seminários em fitopatologia ii - rudolf schuiling

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Manejo de fungicidas para controle da podridão-de- esclerotinia da batata JOHNSON, D. A., e ATALLAH, Z. K. 2006. Timing fungicide applications for managing Sclerotinia stem rot of potato. Plant Dis. 90:755-758. Instituto Federal Goiano câmpus Urutaí. Curso de Agronomia Disciplina de Fitopatologia II Apresentador: Rudolf Schuiling 1

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Page 1: Seminários em Fitopatologia II - Rudolf Schuiling

Manejo de fungicidas para

controle da podridão-de-

esclerotinia da batata

JOHNSON, D. A., e ATALLAH, Z. K. 2006. Timing fungicide applications formanaging Sclerotinia stem rot of potato. Plant Dis. 90:755-758.

Instituto Federal Goiano câmpus Urutaí.Curso de Agronomia

Disciplina de Fitopatologia II

Apresentador: Rudolf Schuiling

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Introdução:

• Sclerotinia sclerotiorum é o agente causal da podridão de Sclerotinia ou mofo branco na cultura da batata.

• É um fungo ascomiceto de distribuição global que infecta mais de 400 espécies em 75 famílias de plantas.

• Culturas comuns cultivados suscetíveis a S.sclerotiorum incluem batata, feijão, ervilha, cenoura, cucurbitáceas, e Brassica spp.

• O aumento da Incidência da doença têm sido associados a arquitetura e morfologia do cultivar, alta densidade de plantio, espaçamento entre linhas estreito, permanente umidade da superfície da planta e excesso de adubação nitrogenada na cultura de batata e outras culturas.

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Introdução:

• Um a três aplicações de fungicidas são feitos geralmente em uma tentativa para controlar o mofo branco da batata.

• Os ascósporos de S. sclerotiorum são incapazes de infecção direta de folhas verdes intactas e tecidos do caule de batata e outras culturas, mas colonizam flores e outros tecidos senescentes para usá-los como fontes de energia para infectar tecidos verdes.

• Ascósporos lançados ao ar são depositados sobre as flores de batata abertos ligados ao dossel

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Introdução

• Um tiro batata é composto por uma haste principal e ramos. Ele pode produzir uma ou mais inflorescências paniculadas ao longo do tempo.

• O tronco principal de uma sessão de batata termina em uma inflorescência, que é chamado de inflorescência primária.

• A aplicação de fungicida em plena floração de inflorescências primárias não foi diretamente comparado à aplicação no fechamento da linha para controle de Sclerotinia.

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Objetivo:

• O principal objetivo deste estudo foi avaliar a eficácia de aplicações CIDE fungicidas para o controle de Sclerotinia no fechamento da linha e em plena floração de inflorescências primárias.

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Materiais e Métodos

• Os experimentos foram conduzidos em campos de batata comerciais.

• Norte de Pasco, WA, em 2003, 2004 e 2005.• Campos diferentes foram usados a cada ano. • Os campos eram 53 ha de área irrigada com sistema de pivô central.• Batata semente certificada foi plantada de 23, até 25 cm de

espaçamento dentro de linhas e em 86 centímetros de espaçamento entre linhas em meados de março de cada ano.

• As cultivares foram Shepody em 2003 e 2005, e da guarda florestal Russet em 2004.

• Ambas as cultivares produzir copas densas e são suscetíveis a S. sclerotiorum.

• Tamanho da parcela foi de três linhas (2,6 m) de largura e 9,1 m de comprimento.

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Materiais e Métodos

• O produtor irrigou, manejou ervas daninhas e insetos, e cultivou a cultura de acordo com as práticas comerciais normais. No entanto, o produtor não aplicou fungicidas para controle de Sclerotinia à seção do campo que continha as parcelas experimentais.

• Fungicidas tiofanato-metilo em 1,176 kg ia / ha, fluazinam em 0,280 kg ia / ha, e boscalid em 0,336 kg ia / ha foram usados.

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Materiais e Métodos

• Os fungicidas e épocas de aplicação de fungicidas foram dispostos em um delineamento em blocos casualizados com quatro repetições.

• Fungicidas foram aplicados com um pulverizador pressurizado de CO2 a uma taxa de 281 litros de água / ha.

• A incidência da doença foi avaliada na linha do meio de cada parcela pela contagem do número de hastes com lesões 15 dias após a doença ser evidente nas parcelas.

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Materiais e Metodos

• Porcentagem de controle foi calculada - [(número médio de hastes com lesões do tratamento fungicida / número médio de hastes com lesões de controle não tratado) × 100].

• Dados de incidência da doença foram analisados por uma de duas vias de análise fatorial de variância em um delineamento em blocos casualizados utilizando PROC GLM em SAS.

• Os dados de cada um dos 3 anos de idade foram analisados separadamente.

• Protegido diferença mínima significativa de Fisher em α = 0,05 foi utilizado para comparar as médias dos tratamentos. Interações podem não ter sido detectado pelo programa SAS porque os tratamentos com fungicidas não foram equilibrados dentro de épocas de aplicação.

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Resultados:

• Sintomas da doença em hastes, presumivelmente de inóculo aéreo, foram evidentes em 17 de junho de 2003, em 22 de junho de 2004 e em 23 de Junho de 2005.

• A média de incidência da doença no controle não tratado foi de 44, 29 e 59 hastes infectadas por 9,1 m em 2003, 2004 e 2005, respectivamente.

• Tratamentos com fungicidas e de épocas de aplicação de fungicida teve uma variação significativa em cada um dos três anos.

• A eficácia dos fungicidas variou, em 2003 e 2005, dependendo do tempo de aplicação. Incidência de esclerodermia rotinia podridão foi menor (P <0,05), quando lotes foram tratados com fluazinam que com tiofanato-metilo no fechamento de linha em 2003, e com boscalid que com tio- phanate-metil em 10% de floração em 2003 ; e com boscalid no fechamento da linha, 10% de floração, e 70% de floração em 2005.

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Resultados:

• A incidência da doença não variou entre os três fungicidas, quando aplicado a 100% de floração em 2003, 2004 e 2005 ou quando aplicado no fechamento da linha.

• A incidência da podridão de Sclerotinia foi menos quando metil Tiofanato-ou fluazinam foi aplicado na folhagem da batata em plena floração do que quando aplicado no fechamento da linha ou não aplicada em 2003, e quando phanate tio- metil, fluazinam, ou boscalid foi aplicada à folhagem em plena floração do que quando aplicado no fechamento da linha ou não aplicadas em 2004 e 2005.

• Porcentagem de controle significa para os fungicidas combinados, em relação ao controle não tratado, foi de 43, 48 e 20% em 2003, 2004 e 2005, respectivamente, quando a aplicação foi feita no fechamento da linha.

• Incidência da doença para os fungicidas combinados não diferiu quando as aplicações foram feitas em 10% de floração, 100% de floração, e 10% de queda das inflorescencias em 2003.

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Discussão:

• Controle da podridão Sclerotinia foi significativamente melhorada quando fungicidas foram aplicados em plena floração , em comparação com aplicações ao fechamento da linha.

• Uma redução significativa de Sclerotinia foi observado no presente estudo quando aplicações foram feitas após a plena floração em comparação com a testemunha não tratada.

• Inóculo de S. sclerotiorum é abundante em plena floração de inflorescências primárias em muitos campos de batata na Bacia de Columbia.

• Apotecios imaturos geralmente começam a surgir em ou logo após o fechamento da linha na batata e campos vizinhos plantados para outras culturas na Bacia de Columbia, e o maior número de ascósporos de S. esclerotiorum foram capturados após o fechamento da linha e cerca de uma semana antes e alguns dias após o pleno florescimento.

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Discussão:

• Os fungicidas usados neste estudo, quando aplicado emplena floração, não variaram em eficácia, e todos os trêsefetivamente reduziram a podridão da Sclerotinia;

• Escleródios de S. sclerotiorum no solo podem contaminarpróximo a hastes pela superfície do solo antes da queda daflor, e os fungicidas foliares testadas neste estudo nãoseriam eficazes para conter estas infecções.

• O fluazinam fungicida foi registrada para a batata para atemporada de 2003, e boscalid foi registrada para a batataem 2004, e estes produtos têm ajudado na eficácia docontrole. No entanto, a época de aplicação de fungicida éparticularmente crucial para o controle efetivo.

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Referencias:1. Abawi, G. S., and Grogan, R. G. 1974. Asco- spores of Whetzelinia sclerotiorum as primary inoculumcausing white mold of beans in New York. (Abstr.) Phytopathology 64:578.2. Abawi, G. S., Polach, F. J., and Molin, W. T. 1975. Infection by ascospores of Whetzelinia sclerotiorum.Phytopathology 65:673-678.3. Atallah, Z. K., and Johnson, D. A. 2004. De- velopment of Sclerotinia stem rot in potato fields in south-central Washington. Plant Dis. 88:419-423.4. Atallah, Z. K., Larget, B., Chen, X., and John- son, D. A. 2004. High genetic diversity, pheno- typicuniformity, and evidence of outcrossing in Sclerotinia sclerotiorum in the Columbia Basin of WashingtonState. Phytopathology 94:737-742.5. Boland, G. J., and Hall, R. 1988. Epidemiol- ogy of Sclerotinia stem rot of soybean in On- tario.Phytopathology 78:1241-1245.6. Grau, C. R., and Radke, V. L. 1984. Effects of cultivars and cultural practices on Sclerotinia stem rot ofsoybeans. Plant Dis. 68:56-58.7. Keary, M. A. 1939. A study of certain species of the genus Sclerotinia. Ann. Appl. Biol. 26:227-246.8. Miller, T. D., and Miller, J. S. 2001. Sclerotinia white mold of potato. Pages 185-186 in: Proc. 2001Idaho Winter Commodity Schools, Aber- deen, ID.9. Morton, J. G., and Hall, R. 1989. Factors determining the efficacy of chemical control of white mold inwhite bean. Can. J. Plant Pathol. 11:297-302.10. Natti, J. J. 1971. Epidemiology and control of bean white mold. Phytopathology 61:699-674.

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Referencias:

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12. Pscheidt, J. W., and Ocamb, C. M., eds. 2002. Pacific Northwest Plant DiseaseManagement Handbook. Oregon State University, Corvallis.

13. Schwartz, H. F., Steadman, J. R., and Coyne, D. P. 1978. Influence of Phaseolus vulgarisblossoming characteristics and canopy struc- ture upon reaction to Sclerotinia sclerotiorum. Phytopathology 68:465-470.

14. Steadman, J. R. 1983. White mold – A serious yield-limiting disease of bean. Plant Dis. 67:346-350.

15. Struik, P C., and Wiersema, S. G. 1999. Seed Potato Technology. Wageningen Pers, Wagen- ingen, The Netherlands.

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OBRIGADO!

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