toma de muestras y aseguramiento de la...
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TOMA DE MUESTRAS Y
ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD
Profesor: José Amaro Suazo
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GENERALIDADES
La confiabilidad de los resultados del estudio microbiológico dependen de la calidad de la muestra.
La correcta recolección de una muestra para su cultivo es la etapa más importante en el aislamiento de microorganismos responsables de enfermedades infecciosas.
Una muestra deficientemente colectada, conservada, transportada, y/o identificada puede ser el motivo del fracaso de aislar el microorganismo causante, y la recuperación de contaminantes pueda conducir a una terapia incorrecta o aún perjudicial.
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TOMA DE MUESTRAS
Definición:
Obtención de especímenes biológicos para el apoyo al diagnóstico clínico.
Especímenes:
* Líquidos
* Secreciones
* Otros materiales como tejidos
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¿QUIEN LA REALIZA?
1. Personal Profesional:* Enfermeros* Microbiólogos* Médicos* Personal Capacitado
2. PacientePrevia instrucción.
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Solicitud de examen
Toma de muestra
Transporte de muestra
Análisis de laboratorio
Entrega de resultado
Fase pre-analítica
Etapas del estudio microbiológico1
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RECOMENDACIONES PARA LA TOMA DE MUESTRAS
El médico solicitará un estudio microbiológico con una
orientación clara de acuerdo con la situación clínica del
paciente
El personal de enfermería y laboratorio microbiológico
requiere conocimientos e información precisa para
realizar el procedimiento en condiciones óptimas
El personal encargado del transporte debe estar
capacitado adecuadamente para mantener la muestra en
términos de tiempo y características hasta su entrega al
área de análisis
Todo el personal debe asumir la importancia de sus
actividades, para contribuir a los objetivos de calidad
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PRECAUCIONES DE BIOSEGURIDAD
Utilizar los elementos de protección personal
• Protección ocular: gafas o mascarilla con visera.
• Mascarilla.
• Guantes.
• Bata.
• Contenedores adecuados (s/fugas y de fácil sellamiento)
Manejo de elementos cortopunzantes:
• No reenfundar agujas.
• Disponer y utilizar adecuadamente el contenedor para
cortopunzantes.
• No transportar jeringas con agujas. Se recomienda
transferir a un tubo estéril
Y??? En caso de accidente con riesgo biológico???
Que hacer??
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PREPARACIÓN DE ELEMENTOS PARA TOMA DE
MUESTRA
Tórulas:
Mango de madera y algodón:
- virus herpes simplex: NO
-Mycoplasma en uretra, vagina y cérvix, y para la
detección de la mayoría de bacterias no exigentes
nutricionalmente: SI
Dacrón (poliéster): detección de virus y facilitan la
sobrevida de Streptococcus pyogenes.
Alginato de calcio:
- Chlamydia spp: SI
- Neisseria gonorrhoeae: NO
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IDENTIFICACIÓN DE MUESTRAS
1. Nombre completo y edad del paciente.
2. Número de historia clínica: en algunas instituciones corresponde al documento de identificación.
3. Habitación donde está ubicado el paciente o servicio de localización.
4. Tipo de muestra y sitio anatómico. Por ejemplo, secreción de herida quirúrgica abdominal; biopsia tejido úlcera pie diabético; orina obtenida a través de sonda vesical permanente; sangre obtenida a través de catéter venoso central, etc.
5. Fecha y hora de recolección.
6. Identificación del personal que obtiene la muestra.
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CONDICIONES GENERALES DE ALMACENAMIENTO
Y TRANSPORTE
Tiempo: < 2 hrs y de acuerdo con la viabilidad del organismo sospechado y el recipiente donde se colectó
No deben ser almacenadas por más de 24 horas, independientemente del medio y la temperatura de almacenamiento.
Volumen obtenido
Susceptibilidad al medio ambiente: procesamiento inmediato: Shigella spp, Neisseria gonorrhoeae, N. meningitidis, Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae y anaerobios.
Muestras para estudio de anaerobios no refrigerar y en recipientes que mantengan condiciones libres de oxígeno
Muestras de LCR, de vagina, oído interno y ojos no deben ser refrigeradas.
Los frascos para recolección de líquidos deben tener tapa rosca; no se recomienda el uso de tapones de gasa o algodón.
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CONSIDERACIONES GENERALES
La toma de muestra para cultivo debe realizarse utilizando material estéril, tomadas por frotación, por punción o aspiración
Las muestras óptimas para cultivo son las de fluidos o trocitos de tejidos
Las muestras tomadas con tórula deben ser humedecidas con suero o agua estéril
Para el traslado al laboratorio en general, luego de tomada la muestra deben introducirse en medio de transporte específico de acuerdo al tipo de muestra
La hora de extracción de la muestra puede ser cualquier momento del día a excepción de orina y secreciones respiratorias que si son de rutina, deben ser tomadas a primera hora de la mañana
Tomada la muestra, esta debe transportarse hasta el laboratorio a temperatura ambiente a excepción de orina y secreciones respiratorias las que deben mantenerse y trasladarse al laboratorio para su siembra a 4º C
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TOMA DE MUESTRAS:
Exclusivamente frente a la sospecha de infección
Es determinante para un diagnóstico adecuado
Debe asegurar:
- Que la muestra procede del sitio de infección
- Que fue tomada en el momento adecuado
- Volumen suficiente
- Técnica aséptica
- Recipiente adecuado (estéril/limpio, luz)
- Orientación o juicio clínico
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CONSIDERACIONES GENERALES
PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA
RECOLECCIÓN DE MUESTRA:
Debe ser material del verdadero sitio de infección y debe
recogerse con un mínimo de contaminación de tejidos,
órganos o secreciones adyacentes (REPRESENTATIVO)
Establecer periodos óptimos para la recolección de
muestras a fin de tener la mejor oportunidad de aislar los
microorganismos causantes (TIEMPO OPORTUNO)
Obtener suficiente cantidad de muestra para llevar a
cabo las técnicas de cultivo solicitadas.
Utilizar dispositivos de recolección, recipientes para las
muestras y medios de cultivo adecuados.
Siempre que sea posible, obtener las muestras antes de
la administración de antibióticos.
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El envase recolector de la muestra debe estar correctamente rotulado.
Si el paciente va a colectar su muestra, asegúrese de que comprenda lo que le explicó, mediante los siguientes consejos:
- Propicie un ambiente de aprendizaje.
- Sea corto, separe el conocimiento largo y complejo; en segmentos pequeños.
- Haga que el paciente use sentidos al máximo, esto incluye escuchar, ver, tocar, escribir, hablar y hacer.
PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA RECOLECCIÓN DE MUESTRA:
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Enseñe habilidad con progresos lógicos.
Y recuerde, los pacientes recuerdan el 90% de lo que
ellos dicen y hacen; pero sólo el 10% de lo que ellos
escuchan.
Documente lo que el paciente debe hacer.
PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA RECOLECCIÓN DE MUESTRA:
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TIPOS DE MUESTRAS
Muestras de obtención directa de localizaciones
estériles. Alto rendimiento.
Muestras de obtención indirecta de
localizaciones estériles. Rendimiento
dependiente de la flora saprofita.
Muestras obtenidas de localizaciones con flora
microbiana.
Muestras para el diagnóstico virológico. Alto
Rendimiento , si no es flora viral habitual.
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CRITERIOS DE ACEPTABILIDAD O RECHAZO
DE MUESTRAS
Cuando no se mantienen las condiciones de colección y
transporte recomendadas se debe obtener una nueva
muestra, siempre que sea posible
Cantidades insuficientes, temperaturas inadecuadas,
recipientes rotos o con fugas o deficiente calidad de la
muestra (por ejemplo, esputo contaminado con saliva;
orina obtenida de bolsa colectora), deben ser tomados
en cuenta para no procesar el espécimen.
Muestras sin identificar: no invasivo, invasivo
Transporte demorado
Muestras repetidas
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LAS PRINCIPALES CAUSAS DEL BAJO
RENDIMIENTO DE LOS CULTIVOS
Se relacionan con:
Caída del pH
Caída de la temperatura
Desecación
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TIPO DE MUESTRAS MÁS FRECUENTES
Secreciones: Frotar con tórula humedecida e introducir en medio de transporte de Stuart o Amies. (en gral. Azul)
Deposiciones: Introducir tórula humedecida en la zona más alterada de las deposiciones recién emitidas e introducir en medio transporte Cary blair (en gral. Rojo)
Sangre: Hemocultivos tomados por punción con Técnica aséptica e inoculación inmediata en botella de Hemocultivos (vial).
Otros fluidos: Tomar alrededor de 2ml con Técnica Aséptica y transporte en tubo estéril
Punciones: Tomar con Técnica Aséptica y enviar alrededor de 2 ml en la misma jeringa.
Anaerobios: Tomar con Técnica aséptica 10 ml en jeringa, sellar y enviar al laboratorio (en medio de transporte para anaerobios, previo aviso)
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MUESTRAS DE DIVERSAS ZONAS DEL CUERPO Y
TIPOS DE INFECCIÓN
(*) Recogida en quirófano (V) muestra para virología (F) muestra para hongos (M) muestra para micobacterias
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MUESTRAS DE DIVERSAS ZONAS DEL CUERPO
Y TIPOS DE INFECCIÓN
(*) Recogida en quirófano (V) muestra para virología (F) muestra para hongos (M) muestra para micobacterias
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QUE COMPRENDE UN CULTIVO MICROBIOLÓGICO
Examen directo, cultivo y cuando se justifica, el antibiograma.
Examen directo: significa la observación microscópica de la muestra extendida en un portaobjeto, que puede ser al fresco o con tinción (Gram, Ziehl – Neelsen, Tinta China). Este procedimiento es rápido.
Cultivo:
- crecimiento in vitro de microorganismos en medios de cultivos líquidos o sólidos (agares diferentes). Permite aislamiento del agente y su identificación posterior
- estudio de la sensibilidad a los antimicrobianos. Este procedimiento es más lento demora al menos 24 horas y en casos de algunos microorganismos de lento desarrollo puede demorar varios días o semanas.
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TIPOS DE MEDIOS DE TRANSPORTE
De izq. A der.: amies-carbon, stuart, cary blair, amies
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TOMA DE MUESTRAS:
“Es muy importante realizar
siempre un lavado de manos
clínico adecuado antes y
después de tomar una muestra”
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HEMOCULTIVOS: “DEMOSTRAR LA PRESENCIA
DE BACTERIAS EN SANGRE””
Paciente Afebril o Febril
Tomar la muestra antes del uso de antimicrobianos
Recolección: por personal entrenado y previo… ???
- Antisepsia de piel con alcohol 70%
- Desinfección de tapa del vial
con alcohol 70%
- 2 Hemocultivos simultáneos, pero distintos
sitios punción
se recomienda 30 min. entre cada extracción
y en lo posible extraer de diferentes sitios anatómicos
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Volúmenes recomendados
(sujeto a fabricante)
Nota: no rallar el código de barra,
rotular lugar de extracción
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CASOS ESPECIALES
ENDOCARDITIS: 6 muestras en series (3 muestras / 2
días consecutivos)
Sospecha de infección por catéter
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CONSIDERACIONES
La presencia de fiebre no es requisito indispensable
para la toma de muestra
Si existe fiebre las muestras deben tomarse
antecediendo al peak febril
Para estudio de anaerobio, se procede de igual forma,
excepto que las muestras se vacían al medio de cultivo
especial
No inocular más de una botella con la misma aguja ni
punción.
No enviar el catéter en caldo o medio de transporte ,
solo en tubo estéril…
y ¡ojo! con las dimensiones (5mm)
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INFECCION TRACTO URINARIO (ITU)
(ORINA, SECRECIÓN URETRAL Y PROSTÁTICA)
Urocultivos:
Segundo chorro: Realizar aseo perineal prolijo,
separando los labios en la mujer y retrayendo el prepucio
en el varón. Eliminar el primer chorro de orina
Recibir 2 a 3 ml del segundo chorro en receptáculo
estéril y sin interrumpir la micción
tapón vaginal en la mujer
Debe mantenerse refrigerada a 4º C
y trasladarla manteniendo la cadena
de frío antes de 30 min.
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UROCULTIVOS:
Por punción de catéter urinario:
Desinfectar el sitio de punción del segmento proximal del catéter con alcohol 70%
aspirar con jeringa estéril entre 2 a 5 ml de orina
vaciar en tubo estéril y transportarla al laboratorio de la misma forma que la muestra miccional
Es una muestra que tiene un mal valor predictivo positivo, pero excelente valor predictivo negativo, esto quiere decir que si el cultivo esta negativo permite descartar el diagnostico
No se recomienda interpretar en el contexto del sedimento urinario , ya que la sonda como cuerpo extraño produce reacción inflamatoria local que genera leucocituria.
Solo solicitar si se sospecha del tracto urinario como causa de foco infeccioso
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UROCULTIVOS:
Muestras por punción suprapúbica:
Antisepsia de la piel en el sitio de punción, aspirar
con técnica aséptica entre 2 a 5 ml de orina y
proceder a su traslado al laboratorio de igual forma
que los casos anteriores
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Por recolector:
Es una muestra que tiene un mal VPP, pero excelente VPN.
Si el cultivo esta negativo permite descartar el diagnostico
Siempre se debe acompañar de sedimento urinario para la
Interpretación
Requiere aseo genital riguroso
Se debe cambiar el recolector cada 30 minutos, y repetir el
aseo antes de instalar un nuevo recolector
Enviar al laboratorio en recolector bien sellado, no trasvasijar
Anotar como observación si: el paciente tiene diarrea o
dermatitis, estas 2 circunstancias pueden generar falsos
positivos
UROCULTIVOS:1
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Por sondeo vesical
Es una técnica invasiva de toma de
muestra realizada por enfermera
Requiere aseo genital riguroso e
instalación de una sonda transitoria para extraer orina
directamente de vejiga
Tiene un excelente VPP y VPN, esto quiere decir que su
resultado permite hacer y descartar diagnóstico
UROCULTIVOS:
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INDICADOR DE CALIDAD DE TOMA DE MUESTRA
UROCULTIVO
Toda muestra polimicrobiana indica mala técnica de
toma de muestra como proceso
Existe un indicador de toma de muestra que considera
el número de muestras polimicroabianas sobre el total
de muestras tomadas por servicios (%)
Este % de urocultivos polimicrobianos no debe superar
el 8%
>8% se deben realizar estrategias de mejora en
la toma de muestra, por ejemplo evaluar que etapa de
la norma de toma de muestra no se cumple, e
intervenir en ese aspecto
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VOLÚMENES
Orina de 1er chorro:Indicada en estudio de infección por N. gonorrhoeae,
Chlamydias y otras uretritis no gonocócicas
- Si se solicita cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra no
debe refrigerarse.
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SECRECIÓN URETRAL:
Previo aseo genital, exprimir uretra y
recibir la secreción en tórula estéril
colocar en medio de transporte
y enviar a estudio.
La muestra debe tomarse a primera hora de la
mañana o después de una hora de orinar.
SECRECIÓN URETRAL:
o Se procede de igual forma que en el caso de
muestra para secreción uretral, previo masaje
prostático
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Expectoración:
Técnica:
- Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina (evitar uso de pasta de dientes o enjuagues bucales)
- Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal
- Volumen: 2 a 10 ml
- De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml durante 10 minutos), kinesioterapia respiratoria.
Observación:
- El lab. Microbiología puede rechazar la muestra y solicitar una nueva si la calidad no es la adecuada (de acuerdo t.gram)
- si se solicita cultivo de Koch el envase debe estar protegido de la luz
INFECCION RESPIRATORIA INFERIOR 1
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TOMA DE MUESTRAS INVASIVAS
Lavado bronqueoalveolar: Realizar el procedimiento a través de broncoscopía y con técnica aséptica aspirar entre 15 a 50 ml de lavado. Transportarlas de inmediato en tubo estéril al laboratorio para su estudio.
Aspirado telescopado protegido: Por broncoscopíaintroducir cepillo a través del catéter protegido frotar la zona alterada y enviar en tubo estéril de inmediato al laboratorio para estudio semicuantitativo.
Toracocentesis: Realizar el procedimiento con técnica aséptica, aspirar 10 ml si es posible. Transportar de inmediato al laboratorio para su estudio.
Biopsia pulmonar: realizar el procedimiento con técnica aséptica, enviar un trocito de tejido en tubo estéril o en medio de transporte con caldo específico. Trasladar la muestra de inmediato para su estudio
INFECCION RESPIRATORIA INFERIOR 1
9:1
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CONSIDERACIÓN
Para el estudio etiológico de neumonía nosocomial
en paciente intubado, se considera apropiado los
cultivos aspirado traqueal, siempre que se realice
con técnicas cuantitativas
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INFECCION RESPIRATORIA ALTA
Secreción faríngea:
- Deprimir la lengua y frotar con tórula
estéril amígdalas, pilares anteriores y
pared posterior de la faringe.
- Colocar en el medio de transporte y enviar de inmediato
al laboratorio, si no es posible la muestra se mantiene
transitoriamente a temperatura ambiente.
Secreción nasal: Introducir tórula estéril más o menos
2,5 cm. en mucosa nasal, rotar y colocar en medio de
transporte. Enviar al laboratorio de inmediato o mantener
la muestra transitoriamente a temperatura ambiente
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INFECCION DE HERIDA OPERATORIA
Infección superficial: son aquellas que comprometen
dermis, epidermis y celular subcutáneo (ulceras,
quemaduras, etc.)
Toma de muestra: Limpiar la herida con suero
fisiológico, frotar con tórula estéril el centro y los bordes
internos de la superficie cruenta, colocar en medio de
transporte y enviar al laboratorio para su siembra y
estudio
Muestra en tórula no es apta para cultivo de anaerobio
En caso de cultivo anaeróbico, la muestra
debe ser tomada por el médico por
aspiración con jeringa (0.5 ml enviar
sellada) o por el envío de tejido en frasco
estéril (6 mm. En caldo tioglicolato)
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Infección profunda: son aquellas que incluyen fascia y
músculo, pudiendo comprometer o no cavidades u
órganos
Toma de muestra: Limpiar la superficie cruenta con
suero fisiológico, tomar la muestra
con tórula de la parte más profunda
de la herida, colocar en medio de
transporte y enviarla al laboratorio
INFECCION DE HERIDA OPERATORIA
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Abscesos cerrados:
- Desinfectar el sitio de punción con antiséptico,
aspirar material en lo posible 10 ml
- vaciar a tubo estéril para enviar al laboratorio.
- Si se sospecha de anaerobios enviar en la misma
jeringa sellada, eliminando todo el aire remanente.
INFECCION DE HERIDA OPERATORIA
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CONSIDERACIONES
Las muestras de pus tienen muy mal rendimiento,
ya que el pH ácido de este material destruye
rápidamente los microorganismos, siendo difícil su
aislamiento posterior a la siembra
En caso de otras heridas de piel no operatorias,
proceder a la toma de muestras como si se tratara
de una herida superficial y transportarlas de igual
forma que éstas
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INFECCIONES SUPERFICIALES DE PIEL Y
MUCOSAS
Secreción conjuntival: Limpiar la superficie
externa del ojo con suero estéril, frotar con tórula
humedecida el borde interno de la conjuntiva y
colocarla en el medio de transporte para su envío
al laboratorio.
Secreción ótica: Limpiar el canal auditivo con
jabón antiséptico, tomar la muestra con tórula
estéril y colocarla en el medio de transporte para su
envío al laboratorio.
Secreción umbilical RN: Tomar muestra directa de
la zona umbilical sin previa limpieza, colocar en
medio de transporte y enviar al laboratorio.
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INFECCIONES GINECO – OBSTETRICAS
Endocervix: Previo aseo genital, introducir tórula
hacia el canal cervical y rotar, colocar la tórula en
medio de transporte y enviar al laboratorio. (ojo en
sospecha de Neisseria gonorrhoeae)
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Secreciones vaginales:
Para estudio bacteriológico y de hongos. A través
de un especulo frotar con tórula estéril la mucosa
vaginal e impregnarla de flujo de los fondos de
saco, colocar en medio de transporte y enviar al
laboratorio.
Para Trichomonas, introducir suero fisiológico tibio,
recoger y vaciar en tubo estéril de 3 a 5 ml. Enviar
de inmediato al laboratorio
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INFECCIONES GINECO – OBSTETRICAS
Líquido Amniótico: Amniocentesis, previa
desinfección con antiséptico y enviar al laboratorio
en la misma jeringa o en tubo estéril entre 5 a 10
ml de muestra.
Placenta y tejidos fetales: Durante el acto
quirúrgico, obtener tejido o aspirados. Enviar en
tubo estéril o caldo tioglicolato como para estudio
de anaerobios.
Trompas y ovarios: Obtener muestra durante la
cirugía y enviar tejido o aspirado de la misma forma
que para estudio de anaerobios
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INFECCIONES GINECO – OBSTETRICAS
INFECCION GASTRO INTESTINAL
Coprocultivos: Introducir tórula limpia en la zona
más alterada de las deposiciones recién emitidas
(mucus o sangre) y colocarlas en el medio de
transporte (tubo tapa roja). Las muestras pueden
tomarse directamente del recto, del pañal o
receptáculo limpio.
Toxina de Clostridium difficile: Enviar 5 a 10 ml
de deposiciones recién emitidas en tubo o frasco
limpio y seco
(valido también para estudio de Rotavirus,
leucocitos fecales y adenovirus en deposición)
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Aspirado gástrico en RN
Aspirar por sonda nasogástrica de 1 a 3 ml de
contenido y colocar en tubo estéril. Sólo se justifica
esta muestra en las primeras 24 horas de vida.
Bilis
Aspirar entre 5 a 10 ml de bilis y enviar en la misma
jeringa o en tubo estéril de inmediato al laboratorio
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INFECCION GASTRO INTESTINAL
MUESTRAS DE FLUIDOS Y CAVIDADES
NORMALMENTE ESTERILES
Líquido cefalorraquídeo (LCR)
Previa desinfección de la zona con antiséptico y con técnica aséptica, obtener entre 2 a 3 ml de muestra y en tubo estéril enviar de inmediato al laboratorio, si no es posible enviarla al momento, transitoriamente debe mantenerse a temperatura ambiente. NO REFRIGERAR.
Líquido ascítico
Aspirar idealmente 10 ml de muestra a través de punción abdominal con técnica aséptica, vaciar a frasco de Hemocultivos y simultáneamente 1 ml en tubo estéril seco para tinción en laboratorio
Lecha Materna
Limpiar el pezón previo a extracción de la muestra, descartar los primeros ml y recoger entre 2 a 5 ml en tubo estéril. Enviar de inmediato al laboratorio.
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VIRUS RESPIRATORIOS O BORDETELLA
PERTUSSIS
Aspirado nasofaríngeo:
− Con guantes estériles, introducir cuidadosamente la
sonda de aspiración por una fosa nasal hacia la
nasofaringe. Sólo al llegar a la nasofaringe aspirar las
secreciones
- Retirar la sonda
- Transferir la muestra al medio de transporte viral. -
Rotular el tubo de transporte
Torulado o hisopado
retrofaríngeo:
- en ángulo de 70 º
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OTRAS
Screening Streptococcus Grupo B:
- Realizar un hisopado desde el inicio del perineo hasta el inicio del recto
Detección de Enterococo resistente a Vancomicina(ERV)
- Introducir la tórula en el esfínter anal, rotar suavemente y retirar.
Detección de portación nasal de Staphylococcusaureus
- Introducir suavemente una tórula fina +/- 2 cm. en la nariz, en dirección paralela al piso nasal.
- Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal y extraer
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TOMA DE MUESTRA HONGOS
IDENTIFICACION
TOMA DE MUESTRA CLINICA
EXAMEN MICROSCOPICO DIRECTO
CULTIVO
RECOLECCIÓN DE MUESTRAS CLÍNICAS
•Representa uno de los pasos más importantes
del examen micológicopor ej: correcta y adecuada recolección permite el hallazgo del agente
implicado.
•Un examen micológico negativo frente a una
lesión sospechosa puede deberse a pequeños
errores en la técnica de recolección de la muestra
por ej. material insuficiente, escamas demasiado grandes, tratamiento
antifúngico previo, etc.
Muestras clínicas: Requisitos
Cantidad suficiente
Bordes activos de las
lesiones
Paciente sin tratamiento
antifúngico previo
- Paciente limpio
- Baño o limpieza solo con agua y jabón (no desinfectante)
Antisepsia de piel con alcohol 70°
NO ALCOHOL 95°
Tipos de material clínico
PELOS
ESCAMAS
-Piel
-Uñas
-Cuero cabelludo
SECRECIONES
Materiales para la toma de
muestras
PIEL
Raspado del borde activo de la lesión con bisturí, espátula o portaobjetos estéril
Si existen vesículas debe cortarse el techo.
Intértrigo:
-Raspar escamas
-Si esta macerado tomar con
tórula humedecida en suero
estéril
PIEL (en Pitiriasis versicolor)
UÑAS
Tomar escamas mas profundas posibles,
limite entre uña sana y enferma.
Raspado en la porción distal del espacio
subungueal donde se acumula la
hiperqueratosis (áreas blancas)
En caso de onicomicosis superficial se raspa
la cara externa de la uña.
Las uñas no deben estar pintadas
PELOS
Limpiar cuero cabelludo con alcohol
Arrancar 10-20 pelos cortados del borde de la
alopecia con pinzas
Muestra de cuero cabelludo se raspa con bisturí
OTRAS MUESTRAS
Ojos :
- conjuntival (tórula estéril)
- cornea (procedimiento médico)
Oídos:
- con tórula estéril tomar material purulento o costroso
Cavidad oral:
- aseo oral
- raspar lesiones blanquecinas
Flujo vaginal
- con espéculo
Glande, prepucio, región anal y perianal
- tomar con tórula estéril
OTRAS MUESTRAS
• Envase limpio y seco
• Las escamas, pelos, costras o raspados
se depositan :
- entre 2 portaobjetos flameados
envueltos en papel o unidos con
scotch.
- en placa de petri estéril
- Pocillos plásticos con tapa
-¿ sobre de papel ?
Enviar lo más rápido posible
Transporte de muestra
Rechazo de Muestra
- Muestra escasa.
- Paciente en tratamiento.
- Muestra sin orden de examen y/o
diagnóstico presuntivo.
- Muestra sin datos mínimos del
paciente y de la lesión.
LOS 6 ESENCIALES EN TOMA DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
Momento adecuado
Contenedor adecuado
Paciente adecuado
Sitio adecuado
Forma adecuada
Traslado adecuado
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¡MUCHAS GRACIAS!
¡Aplausos o Fusilamiento!
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