DORIS ZÚÑIGA DÁVILA

Laboratorio de

Ecología Microbiana y Biotecnología

Marino Tabusso, Dpto Biología

UNALM

dzuniga@lamolina.edu.pe

www.lamolina.edu.pe/lmt

Lima, 28-29 Noviembre 2013

Importancia de los microorganismos del suelo en la

seguridad alimentaria

Foro Seguridad alimentaria: Desafíos del futuro,

tareas del presente

NO2-

NO2-

NO3-

N2

N2

NO,

N2O

NH2

NH2

NH3 Óxico

Anóxico

2. Nitrificación

3. Desnitrificación

1. Fijación

de nitrógeno proteínas

proteínas

a) Inmovilización

b) Mineralización, amonificación

2a y 2b, ox. aeróbica, 2c, ox.anaeróbica

2b 2a

1. Fijación de

nitrógeno

2c

Volatilización, lixiviación

Ciclo del Nitrógeno

Nitrobacter Nitrosomonas

Pseudomonas

Bacillus y otros aerobios

facultativos

Clostridium pasteurianum

Cianobacterias

Rhizobium

Azotobacter

Beijerinckia

Bacterias del ciclo del nitrógeno

Nitrobacter

Pseudomonas

Bacillus y otros aerobios

facultativos

Clostridium pasteurianum

Nitrobacter

Pseudomonas

Bacillus y otros aerobios

facultativos

Cianobacterias

Rhizobium

Azotobacter

Beijerinckia

Clostridium pasteurianum

Nitrobacter

Pseudomonas

Bacillus y otros aerobios

facultativos

Etapas de la fijación biológica de nitrógeno

Estructura genética del regulon nif en

Klebsiella pneumoniae

Árbol filogenético

Ubicación de bacterias fijadoras de nitrógeno

circular Lineal

HO

Flavonoides

OH O

O

OH

N M L E F D A B C I J

D B L

C E A

Nod

Sym

Rhizobium

Fijación simbiótica

N2

O2 CO

2 Fotosintato

FLOEMA

XILEMA Mitocondria

Bacteroide

Glucosa PEP AOA malato PEPC MDH

AOA

aspartato PHB ATC RF

CITOSOL

ATC ATP

cetoácidos

aminoácidos

ATP e-

NH4 N2 N

NH4

LbO2

Lb

O2

CO2

ATC

Bacteroides

H Leghemoglobina

Según Dakora y Keya (1997)

Leguminosas de árboles 43-581 Kg N/ha

Leguminosas de grano 15-210 Kg N/ha

Sesbania sesban cultivado con cereales en una ha:

448 Kg N, 31 Kg P, 125 Kg K, 114 Kg Ca y 27.3

Kg Mg.

Ibewiro et al (2000)

Mucuna pruriens cultivado con Zea mays

P. vulgaris 24 - 65 Kg N/ha

v. soya 54 -248 KgN/ha

Nitrógeno fijado por diferentes cultivos

Factores: genética bacteria, genética planta,

medio ambiente, manejo agrícola

N químico 20 100

Haba FN 75% 65%

Garbanzo 30% 15%

Haba mucho mejor en un sistema de policultivo

Frijol holantao

Vicia faba

var. amarilla

Peso Verde

Peso Seco

Peso Seco

Número

CEPAS

Altura

Parte Aérea

Parte Aérea

Raíz

Nódulos

(cm)

(gr)

(gr)

(gr)

Le 1

35.00 A

3.13 AB

0.30 BCD

0.12 CDE

1.33

Le 2

36.00 A

3.57 AB

0.33 ABCD

0.12 CDE

1.67

Le 3

37.66 A

3.27 AB

0.34 ABCD

0.16 ABCD

1

Le 4

34.00 A

3.10 AB

0.28 BCD

0.21 A

1

Le 5

32.33 AB

3.36 AB

0.35 ABCD

0.21 A

1.33

Le 6

34.00 A

3.10 AB

0.33 ABCD

0.11 DE

1.33

Le 7

32.00 AB

3.90 A

0.39 AB

0.18 ABC

2.33

Le 8

33.66 A

3.23 AB

0.35 ABC

0.14 BCDE

2.33

Le 9

36.00 A

3.63 AB

0.17 E

0.09 EF

1.33

Le 10

31.66 AB

3.20 AB

0.30 BCD

0.14 BCDE

2

Le 11

34.00 A

3.70 AB

0.38ABC

0.18 AB

2.33

Le 12

35.00 A

3.97 A

0.38 A B

0.11 DE

0

Le 13

29.66 AB

3.23 AB

0.33 ABCD

0.13 BCDE

0

Le 14

30.00 AB

3.03 AB

0.26 CDE

0.12 DE

0

Le 15

32.33 AB

3.63 AB

0.32 ABCD

0.17 ABCD

1.33

Le 16

35.00 A

3.83 A

0.44 A

0.13 BCDE

0

Le 17

35.00 A

3.17 AB

0.33 ABCD

0.14 BCDE

0

Le 18

35.33 A

3.53 AB

0.32ABCD

0.13 BCDE

1

Le 19

35.00 A

4.00 A

0.38 AB

0.16 ABCD

1.67

Control

24.66 B

2.53 B

0.23 DE

0.05 F

0

Biodiversidad de cepas de Rhizobium que nodulan tréboles

en zonas altoandinas de Jauja

Análisis mecánico Cambiables

ClC Ca2+

Mg2+

K+ Na

+

Lugar C.E.

dS/m

Arena

%

Limo

%

Arcilla

% Textura

pH CaCO3

%

MO

%

P

ppm

K

ppm

cmol(+)kg

Al+3

+H+

me/100g

Acobamba 0.41 50 30 120 Franco 5.8 0.0 1.76 13 466 20.8 11.76 3.33 1.25 0.2 0.11

Pachacayo Franco 7.3 2.6 11.4 609

Lugar Altura

(msm)

T minima

(C0)

T máxima

(C0)

pp (mm/mes)

Acobamba 2500 8 22 0 - 500

Pachacayo 3600 -3.47 19.97 0 - 550.4

Características del suelo de Pachacayo (Jauja)

Clima de Pachacayo (Jauja)

Temperatura y precipitación ambiental en Jauja

Temperatura, pH y humedad del suelo en Jauja

0

Bacterias mesófilas

400

800

1200

Ene Mar May Jul Set Nov

Hongos totales

Con fósforo Sin fósforo

0

20

40

60

80

100

120

Ene Mar May Jul Set Nov

Rhizobium

0

100

200

300

Ene Mar May Jul Set Nov

Azotobacter

0

200

400

600

Ene Mart May Jul Set Nov

Plantas de trébol inoculadas con dos cepas de

Rhizobium en suelos de Pachacayo

Plantas de trébol inoculadas con dos cepas de

Rhizobium en suelos de Acobamba

Capacidad inhibitoria de diferentes cepas de Azotobacter sp sobre cinco

cepas sobre el crecimiento de diferentes cepas de Rhizobium,

(Rhizobium incorporación)

Tarwi

Frijol

Habas

A rvejas

Pallar

Garbanzo

Cultivo de P. lunatus

CEPA DE RHIZOBIUM EN AGAR

LEVADURA MANITOL

PRUEBA DE ACIDEZ EN AGAR

LEVADURA MANITOL CON AZUL DE

BROMOTIMOL

PRUEBA DE AUTENTICACION

DE LAS CEPAS DE

BRADY(RHIZOBIUM)

NODULOS FORMADOS POR

LA CEPA PSC4N2

EN LA AUTENTICACION

PRUEBA DE ANTIBIOTICO EN DISCO CRECIMIENTO A pH

8.8

DIFERENCIAS ENTRE UNA RAIZ SIN

NODULOS Y UNA RAIZ CON NODULOS

FORMADOS POR LA CEPA PSNC4N2 EN

RAIZ DE PALLAR CRIOLLO

COLORACION INTERNA DEL

NODULO

CEPA PSNC4N2

MORFOLOGIA

Codigos Muestreo Lugar pH C.E. Tamaño crecim. viraje texturaaparie. goma

1% 2% 3% 4% 8 37 40 4 5 8 9

PPC5N3Pampa de los CastillosLa Venta 7.71 1.26 2.5 mm. Rapido Ama int Lig Brill Reg 3 3 2 0 1 0 1 1 1 2 2

PCEBL2N2Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 4 mm. Rapido Ama int Crem Opa Reg 3 3 1 0 1 0 1 0 0 0 0

PLV4N2 Las viñas Ocucaje 7.51 1.17 4 mm. Rapido Amarillo Crem Opa Reg 3 3 2 2 1 2 1 0 0 3 2

PLV4N3 Las viñas Ocucaje 7.51 1.17 3 mm. Rapido Amarillo Crem L. Opa Reg 3 2 2 1 1 2 1 0 1 3 2

VB2N1 Venta Baja La Venta 7.52 1.26 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 0 0 0 1 1 1 0 1 2 2

PCEBL4N1Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 0 3 0 0 0 2 3

PCEBL3N3Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 0 2 0 0 0 2 2

PCEBL1N4Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 1 0 1 2 1 0 0 2 3

PCYGIVN3 Cayango Cayango 7.49 0.86 0.2 mm. Lento Azul te Crem Opa L. Abu 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0

PCEBL1N2San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Esc 1 1 0 0 1 2 1 0 0 2 2

VB2N3 Venta Baja La Venta 7.52 1.26 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 1 2 1 0 1 1 2

PSRG2N3Sector GodoyLa Venta 7.42 1.26 1 mm. Extralen Azul in Crem Opa Reg 2 2 2 1 0 0 1 0 0 2 2

PSNC2N3 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.1 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 0 0 0 0 0 1 1 1 1 2 2

PSNC4N3 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.1 - 0.2 mm.Extralen Azul in Crem Brill Esc 1 1 0 0 0 1 0 0 0 2 2

PTN1N1 Tambo Norte Ocucaje 7.32 0.39 0.1 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 1 0 0 0 0 1 1 0 0 2 2

PSNC4N2 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.5 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 2 2 2 1 0 2 1 0 0 2 2

PSC3N2 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.2 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 1 1 0 0 1 1 1 0 0 2 2

PSrG4N1(a)Sector GodoyLa Venta 7.42 1.26 0.2 mm. Extralen Azul in Lig Brill Esc 1 1 1 0 0 1 0 0 0 0 2

CUADRO DE CEPAS AISLADAS DE PALLARPRUEBAS BIOQUIMICAS

NaCl Temp. ph

Caracterización morfológica y bioquímica de las cepas de

Brady(Rhizobium) aisladas de pallar

o, no crecimiento 2, bueno

1, poco 3, abundante Ocucaje y Cayango: nodulos más grandes y más abundantes

N Codigo LMA Fenotipo del medio de cultivo Solub.Fosf

Tam Color Text C Halo

E1 BMP1Nod1 48h 1mm rosadas elástica + +

E5 BMP1Nod4-2 48h 3mm rosadas mucosa + +

E8 BMP2Nod4 48h 1mm rosadas mucosa + +

E10 FCCP1Nod2 48h 2mm rosadas mucosa + +

E13 FCCP2Nod2 48h 1mm rosadas mucosa + +

E14 FCCP2Nod3 48h 2mm rosadas mucosa + +

E15 FCCP2Nod4 48h 1y 2 d rosadas mucosa + +

E16 FCCP2Nod5- 48h 1y 2 d rosadas elástica + +

E17 FCCP3Nod1 48h 2mm rosadas mucosa + +

E18 FCCP3Nod2- 48h 2.5mm rosadas elástica 4+ 4+

E21 FCCP3Nod4 48h 2mm rosadas elástica 4+ 4+

E22 FCCP3Nod5 48h 0.5mm rosadas mucosa 3+ 3+

E26 AAP3Nod4-2 48h 2mm rosadas mucosa 3+ 3+

CIAT 899 R.tropici 48h 2mm rosadas mucosa 3+ +

CFN42 R.ettli 48h 2mm rosadas elástica 3+ 2+

Rhizobios aislados de tres variedades de P. vulgaris de La UNALM-Lima

E2 BMP1Nod2 24h 2mm Atorz/ros acuosas 2+ 5+

E3 BMP1Nod5 24h 3mm rosadas acuosas 2+ 4+

E4 BMP1Nod4-1 24h 3mm rosadas mucosa 2+ 2+

E6 BMP2Nod1 24h 4mm rosadas acuosas 4+ 2+

E7 BMP2Nod3 24h 4mm rosadas acuosas 4+ -

E9 FCCP1Nod1 24h 4mm rosadas acuosas 4+ -

E11 FCCP1Nod5 24h 2mm rosadas acuosas 4+ -

E20 FCCP3Nod3 24h 3mm rosadas acuosas + 2+

E27 AAP3Nod1-1 24h 3mm rosadas acuosas 3+ 3+

E28 AAP3Nod4 24h 3mm rosadas acuosas + 3+

PGPR? aislados de tres variedades de P. vulgaris de La UNALM-Lima

Análisis Molecular del gen 16S

Perfiles Eric, Box - PCR

Perfil Eric de diferentes bacterias aisladas de P. vulgaris

rhizobios CFN42

CIAT 899

Cepa (9) 3 4 6 7 9 11 20 27 28

P(7) A B C D E E1 F G

Cepa (11) 1 5 10 13 14 15 16 17 18 21 26

P(5)+3* A B C C D C D1 E C1 D2

Bacterias PGPR? 1Kb

Gen 16S

Gen rpoB

*Secuencias consenso repetidas intergénicas de enterobacterias

Arbol filogenético del

gen 16S

Bacterias PGPR?

Aisladas de P. vulgaris

AY738130 R lusitanum p1 7 D14501D01257 A rhizogenes IFO1

U89832 R tropici CIAT899 USDA9 U29386 R leguminosarum USDA237

U28916 R etli CFN42 USDA9032 U71078 R hainanense I66

AF364068 R indigoferae CCBAU71 Y10170 R sullae IS123 USDA4950

U89817 R mongolense USDA1844 U86343 R gallicum R602sp

AF003375 R yanglingense SH2262 AF364069 R loessense CCBAU7190

D11343 R galegae ATCC43677 AF025852 R huautlense SO2 E4

Y17047 R undicola LMG11875 D14502D01258 A vitis NCPPB3554

U86344 R giardinii H152 AY341343 R daejeonense L61 KCT

D14503D01259 A rubi IFO13261 D14500D01256 A tumefaciens NCP E20 E27 E6 E3, E11, E9 E28

X67229 M loti LMG6125 Y14158 M plurifarium LMG11892 D13431 M huakuii IFO15243

99

100

93

100

83

69

70

75

97

100

92

99

99

64

98

75

90

87

98 60

80

61

67

0.005

S1, S4, S5 S6 S13 S11

S22 R. leguminosarum USDA 2370

R. indigoferae R. etli CFN42T

E10, E18, E13, E15 E17 E16, E14, E26 E1 P2N3

R yanglingense CCBAU71623 R. gallicum R602sp R. mongolense USDA1844 R. loessense CCBAU7190B

A. rhizogenes Kag3 R. tropici CFN299

A. rhizogenes Chag4 R. huautlense SO2 E5

R. galegae R. undicola LMG11875

A. tumefaciens C58 R3, R5 R6

Mesorhizobium loti USDA3471

100

100

94

79

51

100

55

100

93

100

100

54

100

99

100

95

89

98

100

98

99

87

65

0.02

Arbol filogenético del

Gen rpoB V. faba

P. vulgaris

P. lunatus

Ormeño-Orrillo et al. (2006) Syst. Appl. Microbiol. 29: 253 – 262.

Perfil Box de cepas seleccionadas de

Bradyrhizobios aisladas de Barranca

Análisis tipo fingerprint o huella

genómica con alta reproducibilidad

encontrada en S. pneumoniae (secuencia

repetida conservada)

Caja:boxA, boxB y boxC, 59,45,50 pb

RESULTADOS PROMEDIOS DE LOS CARACTERES EVALUADOS EN EL

FRIJOL CANARIO CENTENARIO INOCULADOS CON CEPAS DE

RHIZOBIUM, APLICACIÓN DE BIOESTIMULANTES Y FERTILIZACIÓN .

Rhizobium y Rhizobium + bioestimulante a la floración presentaron

mayores rendimientos

Rhizobium y Bioestimulantes en prefloración y en floración alcanzaron mayores

valores de rentabilidad que el tratamiento químico – 5 -

RENTABILIDAD DE LOS TRATAMIENTOS EVALUADOS

Índice de rentabilidad en la arveja grano verde

T1 0 Kg N/ha (densidad alta)

T2 150 Kg N/ha (densidad alta)

T3 Inoculada (densidad alta)

T4 0 Kg N/ha (densidad baja)

T5 150 Kg N/ha (densidad baja)

T6 Inoculada (densidad baja)

T7 0 Kg N/ha (densidad media)

T8 150 Kg N/ha (densidad media)

T9 Inoculada (densidad media)

Rhizobium comparable al

N químico

Cultivos de Quinua en Ccopachullpa-Puno 2012

Muestreo - 2013

Efecto de las PGPRs en la germinación y el

contenido de nutrientes del cultivo de quinua

Var. Witulla, kankolla y salcedo

Cn plantas control,

C14, c25, c32 plantas inoculadas

Var, kankolla y salcedo

R rhizobios

Ac actinomicetos

Invernadero-la molina

Campo -Arequipa

G con bacterias psicrótrofa

Muestreo de rizosfera del

Cultivo de papa

Análisis

microbiológico

Aislamiento de Bacterias del género

Bacillus spp. Actinomycetos spp. Azotobacter spp. Pseudomona spp.

Control de fitopatógenos

1

2 3

4 5

6

Control de Rhizoctonia solani por cepas de Bacillus

Bacterias y control de fitopatógenos

National Botanical Research

Institute's phosphate growth

medium (NBRIP) Nautiyal C. S.

1999.

Solubilización de fosfato

Azotobacter

Hall et al., 1996 and Glick et al., 1998

Control negativo Control positivo

+

+

-

Produción de AIA

Pruebas de Promoción de crecimiento en invernadero

C

BA T1

C

BA T2

C BA

T3

C BA

T4

Variedad Unica

Variedad Yungay Variedad Canchan

Variedad Desiree

Variedad Yungay

0

5

10

15

20

25

Control

B.A

BacE

1a

Bac17M

8+

pe

so

(g

r)

Peso seco de tuberculo Peso seco planta

Variedad Canchan

0

5

10

15

20

25

30

Con

trol

B.A

Bac

C7M

1IB1

pe

so

(g

r)

Peso seco tuberculo Peso seco de planta

Peso de tubérculo y de la planta

Prueba de Tukey HSD

Perfil Box de cepas de Bacillus

Box-PCR

Total de cepas 20

Perfiles Box 8

Perfiles Erick 8

Plus 2g 2p 6 8 10 12 26 27 9 21 22 23 24 25 + 14 15 19 20 17 30

A A B C C C C C C1 C1 C1 C1 C1 C1 D E E E F G

DNA

1Kb

12000

2000

1650

1000

850

500

200

100

Eric-PCR A B C C C C C D C C C C C E F F F G H

Análisis tipo fingerprint o huella

genómica con alta reproducibilidad

encontrada en S. pneumoniae

(secuencia repetida conservada)

Caja:boxA, boxB y boxC, 59,45,50

pb

Conclusiones y recomendaciones Midis

• La finalidad del estudio es mostrar la distribución espacial de la vulnerabilidad a la inseguridad alimentaria a nivel distrital, provincial y departamental y usarlo como un instrumento de focalización geográfica, por ejemplo; para priorizar proyectos en seguridad alimentaria y nutrición infantil.

• Es importante la difusión de esta información

• Utilizar las nuevas TIC, para implementar sistemas informáticos que recopilen datos sobre inseguridad alimentaria y desnutrición crónica infantil, incluyendo a los lugares más alejados y rurales del país. Esta forma de trabajo, permitirá monitorear permanentemente sobre los éxitos o fracaso en este campo.

• Actualizar el presente instrumento de focalización con los datos del nuevo Censo Agropecuario

Universidad Nacional

San Cristóbal de Huamanga

Universidad Nacional

Agraria La Molina

Universidad Nacional

de Cajamarca

Universidad Nacional

San Agustín de Arequipa

Universidad Nacional

Pedro Ruiz Gallo

Instituciones que producen inoculantes

Amazonía

Andes

Costa

Universidad Nacional Agraria

de la Selva, Tingo María

Estación Ecológica de Andahuaylas (micorrizas)

IDEMA, Instituto de Defensa del Medio Ambiente Azotolam y Rizolam

Rizomack

Rizocaj

Ecorizo

Control de calidad de inoculantes

comercializados

•Instituciones recomiendan:

Soporte sólidos* y líquidos

•Control Microbiológico •Control físico químico

Recuento de heterótrofos Ph

Recuento de mohos y

levaduras

CE

Recuento de actinomycetos Humedad

Recuento de Escherichia coli Metales pesados*

Anaerobios totales otros

Recuento de Rhizobium,

Azotobacter, según el caso

NMP de Rhizobium en plantas

Análisis Moleculares

Plásmidos simbióticos

Perfiles Box

Definición de parámetros

Para límites permisibles

Mínimos para Rhizobium

108 cel/ml o 108 cel/ g

Máximos para el resto de mo.

Interacción del inoculante con otros

productos

NORMATIVA EN BRASIL, URUGUAY Y

ARGENTINA, EN PERU INSIPIENTE

20%

9%

13%

37%

9%

12%

0

5

10

15

20

25

30

35

40

Productos Biológicos

- Bacterias

Productos Biológicos

- Hongos

Productos Biológicos

- extractos vegetales

Bioestimulantes Feromonas Otros

Bacterias: Bacillus thurigiensis, B. subtilis Hongos: Trichoderma spp., Paecilomyces lilacinus

Extractos vegetales: aceites de ricinus, ficus Bioestimulantes: Giberelinas, Auxinas

Feromonas: Gossyplure Otros: Ác. Ascórbico, quitosano, etc.

PLAGUICIDAS BIOLOGICOS DE USO AGRICOLA REGISTRADOS EN SENASA - 2013

PQ, 545

PB, 250

Conclusiones

• Según la Dra Hungría , se aproxima una década de oro para la microbiología del suelo en la industria, agricultores y la sociedad.

• Para el 2040, 2 billones de personas necesitan ser alimentadas, pero a su vez el mapa concetración demografica coincide con el mapa de degradación de suelos, tornandose mas critico la producción de alimentos en lugares mas vulnerables.

• El consumo de fertilizantes es cuantioso, 173 millones de toneladas y sigue creciendo, y resulta muy costoso para los paises que lo importan.

• Hay contribuciones significativas por Arachis, Censtrosema, Desmodium y Lupinus por ej, entre 200 a 520 kg de N ha. Por ello las bfn son fundamentales en la agricultura.

• Todos estos estudios nos permite hacer una selección integral de las mejores cepas bacterianas capaces de promover el crecimiento de la planta aun en condiciones de estres para una aplicación en el campo.

• Se han encontrado respuestas positivas en cultivos de frijol, pallar, papa, maca, aguaymanto, quinua entre otros, aplicando inoculantes microbianos.

• Los parámetros mejorados son, rendimiento, materia seca, contenido de nutrientes, acido arcorbico, glucosinolatos.

• También baja la incidencia de daño causado por agentes fitopatógenos, Rhizoctonia, Fusarium, nematodes entre otros.

• Los microorganismos claves funcionan en condiciones de estres por frio, deficiencia de humedad, suelos salinos, entre otros.

• formulación de un biofertilizante/controlador biológico que sea económico cuyo uso este orientado hacia la agricultura sustentable y aplicable en diferentes regiones del pais.

• Talleres de capacitación y difusion con los

agricultores

• Trabajo integrado de todos los actores para

la seguridad alimentaria a corto, mediano y

largo plazo

Instituciones Internacionales

•CCG, U Nacional Autónoma de México, Cuernavaca-México, Dra. E.

Martínez.

•Universidad de Salamanca. España, Dra. E. Velásquez.

•CSIC, Granada España, Dr. J. Sanjuan

•U Central de Venezuela, Dra. M. Toro

•CERELA, Tucumán – Argentina. Dra. Graciela Vignolo

Instituciones Nacionales

. UNALM Programa de tuberosas, Programa de leguminosas, Ind.

Alimentarias

. INIA-Ministerio de Agricultura, Estación Experimental Ilpa-Puno.

. UNSLGIca

Otros: Ecoandino SAC, AA Ica, AA Ocucaje, AA Aymara

Colaboraciones, Redes

Redes: BIOFAG, Cyted-España, Comclara-Alice2

R Peruana de Biofertilizantes, Concytec-UNALM

Publicaciones en Libros

2012. Manual de Microbiología Agrícola. Rhizobium, PGPRs, indicadores de

fertilidad e Inocuidad. D. Zúñiga Dávila. Universidad Nacional Agraria La

Molina.

2011. Microorganisms in Industry and Environment. D. Zúñiga Dávila, J.

Tolentino Macalupú, M. García Wong, W. Pérez Porras, M. Matsubara Bautista,

L. Ramos Pajuelo & K. Ogata. Characterization of rhizospheric bacteria isolated

from maca (Lepidium meyenii W.) in the highlands of Junin-Peru. From scientific

and industrial research to consumer products. Antonio Mendez Vilas (ed) World

Scientific Pub Co. Chapter: 21-25.

2011. Microorganisms in Industry and Environment. D. Yino Oshiro, L.

Ramos Pajuelo, M. Matsubara Bautista, L. Espinoza Melgar and D. Zúñiga

Dávila. Effect of different rhizospheric bacterias in the growth of Gossypium

barbadense L. in Perú. From scientific and industrial research to consumer

products. Antonio Mendez Vilas (ed) World Scientific Pub Co. Chapter: 41-44.

• 2010. Annals of Applied Biology. 157: 259-271. Oswald A, Calvo P, Zúñiga D, Arcos J. 2010. Evaluating soil rhizobacteria for their ability to enhance plant growth and tuber yield in potato

• 2010. Braziliam Journal of Microbiology 41: 899-906. Calvo, P. Ormeño, E. Martínez, E., Zúñiga, D. 2010. Characterization of Bacillus isolates of potato rhizosphere from Andean soils of Peru and their potential PGPR characteristics.

• 2010. Biological Nitrogen Fixation and Plant Associated Microorganisms. Ogata K, Lorite M J, Sanjuan J, Zúñiga D. Growth and motility of plant growth promoting rhizobacteria isolated from maca rhizophere. In XIII Sefin. 15 18 June. Ed. M Becana. Zaragoza. Spain. Pag 35-36.

• 2010. Ecología Aplicada 9: 31-39. Calvo, P. y Zúñiga, D. 2010. Caracterización bioquímica y fisiológica de cepas de Bacillus spp. aislados de la rizosfera de papa (Solanum tuberosum).

• 2009. Archives of Microbiology 191: 659 – 668. Alvarez-Martinez, E; Valverde, A; Ramirez-Bahena, M; Garcia-Fraile, P; Tejedor, C; Mateos, P; Santillana, N; Zúñiga, D; Peix, A; Velázquez, E. 2009. The analysis of core and symbiotic genes of Vicia sativa and Vicia faba rhizobial endosymbionts from different continents reveals their common phylogenetic origin and suggests the distribution of R. leguminosarum strains together with Vicia seeds in the world.

• 2008. Ecología Aplicada 7: 141-148. Calvo, P., Reymundo, L. y Zúñiga, D.. Estudio de las Poblaciones Microbianas de la rizosfera del cultivo de papa (Solanum tuberosum) en zonas altoandinas.

• 2008. Ecología Aplicada 7: 131-139. Ramos, E. y Zúñiga, D. Efecto de diferentes inoculantes sobre la actividad microbiana en la rizósfera del cultivo de pallar (Phaseolus lunatus var. sieva) en condiciones de campo.

Publicaciones en Revistas Científicas

Tesis de Biología

P Calvo, N Kohashikawa, C la Torre, M García, W Pérez, J Tolentino, L

Ramos, C Arango, P Ortiz, C Ayaipoma, J. Mayo.

Tesis de Maestría y Doctorado

E Ramos, M. Memenza, M Matsubara, K Ogata, R Santos

N Santillana, J Arcos, L Reymundo, L Espinoza,

Proyectos

Procyt-Concytec, Especial-Concytec, Protec-Concytec, Procom-Concytec

L’oreal-Unesco-Concytec, Proyecto bilateral CSIC- Concytec, Proyecto

bilateral Mincyt – Concytec, Proyecto Fincyt, Proyecto Fidecom

Profesores

UNALM: Dra. C. Velezmoro, Dr. F. Camarena, Biol. K. Ogatta Ing. R.

Egúzquiza, Dr. F. Camarena, Ing. A. Huaringa, A. Mostaceros

Proyectos de Investigación

Muchas Gracias