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UNIVERSIDADE FEDERAL DA BAHIA

INSTITUTO DE CIÊNCIAS DA SAÚDE

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM PROCESSOS

INTERATIVOS DOS ÓRGÃOS E SISTEMAS

MÁILLA REBOUÇAS VIANA

ANÁLISE CITOGENÉTICA E MOLECULAR (FISH) DE

PACIENTES COM LEUCEMIA MIELÓIDE CRÔNICA EM

TERAPIA COM INIBIDORES DE TIROSINO QUINASE NO

ESTADO DA BAHIA

Salvador

2012





ESTADO DA BAHIA

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-

Graduação em Processos Interativos dos Órgãos e

Sistemas, Instituto de Ciências da Saúde, Universidade

Federal da Bahia, como requisito para obtenção do grau

de Mestre.

Orientadora: Prof. Dr. Roberto José Meyer Nascimento

Co-Orientadora: Dra. Maura Alice Santos Romeo

Salvador

2012

Ficha Catalográfica elaborada pela

Biblioteca do Hospital Universitário Professor Edgard Santos-HUPES-Salvador-

Bahia

V 614 Viana, Máilla Rebouças,

Análise Citogenética e Molecular (FISH) de pacientes com Leucemia

Mielóide Crônica em terapia com Inibidores de tirosino quinase no Estado da Bahia /

Máilla Rebouças Viana: Salvador, 2012.

74f.

Orientadora: Prof. Dr. Roberto José Meyer Nascimento

Co-Orientadora: Dr.ª Maura Alice Santos Romeo

Dissertação (Mestrado em Processos Interativos dos Órgãos e Sistemas)

Universidade Federal da Bahia, Instituto de Ciências da Saúde, 2012.

1. Leucemia mielóide crônica 2. Citogenética. 3. Hibridização in situ

fluorescente. 4. Cromossomo Philadelphia. I. Nascimento, Roberto José Meyer. II.

Romeo, Maura Alice Santos. III. Universidade Federal da Bahia. IV. Título.

CDU: 616.155.392





ESTADO DA BAHIA

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-Graduação em Processos Interativos dos

Órgãos e Sistemas, Instituto de Ciências da Saúde, Universidade Federal da Bahia,

UFBA:

BANCA EXAMINADORA

Prof. Dr. Roberto José Meyer Nascimento_____________________________________

Doutor em Imunologia pela Universidade Federal da Bahia-UFBA,

Salvador, Brasil

Universidade Federal da Bahia

Prof. Dr. Bruno Antônio Veloso Cerqueira____________________________________

Doutor em Patologia Humana pelo Centro de Pesquisa Gonçalo Moniz-FIOCRUZ,

Salvador, Brasil

Universidade Estadual de Santa Cruz

Dra. Carla Valladares Vignal_______________________________________________

Doutora em Medicina (Hematologia) pela Universidade Federal de São Paulo/Escola

Paulista de Medicina-UNIFESP/EPM, São Paulo, Brasil

HEMOBA- Fundação de Hematologia e Hemoterapia da Bahia

Aos pacientes com câncer, especialmente Leucemia

Mielóide Crônica, que suportam a doença e

entendem a importância de estudos como esse,

apesar de todo sofrimento.

AGRADECIMENTOS

A Deus que sempre guia meus passos e prepara meus caminhos.

Ao meu orientador Prof. Dr. Roberto José Meyer Nascimento.

A minha co-orientadora Dra. Maura Alice Santos Romeo, pela paciência, compreensão,

disponibilidade e pelo apoio, fundamentais para todas as etapas e conclusão desse

estudo.

Ao apoio de uma excelente profissional, Sissi Carneiro, cuja colaboração foi de

fundamental importância para o desenvolvimento desse trabalho.

A minha mãe, Marlene Rebouças, essencial para o meu sucesso sempre e que com

muito carinho, apoio e dedicação, não mediu esforços para que eu vencesse essa e todas

as outras etapas da minha vida.

Ao meu segundo pai, Paulo Gomes, que sempre fez o possível, com muita dedicação,

para que eu chegasse aonde cheguei.

Ao meu pai, Jânio Viana e minha irmã, Jéssica Rebouças, que sempre apoiaram minhas

decisões.

A Rodrigo Laudano, meu companheiro, e toda sua família, pelo apoio e incentivo nos

momentos de desânimo.

A Marcos Silva e Bruno Bastos, pela ajuda fundamental.

A equipe da citogenética do Serviço de Genética Médica do Hospital Universitário

Professor Edgar Santos-HUPES pela ajuda na conclusão deste trabalho.

Ao Prof. Roberto Paulo, aos professores e funcionários do Programa de Pós-Graduação

em Processos Interativos de Órgãos e Sistemas, da UFBA, por me auxiliarem na

resolução de problemas e pela oportunidade de crescimento acadêmico e pessoal.

Aos meus queridos colegas de Pós-Graduação em Processos Interativos de Órgãos e

Sistemas, obrigada pelo aprendizado compartilhado, amadurecimento pessoal e

principalmente por ter tornado essa fase muito mais agradável.

E, sobretudo aos pacientes com câncer que, além de contribuírem com a realização da

pesquisa, tornaram-se uma inspiração para toda vida. Um especial agradecimento a uma

grande amiga, Renata Dias, que com sua força conseguiu vencer essa doença e foi a

principal responsável pela minha iniciativa de desenvolver esse trabalho.

Muito Obrigada.

VIANA, Máilla Rebouças. Análise Citogenética e Molecular (FISH) de Pacientes

com Leucemia Mielóide Crônica em Terapia com Inibidores de Tirosino Quinase

no Estado da Bahia. 74f. 2012. Dissertação (Mestrado) - Instituto de Ciências da

Saúde, Universidade Federal da Bahia, 2012.

RESUMO

INTRODUÇÃO: A Leucemia Mielóide Crônica (LMC) é uma doença

mieloproliferativa crônica caracterizada pela presença do cromossomo Philadelphia

(Ph). Este cromossomo, observado por técnicas citogenéticas convencionais, é

resultante da translocação t(9;22)(q34;q11) que justapõe o rearranjo BCR-ABL,

observado por técnicas moleculares. A detecção desse cromossomo ou do rearranjo é

fundamental, pois não somente contribui para o diagnóstico, mas também interfere no

acompanhamento e no sucesso da terapia utilizada. O rearranjo BCR-ABL possui

atividade tirosina quinase elevada, o que levou ao desenvolvimento de novos fármacos

inibidores desta ação, conhecidos como inibidores de tirosino quinase (TKI).

OBJETIVO: O objetivo deste estudo foi demonstrar a importância da utilização da

técnica de citogenética molecular (Fluorescent in situ Hybridization - FISH) aliada a

citogenética clássica no monitoramento de pacientes com LMC em terapia com TKI, no

Estado da Bahia. METODOLOGIA: Foram analisadas amostras de medula óssea de

20 pacientes com LMC, em tratamento com TKI, encaminhados ao Serviço de Genética

Médica do Hospital Universitário Prof. Edgard Santos, utilizando as técnicas de

citogenética clássica e FISH. RESULTADOS: Resultados obtidos demonstraram que o

cromossomo Ph foi observado em 15%, com a citogenética clássica, e o rearranjo BCR-

ABL em 90%, com a citogenética molecular. Outro ponto importante foi que em alguns

casos o resultado só foi possível com a técnica molecular, pois a técnica convencional

não foi suficiente pela impossibilidade na análise das metáfases, devido a fatores como

falta de crescimento celular. CONCLUSÃO: A técnica de FISH demonstrou maior

sensibilidade nos casos que a citogenética clássica não detectou o cromossomo Ph,

entretanto as duas técnicas foram fundamentais para os resultados obtidos por

apresentarem vantagens e desvantagens em relação à outra e, portanto, devem ser

usadas de maneira complementar no monitoramento de pacientes com LMC em

tratamento com TKI.

PALAVRAS-CHAVE: Leucemia Mielóide Crônica; Citogenética; Fluorescent in situ

Hybridization; Cromossomo Philadelphia.

VIANA, Máilla Rebouças. Molecular and Cytogenetic Analysis (FISH) of Patients

with Chronic Myeloid Leukemia in the Tyrosine Kinase Inhibitor Therapy in the

State of Bahia. 74f. 2012. Thesis (MA) - Institute of Health Sciences (ICS), Federal

University of Bahia (UFBA), 2012.

ABSTRACT

INTRODUCTION: Chronic myeloid leukemia (CML) is a chronic myeloproliferative

disorder characterized by the presence of the Philadelphia chromosome (Ph). This

chromosome, observed by conventional cytogenetic techniques, is the result of a

translocation t (9;22) (q34;q11) that juxtaposes the BCR-ABL rearrangement, observed

by molecular techniques. The detection of chromosome rearrangement or is critical

because not only contributes to diagnosis but also interfere with the monitoring and the

success of the therapy. The rearrangement BCR-ABL tyrosine kinase has a high

activity, which led to the development of new drugs that inhibit this action, known as

tyrosine kinase inhibitors (TKI). OBJECTIVE: The target of this study was to

demonstrate the importance of using the technique of molecular cytogenetic

(Fluorescent in situ Hybridization - FISH) combined with classical cytogenetic for

monitoring patients with CML TKI therapy in the State of Bahia. METHODS: We

analyzed bone marrow samples from 20 patients with CML treated with TKIs, referred

to the Division of Medical Genetics, University Hospital Prof. Edgard Santos, using the

techniques of classical cytogenetic and FISH. RESULTS: The results showed that the

Ph chromosome was observed in 15%, with classical cytogenetic and BCR-ABL

rearrangement in 90%, with molecular cytogenetic. Another important point was that in

some cases the result was only reached with the molecular technique, because the

conventional technique was not sufficient for the analysis of metaphases’ impossibility,

due to factors such as lack of cell growth. CONCLUSION: The FISH technique

demonstrated a greater sensitivity in cases that classical cytogenetic analysis have failed

to detect the Ph chromosome, however both techniques were key to achieve the results

because those techniques have advantages and disadvantages over the other and,

therefore should be used as a way additional monitoring of CML patients treated with

TKI.

KEYWORDS: Chronic Myeloid Leukemia; Cytogenetic; Fluorescent in situ

Hybridization; Chromosome Philadelphia.

LISTA DE ILUSTRAÇÕES

Figura 1 Ideograma dos cromossomos humanos ....................................................... 17

Figura 2 Princípios básicos da técnica de FISH ........................................................ 19

Figura 3 Esquema representativo da sonda LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans

CML, ALL) ................................................................................................ 20

Figura 4 Mecanismo de ação do imatinibe ................................................................ 29

Figura 5 Preparação da amostra para realização dos exames citogenéticos clássico

e molecular (FISH) ..................................................................................... 38

Figura 6 Passos para o resultado na citogenética clássica ......................................... 40

Figura 7 Passos para o resultado na citogenética molecular (FISH) ......................... 41

Figura 8 Variáveis clínicas dos pacientes positivos na técnica clássica ................... 44

Figura 9 Variáveis clínicas dos pacientes positivos na técnica molecular ................ 45

Figura 10 Tempo de uso do TKI nos 20 pacientes do estudo .................................... 49

Figura 11 Evolução citogenética e terapêutica dos pacientes do estudo ................... 49

Figura 12 Comparação entre os resultados das técnicas clássica e molecular

(FISH). Teste X2 ......................................................................................... 51

Figura 13 Percentual de alterações nas técnicas citogenéticas. Teste de Mann-

Whitney ....................................................................................................... 53

Figura 14 Ilustração do cariótipo de um caso normal ................................................. 53

Figura 15 Ilustração do cariótipo de um caso alterado, paciente com t(9;22) ........... 54

Figura 16 Ilustração do cariótipo de um caso alterado, paciente com trissomia do

cromossomo 8 ............................................................................................. 54

Figura 17 Ilustração da FISH com sonda a LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans.

Em A e B, casos normais com presença de dois sinais vermelhos e dois

sinais verdes ................................................................................................ 55

Figura 18 Ilustração da FISH com sonda a LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans.

Em C e D, casos alterados com uma fusão representando a t(9;22), um

sinal verde e um sinal vermelho ................................................................. 55

LISTA DE TABELAS

Tabela 1 Dados clínicos dos pacientes ........................................................................ 43

Tabela 2 Citogenética clássica ao diagnóstico, inibidor de TK ao diagnóstico e o

tempo de uso................................................................................................. 46

Tabela 3 Inibidor de TK no estudo e Citogenética Clássica após uso do TKI ............ 47

Tabela 4 Causas para mudança da terapia em alguns pacientes do estudo................. 48

Tabela 5 Resultados da análise da citogenética molecular (FISH) ............................. 50

Tabela 6 Frequência de metáfases submetidas ao bandamento G com t(9;22)(q34;q11)

e frequência de núcleos com o rearranjo BCR/ABL detectados por FISH .. 52

LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS

AT Adenina/ Timina

ATP Trifosfato de adenosina

CEP Comitê de Ética em Pesquisa

CG Citocina/ Guanina

CGH Comparative genomic hybridization

COM-HUPES/UFBA Complexo Hospital Universitário Edgard Santos/

Universidade Federal da Bahia

DAPI 4',6-diamidino-2-phenylindole

DNA Ácido Desoxirribonucleico

FISH Fluorescent in situ Hybridization

FITC Fluorescein isothiocyanate

GVL Graft-versus-leukemia effect

HLA Antígenos Leucocitários Humanos

IFN-α Interferon-α

KD kilodalton

LMC Leucemia Mielóide Crônica

PBS Phosphate-buffered solucion

PCR Polymerase Chain Reaction

Ph Cromossomo Philadelphia

RCC Resposta Citogenética Completa

RT-PCR Reverse transcriptase- Polymerase chain reaction

SAME Serviço de Arquivo Médico e Estatístico

SSC Saline Sodium Citrate

TA Temperatura Ambiente

TKI Inibidores de Tirosino quinase

TMO Transplante de Medula Óssea

TLCE Termo Livre de Consentimento Esclarecido

UV Ultravioleta

http://en.wikipedia.org/wiki/Comparative_genomic_hybridization

SUMÁRIO

1 INTRODUÇÃO ...................................................................................................... 13

2 REVISÃO DE LITERATURA .............................................................................. 15

2.1 CITOGENÉTICA .............................................................................................. 15

2.1.1 Citogenética Clássica .................................................................................. 16

2.1.2 Citogenética Molecular (FISH).................................................................... 18

2.2 LEUCEMIA MIELÓIDE CRÔNICA (LMC) .................................................... 21

2.2.1 Incidência.................................................................................................... 23

2.2.2 Diagnóstico ................................................................................................. 23

2.2.3 Fases da Doença .......................................................................................... 24

2.2.4 Tratamento .................................................................................................. 25

2.2.5 Resposta ao Tratamento .............................................................................. 26

2.3 INIBIDORES DA TIROSINO QUINASE (TKI) ............................................... 28

2.3.1 Imatinibe ..................................................................................................... 28

2.3.2 Dasatinibe ................................................................................................... 31

2.3.3 Nilotinibe .................................................................................................... 31

2.4 RELEVÂNCIA ................................................................................................. 32

3 OBJETIVOS .......................................................................................................... 33

3.1 OBJETIVO GERAL .......................................................................................... 33

3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ............................................................................. 33

4 METODOLOGIA .................................................................................................. 34

4.1 CASUÍSTICA ................................................................................................... 34

4.2 CRITÉRIOS DE INCLUSÃO ............................................................................ 34

4.3 CRITÉRIOS DE EXCLUSÃO........................................................................... 35

4.4 COLETA DE DADOS....................................................................................... 35

4.5 ASPECTOS ÉTICOS ........................................................................................ 35

4.5.1 Termo de Consentimento Livre e Esclarecido .............................................. 35

4.5.2 Aprovação pelo Comitê de Ética em Pesquisa (CEP) ................................... 35

4.6 PREPARAÇÃO DA AMOSTRA ...................................................................... 36

4.6.1 Cultura Celular ............................................................................................ 36

4.6.2 Hipotonização Celular ................................................................................. 37

4.6.3 Fixação Celular ........................................................................................... 37

4.7 PREPARAÇÃO DA LÂMINA .......................................................................... 38

4.7.1 Lâminas para Citogenética Clássica ............................................................. 38

4.7.2 Lâminas para Citogenética Molecular (FISH) .............................................. 40

4.8 ANÁLISES ESTATÍSTICAS ............................................................................ 42

4.8.1 Teste X2 ...................................................................................................... 42

4.8.2 Teste de Mann-Whitney .............................................................................. 42

5 RESULTADOS ...................................................................................................... 43

5.1 RESULTADOS DA CITOGENÉTICA CLÁSSICA .......................................... 53

5.2 RESULTADOS DA CITOGENÉTICA MOLECULAR (FISH)......................... 55

6 DISCUSSÃO .......................................................................................................... 56

7 CONCLUSÃO ........................................................................................................ 60

REFERÊNCIAS ..................................................................................................... 61

APÊNDICE ............................................................................................................ 67

ANEXO................................................................................................................... 72

13

1 INTRODUÇÃO

A importância da citogenética no diagnóstico e monitoramento das neoplasias onco-

hematológicas tem uma história relevante, principalmente na Leucemia Mielóide

Crônica (LMC), por ter sido a primeira patologia relacionada a uma alteração

cromossômica específica (JAMIESON, 2008). Essa alteração, que atinge a célula

progenitora e está presente em 95% dos pacientes com LMC, ocorre a partir da

translocação entre os cromossomos 9 e 22, t(9;22)(q34;q11), resultando no cromossomo

Philadelphia (Ph), caracterizado pela técnica da citogenética clássica (VENDRAME-

GOLONI et al., 2006).

A citogenética clássica também tem grande utilidade quando muitas alterações estão

presentes, possibilitando uma visão global do genoma. Por esse motivo o

monitoramento por essa técnica é fundamental tanto ao diagnóstico quanto nas fases

mais avançadas da LMC, como na fase acelerada e crise blástica. A citogenética

clássica permite avaliar um novo Ph, a trissomia de 8, o isocromossomo do braço longo

do 17, a trissomia do 19 e a nulissomia do Y, os quais estão associados a um pior

prognóstico. Esse acompanhamento é essencial para determinar a conduta terapêutica

mais correta, além de demostrar a evolução desse paciente (ALVARENGA et al.,

2010).

A translocação que origina o cromossomo Ph envolve a junção da região do gene BCR

no cromossomo 22 com a região do gene ABL no cromossomo 9, gerando o rearranjo

BCR-ABL (ABREU e LOPES, 2009). Esse rearranjo, um gene híbrido, é responsável

pelo estímulo da proliferação celular através da produção de uma proteína com

atividade tirosina quinase elevada, uma das principais características da LMC

(CHAUFFAILLE, 2010).

Em 5-10% dos casos, translocações variantes ou rearranjos críticos estão presentes e são

necessárias outras técnicas para identificar a presença da fusão gênica BCR/ABL.

Nesses casos a citogenética molecular, por ser mais sensível que a clássica, torna-se

fundamental. Uma técnica molecular muito utilizada é a Fluorescent in Situ

Hybridisation (FISH), que ao empregar sonda específica para a região do rearranjo, é

14

capaz de detectá-lo em aproximadamente 100% dos casos (VENDRAME-GOLONI et

al., 2006).

O reconhecimento da importância da desregulação da atividade tirosina quinase,

decorrente do BCR-ABL, levou ao desenvolvimento de novos fármacos inibidores desta

ação, conhecidos como inibidores de tirosino quinase (TKI) (QUINTÁS e CORTES,

2009). Com essa descoberta o tratamento avançou nos últimos anos de maneira

considerável e mudou drasticamente a terapia convencional, demonstrando resultados

promissores (JABBOUR et al., 2007).

O acompanhamento clínico e citogenético são condutas críticas para uma melhor

evolução das pessoas acometidas pela LMC. No presente estudo foi estimada a

importância do uso das duas técnicas citogenéticas, a clássica e a molecular (FISH), no

monitoramento de pacientes com LMC em terapia com TKI no Estado da Bahia,

atendidos no Serviço de Genética do Complexo Hospital Universitário Edgard Santos

/Universidade Federal da Bahia (COM-HUPES/UFBA).

15

2 REVISÃO DE LITERATURA

2.1 CITOGENÉTICA

A citogenética estuda a constituição genética da célula através dos cromossomos, sua

função, estrutura, composição e seu papel tanto na evolução quanto no desenvolvimento

de doenças (MONTENEGRO e SANTOS e VEITH, 2008). Os cromossomos foram

observados inicialmente por Strasburger em 1875, a partir de células vegetais (LAWCE

e BROWN, 1997). As descobertas seguintes foram importantes para o desenvolvimento

de técnicas de cultura, impulsionando trabalhos como o de Tjio e Levan, 1956, que

determinou o número exato dos cromossomos humanos em 46 (CONNOR e

FERGUNSON-SMITH, 1984; MITELMAN, 1995).

Dentre essas descobertas sobre as técnicas de cultura, observou-se uso da colchicina, um

inibidor mitótico que interrompe o complexo centríolo/fibras do fuso acromático,

interferindo na formação dos microtúbulos e induzindo a interrupção mitótica. A

ausência de fibras do fuso permite que os cromossomos permaneçam na fase de

metáfase, facilitando a análise (MORTON, 1994).

Esses estudos ainda permitiram o desenvolvimento de um processo fundamental, a

fixação celular, que tem como principal função remover a água intracelular,

preservando-as, uma vez que endurece as membranas e a cromatina (CLOUSTON,

2001). Essa etapa é realizada com a solução Carnoy, ou fixador, e prepara os

cromossomos para o processo de bandeamento, extraindo proteínas histonas e

facilitando o contato do material genético com o corante (LAWCE e BROWN, 1997).

Outra descoberta importante foi a hipotonização, etapa que utiliza uma solução salina

com concentração inferior a do citoplasma celular, possibilitando a movimentação de

água por osmose para o interior das células. As células tornam-se túrgidas, o que ajuda

na dispersão dos cromossomos e no espalhamento da metáfase, sendo uma etapa crítica

na preparação da amostra para a análise citogenética (BARCH et al., 1997). Em 1959

foi demonstrada a importância da fito-hemaglutinina, que também revolucionou o

16

estudo dos cromossomos, pois tornou possível sua análise a partir de linfócito

(MOOREHEAD et al., 1960; NOWELL et al., 1960).

Em 1960, Nowell e Hungerford observaram uma anormalidade do cromossomo 22 nas

células da medula óssea de pacientes com LMC, que ficou conhecido como

cromossomo Philadelphia (Ph). Outro avanço sobre o tema nesse mesmo ano, foi a

criação de um sistema comum de nomenclatura que determinava a classificação dos

cromossomos em sete grupos, de A a G, baseado no tamanho decrescente dos mesmos e

na posição do centrômero (ISCN, 2009).

Em 1968, Caspersson e colaboradores, identificaram um padrão de bandas que

diferenciava os cromossomos, facilitando ainda mais a visualização desses elementos.

Em alguns casos as alterações ainda eram de pouca visualização e isso dificultava a

identificação somente através das bandas. A necessidade de técnicas mais sensíveis e

refinadas levou ao desenvolvimento da citogenética molecular (SMEETS, 2004).

Em 1973, Rowley demonstrou que o cromossomo Ph era resultado de uma translocação

recíproca entre os cromossomos 9 e 22 (DEININGER et al., 2007), achado fundamental

para impulsionar de vez o estudo da LMC (BEJJANI e SHAFFER, 2008). Nos dias

atuais, a citogenética tem inúmeras aplicações desde o diagnóstico até a definição ou

mudança da terapia utilizada na LMC, sendo fundamental desde o diagnóstico até o

monitoramento da resposta terapêutica do paciente.

2.1.1 Citogenética Clássica

As alterações cromossômicas desempenham um papel importante no estudo de diversos

tipos de cânceres e a citogenética clássica permite uma visão do genoma na sua

totalidade através da análise do cariótipo. No cariótipo os cromossomos são alinhados

de acordo com o tamanho decrescente, padrão de bandas e posição do centrômero,

podendo ser metacêntrico, submetacêntrico ou acrocêntrico (ISCN, 2009).

17

Nos cromossomos identificados através do padrão de bandas (Figura 1), são observadas

regiões escuras ou claras a depender da técnica de bandeamento utilizada. Cada

cromossomo apresenta um padrão específico de bandas facilitando a detecção das

alterações no desenvolvimento de neoplasias. Bandas escuras pelo bandeamento G são

ricas em adenina-timina (AT), com replicação tardia e poucos genes ativos, enquanto as

bandas claras são ricas em citosina-guanina (CG), com replicação precoce e com muitos

genes ativos (ISCN, 2009).

Figura 1- Ideograma com o padrão de bandeamento G para cromossomos humanos. Fonte:

http://www.mundoeducacao.com.br/biologia/cariotipo.htm.

A constituição cromossômica normal em humanos é de 22 pares de autossomos e um

par sexual XX ou XY. Se a contagem do cariótipo for diferente de 46 existe material

genético extra, ausente ou a presença de rearranjos. Alterações podem envolver um ou

mais dos cromossomos autossomos, sexuais ou ambos e são classificadas em numéricas

e estruturais (LIMA, 1996). As variações numéricas são divididas em euploidias e

18

aneuploidias. A euploidia apresenta um múltiplo exato do número cromossômico,

enquanto as aneuploidias se apresentam como falta ou excesso de cromossomos

(VASCONCELOS et al., 2007).

As alterações estruturais ocorrem geralmente durante a divisão celular, na forma de

quebras, e podem ser balanceadas ou não balanceadas. Os rearranjos balanceados são as

inversões e translocações podendo resultar ou não em fenótipo alterado, enquanto as

não balanceadas são as deleções e duplicações e resultam em fenótipo alterado

(VASCONCELOS et al., 2007). O aprimoramento das técnicas clássicas aliado ao

desenvolvimento de técnicas moleculares vem permitindo avanços importantes na

oncogenética, estimulando pesquisas que visam um maior conhecimento e

entendimento do papel da alteração genética na oncogênese.

2.1.2 Citogenética Molecular (FISH)

Os primeiros experimentos da FISH foram realizados por Landegent e seus

colaboradores, em 1985 (VOGEL e MOTULSKY, 1997; GUSTASHAW, 1997). Essa

técnica representou uma revolução na citogenética médica, especialmente na oncologia

clínica, pois permitiu a identificação de alterações cromossômicas não visualizadas na

técnica convencional, detecção de deleções críticas e análise de células em interfase,

definindo o diagnóstico em muitos casos (SERAKINCI e KOLVRAA, 2009).

A técnica de FISH é considerada a base da citogenética molecular e nas últimas décadas

grandes descobertas para seu aperfeiçoamento foram feitas, com o intuito de aumentar a

resolução para detectar as anomalias cromossômicas (SPEICHER e CARTER, 2005).

Trata-se de um método mais sensível e específico, que utiliza uma sequência de DNA

complementar ao alvo que se pretende analisar. Essa sequência específica é denominada

sonda (MARIN et al,. 2003; CAMPOS et al,. 2003).

19

Figura 2- Princípios básicos da técnica de FISH. Fonte: www.nhgri.nih/gov./DIR/VIP.

Atualmente encontram-se sondas para identificar muitas alterações cromossômicas

(HAFERLACH et al., 2010). Como o DNA é formado por fita dupla, ao ser

desnaturado permite que a sonda possa competir com a sequência de DNA que se deseja

marcar, sendo hibridizada in situ (Figura 2). Essas sondas podem ser de cópia única ou

de DNA repetitivo e são classificadas em centroméricas, teloméricas, gênicas, por

região do cromossomo a hibridizar ou ainda por todo o cromossomo (GUERRA, 2004).

A FISH pode ser usada para detectar o rearranjo BCR/ABL tanto no diagnóstico, quanto

no acompanhamento da resposta em relação à terapia utilizada. Na primeira geração as

sondas de fusão simples eram capazes de demonstrar um sinal vermelho do gene ABL e

outro verde que correspondia ao gene BCR. O rearranjo BCR-ABL era representado

pela cor amarelada, o que significava a união entre os sinais verde e vermelho. As

análises realizadas com essas sondas não eram muito confiáveis, pois não existiam

sinais extras como referência (CHAUFFAILLE et al,. 2008).

A segunda geração de sondas possuía um sinal vermelho extra no braço longo do

cromossomo 9 envolvido na translocação, tornando um pouco mais segura a

identificação da alteração. A terceira geração apresentou sinais extras, verde e

vermelho, o que aumentou a sensibilidade e especificidade do método (CHAUFFAILLE

et al,. 2008).

20

Figura 3: Esquema representativo da sonda LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans (CML,ALL)

(Cytocell). Fonte: http://www.genycell.es/prod/genetica_humana/sondas_fish (ADAPTADO).

No momento do diagnóstico da LMC a FISH pode ser empregada juntamente com o

cariótipo e repetida aos três e seis meses de tratamento com os TKI. Após a remissão

completa o acompanhamento desses pacientes passa a ser realizado através do PCR,

uma técnica molecular importante e alternativa, evitando a coleta da medula óssea, pois

pode ser feita em amostra de sangue periférico (LEE, 2006).

http://www.genycell.es/prod/genetica_humana/sondas_fish

21

2.2 LEUCEMIA MIELÓIDE CRÔNICA (LMC)

A LMC foi uma das primeiras entre as neoplasias onco-hematológicas a ser

caracterizada, o que ocorreu por volta de 1845, e posteriormente se tornou a primeira a

ser associada a uma anomalia citogenética (NOWELL et al., 1960). Trata-se de uma

patologia mieloproliferativa clonal, ou seja, surge a partir da alteração em uma célula

que origina um clone anormal, este clone se expande, causando um acúmulo de células

mielóides jovens e maduras na medula óssea. (BORTOLHEIRO e CHIATTONE, 2008;

CONCHON, 2009).

A doença caracteriza-se por leucocitose com aumento do número de células mais

imaturas, esplenomegalia e presença do cromossomo Ph. Esse cromossomo,

considerado o marcador citogenético dessa neoplasia, está presente em

aproximadamente 95% dos pacientes na fase inicial (LEE, 2006). Estudos recentes

demonstram que houve aumento da incidência da LMC em sobreviventes da bomba

atômica durante a Segunda Guerra Mundial, assim como em pacientes submetidos à

radioterapia para tratamento de outras doenças oncológicas (SANTOS e MORRONE,

2008).

A LMC atípica (cromossomo Ph negativo) ocorre raramente e, na maioria dos casos

suas características iniciais e seu curso clínico são similares aos de pacientes Ph

positivos. Contudo, a LMC atípica inclui um grupo heterogêneo de pacientes e em

alguns a doença evolui de maneira mais agressiva com pior prognóstico. A detecção do

BCR-ABL é fundamental, pois este rearranjo não somente contribui para a

transformação leucêmica, como interfere no sucesso do tratamento (KOLDEHOFF et

al., 2004).

O rearranjo BCR-ABL, decorrente do cromossomo Ph, está presente em

aproximadamente 100% dos pacientes com LMC ao diagnóstico, e sua atividade

elevada é responsável pela oncogênese. Identificar as vias de sinalização que

influenciam a atividade tirosino quinase do BCR-ABL, ligando essas vias às alterações

características da LMC, é importante. Essas alterações incluem aumento da proliferação

celular, por ativação da via RAS, a diminuição da apoptose pela via STAT5, entre

22

outras que juntas favorecem as células afetadas com vantagem proliferativa e de

sobrevivência (BOLLMANN e GIGLIO, 2011).

O BCR-ABL é resultado da translocação entre os cromossomos 9 e 22, a região BCR

esta localizado no cromossomo 22 e o gene ABL no cromossomo 9, sendo formado

quando o gene ABL liga-se com a região 5´do gene BCR. No gene BCR são descritos

três pontos de quebra: o ponto de quebra maior (M-bcr: major breakpoint cluster

region), o ponto de quebra menor (m-bcr: minor breakpoint cluster region) e o micro (μ-

bcr: micro breakpoint cluster region) (DEININGER et al., 2000).

O produto destas quebras origina diferentes tipos de proteínas quiméricas com atividade

de tirosino quinase, denominadas p190, p210 e p230 (FUNKE et al., 2010). Estas

proteínas induzem a desregulação de várias vias de sinalização, e consequente

proliferação excessiva, resistência à apoptose e defeitos na adesão, fatores responsáveis

pela oncogênese na LMC (ALVARENGA, 2010).

A p210 é a mais frequente nos pacientes com LMC, responsável pelas anomalias

fenotípicas correspondentes à fase crônica, enquanto a p190 apresenta maior atividade

tirosina quinase e está associada a maior severidade no quadro leucêmico mais agudo. A

p230 que está associada à trombocitose e a uma variante neutrofílica de LMC

(ANDRIKOVICS et al., 2007).

O gene BCR está localizado em 22q11 e codifica uma proteína com atividade de

quinase e domínios funcionais importantes na oligomerização, na ligação ao domínio

SH2, na atividade serina/treonina e na atividade de proteínas da família das GTPases.

Essa proteína interage ainda com as proteínas G, que possuem papéis importantes na

sinalização intracelular, organização do citoesqueleto, crescimento e desenvolvimento

celular (HOFFBRAND et al., 2005).

O proto-oncogene ABL localizado em 9q34 contém sequências homólogas às

sequências v-abl do A-MuLV, e são associadas à transformação celular. A proteína

ABL é regulada por auto-inibição, mecanismo importante na integração de sinais tanto

intracelular (lesões no DNA e estresse oxidativo) quanto no ambiente extracelular

(fatores de crescimento, aderência celular e citocinas) (BAO et al., 2007). Essa proteína

23

influencia ainda na regulação do ciclo celular, na resposta celular ao estresse e na

transmissão da informação sobre o ambiente celular, por meio de sinalização de

integrinas. (LANDSTROM et al., 2006).

O monitoramento citogenético cuidadoso está justificado pela ocorrência de fenômenos

importantes como a ausência ou a demora em alcançar a remissão, sendo necessário, em

determinados casos, o ajuste de dose dos fármacos empregados, a perda da remissão

previamente alcançada na suspensão da medicação, na evolução clonal a despeito da

terapia e, por fim, no aparecimento de alterações clonais nas células Ph-negativas

(ABRUZZESE et al., 2007).

2.2.1 Incidência

A LMC representa em torno de 20% de todas as leucemias do adulto (BOLLMANN e

GIGLIO, 2011). Tem uma incidência de 1,6 casos em 100.000 indivíduos entre adultos

e de 1 por 1 milhão em crianças com até 10 anos, representando aproximadamente 10%

dos casos. É mais frequente na faixa etária entre 40 e 55 anos de idade, entretanto

trabalhos recentes demonstram uma média de 66 anos. Essa doença afeta ambos os

sexos, com discreta predominância no sexo masculino (FERDINAND et al, 2012;

ROHRBACHER et al., 2008).

2.2.2 Diagnóstico

O diagnóstico da LMC é realizado pelo exame clínico, pelo hemograma, mielograma e

realização do estudo citogenético (RAANANI et al., 2005). Para confirmar o

diagnóstico é necessária a demonstração do cromossomo Ph ou do rearranjo BCR-ABL

em amostras de sangue periférico ou medula óssea (JOSKE, 2008; LUNDÁN et al.,

2008). A técnica citogenética clássica e as técnicas moleculares (FISH e PCR) permitem

a detecção dessas alterações genéticas de um modo muito específico (VIANNA e

ALMEIDA, 2006).

24

2.2.3 Fases da Doença

Por se tratar de uma doença com características diversas, identificar a fase em que esses

pacientes se encontram é fundamental para o manejo correto e para definição

terapêutica. De acordo com os dados clínicos e laboratoriais, essa neoplasia é dividida

em três fases. A primeira fase é a crônica, seguida da acelerada e da crise blástica

(ABREU e LOPES, 2009).

Pacientes com LMC quando diagnosticados na fase inicial, ou crônica, apresentam-se

assintomáticos numa média de 40% dos casos. Quando sintomáticos, as queixas mais

comuns são fadiga, anorexia, perda ponderal, sudorese noturna e febre e desconforto

abdominal causado pela esplenomegalia. Estes sinais e sintomas são geralmente leves e

relacionados com a proliferação celular aumentada. Complicações trombóticas ou

hemorragia podem ocorrer, mas são eventos raros (BOLLMANN e GIGLIO, 2011).

A fase crônica é a que possui maior possibilidade de ser controlada com terapia e é

quando grande parte dos pacientes são diagnosticados. Possui uma duração variável

podendo passar para outra fase depois de 3 a 8 anos após o diagnóstico. Nos casos onde

ocorre ausência de sintomas, o hemograma é fundamental, mostrando leucocitose,

maior número de granulócitos jovens e maduros além de basófilos e eosinófilos. No

mielograma observa-se a presença de hiperplasia do setor granulocítico com células em

todas as fases de maturação (HOFFBRAND et al., 2005).

Laboratorialmente observa-se atividade reduzida da fosfatase alcalina leucocitária, a

hemoglobina pode estar normal ou haver discreta anemia e o número de plaquetas é

geralmente normal ou elevado, havendo plaquetopenia ao diagnóstico em apenas 5%.

(MARK et al., 2006).

A fase seguinte, a acelerada, apresenta maior resistência à terapia medicamentosa e

alguns achados do quadro clínico como hepatomegalia, mielofibrose, anomalia clonal

citogenética e esplenomegalia são mais comuns (HAMERSCHLAK, 2008). Cerca de

metade dos pacientes permanecem de 4 a 6 meses em fase de aceleração antes de

evoluir para um quadro mais grave e agudizado (HOFFBRAND et al., 2005).

25

Na fase acelerada alguns achados como anemia, leucocitose, trombocitopenia, basofilia

superior a 20%, além da presença de blastos e promielócitos, descrevem o hemograma.

Na medula óssea blastos e promielócitos também são observados, além de

mielodisplasia, megacariócitos e hipercelularidade. Os sintomas se tornam mais

presentes podendo ocorrer sudorese noturna, emagrecimento, febre e dores ósseas

(MARK et al., 2006).

A transformação para a crise blástica pode ocorrer em qualquer período, saindo

diretamente da crônica ou passando pela acelerada. (HOFFBRAND et al., 2005). Nessa

fase algumas características como intensificação do quadro anêmico, febre, sudorese

noturna, anorexia e piora do estado geral com rápida evolução fatal estão presentes

(LORENZI, 2006).

Com a progressão 50% a 80% dos indivíduos adquirem alterações cromossômicas

adicionais que precedem as manifestações clínicas e hematológicas, entre elas

cromossomo Ph duplo, isocromossomo 17, trissomia do cromossomo 8 e nulissomia do

Y (HAMERSCHLAK, 2008). A presença de blastos acima de 30% tanto no sangue

periférico quanto na medula óssea, infiltração extramedular de células leucêmicas,

presença de sarcoma granulocítico, presença de mutações nos genes p53 e Rb são

típicas e auxiliam no diagnóstico do paciente em crise blástica (MARK et al., 2006).

2.2.4 Tratamento

O tratamento da LMC visa restituir a hematopoiese normal, o desaparecimento da

translocação entre os cromossomos 9 e 22 e redução dos transcritos BCR-ABL.

Baseava-se no passado no emprego da hidroxiuréia e do interferon-α (IFN-α) e

atualmente no uso de inibidores de tirosino quinase. O transplante alogênico de medula

óssea (TMO) fica reservado aos pacientes que falham em responder aos inibidores de

TK (FUNKE et al., 2010).

Historicamente a terapia da LMC começou em 1960, com o surgimento do bussulfan

que não demonstrou resultados muito satisfatórios, surgindo então a hidroxiuréia, que se

26

mostrou superior provavelmente por ser mais bem tolerada e proporcionar pequeno

ganho de sobrevida. A hidroxiuréia promove o controle da proliferação celular pela

inibição da síntese do DNA e como quimioterápico, induz a apoptose por meio do

estresse celular e da ativação de vias importantes como a via intrínseca, retardando a

progressão para crise blástica (ABREU e LOPES, 2009).

Em 1980 foi observada a eficácia do IFN-α que além de promover a inibição da

proliferação do clone leucêmico potencializa a resposta imune anti-leucêmica dos

pacientes. Esse medicamento possui papel imunomodulador importante sobre as células

mononucleares, restaurando o número de células da resposta imune circulante,

promovendo a ativação de células efetoras e aumentando a apoptose, alcançando assim

o controle das contagens sanguíneas periféricas e diminuição na proporção de células da

medula que possuem o cromossomo Ph (KURAMATO et al,. 2006).

Ainda em 1980 surgiram as primeiras experiências sobre transplante alogênico de

medula óssea, sendo este o único tratamento que promove a cura. Entretanto a idade

média dos pacientes inicialmente acometidos é elevada e por existir dificuldade em

conseguir doador compatível, a indicação de TMO é pequena, sendo possível em menos

de 20% dos casos (FUNKE et al., 2010).

A identificação da oncoproteína BCR-ABL, responsável pela patogênese, em 1986,

permitiu uma nova terapia revolucionária, os inibidores de uma cascata de ativação da

tirosina quinase (SPECTOR, 2008). O gene BCR-ABL tem atividade quinase, sendo

ativado por fosforilação. Quando o fosfato se liga a um grupo trifosfato de adenosina

(ATP) cria uma cascata de ativação que resulta em estímulo proliferativo exacerbado.

Os TKI bloqueiam este processo e são classificados em inibidores de primeira e

segunda geração (FAUSEL, 2007).

2.2.5 Resposta ao Tratamento

A resposta ao tratamento varia de paciente para paciente, os critérios usados na

monitorização da resposta, assim como os parâmetros, estão definidos no LeukemiaNet

27

(SPECTOR, 2008). A resistência à terapia ainda é um problema e o acompanhamento é

extremamente importante para que esta possa ser detectada precocemente e as

modificações para drogas de segunda geração ou encaminhamento para transplante

sejam definidas (VALENT et al., 2008).

A resposta ao tratamento com TKI é verificada clinicamente com normalização do

tamanho do baço, hematologicamente com normalização do hemograma e também com

as respostas completas na citogenética clássica e no estudo molecular. Além da

leucometria normal observa-se ausência de pró-mielócitos e mieloblastos, mielócitos,

metamielócitos e plaquetometria dentro dos parâmetros normais (YAMAMOTO et al.,

2008).

A resposta citogenética completa significa o desaparecimento das células portadoras do

cromossomo Ph na medula óssea. A resposta pode ser ausente, quando existir mais de

90% de células com cromossomo Ph positivo, menor quando existir 35% a 90% de

células com cromossomo Ph positivo, parcial, com 5% a 34% de células com

cromossomo Ph positivo e completa quando o cromossomo não é mais encontrado.

Considera-se ainda a resposta maior que corresponde à soma de completa mais parcial,

ou seja, com menos de 35% de células com cromossomo Ph positivo (GOLDMAN,

2007).

Ocorrendo a resposta citogenética completa o paciente passa a ser monitorado pelo

número de transcritos BCR-ABL por PCR quantitativo, passando, a partir daí, a análise

citogenética ser feita anualmente no sentido de se avaliarem possíveis fenômenos novos,

tais como perda de resposta, alterações clonais em células Ph-negativas ou evolução

clonal. A resposta molecular é caracterizada completa quando não são detectados

transcritos ou quando estes correspondem a menos de 0,1%. Esse monitoramento é

realizado por PCR a cada 3 ou 6 meses após a resposta citogenética completa

(CHAUFFAILLE, 2009).

28

2.3 INIBIDORES DA TIROSINO QUINASE (TKI)

A descoberta dos TKI para o tratamento da leucemia mielóide crônica foi,

provavelmente, a maior inovação do tratamento onco-hematológico da última década.

Estes fármacos oferecem um melhor prognóstico aos pacientes com LMC. Seu

mecanismo de ação é mediante a ocupação do local de ligação do trifosfato de

adenosina (ATP), impedindo-o de doar o fosfato. Sem a fosforilação deste não ocorre

ativação da cascata que resulta em crescimento descontrolado da população

granulocítica (FAUSEL, 2007). São inibidores de TK o mesilato de imatinibe, o

dasatinibe e o nilotinibe (ABREU e LOPES, 2009).

2.3.1 Imatinibe

A partir do uso do imatinibe, novos critérios de resposta e monitoramento da doença

surgiram com o objetivo de aperfeiçoar e padronizar o manuseio de pacientes com

LMC. Em 1996, foi publicado pela primeira vez o efeito deste inibidor, de primeira

geração, usado como terapia inicial que apresentava eficácia e baixa toxicidade, porém

os primeiros estudos clínicos foram em 1998 (FUNKE et al,. 2010). O imatinibe como

opção de primeira linha no tratamento da LMC, foi autorizado no Brasil a partir de 25

de junho de 2008, em pacientes sem indicação para TMO, ou sem doadores

identificados (BRASIL- DOU, 2008).

Esse fármaco é derivado da 2-fenil-amino-pirimidina e não atua diretamente na base da

patogênese da LMC que seria impedir a codificação de BCR-ABL, mas age competindo

pelo sítio de ligação do ATP da tirosino quinase, impedindo sua ativação e restaurando

seu mecanismo de morte celular (BOLLMANN e GIGLIO, 2011). A partir do início do

uso deste medicamento observou-se acentuada melhora no prognóstico dos pacientes

com LMC (LUNDÁN et al., 2008).

29

Figura 4- Mecanismo de ação do imatinibe (VIGORITO et al, 2006).

O mecanismo de ação desse medicamento esta demonstrado na figura 4, onde em A

observa-se uma oncoproteína com uma molécula de adenosina trifosfato (ATP) no sítio

quinase ativando o substrato pela fosforilação de um resíduo de tirosina pelo ATP.

Fosforilada, esta proteína substrato pode interagir com sua molécula efetora e

desencadear o fenótipo maligno da LMC. Em B o imatinibe ocupa o sítio quinase, a

ação BCR-ABL é inibida, evitando a fosforilação do substrato. Quando não ocorre a

fosforilação, em B, esse processo é interrompido impedindo a proliferação da célula

anômala (SANTOS, 2007).

Com uso dessa terapia apenas uma pequena porcentagem dos doentes perdem as

respostas hematológica e citogenética e apenas 2% progridem para a fase acelerada ou

crise blástica (DRUKER et al., 2006). Na fase inicial da doença, ou fase crônica, ocorre

resposta hematológica completa em 98% e em 87% ocorre resposta citogenética

completa.

30

Em alguns casos ocorre a falha no uso desse medicamento e isso pode ser interpretado,

segundo os critérios do LeukemiaNet, pela ausência de resposta hematológica com três

meses, ausência de resposta hematológica completa ou qualquer resposta citogenética

aos seis meses, ausência de resposta citogenética maior aos 12 meses ou resposta

citogenética completa aos 18 meses de tratamento. Em casos como esses deve ser feita

alguma intervenção terapêutica, como aumento de dose, mudança para outro inibidor ou

encaminhamento para transplante de medula óssea (PAGNANO, 2008).

Uma resposta subótima não significa falha total desse inibidor e ocorre quando existe

resposta hematológica completa aos três meses de tratamento, porém ausência de

resposta citogenética parcial aos seis meses, ausência de resposta citogenética completa

aos 12 meses ou ausência de resposta molecular maior aos 18 meses. Nesses casos o

inibidor pode ser trocado por outro considerado de segunda geração, como o dasatinibe

e o nilotinibe, e em geral a resposta é recuperada (BACCARANI et al., 2006).

A resistência pode ser causada por diversos fatores como a má absorção, metabolização,

ligação alterada com proteínas plasmáticas, mudanças no influxo e efluxo para dentro

da célula e inativação enzimática. A avaliação dos níveis séricos pode ser usada para

auxiliar nos casos de toxicidade, na falha de resposta ou resposta subótima, além de

ajudar também quando há suspeita de não aderência ao tratamento ou interação

medicamentosa (LARSON et al., 2008).

Normalmente o imatinibe é um medicamento bem tolerado pelos pacientes. Os efeitos

adversos, quando presentes, são de gravidade leve a moderada como náuseas, vômitos,

diarreia, cãibras musculares, dor muscular esquelética, erupções cutâneas e retenção de

fluídos (JABBOUR et al,. 2007). Antes do aparecimento dessa droga o transplante de

medula óssea era considerado o método mais eficiente para induzir a remissão

citogenética e molecular completa. Atualmente esse procedimento é reservado para os

casos de resistência ou toxicidade importantes (BACCARANI et al., 2009).

31

2.3.2 Dasatinibe

O dasatinibe, um derivado da piperazinila, possui ação potente por se ligar a

conformações ativas e inativas do domínio ABL (DUKER et al., 2006). A ação anti-

leucêmica desse fármaco ocorre sobre a conformação fechada e aberta da molécula do

BCR-ABL. Trata-se de uma droga que atinge multialvos dentro dessa molécula e atua

tanto sobre o domínio da Abl quinase quanto inibindo as quinases das famílias Src e

Lyn. Após 5 meses, em média, o paciente em uso deste fármaco atinge a resposta

citogenética completa (MASSZI et al., 2008).

Em 2006, o uso do dasatinibe 70 mg duas vezes ao dia foi demonstrado para tratamento

de pacientes com LMC em todas as fases e em pacientes resistentes ou intolerantes ao

imatinibe. Os principais efeitos colaterais com o uso desta droga são: retenção de

fluidos, derrame pleural, diarreia, vômito, sangramento, náusea, dor abdominal, cefaleia

e mielotoxicidade, dos casos apresentados 21% apresentavam neutropenia, 19%

trombocitopenia e 10% anemia (BACCARANI, 2008; BOLLMANN e GIGLIO, 2011).

Recentemente, recomenda-se o uso na dose de 100 mg uma vez ao dia para pacientes

em fase crônica, resistentes ou intolerantes ao imatinibe, e 140 mg uma vez ao dia para

pacientes em fase acelerada ou crise blástica. Estudos demonstram taxas de respostas

semelhantes com a dose de 70mg duas vezes ao dia ou 100mg uma vez ao dia, com

perfil de toxicidade mais favorável, principalmente em relação ao derrame pleural, na

posologia de uma vez ao dia (KANTARJIAN et al., 2009; LARSON et al., 2008).

2.3.3 Nilotinibe

Esse inibidor é uma aminopirimidina mais seletiva para a quinase do rearranjo BCR-

ABL e em 2007 foi aprovado para o tratamento de pacientes com LMC em fase

acelerada da doença e na crise blástica quando resistentes ou intolerantes ao imatinibe,

na dose de 400 mg duas vezes ao dia. Pode causar náusea, prurido, fadiga, cefaleia e

32

aumento de enzimas pancreáticas, reversível com ajuste da dose (KANTARJIAN et al.,

2008).

As anormalidades laboratoriais mais comuns são: elevação da lípase, hipofosfatemia,

hiperglicemia e elevação da bilirrubina total, já as alterações hematológicas como

neutropenia, plaquetopenia e anemia são mais frequentes (KANTARJIAN et al., 2008).

O nilotinibe é uma droga ativa, de boa tolerabilidade e aceitação para o paciente,

acarretando respostas efetivas no tratamento para LMC. Os efeitos adversos relatados

pelos pacientes foram considerados de leve a moderada intensidade e de fácil resolução

com a redução da dose e medidas clínicas de suporte (DEININGER et al., 2007).

2.4 RELEVÂNCIA

A citogenética é fundamental para o diagnóstico da LMC, mas após essa etapa saber

qual caminho seguir no cuidado desses pacientes é muito importante, indicando a

terapia e principalmente sua manutenção ou alteração. Diante dessas informações e do

grande impacto socioeconômico proporcionado pela pior evolução e mortes por esta

neoplasia, o presente estudo tem como propósito avaliar a importância do diagnóstico

mais específico e sensível, além de proporcionar dados epidemiológicos de pacientes

com essa patologia no Estado da Bahia.

Outro ponto importante é fortalecer a implantação da medicina diagnóstica na área

hemato-oncológica no Serviço de Genética Médica do Complexo Hospital Universitário

Edgard Santos/Universidade Federal da Bahia (COM-HUPES/UFBA). Além disso,

existe um número muito reduzido de pesquisas nesta área, em nosso Estado, portanto,

pretendemos fortalecer as nossas bases em pesquisa, atentando para a assistência, o

auxílio diagnóstico, a capacitação técnica e científica.

33

3 OBJETIVOS

3.1 OBJETIVO GERAL

O objetivo deste estudo foi demonstrar a importância da utilização da técnica da

Citogenética Molecular (FISH) aliada à Citogenética Clássica no monitoramento de

pacientes com LMC em terapia com TKI no Estado da Bahia.

3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS

Avaliar a sensibilidade da Citogenética Clássica na detecção de alterações

cromossômicas em paciente com LMC em terapia com TKI.

Avaliar a sensibilidade do FISH na detecção de alterações cromossômicas em

paciente com LMC em terapia com TKI.

Apresentar dados que contribuam para o monitoramento terapêutico mais

eficiente e sensível de pacientes com LMC tratados com TKI no Estado da

Bahia.

34

4 METODOLOGIA

4.1 CASUÍSTICA

O grupo de estudo foi constituído por 20 pacientes com diagnóstico de LMC em

tratamento com TKI, de ambos os gêneros e maiores de 18 anos, procedentes de todo o

Estado da Bahia e admitidos no Complexo Hospital Universitário Edgard

Santos/Universidade Federal da Bahia (COM-HUPES/UFBA). Todos os participantes

da pesquisa foram informados sobre os objetivos, riscos e benefícios do estudo e

assinaram o Termo de Consentimento Livre e Esclarecido (TCLE), permitindo a

realização da pesquisa.

As amostras do aspirado da medula óssea desses pacientes foram recebidas no Serviço

de Genética Médica do COM-HUPES/UFBA entre setembro e novembro de 2012 e

tratou-se de uma amostra de conveniência. A punção aspirativa da medula óssea foi

realizada pelo Hematologista responsável na região da crista ilíaca ou esterno. Foram

colhidos 4 ml do material em seringa estéril e heparinizada e encaminhada ao

laboratório para as análises cromossômicas. Os dados selecionados para o estudo foram

coletados a partir de prontuários.

4.2 CRITÉRIOS DE INCLUSÃO

Ambos os sexos;

Maiores de 18 anos;

Termo de Consentimento Livre e Esclarecido assinado;

Pacientes com LMC em terapia com TKI.

35

4.3 CRITÉRIOS DE EXCLUSÃO

Menores de 18 anos;

Desacordo com o Termo de Consentimento Livre e Esclarecido;

Pacientes com outra doença oncohematológica que não seja LMC;

4.4 COLETA DE DADOS

Os dados dos pacientes (data do diagnóstico, idade ao diagnóstico, data que iniciou o

uso de inibidores de tirosino quinase, resultado anteriores de cariótipos, uso de outras

medicações, outras doenças) foram coletados de prontuários do Serviço de Arquivo

Médico e Estatístico (SAME) da instituição, no período de setembro a novembro de

2012.

4.5 ASPECTOS ÉTICOS

4.5.1 Termo de Consentimento Livre e Esclarecido

Os participantes foram informados sobre o teor do estudo, inclusive a respeito dos

objetivos, técnicas utilizadas, vantagens, eventuais riscos e, apenas após a assinatura

voluntária do termo de consentimento livre e esclarecido, foram incluídos na pesquisa

(Apêndice B).

4.5.2 Aprovação pelo Comitê de Ética em Pesquisa (CEP)

36

Este projeto foi autorizado pelo Comitê de Ética em Pesquisa Complexo Hospital

Universitário Edgard Santos/Universidade Federal da Bahia (COM-HUPES/UFBA),

Parecer/Resolução Aditiva nº 104.789, em 20/09/2012 (Anexo A).

4.6 PREPARAÇÃO DA AMOSTRA

4.6.1 Cultura Celular

A primeira etapa para que a análise possa ser concluída é a realização da cultura celular,

que requer determinadas condições e cuidados específicos para evitar contaminação da

amostra. O transporte rápido até o laboratório, esterilidade, condições dos meios de

cultura utilizados, temperatura para o crescimento das células de 37ºC, entre outros, são

fundamentais para o sucesso da cultura. Por esses motivos, foi importante a separação e

esterilidade de todo o material utilizado como: gaze, pipeta, luvas, tubo, estantes,

amostra a ser cultivada e o meio de cultura descongelado em banho-maria a 37ºC.

O meio de cultura foi preparado em alíquotas de 8,5ml de meio RPMI e 1,5ml de soro

bovino fetal, em tubos Falcon de 15 ml, que foram identificados e armazenados em

freezer a -20ºC, até o momento da semeadura. No momento da cultura o tubo foi

identificado com o nome do paciente, número de registro, data da semeadura e tipo de

cultura, se direta ou 24 horas. As amostras de todos os pacientes foram semeadas em

culturas direta e de 24 horas e todo o material de medula recebido foi semeado em

quantidades iguais de 2 ml nos dois tubos, até esgotamento total, não havendo

armazenamento ou banco de material biológico.

Os tubos foram então incubados em estufa a 37ºC com inclinação de 30º, para aumentar

a área de superfície. Após a semeadura foi adicionado 0,1 ml da solução de colchicina,

um inibidor mitótico. A amostra foi homogeneizada e permaneceu em estufa a 37ºC por

mais 45 minutos. Essa é a primeira etapa da preparação celular e ocorre logo após o

cultivo na cultura direta e 24 horas depois nos tubos de cultura de 24 horas. É um

37

processo importante, pois essa solução tem a capacidade de manter os cromossomos em

metáfase, facilitando a análise.

4.6.2 Hipotonização Celular

Após a cultura e uso do inibidor mitótico, a amostra foi dividida em dois tubos Falcon

de 15 ml e a etapa de hipotonização realizada com solução salina. A solução salina

utilizada foi preparada com 5,6 g de cloreto de potássio e 1 litro de água destilada. Para

essa etapa os dois tubos foram centrifugados por 5 minutos a 1000 RPM, o

sobrenadante descartado e adicionado 8 ml da solução hipotônica, previamente aquecida

a 37ºC.

A amostra foi mais uma vez homogeneizada e permaneceu em banho-maria a 37°C por

18 minutos. O tratamento com a solução hipotônica, devido ao seu efeito nas células, é

uma fase crítica que requer um tempo exato, pois em excesso pode fragilizar as células

levando à ruptura das membranas e, consequentemente, perda dos cromossomos.

4.6.3 Fixação Celular

O fixador é constituído por uma mistura de 3 partes de metanol e 1 parte de ácido

acético. Foi adicionado 8 ml de fixador na primeira fixação com o uso do vortex e logo

em seguida a amostra centrifugada por 5 minutos a 1000 RPM. O sobrenadante foi

descartado e a segunda fixação realizada com a adição de mais 8 ml de fixador. Esse

procedimento foi realizado mais uma vez, o sobrenadante foi retirado e as amostras

reunidas em um único tubo com 6 ml de fixador para serem guardadas em geladeira por

no mínimo uma hora.

Após esse período a amostra foi lavada por mais duas vezes com fixador e na última foi

confeccionada a lâmina convencional para observação da quantidade de material que

deve ser gotejado na preparação das lâminas definitivas. Essa amostra foi utilizada tanto

38

na citogenética clássica como na molecular, entretanto a maneira de preparar as lâminas

é que as diferenciaram.

Figura 5- Preparação da amostra para realização dos exames citogenéticos clássico e molecular

(FISH). Fonte própria.

4.7 PREPARAÇÃO DA LÂMINA

4.7.1 Lâminas para Citogenética Clássica

Após observação da lâmina convencional, as lâminas definitivas foram confeccionadas.

Inicialmente seis lâminas (previamente lavadas e acondicionadas em água destilada

dentro da geladeira) foram preparadas. Com a lâmina ainda molhada a amostra foi

gotejada, de acordo com a quantidade de gotas definida na lâmina convencional, e

passada em chama até secar completamente. Após essas etapas ficaram em estufa a

60ºC, por 24 horas para envelhecimento e posterior bandeamento.

39

No dia seguinte foi realizado o processo de bandeamento, no qual os cromossomos são

submetidos à ação de uma enzima, a tripsina, e corados posteriormente com Giemsa. As

lâminas permaneceram de 1 a 5 segundos na tripsina (tempo este que pode variar e

necessita ser adequado juntamente com visualização por microscopia ótica) foram

mergulhadas em Phosphate-buffered solucion (PBS) gelado parando a ação da enzima,

coradas com Giemsa por 4 minutos, lavadas com água destilada, secas e analisadas.

A solução de tripsina é preparada com 0,1 g de tripsina em pó e 100 ml de PBS. O PBS

é preparado com 8,2 g de cloreto de sódio, 0,2 g de sódio fosfato monobásico

monoidrato, 1,6 g de sódio fosfato bibásico dodecahidrato e 1 litro de água destilada. O

corante Giemsa é preparado com o PBS em proporção de 3:1, sendo 3 ml de PBS e 1 ml

de corante.

As metáfases foram observadas em microscópio óptico (Olympus BX40) e foi realizada

a montagem dos cariótipos. Segundo normas internacionais, para cada amostra devem

ser analisadas 20 metáfases de pelo menos duas culturas diferentes, e dessa forma foi

conduzido o estudo. Os cariótipos foram descritos de acordo com a nomenclatura do

ISCN, 2009.

Figura 6- Passos para o resultado na citogenética clássica Fonte própria.

40

4.7.2 Lâminas para Citogenética Molecular (FISH)

A FISH foi realizada com a sonda para a translocação entre os cromossomos 9 e 22

[t(9;22)(q34;q11)], LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans (CML,ALL) (Cytocell) e

todas as lâminas para realização do procedimento foram gotejadas no dia anterior. O

material estocado em freezer a -20º C, após realização da citogenética convencional, foi

lavado mais uma vez com fixador e gotejado em lâminas de vidro limpas, secas e

anteriormente acondicionadas em álcool 70% na geladeira. Após esse processo as

lâminas secaram a temperatura ambiente (TA) por 24 horas até o início da técnica.

O protocolo foi realizado em dois dias. No primeiro dia ocorreu o pré-tratamento, a

lâmina foi colocada em solução de 2x Saline Sodium Citrate (SSC) pH 7 durante 2

minutos com o objetivo de estabilizar o pH e deixar os cromossomos menos suscetíveis

à desnaturação. Logo em seguida as lâminas passaram por baterias de desidratação no

etanol a 70%, 85% e 100%, também por 2 minutos para desidratação, e secas à TA.

Nesse tempo a sonda foi retirada do freezer (-20ºC) e transferida para tubos tipo

Eppendorf na quantidade de 10µl por lâmina e a solução total voltou ao freezer.

A sonda permaneceu em banho-maria por 10 minutos a 37ºC, foi colocada sobre a

lâmina que foi coberta com lamínula, previamente limpa e estocada em álcool 70%, e

selada com cola específica. Após a etapa de pré-desnaturação, a desnaturação foi

realizada com a transferência da lâmina para uma placa aquecida a 75ºC por 2 minutos,

favorecendo desnaturação para posterior pareamento entre a sonda e a região a ser

estudada. A lâmina foi acondicionada em câmara úmida e escura e permaneceu até o dia

seguinte em estufa a 37ºC.

No dia seguinte foram realizadas as lavagens pós-hibridização. A cola e a lamínula

foram removidas e a lâmina lavada em 0,4x SSC a 72ºC por 2 minutos e em solução 2x

SSC, 0,05% Tween-20 pH 7, à TA por 30 segundos e sob agitação para remover

ligações inespecíficas. Após as lavagens as lâminas foram coradas com 10µl de 4',6-

diamidino-2-phenylindole (DAPI), cobertas com nova lamínula e analisadas em

microscópio de fluorescência da marca Olympus modelo BX51 com filtros DAPI (365-

400 λ), Fluorescein isothiocyanate (FITC) (450-520 λ) e Texas Red (510-590 λ). Todo

41

o processo de FISH foi realizado em sala escura para a proteção da fluorescência. Todos

os casos foram analisados por dois observadores, com a contagem de 200 núcleos por

cada um, e o resultado foi calculado pela média das duas análises.

Figura 7- Passos para o resultado na citogenética molecular (FISH). Fonte própria.

42

4.8 ANÁLISES ESTATÍSTICAS

Para a análise estatística dos dados clínicos e demográficos, extraídos dos prontuários

médicos, foi utilizada a análise descritiva. Compararam-se os resultados positivos das

amostras de medula óssea dos 20 pacientes através de duas técnicas citogenéticas: a

clássica e a molecular (FISH). Foi realizada a análise de todos os pacientes em cada

técnica, comparando o sexo, a idade, a procedência e a fase da doença no momento do

estudo.

O programa utilizado foi o SPSS versão 20. O teste de Kolmogorov-Smirnov foi

utilizado para testar a normalidade da distribuição dos dados e confirmou que se tratava

de um teste não-paramétrico. Foi calculado o valor de P (Teste de Mann-Whitney e X2)

e somente os valores de p < 0,05 foram considerados estatisticamente significantes.

4.8.1 Teste X2

O teste X2

foi utilizado para testar a hipótese de igualdade ou não entre os resultados das

duas técnicas citogenéticas empregadas. Outro ponto levado em conta foi o tamanho da

amostra, pois esse teste se aplica quando a amostra é maior ou igual a 20 e menor ou

igual a 40.

4.8.2 Teste de Mann-Whitney

Foi utilizado para comparar os resultados obtidos através de duas técnicas diferentes,

por ser um teste não-paramétrico. Este teste possibilitou a comparação entre a diferença

das medianas e o grupo que foi analisado com citogenética clássica e molecular com,

além de avaliar se duas populações possuem a mesma distribuição.

43

5 RESULTADOS

Neste trabalho foram analisadas, por citogenética clássica e molecular (FISH), 20

amostras de medulas ósseas de pacientes com LMC em tratamento com TKI,

procedentes de todo o Estado da Bahia. Os dados clínicos obtidos nos prontuários destes

pacientes estão apresentados na Tabela1. Destes, 8 eram do sexo feminino (40%) e 12

do sexo masculino (60%). A faixa etária dos pacientes variou entre 20 e 65 anos, com

média de 43,6 anos. Em relação à fase da doença, no momento do diagnóstico, 13

(65%) estavam na fase crônica, 7 (35%) em fase acelerada e nenhum em crise blástica.

Tabela 1. Dados clínicos dos pacientes.

Caso Sexo Idade Fase da doença ao diagnóstico

1 Feminino 21 Acelerada

2 Masculino 20 Acelerada


4 Masculino 60 Crônica



7 Feminino 52 Crônica














44

A Figura 8 demonstra a relação dos resultados positivos na técnica da citogenética

clássica com as variáveis clínicas apresentadas na Tabela 1. Em relação ao sexo, 50%

eram do sexo masculino e 50% do sexo feminino. Quanto à fase da doença, 75% dos

pacientes estavam na fase acelerada e apenas 25% na fase crônica. Em relação à faixa

etária, 25% tinham mais de 40 anos e 75% menos de 40 anos.

Figura 8- Análise das variáveis clínicas dos pacientes positivos na técnica clássica.

A Figura 9 demonstra a relação dos resultados positivos na técnica molecular (FISH)

com as variáveis clínicas apresentadas na Tabela 1. Dentre estes, 55,6% era do sexo

masculino, revelando discreta predominância em relação ao sexo feminino, que foi de

45

44,4%. A fase da patologia que a FISH apresentou mais resultados positivos foi a

crônica, com 66,7% e na acelerada com 33,3%. Em relação à faixa etária 66,7% tinham

mais de 40 anos e 33,3% menos de 40 anos.

Figura 9- Análise das variáveis clínicas dos pacientes positivos na técnica molecular (FISH).

Dados referentes à data em que o paciente foi diagnosticado com LMC, o resultado da

citogenética clássica ao diagnóstico e o inibidor utilizado no início do tratamento, estão

representados na Tabela 2. No momento do diagnóstico, 17 pacientes (85%)

apresentaram 100% de células com cromossomo Ph positivo e 3 (15%) apresentaram

mais de 80% de células com cromossomo Ph positivo. Em um dos casos, além de

células Ph positivo foi observada a presença da trissomia do cromossomo 8.

46

Tabela 2. Data, citogenética clássica e TKI ao diagnóstico.

Caso Data do

diagnóstico

Citogenética clássica ao diagnóstico TKI ao

diagnóstico

1 02.2011 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

2 2007 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

3 09.2011 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

4 2004 46,XY[4]/46,XY,t(9;22)(q34;q11)[16] Imatinibe

5 02.2011 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[11] Imatinibe

6 03.2012 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

7 2005 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

8 2009 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

9 2003 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

10 2007 46,XX[1]/46,XX,t(9;22)(q34;q11)[8] Imatinibe

11 2010 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

12 2004 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

13 2009 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[8]/

47,XY,+8,t(9;22)(q34;q11)[12]

Imatinibe

14 2002 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

15 2006 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

16 2003 46,XY[3]/46,XY,t(9;22)(q34;q11)[17] Imatinibe

17 2003 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

18 2008 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[10] Imatinibe

19 2007 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

20 2009 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[20] Imatinibe

Todos os pacientes iniciaram o tratamento com o imatinibe, um inibidor de primeira

linha que está relacionado a uma acentuada melhora no prognóstico em todas as três

fases da doença. Em relação ao tempo de tratamento até o momento da coleta de medula

óssea, 19 (95%) pacientes já faziam uso de inibidor por mais de doze meses e em

apenas 1 (5%) caso, essa terapia era administrada em um tempo menor que doze meses.

A Tabela 3 sumariza os inibidores utilizados pelos pacientes quando a medula óssea foi

encaminhada para a realização das análises citogenéticas e os resultados dessas análises

47

após uso do TKI. No momento do estudo, 12 pacientes (60%) ainda estavam utilizando

o imatinibe, 6 (30%) estavam utilizando o dasatinibe e 2 (10%) passaram a utilizar

nilotinibe. Os pacientes que sofreram mudança na conduta terapêutica, e as causas que

levaram a essa alteração, estão representados na Tabela 4.

Tabela 3. TKI utilizado no momento do estudo e citogenética clássica durante o uso do TKI.

Caso TKI no estudo Citogenética Clássica durante o tratamento

1 Imatinibe 46,XX,t(9;22)(q34;q11)[3]/ 46,XX[27]

2 Imatinibe Inconclusivo

3 Dasatinibe Inconclusivo

4 Dasatinibe 46,XY,inv(9)(p11;q12)[30]

5 Imatinibe Inconclusivo

6 Imatinibe 46,XX, t(9;22)(q34;q11)[15]

7 Imatinibe 46,XX[20]

8 Dasatinibe 46,XY[25]

9 Imatinibe 46,XY[30]


11 Dasatinibe 46,XY,t(9;22)(q34;q11)[7]/ 46,XY[23]

12 Nilotinibe 46,XY[20]

13 Imatinibe 47,XY,+8[30]/ 46,XY[14]


15 Dasatinibe 46,XX[12]

16 Nilotinibe 46,XY[15]



19 Dasatinibe Inconclusivo


48

Tabela 4. Causas para mudança da terapia em alguns pacientes do estudo.

Caso Imatinibe Tempo até a

falha/

intolerância

Dasatinibe Tempo até a

falha/

intolerância

Nilotinibe

3 Intolerante 8 meses Em uso

4 Intolerante 8 anos Em uso

8 Intolerante 8 meses Em uso

11 Refratário 15 meses Em uso

12 Refratário 5 anos Refratário 2 anos Em uso

15 Refratário 3 anos Em uso

16 Refratário 4 anos Intolerante 2 anos Em uso

19 Refratário 12 meses Em uso

Após o uso do TKI, 4 resultados (20%) foram inconclusivos, devido a falta de

crescimento celular ou impossibilidade de análise. O cariótipo normal foi observado em

12 pacientes (60%), 6 do sexo masculino (54,5%) e 5 do sexo feminino (45,5%). Entre

os casos alterados 3 (15%) apresentavam a translocação entre os cromossomos 9 e 22

(cromossomo Ph) e 1 ainda apresentava trissomia do cromossomo 8 (5%), que indica

uma pior evolução do quadro leucêmico. Apenas 1 paciente (5%), apresentou inversão

do cromossomo 9, um polimorfismo normal, que até o presente momento não acarreta

nenhuma consequência para o paciente.

A Figura 10 demonstra estatisticamente a importância de observar o tempo de uso dos

inibidores pelos pacientes. Apenas 1 paciente (5%) utilizava um dos inibidores a menos

de 12 meses e ainda não apresentava resposta citogenética, possuindo 100% de células

com cromossomo Ph positivo. Dos pacientes que utilizavam inibidor a mais de 12

meses, 84,2% responderam a terapia, demonstrando resultados negativos, enquanto

15,8% ainda possuíam citogenética clássica positiva.

A Figura 11 sumariza a evolução da citogenética clássica e da terapia utilizada.

Inicialmente todos os pacientes apresentaram alteração cromossômica específica da

LMC, o cromossomo Ph, que determinou o diagnóstico e possibilitou a utilização do

uso do inibidor de TK.

49

Figura 10- Resposta citogenética em relação ao tempo de uso do TKI nos pacientes

Figura 11- Evolução da citogenética clássica e terapia utilizada

50

Na Tabela 5 estão descritos os resultados obtidos na citogenética molecular (FISH),

onde 18 pacientes (90%) apresentaram o rearranjo BCR-ABL e apenas 2 (10%)

demonstraram ausência do rearranjo. Não ocorreu nenhum óbito até o momento em que

os pacientes foram acompanhados por esse estudo.

Tabela 5 Resultados da citogenética molecular (FISH).

Caso Resultado da Citogenética Molecular (FISH)

1 nuc ish(ABLx2),(BCRx2),(ABL con BCRx1)[34/200]

2 nuc ish(ABL,BCR)x2[200]



5 nuc ish(ABL,BCR)x2[200]
















De acordo com os resultados, a citogenética clássica demonstra uma menor

sensibilidade para observar as alterações presentes na LMC. A técnica molecular

possibilitou resultados em todos as análises, revelando a presença do rearranjo BCR-

51

ABL quando o Ph não era identificado na técnica convencional ou confirmando sua

ausência (Figura 12). Nos casos com resultados inconclusivos essa técnica foi

fundamental para a conclusão diagnóstica e posterior acompanhamento, manuntenção

ou mudança na conduta terapêutica realizada. A evolução completa dos resultados da

citogenética e a terapia utilizada estão apresentadas no Apêndice A.

Figura 12- Comparação entre os resultados clássico e molecular (FISH). Teste X

2 quadrado.

As frequências relativas do cromossomo Ph, observadas na análise citogenética por

bandamento G e as frequências do rearranjo BCR-ABL detectados pela técnica de

FISH, estão apresentadas na Tabela 6 e Figura 13. O cromossomo Ph foi observado em

3 dos casos estudados por citogenética convencional (15%), enquanto o rearranjo BCR-

52

ABL foi identificado em 18 casos pela FISH (90%). A figura 13 demonstra

estatisticamente a sensibilidade e especificidade da técnica molecular (FISH).

Tabela 6. Frequência de metáfases submetidas ao bandamento G com a translocação

t(9;22)(q34;q11) e frequência de núcleos com o rearranjo BCR/ABL detectados por FISH.

Caso Frequência de metáfases com Ph (%) Núcleos com fusão BCR-ABL (%)

1 10 17

2 0 0

3 0 16,5

4 0 8

5 0 0

6 100 100

7 0 18

8 0 6

9 0 5

10 0 7

11 23,33 21

12 0 8

13 0 5

14 0 7

15 0 5

16 0 6

17 0 5

18 0 8

19 0 13

20 0 7

53

Figura 13- Percentual de alterações nas técnicas citogenéticas clássica (cromossomo Ph) e

molecular (rearranjo BCR-ABL). Teste de Mann-Whitney.

5.1 RESULTADOS DA CITOGENÉTICA CLÁSSICA

Figura 14- Ilustração do cariótipo de um caso normal. Captura realizada em

sistema computadorizado Applied Imaging.

54

Figura 15- Ilustração do cariótipo de um caso alterado, paciente com t(9;22). Captura realizada

em sistema computadorizado Applied Imaging.

Figura 16-Ilustração do cariótipo de um caso alterado, paciente com trissomia do cromossomo

8. Captura realizada em sistema computadorizado Applied Imaging.

55

5.2 RESULTADOS DA CITOGENÉTICA MOLECULAR (FISH)

A B

Figura 17- Ilustração da FISH com sonda a LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans. Em A e B,

casos normais com presença de dois sinais vermelhos e dois sinais verdes. (Captura realizada

em sistema computadorizado Applied Imaging. Aumento: 100X).

C D

Figura 18- Ilustração da FISH com sonda a LSI BCR/ ABL Dual C, Dual F, Trans. Em C e D,

casos alterados com uma fusão representando a t(9;22), um sinal verde e um sinal vermelho.

(Captura realizada em sistema computadorizado Applied Imaging. Aumento: 100X).

56

6 DISCUSSÃO

A LMC é uma neoplasia com curso clínico heterogêneo que varia a depender da fase da

doença. Todo o avanço tanto no diagnóstico mais precoce, quanto na melhora da

conduta terapêutica desses pacientes, tem estimulado muitos estudos na busca do

aperfeiçoamento do conhecimento acerca de todos os mecanismos envolvidos na

transformação maligna da célula. Nesse contexto as alterações cromossômicas possuem

grande importância e são consideradas fundamentais na gênese e evolução do quadro.

São diversas as estratégias de análise genética das células leucêmicas e estas incluem

além da citogenética clássica e da técnica de FISH, a técnica de polymerase chain

reaction (PCR), a reverse transcriptase - polymerase chain reaction (RT-PCR), a

comparative genomic hybridization (CGH), entre outras. Nesse trabalho foi utilizada a

técnica de FISH aliada à citogenética clássica no monitoramento de pacientes com LMC

em terapia com TKI. Essas técnicas permitem a detecção do rearranjo BCR-ABL e do

cromossomo Ph, fundamentais para o diagnóstico e prognóstico da LMC.

As alterações mais comuns nessa patologia e as técnicas utilizadas para identificá-las já

foram demonstradas em muitos trabalhos na literatura, entretanto a realização desse

estudo ganha importância em decorrência da carência de dados e pesquisas nesta área

em nosso Estado. Com os dados obtidos no presente estudo objetiva-se fortalecer as

nossas bases em pesquisa, atentando para a assistência, auxílio diagnóstico, capacitação

técnica e científica, além de permitir um diagnóstico mais específico dos pacientes.

A Tabela 1 sumarizou os dados clínicos como o sexo, idade e fase da doença em que o

paciente desse estudo estava no momento do diagnóstico da LMC, mostrando discreta

predominância do sexo masculino, corroborando com dados apresentados na literatura

(GIGLIO e BOLLMANN, 2011; BORTOLHEIRO e CHIATTINE, 2008). A faixa

etária mais atingida pela LMC, segundo Ferdinand et al., 2012 varia entre 45 a 55 anos

com média de 66 anos, entretanto esse estudo demonstrou uma variação entre 20 e 65

anos, com média de 43,6 anos. De acordo com a fase da doença no momento do

diagnóstico, houve uma predomínio da fase crônica em relação à fase de aceleração,

http://en.wikipedia.org/wiki/Comparative_genomic_hybridization

57

corroborando com dados apresentados no estudo realizado por Vendrame-Goloni et al,

2006.

A análise clássica, embora mais demorada e dependente da obtenção de metáfases em

boas condições, tem grande importância. De acordo com Chauffaille, 2008, para que o

acompanhamento adequado da resposta dos pacientes à utilização da terapia com TKI

seja possível é necessário que se conheça o padrão inicial do cariótipo. Ao diagnóstico

existem além do cromossomo Ph clássico, cromossomos Ph com alterações adicionais,

variantes simples do cromossomo Ph, evolução clonal ou outras anomalias (CORTES et

al., 2003), que são importantes para o monitoramento desses pacientes.

A Tabela 2 mostra os dados obtidos dos prontuários em relação ao resultado da

citogenética clássica e o inibidor utilizado ao diagnóstico. Todos apresentavam o

cromossomo Ph, dados que coincidem com os resultados apresentados por Vendrame-

Goloni et al, 2006. Esses pacientes foram tratados inicialmente com o imatinibe, um

inibidor de TK de primeira escolha, que segundo Negrine e Schiffer, 2012, é

considerado muito eficiente no tratamento inicial para a maioria dos pacientes em fase

crônica. Os pacientes que foram diagnosticados já em fase acelerada também receberam

o imatinibe, pois os inibidores de segunda geração devem ser administrados somente

quando não existir resposta citogenética (KANTARJIAN et al., 2008).

Somente em um dos casos (5%), o caso 13, além do clone Ph positivo verificou-se a

presença de outro clone com trissomia do cromossomo 8, dado que coincide com o

estudo realizado por Alimena et al., 2006, que relatou que a detecção da evolução clonal

apresenta correspondência clínica com a progressão da doença para fase acelerada ou

crise blástica e está presente em 7% dos casos de LMC ao diagnóstico.

A resposta ao tratamento é dependente do tempo em que o TKI esta sendo administrado.

Dos pacientes selecionadas para esse trabalho, com exceção do caso 6, todos estavam

em tratamento a mais de 12 meses. Dos que iniciaram o tratamento com o imatinibe e

estavam em uso a mais de 18 meses, 77,8% apresentaram resposta citogenética maior

(RCM), corroborando com os dados do estudo de O’Brien et al, 2003. Este comparou o

imatinibe com o interferon associado à citarabina em pacientes com LMC ainda não

tratados e demonstrou que a taxa estimada de RCM aos 18 meses era de 87,1% para o

58

grupo do imatinibe e de 34,7% no grupo que recebeu interferon e citarabina,

comprovando a eficácia desse fármaco quando administrado ao diagnóstico.

O inibidor utilizado no momento da coleta de medula óssea para a análise desse estudo

e os resultados da citogenética clássica durante tratamento estão representados na

Tabela 3, revelando dados importantes para entender a evolução citogenética após

tratamento com TKI. Destes, 12 pacientes (60%) apresentaram RCM e 4 (20%) ainda

não apresentavam resposta ao tratamento (ABREU e LOPES, 2009). Os casos 2, 3, 5 e

19 (20%) não foram avaliados quanto à evolução por apresentarem resultado

inconclusivo na técnica clássica, devido ausência de crescimento celular ou

impossibilidade de análise, o que foi observado também em outros estudos.

Os pacientes que iniciaram o tratamento com imatinibe passaram a usar o dasatinibe

devido à falha terapêutica ou intolerância. Os pacientes refratários, que falharam ao

tratamento inicial, foram avaliados após 12 meses, conduta que coincidem com a

apresentada por Pagnano, 2008. Destes pacientes, 3 (50%) apresentaram RCM, 1 (16,

7%) apresentou resposta citogenética parcial e 2 (33, 3%) apresentaram resultado

inconclusivo pela ausência de crescimento celular (DELAMAIN e CONCHON, 2008 )

Segundo Chauffaille , 2009, os pacientes que não respondem ou apresentam intolerância

ao imatinibe e ao dasatinibe passam a utilizar a terceira opção de tratamento, o

nilotinibe, e apresentam RCM, o que também foi observado no presente estudo onde

100% dos pacientes tratados com nilotinibe apresentaram citogenética clássica normal.

Tanto o dasatinibe quanto o nilotinibe são muito eficazes em pacientes resistentes ao

imatinibe, exceto naqueles portadores da mutação T315I, e também em pacientes

resistentes por mecanismos independentes da mutação BCR-ABL (ABREU e LOPES,

2009).

Os resultados das análises da citogenética molecular (FISH) estão sumarizados na

Tabela 5. Em todos os casos a técnica possibilitou um diagnóstico, estabelecendo

resultado nas análises e demonstrando sua especificidade. Os casos 2 e 5 não

apresentaram o rearranjo BCR-ABL, entretanto a FISH foi importante para estabelecer

um diagnóstico, pois por falta de crescimento celular, logo impossibilidade de análise,

obtiveram resultado inconclusivo na técnica convencional. Os casos 3 e 19 também

59

foram inconclusivos na técnica clássica, entretanto revelaram um percentual

consideravelmente elevado de rearranjo BCR-ABL, 16,5% e 13% respectivamente

(Tabela 6), demonstrando que a FISH foi fundamental para estabelecer a conduta

terapêutica a ser adotada nesses pacientes.

Nos casos 1, 6 e 11 a análise molecular concordou com os achados na técnica

convencional, entretanto foi importante para concluir de maneira mais segura o

resultado, pois, mesmo após alteração do inibidor inicialmente utilizado, esses pacientes

ainda apresentavam o cromossomo Ph e, de acordo com Chauffaille 2008, a FISH é

fundamental em casos de resistência ao tratamento quando pode evidenciar

reaparecimento do rearranjo ou mesmo mais de uma cópia por ocasião da amplificação

da fusão gênica.

O caso 7 apresentou resultado normal na técnica convencional, entretanto ao ser

analisado pelo método molecular revelou a presença de 18% de rearranjo BCR-ABL

(Tabela 6), demonstrando a importância de aliar o diagnóstico molecular ao clássico.

Segundo Chauffaille, 2008, na ausência do cromossomo Ph em caso clinicamente

compatível com LMC se tornam necessária a investigação do rearranjo BCR-ABL por

métodos moleculares, tais como, FISH ou PCR, já que o mesmo pode estar presente na

ausência de alteração cromossômica quando essas células não entram em divisão e, por

conseguinte, o clone não pode ser detectado pelo método convencional.

Desse modo, este trabalho demonstrou a importância da associação das técnicas

citogenéticas clássica e molecular (FISH) no acompanhamento de pacientes com LMC

em tratamento com TKI. Tendo em vista as limitações desse estudo, novos trabalhos

que possibilitem uma avaliação mais completa se fazem necessários para comprovar os

resultados aqui apresentados.

60

7 CONCLUSÃO

Na LMC existem algumas alterações genéticas que surgem a depender da fase da

doença e são identificadas no estudo genético. Nas últimas décadas, a análise

citogenética tem se tornado crucial na conduta de pacientes com essa patologia, uma vez

que permite o diagnóstico, análise da evolução do quadro, acompanhamento mais

direcionado e a definição terapêutica, o que resulta em uma conduta mais específica e

sensível por apresentarem as vantagens e desvantagens das duas análises.

A técnica citogenética detectou 20% de alterações cromossômicas, o que pode ser

explicado pela dificuldade em obter metáfases e devido a essa dificuldade, 4 pacientes

apresentam resultado inconclusivo. É uma técnica mais trabalhosa e requer qualificação

profissional, pois a identificação dos cromossomos não é simples. A Hibridação in situ

Fluorescente (FISH) possibilitou resultado em 100% dos casos, sendo que 90%

apresentaram o rearranjo estudado, é mais rápida, com maior especificidade e resolução

muito específica, mas não possibilita a identificação de outras alterações.

Esse trabalho compreende o primeiro passo para um entendimento mais completo

acerca do perfil epidemiológico e molecular dos pacientes com LMC no Estado da

Bahia, entretanto seria de grande importância um estudo com maior número de

pacientes com mais situações clínicas, a fim de proporcionar melhor avaliação e

permitir a definição de orientações mais eficientes. A padronização das técnicas

utilizadas é um avanço importante para o Estado da Bahia, pois além de tornar possível

a resolução de casos críticos, supre uma necessidade local da utilização dos recursos

dessas técnicas no estudo de muitas outras doenças onco-hematológicas.

61

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67

APÊNDICE A- Tabela com a evolução diagnóstica e terapêutica dos pacientes.

68

APÊNDICE B-Termo de Consentimento Livre e Esclarecido

Você está sendo convidado a participar voluntariamente do projeto de pesquisa

“Análise Citogenética e Molecular (FISH) de pacientes com Leucemia Mielóide

Crônica em terapia com Inibidores de Tirosino quinase no Estado da Bahia.” Caso

tenha mais do que 18 anos, leia atentamente as informações a seguir antes de dar seu

consentimento. Em caso de dúvida peça esclarecimento e só assine após ter certeza

sobre todas as informações. Desde logo fica garantido o sigilo das informações. Em

caso de recusa você não será penalizado (a) de forma alguma.

INFORMAÇÕES SOBRE A PESQUISA

Título do Projeto: Análise Citogenética e Molecular (FISH) de pacientes com Leucemia

Mielóide Crônica em terapia com Inibidores de Tirosinoquinase, no Estado da Bahia.

Pesquisador Responsável: Dra. Ivana Lúcia de Oliveira Nascimento

Telefone para contato (inclusive ligações a cobrar): (71) 92364424

Pesquisadores participantes: Dra. Maura Alice Santos Romeo; Mestranda Máilla

Rebouças Viana.

OBJETIVO DO ESTUDO

O objetivo deste estudo foi demonstrar a importância da utilização da técnica de

citogenética molecular (FISH) aliada à citogenética clássica em pacientes com LMC em

terapia com TKI.

O grupo de estudo será constituído por 20 pacientes de ambos os sexos, maiores de 18

anos com diagnóstico de Leucemia Mielóide Crônica em terapia com TKI,

acompanhados em um dos serviços de referência de hematologia do Estado da Bahia, o

Hospital Universitário Edgar Santos. A coleta será realizada com o uso de protocolo já

estabelecido e em pacientes que já são acompanhados e já realizariam o procedimento

Os critérios de inclusão são todos os pacientes de ambos os sexos, maiores de 18 anos,

com diagnóstico de Leucemia Mielóide Crônica em terapia com TKI. Existe um risco

em relação a coleta, porém já é um procedimento realizado para o acompanhamento da

doença e nenhum desses será provocado apenas para a realização da pesquisa.

69

JUSTIFICATIVA DO ESTUDO

A Leucemia Mielóide Crônica (LMC) é uma doença clonal com origem na célula

progenitora hematopoiética, caracterizada pela presença do cromossoma Filadélfia (Ph)

que gera a proteína de fusão BCR-ABL com atividade enzimática tirosina quinase

alterada.

Para estabelecer o diagnóstico da LMC deve ser realizada uma avaliação clínica e

laboratorial para caracterizar as diferentes fases da doença, e são igualmente

importantes na definição do grupo de risco a que pertence cada doente.

A monitorização da resposta à terapêutica é fundamental para os pacientes com LMC,

uma vez que permite avaliar o tipo de resposta e detectar eventuais resistências ao

tratamento. Essa monitorização deve ser efetuada em períodos de tempo pré-

estabelecidos e englobar uma avaliação clínica e laboratorial, que inclui a citogenética e

o estudo molecular.

Avaliar citogeneticamente esses pacientes pelo método clássico, faz parte dos

protocolos determinados pela European LeukemiaNet. Técnicas moleculares podem ser

usadas para detectar o rearranjo BCR/ABL, ao diagnóstico, e para as situações em que

não se tem metáfases para análise ou onde o Ph está mascarado no cariótipo.

O presente estudo pretende demonstrar a importância da técnica citogenética molecular

(FISH) aliada a citogenética clássica para pacientes com LMC em terapia com

inibidores de tirosino quinase (TKI).

DE QUE FORMA POSSO AUXILIAR NESSE ESTUDO?

Você pode auxiliar nesse estudo autorizando a participação e publicação de dados da

consulta, além de amostras da coleta da medula óssea que já serão realizadas para

exames médicos de rotina.

QUAIS OS RISCOS QUE PODEM EXISTIR NOS EXAMES?

Para realizar o exame citogenético será necessário coleta da medula óssea, um

procedimento trabalhoso, demorado e doloroso que proporciona incomodo ao paciente,

porém sua importância vem da possibilidade de detecção precoce de recaídas, evoluções

clonais e surgimento de clones anormais nas células Ph negativas. A coleta utilizada

70

para o estudo já seria realizada pela equipe médica com o objetivo de acompanhar a

evolução do quadro e dessa forma, nenhuma coleta será realizada somente para o

estudo. Não é necessário estar em jejum e nem tomar nenhum medicamento. Os

resultados obtidos são absolutamente confidenciais, portanto serão comunicados

somente à pessoa e ao profissional médico que a acompanha. A comunicação dos

resultados a terceiros só poderá ser realizada mediante autorização do interessado.

COMO SERÁ FEITA A PESQUISA?

As amostras da medula óssea de pessoas que atendem aos objetivos da pesquisa serão

encaminhadas ao laboratório para realização do estudo citogenético clássico e

molecular.

O QUE SERÁ FEITO COM O MATERIAL E OS DADOS COLETADOS DE

CADA PACIENTE?

A coleta será realizada uma única vez para o estudo, o material e a ficha-protocolo com

o resultado serão armazenados no Serviço de Genética Médica do Hospital

Universitário Prof. Edgar Santos-Universidade Federal da Bahia (UFBA). As amostras

não serão oferecidas a outros centros ou laboratórios e a identificação do paciente será

mantida em absoluto sigilo sobre responsabilidade dos pesquisadores responsáveis.

_______________________________________

Dra. Ivana Lucia de Oliveira Nascimento

71

CONSENTIMENTO DA PARTICIPAÇÃO DA PESSOA COMO SUJEITO

Eu,____________________________________________________________, abaixo

assinado, concordo em participar do estudo

_____________________________________________, como sujeito. Fui devidamente

informado e esclarecido pelo pesquisador ______________________________ sobre a

pesquisa, os procedimentos nela envolvidos, assim como os possíveis riscos e

benefícios decorrentes de minha participação. Foi-me garantido o sigilo das

informações e que posso retirar meu consentimento a qualquer momento, sem que isto

leve a qualquer penalidade ou interrupção de meu acompanhamento, assistência e/ou

tratamento.

Local e data _______________,_______/_______/__________.

De acordo,

____________________________________

Assinatura do sujeito ou responsável

72

ANEXO A- Formulário de Aprovação do Comitê de Ética em Pesquisa –

CEP-HUPES

universidade federal da bahia ... - repositorio.ufba.br¡illa... · doutor em imunologia pela...

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