31/.34

ІммобІлон І еторФІн-кСилаЗиновий наркоЗ оленІв ДавиДа (ELAPHURUS DAVIDIANUS) – вПлив на ЯкІСть анеСтеЗІї,

карДІоваСкУлЯрнУ та ДихальнУ СиСтеми

Шульга а.в., здобувач, луганський наУ, лікар ветеринарної медицини київського зоологічного парку

У статті описано застосування іммобілонового та еторфін-ксилазинового наркозу оленям Давида. Відображено перебіг наркозу, визначені його періоди, виконана їх інтерпретація. Дослідження проведені в польових умовах. Визначено вплив наркотичних сумішей на кардіоваскулярну та дихальну системи організму, а також температуру тіла.

Ключові слова : індукція, больова толерантність, відновлення, пульсоксиметрія, сатурація.

Скорочення: анестезуюча суміш (АС), наркотична речовина (НР), наркотичні засоби (НЗ), загальна анестезія (ЗА), частота серцевих скорочень (ЧСС), частота пульсу (ЧП), частота дихання (ЧД), ректальна температура тіла (РТТ).

Вид олень Давида занесений до міжнародної Червоної Книги та має статус на межі зникнення. У природних умовах ці тварини вже не існують і збереглись лише у зоопарках та заповідниках [1].

У ветеринарній літературі, як вітчизняній так і зарубіжній, існує досить мало інформації про застосування АС для наркозу оленів Давида, не вказані точно дози НР, недостатньо проведено клінічних досліджень щодо впливу анестетиків на кардіоваскулярну та дихальну системи організму [2].

Тому метою дослідження було методом розрахунку визначити оптимальну дозу НС для наркозу оленів Давида, дослідити перебіг стадій наркозу, визначити тривалість періодів (індукції, больової толерантності, відновлення) та з’ясувати вплив НС на кардіоваскулярну, дихальну системи організму, внутрішню температуру тіла.

123


матеріал і методика досліджень. У дослідженнях були застосовані наступні ветеринарні НЗ : Large animal

Immobilon i Large animal Revivon виробництва Novartis Animal Health UK Ltd, Rompun® TS виробництва Bayer Vital GmbH, Etorphine виробництва International Zoo Veterinary Group.

4 клінічно здорові самки оленя Давида були анестезовані:- перша група (n=2) – іммобілон у дозі 0,02 мг еторфіну на 1 кг м.т.;- друга група (n=2) – еторфін 0,02 мг з ксилазином 0,4 мг на 1 кг м. т. НС ін’єктували дистанційно внутрішньом’язово переважно в ділянку стегна

«літаючим» шприцом об’ємом 3,0 мл. Застосували гвинтівку типу G.U.T 50 фірми TELINJECT, принцип роботи якої базується на дії СО2 [3].

Тварин перед наркозом на голодній дієті не витримували. Вагу оленів визначали на відстані, індивідуально. Брали до уваги психологічний темперамент тварин і їх вік.

Перебіг наркозу визначали наступним шляхом: період індукції (відрізок часу від ін’єкції до прийняття твариною лежачого положення), період больової толерантності (коли тварина знаходиться в лежачому положенні на боці та відсутні больові рефлекторні реакції), період відновлення (відрізок часу, від появи перших ознак рефлекторної чутливості до повернення тварини у стадо) [4].

Глибину наркозу тестували наявністю й активністю больових рефлексів. Досліджували частоту пульсу, серцевий ритм, частоту дихання та насиченість киснем артеріальної крові, проводили моніторинг температури тіла.

Визначення SpO2 та частоту пульсу проводили приладом пульсоксиметр Heart Vision (OXYVET) виробництва фірми Innomed (Угорщина), датчик якого закріпляли до язика. Ритм серця визначали методом аускультації, а також орієнтувались по пульсовій кривій на дисплеї пульсоксиметру (рис. 1).

Рис. 1. Пульсоксиметрія у самки оленя Давида

124


Моніторинг внутрішньої температури тіла здійснювали шляхом ректального вимірювання.

результати власних досліджень та їх обговорення.Під час проведення дослідження всі чотири тварини знаходились у одному

зовнішньому вольєрі, розміром 30х30 м, у якому обладнано годівниці, є накриття та дерева.

Після ін’єкції оленю НС «літаючим» шприцом інші особини групи починали бігати по вольєру та були налякані. Особливо їх занепокоєння викликала атаксія, яка виникала у досліджуваної тварини на перших стадіях наркозу.

Період індукції проходив швидко (табл. 1), після короткотривалої атаксії тварина була знерухомлена. На відстані спостерігали, що присутнє тахіпное з характерним хриплим стогіном на видиху.

Таблиця 1 – періоди наркозу оленів Давида

ПоказникиПерша група (іммобілон) Друга група (еторфін/ксилазин)

8 років 2 роки 8 років 2 роки

Індукція, хв. 3 3,5 3,2 4,1

Толерантність, хв. 18 19 17 18

Відновлення, с. 40 47 53 52

У період толерантності міорелаксація була виражена повністю, на початку корнеальний рефлекс був збережений, а в подальшому його активність ставала слабкою. Поверхневі рефлекси шкіри – відсутні, анальний – збережений. Язик розслаблений, що надавало змогу закріпити датчик пульсоксиметру та виконати дослідження сатурації та частоти пульсу.

У тварин другої дослідної групи спостерігали гіперсалівацію, на відміну від тварин першої групи.

Таблиця 2 – моніторинг наркозу у період толерантності

ПоказникиПерша група (іммобілон) Друга група (еторфін/ксилазин)

8 років 2 роки 8 років 2 роки

РТТ, 0С 39,7 39,5 39,3 39,5

Пульс, хв. 106 131 147 122

Дихання, хв. 32 29 36 33

SpO2, % 92 90 93 89

125


У всіх оленів реєстрували тахіпное та тахікардію.Після 15 хв тривалості періоду толерантності відмічали тенденцію до диспное. Ректальна температура тіла у досліджуваних тварин була дещо завищена або

залишалась на верхній межі норми. Показники ЧП, які демонструвались пульсовою кривою на дисплеї приладу,

порівнювали з фактичними показниками ЧП, які досліджували пальпаторно на серединній хвостовій артерії. Вони співпадали.

Рівень сатурації у весь період толерантності залишався високим. Для реверсії наркозу застосували ревівон, діюча речовина якого дипренорфіну

гідрохлорид у дозі 0,04 мг на кг м.т. За короткий відрізок часу відновились рефлекторні реакції, тварина підіймалась на кінцівки та приєднувалась до інших тварин у групі.

висновки.1. Результати проведених досліджень свідчать, що у всіх чотирьох тварин було

досягнуто хірургічної стадії наркозу.2. Клінічними спостереженнями виявлено, що індукція проходить швидко без

стадії збудження, що є важливо при наркозі оленів. 3. Встановлено, що іммобілоновий та еторфін-ксилазиновий наркоз

супроводжується тахікардією та тахіпное навіть на глибокій стадії наркозу.4. Досліджено, що у ІІІ стадії наркозу ректальна температура тіла була дещо

завищена, що можливо є наслідком стресу, який виник у тварин у період перед наркозом.

5. Після інтравенозної ін’єкції ревівону, період відновлення є короткотривалим. Олені протягом 60-ти секунд піднімаються на кінцівки. Дія ксилазину продовжується, це надає можливість утримувати тварин у стані легкої седації, ще декілька годин. лІтератУра

1. Дорлинг Киндерсли. Животные // Большая энциклопедия – Лондон, Нью-Йорк, Мюнхен, 2001. – 624 с.

2. Göltenboth R., Heinz – Georg Klös Krankheiten der Zoo und Wildtiere. – Berlin: Blackwell Wissenschafts – Verlag, 1995. – 602 p.

3. Hans-Heinrich M. Hatlapa, Henning Wiesner. Die Praxis der Wildtier -immobilisation // Verlag Pael Pareu, Hamburg und Berlin. – 1982. – 96 p.

4. Марунчин А.А.. Анестезія диких тварин і птахів в умовах зоопарку// Автореферат дисертації. РВІКВ БДАУ. – Біла Церква. – 2005. – 22 с.

5. Марунчин А.А., Іздепський В.Й. Особливості загальної анестезії диких тварин, системи дистанційних ін’єкцій та використання пульсової оксиметрії для моніторингу анестезії // Матеріали ІІІ Міжн. наук.- практ. конференції з утримання, годівлі та лікування диких тварин, Київ. – 2007. – С.8 – 12.

126


РезюмеШульга А.В. Иммобилон и эторфин-ксилазиновый наркоз оленей Давида

(Elaphurus davidianus) – влияние на качество анестезии, сердечно-сосудистую и дыхальную системы организма.

В статье описано применение иммобилонового и эторфин-ксилазинового наркоза оленям Давида. Отображено прохождение наркоза, определены его периоды, выполнена их интерпретация. В полевых условиях исследовано влияние наркотических смесей на сердечно-сосудистую и дыхательную системы организма, а также температуру тела.

Summaryshulga A. immobilon and etorphin-xylazin anaesthesia on the david’s deer (Elaphurus

davidianus) – effect on the guality of anaesthesia, cardiovascular and respiratory systems of the organism.

Clinical case of using of immobilon and etorphin-xylazin anaesthesia on the David’s deer is described. The process of anaesthesia and periods of it are interpreted. The effect of dragmixtures on cardiovascular, respiratory systems of the organism and rectal temperature of the body were investigated in the field conditions.

Применение Золетила У Дикихи ЗооПарковСких ЖивотнЫх

альшинецкий м.в., заведующий ветеринарным отделом московского зоопарка

Тилетамин\золазепам – комплексный инъекционный анестетик для ветеринарии производится и применяется уже более 20 лет. Производители рекомендуют его к применению практически у всех позвоночных от рептилий до крупных млекопитающих. Фармакологическая его формула включает диссоциативный анестетик из класса NMDA-антагонистов тилетамина гидрохлорид и бензодиазепиновое производное – золазепам (Flupyrazapon).

Фармакокинетика – информация ограничена!!!! (цитата из довольно толстой книжки по фармакологическим препаратам для животных доктора Пламба 1999 года издания). За 10 лет существенных изменений в информации об этом препарате найти не удалось. Известна формула тилетамина С12Н17 NOS молекулярный вес 223,34 г\моль, метаболизируется печенью, выводится почками. Время полужизни неизвестно, опасность для беременных неясна. Легальный статус неопределен не только в России, но и во многих других странах. По рекомендациям ASA (American Society of Anesthesiologists) противопоказан пациентам 3й и выше группы риска, а также для пациентов с поражением центральной нервной системы, гипертиреоидизмом, заболеваниями сердца, поджелудочной железы и почек, беременным, пациентам

127


с глаукомой или проникающими ранениями глаза. Несмотря на столь скудное количество информации (вероятнее всего, это связано с тем, что препарат в медицине не применяется и поэтому никто не проводит его детальное исследование) в настоящее время в России – это довольно распространённое средство для анестезии, как домашних, так и диких животных.

Итак. Почему же золетил? Сначала немного теории. Тилетамин относится к группе nMdA-антагонистов — класс анестетиков, ингибирующих действие N-метил-D-аспартатного NMDA-рецептора. NMDAR — ионотропный рецептор, пропускающий электрические сигналы от нейрона к нейрону в головном и спинном мозге. Для передачи сигнала канал рецептора должен быть открыт. Чтобы открыть канал, требуются лиганды: глутамат и глицин. При открытии канала и одновременной связи с глицином и глутаматом, NMDA-рецептор называют «активированным». Глутаматные NMDA-рецепторы сконцентрированы в лобной коре, гиппокампе, лимбической системе и стриатуме.

Антагонисты, связываясь с аллостерическими сайтами на белках, составляющих рецептор, закрывают ионный канал, ингибируя его активность. Всего выделяют четыре категории антагонистов:1. Конкурентные – блокирующие место связи рецептора с глутаматом.2. Глициновые антагонисты – блокирующие глициновый сайт.3. Неконкурентные — связывающиеся с аллостерическими сайтами.4. Неконкурентные, блокирующие сам ионный канал.

Тилетамин является конкурентным антагонистом. Таким образом, блокируя NMDA-рецепторы, он вызывает состояние, которое в медицине называют диссоциативной анестезией (2). Она характеризуется каталепсией, амнезией и анальгезией, что в принципе и определяет его широкое применение в комбинированной анестезии в ветеринарии. Теперь о грустном – NMDA-антагонисты могут вызвать серьёзное повреждение мозга в таких областях, как кора поясной извилины и ретроспленальная кора (1).

Была так же описана способность NMDA-антагонистов увеличивать концентрацию реактивных форм кислорода как in vivo, так и in vitro (9). Основой этого феномена является нарушение проницаемости ионотрофных рецепторов (в частности NMDA-рецепторов), регулирующих содержание калия, натрия, хлора, кальция во вне- и внутриклеточном пространстве. Результатом активации данных рецепторов является повышенный вход кальция в клетку с последующей стимуляцией протеаз, действие которых основано на медленном расщеплении субмембранных и цитоплазматических микрофиламентных и микротрубочных структур, а также на фрагментации ДНК. Это приводит к разрушению клеточных структур и формированию мембранных вакуолей, включающих в себя элементы внутриклеточного содержимого (митохондрии, рибосомы), так называемых «лезии Олни». В 1989 году Джон Олни с

128


соавторами (7) осуществили эксперимент, в ходе которого крысам вводились большие дозы экспериментального диссоциатива MK-801. При последующей проверке в мозге у грызунов обнаружились эти самые вакуоли, преимущественно в постериорной поясной извилине и ретроспленальной коре. В зонах вакуолизации скапливалась микроглия и белок Hsp70, с формированием необратимых повреждений.

Роланд Ауэр (8) провел схожие исследования с целью изучить зависимость поражения от возраста и пола животных, и показал, что с увеличением возраста смертность крыс от блокировки NMDA-рецептора повышается, а у самок крыс всех возрастов более выражена гибель нейронов. Однако подобные исследования у других групп животных не проводились. Этот процесс сопровождается также возрастанием перекисного окисления липидов (ПОЛ) и последующим развитием оксидантного стресса (10) .Пусть и без установленной причины, подобные данные говорят о том, что это высокотоксичная для нервной ткани группа препаратов, вызывающая в головном и спинном мозге окислительный стресс. Кроме того, как и все производные фенциклидина, тилетамин может вызывать судороги и повышенную саливацию. Нейротоксичность антагонистов могут снижать и другие медикаменты, действующие на различные нейромедиаторные системы — это антихолинергические препараты, диазепам, барбитураты, этанол, агонисты серотониновых 5-НТ2А рецепторов, и мусцимол.

Вероятнее всего, с целью предупреждения нейротоксических эффектов производитель выпускает тилетамин вместе с золазепамом производным бензодиазепинов.

Бензодиазепины — класс психоактивных лекарственных веществ с гипнотическим, седативным, анксиолитическим, антиконвульсивным эффектами. Действие бензодиазепинов обуславливается торможением центральной нервной системы. Эффекты обусловлены блокированием периферических бензодиазепиновых рецепторов, которые являются сайтом ГАМКА-рецептор – один из двух ионотропных ГАМК-рецепторов, отвечающий за реакцию организма на гамма-аминомасляную кислоту. Ингибирующий эффект ГАМК бензодиазепинами и определяет их антиоксилитический и седативный эффект.

Итак, почему же все-таки мы используем тилетамин\золазепам? За:

• Доступность препарата и отсутствие проблем с современным законодательством при его обороте.

• Удобная форма применения – лиофилизированный порошок позволяет получать растворы любой концентрации, прекрасно смешивается и разводится альфа 2 агонистами, долго хранится в растворенном виде при комнатной температуре, выдерживает кратковременное замерзание.

• Большое количество видов животных, у которых возможно применение этого препарата.

129


• Все-таки отсутствие серьёзных побочных эффектов при применении рекомендованных доз (большая широта дозы без серьёзных последствий).

• Хорошая аналгезия и релаксация (хищники?, куньи, виверровые и т.д.).Против:

• Нейротоксичность (грызуны, зайцеобразные и хищные).• Непредсказуемость эффекта у копытных.• Цена.

Теперь о нашем опыте использования тилетамин\золазепама.Подготовка к наркозу

1. Сутки водноголодная диета у всех видов животных кроме грызунов и зайцеобразных. Это очень важно, в первую очередь, для крупных копытных, ввиду возможности развития тимпанита.

2. Проведение анестезии в условиях, исключающих возможность травмирования животного при падении (грунт, искусственные укрытия, поилки, кормушки). Важно опять же для копытных, так как при использовании тилетамин\золазепама во время индукции и реверсии животные могут многократно падать и вставать.

3. Максимально спокойная и тихая обстановка в процессе проведения анестезии.4. Возраст – пожилым животным используются меньшие дозы.5. Анамнез. Имеются абсолютные противопоказания для животных с

заболеваниями поджелудочной железы и сердечно-сосудистой системы. У животных с заболеваниями почек и печени период реверсии может удлиняться. Проникает через плаценту и может угнетать дыхание плода. Противопоказан крысам из-за возможного нейротоксического эффекта. Имеются данные о том, что тилетамин\золазепам вызывает тубулярный некроз у кроликов (хотя мы с эти не сталкивались).

6. Премедикация. Желательно использовать атропин или другие холиномиметики у копытных, кошачьих и собачьих из-за выраженной гиперсаливации. При планируемых болезненных манипуляциях (если анестезия проводится только тилетамин\золазепамом или его комбинацией с ксилазином) обязательно использование наркотических и\или ненаркотических анальгетиков.Анестезия

1. Возможно внутримышечное, внутривенное, внутрикостное и внутриполостное введение.

2. Время индукции от 3 до 30 мин. Зависит от вида животного, концентрации раствора – чем больше концентрация, тем меньше время индукции при внутримышечном введении, возраста животного, его эмоционального состояния.

3. Обязательные параметры для мониторинга: • насыщенность крови кислородом – падает до 70-80 у крупных животных,

поэтому желательно давать кислород, например, через носовой катетер,

130


• пульс – у хищников возможно развитие тахиаритмии в первые 30 минут анестезии (купирования не требует),

• температура тела – у мелких животных падает достаточно быстро, поэтому необходим обогрев грелками. У крупных копытных возможна гипертермия, поэтому может понадобиться охлаждение.

4. У крупных кошачьих возможно развитие судорог, купируется дополнительным введением бензодиазепинов.

5. Длительность анестезии сильно варьирует и зависит от вида животного, дозы, возраста и степени возбуждения перед проведением анестезии.

6. Реверсия анестезии сильно варьирует и зависит от вида животного, дозы, возраста и степени возбуждения перед проведением анестезии, а так же от схемы использования (с\или без альфа2агонистами и их последующей реверсией).

7. У мелких животных (куньи, грызуны и зайцеобразные, мелкие кошки) в процессе анестезии обязательна инфузионная терапия, в связи с падением АД и возможными негативными эффектами для почек.

ДозыКопытные.крупные антилопы, зубры, лоси: тилетамин\золазепам 1,5-3 мг\кг + ксилазин

0,2–0,5 мг\кг. По литературным данным доза ксилазина может составлять до 1,5 мг\кг(3). Реверсия атипамезолом, длительность анестезии 30–40 минут, но животные достаточно долго встают, до 2-3 часов.

мелкие антилопы, другие мелкие парнокопытные: тилетамин\золазепам 5-10 мг\кг + ксилазин 0,1–0,2 мг\кг. Длительность анестезии от 10 до 120 мин. Реверсия атипамезолом(3,4).

Свиные: тилетамин\золазепам 5-7 мг\кг + ксилазин 0,1–0,2 мг\кг. По литературным данным доза ксилазина может составлять до 2,35 мг\кг + тилетамин\золазепам 2,35 мг\кг. Реверсия атипамезолом, длительность анестезии 30–40 минут, но животные достаточно долго встают до 2-3 часов. Релаксация недостаточная для серьёзных манипуляций.

непарнокопытные (зебры, кианги, лошади Пржевальского): тилетамин\золазепам 2-3 мг\кг+детомидин 0,05-0,09 мг\кг. Длительность анестезии до 30 минут. По литературным данным доза тилетамин\золазепама может составлять до 8 мг\кг.

Хищники.медвежьи: Гималайский медведь - тилетамин\золазепам 3 мг\кг+медетомидин 0,03 мг\кг.

Реверсия атипамезолом.Бурый медведь - тилетамин\золазепам 4 мг\кг+медетомидин 0,03 мг\кг. Реверсия

атипамезолом.

131


Белый медведь - тилетамин\золазепам 2,5 мг\кг+медетомидин 0,025 мг\кг. Реверсия атипамезолом.

Тропические медведи - тилетамин\золазепам 3 мг\кг+медетомидин 0,03 мг\кг. Реверсия атипамезолом.

Длительность анестезии от 40 до 120 минут.

Для большинства собачьих тилетамин\золазепам является препаратом выбора из-за очень длительного времени реверсии, даже при применении с альфа 2 агонистами, кетамин остается более предпочтительным средством. Доза тилетамин\золазепама при мононаркозе составляет 7-10 мг или тилетамин\золазепам 1-2 мг\кг+медетомидин 0,03 мг\кг. Длительность анестезии 30 – 60 минут. Реверсия атипамезолом.

кошачьи. Здесь, в принципе, те же проблемы, что и у собачьих – судороги, атаксия, длительное

время выхода. Тилетамин\золазепам не рекомендован к применению у тигров, так как зарегистрировано несколько внезапных смертей через 2-4 дня после проведения анестезии. При использовании высоких доз у этих кошек чаще, чем у остальных возникают судороги и атаксия. Доза тилетамин\золазепам 1-2 мг\кг+медетомидин 0,03 мг\кг. Длительность анестезии 60 – 90 мин. Реверсия атипамезолом(5).

куньи и енотовые.Тилетамин\золазепам 3-5 мг\кг + ксилазин 2 мг\кг. Длительность анестезии до 40

мин.Реверсия атипамезолом(5).

Грызуны и зайцеобразные. Противопоказан крысам. Морские свинки, шиншиллы, кролики 10 мг\кг

тилетами\золазепама+ксилазин 5 мг\кг. Длительность анестезии до 30 минут. Реверсия атипамезолом. Всегда нужно помнить о возможных нейротоксических эффектах при применении высоких доз тилетамина\золазепама, особенно у старых животных, при болезненных манипуляциях требуется дополнительная анестезия наркотическими анальгетиками или поддерживающий наркоз ингаляционными анестетиками (6).

В заключение хочется отметить, что комбинация тилетамин\золазепам несмотря на наличие определённых проблем и сложностей при её использовании, на наш взгляд, вполне применима в практике зоопарков и заповедников.

132


Литература1. Hartley D.M., Monyer H., Colamarino S.A., Choi D.W. 1990. 7-Chlorokynurenate

Blocks NMDA Receptor-Mediated Neurotoxicity in Murine Cortical Culture. Eur. J. Neurosci. 2 (4): 291–29.

2. Pender J., 1971. Dissociative anesthesia. JAMA 2153. Fowler M.E., Miller R.E. (edit.) 2003. Zoo and Wild Animal Medicine, Saunders.4. Kock M.D., Meltzer D., Burroughs R. 2006. Chemical and Physical Restraint of Wild

Animals.5. West G., Herd D., Caulkett N. 2007. Zoo animal and Wildlife immobilization and

anesthesia, Blackwell.6. Carpenter J.W. 2005. Exotic Animal Formulary, Elsevier. 7. Olney J, Labruyere J, Price M (1989). «Pathological changes induced in cerebrocortical

neurons by phencyclidine and related drugs». Science 244 (4910): 1360–2. doi:10.1126/science.2660263. PMID 2660263.

8. Auer R (1996). «Effect of age and sex on N-methyl-D-aspartate antagonist-induced neuronal necrosis in rats». Stroke 27 (4): 743–6. PMID 8614941.

9. Yaralioglu-Gurgoze, S., Sindak, N., Sahin, T., Cen, O., 2007 Department of Biochemistry, Faculty of Veterinary Medicine, Harran University, 63200 Sanliurfa, Turkey. · Vet J. · Pubmed #15683777

10. А.М.Коршунов, И.С.Преображенская. //Неврологический журнал, №1, 1998.

http://ru.wikipedia.org/

summaryТилетамин\золазепам – комплексный инъекционный анестетик для ветеринарии.

Имеет ряд противопоказаний ограничивающих его применение у грызунов и крупных кошачьих. Тем не менее является препкрасным препаратом для применения в полевой и зоопарковой ветеринарной практике у диких видов животных.

микоЗЫ реПтилий и амФибий

васильев Д.б1., Швед в.С1.1московский зоопарк

Традиционно считалось, что микозы у низщих наземных позвоночных в условиях неволи возникают исключительно в связи с адаптационным стрессом и иммуносупрессией (Migaki, Jacobson, 1984). Действительно, если рассматривать инфекции, доминирующие в общей структуре заболеваемости холоднокровных, содержащихся в неволе,- криптоспоридиоз, системные инвазии жгутиковых,

133


атипичные формы туберкулеза, генерализованные формы оппортунистических инфекций, обусловленных условно-патогенными грамотрицательными бактериями, диссеминированные дерматомикозы и т.п.,- напрашивается прямая аналогия с инфекцией ВИЧ или с другими врожденными или приобретенными формами иммунодефицита. Но это далеко не так. Важный момент патогенеза микотической инфекции - снижение фагоцитарной и бактерицидной активности макрофагального звена или врожденное видоспецифическое отсутствие гигантоклеточных реакций, описанное, например, у вайомингской жабы (Taylor et al., 1995), но это не объясняет исчерпывающим образом механизмы передачи и распространения грибковых патогенов в неволе. Кроме того, в последнее десятилетие, по крайней мере, у амфибий, описан ряд новых инфекций, возбудителей которых можно отнести к первичным грибковым патогенам (Briggs et al., 2005). Это заставляет более внимательно отнестись к грибам, как важному звену в этиопатогенезе упорных инфекций, развивающихся у рептилий и амфибий в неволе. Наличие или отсутствие грибкового компонента в комплексе микст-инфекции – это очень важный момент, определяющий длительность, стратегию терапии и выбор лекарственных средств. При этом, по нашим данным, большинство видов грибов, определяющихся в мазках-отпечатках (за исключением Candida spp.), очень редко удается выделить в культуре, так как они плохо растут на обычных селективных средах, таких, как Сабуро-глюкозный агар, мясопептонный глюкозный агар или кровяной агар. Таким образом, такие опасные инфекции, как хитридиомикоз, хромобластомикоз и многие неспецифические микозы, в том числе, обусловленные инвазивной формой гриба, остаются за рамками стандартных диагностических протоколов. Следствием этого являются типичные врачебные ошибки, когда диагноз «микоз» ставится исключительно по клинической картине, после чего бактериальная микст-инфекция лечится исключительно противогрибковыми препаратами, либо наоборот, антибиотики назначаются без сопутствующей противогрибковой терапии, на основании отрицательных лабораторных данных. Особенности патогенеза микозов у рептилий и амфибий существенно отличаются, что отражается на видовом составе микобиоты и основного нозологического «ядра» грибковых инфекций. Собственно говоря, два эти класса животных объединены в формальную группу «низших наземных позвоночных» и рассматриваются в рамках единой дисциплины - ветеринарной герпетологии - практически только на основании их «холоднокровности». В остальном же, учитывая анатомо-физиологические особенности, эти животные отличаются между собой в не меньшей степени, чем другие позвоночные. Особенно это касается строения кожи - основных ворот грибковой инфекции. Поэтому целесообразно рассматривать рептилий и амфибий отдельно.

Рептилии, имеющие сухую и плотную чешуйчатую кожу, практически лишенную желез, с утолщенным кератиновым слоем эпидермиса, в норме имеют эпителиальный барьер, практически непреодолимый для обычных грибковых

134


патогенов, колонизирующих кожу. Для проникновения гриба сквозь роговой эпителий кожи и особенно, сквозь базальную мембрану, необходим подготовленный субстрат. У млекопитающих таковым является слущенный эпителий и скопление продуктов секреции кожных желез. У рептилий, в связи с особенностями строения кожи, колонизация может осуществиться только в области травматического дефекта, захватывающего все слои эпидермиса, в области паракератозного очага или зоны, подготовленной комплексом «кератинофильных» бактерий, обладающих способностью лизировать кератин, или в материале струпа, покрывающего рану, зарастающую вторичным натяжением. В этой ситуации грибковый компонент микрофлоры всегда выступает как вторичный патоген, даже если речь идет о видах, рассматриваемых как первичные патогенны, например, Fusarium incornatum или CANV (Rose et al, 2001; Pare, et al, 2003). Далее, диссеминирование грибковой инфекции на здоровые участки кожи или более глубокие ткани, а тем более, в висцеральные органы, подразумевает лимфо- или гематогенное распространение инвазивной или не инвазивной формы гриба. У рептилий, в связи с относительно бедной васкулатурой кожи и редуцированной подкожной клетчаткой, распространение гриба возможно в основном лимфогенно и только при трансформации гриба в инвазивную форму, а в некоторых случаях, по нашим наблюдениям, при незавершенном фагоцитозе возможен транспорт с макрофагами. Этот механизм распространения грибковых патогенов, не типичный для млекопитающих, предполагается в некоторых случаях инвазивного кишечного кандидоза у людей, когда в регионарных лимфатических узлах и протоках обнаруживаются гигантские многоядерные клетки, содержащие грибы, что может отражать феномен незавершенного фагоцитоза (Redmond, 1991). Вторым основным типом проникновения и развития микозов у рептилий можно считать алиментарный путь заражения, с нарушением просветочного барьера. У людей при микозах кишечника безусловно доминируют эндогенные формы инфекции. Более того, считается, что в случае кандидозов полости рта, гениталий и кожи, это является вторичными проявлениями системного кандидоза кишечника (Елинов Н.П., 2000). Постустулируя этот тезис, автор предполагает при диссеминированном кандидозе с манифестациями на коже и слизистых назначать не всасывающийся в ЖКТ полиеновый антибиотик (леворин, нистатин, натамицин) и использовать препараты местного действия наружно, ограничивая применение азолов и аллиламинов системного действия или оставляя их в резерве. Для рептилий этот подход не кажется целесообразным. Во-первых, при диссеминированных кандидозах кожи и слизистых у рептилий мы смогли обнаружить кандиду в кишечном содержимом только в 18,9% случаев (№=37). Во-вторых, наличие псевдомицелия кандиды в кишечном содержимом рептилий (что признается патогномоничным симптомом инвазивного кишечного кандидоза), как правило, не сопровождается манифестной инфекцией кожи или слизистых. Далее, мы также практикуем использование полиенов внутрь

135


как антимикотиков первого ряда в случае микозов кишечника, однако, во многих случаях это не вызывает изменения клинической картины до назначения системной антимикотической терапии. Это может быть связано с субклиническим, а главное, с не диагностируемым распространением грибковых патогенов за пределы ЖКТ, а кроме того, с комплексными изменениями состояния кишечника под воздействием микст-инфекции, устойчивой к действию полиенового агента при монотерапии. Таким образом, понятие «микоз», как первичной моноинфекции, для рептилий вообще врядли приемлемо.

В качестве более или менее самостоятельных нозологических форм нами будут рассмотрены инвазивные кандидозы кожи и ЖКТ, «сухой» дерматит панциря сухопутных черепах, обусловленный Fusarium incornatum; сапролегниоз водных черепах; хромомикоз, обусловленный CANV, оппортунистические грибковые инфекции, вызванные неспецифическими грибковыми патогенами.

Амфибии имеют самый тонкий среди всех наземных позвоночных эпидермис (от 12-18 мкм у водных видов, до 40-55 мкм у жаб), а в кориуме у них развит базофильный , богатый кальцием слой Эберта-Кащенко (по Elkan, 1968), участвующий в транспорте электролитов и воды. Кожа у всех амфибий сильно васкуляризована, а у наземных видов развиты обширные подкожные лимфатические цистерны и так называемая «пьющая зона» (drinking patch) в области каудальной брюшной стенки и основания бедер, где всасывание воды в 10 раз выше, чем на других участках. Таким образом, проникновение и распространение грибковых патогенов может осуществляться через неповрежденный эпителий при наличии определенных предрасполагающих факторов. Здесь условно-патогенные и патогенные виды грибов могут выступать в качестве первичных инфекционных агентов. Наоборот, бактериальная инфекция может выступать как секундарная, а течение болезни во многих случаях проявляется сходной клинической картиной с симптомами генерализации («red leg syndrome») и электролитного дисбаланса (Wright, Whitaker, 2001). В таком случае сохраняет значение монотерапия грибкового или бактериального заболевания, выбор которой зависит не столько от данных культурального исследования, сколько от дифференциальной картины в мазках-отпечатках. Таким образом, среди большого количества неспецифических грибковых инфекций амфибий, в отличие от рептилий, можно выделить ряд достаточно самостоятельных заболеваний, имеющих, впрочем, очень сходные клинические манифестации.

Нами будут рассмотрены такие заболевания, как хромобластомикозы; хитридиомикоз, миозит, обусловленный Ichthyophonus spp.; кишечный мукормикоз и неспецифические дерматомикозы. Анатомо-физиологические особенности амфибий также отражаются на выборе и применении средств терапии. Выраженное накожное всасывание и системное действие многих препаратов для местной терапии ограничивает их применение или вызывает необходимость дополнительной

136


коррекции доз и экспозиции. Поэтому для амфибий традиционно используются методы, принятые в ветеринарии рыб, но значительно хуже разработанные (Carpenter, 2005). Это также стало предметом обсуждения в данной работе.

литература.1. Елинов Н. П. Медицинская микология к XXI веку — в начале третьего тысячелетия.

Проблемы медицинской микологии. 2000, Т. 2, № 4, С. 6–12.2. Briggs C.J., Vredenburg V.T., Knapp R.A., Rachowicz L.J. Investigating the population-

level effects of chytridiomycosis: An emerging infectious disease of amphibians. Ecology 2005, vol. 86, №12, рр. 3149-3159.

3. Carpenter J.W. Exotic animal formulary, third edition. Elsevier Saunders, US, 2005, pp. 33-51.

4. Elkan E. Mucopolysaccharides in the anuran defence against desiccation. Journal of Zoology, London, 1968, vol. 155, pp. 19-53.

5. Migaki G., Jacobson E.R., Casey H.W. Fungal diseases in reptiles, in Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. Diseases of amphibians and reptiles. Plenum Press, London, New York, 1984, pp. 183-204.

6. Pare J.A., Sigler l., Rypien K., Gibas C. Cutaneous mycobiota of captive squamate reptiles with notes on the scarcity of the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii. JHMS, 2003, vol. 13, No. 4, pp. 10-15.

7. Redmond H.P., Shou J., Kelly C.J. et al. Protein–calorie malnutrition impairs host defense against Candida albicans. J.Surg.Res., 1991, vol. 50, pp. 552–559.

8. Rose F.L., Koke J., Koehn R. Identification of the etiological agent for necrotizing scute disease in the Texas tortoise. J. Wildl. Dis., 2001, vol. 37, pp. 223-228.

9. Taylor S. K, E.S. Williams, K.W. Mills, A.M. Boerger-Fields, C.J. Lynn, C.E. Hearne, E.T. Thorne, and S.J. Pistono.. A review of causes of mortality and diagnostic investigation for pathogens of the Wyoming toad (Bufo hemiofphrys baxteri). US Fish & Wildlife Service, Cheyenne, WY, 1995, pp. 37.

10. Wright K.M., Whitaker B.R. Amphibian medicine and captive husbandry. Kriger Publishing Co, Malabar, Florida, 2001, pp.181-191.

summary

Vasiliev D., Shved V.: Micoses of reptiles and amphibians. Moscow Zoo.Pathogenesis specificity of amphibian and reptile fungal infection contemplates in this

review.Principal nosological forms of diseases as well as characteristic properties of diagnostics

and therapy are discussed.

137


ПроФилактика болеЗней рЫб При карантинировании

Юнчис о.н., к.б.н., ст.н. сотрудник, главный ихтиопатолог Санкт-Петербургского океанариума

Активный карантин, распространенные болезни рыб.

Рыбы, поступающие для экспозиции в аквариумы, Океанариумы, бассейны, пруды обязательно должны подвергаться карантинированию, даже если им сопутствуют документы об отсутствии у них заболеваний. В настоящее время только в некоторых странах западной Европы и Северной Америки проводится контроль за эпизоотическим состоянием рыб и гидробионтов, если объекты перевозок являются промысловыми или промышленно разводимыми рыбами.

При перевозках декоративных рыб их ихтиопатологический контроль или носит формальный характер или вообще не производится. Такое явление происходит в виду недостаточных знаний болезней рыб тропических регионов или в результате отсутствия времени на ихтиопатологическое исследование.

Следствием такого положения является эпизоотия Неоихтиофтириоза Шлотфельда декоративных рыб, распространившаяся в конце прошлого века, и эпизоотия иридо-вирусной болезни кои, происходящая в настоящее время в странах Западной Европы и Африки, и несколько новых заболеваний, завезенных с декоративными рыбами из Юго-Восточной Азии.

Поскольку большинство рыб поступает к нам прямо или косвенно из Сингапура (80%), и они являются носителями возбудители заболеваний практически одних и тех же на 80-70%, целесообразно применить к ним не старый пассивный метод карантинизации, рассчитанный на ожидании появления или отсутствия признаков заболевания, а применяемый нами активный метод.

Активный метод заключается в применение лечебных препаратов против нескольких наиболее распространенных возбудителей болезней, широко спицефичных, имеющих прямой цикл развития (например, Неоихтиофтириоз паразитических жгутиконосцев, оодиниум, моногенеи и т.д.), или применять метод провокации (например, для выявления носительства иридо-вируса кои).

Поскольку мы постоянно убеждались в том, что прибывающая рыба даже с сертификатами о якобы проведенных профилактических обработках являлась носителем возбудителей болезней, мы предлагаем проводить обязательную профилактическую обработку рыб в условиях карантина.

Из наиболее распространенных возбудителей болезней декоративных рыб, экспортируемых из Юго- Восточной Азии, является Неоихтиофтириус шлотфельда, отличающийся от извесного распространенного в водоёмах Европы и Азии

138


Ихтиофтириуса мультифилиис. Неоихтиофтириус шлотфельда имеет тонкий длинный макронуклеус в форме не замкнутого кольца, он отличается по своей биологии и температурной адаптации от второго вида. Основное биологическое отличие заключается в способности его размножаться на рыбе, а оптимальной температурой является температура 26 - 30 градусов.

Помимо Неоихтиофтириуса, но в меньших количествах, поступает рыба, зараженная динофлагелятами – Оодиниумом, реже поступает рыба носитель Хилодонеллы гексастиха и Хилодонеллы кукулюлис, у кои и золотых рыб на жабрах паразитирует Криптобия и на поверхности тела мелкий новый ранее не описанный вид Криптобий.

Для профилактики против этих паразитов можно применить малахитовый зеленый (360 мг на 100 г воды - маточный раствор, из которого берется 1 мл на 50 литров воды - рабочий раствор). Рыба выдерживается в растворе двое суток, после чего производится подмена 70-80 % воды на третий, пятый, седьмой день, добавляется снова 1 мл маточного раствора после подмены воды. Обязательным условием при проведении ванн является поддерживание температуры воды 26-28 градусов и интенсивная аэрация. Эта обработка помогает уничтожить Оодиниум, Хилодонелл, Криптобий и Триходинид.

Морских рыб надо обязательно обрабатывать против Криптокариона (аналога пресноводного Ихтиофтириуса), поскольку практически 90% поступающих морских рыб являются носителями Криптокариона. В условиях карантина при температуре 22-24 градуса он обычно проявляется через 15-20 дней. К этому времени он настолько интенсивно поражает рыб, что бороться с ним становится проблематично, а часто уже бесполезно. Мы считаем, что всех морских рыб необходимо обрабатывать против Криптокариона. Для обработки рыб, переносящих препараты содержащие медь, мы применяем препарат «Пойнтокс», применяемый 5 раз через день (т.е. 1, 3, 5, 7, 9 день) из расчета 5 мл на 100 литров воды. При применении Пойнтокса отключается биофильтр, скиммер, ультрофиалетовый облучатель, азонатор, и удаляется активированный уголь, проводится интенсивная аэрация, температура воды повышается до 26-27 градусов. В обрабатываемом аквариуме ежедневно проводится гидрохимический контроль воды на содержание нитритов, нитратов и аммония. В случае обнаружения нитритов, аммония или превышения нитратов выше нормы производится подмена воды и препарат вносится снова.. При проведении обработки рыб против Криптокариона Пойнтоксом происходит уничтожение не только Криптокариона, но и Оодиниума, Бруклинеллы и Триходинид. Если среди прибывших рыб есть виды рыб чувствительные к препаратам, содержащим медь (ангелы. бабочки, хирурги и т.д.), их следует обработать препаратом rx, основу которого составляет перец. Обработка проводится по той же схеме, что и при обработке Пойнтоксом.

139


После обработки против экто паразитических простейших, следует провести обработку рыб против эндопаразитических жгутиконосцев (Гексамит, Спиронуклеусов и т.д.). Этой обработке обязательно надо подвергать морских рыб, особенно если они предназначены для содержания не в рифовом аквариуме. Наш опыт показал, что 100 % ангелов, бабочек, в меньшей степени групперов, являются носителями жгутиконосцев пищеварительного тракта. Если в последствии эти рыбы попадают в рифовый аквариум, то у них сохраняется носительство жгутиконосцев, или они исчезают. Если они попадают в обычный аквариум, то через 30-40 дней у этих рыб резко повышается численность жгутиконосцев и возникает заболевание. Для обработки применяется трихопол из расчета 0.5 мг на 100 г корма, такой корм задаётся рыбам 3 дня подряд по одному кормлению, потом делается промежуток в 5-6 дней и снова повторяется трёхдневное кормление. После проведения такого рода обработки рыбы пересаживаются в новый аквариум.

Почти все пресноводные и морские рыбы являются носителями моногеней, паразитирующих на поверхности тела и на жабрах. Если не уничтожить этих червей в период карантинизации, то со временем их численность достигнет больших размеров, и у рыб возникнет заболевание (особенно опасны Капсалиды морских рыб имеющие широкий спектр хозяев).

Для борьбы с этими паразитами пресноводных и морских рыб можно применить Празиквантелл в виде эмульсии или порошка из расчета 0.5 г на 100 литров воды с экспозицией 4 - 5 часов. При отсутствии Празиквантелла для пресноводных рыб применяется ванна ФМС (концентрированного формалина 100 г, малахитового зеленого 360 мг, метиленового синего 360 мг) - 1 мл на 4-5 литров воды в течение 10 - 20 минут, в зависимости от вида рыб. В период проведения ванн необходима постоянная аэрация и наблюдение за состоянием рыб. После ванны рыб необходимо высадить в новый аквариум.

Для борьбы с моногенеями морских рыб применяется опресненная ванна (8-9 частей пресной воды и 1-2 части морской) с обязательной коррекцией рН и температуры и с добавлением ФМС с экспозицией 10-15 минут в зависимости от вида и состояния рыб.

Эта ванна одновременно позволяет уничтожить и паразитических раков.Многие декоративные рыбы после стресса от перевозки, пересадок и

адаптационных мероприятий, страдают от вторичных бактериальных инфекций. Для предотвращения таких случаев целесообразно применять анти стрессорные препараты «АМОЛОК-2» и иммуно модуляторы, пробиотики с пищей, в случае отказа от корма препараты вводятся катетром.

Карпы кои пересаживаются в ёмкости и к ним подсаживается годовики обычных карпов и содержатся при температуре 12-16 градусов. Обычно если кои являются носителем иридо вируса, то в течение 20-25 дней на карпах проявляются

140


признаки заболевания. После этого кои отсаживаются и постепенно их переводят на температуру 25-28 градусов с применением лечебных кормов с иммуно модуляторами и антибиотиками широкого спектра действиями.

В процессе карантинизации выявляются и другие более редко встречающиеся болезни с которыми справится гораздо легче, чем с перечисленными выше.

ПервЫй ЗареГиСтрированнЫй в великобритании СлУчай коровьей оСПЫ У ПУмЫ, СоДерЖащейСЯ в неволе

вестбери а., ведущий биолог (великобритания)

Коровья оспа принадлежит к семейству вирусной оспы, которая может поразить коров, кошек, животных зоопарка и людей (Baxby др., 1979). Каплан (Kaplan и др. (1980) утверждает, что такой вид, как полевка (Microtus agrestis) может быть инфицирован этим вирусом и Беннет (Bennett и др. (1989) полагает, что мелкие грызуны являются принимающим резервуаром коровьей оспы, но домашние кошки могут быть окончательными хозяевами. В Европе локализованные инфекции кожи, а также общая смертельная болезнь (fatal generalized disease), были зафиксированы, в том числе у кошачьих - гепардов, львов и домашних кошек (Fraser, 1996). В период с ноября 1973 года по январь 1974 года вспышки оспы были зарегистрированы в Московском зоопарке, и поразили многих экзотических кошачьих, в том числе львов, гепардов, черных пантер, пум, ягуаров и оцелотов (Маренникова и др, 1975. Маренникова и др, 1977). Инфекция оспы у этих животных проходила в двух формах: кожных (смертельных в некоторых случаях), и смертельных легочных инфекциях (Маренникова и др., 1977). В этом случае вспышка болезни была передана зоопарковым кошачьим через белых крыс, выращиваемых как живой корм в зоопарке (Маренникова и Шелухина, 1976). В данном докладе описывается случай коровьей оспы у пумы (Puma concolor), содержащейся в Дартмурском зоологическом парке (Dartmoor Zoo) (Великобритания).

В течение 2 недель в июне 2008 года поведение самки пумы в зоопарке значительно изменилось. В первые пять дней работники сообщили о потере аппетита и незначительных изменениях в поведении. Это посчитали реакцией на смерть её соседки по вольеру от агрессивной опухоли. На шестой день она все еще страдала отсутствием аппетита, стала вялой, чрезмерно усилилось слюноотделение. На 7 день работники заметили большой отек на ее левой скуловой кости и выделения из глаза. Была сделана анестезия, проведено ветеринарное исследование и поставлен возможный диагноз - гингивит. Было произведено лечение: 280 мг cefovecin и 6.5 мг meloxicam. В течение следующих 3 дней пума по-прежнему страдала отсутствием аппетита (но ела в небольших количествах) и была вялой. Опухоль на щеке продолжала расти, и слюноотделение и выделения из глаза стали более обильными. На 11 день

141


последствия анорексии были четко видны, а левый глаз закрылся. В дни 12 и 13 ветеринар предписал meloxicam (7,5 мг внутримышечно через дротик).

На 14 день продолжилось ухудшение состояния. Животному снова была сделана анестезия и проведено дальнейшее обследование. Опухоль на морде оказалась твердой, из неё нельзя было откачать жидкость. Еще одна опухоль была найдена на внутренней части горла с левой стороны. Было отмечено, что появились узловые поражения по всему телу, сосредоточенные вдоль позвоночника и на морде. Они были примерно 5 мм в диаметре, на расстоянии 3-4 см друг от друга и покрыты гнойной коркой. Они первоначально были диагностированы как укусы насекомых или реакция на лекарственные препараты. Было принято решение об эвтаназии животного в связи с неблагоприятным прогнозом.

Во время вскрытия была взята биопсия из опухоли в мягком нёбе, нескольких узелков на коже и небольшой образец ткани из мезентерия. Никаких серьезных находок сделано не было.

Гистопатологические результаты биопсии узелков показали от мультифокального до фокального эпидермальный некроз, язвы с коркой кровяной сыворотки и коагулятивный некроз, иногда заходящий глубоко в дерму в направлении гиподермиса. В оставшихся жизнеспособных поверхностных фолликулярных эпителиальных клетках обнаружены круглые и яйцевидные, 5-10 мм в диаметре, ярко эозинофильные внутрицитоплазматические вирусные включения органов. Язвенные некротические поражения кожи соответствовали диагнозу оспо-вирусный дерматит (Hanshaw, 2008). Присутствие вирусных включений характерно для оспо-вирусной инфекции (Hanshaw, 2008). Серьезные некротические поражения нёба могло быть связано с инфекцией вирусом оспы; поражения в глотке также иногда могут наблюдаться у заболевших особей (Fraser, 1996). Это может быть связано с выделениями из глаз, как описано у Фрейзера в 1996 году.

Симптомы и гистологические данные в этом случае соответствуют выводам в Московском зоопарке, описанным Маренниковой (Маренникова и др., 1975 и др., Маренникова., 1977). Две пумы заболели в Московском зоопарке и имели кожную форму этой инфекции и выжили, после краткосрочной вялости и анорексии (Маренникова и др., 1975). Случай, описываемый в этом докладе, был более длительным с большим пагубным воздействием на животное, чем болезнь пум в Московском зоопарке. Это может быть связано со стрессом и изменениями в обычном распорядке жизни в связи с гибелью спутника животного в начале июня 2008 года.

Эта инфекция, скорее всего, была передана пуме дикими грызунами. Домашние кошки, живущие в сельской местности, могут также заразиться (Fraser, 1996). Это согласуется с расположением вольера пумы в зоологическом парке. Было отмечено, что в прошлом многие животные зоопарка охотились на диких животных, попавших в их вольеры.

Мы считаем, что это единичный случай и первый зарегистрированный случай у этого вида животных в Великобритании.

142


Благодарность:David Gabriel MRCVS, Steve Grills MRCVS, Dr. J. Eddison, Karina Ramming and

Geoffrey McCarthy

Список литературы:1. BAXBY, D., ASHTON, D.G., JONES, D., THOMSETT, L.R. and DENHAM, E.M. (1979)

Cowpox virus infection in unusual hosts, Veterinary Record 104: 1752. BENNETT, M., GASKELL, H.M., GASKELL, C.J., BAXBY, D. and KELLY D.F. (1989)

Studies on poxvirus infection in cats, Archives of Virology 104: 19-333. FRASER C.M. (Ed.) (1996) the Merck Veterinary Manual 6th Edition, Merck and Co.,

Pp. 797 - 8024. HANSHAW D. (2008) Pers. Comm. Histopathology Report Dartmoor Zoo Puma,

Torrance Diamond Diagnostic Services Ltd (TDDS)5. KAPLAN, C., HEALING, T.D., EVANS, N., HEALING, L. and PRIOR, A., (1980)

Evidence of infection by viruses in small British field rodents, Journal of Hygiene 84: 285-294

6. MARRENIKOVA, S.S., MALTSEVA, N.N., KORNEEVA, V.I. and GARANINA, V.M. (1975) Pox infection in Carnivora of the family Felidae, Acta Virol., 19: 260

7. MARRENIKOVA, S.S. and SHELUKINA, E.M. (1976) White Rats as the Source of Pox Infection in Carnivora of the family Felidae, Acta Virol., 20: 442

8. MARRENIKOVA, S.S., MALTSEVA, N.N., KORNEEVA, V.I. and GARANINA, V.M. (1977) Outbreak of pox disease among Carnivora (Felidae) and Edentata, The Journal of Infectious Diseases 135(3): 358-366

анатомичеСкие оСобенноСти оСевоГо Скелета беГемота

Жорина л., стар преп., Шулешко а., канд. вет. наук богомаз а., лесная а., студентыДнепропетровский аграрный университет

AnAtoMiC feAtUres of AxiAl skeleton of HiPPoPotAMUs

lubov Zhorina, senior teacher, Alexander shuleshko, candidate of veterinary sciences

Arseniy Bogomaz, Alisa lesnaya, students The dnepropetrovsk state agrarian university

In the article are described features of a structure of a spine column of a hippopotamus, which reflect the specific differences of this type of animals and can be used in the comparative anatomy of mammals, and also at practical activity of doctors of zoos

143


Анатомические особенности редких и экзотических животных изучены недостаточно, т.к. эти животные содержатся в небольшом количестве, преимущественно в зоопарках. Тем не мене ветеринарным специалистам приходится работать с ними, и знание анатомических особенностей того или иного животного имеет большое практическое значение.

В октябре 2008 года на кафедру анатомии ф-та ветеринарной медицины Днепропетровского агроуниверситета с Николаевского зоопарка поступил труп самки бегемота. При изучении морфологии тела и изготовлении скелета мы столкнулись с рядом трудностей и проблем, одна из которых – отсутствие информации об анатомических особенностях этих животных. Поэтому была поставлена задача не только смонтировать скелет, но и описать анатомические особенности костей данного животного.

обыкновенный бегемот, или гиппопотам (лат. Hippopotamus amphibius) — крупное травоядное млекопитающее из отряда парнокопытных, подотряда свинообразных (нежвачных), семейства бегемотовых. Научное название является латинизированной формой греческого слова ἱπποπόταμος, означающего «речной конь». Несмотря на это название, бегемот связан таксонометрическим родством не с лошадьми, а с китообразными и, чуть более отдалённо, со свиньями.

Тело у бегемота очень массивное, громоздкое и не покрытое шерстью. Серо-чёрная кожа, очень толстая и покрытая складками, вокруг глаз и ушей переходит в розовый цвет. Высота в плечах у взрослого бегемота составляет 1,5 м, а длина достигает 4,5 м, из которых 50 см выпадают на приплюснутый хвост. Бегемот весит от 2700 до 4500 кг, конкурируя с носорогами за звание второго по массе наземного животного после слона.

материалы и методы: Объект исследований – кости самки бегемота. Животное погибло в возрасте 35 лет. Кости были тщательно очищены от мышечной ткани, сварены, отбелены и взвешены. Описание анатомических особенностей костей бегемота проводили, опираясь на учебную и научную литературу (1, 2, 3).

результаты исследований: Общая масса вываренных костей скелета исследуемого животного составила 105кг 568г, из них на осевой скелет приходится 68кг 713г (75%) и 36кг 855г (35%) на периферический.

Среди костей осевого скелета самым массивным оказался череп – 20000г (19% от массы скелета) при массе головы – 450 кг, на шейные позвонки приходится 4420 г, грудные – 6505, поясничные – 3155, крестец – 1190г, хвостовой отдел – 470г. Общая масса позвонков составила 15740г (15% от массы скелета).

144


Таблица 1.Относительная и абсолютная масса костей позвоночного столба самки бегемота

Отделы Ко-во позвонков

Относительное количество, %

Масса позвонков, г

Относительная масса, %

шейный 7 15,0 4 420 28,08грудной 15 31,9 6 505 41,32

поясничный 4 8,5 3 155 20,04крестцовый 5 10,6 1 190 7,56хвостовой 16 34,0 470 3,00

Всего 47 100,0 15 740 100,00

Отделы позвоночного столба бегемота имеют следующее количество позвонков: шейных – 7; грудных -15; поясничных – 4; крестец образован 5-ю позвонками, хвост-16. Таким образом, скелет позвоночника образуют 47 позвоночных сегментов.

Шейные позвонки массивные. Самый мощный шейный позвонок – атлант, масса которого составила 1035г, т.е. почт и 25% массы всех шейных позвонков. Крылья атланта широкие, горизонтальные и на боковых краях загнуты дорсально. Краниальные суставные ямки состоят как бы из двух поверхностей – дорсальной и вентральной, разделенных между собой небольшим гребнем. (фото 1) Дорсальный и вентральный бугорки хорошо выражены.

второй шейный позвонок – эпистрофей менее массивный, масса его составила 625 г. Он имеет зубовидный отросток цилиндрической формы который выдвинут вперед, при этом краниальные суставные поверхности вокруг зуба имеют эллипсовидную форму и расширены латерально (фото2). Остистый отросток имеет форму гребня, на каудальном конце которого имеется вырост.

Фото 1. Атлант бегемота-краниальная поверхность

Фото 2. Эпистрофей бегемота -латеральная поверхность

145


Средние шейные позвонки (3-й, 4-й, 5-й, 6-й) построены однотипно: тела короткие, массивные; головка и ямка плоские, вентральный гребень слабо выражен; поперечно-реберные отростки разделены на поперечные и реберные. В основании поперечных отростков имеются довольно широкие поперечные отверстия, диаметр которых равняется 1,5-2,0 см (фото3,4). Высота остистых отростков постепенно увеличивается, и, начиная с 3-го до 7-го от 5,0 до 11,5 см..

Шестой шейный позвонок имеет более удлинённые поперечные отростки, по сравнению с типичными позвонками.

Седьмой шейный позвонок бегемота, в отличие от большинства млекопитающих, имеет хорошо выраженные поперечные отверстия.

Фото 3. 3- й шейный позвонок-краниальная поверхность

Фото 4. 3-й шейный позвонок-каудальная поверхность

Фото 5. Грудной позвоноккаудальная поверхность

Фото 6. Грудной позвоноккраниальная поверхность

146


Грудные позвонки у бегемота массивные, имеют хорошо выраженные краниальные и каудальные суставные фасетки. Ямки и головки тел позвонков плоские; краниальные и каудальные реберные ямки овальной формы, хорошо выраженные (длина ямок в среднем 2,5-3,0см, ширина 1,5-2,2 см). Остистые отростки широкие, 5-6 см в основании, заострены краниально и расширены каудально. Дорсальный край остистых отростков имеет булавовидное утолщение. С первого по 3-й грудные позвонки высота остистых отростков увеличивается с 23 до 27 см, у последующих позвонков высота этих отростков плавно снижается до 5,5см (14 – 15 позвонки) (фото5,6). Таким образом, скелет холки образуют остистые отростки первого-восьмого грудных позвонков, среди которых самый высокий – третий сегмент.

Поясничные позвонки развиты хорошо и очень массивны (фото 7). Масса позвонков увеличивается от 1-го к 4-му: от 550 до 820 г.. Поперечные отростки широкие, лопастевидные, направлены в сторону горизонтально. Длина этих отростков у первых позвонков соответственно составляет 12-14см, а у последних – 20 см. Мы предполагаем, что относительно небольшое количество поясничных позвонков связано с полуводным образом жизни и необходимостью иметь глубокую грудную клетку.

Фото 7. Поясничный позвонок бегемота. Вид сверху.крестец бегемота образован пятью позвоночными сегментами. По внешнему

виду он напоминает крестцовую кость коровы. Длина крестцовой кости составляет 30 см, ширина в области основания крестца -22,5 см. Крылья крестцовой кости широкие, развернуты латерально и имеют хорошо выраженную ушковидную поверхность (фото 8, 9). Остистый отросток первого позвонка не сливается с остальными и направлен краниально. Остистые отростки последующих трех позвонков срослись между собой и образовали средний крестцовый гребень длинной 18 см. Вентральная поверхность крестцовой кости вогнута и имеет четыре пары отверстий диаметром 1,5-3,5см. Дорсальных крестцовых отверстий только две пары и она прикрыты костными отростками до 3 см длиной. Масса крестцовой кости составила 1190 г.

147


хвостовые позвонки построены аналогично с позвонками других крупных млекопитающих: первые позвонки крупные, последние – мелкие. Длина первого хвостового позвонка равняется 6,5 см, 2-го 5,5 см и т.д. Из 16 хвостовых позвонков первые семь – это истинные позвонки, т.е. те, которые имеют и тело и дугу позвонка. В группе хвостовых позвонков, начиная с восьмого позвонка - дуга исчезает. На вентральной поверхности тел хвостовых позвонков хорошо выражены гемальные отростки.

Фото 5. Грудной позвоноккаудальная поверхность

Фото 6. Грудной позвоноккраниальная поверхность

Описанные особенности строения позвоночного столба бегемота отражают видовые отличия данного вида животных и могут быть использованы в сравнительной анатомии млекопитающих, а также в процессе изучения особенностей строения тела тропических животных.

Список литературы:1. Анатомія свійських тварин: Підручник / С.К. Рудик, Ю.О. Павловський, Б.В.

Криштофорова та ін.; За ред. С.К. Рудика. – К.: Аграрна освіта, 2001. – 575 с.2. Анатомия домашних животных: Учебник / И.В. Хрусталева, Н.В. Михайлов, Я.И.

Шнейберг и др.; Под ред. И.В. Хрусталевой. – М.: Колос, 1994. – 704 с.3. Мельник О. К вопросу строения плечевого пояса Белого носорога./III Міжнародна

науково-практична конференція з утримання, годівлі та лікування диких тварин. Збірник матеріалів. Киів. 2007 р С.65-70.

4. Климов А.Ф., Акаевский А.И. Анатомия домашних животных. – М.: Гос. изд. с.-х. лит., 1955. – т. 1 и 2

148


лІкУваннЯ токСоПлаЗмоЗУ У ЄнотоПоДІбних Собак. клІнІчний виПаДок

Шулешко о., канд. вет. наук, Жорина л., ст. викл., маковська о., лікар вет. мед., васьковська І., студентка

Днепропетровский аграрный университет

У статті розповідається про випадок захворювання на токсоплазмоз єнотоподібних собак у зоозоні м. Дніпропетровськ: проаналізовані шляхи зараження і методи діагностики та відображені результати проведеного лікування.

treAtMent of tHe toksoPlAZMoZ for rACCoon-like dogstHe CliniCAl CAse

Alexander shuleshko, candidate of veterinary scienceslubov Zhorina, senior teacherolga Makovs’ka, doctor of veterinary medicineinga Vas’kovs’ka, student

In the article are described: the case of disease of toksoplazmoz of raccoon-like dogs in zoozone Dnepropetrovsk, and ways of infection, methods of diagnostics, and the displayed results of treatment - are analysed

Токсоплазмоз - це антропозоонозне паразитарне захворювання, що викликається найпростішими, яке характеризується ураженням нервової і лімфатичної систем, очей, скелетних м’язів і міокарду. Воно виявляється майже у 300 видів ссавців і, приблизно, у 60 видів птахів.

Збудник токсоплазмозу – Toxoplasma gondii - строго внутріклітинний паразит, який відноситься до типу найпростіших Protozoa (тканинним кокцидіям, що утворюють цисти).

Циркуляцію токсоплазм в природі забезпечують два господарі – оста-точний і проміжний. Остаточними господарями - хранителями збудника в природі, в яких відбувається статевий процес розвитку (кишкова фаза), є представники сімейства котячих (Felidae): в дикій природі - дика кішка, сніжний барс, рись, ягуар, бенгальський тигр; в синантропному вогнищі – домашня кішка. Безстатевий розвиток токсоплазм (позакишкова, тканинна фаза) проходить в органах проміжних господарів: домашніх тварин і диких ссавців, птахів і людини.

Ооцисти, що виділяються кішками разом з калом, протягом багатьох місяців зберігаються у землі. Тварини можуть проковтнути цисти токсоплазм, якщо вони щось поїдають із землі або вилизують себе. Другий щлях - через заражене токсоплазмами м’ясо. Сезонність захворюванню не властива, воно реєструється у будь-який час року.

149


В більшості уражених організмів токсоплазми існують у вигляді внутріклітинних цист, що «мовчать». Такий стан може зберігатися все життя, і токсоплазмоз нічим себе не проявляє. Відомо, що близько 25% м'яса, що продається, заражені токсоплазмозом. Тому, при годуванні тварин сирим м'ясом, в кожному четвертому випадку вони можуть заражатися токсоплазмозом [2-5,7].

У лисиць та песців симптоми хвороби проявляються тимчасовою втратою апетиту, важким прискореним диханням, почервонінням очей, невеликими слизистими виділеннями з носу, короткочасними проносами з домішками крові, парезами та паралічами кінцівок, судомами м'язів тіла, підвищенням температури тіла до 41-42°С, блювотою, серцевою слабкістю. Перед смертю можливе нервове збудження [1].

У норок токсоплазмоз характеризується розладами діяльності нервової системи: можливі як підвищена збудливість (неспокій, вирячування очей), так і апатія (відмова від їжі та води, порушення координації, схуднення) [1].

В лабораторній діагностиці токсоплазмозу набули поширення реакція імунофлюоресценції, реакція ензим-мічених антитіл і полімеразна ланцюгова реакція, які перевершують по чутливості класичні серологічні тести, зручні в застосуванні і не дають перехресних реакцій.

Лікується токсоплазмоз тварин важко. При лікуванні майже всі відомі антибіотики і препарати хіміотерапій при токсоплазмозі неефективні. Рекомендують хлоридин, дараприм або делагил в комбінації з сульфаніл-амідними препаратами. Призначають вітамінотерапію, особливо збільшують дачу вітамінів групи В, аскорбінової і фолиєвої кислот [6].

ціллю досліджень було вивчення симтомокомплексу токсоплазмозу у єнотоподібних собак, з'ясування можливих шляхів зараження та розробка методів лікування та профілактики захворювання у м'ясоїдних тварин зоозони.

об'єкти та методи досліджень. Об'єктом досліджень були 9 єнотопо-дібних собак різного віку та статі хворих на токсоплазмоз, що належали зоо-зоні міста Дніпропетровська.

Для підтвердження діагнозу були з’ясовані умови утримання та годівлі єнотоподібних тварин, вивчені клінічні признаки хвороби, проведені капрологічні дослідження за Фюллеборном і Дарлингом на наявність цист токсоплазм та імуноферментний аналіз сироватки крові на аналізаторі Stat Fax 19.04 за допомогою тест-системи російської фірми «Вектор Бест».

При досліджені клінічних ознак хвороби вимірювали температуру, визначали пульс та частоту дихання, звертали увагу на наявність апетиту, актів блювання та проносів, нервові явища тощо.

Враховуючи дані наукової літератури та практичний досвід була розроблена схема лікування токсоплазмозу у єнотоподібних собак, яку порівняли з традиційним курсом боротьби з цією хворобою (табл. 2.1.1.).

150


Таблиця 1.Схема досліду лікування токсоплазмозу у єнотоподібних собак

Групи тварин Препарат Діюча речовина Доза застосування

Спосіб введення

Кратністьвведення

Конт-рольна, n = 4

хлоридін 2,4-діамино-5-пара-хлорфеніл-6-

єтілпиримідін

1 таблетка (0,005г) на 5кг

маси

усер

един

у Один раз на день, 10 діб,

3-4 курси через кожні 10

дібсульфа-димезин

2-(пара-амино-бензолсульфа-

мидо)-4,6-диметилпиримидин

1 таблетка (0,5г) на 5 кг

маси

аміновіт20 синтетичних амінокислот, 17

вітамінов

3 мл на особину

Внут

ріш

ньом

’язо

во

Одноразово 5 діб 3-4 курси через кожні 5

діб

Дослід-на, n = 5

ровацид Спіраміцин (макроліди)

0,25 табл. (3 млн МО в

таблетці) на 5 кг маси

усер

един

у

Двічі на добу 21 день 2-3 курси через кожні 10 діб

гроприна-зін інозин пранобекс0,25 табл.

(0,5 г в табл.) на 5 кг маси

Двічі на добу 10 діб 3-4

курси через кожні 10 діб

неуробексвітамін В1 у комбінації з

вітамінами В6 та В12

1 драже (В1-15,0 мг, В6-

0,0мг,В12-0,02мг)

Один раз на добу 30 днів

Через два місяця після початку лікування було зроблено перевірку його результатів імуноферментним методом.

результати досліджень та їх аналіз.1. Можливі шляхи зараження тварин токсоплазмозом. При вивчені умов

утримання єнотоподібних собак з'ясувалось, що м'ясо їм роздають в спеціальну тару, але під час їжі тварини витягують його прямо на дерев’яну підлогу. Після щоденного

151


прибирання фекалій в клітках звірів частина їх може залишатися між нерівностями дошки підлоги. З цього можна зробити припущення, що собаки весь час знаходяться у інвазованому середовищі і мають ризик повторного зараження цистами токсоплазмозу при поїданні м'яса, яке забруднене фекаліями.

М'ясо перед згодовуванням не завжди піддавалося термічній обробці шляхом 20-тихвилиного проварювання або попереднього заморожування, що також підвищувало ризик захворювання на токсоплазмоз.

В зоозоні ведеться інтенсивна боротьба з пацюками та бродячими котами, але повністю виключити їх контакт з продуктами для тварин або з самими тваринами важко.

2. Клінічні прояви хвороби. При досліджені клінічних ознак хвороби з’ясувалося, що при гострій формі токсоплазмозу у єнотоподібних собак реєструвалося підвищення температури до 40,5°С, дихання – до 59 рухів і пульсу – до 208 ударів за хвилину (табл. 2).

При первинному огляді у тварин були відмічені численні блювання, проноси, пригнічений стан, відсутність апетиту. В наступні 5-7 діб у тварин розвилися кон'юктивіти, атаксія, хвилеподібні рухи тіла на фоні парезу тазових кінцівок.

За результатами копроовоскопії цисти токсоплазм виявлені не були.

Таблиця 2Показники температури, артеріального пульсу і дихання у єнотоподібних собак по дням хвороби на токсоплазмоз

Групи Показники Нор-ма 1-й день 8-й день 15-й день

22-й день

30-й день

Контроль-на група,

n=4

Температура (С°) 38,5-39,0°

39,5± 0,5

39,6± 0,4

38,0± 0,9

38,5± 0,7

38,9± 0,4

Пульс (частота за хвилину) 100-140 162±

27166±

32148±

22150±

18128±

16

Дихання ( за хвилину) 20-30 44±14 48±17 35±12 26±10 25±7

Досліднагрупа, n=5

Температура (С°) 38,5-39,0°

39,8± 0,7

39,4± 0,5

37,8± 0,7

38,9± 0,5

38,6± 0,3

Пульс (частота за хвилину) 100-140 176±

31162±

29145±

40130±

18121±

12

Дихання (за хвилину) 20-30 47±12 44±15 32±16 24±11 28±8

152


Імуноферментний аналіз сироватки крові підтвердив діагноз: єнотоподібні собаки хворі на токсоплазмоз.

Згідно методики досліду було проведено лікування обох груп тварин. Для цього подрібнені таблетки змішали з м'ясним фаршем і спробували згодовувати хворим собакам. На жаль, звірі так погано себе почували, що повністю відказувалися від їжі, тому такий метод введення лікарських речовин виявився не прийнятним. Тому з ін'єкційних шприців (на 5 мл) були виготовлені пристосування для дачі порошків, що значно полегшило процес введення препаратів тваринам. Енотоподібних собак спочатку притискали за допомогою рогача та фіксували за хвіст (рис. 1). Потім обережно вставляли в рота шприц і шляхом натискання на поршень вводили порошок. Для того, щоб тварина не мала змогу виплювати ліки, їй в ротову порожнину вводили невелику кількість води і масажували ділянку горлянки доти, поки собака не робила ковтальні рухи (рис. 2).

На сімнадцятий - вісімнадцятий день лікування у трьох тварин контрольної групи і чотирьох із дослідної загальний стан значно поліпшився: з'явився апетит, вони впевнено рухалися, клінічні показники (пульс, дихання та температура) були близькі до норми (табл. 2).

Дві інші собаки (по одній з кожної групи) почували себе дуже зле: на фоні парезу тазових кінцівок майже не рухалися, слизові оболонки мали блідо-рожеве забарвлення, спостерігався розвиток анорексії та зневоднення.

Рис. 1. Фіксація єнотоподібної собаки.

153


Рис. 2. Завдавання тварині порошкових ліків за допомогою шприца.

Для підтримання життєвих сил їм двічі на день, окрім основного лікування, на протязі тижня підшкірно вводили по 50 – 60 мл розчинів для парентерального живлення (Дуфалайт), сольових розчинів (ізотонічний розчин натрію хлориду, розчин Рингера) та ізотонічного розчину глюкози. За тиждень собаки стали більш жвавими, в них покращився апетит, стали приходити до фізіологічної норми температура тіла, пульс та кількість дихальних рухів. Хитка хода у тварини дослідної групи спостерігалася ще на протязі трьох тижнів, а у собаки контрольної групи зберігається і досі.

Повторне імуноферментне дослідження сироватки крові собак обох груп з'ясувало: після двох місяців лікування рівень імуноглобулінів класу М - Lq G знизився, що свідчить про ефективність запропонованих препаратів та вибраних доз.

Успішне лікування було підкріплено проведеними санітарними заходами: всі місця утримання тварин були піддані протипаразитарній обробці за допомогою 1% розчину препарату «Віркон С» з розрахунку 300-400 мл/м.

виСновки І ПроПоЗицІї1. З'ясованні можливі шляхи зараження тварин токсоплазмозом в умовах зоозони: а) поїданні м'яса, яке забруднене власними фекаліями; б) годування тварин сирим м’ясом; в) контакт пацюків та бродячих котів з продуктами для тварин або з самими

тваринами.2. Для гострої форми токсоплазмозу у єнотоподібних собак характерні: підвищення

температури тіла до 40,5°С, дихання – до 59 рухів і пульсу – до 208 ударів за хвилину, блювання, проноси, пригнічений стан, відсутність апетиту.

154


3. Для підгострої форми токсоплазмозу у єнотоподібних собак характерні: кон'юктивіти, атаксія, хвилеподібні рухи тіла на фоні парезу тазових кінцівок, анорексія.

4. Запропоноване лікування із застосуванням препаратів «Гропринозин» по 0,25 таблетки на тварину три рази на день з їжею на протязі 3 тижнів, «Ровацид» - по 0,5 таблетки на тварину двічі на день на протязі 3 тижнів, «Неуробекс» - по 1 таблетці на добу на протязі 3 тижнів виявилось ефективним.

Для профілактики та лікування токсоплазмозу в зоозоні рекомендуємо застосовувати такі заходи:1. Ретельно прибирати фекалії та залишки їжі в клітках м'ясоїдних тварин. 2. Проводити термічне знешкодження м'яса перед його згодовуванням. 3. При боротьбі з токсоплазмозом використовувати запропоновані препарати

відповідно з розробленою схемою. 4. Не допускати на територію зоозони бродячих тварин.5. Застосовувати ефективні препарати та пристрої для дератизації території

зоозони. СПиСок викориСтаної лІтератУри

1. Болезни пушных зверей / Е.П.Данилов, А.И.Майоров, В.А.Чижов и др.; Под ред. Е.П.Данилова. – 3-е изд. – М.: Колос, 1984. - С. 181-188.

2. Ветеринарная паразитология Г.М.Уркхарт, Дж.Эрмур, Дж.Дункан и др. /Пер. с англ.- М.: Аквариум ЛТД, 2000.-352с.

3. Клиническая паразитология собак и кошек -Власта Свободова, Мирослав Свобода, Брно ЧАВВМДЖ, 1995 – 435с.

4. Малишева И.Ю Экология и зоопарк, ветеринарная санитария в зоопарке// http://zoo.perm.ru/statyi/eco_zoo.htm.

5. Старченков С.В. Болезни мелких животних: диагностика, лечение, профилактика.-СПб:Лань, 1999.-512с.

6. Суботин В.М., Суботина С.Г., Александров И.Д. Современние лекарственние средства в ветеринарии. Серия «Ветеринария и животноводство», Ростов-на-Дону, Феникс. - 2000. - 592 с.

7. Черепанов А.А. Некоторие аспекти профилактики паразитарних зоонозов, биологии, экологии и таксономии возбудителей // Ветеринария. — 2003. — № 8. — С.26 – 31.

155


влиЯние ПараЗитарной инваЗии на ГематолоГичеСкие ПокаЗатели коПЫтнЫх ЖивотнЫх

каЗанСкоГо ЗооботСаДа

Шаламова Г.Г., к.в.н., Гильмутдинов р.Я., д.б.н., буракова а.в.*, мударисов а.р. * ФГоУ вПо «казанская государственная академия ветеринарной медицины

им. н.э. баумана»* мУк «казанский зооботсад»

В процессе заражения гельминтами в организме животных происходят изменения, зависящие от ряда факторов, а именно: дозы и способа заражения, жизнеспособности и вирулентности гельминта, а также от возраста, устойчивости, реактивности и состояния здоровья животного.

В данной работе определялась степень инвазированности и влияние паразитарной инвазии на гематологические показатели копытных животных Казанского зооботсада.

Интенсивность инвазии (ИИ) исследовали гельминтоовоскопическими методами Фюллеборна и Котельникова-Хренова с аммиачной селитрой. С целью получения более достоверных результатов микроскопировали как поверхностную пленку, так и осадок (Г.А. Котельников, 1974, 1982).

Было взято 14 проб фекалий, в том числе 3 от пони, 1 – мула, 1 – марала, 3 – зебры, 1 – пекарей ошейниковых, 2 – яка.

Согласно результатам наших исследований все пони были инвазированы кокцидиями (ИИ 1-го животного составила 5, 2-го – 6, 3-го – 1 экз. яиц кокцидий в 1 г фекалий) и кишечными стронгилятами (ИИ – 3; 10 и 6 экз. яиц в 1 г фекалий соответственно). У одного из животных кроме того, обнаружились яйца дикроцелий (ИИ – 3 экз. яиц в 1 г фекалий) и параскарисов (ИИ – 3 экз. яиц в 1 г фекалий).

У мула диагностировали наличие кокцидиозной (ИИ – 5 экз. яиц в 1 г фекалий) и параскаридозной инвазии (ИИ – 4 экз. яиц в 1 г фекалий).

Из проб фекалий от 3 зебр только у 2-х животных обнаружились яйца кокцидий (ИИ – 9 и 12 экз. яиц в 1 г фекалий соответственно) и кишечных стронгилят (ИИ – 10 и 16 экз. яиц в 1 г фекалий соответственно).

У марала диагностировали наличие трихоцефалезной (ИИ – 1 экз. яиц в 1 г фекалий), стронгилятозной (ИИ – 7 экз. яиц в 1 г фекалий), фасциолезной (ИИ – 5 зкз. яиц в 1 г фекалий) и кокцидиозной (ИИ – 4 экз. яиц в 1 г фекалий) инвазии.

Пекари ошейниковые и яки были инвазированы кокцидиями. ИИ у пекарей составила 2 экз. яиц на 1 г фекалий, а яков – 15 и 9 экз. яиц в 1 г фекалий соответственно. У одного из яков выявлена также дикроцелиозная инвазия (ИИ 1 экз. яиц в 1 г фекалий).

156


Гематологические показатели определяли у 3 пони и 1 мула по общепринятым методикам (А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева, 1974).

Уровень гемоглобина у всех исследуемых животных соответствовал физиологической норме и составил у мула 142 г/л, у пони - 140 и 142, 165 г/л.

Количество эритроцитов и лейкоцитов также не отличалось от показателей у здоровых животных (5,96-8,02·1012/л и 6,1-8,2·109/л соответственно).

Скорость оседания эритроцитов составили у мула 50 мм/ч, у пони 47, 53 и 40 мм/ч, содержание общего белка у мула75 г/л, у пони 73 , 76 и 77 г/л соответственно.

Лейкоформула соответствовала таковой у здоровых животных.Таким образом, результаты проведенных гельминтоовоскопических

исследований свидетельствуют о достаточно низкой степени инвазии животных Казанского зооботсада. Наибольшее количество яиц в 1 г фекалий обнаруживалось у марала и пони, а наименьшее у мула.

У пони и мула интенсивность инвазии была незначительной и не оказывала существенных влияний на гематологические показатели.

оценка эФФективноСти ПреПарата аДвокат® (10% имиДаклоПриДа и

2,5% мокСиДектина) При лечении ГенералиЗованноГо ДемоДекоЗа У Собак

материалЫ отчета 6-го СимПоЗиУма По эктоПараЗитам, конГреСС BsAVA (британская ассоциация ветеринарных врачей мелких домашних животных) 2005, бирминГем, великобританиЯ

leon J fourie, кандидат вет. наук, Университет free state, P.o. Box 339, г. блумфонтейн, Юар

Josef Heine, dVM dipl eVPC, Bayer Healthcare Ag, d-51368 leverkusen, Германия

ввеДениеДемодекоз у собак – это распространенное дерматологическое заболевание,

с которым приходится часто сталкиваться ветеринарному врачу. Хотя клещи Demodex spp. в небольших количествах постоянно присутствуют в коже собак как представители нормальной микрофлоры, болезнь возникает в результате иммунологических и генетических нарушений в организме животного, в результате чего происходит чрезмерное размножение популяции клещей [2]. Состояние взрослых собак классифицируется как локализованный или генерализованный демодекоз в зависимости от размера поражений. Локализованный демодекоз – это легкая форма заболевания, большинство случаев излечиваются спонтанно [5, 10].

157


Но разрешение хронического генерализованного демодекоза без лечения едва ли возможно [7,11]. Бактериальная пиодермия, которая возникает в большинстве случаев генерализованного демодекоза, совместно с клещами Demodex способствуют подавлению иммунитета у животного [1,10,13]. Таким образом, любая схема лечения при генерализованном демодекозе у собак должна включать применение эффективного акарицида, антибактериальную терапию и лечение основного заболевания [2,12].

Только ограниченное количество действующих веществ лицензированы для лечения демодекоза, и в настоящий момент для лечения этого заболевания большая часть лекарственных средств применяется не в соответствии с показаниями, указанными в наставлении. Во многих случаях лечение демодекоза является дорогим и трудоемким по причине многократного введения препаратов, а также довольно часто встречаются побочные эффекты [10]. Поэтому возникла потребность в акарициде, который был бы простым в использовании, хорошо переносился животными и был эффективен. В этой статье речь идет об исследовании, выполненном для оценки эффективности препарата Aдвокат® (фирмы Байер) для лечения генерализованного демодекоза у собак, препарат применяли 2-4 раза, один раз в месяц методом наружного применения «спот-он».

ТАБЛИЦА 1. Схемы применения препарата Адвокат® при лечении генерализованного демодекоза у собак

A0t1 A1t2 A2t3 A3t4 A4 A5

- -+ - -+ + - -+ + + - -+ + + +

A0-5 - ежемесячный подсчет клещей Demodex и клиническая оценка, проводимые за один день до применения препарата

T1-4 - ежемесячное лечение, в течение 1-4 месяцев- лечение. Если после 2 последовательных подсчетов клещей не обнаружено, то

лечение прекращали«-» - клещей не обнаружено«+» - клещи обнаружены

158


материалЫ и метоДЫДанное исследование было проведено в соответствии с нормативами по

клинической практике (VICH GL9 2000) в ClinVet International (г. Блумфонтейн, Южная Африка). Для исследования были отобраны 18 собак в возрасте от 1 года до 7 лет, они были естественным образом заражены клещами Demodex spp. У всех собак наблюдались клинические симптомы генерализованного демодекоза: более пяти областей поражения, пододемодекоз на двух или более лапах или поражение всего тела, при исследовании глубоких соскобов кожи (в день 1) обнаружены клещи Demodex spp. у всех собак. Животные были помещены отдельно в специальные постройки при соблюдении условий строгого карантина без возможного контакта собак между собой.

Адвокат® применяли от 2 до 4 раз (дни 0, 28, 56 и 84) наружно в дозах 0,1 мл на кг веса. Цель состояла в получении двух последовательных отрицательных результатов при ежемесячных подсчетах клещей в глубоких соскобах кожи, как показано в табл. 1.

Помимо применения препарата Адвокат®, двоим собакам проводили лечение поверхностной пиодермии. Попытка идентифицировать или лечить глубокую пиодермию или возможное основное системное заболевание у животных не предпринималась. Глубокие соскобы кожи (4 см2) брали с интервалом в 28 дней с пяти различных участков тела, где подозревалось наличие паразитов. Участки, с которых были взяты соскобы, отмечали, и при каждой последующей оценке соскобы брались с тех же самых участков и/или с участков новых поражений. Для каждой собаки исследование заканчивалось, когда в двух последовательных соскобах кожи взятых с интервалом 28 дней не было обнаружено клещей. В то же время, когда брались соскобы кожи, оценивалось также клиническое состояние животных, описывались участки тела, покрытые чешуйками, корочками с алопецией и/или эритемой.

Основной критерий оценки эффективности, используемый в данном исследовании - это уменьшение количества клещей Demodex после лечения. Разница между средним геометрическим (СГ) количеством клещей до лечения и СГ количеством в конце лечения была выражена как величина, выражающая эффективность. Была использована следующая формула:

Подсчетом в конце лечения принято считать подсчет клещей в день, когда у собаки не обнаружено клещей в соскобе во второй последовательный раз или же подсчет клещей в 111 день, в зависимости от того, какое событие произошло раньше (см. табл.1).

реЗУльтатЫТроим из 18 собак было достаточно всего двух обработок препаратом Адвокат®

в дни 0 и 28. У этих животных в двух последовательных соскобах кожи, сделанных с интервалом 28 дней, не было обнаружено клещей Demodex spp. в дни 27 и 55,

159


соответственно лечение было завершено в день 56. Всем остальным собакам (n = 15) обработку препаратом Адвокат® проводили четыре раза.

Средние геометрические значения количества подсчитанных клещей представлены на рис. 1.

таблица 2. количество клещей у собак с генерализованным демодекозом до и после лечения.

Количество клещей

Количество животных

Количество животных с

обнаруженными клещами

Среднее геометрическое кол-во клещей

Среднее медианное

% эффективности

До лечения 18 18 1756 2238 -

В конце лечения 18 14 38 24 98

У 16 из 18 собак количество подсчитанных клещей после лечения было меньше, чем при подсчете в день 1. Четыре из 18 собак продемонстрировали отсутствие клещей в двух последовательных соскобах при ежемесячном подсчете клещей: три собаки имели такие значения в дни 27 и 55, то есть после двух обработок препаратом Адвокат®, а четвертая собака в день 83 и 111, то есть после четырех обработок. Количество клещей при подсчете в конце исследования для 18 собак были значительно меньше по сравнению с количествами, подсчитанными до начала лечения (p<0,0001).

рис. 1. Средние геометрические (СГ) значения количества клещей (demodex spp.), подсчитанные у собак, проходивших лечение с применением препарата Aдвокат®, доза 0,1 мл на кг веса тела (от 2 до 4 применений, интервал между каждым применением 4 недели)

160


День 1 День 111

рис. 2. Устранение клинических симптомов генерализованного демодекоза у собак, проходивших лечение препаратом адвокат®, доза 0,1 мл на кг веса тела

161


Значение кумулятивной эффективности – 98%, как показано в табл. 2. Частота проявления клинических симптомов в различные дни оценки суммируется в табл. 3.

таблица 3. клинические симптомы генерализованного демодекоза у собак до и после лечения препаратом адвокат®.

Симптом:

Частота появления симптомов в дни исследования (данные предоставлены, как случаи из общего к-ва

наблюдаемых животных, напр.n/18)

День 1 День 27 День 55 День 82/83

День 110/111

Эритема 9/18 7/18 1/18 1/15* 2/14**Корочки/чешуйки/струпья 17/18 14/18 12/18 8/15 6/14

* Для трех собак день окончания исследования был день 55** Одна собака была удалена из исследования в день 106

Данные демонстрируют определенную схему ослабевания проявления эритемы, шелушения и струпьев, отражая улучшение состояния кожи, что связано с уменьшением количества клещей. Улучшение клинического состояния кожи собак, значительно пораженных клещом Demodex в начале исследования, представлено на рис. 2.

обСУЖДениеРезультаты данного исследования продемонстрировали, что комбинация

действующих веществ имидаклоприд/моксидектин, применяемая методом «спот-он» (Адвокат®), очень эффективна при борьбе с клещом Demodex spp. Лечение препаратом Адвокат® привело к явному улучшению общего клинического состояния у 16-ти из 18-ти собак.

В практике при лечении демодекоза собаки зачастую демонстрируют клинически нормальное состояние кожи еще до того, как соскобы кожи будут отрицательными на наличие клещей [2,14]. Таким образом, очень важно продолжать брать множественные соскобы кожи животных (минимум 4-6), чтобы контролировать эффективность лечения. Однако, даже при хорошей технике взятия соскобов, этот метод остается несовершенным, поскольку в материале из взятых проб находится лишь небольшое количество участков, относящихся к волосу и сальной железе [8], а отрицательный соскоб кожи не обязательно означает, что противопаразитарное лечение было успешным. Поэтому рекомендуется продолжение лечения в течение 2 - 3 месяцев после отрицательных соскобов с кожи [2,10]. Животные считаются выздоровевшими,

162


если в соскобах кожи не обнаружено клещей в течение 12 месяцев после прекращения лечения [11,14].

Нецелевое (с нарушением инструкции по применению) использование лекарственных средств, особенно группы макроциклических лактонов, при лечении демодекоза было рассмотрено Мюллером в 2004 году. Мюллер сделал вывод, что по причине короткого интервала между введением таких препаратов и частого применения (что необходимо для достижения эффективности), возрастает риск побочных эффектов. Известно также, что ивермектин токсичен для колли и других пород собак, родственных колли [13].

Показатели эффективности лекарственных веществ, обычно применяемых для лечения демодекоза у собак (амитраз, мильбемецина оксим, ивермектин), очень разнятся - от 0 до 99%, и многим животным может потребоваться длительное, а иногда и непрерывное акарицидное лечение [6,4,10,13].

Согласно данным исследований демодекоз не излечивается, если терапия направлена только на основное заболевание [2]. Общие показатели эффективности лечения выше у тех собак, у которых основное заболевание излечимо. Схемы лечения, направленные на лечение генерализованного демодекоза у собак, должны включать эффективную антимикробную и акарицидную терапию, а также лечение сопутствующего заболевания. Препарат Адвокат® удобен в использовании, хорошо переносимый [12] и эффективный акарицидный препарат, это идеальный продукт для лечения демодекоза в сочетании с другими поддерживающими видами терапии.

СПиСок литератУрЫ 1. BARRAGE O., AL-CHILD N. W., MARTIN S. and WHYMAN M. (1992). Evidence of

immunosuppression by Demodex canis. Vet. Immunol. and Immunopathol., 32: 37-46. 2. BURROWS A. K. (2000). Generalised demodicosis in the dog: the unresponsive or

recurrent case. Aust Vet J, 78: 244-246. Good Clinical Practice (2000). The VICH Guideline (GLP) on Good Clinical Practices for Veterinary Medicinal Products, International Cooperation on harmonization of technical requirements for registration of veterinary medicinal products, recommended for implementation at step 7 of the VICH process by the VICH Steering Committee, FEDESA, Belgium.

3. HEINE J., KRIEGER K., FOURIE L., DUMONT P. and RADELOFF I. (2005). Imidacloprid 10% and Moxidectin 2.5% Spot-on (AdvocateTM) for Treatment of Demodicosis in Dogs. 8th International Symposium on Ectoparasites of Pets. Hannover (Germany), May 8-11, 2005.

4. HOLM B. R. (2003). Efficacy of milbemycin oxime in the treatment of canine generalised demodicosis: a retrospective study of 99 dogs (1995-2000). Veterinary Dermatology, 14:189-195.

5. LEMARIE S. L. (1996), Canine demodicosis. Compendium on Continuing Education for the Practising Veterinarian, 18 (4): 354.

163


6. MEDLEAU L., RISTIC Z. and MCELVEEN D. R. (1996). Daily ivermectin for treatment of generalised demodicosis in dogs. Veterinary Dermatology, 7: 209 - 212.

7. MILLER W. H. J. R., SCOTT D. W., CAYATTE S. M., BUERGER R. G. and BAGLADI M. S. (1995). Clinical efficacy of increased dosages of milbemycin oxime for treatment of generalised demodicosis in adult dogs. JAVMA, 207: 1581– 1584.

8. MILLER W. H. J. R., SCOTT D. W., WELLINGTON J. R. and PANIå R. (1993). Clinical efficacy of milbemycin oxime in treatment of generalised demodicosis in adult dogs. JAVMA, 203: 1426-1429.

9. MUELLER R. S. (2004). Treatment protocols for demodicosis: an evidence-based review. Veterinary Dermatology, 15:75-89.

10. PARADIS M. (1999). New approaches to the treatment of canine Demodicosis. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 29: 1425 - 1436.

11. PARADIS M. and PAGÉ N. (1998). Topical (pour-on) ivermectin in the treatment of chronic generalised demodicosis in dogs. Veterinary Dermatology, 9: 55-59 .

12. PAUL A. J., HUTCHENS D. E., FIRKINS L. D. and BORGSTROM M. (2004). Dermal safety study with imidacloprid/moxidectin topical solution in the ivermectin–sensitive collie. Veterinary Parasitology, 121: 285-291.

13. SHAW S. E. and FOSTER A. P. (2000). Treatment of canine adult-onset demodicosis. Aust Vet J, 78: 243-244.

14. SHIPSTONE M. (2000). Generalised demodicosis in dogs, clinical perspective. Aust Vet J, 78: 240-242.

актУальнЫе ПроблемЫ анеСтеЗии и СеДации лоШаДей

Полатайко о.р., врач ветеринарной медицины, менеджер по техническим вопросам представительства компании «Файзер» в Украине

Применение анестезии у любого вида животных несет риск смертельного исхода или каких-либо осложнений, но этот риск особенно высок у лошадей. Согласно статистике смертность при анестезии лошадей для выполнения плановых операций составляет приблизительно 1 из 100, в то время как аналогичный показатель у собак равен 1 из 1000. Смертность у лошадей еще выше при проведении ургентных операций или операций у животных в тяжелом состоянии (например, при коликах) — приблизительно 1 из 10.

Анестезия этого вида животных осложняется рядом проблем, связанных с темпераментом, большой массой тела и особенностями торакоабдоминальной анатомии. Кроме того, введение в наркоз и выход из него затрудняется тем, что лошадь при возникновении потенциально опасной ситуации впадает в панику и стремится убежать.

164


Продолжительное нахождение лошади в лежачем положении является противоестественным. В латеральном и дорсальном лежачем положении, особенно в условиях гипоксии, может нарушаться кровоток в мышцах, что несет риск возникновения послеоперационной миопатии. Кроме того, особенно в дорсальном положении, высока вероятность развития нарушений функции сердечно-сосудистой и дыхательной систем.

Кроме риска для здоровья животного, при анестезии лошадей существует вероятность нанесения травмы анестезиологу и его ассистентам. Такая опасность особенно высока во время введения в наркоз и выхода из него, когда лошадь находится в состоянии возбуждения и/ или атаксии. Владельцы и неопытные «зрители» не должны присутствовать при проведении анестезии лошади.

К основным факторам риска при анестезии лошадей можно отнести: размер животного, породу (тяжеловозы, американские квартеры), темперамент, в некоторых случаях пол (племенные жеребцы, жеребые кобылы), возраст, продолжительность хирургического вмешательства, состояние здоровья пациента. Безусловно, метаболическое и физиологическое состояние организма пациента оказывает наибольшее влияние на степень риска при проведении анестезии, т.к. при работе с лошадьми нередко приходится вводить в наркоз животных в исключительно тяжелом физиологическом и метаболическом состоянии (например, при коликах). В некоторых случаях анестезия необходима для проведения операций, которые не несут значительного риска у других видов животных (например, оперативное лечение переломов), а у лошади — связаны с высокой степенью риска (падения, опора на прооперированную конечность при выходе из наркоза).

Учитывая вышеизложенное, становиться понятным всё более широкое распространение практики проведения определенных операций и манипуляций у лошадей в стоячем положении – с использованием седации и местной анестезии.

Препарат для седации в идеале должен обладать быстрым метаболизмом, обеспечивать достаточную анальгезию и миорелаксацию, при этом минимально воздействовать на сердечнососудистую систему, не обладать раздражающим действием на ткани, не кумулироваться в тканях организма, не иметь токсических или активных метаболитов, а также обладать реверсивностью. Конечно, идеальных препаратов просто не существует, однако некоторые обладают большинством необходимых свойств. К таким препаратам относится препарат компании «Файзер» «Домоседан» (действующее вещество – детомидина гидрохлорид). Детомидин является α2 агонистом, который блокирует передачу норадреналина, обеспечивая быстрое наступление анальгезии, седации и миорелаксации. «Домоседан» может вводиться внутримышечно и внутривенно, при этом продолжительность и глубина седации зависит от дозы:• 10 мкг/кг – обеспечивает легкую седацию, продолжительностью 30-60 мин

165


• 20-40 мкг/кг – обеспечивает умеренную седацию и анальгезию, 30-60 мин• 40-80 мкг/кг – обеспечивает глубокую седацию, 60-120 мин

Это позволяет проводить исследования и диагностические процедуры (эндоскопия, рентген, введение зонда), транспортировку, ушивание ран, гинекологические исследования, расчистку копыт, подпиливание зубов, кастрацию в стоячем положении (в комбинации с «Торбуджезиком» (действующее вещество - буторфанол).

Кроме того, «Домоседан» широко применяется в качестве эффективного средства для премедикации. Так, например, при использовании «Домоседана» для премедикации перед введением в наркоз рекомендуются следующие дозы: детомидин 10-30 мгк/кг, а затем при достижении необходимого уровня седации - кетамин 2.2 мг/кг или тиопентал 3-6 мг/кг в/в.

Противопоказаниями для использования «Домоседана» выступают: сердечнососудистая и дыхательная недостаточность, нарушение функции печени/почек, последний месяц жеребости. Также не рекомендуется вводить препарат одновременно с симпатомиметиками и потенцированными сульфаниламидами, а также в комбинации с буторфанолом при коликах.

При передозировке может наблюдаться длительный период восстановления, а также нарушения функции дыхания и кровообращения. В качестве терапевтических мер показана оксигенотерапия и введение «Антиседана» (атипамезола гидрохлорид) в 2-5 кратной дозе в мкг/кг.

Таким образом, свойства действующего вещества «Домоседана» и наличие специфического антагониста обеспечивают высокую эффективность и безопасность препарата при проведении седации и премедикации лошадей.

zoos and biodiversity

Documents

ukraine v v

v collection

iguana iguana

role of zoos

practical conference

dytiscus latissimuslinnaeus

conservation of biodiversity19

capra falconeri wagn