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UNIVERSIDAD CENTRAL DE ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
INSTITUTO SUPERIOR DE INVESTIGACIÓN Y POSGRADO
“Análisis espacial del riesgo de enfermedades respiratorias de notificación obligatoria en aves
de traspatio”
Trabajo de titulación, modalidad proyecto de investigación para la obtención del título de
Magíster en Producción y Sanidad Avícola
Autor: Javier Vicente Vargas Estrella
Tutor: Dr. Richar Iván Rodríguez Hidalgo, PhD
Quito D.M., Noviembre, 2018
I
© DERECHOS DE AUTOR
Yo, JAVIER VICENTE VARGAS ESTRELLA en calidad de autor del trabajo de
investigación: “ANÁLISIS ESPACIAL DEL RIESGO DE ENFERMEDADES RESPIRATORIAS
DE NOTIFICACIÓN OBLIGATORIA EN AVES DE TRASPATIO” autorizo a la Universidad
Central del Ecuador hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o parte de los
que contiene esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8; 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
Asimismo, autorizo a la Universidad Central del Ecuador para que realice la digitalización
y publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a
lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
En la ciudad de Quito a los 20 días del mes de noviembre de 2018.
II
APROBACIÓN DEL TUTOR
Yo, Richar Iván Rodríguez Hidalgo en calidad de tutor del trabajo de titulación, modalidad
proyecto de investigación, para la obtención del Título de Magister en Producción y
Sanidad Avícola, elaborado por el estudiante JAVIER VICENTE VARGAS ESTRELLA
del programa de posgrado Maestría en Sanidad Avícola, de la Facultad de Medicina
Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Central del Ecuador, considero que el mismo
reúne los requisitos y méritos necesarios para ser sometido a la evaluación por parte del
jurado examinador que se asigne, por lo que APRUEBO, a fin de que el trabajo sea
habilitado para continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad
Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito, a los 20 días del mes de noviembre de 2018.
IV
DEDICATORIA
A mi esposa, por brindarme la confianza de realizarme profesionalmente y superar juntos
las situaciones difíciles de nuestra vida; a mis hij@s por su apoyo incondicional, impulso
y ánimo para culminar con mis estudios.
A Dios, por guiarme en cada momento darme fortaleza y sabiduría para culminar con
éxito este título de cuarto nivel.
A mis padres, herman@s, amigos y familiares que de una u otra manera siempre hicieron
todo lo posible para el logro de este objetivo.
Javier Vargas
V
AGRADECIMIENTO
Al Instituto de Posgrado de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la
Universidad Central del Ecuador por brindarme la oportunidad de continuar con mi
formación profesional en la carrera que me apasiona.
A mi esposa, Mercedes, por ser pilar fundamental dentro de mi vida; a mis hij@s por su
apoyo incondicional en este reto asumido en la carrera universitaria; a mis padres y
hermanos por formar parte y ser ejemplo de superación personal y profesional.
De manera muy especial al Dr. Richar Rodríguez Hidalgo, tutor de tesis, por sus
conocimientos y guía incondicional durante todo el proceso de la realización y
culminación del presente trabajo de investigación.
A todos los maestros docentes que impartieron sus conocimientos y experiencias, de
manera especial al Ing. Lenin Ron Garrido, mi gratitud porque fueron la base fundamental
para la formación como Magister, y a los amigos y compañeros que fueron parte
importante en todo el desarrollo del programa de Maestría en Producción y Sanidad
Avícola.
A la Agencia de Regulación y Control Fito y Zoosanitario, AGROCALIDAD, por la
colaboración brindada para el desarrollo de esta investigación.
Javier Vargas
VI
CONTENIDO © Derechos del autor ................................................................................................................ I
Aprobación del Tutor. ................................................................................................................ II
Aprobación del Tribunal………………………………………………………………………………..III
Dedicatoria. ............................................................................................................................... IV
Agradecimientos ....................................................................................................................... V
Contenido……………………………………………………………………………………………….. VI
Índice de tablas ........................................................................................................................ VIII
Índice de figuras ....................................................................................................................... VIII
Índice de anexos ...................................................................................................................... VIII
Resumen. ................................................................................................................................... 1
Abstract. ..................................................................................................................................... 2
CAPITULO I ............................................................................................................................... 3
Introducción ............................................................................................................................... 3
CAPITULO II .............................................................................................................................. 5
Objetivo general.......................................................................................................................... 5
Objetivos específicos…………………......................................................................................... 5
Hipótesis ………………………………......................................................................................... 5
CAPITULO III ............................................................................................................................. 6
Marco teórico ............................................................................................................................. 6
Avicultura de traspatio………………........................................................................................... 6
Enfermedades respiratorias………………………….................................................................... 7
Enfermedad de Newcastle……………………………………….................................................... 8
Bronquitis infecciosa…………................................................................................................... 11
Laringotraqueítis infecciosa………………………………………………………........................... 14
Influenza aviar………………………........................................................................................... 17
Análisis de patrones de puntos (Función K de Ripley)……………………………………………. 20
CAPITULO IV ............................................................................................................................ 22
Metodología de la investigación……………………………………………………………………… 22
Área de estudio…………………................................................................................................. 22
Materiales …………………………….......................................................................................... 23
Tipo de investigación................................................................................................................. 23
Metodología……….………………….......................................................................................... 23
VII
Métodos de diagnóstico………………………………………………………………………………. 24
Análisis estadístico. .................................................................................................................. 25
CAPITULO V............................................................................................................................. 28
Resultados ............................................................................................................................... 28
Distribución de las enfermedades respiratorias en aves de traspatio...................................... 28
Newcastle………………………………….................................................................................. 29
Patrón espacial de puntos de Newcastle………………………………………………………….. 30
Bronquitis infecciosa……………………………………….......................................................... 32
Patrón espacial de puntos de Bronquitis………………………………………………………….. 32
Laringotraqueítis infecciosa……………………………………................................................... 34
Patrón espacial de puntos de Laringotraqueítis………………………………………………….. 35
CAPITULO VI .......................................................................................................................... 38
Discusión ................................................................................................................................. 38
CAPITULO VII………………………………………….…………………………………………….. 44
Conclusiones………………………………………………………………………………...……….. 44
Referencias bibliográficas........................................................................................................ 45
Anexos…….............................................................................................................................. 49
VIII
INDICE DE TABLAS
Tabla 1. Casos positivos de enfermedades respiratorias diagnosticadas en el muestreo
de aves de traspatio realizado por AGROCALIDAD en el año 2017 …………………………… 28
INDICE DE FIGURAS
Figura 1. Función K de Ripley, diferentes patrones de agrupamiento de puntos……………… 21
Figura 2. Sitios de traspatio muestreados por AGROCALIDAD…………………………………. 22
Figura 3. Mapa de distribución de Newcastle en aves de traspatio……………………………... 29
Figura 4. Función K para Newcastle………………………………………………………………… 30
Figura 5. Mapa de riesgo de Newcastle……………………………………………………………. 31
Figura 6. Mapa de distribución de Bronquitis infecciosa en aves de traspatio…………………. 32
Figura 7. Función K para Bronquitis………………………………………………………………… 33
Figura 8. Mapa de riesgo de Bronquitis…………………………………………………………….. 34
Figura 9. Mapa de distribución de Laringotraqueítis infecciosa en aves de traspatio…………. 35
Figura 10. Función K para Laringotraqueítis……………………………………………………….. 36
Figura 11. Mapa de riesgo de Laringotraqueítis…………………………………………………… 37
INDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Muestreo nacional en aves de traspatio 2017, directrices ejecución……………….. 49
Anexo 2. Formulario de vigilancia activa para aves empleado en muestreo………………….. 53
1
“Análisis espacial del riesgo de enfermedades respiratorias de notificación
obligatoria en aves de traspatio”
Autor: Javier Vicente Vargas Estrella Tutor: Dr. Richar Rodríguez, PhD
Resumen
Las enfermedades respiratorias en aves de declaración obligatoria a la OIE, de interés para
el Ecuador son el Newcastle (NC), la Bronquitis infecciosa (IB), la Laringotraqueítis
infecciosa (LT) y la Influenza Aviar (IA); las cuales constituyen peligros latentes para la
avicultura comercial y de traspatio. La crianza de aves de traspatio representa una
alternativa importante para mantener la seguridad alimentaria y nutricional de los productores
y consumidores; sin embargo, las prácticas de bioseguridad no han sido adecuadamente
implementadas en este segmento productivo. El objetivo del presente estudio fue analizar
la distribución espacial de las enfermedades respiratorias NC, IB, LT y IA, en aves de
traspatio, basados en información epidemiológica proporcionada por la Agencia de
Regulación y Control Fito y Zoosanitario (AGROCALIDAD). El área de estudio contempló
el muestreo de 313 sitios de crianza de aves en las 23 provincias del Ecuador Continental.
En total, se analizaron 68, 299, 160 y 0 pools positivos confirmados por biología molecular de
NC, IB, LT y IA, respectivamente. Se obtuvo la función K de la distribución espacial de los
casos positivos de las diferentes enfermedades y el gráfico Kernel de densidad para su
identificación. Los resultados obtenidos por medio de análisis espacial demostraron que la
distribución de casos positivos, en las aves de traspatio, de tres de las cuatro enfermedades
respiratorias (NC, IB, LT) están asociados e identificados espacialmente formando clusters.
En estas áreas el riesgo de presencia de enfermedad se incrementó entre 5.2 a 6 veces
respecto del nivel bajo. Los casos positivos en general siempre estuvieron asociados a la
producción de aves adultas.
Palabras claves: Newcastle, Influenza aviar, Bronquitis infecciosa, Laringotraqueítis, Aves
de traspatio, Ecuador.
2
"Spatial analysis of the risk of respiratory diseases of obligatory notification in backyard birds"
Author: Javier Vicente Vargas Estrella Tutor: Dr. Richar Rodríguez, PhD
Abstract
Respiratory diseases in birds of mandatory reporting to the OIE, of interest to Ecuador are
Newcastle (NC), infectious bronchitis (IB), infectious Laryngotracheitis (LT) and Avian
Influenza (AI); which are latent dangers for commercial poultry and backyard poultry. Raising
backyard birds represents an important alternative to maintain the food and nutritional
security of producers and consumers; however, biosecurity practices have not been
adequately implemented in this productive segment. The objective of the present study was
to analyze the spatial distribution of respiratory diseases NC, IB, LT and IA, in backyard birds,
based on epidemiological information provided by the Agency for Regulation and Control of
Fito and Zoosanitary (AGROCALIDAD). The study area included the sampling of 313 bird-
raising sites in the 23 provinces of Continental Ecuador. In total, 68, 299, 160 and 0 positive
pools confirmed by molecular biology of NC, IB, LT and IA were analyzed, respectively. The
K function of the spatial distribution of the positive cases of the different diseases and the
density Kernel graph for its identification was obtained. The results obtained through spatial
analysis showed that the distribution of positive cases, in the backyard birds, of three of the
four respiratory diseases (NC, IB, LT) are spatially associated and identified forming clusters.
In these areas the risk of the presence of disease increased between 5.2 to 6 times
compared to the low level. The positive cases in general were always associated with the
production of adult birds.
Keywords: Newcastle, Avian Influenza, Infectious Bronchitis, Laryngotracheitis, Backyard
Birds, Ecuador.
3
CAPITULO I
INTRODUCCIÓN
La carne y huevos forman parte fundamental de la dieta alimenticia de los ecuatorianos, por
sus beneficios nutricionales y por su relativo bajo costo. (Santiana, 2013). Según la
Corporación Nacional de Avicultores del Ecuador, el consumo per cápita de pollo se ha
incrementado año tras año en el país, es así que, en el año 2017 fue 35 Kg/persona/año y el
consumo per cápita de huevo fue de 160 unidades/persona/año.
En el Ecuador, la producción avícola se desarrolla a nivel industrial y de traspatio; la
producción industrial cuenta con sistemas de manejo tecnificado y de alta bioseguridad que
incluye la vacunación para la protección de las aves contra muchas enfermedades que
podrían ocasionar serias pérdidas económicas. Por otro lado; la producción de traspatio
tiene poca o ninguna tecnificación y con casi total ausencia de bioseguridad. Este segmento
representa el 24,95% de la producción avícola en el Ecuador (ESPAC, 2017).
Tanto la producción avícola industrial y de traspatio son susceptibles a enfermedades
infecciosas avícolas (Vargas, 2016). El uso rutinario de vacunas con virus vivos modificados
para el control de enfermedades en el sector industrial y su estrecha relación con las aves de
traspatio, podría convertir a las aves de traspatio en reservorios de enfermedades que
afectarían al sector industrial o viceversa. AGROCALIDAD, ha puesto en marcha y ha
ejecutado monitoreos de vigilancia activa para el control y prevención de enfermedades
respiratorias de importancia e interés económico para el país; siendo las principales la
Influenza Aviar (IA), considerada exótica, Enfermedad de Newcastle (NC),
Laringotraqueítis (LT) y Bronquitis Infecciosa aviar (IB) que son de notificación obligatoria
establecido por la Organización Mundial de Sanidad Animal – OIE.
Estas enfermedades tienen su importancia en avicultura debido al impacto económico
negativo que origina en los productores; ya que, además de los gastos por procesos de
control que incluye la despoblación, produce bajas en la producción de huevos en gallinas de
postura y reproductoras, alta mortalidad y morbilidad, retardo del crecimiento en pollos de
carne y complicaciones con infecciones secundarias. Además, es una barrera sanitaria
importante que limita los procesos para la exportación de productos y subproductos avícolas,
4
pues uno de los requisitos exigidos por los Servicios Sanitarios es la declaración, por parte
de la OIE, como país o zonas libres de las enfermedades para realizar esta actividad, lo que
implica la ausencia de la enfermedad en el país exportador (OIE, 2018 a).
Las aves de traspatio son consideradas, por ciertos grupos, como potenciales reservorios de
enfermedades para las aves comerciales (Camacho et. al. 2009); no obstante, las aves de
traspatio estuvieron antes que las aves comerciales y que, por su comportamiento etológico
y el manejo natural no requieren de procesos de bioseguridad minuciosos como las aves
comerciales que son criadas en espacios reducidos y condiciones especiales que permiten
lograr los niveles de producción rentables. El uso de vacunas con agentes vivos atenuados,
podrían “accidentalmente”, llegar a las aves de traspatio quienes podrían facilitar la mutación
de estos agentes de cepas vacunales a cepas de campo, incrementando el riesgo de brotes
epidemiológicos en aves comerciales. Por otro lado, las aves de traspatio representan un
rubro importante económico para la población humana; “Más del 90% de los 570 millones de
granjas a nivel mundial son manejados por un individuo o una familia” lo que hace imposible
su desvinculación de la producción industrial (Or, 2018).
Es por esto que, el presente trabajo se planteó, como objetivo, efectuar el análisis
espacial de la distribución de las enfermedades respiratorias en aves de traspatio,
basado en la información proporcionada por AGROCALIDAD, para establecer la
posibilidad de identificar la importancia de las aves de traspatio en el comportamiento de
las enfermedades respiratorias presentes en el Ecuador. Esta información será de
utilidad para implementar medidas sanitarias y priorizar zonas para atención de las 4
enfermedades respiratorias en estudio y el desarrollo de estrategias para su control. Así
mismo, inferir cual es el rol, positivo o negativo, de las aves de traspatio en la presencia
de enfermedades respiratorias en la producción industrial.
5
CAPITULO II
OBJETIVOS Objetivo General Realizar un análisis espacial de riesgo de las enfermedades respiratorias de declaración
obligatoria (NC, IB, LT y IA) en aves de traspatio en el territorio continental ecuatoriano
basado en los diagnósticos confirmatorios del muestreo nacional, de granjas comerciales y
de traspatio efectuado por AGROCALIDAD en el año 2017.
Objetivos específicos
• Analizar espacialmente la distribución para la presencia de enfermedades
respiratorias de declaración obligatoria (NC, IB, LT y IA) en aves de traspatio,
basado en el muestreo y en el diagnóstico confirmatorio realizados por
AGROCALIDAD, año 2017.
• Establecer la distribución espacial de las enfermedades respiratorias en función del
tipo de producción y localización de los sitios muestreados.
• Identificar áreas de agrupamiento de las enfermedades respiratorias aviares que
permitirán inferir posibles zonas de distribución de las enfermedades y el potencial
riesgo de su transmisión en base a la función K y gráficos de densidad de puntos.
HIPÓTESIS Hipótesis nula (H1)
Existe relación espacial y de riesgo entre la explotación de aves de traspatio y la distribución
de las enfermedades respiratorias de notificación obligatoria.
Hipótesis alternativa (H0)
No existe relación espacial y de riesgo entre la explotación de aves de traspatio y la
distribución espacial de las enfermedades respiratorias de notificación obligatoria.
6
CAPÍTULO III
MARCO TEÓRICO
AVICULTURA DE TRASPATIO
Según Vargas, (2016), la avicultura en Ecuador, en los últimos 30 años, ha sido considera
como una de las actividades más dinámica del sector agropecuario. La creciente demanda
de carne de pollo y huevos ha permitido satisfacer las necesidades nutricionales de todos los
estratos sociales de la población y, ampliar la venta de estos productos en los mercados
fronterizos.
El INEC, (2017), a través de la Encuesta de Superficie y Producción Agropecuaria Continua
(ESPAC) menciona que, el 21,83% del total de aves existentes en el país corresponde a las
aves de traspatio y el 78,17% a planteles avícolas industrializados o tecnificados. Del mismo
modo, el 90,81% de la producción total de huevos provienen de planteles avícolas
tecnificados; mientras que, el 9,19% de aves de traspatio. La provincia de Tungurahua es la
provincia con mayor producción de huevos con un total de 47,57 millones por semana,
representando el 38,52% del total de la producción nacional.
La Corporación Nacional de Avicultores del Ecuador, CONAVE (2018) y AGROCALIDAD,
(2017), indican que, en nuestro país, en el año 2017, hubo una población avícola de 235
millones de pollos de engorde (alrededor de 550 mil toneladas de carne) y 14,9 millones de
aves de postura con una producción de 47.431.058 huevos por semana siendo, el consumo
per cápita en Ecuador de 32 kg persona/año de carne de pollo y 160 unidades de huevos
persona/año. Según los datos anteriores se puede afirmar que Ecuador es un país
autosustentable en producción de proteína animal (CONAVE, 2018).
La “avicultura familiar”, rústica o de traspatio, se puede conceptualizar como la cría
doméstica tradicional que utiliza pocos insumos e incluye diversas especies de aves como:
gallinas, pavos, patos, gansos, gallinas de guinea, pichones, faisanes, y codornices; la
avicultura de traspatio es la actividad pecuaria de mayor tradición y difusión (Molina, 2013).
Además, esta actividad fortalece el bienestar de las familias campesinas ya que
7
proporcionan productos de alto valor nutritivo como carne y huevos que pueden generar
ingresos económicos por la venta de los excedentes de estos productos (Enríquez, 2015).
Para Enríquez, (2015), la avicultura de traspatio es una actividad de gran importancia en las
comunidades rurales de varios países, caracterizada por la baja inversión requerida y por la
facilidad para efectuarla. Según Molina, (2013), citado por Enríquez, (2015), la avicultura de
traspatio tiene características particulares como la escasa implementación de tecnología
pecuaria disponible; por lo regular, las aves no tienen un alojamiento propio (galpón) o se
alojan en instalaciones rústicas, carecen de un control sanitario y su alimentación tiene como
base diversos productos o subproductos generados en su mayoría en la misma unidad de
producción familiar.
Toapanta, (2018) hace referencia a un estudio sobre avicultura familiar efectuado por
Calderón, Gómez, y Mora, (2010), en el norte del Tolima (Colombia) en el que comprobaron
que entre 55,62% y 78% de familias estudiadas criaban aves para el autoconsumo;
adicionalmente, identificaron deficiencias alimenticias, ausencia de asistencia técnica y,
presencia de enfermedades parasitarias e infecciosas.
ENFERMEDADES RESPIRATORIAS.
Vinueza, (2010), manifiesta que en el Ecuador aún no se ha evaluado la diseminación de
enfermedades entre planteles avícolas y aves de traspatio y, mucho menos su influencia en
el estatus epidemiológico de una zona. AGROCALIDAD, (2016) ha monitoreado las
enfermedades respiratorias de importancia económica en el sector avícola; entre las
principales están el newcastle, la bronquitis infecciosa, la laringotraqueítis y la influenza
aviar. Si bien es cierto, estas enfermedades son susceptibles de erradicación, nuestro país,
dada las circunstancias, podría lograr el control de las mismas. De la misma manera, la
definición de zonas de riesgo permitirá la implementación de planes y programas con miras
al aseguramiento de la sanidad avícola del Ecuador.
Las enfermedades o alteraciones de los sistemas respiratorio y digestivo de las aves son
consideradas las de mayor repercusión económica en la producción avícola debido a la
presión de los sistemas de manejo y producción intensivos, lo cual provoca estrés, cambios
8
en su conducta y alteración en la microflora natural de las aves, lo que afecta a su fisiología
normal y produce enfermedad por bloqueo o daño del sistema inmune.
Del mismo modo, varios factores como, la proximidad con los centros de consumo,
humedales con presencia de aves migratorias, el comercio informal o la densidad de granjas
con niveles diversos de bioseguridad, pueden aumentar el riesgo de difusión de
enfermedades entre sistemas de producción avícola. Esto hizo que se consideren nuevas
reglamentaciones para el comercio internacional de productos y subproductos de origen
animal, que regulan el ingreso de productos de países donde existe antecedentes de
enfermedades de la lista A de la OIE (OIE, 2016).
ENFERMEDAD DE NEWCASTLE.
Según Alexander, (2003) citado por Escudero, (2016), la enfermedad de Newcastle (NC) es
considerada como una de las más importantes patologías de las aves, junto con la Influenza
Aviar. En el sector avícola produce importantes pérdidas económicas debido a su alta
mortalidad (60% a 100%), además de repercusiones socio-económicas como restricciones
del comercio interno y externo en los países afectados. El NC está incluida dentro de la lista
de enfermedades de declaración obligatoria por la OIE; en países de América, Medio
Oriente, África y Asia es considerada endémica.
La disminución de la producción y la alta tasa de mortalidad, determinan la importancia
económica de esta enfermedad teniendo en cuenta que las cepas virulentas producen
infecciones que pueden causar la muerte del 100% de las aves no vacunadas (Alexander,
2003). Actualmente, el NC sigue siendo endémica en muchas zonas del mundo, pero en
algunos países gracias a las restricciones comerciales, las medidas de vacunación y
diferentes disposiciones legales, se ha podido controlar la difusión de la enfermedad
(Ababneh et al., 2012). Las principales entradas de la enfermedad a una zona susceptible
incluyen las importaciones de aves vivas infectadas, subproductos de aves infectadas,
movimiento de equipos o personas, pienso y/o agua contaminada, migración de aves
silvestres y viento (Alexander, 2003).
Manzano, (2017) indica que el NC es preocupante para la industria avícola por su impacto
económico; y, por el aspecto zoosanitario en las que las cepas velogénicas afectan a las
9
aves y al ser humano, produciendo conjuntivitis por exposición al virus (Swayne & King,
2003; Venturino, 2005).
ETIOLOGÍA La enfermedad de Newcastle (NC) es un miembro de la familia Paramyxoviridae del género
Avulavirus. Se conocen diez serotipos de paramixovirus aviares designados APMV-1 a
APMV-10. El virus de Newcastle (NDV) también ha sido clasificado en cinco patotipos según
los signos clínicos en pollos infectados, designados: a) velogénicos viscerotrópicos, b)
velogénicos neurotrópicos, c) mesogénicos, d) lentogénico o respiratorio y e) asintomático.
Las agrupaciones de patotipos rara vez son claras (OIE, 2018).
TRANSMISIÓN
La OIE indica que la transmisión del virus se da por las siguientes formas:
Contacto directo con secreciones de aves infectadas; principalmente por ingestión
(vía fecal / oral) e inhalación.
Fomites: piensos, agua, implementos, locales, ropa humana, botas, sacos, bandejas
para huevos, etc.
Transmisión vertical a través del huevo para algunas cepas de ENC.
A través de vectores: aunque no hay evidencia clara del papel de las moscas en la
transmisión mecánica.
PATOGENIA
Salazar, (2017) manifiesta que la introducción e implantación primaria del virus en las vías
respiratorias, es seguida por la replicación del virus en las células del epitelio mucoso del
tracto respiratorio, desde donde alcanza la circulación sanguínea, para un segundo ciclo de
replicación en los órganos viscerales y una nueva liberación del virus en la corriente
sanguínea pasando en algunos casos al sistema nervioso central. Los signos clínicos de la
enfermedad y la eliminación del virus al medio, se asocian a la segunda liberación del virus a
la sangre y el curso clínico de la enfermedad estará determinado por los mecanismos de
defensa que pueden desarrollarse en esta fase. En manifestaciones naturales se ha
10
observado un periodo de incubación que varía de 2 a 15 días con un promedio de 5 a 6 días
(Moreno, 1994).
DIAGNÓSTICO
El diagnóstico presuntivo basado en signos clínicos que se observan en aves infectadas con
NC varían ampliamente y dependen de factores tales como: virus / patotipo, especie
huésped, edad del huésped, coinfección con otros organismos, estrés ambiental y estado
inmune Los signos clínicos por sí solos no presentan una base confiable para el diagnóstico
de NC. La morbilidad y la mortalidad depende de la virulencia de la cepa del virus, el grado
de inmunidad de la vacuna, las condiciones ambientales, y estado de la parvada (OIE, 2018).
EPIDEMIOLOGÍA
Salazar, (2017) quien cita a Kim et al., (2007), indica que la enfermedad de Newcastle está
presente en alrededor de 241 especies de aves domésticas y 27 de un total de 50 órdenes
de aves silvestres que son susceptibles a este virus. La epidemiología del virus de NC no
está bien entendida, todas las aves son susceptibles a la infección, aunque el grado de la
enfermedad varía de una especie a otra y en función de la cepa viral. Las aves acuáticas
(orden Anseriformes) son las más resistentes, y se consideran reservorios de cepas
lentogénicas (Kim et al., 2007, Hanson et al., 2005) que podrían volverse más virulentos
después de establecerse en aves de corral.
La enfermedad de NC es enzoótica en la mayoría de los países de África, Asia, América
Central y parte norte de América del Sur. En las regiones más desarrolladas, como Europa
Occidental y los Estados Unidos, aún se reportan epizootias esporádicas a pesar de la
vacunación intensiva. Las cepas de los virus de NC que circulan actualmente en el mundo
son esencialmente vicerotrópicos. (Brugére-Picoux, et. al., 2015).
En Colombia se indica que hay una prevalencia de NC del 25,1% en el año 2015 según
cifras reportadas por el Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), (Osorio, 2017); en Lima –
Perú, Ferrer et. al., (2008) reportan una prevalencia de aves con títulos de anticuerpos
compatibles a un desafío con el virus de la ENC de 1.8 ± 1.3% en la crianza industrial y de
9.9 ± 3.2% en la crianza no tecnificada. En Australia, un estudio realizado (2007 a 2010) en
11
aves acuáticas obtuvo una prevalencia de 3,5% para hisopados cloacales (1461 hisopados)
y 0,4% para muestras fecales (1157 muestras) empleando rRT-PCR (Hoque, et. al., 2012).
PREVENCION Y CONTROL
La vacunación contra la enfermedad de Newcastle se realiza en la mayoría de países
endémicos a esta enfermedad con vacunas a virus vivo, inactivadas, vectorizadas o
recombinantes. Las cepas que contienen las vacunas a virus vivo se basan principalmente
en las cepas La Sota (con sus respectivos clones) y la cepa B1, lo mismo que algunas otras
cepas con características especiales como la cepa VG/GA, Ulster, C2 y Queensland V4.
(Villegas, 2015).
BRONQUITIS INFECCIOSA
La bronquitis infecciosa (IB), sin duda, es uno de los problemas respiratorios virales de los
pollos más difíciles de controlar en el mundo. El diagnóstico y el aislamiento del virus han
aumentado significativamente el entendimiento de la enfermedad; sin embargo, muchas
variantes circulan constantemente entre pollos con la continua aparición de nuevas cepas
(Díaz et. al., 2008). El desarrollo de mutaciones espontáneas o recombinaciones genéticas
entre dos serotipos diferentes del virus que infecten al mismo huésped pueden provocar una
amenaza sanitaria para las poblaciones aviares (Gutierrez, 2010).
Según Poorbaghi et al., (2010), citado por García, (2016); la Bronquitis Infecciosa Aviar es de
alta relevancia para la industria avícola porque produce pérdidas económicas. Los efectos
sobre la economía avícola se generan debido a la falta de desarrollo de las aves, a la
disminución de la producción, baja calidad del huevo, falsas ponedoras, infertilidad, aumento
en la susceptibilidad a infecciones secundarias y, en algunos casos, alta mortalidad en aves
jóvenes (Acevedo, 2010). La información generada sobre la presencia e impacto económico
de las enfermedades en las aves de traspatio es escasa o nula (Olaya et al., 2010).
Es un virus de distribución mundial altamente contagiosa para las aves comerciales y de
traspatio de todas las edades; es considerada una enfermedad transmisible de declaración
obligatoria para la (OIE) debido a que, se considera importante desde el punto de vista
12
socioeconómico y sanitario, cuyas repercusiones en el comercio internacional de aves o de
productos de origen animal son considerables.
En América del Sur, el IBV se encuentra diseminado en granjas avícolas. Pese a los
constantes programas de control y prevención con el uso de vacunas vivas atenuadas e
inactivadas, brotes ocurren frecuentemente (OIE, 2013).
ETIOLOGÍA
Díaz et. al., (2008) y Astudillo, (2013), indican que la Bronquitis Infecciosas (IBV) es una
enfermedad ocasionada por el virus de la familia Coronaviridae, que comprende un género
simple de coronavirus, caracterizado por presentar proyecciones (espéculas) uniformemente
distribuidas que le dan la apariencia de corona. Las cepas más comunes son:
Massachusetts, Connecticut, JMK, Arkanzas, Georgia, Holte y T. Australian las cuales
determinan la presencia e importancia de la enfermedad.
PATOGENIA
El virus de Bronquitis Infecciosa puede infectar al ave por 2 vías. La aerógena: multiplicación
en tráquea, sacos aéreos o pulmón, causando la pérdida de las células protectoras que
cubren los senos y la tráquea, tras una breve viremia el VBI puede ser detectado en riñones,
tracto reproductor y tonsilas cecales. Algunas cepas nefropatógenas lesionan especialmente
al riñon.
Y la digestiva: se multiplican en mucosa del proventrículo.
DIAGNÓSTICO
Para Rivera, (2018) el diagnóstico se basa en el examen clínico pese a que los signos
clínicos y las lesiones no son patognomónicos. Otras enfermedades respiratorias, como la
infección por influenza aviar (IA), la enfermedad de Newcastle (NC), la infección por
metapneumovirus aviar, la laringotraqueitis infecciosa, micoplasmosis y coriza infecciosa
aviar en algunas etapas cursan con un cuadro clínico similar (Acevedo, 2017). Por otro lado,
el uso de técnicas moleculares o pruebas serológicas como ELISA indirecto como
diagnóstico confirmatorio.
13
EPIDEMIOLOGÍA
Acevedo-Beiras, (2017) menciona que la enfermedad tiene un período de incubación entre
18 y 36 horas posinfección en dependencia de la dosis y la vía de inoculación. Los pollos de
todas las edades son susceptibles, pero la enfermedad es más severa en los pollitos de
pocos días debido a que causa mortalidad. Con el incremento de la edad, los pollos se
hacen más resistentes a los efectos nefropatogénicos, las lesiones en el oviducto y a la
mortalidad. El virus es altamente infeccioso, se disemina horizontalmente a través de
aerosoles, material orgánico, agua de bebida y equipos contaminados. La contaminación de
la superficie de los huevos con el virus de IB puede ser una posible vía por la cual el virus se
disemine en las plantas de incubación o centros de empaque de huevos.
Es conocido que varios serotipos y patotipos del virus de IB pueden circular de manera
simultánea en una misma parvada. En países europeos está principlamente el serotipo
Massachusetts, el llamado virus variante D274 y 1644 y más reciente 739/B y B1648.
(Brugére-Picoux, et. al., 2015).
En Colombia, un estudio efectuado en el departamento de Cundinamarca determinó que del
total de granjas analizadas el 85.72% mostró positividad al virus de IB, ya sea dada por
presencia de virus vacunal o de campo (Córdoba, et. al., 2015). En Ecuador, Hernandez et
al., (2006), en un estudio realizado en aves de traspatio en el noreste del Ecuador de las 100
aves sometidas a prueba, el 85% presentaron anticuerpos para el virus de la Bronquitis
Infecciosa; García, (2016) indica que se detectó virus de IB en 23 (65.71%) de 35
explotaciones de traspatio muestreadas; Rivera, (2018) en un estudio realizado en aves
silvestres acuáticas en la laguna de Yahuarcocha encontró seropositividad en el Cormorán
Neotropical del 7.7 % (2/26) al virus de la Bronquitis infecciosa.
PREVENCION Y CONTROL
Como medida preventiva se considera la vacunación con el agente viral vivo atenuado
usando las cepas Massachusets, Connecticut, Arkansas, JMK y Florida, mediante aspersión
al primer día de edad. Dichas cepas vacunales son aplicadas de acuerdo a la región o al
país (Villegas, 2012).
14
LARINGOTRAQUEITIS INFECCIOSA
La laringotraqueítis infecciosa aviar (LT) es una enfermedad respiratoria aguda, altamente
contagiosa, que afecta a aves de todas las edades. Ha sido reportada en la mayoría de
países, siendo común en áreas de intensa producción avícola (Jones, 2004; Guy y García,
2008). Esta enfermedad está considerada dentro de las Enfermedades de Declaración
Obligatoria por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) y por razones de
bioseguridad se prohíbe la exportación de productos y subproductos avícolas (OIE, 2017).
La importancia de esta enfermedad radica en el impacto económico negativo que origina en
los productores y en la economía nacional, ya que, además de los gastos por
implementación de procedimientos de despoblación, ocasiona disminución de la producción
en reproductoras y gallinas de postura, alta mortalidad y morbilidad, retardo del crecimiento
en pollos de carne y complicaciones con infecciones secundarias (Humberd et al., 2002).
Además, es un obstáculo para la exportación de productos y subproductos avícolas, pues
para realizar esta actividad, también es requisito la ausencia de la enfermedad en el país
exportador.
Las pérdidas económicas que produce la LT en aves de postura se deben a una elevada
tasa de mortalidad (5-50%), reducción temporal de la producción de huevos (10-50%);
retardo de crecimiento en pollitas de reemplazo, y por los gastos en medicación, los cuales
se incrementan con las infecciones secundarias (Humberd et al., 2002; Manathan, 2006).
ETIOLOGIA
El virus de la laringotraqueitis infecciosa aviar pertenece a la familia Herpesviridae,
subfamilia Alphaherpesvirinae, género Iltovirus, y se clasifica taxonómicamente como un
Gallidherpesvirus tipo 1; es un virus ADN, (Bagust et al., 2000). La subfamilia incluye
importantes patógenos, tales como herpesvirus humano 1 (virus simple), pseudorabias
virus porcino y virus varicela zoster (varicellovirus), y otros alfaherpervirus, como los que
causan Enfermedad de Marek que afecta humanos y animales (Johnson & Tyack, 1995).
15
PATOGENIA
Las fuentes del virus de LT son: (a) aves clínicamente afectadas, (b) aves que son
portadores latentes de infección, y (c) fómites y personal de granjas avícolas contaminado
con virus de LT (Hidalgo, 2004)
El virus de la LT se replica activamente en el epitelio de laringe y tráquea, incluso en
conjuntiva, sacos aéreos y pulmones. Provocan un gran daño en el epitelio,
principalmente de la tráquea, así como hemorragias. En las secreciones traqueales se
encuentra presencia del virus de LT durante la primera semana post-infección, y
ocasionalmente se han detectado niveles bajos de replicación del virus hasta 10 días
postinfección. El epitelio de la tráquea y la laringe es siempre el más afectado y la
replicación viral más activa ocurrirá dentro de la tráquea (Hidalgo, 2004).
Las aves afectadas muestran una disnea muy marcada con estertores y toses debido a la
presencia de sangre, costras e incluso exudado caseoso que obstruye la laringe o la
tráquea. Las aves mueren frecuentemente por asfixia. (Abbas, 1996). En los últimos años
han aparecido formas más suaves de la infección, observándose hipersecreción lacrimal,
edema de senos infraorbitarios, rinorrea, conjuntivitis hemorrágica y una pequeña caída
de puesta, con una mortalidad casi despreciable. En ponedoras la producción de huevos
puede disminuir entre el 10-50%, recuperándose posteriormente los valores normales.
(Guy, 2003)
En su forma aguda, la LT se caracteriza por signos de dificultad respiratoria en aves,
acompañada de jadeo y expectoración de exudados sangrientos (Guy & Bagust, 2003).
Además, las membranas mucosas de la tráquea están inflamadas y se ponen hemorrágicas.
Estos eventos pueden durar aproximadamente de 7 a 10 días con gran cantidad de
producción de LT. Este es el período más importante para eliminación de virus (Hidalgo,
2004).
TRANSMISIÓN
El virus de LT se transmite por vía aerógena, y por contacto con secreciones nasales y
oculares o por fómites contaminados con secreciones de las aves afectadas (Cover, 1996;
Dufour-Zavala, 2008). El virus también puede ser llevado a otras granjas libres de
16
enfermedad a través de equipos, bandejas de huevos, vehículos, calzado y ropa; siendo el
hombre el principal responsable de su diseminación entre granjas (Sellers et al., 2004). Las
formas epizoóticas graves de la infección se caracterizan por signos de depresión, boqueo,
expectoración de moco sanguinolento y alta mortalidad de las aves.
DIAGNÓSTICO
La OIE, (2017) en el Código de los Animales Terrestres, indica que el aislamiento del virus
puede hacerse por inoculación de material sospechoso en la membrana corioalantoidea
desprendida de los huevos embrionados o en cultivos de células embrionarias de aves.
Estos métodos requieren mucho tiempo, pero son sensibles. Entre los métodos rápidos,
están la microscopía electrónica directa de exudado traqueal, la inmunofluorescencia del
exudado traqueal o de las secciones congeladas, la inmunodifusión en gel de agar (IGDA)
para detectar los antígenos víricos en muestras traqueales o en el material de huevos
infectados y el enzimoinmunoensayo (ELISA) para detectar el antígeno vírico en los
raspados de mucosa. Se ha demostrado que, para el examen del material clínico, la reacción
en cadena de la polimerasa (PCR) es más sensible que el aislamiento del virus y
actualmente es más utilizada. Puede ser necesario el aislamiento del virus si estas pruebas
son negativas o no concluyentes. Es posible la caracterización y diferenciación de la vacuna
y los virus de tipo silvestre utilizando la PCR y a continuación el polimorfismo de longitud de
los fragmentos de restricción.
EPIDEMIOLOGÍA
Toaquiza, (2017) citanto a Bagust, (1995) indica que el periodo de incubación está en un
rango de 4 y 12 días, con morbilidad elevada (90-100%) y la mortalidad variable pudiendo
incluso alcanzar el 70%, aunque lo más frecuente son valores del 10-20%.
Laringotraqueítis aviar fue detectada en Ecuador en el 2011 y reportada a la OIE en el
2012. Debido a la ausencia de la enfermedad, las parvadas no eran inmunizadas, luego
de la verificación de la enfermedad, la vacuna oficial es la vacuna recombinante
vectorizada (AGROCALIDAD, 2012). Ayala et. al., (2014) documentaron la detección y
caracterización de un brote de enfermedad respiratoria que se produjo por primera vez en
Ecuador en 2011.
17
PREVENCION Y CONTROL
El control y la prevención de la LT, se llevan a cabo por medio de vacunación, ya sea, con
vacunas producidas en embrión de pollo o elaboradas en cultivo celular. No existe
tratamiento antimicrobiano contra LT. (Brugére-Picoux, et. al., 2015). Zabala, (2012) refiere el
uso de vacunas recombinantes vectorizadas inyectables que dan una respuesta inmune
lenta, las ventajas de estas vacunas es que no afectan el rendimiento de las aves, no causan
reacción, y no hay posibilidad de reversión a la virulencia.
INFLUEZA AVIAR
La influenza aviar es una enfermedad vírica altamente contagiosa que afecta tanto a las aves
domésticas como a las aves silvestres. Igualmente, se han aislado virus de influenza aviar,
aunque con menos frecuencia, en algunas especies de mamíferos, como ratas, ratones,
comadrejas, hurones, cerdos, gatos, tigres, perros, caballos, así como en los humanos (OIE,
2018).
La circulación de virus de influenza aviar no es un fenómeno nuevo. La literatura
especializada cuenta numerosas descripciones de brotes históricos de influenza aviar
diseminados en bandadas de aves domésticas. La influenza aviar está presente en todo el
mundo, y algunas cepas son más frecuentes en determinadas zonas, puede causar un rango
de signos de enfermedad desde provocar una infección subclínica a ser altamente virulento
con el 100% de mortalidad. La diferencia entre virus medianamente patógenos y los
altamente patógenos puede ser un pequeño cambio en un aminoácido en el gen de la
hemaglutinina. (Brugére-Picoux, et. al., 2015).
La influenza aviar ha llamado la atención de la comunidad internacional con el paso del
tiempo, con brotes en aves de corral que han tenido graves repercusiones en los medios de
subsistencia de las personas y el comercio internacional en muchos países. Además, la
mayoría de los virus de influenza aviar no infectan al ser humano, pero algunos, como
AH5N1 y AH7N9, se han dado a conocer porque causan infecciones humanas graves (OIE,
2018). El virus de IA es también inusual debido a que el principal reservorio se encuentra en
la fauna salvaje libre, por lo cual no es posible una erradicación completa. (Brugére-Picoux,
et. al., 2015).
18
ETIOLOGIA
Los virus de influenza aviar se agrupan en tres tipos: A, B y C. Se sabe que el tipo A es el
único que infecta a las aves y es zoonótico, lo que significa que también puede infectar a
otros animales y a seres humanos. Los tipos B y C infectan a los seres humanos y
normalmente causan enfermedad leve. (OIE, 2018). Los virus de influenza aviar son
extremadamente variables y están ampliamente distribuidos entre las aves. Todos
pertenecen al género influenzavirus A de la familia Orthomyxoviridae.
Los virus de influenza A se clasifican en subtipos en base a dos antígenos de superficie; las
proteínas hemaglutinina (H) y neuraminidasa (N). Se han encontrado al menos 16 antígenos
hemaglutinina (de H1 a H16) y nueve antígenos neuraminidasa (de N1 a N9) en aves, y
hasta ahora se han identificado dos antígenos adicionales HA y NA únicamente en
murciélagos. Existe otra clasificación de acuerdo a la virulencia, la cual determina la
existencia de virus de baja patogenicidad (LPAI) y alta patogenicidad (HPAI) (Lewis et al.,
2013).
PATOGENIA
La Influenza aviar es una enfermedad infecciosa vírica altamente contagiosa de las aves de
corral y otras aves cautivas, estos virus son altamente contagiosos entre las aves y se
transmiten rápidamente entre granjas por los movimientos de aves domésticas vivas,
animales, personas y vehículos. (Swayne, 2003)
Los signos clínicos varían en función del serotipo de virus involucrado en la infección. En la
Influenza aviar de baja patogenicidad (IABP), se observa una leve sintomatología
respiratoria, plumaje erizado y reducción de la producción de huevos. Puede producirse una
complicación por patógenos secundarios, aumentando por tanto la gravedad del cuadro.
(Capua, 2004)
Toaquiza, (2017), en referencia a la Influenza Aviar Altamente Patógena, indica que el virus
invade además varios órganos y tejidos pudiendo observar hemorragias internas masivas,
elevada mortalidad (hasta del 100%), postración, caída repentina de la producción de
huevos, alteraciones de la cáscara, signos nerviosos y entéricos.
19
TRANSMISIÓN
La OIE, (2018) describe que los virus de influenza aviar se excretan a través de las heces y
las secreciones respiratorias de las aves. Pueden transmitirse por contacto directo con
secreciones de aves infectadas, en especial, las heces, o mediante alimentos y agua
contaminados. Debido a la resistencia natural de los virus de influenza aviar, incluida su
capacidad para sobrevivir a bajas temperaturas, también pueden ser transportados por
equipos agrícolas y propagarse fácilmente de una granja a otra. Aunque las aves silvestres
pueden portar normalmente virus de influenza aviar en sus conductos respiratorio o
intestinal, generalmente no se enferman. Esto les permite transportar los virus a través de las
largas distancias de sus rutas migratorias.
DIAGNÓSTICO
La técnica diagnóstica se realiza a través del examen clínico, pruebas moleculares como
PCR y serológicas como inhibición de hemaglutinación y Elisa competitivo (Pérez et al.,
2010). Las medidas de prevención consisten en la higiene y bioseguridad de las granjas, a
esto se añade la vacunación con el virus inactivado o vacunas recombinantes en ciertos
países (Spickler, 2016).
EPIDEMIOLOGIA
Rivera, (2018) cita a Pereda et al., (2009) e indica que el ingreso del virus se da por vía oral
o respiratoria para luego replicarse en las células epiteliales del tracto respiratorio y
digestivo, avanza a la circulación y realiza una segunda replicación en todas las vísceras. El
virus se transmite de forma directa a través de la vía fecal-oral y de forma indirecta a través
de fómites o agua (Spickler, 2008). Su periodo de incubación es de 21 días.
La epidemiología de la enfermedad en los últimos 13 años se caracterizó por dos eventos
panzoóticos principales. El primero comenzó en 2004, alcanzó su punto máximo en 2006, y
luego la actividad del virus disminuyó progresivamente hasta 2012. Desde 2013 se ha
observado un segundo evento panzoótico con actividades máximas entre 2015 y 2017. Son
68 países y territorios afectados por la IA en aves domésticas, con 7.122 brotes y la
identificación de 12 subtipos. Las regiones más afectadas fueron Asia, África y Europa.
20
Mientras que en América la enfermedad está presente en la parte norte de la región y casi
ausente de su parte central y sur (OIE, 2018b).
PREVENCION Y CONTROL
Es sumamente importante poner en práctica sistemas de detección y alertas precoces y
medidos de prevención en el marco de una estrategia eficaz frente a la influenza aviar.
Además, deben desplegarse esfuerzos similares de preparación ante un foco eventual. Es
esencial que los productores avícolas mantengan prácticas de bioseguridad a fin de prevenir
la introducción del virus en sus parvadas (OIE, 2018). Actualmente existen dos tipos de
vacunas disponibles para uso en avicultura, una conteniendo el virus completo inactivado
junto con adyuvante y una recombinante con el virus de la viruela aviar como vector; las
políticas sobre el uso de la vacunación deben incluir “estrategias de salida”, es decir medidas
que indiquen cuando y como parar su uso. (Brugére-Picoux, et. al., 2015).
ANÁLISIS DE PATRONES DE PUNTOS (FUNCIÓN K DE RIPLEY).
En el análisis de patrones de puntos, se describe las características de los eventos
(observaciones) que componen un patrón de puntos con ciertas características. Por lo tanto,
el objetivo del análisis, es investigar las conexiones subyacentes entre estos eventos que
podrían explicar el fenómeno (Bivand, 2008)
El análisis del patrón de puntos a menudo se centra en la existencia de interacciones entre
las observaciones en un patrón de puntos espacial. Es decir, se valida la distribución de los
puntos de manera uniforme alrededor de la región de estudio sin un patrón particular, o
alternativamente, si hay una mayor o menor acumulación de puntos de lo que cabría esperar
de la aleatoriedad. Con este fin, generalmente se prueba la hipótesis de aleatoriedad
espacial completa (CSR por sus siglas en Inglés) en el patrón de puntos. Según la CSR, los
eventos siguen una distribución de Poisson con media constante y no tienen interacciones.
Un patrón de puntos puede seguir a la CSR, en cuyo caso se conoce como un proceso de
Poisson homogéneo. Alternativamente, un patrón de puntos puede demostrar la interacción
de eventos o agrupaciones (SAS, 2018). En epidemiología espacial se espera determinar si
los casos de una enfermedad están o no agrupados. Esto se puede evaluar comparando la
21
distribución espacial de los casos con las ubicaciones de un conjunto de controles tomados
al azar de la población (Bivand, 2008).
La función K de Ripley (Ripley, 1976) es un método estadístico comúnmente utilizado para
obtener reconocimiento de los patrones de puntos, donde los patrones agrupados dan
valores más grandes de K de Ripley que los patrones regulares o aleatorios (Wilschut, L.I.,
et. al, 2015). En la figura 1, se puede observar los diferentes patrones de distribución que se
puede presentar al analizar los datos con la función K de Ripley en casos de agrupamiento y
en casos distribuidos aleatoriamente. La densidad de los puntos positivos sobre un área
determianda, puede ser visualizado a través de un gráfico Kernel de densidad; y sirve para la
ubicación geográfica de zonas.
Figura 1. Función K de Ripley, diferentes patrones de agrupamiento de puntos.
Fuente: Wilschut, L.I., et. al, (2015).
22
CAPÍTULO IV
METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN
Área de estudio.
Los resultados del diagnóstico de las enfermedades corresponden a un monitoreo ejecutado
por AGROCALIDAD en las 23 provincias que conforman Ecuador Continental; es por esto
que, esté estudio analizó con los resultados confirmatorios del diagnóstico por PCR de
enfermedades respiratorias de declaración obligatoria (NC, IB, LT y IA) en aves de traspatio
obtenidos del muestreo nacional 2017 generado por AGROCALIDAD, como parte del
sistema de vigilancia activa, para lo cual se cuenta con información de 313 sitios
muestreados (Figura 2).
Figura 2. Sitios de traspatio muestreados por AGROCALIDAD. Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD
Elaboración: Javier Vargas E.
23
1. Materiales.
• Encuesta empleada en el muestreo nacional de traspatio.
• Base de datos de los diagnósticos confirmatorios de enfermedades respiratorias de
declaración obligatoria (NC, IB, LT y IA) en aves de traspatio 2017, proporcionadas
por AGROCALIDAD.
• Programas informáticos estadísticos Statspat () de “R” software para análisis de
patrons de puntos y QGIS software para elaboración de mapas.
• Computadora.
• Mapas digitales.
2. Tipo de investigación El presente estudio comprendió una investigación descriptiva y analítica de los resultados
confirmatorios del diagnóstico de enfermedades respiratorias de declaración obligatoria (NC,
IB, LT y IA) en aves de traspatio; además del análisis de una encuesta epidemiológica
aplicada por AGROCALIDAD en predios industriales y en aves de traspatio; los sitios
muestreados para traspatio en el año 2017, están ubicados en un radio de máximo 3 Km de
distancia de las granjas de producción comercial que fueron seleccionadas para el muestreo
nacional respectivo de vigilancia activa realizado en el año 2016 por la misma institución y
que sirvieron de referencia para el muestreo de traspatio.
3. Metodología.
En el presente estudio se realizó el análisis espacial de la información proporcionada por
AGROCALIDAD y que corresponde a la base de datos de los resultados confirmatorios,
diagnosticados por biología molecular de PCR para las enfermedades respiratorias de
declaración obligatoria: Influenza Aviar, Bronquitis Infecciosa, Newcastle y Laringotraqueítis
infecciosa.
La base de datos fue objeto de una depuración sistemática en hojas de cálculo Excel con la
finalidad de estandarizarla para su uso en los softwares estadísticos y, en base a modelos
predictivos, estimar el comportamiento de las enfermedades respiratorias en relación a la
distribución en las aves de traspatio. Además, los mapas fueron elaborados con la ayuda del
software QGIS 2.18.22 que permitieron identificar los sitios de agrupamientos (clusters),
24
Hotspots (áreas calientes) para cada una de las enfermedades respiratorias en estudio o
falta de asociación entre los resultados positivos de las aves de traspatio.
Se contó con los formularios de vigilancia activa para aves (encuesta) empleados durante el
muestreo para la recolección de información, éstos permitieron complementar datos para el
estudio en caso que fuese necesario.
El diseño para el muestro 2017 establecido por AGROCALIDAD, consistió en ubicar (2) dos
predios con aves de traspatio adultas, dentro de los 3 km próximos a las granjas de
producción industrial que fueron muestreados en el año 2016. En los predios de traspatio
seleccionados se muestrearon cinco aves en cada uno. Las granjas seleccionadas debieron
cumplir condiciones como: no estar vacunadas contra Newcastle, Bronquitis Infecciosa,
Laringotraqueítis; tener 5 o más aves mayores a 35 días de edad. Según los resultados de
AGROCALIDAD, se muestrearon 1565 aves agrupados en 313 pulls; cada predio fue
georreferenciado y se aplicó una encuesta para levantar datos epidemiológicos.
Aspectos relacionados al diseño, muestreo, laboratorio, técnicas de diagnóstico, se
encuentran detalladas en el ANEXO 1.
4. Métodos de diagnóstico.
Para la confirmación de los casos positivos, AGROCALIDAD, luego del muestreo de campo,
empleó las siguientes técnicas diagnósticas; mismas que, fueron procesadas en el
laboratorio de Sanidad Animal de AGROCALIDAD ubicado en Tumbaco, Pichincha, Ecuador.
Enfermedad de Newcastle:
ELISA Competitivo: Sensibilidad de 98% y Especificidad del 98%.
INHIBICIÓN DE LA HEMAGLUTINACIÓN (HI): los sueros de aves de traspatio positivos
al ELISA se sometieron a HI.
PCR-TR: Los resultados positivos a HI y/o a cultivo, se utilizó los hisopados cloacales
para análisis mediante PCR-TR.
25
Bronquitis infecciosa:
ELISA Indirecto: Todos los sueros fueron analizados por esta prueba, la cual tiene una
Sensibilidad de 92% y Especificidad del 98%.
PCR: Los resultados positivos a ELISA, se utilizó los hisopados traqueales
pertenecientes a esas muestras para análisis por la técnica de PCR – TR, para la
confirmación.
Influenza aviar:
Laringotraqueítis aviar:
5. Análisis estadístico.
La metodología que se empleó para el análisis de los datos fue la siguiente:
- Empleo de las bases de datos del muestreo y resultados de laboratorio de las aves
de traspatio 2017 proporcionadas por AGROCALIDAD, mismas que fueron
depuradas empleando hojas de cálculo Excel. Éstas bases tiene la información
geográfica de los predios muestreados. Se aseguró que la información geográfico
esté en el mismo sistema de coordenadas para luego ser representado en el sistema
ELISA Competitivo: Sensibilidad de 98% y Especificidad del 98%.
INHIBICIÓN DE LA HEMAGLUTINACIÓN (HI): todos los sueros positivos al ELISA
pasaron a la prueba de HI.
PCR-TR: Los resultados positivos a HI, los hisopados cloacales fueron analizados
mediante PCR-TR
ELISA Indirecto: Todos los sueros fueron analizados por esta prueba, la cual tiene una
Sensibilidad de 92% y Especificidad del 98%.
PCR: Los resultados positivos a ELISA, se utilizó los hisopados traqueales
pertenecientes a esas muestras para análisis por PCR – TR, para la confirmación.
26
UTM de la Zona 17 sur que corresponde a la proyección correcta de puntos
espaciales en el Ecuador.
- Creación de áreas de influencia de producción aviar, para lo cual se realizó pruebas
con distancias de 3, 5, 7.5, 15 y 20 Km con la finalidad de establecer la que mejor
represente las áreas de agrupamiento de producción; se definió el área de 7.5 Km
por presentar las mejores características en cuanto a los agrupamientos productivos y
además que es la más cercana a la distancia de 5 Km que utiliza AGROCALIDAD
para el establecimiento de áreas de contención en el caso de brotes de
enfermedades así como por ser la máxima distancia, establecida por la normativa
sanitaria, para la instalación de granjas de producción avícola en el territorio
continental ecuatoriano. Para esto se aplicó la función BUFFER con una distancia
determinada a todos los puntos tanto de producción de traspatio como de producción
industrial y las distancias cercanas de los buffer fueron disueltas. En la identificación
de zonas, se trató de agrupar la mayor cantidad de puntos fuera de la zona de
influencia, aunque si los puntos estaban muy distantes se los dejó como una zona
aparte por si misma.
- Se aplicó la función K de Ripley para calcular la distribución de casos positivos y
negativos de manera univariante en la zona de producción y determinar la formación
de agrupamientos (clusters) en base a la asociación de los casos antes
mencionados.
- Se determinó si hay asociación entre los puntos donde se obtuvo resultados positivos
de las enfermedades respiratorias en función del tipo de producción, para
identificación de zonas de alta concentración.
- Se elaboró mapas de densidad de los puntos con diagnóstico positivo a las
enfermedades respiratorias en estudio, identificando Hotspots con la aplicación de la
función de puntos de densidad de Kernel. Este gráfico, permitió identificar
muestrealmente las tasas de casos positivos por cada 100 km2.
- Con el software QGIS 2.18.22, se elaboró mapas geográficos de Ecuador Continental
con la información proporcionada por la base de datos del muestreo de traspatio
2017 y los resultados de la función K de Ripley y puntos de densidad de Kernel
27
fueron creados en R, y luego se generó una imagen raster a ser visualizado
posteriomente en QGIS.
- Para el análisis de los datos se utilizó los software libres: R con el paquete Spatstat,
versión 2.14.1 (R Depelopment Core Team, 2011) y QGIS 2.18.22
28
CAPÍTULO V
RESULTADOS Distribución de las enfermedades respiratorias en aves de traspatio. Los resultados demuestran la presencia de tres de cuatro enfermedades de declaración
obligatoria; estas fueron, Newcastle, Bronquitis infecciosa, Laringotraqueítis infecciosa.
Influenza aviar, al ser considerada una enfermedad exótica se confirmó, en este estudio, la
ausencia en el país. La distribución de casos positivos de las tres enfermedades con sus
porcentajes a nivel nacional, se expresan en la Tabla 1, el total de sitios de aves de traspatio
muestreadas y consideradas como unidades epidemiológicas fue de 313 en todo el país.
Tabla 1. Porcentaje casos positivos de enfermedades respiratorias diagnosticadas en el
muestreo de aves de traspatio realizado por AGROCALIDAD en el año 2017.
NEWCASTLE BRONQUITIS LARINGOTRAQUEITIS
PROVINCIA Prev. % IC 95% Prev.% IC 95% Prev. % IC 95%
Azuay 24,0 10,1 - 45,4 96,0 77,6 - 99,8 48,0 28,3 – 68,0
Bolivar 100,0 39,5 – 100,0 50,0 15,0 – 85,0
Cañar 25,0 1,3 – 78,0 100,0 39,5 – 100,0
Carchi 100,0 19 – 100,0 100,0 19,7 – 100,0 100,0 19,0 – 100,0
Chimborazo 14,3 2,0 - 43,8 100,0 73,2 – 100,0 78,5 48,8 – 94,0
Cotopaxi 18,2 6,0 – 41,0 100,0 81,5 – 100,0 36,4 18,0 - 59,1
El oro 25,0 10,0 – 47,0 91,6 71,5 - 98,5 62,0 40,7 - 80,4
Esmeraldas 100,0 19,7 – 100,0
Guayas 7,14 0,3 – 35,0 100,0 73,2 – 100,0 92,8 64,2 - 99,6
Imbabura 7,14 0,3 – 35,0 85,7 56,1 - 97,4 42,8 18,8 – 70,0
Loja 100,0 51,6 – 100,0 66,7 24,1 – 94,0
Los ríos 37,5 10,2 - 74,1 100,0 60 – 100,0 87,5 46,7 - 99,3
Manabí 29,2 13,4 – 51,0 91,6 71,5 - 98,5 41,7 22,8 – 63,0
Morona santiago 50,0 9,4 – 90,0 50,0 9,4 - 90,5
Napo 16,7 0,8 - 63,5 100,0 51,6 – 100,0 50,0 18,7 - 81,2
Orellana 100,0 19,7 – 100,0 50,0 9,4 – 90,0
Pastaza 27,8 10,7 - 53,6 94,4 70,6 - 99,7 61,1 36,1 – 81
Pichincha 25,0 13,7 - 40,6 97,7 86,5 - 99,8 43,2 26,7 - 58,9
Santa elena 100,0 39,5 – 100,0 100,0 39,6 – 100,0
Santo domingo de los Ttsáchilas
22,7 8,7 - 45,8 95,5 75,1 - 99,7 54,5 32,6 – 75,0
Sucumbios 100,0 39,5 – 100,0 50,0 15,0 – 85,0
Tungurahua 24,4 13,3 - 39,8 93,3 80,7 - 98,3 31,0 18,6 – 47,0
Zamora chinchipe 66,0 12,0 – 98,0 100,0 31,0 – 100,0 100,0 31,0 – 100,0
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD. Elaboración: Javier Vargas E.
29
Newcastle
Los resultados obtenidos mediante la técnica molecular demuestra la presencia de la
enfermedad distribuida a nivel nacional, con una prevalencia nacional de 21.7%
(IC95%:17.4%-28.8%), como se puede observar en la tabla 1 y figura 3. La presencia de
casos positivos se encuentran distribuidos en zonas consideradas de elevada concentración
de producción avícola como son Pichincha (25%), Tungurahua (24,4%), Azuay (24%), Cañar
(25%) en la región interandina; Santo Domingo de los Tsáchilas (22,7%), Manabí (29,2%),
Los Ríos (37,5%) y El Oro (25%) en la región costa; Pastaza (27,8%) en la amazonía
ecuatoriana. En el resto de provincias la presencia de la enfermedad es en menor
porcentaje.
Figura 3. Mapa de distribución de Newcastle en aves de traspatio
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD Elaboración: Javier Vargas E.
30
Patrón espacial de puntos de casos de Newcastle
En función de casos positivos detectados en la zona de estudio, se realizó una estimación de
la asociación de los casos positivos (Fig. 4) y la representación gráfica de la densidad de
casos en áreas de riesgo de presentación de la enfermedad (Fig. 5). La función K evidencia
una asociación entre los puntos positivos de muestreo; es decir, que los casos positivos no
se encuentran distribuidos aleatoreamente sino que, se distribuyen formando clusters. La
zona gris del gráfico representa la curva de representación de aleatoriedad.
Figura 4. Función K para Newcastle
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD Elaboración: Javier Vargas E.
En el gráfico de densidad de Kernel (Fig. 5) presenta la distribución espacial de casos de
Newcastle, donde puede apreciar los puntos en gamas de azul a amarillo, siendo azul oscuro
los puntos en que probablemente se encuentre más bajo riesgo de presentación de
enfermedad y en amarillo intenso una probabilidad alta de para la presentación de la
enfermedad. Estas tasas variaron de 1.38 a 0.23 casos por 100 km2 , mostrando un
31
incremento en el riesgo de 6 veces. De acuerdo a la Fig 5, las provincias de Pichincha,
Tungurahua, Azuay, Cañar, Los Ríos, Manabí, Pastaza presentan mayor tasa de casos de la
enfermedad de NC comparado con Guayas, Santa Elena, Sucumbios; incluso se puede
observar que al interior una misma provincia como Pichincha, el riesgo de desarrollar
enfermedad se da entre zonas.
Del análisis realizado se determinó que la presencia de Newcastle en las aves de traspatio
tiene relación con zonas en las cuales se encuentra una mayor producción de aves adultas
como son las ponedoras comerciales y reproductoras, por ejemplo Tungurahua (Cotaló),
Manabí, Pichincha (Puéllaro), y menos presencia en zonas de producción industrial de aves
de engorde como son Santo Domingo de los Tsáchilas, Manabí, Guayas, Imbabura,
Noroccidente de Pichincha.
Figura 5. Mapa de riesgo de Newcastle Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD
Elaboración: Javier Vargas E.
32
Bronquitis infecciosa
En cuanto a la distribución espacial de los casos positivos de Bronquitis infecciosa, esta
enfermedad está presente en las 23 provincias del territorio ecuatoriano con una prevalencia
de 95,5% (IC95%: 92.4%-97.4%) en aves de traspatio a nivel nacional, esto se observa, en la
tabla 1 y figura 6, donde la prevalencia provincial de acuerdo al muestreo está en un rango
de 85,7% a 100%, siendo Imbabura la provincia con menor presencia (85,7%).
Figura 6. Mapa de distribución de Bronquitis infecciosa en aves de traspatio
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD Elaboración: Javier Vargas E.
Patrón espacial de puntos de casos de Bronquitis.
La función K evidencia una asociación entre los puntos de muestreo; es decir, que los casos
positivos no se encuentran distribuidos aleatoreamente en la zona de producción avícola,
sino que, se distribuyen formando clusters, la zona gris del gráfico representa la curva de
representación de alatoriedad (Fig. 7)
33
En el gráfico de Kernel (Fig. 8) se puede apreciar los puntos en gamas de azul a amarillo,
siendo azul oscuro los puntos en que probablemente hay más bajo riesgo de presentación
de enfermedad y en amarillo intenso una probabilidad alta para la presentación de la
Bronquitis infecciosa. Las tasas de infección por sitio varairon de 0.8 a 4.5 casos por cada
100 km2 habiendo una elevación en el riesgo carcana a 6 veces respeto de las zonas
oscuras del mapa.
Figura 7. Función K para Bronquitis Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD
Elaboración: Javier Vargas E.
De acuerdo a la Fig. 8, las provincias de Tungurahua, Cotopaxi, Pastaza y Pichincha
presentan riesgo de hasta 5.6 veces para la presentación de la enfermedad comparado con
provincias como Imbabura y Morona.
Del análisis realizado se determinó que la presencia de Bronquitis en las aves de traspatio
está relacionado con zonas en las cuales se encuentra una mayor producción de aves
34
adultas como son las ponedoras comerciales, siendo Tungurahua (Cotaló), Cotopaxi
(Salcedo) Pichincha (Puéllaro) donde se encuentra el 80% de producción de huevo
comercial. En las provincias donde se cría pollo de carne el resultado de los muestreos en
traspatio fue negativo.
Figura 8. Mapa de riesgo de Bronquitis
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD Elaboración: Javier Vargas E.
Laringotraqueítis infecciosa
En el caso de Laringotraqueítis, de determinó una prevalencia nacional en aves de traspatio
del 51,1% (IC: 45.4%-56.7%), con una distribución nacional con excepción de Cañar y
Esmeraldas como se puede observar en la figura 9, el mayor número de casos positivos se
encuentra en aquellas zonas con alta concentración de aves adultas: Bolívar (50%),
Chimborazo (78,5%), Guayas (92,8%), Los Ríos (87,5%), Pastaza (61,1%), Santo Domingo
35
(54,5%), Loja (66,7%). Por el contrario, las provincias de Manabí (41,7%), Azuay (48%),
Cotopaxi (36,4%), Imbabura (42,8%) presentan un menor número de casos.
Figura 9. Mapa de distribución de Laringotraqueítis infecciosa en aves de traspatio
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD Elaboración: Javier Vargas E.
Patrón espacial de puntos de casos de Laringotraqueítis La función K evidencia una asociación entre los puntos positivos en el muestreo; es decir,
que los casos positivos no se encuentran distribuidos aleatoreamente en la zona de
producción avícola; sino que, se distribuyen formando clusters, la zona gris del gráfico
representa la curva de representación de alatoriedad (Fig. 10).
En el gráfico de Kernel (Fig. 11) se puede apreciar los puntos en gamas de azul a amarillo,
siendo azul oscuro los puntos en que probablemente hay más bajo riesgo de presentación
36
de la enfermedad; mientras que, el amarillo intenso una probabilidad alta de desarrollo de
Laringotraqueítis.
Figura 10. Función K para puntos positivos de Laringotraqueítis
Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD
Elaboración: Javier Vargas E.
De acuerdo a la Fig. 11, las provincias de Chimborazo, Pastaza, Los Ríos, El Oro, Pichincha,
Manabí tiene mayor probabilidad de desarrollar la enfermedad con un riesgo de hasta 5.2
veces frente a provincias como Imbabura, Napo y Morona.
El análisis realizado determinó que la presencia de Laringotraqueítis en las aves de traspatio
está relacionado con zonas en las cuales se encuentra una mayor producción de aves
adultas como las ponedoras comerciales, tal es el caso de Tungurahua (Cotaló), Cotopaxi
(Salcedo) Pichincha (Puéllaro), Los Ríos (Montalvo). En las provincias donde la producción
de pollo de carne broiler es importante, el resultado de los muestreos en traspatio fue
negativo. EN esta zona las tasas de casos positivos variaron de 0.5 a 2.6 casos por cada
37
100km2, habiendo un incremento en riesgo de cerca de 5 veces las zonas más claras
respecto de las zonas más oscuras en el mapa.
Figura 7b. Mapa de riesgo de Laringotraqueítis Fuente: Muestreo nacional 2017, AGROCALIDAD
Elaboración: Javier Vargas E.
De las tres enfermedades estudiadas, Bronquitis infecciosa y Laringotraqueítis presentan un
mismo patrón de presentación en el territorio ecuatoriano con la diferencia en la tasa de
prevalencia nacional que es de 95,5% y 51,1% respectivamente.
38
CAPÍTULO VI
DISCUSIÓN
El objetivo del presente estudio fue realizar un análisis espacial de riesgo de las
enfermedades respiratorias de declaración obligatoria (NC, IB, LT y IA) en aves de traspatio
en el territorio continental ecuatoriano basados en diagnósticos confirmatorios del muestreo
nacional 2017 realizado por AGROCALIDAD. Para ello se creó áreas de influencia de la
producción avícola, se empleó la función K de Ripley para la identificación de asociación
entre los resultados positivos y se elaboró gráficos de densidad de Kernel. Esta investigación
demostró la presencia NC, IB, LT en las aves de traspatio; mientras que, la IA no fue
evidenciada en el estudio como se preveía. Del mismo modo, mediante la asociación entre
los casos positivos y las zonas de mayor producción de aves adultas ponedoras de huevo
comercial que determinan la formación de clusters o hostpots de riesgo de presentación de
la enfermedad.
La caracterización de la avicultura de traspatio en el país es definida como pequeñas
explotaciones de tipo familiar, que se encuentran a nivel rural y periurbano y contribuyen
como un patrimonio de las familias campesinas brindándoles un apoyo en su alimentación y
fondos económicos cuando las comercializan en los mercados locales (AGROCALIDAD,
2016).
En Ecuador no existen un censo oficial actualizado, relacionado con las aves de traspatio;
la última actualización de la población de aves de traspatio fue realizada por el ESPAC en el
año 2017, e indica que el 24.95% de la población avícola del país corresponde a la crianza
de traspatio.
Varias ONG’S (IICA/APHIS) y el sector privado (CONAVE) con la anuencia de
AGROCALIDAD han implementado programas basados en Buenas Prácticas Avícolas
dirigidos a avicultura de traspatio paras mejorar la producción y condición sanitaria de las
aves, las cuales están en manos, 80% de las UPAs familiares. Estas instituciones han
permitido generar información que han alertado a la Autoridad Sanitaria para considerar a
este tipo de producción dentro de los programas sanitarios que minimicen el impacto de
las enfermedades respiratorias en las aves, inclusive las silvestres. La finalidad es
39
adoptar medidas que permitan el control progresivo de las patologías con miras a la auto
declaración como país libre y luego la Certificación Internacional por parte de la OIE
(REF).
Los Sistemas de Información Geográfica (SIG) han permitido el análisis espacial de los
problemas sanitarios de un territorio; de manera gráfica permite entender el
comportamiento de las enfermedades con el fin de establecer medidas de prevención y
control gracias al incremento en el conocimiento de la epidemiología basada en las
pruebas de diagnóstico. Con la información generada por un sistema de información
geográfica y la ayuda de la epidemiología, la autoridad sanitaria puede tomar decisiones
más prácticas y de forma más concisa para control y prevención de la diseminación de un
brote infeccioso de impacto en la sanidad avícola del país.
Los resultados de este estudio permiten determinar la presencia de tres de las cuatro
enfermedades respiratorias Newcastle, Bronquitis, Laringotraqueítis en aves de traspatio.
Si bien es cierto, las enfermedades se encuentran en todo el país, pero la distribución
espacial de casos confirmados positivos de las enfermedades tienen un comportamiento
diferenciado muy probablemente a una asociación con los tipos de producción avícola en
las diferentes zonas productivas del territorio ecuatoriano. Los patrones de
comportamiento pueden deberse a factores como la densidad de poblaciones avícolas, la
distancia entre sitios de producción, las condiciones de bioseguridad, la diferencia en
edades en producción, la ubicación de los sitios de producción en referencia a granjas de
producción industrial, entre los principales. Es importante recalcar que los muestreos
realizados en las aves de traspatio están estrechamente relacionados con las
explotaciones avícolas industriales; las zonas de muestreo de aves de traspatio
estuvieron dentro de un perímetro de 3 Km respecto a la granja industrial misma que fue
seleccionada aleatoriamente para estimar la importancia de estas enfermedades en el
sector tecnificado o viceversa (AGROCALIDAD, 2017).
NEWCASTLE
En el caso de Newcastle, en la tabla 1 y la figura 3, se observa que la distribución de
casos de esta enfermedad se encuentra en zonas de alta concentración de producción
de aves en las cuales, incluso existen diferentes tipos de producción entre gallinas de
40
postura, pollos de carne, aves reproductoras y de traspatio. Dado que las granjas
muestreadas están en relación con las granjas industriales, los sitios de positividad están
relacionados con las zonas cercanas a centros de consumo de los productos avícolas;
así como, las facilidades que proporcionan las vías de comunicación para la movilización
de insumos, alimento, personal y productos. Otro elemento a tener en cuenta son las
condiciones ambientales de las zonas de producción avícola que son consideradas al
momento de instalar las granjas.
Del análisis estadístico realizado, la función K se determinó que existe asociación entre
los resultados positivos que se encuentran formando clusters bien definidos (Fig. 4),
mostrando áreas con un estimado del riesgo de presentación de la enfermedad (Fig.5);
esto es, zonas de riesgo donde la enfermedad puede presentarse en 1,38 predios
positivos por cada 100 Km2. Esto permite definir lugares o zonas específicas en los
cuales se puede aplicar planes de control de la enfermedad evitando la distribución de la
misma al resto del país.
Villacís et al., (2014), indican que brotes de NC suceden principalmente en zonas
densamente pobladas de aves de producción industrial, tal y como es el caso de la
parroquia de Puéllaro. AGROCALIDAD (2012) considera que las principales empresas
productoras de huevo se encuentran en esta parroquia; así como, en las provincias de
Cotopaxi, Tungurahua, Manabí, Santo Domingo de los Tsáchilas que en conjunto
producen alrededor del 80% de huevos comerciales.
Para Escudero et al. (2016) la transmisión aérea no es muy relevante para NC, pero el
movimiento de aves infectadas y de personas se considera la forma más común de
diseminación. Manzano, (2017) menciona que la diseminación de enfermedades
respiratorias se da principalmente a través de fómites contaminados como ropa, botas,
pelo, vectores biológicos (escarabajo de la cama, perros, roedores, moscas) como es el
caso de NC en aves de traspatio.
Romero (2009), en su estudio en el eje cafetero colombiano afirma que las gallinas que
evidenciaron títulos con valores extremos que sugieren un desafío de campo, puede
atribuirse a factores como el sistema de manejo de producción tradicional que puede
servir como un factor estresante y favorecer la infección, la continua exposición a una
41
gran variedad de agentes y a aves silvestres (consideradas como reservorios), las
deficiencias de la nutrición. la ausencia de control de la enfermedad a través de la
vacunación y el contacto de aves no infectadas con aves portadoras de patógenos, que
pueden facilitar la propagación de enfermedades como Newcastle entre parvadas.
Según Guevara y Salazar, (2013), en el estudio realizado en aves de pelea adultas de 20
criaderos de la ciudad de Riobamba, encontraron anticuerpos séricos contra el virus de la
enfermedad de Newcastle; 19 de los cuales no implementaron vacunación. Las
características diferentes de los criaderos en cuanto a infraestructura, ubicación y manejo
influyen en la presencia de anticuerpos séricos contra el virus de la enfermedad
Newcastle.
BRONQUITIS INFECCIOSA
La Bronquitis Infecciosa, según lo observado en la tabla 1 y la figura 6, presenta una
distribución de casos positivos a nivel nacional, con una prevalencia nacional de 95,5%
siendo las zonas donde hay una alta concentración de producción de aves de diferentes
tipos de explotaciones entre gallinas de postura, pollos de carne, aves reproductoras y de
traspatio, en las que se encuentra prevalencias entre 91,6 a 100%. Este comportamiento
de la enfermedad es muy similar al de Laringotraqueítis, pero en mayor número de casos
positivos, lo cual se explica por la naturaleza del virus de IB que se disemina por vía
aérea, contacto, fómites, personas, camas, productos y, tiene un alto grado de producir
variantes que no son cubiertas con las vacunas que actualmente se emplean en la
industria avícola ecuatoriana.
En un estudio realizado en aves de traspatio en el noreste del Ecuador de las 100 aves
sometidas a estudio, el 85% presentaron anticuerpos para el virus de la Bronquitis
Infecciosa Aviar (Hernandez et al., 2006), esto constituyó un punto de partida, para
suponer la circulación del virus de IB en estas aves. García (2016) detectó la presencia
del virus de la IB en 23 (65,71%) de las 35 explotaciones de aves de traspatio
muestreadas en la parroquia de Puéllaro (Pichincha), aunque existió variación entre la
positividad de hisopados traqueales y cloacales (28,58% (10/35) y 54,28% (19/35),
respectivamente), más allá de conocer si las aves se encontraban en fase aguda o
crónica, es relevante la detección de IB, descartando otros patógenos con signos
42
respiratorios en común, ya que las enfermedades respiratorias aviares no presentan
signos patognomónicos y en muchos de los casos son multifactoriales.
El estudio realizado por García (2016) permitió notar que las granjas industriales
seleccionadas como referencia, se encuentran rodeadas por explotaciones de traspatio
positivas a IB. La georeferenciación demostró indirectamente que las aves de traspatio
positivas pueden ser el principal transmisor del virus debido a que eliminan el virus por medio
de aerosoles y heces, convirtiéndose en posibles reservorios de la enfermedad, ya que el
virus puede persistir durante 5 semanas en el tracto gastrointestinal, en consecuencia, las
aves enfermas constituyen una fuente de infección para las aves sanas (Torres, 2013, sic).
En la Resolución Nº 0260 del “Manual para la obtención del certificado sanitario de control
oficial de granjas avícolas”, AGROCALIDAD indica que las granjas avícolas deben estar
alejadas 3 km de los poblados, entre granjas de ponedoras 3 km, si se encuentran granjas
de diferente tipo de producción deben tener una distancia de 5 km y entre granjas de pollos
de engorde deben tener 4 km (AGROCALIDAD, 2015). Estas distancias no han sido
cumplidas en la parroquia de Puéllaro de acuerdo a una investigación realizada por Cevallos
y Cuadrado (2010), quienes reportaron que la mayoría de granjas industriales se encuentran
ubicadas a una distancia menor a 1000 metros y que las granjas en esta zona están
próximas a carreteras y alrededor de zonas pobladas. La conclusión más importante de
dicho estudio es que, en la parroquia de Puéllaro se forman corredores epidemiológicos en
los cuales posiblemente se podría concentrar el riesgo más alto de transmisión de
enfermedades respiratorias. Esto último puede ocurrir con otras zonas como Azuay, Cañar,
Cotopaxi, Tungurahua, Chimborazo.
LARINGOTRAQUEITIS INFECCIOSA
Laringotraqueítis es una enfermedad respiratoria que según lo observado en la tabla 1 y
figura 9 presenta una prevalencia nacional del 51,1% siendo las zonas donde la producción
de aves adultas, gallinas de postura, presenta índices que van desde 50% a 100%, no
encontrándose presencia de casos positivos en aves de traspatio en las zonas donde se
tiene producción de pollos broiler de carne que a su vez son de ciclo productivo corto lo cual
no permite la permanencia del virus en las instalaciones debido a las labores de limpieza y
desinfección que se aplica a las instalaciones productivas. Cabe destacar que esta
43
enfermedad tiene un patrón de presentación similar a Bronquitis infecciosa sólo que esta
última tiene una prevalencia de 95,5% a nivel nacional.
Parra, et. al., (2016) en un artículo de revisión de la Laringotraqueítis indica que las aves de
todas las edades son susceptibles a la infección por el virus de laringotraqueítis, pero las
aves mayores de tres semanas y las adultas sometidas a procesos de estrés son las más
sensibles, las principales vías de transmisión son oculares y respiratorias. Las aves
infectadas con síntomas clínicos son las principales fuentes de transmisión, pero las aves
con infecciones latentes, camas y fómites contaminados también pueden transmitir el virus.
Pitesky, et. al, (2014) indica que en un estudio a un brote de LT en el valle central de
California luego del análisis estadístico espacio temporal determinaron que los caminos
compartidos (movimiento de animales, insumos y alimentos de varias granjas) pudieron
haber desempeñado un papel en la propagación de laringotraqueítis en uno de los dos
grupos espacio temporales de alta tasa.
Garrido, et. al., (2016), en un estudio que incluyó 92 granjas de aves de corral situadas en
trece provincias de Ecuador, que son representativas de los principales lugares de
producción avícola y sistema de manejo (reproductoras, gallinas ponedoras y pollos de
engorde), evidenció una alta circulación viral, observándose una alta proporción de animales
y granjas positivas: 19.4% y 59.2% respectivamente. En la mayoría de las provincias
examinadas la proporción de animales positivos/granja fue variable.
La determinación de hotpost diferentes para las enfermedades respiratorias está relacionado
con el tipo de producción que se realiza en las diferentes zonas geográficas del país, donde
la presencia de aves adultas como las ponedoras industriales representan sitios en los
cuales los virus causantes de las enfermedades se mantienen debido a los programas de
vacunación que se aplican durante el período productivo, lo cual implica una recirculación de
los virus e incluso la reversión de los mismos como es el caso de laringotraqueítis; en el caso
de bronquitis infecciosa, los virus pueden originar cepas variantes que no son cubiertas con
las vacunas comerciales actuales.
44
CAPÍTULO VII
CONCLUSIONES
Los resultados demuestran la presencia de casos positivos en las aves de traspatio
de tres de las cuatro enfermedades respiratorias de notificación obligatoria ante la
OIE, por medio del análisis espacial realizado a los diagnósticos positivos del
muestreo nacional realizado en el año 2017. Estableciendo la existencia de relación
con los tipos de explotaciones avícolas presentes en las zonas de producción, donde
la presencia de aves adultas ponedoras industriales es el factor determinante del
riesgo para la presentación de las enfermedades.
El análisis estadístico efectuado con la función K, evidencia una asociación
importante entre los puntos con diagnóstico positivo por PCR; es decir, que los casos
positivos se encuentran formando clusters bien definidos, mismos que son diferentes
para cada una de las tres enfermedades analizadas, aunque siempre ligados a las
zonas de producción de aves adultas.
El gráfico de Kernel aplicado para cada enfermedad permite apreciar los puntos de
agrupamiento y en base de ello determinar el riesgo probable para la presentación de
las enfermedades respiratorias en el territorio ecuatoriano donde el riesgo de
incremento de infección se encuentra en un rango de 5.2 a 6 veces la probabilidad
del aparecimento de casos positivos en las zonas de producción avícola respecto de
las zonas de menor incidencia que en general dueron zonas típicas de pollos de
engorde.
45
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Abbas, F. A. (1996). Development of a polymerase chain reaction and a nonradioactive DNA probe for infection Laryngotracheitis virus. En Avian Diseases (págs. 56-62). Acevedo, A. (2010). Bronquitis infecciosa aviar: diagnóstico y control Avian infectious bronchitis: diagnosis and control. AGROCALIDAD, (2016). Diseño del muestreo de enfermedades aviares mediante vigilancia epidemiológica activa para el año 2016. AGROCALIDAD, (2017). Plan de acción para la ejecución del muestreo avícola 2017. Alexander D.J. 2003. Newcastle disease, other avian Paramixoviruses and pneumovirus infections: Newcastle disease. En: Baif, V.M. (Ed.), Disease of Poultry (pp. 64-81). Iowa State University Press, UBA.
Ababneh M.M., Dalab A.E., Alsaad S.R., Al-Zghoul M.B. y Al-Natour M.Q. (2012). Molecular characterization of a recent Newcastle disease virus outbreak in Jordan. Research in Veterinary Science, 93(3), 1512-1514. Bagust TJ, Jones RC, Guy JS. Avian infectious laryngotracheitis. Revue Scientifique et Tecnique-Office International des Epizooties 2000;19:483–492. Bivand, R. et. al. (2008). Applied Spatial Data Analysis with R. Springer, New York, NY. https://doi.org/10.1007/978-0-387-78171-6_7 Brugére-Picoux, J. et. al., (2015). Manual de patología aviar. Association francaise pour lávancement des sciences (AFAS). París, Francia. Pag: 145-149.
Camacho-Escobar, Marco Antonio, Pérez-Lara, Elizabeth, Arroyo-Ledezma, Jaime, Sánchez-Bernal, Edgar Iván, Jiménez-Galicia, Mónica Marcela, Guajolotes de traspatio como reservorios de enfermedades de aves domésticas y silvestres en tres ecosistemas de la costa mexicana. Tropical and Subtropical Agroecosystems [en linea] 2009, 10 (Sin mes) : [Fecha de consulta: 1 de diciembre de 2018] Disponible en:<http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=93911243011> ISSN.
Capua, I. A. (2004). Avian influenza: recent developments. En Avian Pathology (págs. 393-
404).
Centeno Bautista, S. B., López Díaz, C. A. & Juárez Estrada, M. A. (2007). Producción avícola familiar en una comunidad del Municipio de Ixtacamaxtitlán, Puebla. Técnica Pecuaria México, 45 (1), 41-60. Retrieved from http://www. redalyc.org/pdf/613/61345104.pdf
Córdoba Argoti, G. et al. Comportamiento del virus de la bronquitis infecciosa aviar en aves con sintomatología respiratoria provenientes de granjas de producción del Departamento de Cundinamarca. Nova, [S.l.], v. 13, n. 23, p. 47-64, june 2015. ISSN 2462-9448. Disponible en:
<http://hemeroteca.unad.edu.co/index.php/nova/article/view/1705>. Fecha de acceso: 01 dec.
2018 doi:https://doi.org/10.22490/24629448.1705.
Cover MS. 1996. The early history of infectious laryngotracheitis. Avian Dis 40: 494-500.
46
Dufour-Zavala L. 2008. Epizootiology of Infectious Laryngotracheitis and presentation of an
industry control program. Avian Dis 52: 1-7.
Enríquez, M. (2015). Evaluación de dos sistemas de alimentación de tres tipos de alimentos
en aves de traspatio Caupichu III, Pichincha 2015. (Trabajo de grado, Universidad Central
del Ecuador). Retrieved from http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/6538/1/T-UCE-
0004-19.pdf
ESPAC, INEC. (2017). Encuesta de Superficie y Producción Agropecuaria. Retrieved from
http://www.ecuadorencifras.gob.ec/documentos/web-inec/Estadisticas_
agropecuarias/espac/espac-2017/Presentacion%20ESPAC%202017.pdf.
Ferrer M., Rocky et al. (2012). Prevalencia de anticuerpos contra el virus de la enfermedad de Newcastle en Gallus gallus de Lima; estudio de caso-control. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, [S.l.], v. 19, n. 1, p. 67-74, ene. 2012. ISSN 1682-3419. Disponible en: <http://revistasinvestigacion.unmsm.edu.pe/index.php/veterinaria/article/view/1264>.Fecha de acceso: 01 dic. 2018 doi:http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v19i1.1264. Garrido, Ana; Barrionuevo, Margoth; Santiana-Jara, Iván; Sandoval, Patricio; Alfonso, Pastor; and Barrera, Maritza. (2016). Encuesta serológica y molecular de la laringotraqueítis infecciosa aviar en Ecuador. Revista científica ecuatoriana Ecuador es Calidad. Disponible en: http://www.agrocalidad.gob.ec/revistaecuadorescalidad/index.php/revista/article/viewFile/30/65. Fecha acceso: 02 dic. 2018. Gutiérrez, R, Ramírez G,. Camara E. (2010). Estudio serológico de bronquitis infecciosa con el virus SIN6, YUC, MEX/96 en aves de traspatio en 30 comunidades de Yucatán, México. Guy JS, Bagust TJ. (2013). Laringotracheitis. In Diseases of poultry, 11th Ed. (Y.M. Saif with H.J. Barnes, A.M. Fadly, J.R.Glisson, L.R. McDougald and D.E. Swayne, eds). Iowa State University Press, Ames.2003. pp. 121-134. Hidalgo, H. (2004). Infectious Laryngotracheitis: A Review. Revista Brasileira de Ciencia
Avícola, ISSN 1516-635X Sep - Dec 2004, 157 – 168.
Lewis, N. S., Javakhishvili, Z., Russell, C. A., Machablishvili, A., Lexmond, P., Verhagen, J.
H., … Fouchier, R. A. M. (2013). Avian Influenza Virus Surveillance in Wild Birds in Georgia:
2009-2011. PLoS ONE. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058534
Llopis, J. Estimación no paramétrica de funciones de densidad (Método Kernel). Recuperado: https://estadisticaorquestainstrumento.wordpress.com/2012/12/13/estimacion-no-parametrica-de-funciones-de-densidad-metodo-kernel/ Molina. (2013) “Comparación de dos sistemas de producción y de manejo sanitario de las aves criollas de traspatio en los municipios de Ignacio de la Llave y Teocelo, Veracruz”. Trabajo de Grado presentado como requisito parcial para optar el título de Médico Veterinario Zootecnista. Veracruz, México: Universidad Veracruzana, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. disponible en URL: http://www.uv.mx/veracruz/uvca366-agronegocios-sustentables/files/2013/12/Molina2013-Aves-de-traspatio-Tesis.pdf. OIE, 2018a. Código sanitario para los animales terrestres.:
http://www.oie.int/es/normas/codigo-terrestre
47
OIE, 2018b. Situation Report for Highly Pathogenic Avian Influenza. http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Animal_Health_in_the_World/docs/pdf/OIE_AI_situatio
n_report/OIE_SituationReport_AI_August2018.pdf
OIE, 2018. Enfermedades de la lista de la OIE 2018.: http://www.oie.int/es/sanidad-animal-
en-el-mundo/enfermedades-de-la-lista-de-la-oie-2018/
OIE, 2018. Fichas técnicas de enfermedades animales.: http://www.oie.int/es/sanidad-
animal-en-el-mundo/fichas-tecnicas/
OIE, 2018. Portal de influenza aviar: http://www.oie.int/es/sanidad-animal-en-el-mundo/portal-
sobre-la-influenza-aviar/
Olaya Jaimes, J. A., Gómez Ramírez, A. P., Álvarez Espejo, D. C. M., Soler Tovar, D., Romero Prada, J. R., & Villamil Jiménez, L. C. (2010). Las enfermedades infecciosas y su importancia en el sector avícola. Revista de Medicina Veterinaria, 20, 49–61. Or, M. (2018). Innovación radical: necesidad urgente del sistema alimentario actual. Agromás S.C. Fecha de consulta 1 de diciembre de 2018. Disponible en: http://agromassc.com/ Osorio, E. (2017). Brotes de enfermedad de Newcastle en Colombia. ¿Dejaron de trabajar las vacunas?. Recuperado de: https://www.engormix.com/avicultura/articulos/brotes-enfermedad-new-castle-t40589.htm Parra, SHS, Nuñez, LFN, & Ferreira, AJP. (2016). Epidemiology of Avian Infectious Laryngotracheitis with Special Focus to South America: an update. Brazilian Journal of Poultry Science, 18(4), 551-562. https://dx.doi.org/10.1590/1806-9061-2016-0224
Pereda, A. J., Uhart, M., Perez, A. A., Zaccagnini, M. E., La, L., Decarre, J., … Perez, D. R. (2009). Avian Influenza Virus Isolated in Wild Waterfowl in Argentina: Evidence of a potentially unique phylogenetic lineage in South America. Virology, 378(2), 363–370. https://doi.org/10.1016/j.virol.2008.06.010.Avian
Pérez-Ramírez, E., Rodríguez, V., Sommer, D., Blanco, J. M., Acevedo, P., Heffels-
Redmann, U., & Höfle, U. (2010). Serologic Testing for Avian Influenza Viruses in Wild Birds:
Comparison of Two Commercial Competition Enzyme-Linked Immunosorbent Assays. Avian
Diseases. https://doi.org/10.1637/8802-040109-ResNote.1
Pitesky, M., Chin, R., Carnaccini, S., Sentíes–Cué, C., Charlton, B., Woolcock, P., &
Shivaprasad, H. (2014). Spatial and Temporal Epidemiology of Infectious Laryngotracheitis in
Central California: 2000–2012. Avian Diseases, 58(4), 558-565. Retrieved from
http://www.jstor.org/stable/26431750
Rivera, G. (2018). Determinación de la seropositividad a los virus de: Newcastle, Influenza,
Bronquitis y Laringotraqueitis aviar en dos especies de aves acuáticas en la laguna
Yahuarcocha. Trabajo de titulación presentado como requisito previo a la obtención del Título
de Médico Veterinario y Zootecnista. Quito, Ecuador: Universidad Central del Ecuador,
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Recuperado de:
http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/15785/1/T-UCE-0014-MVE-008.pdf
48
Salazar, L. (2017). “Determinación de la presencia del virus de newcastle e influenza aviar en aves de traspatio de la provincia de El Oro”. Trabajo de titulación presentado como requisito previo a la obtención del Título de Médico Veterinario y Zootecnista. Loja, Ecuador: Universidad Nacional de Loja, Facultad Agropecuaria y de Recursos Naturales Renovables, Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Recuperado de: http://dspace.unl.edu.ec/jspui/handle/123456789/19163 SAS. (2018). The SPP Procedure. Introduction to Point Pattern Analysis. Recuperado de:
http://support.sas.com/documentation/cdl/en/statug/67523/HTML/default/viewer.htm#statug_s
pp_overview02.htm
Sellers HS, Garcia M, Glisson JR, Brown TP, Sander JR, Guy JS. (2004). Mild infectious laryngotracheitis in broilers in the Southeast. Avian Dis 48: 430-436.
Spickler, A. (2008). The onset of virus shedding and clinical signs in chickens infected with
high-pathogenicity and low-pathogenicity avian influenza viruses. Avian Pathology, 37, 555–
577.
Swayne, D., & King, D. (2003). Avian Influenza and Newcastle disease. Vet Med Today, Vol. 222,(1534–1540). Recuperado de https://doi.org/10.2460/javma.2003.222.1534 Toaquiza, E. (2017). "Enfermedades infecciosas y parasitarias presentes en aves en la provincia de Cotopaxi”. Proyecto de Investigación presentado previo a la obtención del Título de Médico Veterinario. Latacunga, Ecuador: Universidad Técnica de Cotopaxi, Facultad de Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales. Toapanta, M. (2018). Caracterización del sistema de producción de aves de traspatio del cantón Cevallos. Trabajo de titulación presentado como requisito previo a la obtención del Título de Médico Veterinario y Zootecnista. Ambato, Ecuador: Universidad Técnica de Ambato, Facultad de Ciencias Agropecuarias. Recuperado de: http://repositorio.uta.edu.ec/jspui/handle/123456789/28460
Vargas, O. (2016). Avicultura. Universidad Técnica de Machala. Recuperado de: http://repositorio.utmachala.edu.ec/handle/48000/6846
Venturino, J. (2005). Bioseguridad en granjas avícolas. Revista Electrónica de Veterinaria, 6 (1695–7504), 17.
Villegas, P. (2012). Control de la bronquitis infecciosa aviar. Vinueza, L. (2010). Análisis de riesgo e identificación de variables por medio de sistemas de Información geográfica y compartimentación en avicultura. Recuperado de: https://docplayer.es/80785291-Analisis-de-riesgo-e-identificacion-de-variables-por-medio-de-sistemas-de-informacion-geografica-y-compartimentacion-en-avicultura.html Wilschut, L.I., Laudisoit, A., Hughes, N.K., Addink, E.A., Jong, S.D., Heesterbeek, H., Reijniers, J., Eagle, S., Dubyanskiy, V.M., & Begon, M. (2015). Spatial distribution patterns of plague hosts: point pattern analysis of the burrows of great gerbils in Kazakhstan. Journal of biogeography.
49
ANEXOS
ANEXO 1
MUESTREO NACIONAL EN AVES DE TRASPATIO 2017
El diseño para el muestro será el establecido por AGROCALIDAD en el documento “Diseño
del muestreo de enfermedades aviares mediante vigilancia epidemiológica activa para año
2017”, este diseño, en resumen, muestreo (2) dos predios con aves de traspatio que se
encuentren más cercanos a la granja de producción industrial muestreada en el año 2016, la
distancia máxima a considerar es de 3 Km; en los cuales se muestrearon a 5 aves en cada
uno de los predios. Las granjas seleccionadas debieron cumplir con: No estar vacunadas
contra Newcastle y Bronquitis Infecciosa; tener 5 o más aves (Gallus gallus domesticus)
mayores a 35 días de edad y estar máximo a 3 km a la redonda de la granja avícola
industrial muestreada en el año 2016. Según los resultados de AGROCALIDAD, se
muestrearon 1565 aves en 313 predios de traspatio y en cada predio se aplicó una encuesta
para levantar datos epidemiológicos y se georreferenció.
1. Procedimiento de recolección y envío de muestras.
Se deberá recolectar 5 (cinco) muestras de suero sanguíneo por predio de aves de
traspatio seleccionado. Estas muestras serán tomadas de las aves mayores a 35 días de
edad y que no hayan recibido vacunación para Newcastle, Bronquitis Infecciosa ni
Laringotraqueítis aviar.
La cantidad a recolectar de muestras de hisopados cloacales debe ser 5 (cinco) por
predio de traspatio, para realizar un pool del mismo número. Estos hisopados se deben
colocar dentro de un tubo falcón de 15 ml con 4 ml de medio de trasporte PBS, los
mismos que serán almacenados en una funda ziploc y colocados en coolers evitando el
desperdicio de las muestras. Los hisopados serán tomados de las mismas aves a las que
se les toma las muestras sanguíneas.
Las muestras tanto de suero sanguíneo como de hisopados se deben enviar al laboratorio
de Diagnóstico Animal en Tumbaco, respetando los procedimientos de la cadena de frío.
Todas las muestras deberán ser identificadas de manera obligatoria para poder hacer las
interpretaciones adecuadas de los análisis de laboratorio y en el caso de que existan
resultados seropositivos poder identificar el predio de origen en la que estaría presente la
50
patología y realizar el respectivo seguimiento epidemiológico.
En caso de que el predio de traspatio cercano a la granja comercial muestreada en el 2016,
no cuente con el número mínimo y necesario de 5 (cinco) aves, o las aves no tengan la edad
mínima para ser muestreadas (35 días de edad), o hayan sido vacunadas contra la
enfermedad de Newcastle, Bronquitis Infecciosa, y/o Laringotraqueítis, se deberá movilizar
hasta el siguiente predio de aves de traspatio más cercano, que cumpla con los requisitos
para ser muestreado.
2. Muestreo para aves bajo producción comercial 2016.
Para el estudio en aves de producción comercial se consideró el diseño elaborado por
AGROCALIDAD titulado “Diseño del muestreo de enfermedades aviares mediante vigilancia
epidemiológica activa para año 2016” según el cual se aplicará dos tipos de muestreo: El
aleatorio simple por conglomerados y el muestreo intencional; se seleccionará al azar de las
granjas del Censo Avícola 2015 con el fin de que no haya sesgo en la información, se
utilizará el programa en línea WinEpi 2.0, el cual presenta una calculadora epidemiológica
que permite realizar las estimaciones adecuadas para el muestreo.
Muestreo intencional: conocido también como muestreo de conveniencia. Este tipo de
muestreo se caracteriza por un esfuerzo deliberado de obtener muestras "representativas"
mediante la inclusión en la muestra de grupos supuestamente típicos, las muestras se
procesarán primero con la técnica de ELISA para efectuar un tamizaje y la confirmación de
las muestras sospechosas será a través de un diagnóstico confirmatorio de laboratorio (HI-rt
PCR).
El muestreo serológico se realizará en aves mayores de 35 días de edad, para evitar la
presencia de anticuerpos maternales, los mismos que distorsionan los resultados al
momento de la interpretación y pueden dar demasiados falsos positivos. Se recogerán 25
muestras serológicas por granja y se enviará al laboratorio el suero de las mismas en tubos
Ependorf, para el análisis respectivo.
En el muestreo, se indica que se colectará 12 (doce) muestras sean de hisopado traqueal o
cloacal según el caso, para ser remitidos al laboratorio en pools de 2 (dos) hisopos en 6
(seis) tubos Falcón con medio de transporte cada uno.
Con lo indicado se deberá muestrear un total de 4000 aves en 160 granjas de producción
comercial.
51
2.1. Muestreo para aves comerciales.
Se remitieron muestras de: suero sanguíneo, hisopado traqueal y/o tejido traqueal de
las aves de los galpones con aves de mayor edad, según la programación del
monitoreo.
La cantidad de muestras de suero sanguíneo deberá ser en total 25 (veinte y cinco)
por granja, aves de más de 35 días de edad.
La cantidad de hisopados y/o tráquea deberá proceder de 12 (doce) aves de las
granjas diagnosticadas como positivas a LT en el año 2015 por el método de tamizaje
(ELISA). Estas muestras serán tomadas de las aves de mayor edad que se
encuentren en la granja, las mismas que deberán ser remitidas en medio líquido de
transporte distribuidas en 6 (seis) tubos, esto es 2 (dos) hisopos por tubo Falcón.
Todas las muestras tanto de suero, hisopados y/o tejido fueron enviadas al
laboratorio de AGROCALIDAD de Tumbaco, guardando los procedimientos de
cadena de frío.
Todas las muestras fueron identificadas para poder hacer las interpretaciones
adecuadas en los análisis de los resultados y si es el caso de que existan resultados
positivos poder identificar el galpón y granja en la que estaría presente la patología.
Las muestras para PCR (con hisopos traqueales), se tomó de las aves de mayor
edad, la condición es que, al ser granjas que anteriormente ya dieron diagnóstico
positivo a LT por el método de ELISA, se deberá recolectó muestras de aves que
tengan sintomatología compatible con enfermedades respiratorias que sería lo más
ideal; pero si no está presente la sintomatología se deberá recolectar muestras de las
aves de mayor edad que se encuentren en la granja avícola.
3. Fase de laboratorio.
Para el análisis de las muestras recolectadas en campo se empleará las siguientes técnicas
diagnósticas:
52
Enfermedad de Newcastle:
Bronquitis infecciosa:
ELISA Indirecto: Todos los sueros serán analizados por esta prueba, la cual tiene una
Sensibilidad de 92% y Especificidad del 98%.
PCR: En caso de que existan resultados positivos a ELISA, los hisopados traqueales
pertenecientes a esas muestras serán analizados por la técnica de PCR – TR, para la
confirmación.
Influenza aviar:
Laringotraqueítis aviar:
ELISA Competitivo: Sensibilidad de 98% y Especificidad del 98%.
INHIBICIÓN DE LA HEMAGLUTINACIÓN (HI): los sueros de aves de traspatio que sean
positivos al ELISA se someterán a HI.
PCR-TR: En caso de que existan resultados positivos a HI y/o a cultivo, los hisopados
cloacales serán analizados mediante PCR-TR. La cual es una prueba ideal para la
confirmación de los casos.
ELISA Competitivo: Sensibilidad de 98% y Especificidad del 98%.
INHIBICIÓN DE LA HEMAGLUTINACIÓN (HI): se realizará a todos los sueros positivos al
ELISA la prueba de HI.
PCR-TR: En caso de que existan resultados positivos a HI, los hisopados cloacales serán
analizados mediante PCR-TR. La cual es una prueba ideal para la confirmación de los
casos.
ELISA Indirecto: Todos los sueros serán analizados por esta prueba, la cual tiene una
Sensibilidad de 92% y Especificidad del 98%.
PCR: En caso de que existan resultados positivos a ELISA, los hisopados traqueales
pertenecientes a esas muestras serán analizados por la técnica de PCR – TR, para la
confirmación.
53
ANEXO 2