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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS
ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
RESPUESTA DEL CULTIVO DE FRÉJOL CARAOTA (Phaseolus vulgaris L.) A LA APLICACIÓN FOLIAR COMPLEMENTARIA DE TRES BIOESTIMULANTES.
TUMBACO, PICHINCHA.
TESIS DE GRADO PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERO AGRÓNOMO
WAGNER STALIN ESCOBAR OÑA
QUITO – ECUADOR
2015
ii
DEDICATORIA
A DIOS, el cual con su amor y sabiduría me guío y ayudo a superar todas las pruebas y
obstáculos que se han presentado.
A mis padres Abdón Calderón Escobar Cahuatijo y María Fanny Isabel Oña Chango, por el
apoyo incondicional, los consejos y el esfuerzo que realizaron día a día para bridarme una
vida llena de felicidad y amor.
A mis abuelitos, Mamachava y Papalucho, quienes fueron ejemplo de vida y que ahora desde
el cielo sé que siguen apoyándome.
A mi Ñaña Lupe por ser como una madre y compartir su sabiduría durante todo este tiempo.
A mi Ñaño Pepe por animarme durante todos estos años.
A mis hermanos Alexandra, Nancy, Shubert y Byron por apoyarme y ser un pilar fundamental
en mi formación personal y profesional.
A mí amada Hormiguita Con Piel De Luna Llena por brindarme su apoyo y amor
incondicional durante esta etapa.
A mí precioso y lindo retoño por ser un impulso para la culminación de este proyecto.
Y por último a todas aquellas frases que llenaron de alegría cada momento en la Universidad,
frases como: ¡Que estas chumado!, ¡Que vives por vivir!, Me trompece, A papá…a papá,
¡Tengo Hambre!, Veras mi amor lo que el Wagner quiere decir, Obvio, Donta Payasito y
muchas otras que causaron risas y alegrías.
iii
AGRADECIMIENTO
A la Facultad de Ciencias Agrícolas, y a los docentes que han intervenido en la elaboración de
este trabajo.
A la empresa BIOINVEST por los biocontroladores usados en la investigación
Al Ing. Manuel Suquilanda y al Ing. Maicol Ayala por compartir sus conocimientos y
dirigirme en la realización de este trabajo.
Al Ing. Valdano Tafur ya que gracias a su apoyo fue posible la terminación de este proyecto.
A mi Querida Familia por su colaboración incondicional en varias etapas de la realización de
este trabajo.
A mi Esposa e hijo por su paciencia y amor.
Agradezco a mis amigos Wilson, Carlos, Víctor, Erika, Byron, Cristóbal, David, Patricio,
Leonardo, Iván, Luisa, Christian, Edison por formar parte de esta aventura extraordinaria de la
vida universitaria y por su apoyo en varias fases de este trabajo.
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, WAGNER STALIN ESCOBAR OÑA. En calidad de autor del trabajo de investigacióno tesis realizada sobre "RESPUESTA DEL CULTIVO DE FRÉJOL CARÁOTA(Phaseolus vulgaris L.) A LA APLICACIÓN FOLIAR COMPLEMENTARIA DE TRESBIOESTIMULANTES. TUMBACO, PICHINCHA", "RESPONSE OF THE CARÁOTAKIDNEY BEAN (Phaseolus vulgaris L.) CROPS TO THE COMPLEMENTARYAPPLICATION OF THREE BIO-STIMULANTS. TUMBACO, PICHINCHA." por lapresente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos loscontenidos que me pertenecen o de parte de los que contienen esta obra, con finesestrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente autorización,seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8; 19 ydemás pertinentes de la ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
Quito, 14 de Mayo del 2015
FIRMA"C.C.1717834657Emaíl: [email protected]
IV
CERTIFICADO
En calidad de tutor de trabajo de graduación cuyo título es: ""RESPUESTA DEL CULTIVODE FRÉJOL CARÁOTA (Phaseolus vulgaris L.) A LA APLICACIÓN FOLIARCOMPLEMENTARIA DE TRES BIOESTIMULANTES. TUMBACO, PICHINCHA"presentado por el señor Wagner Stalin Escobar Oña, previo a la obtención del Título deIngeniero Agrónomo considero que el proyecto reúne los requisitos necesarios
Quito, 14 de Mayo del 2015
Ing. Agr. Valdano Tafiír.TUTOR
Tumbaco, 14 de Mayo del 2015
IngenieroCarlos Ortega O., M.Sc.DIRECTOR DE CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICAPresente.
Señor Director:
Luego de las revisiones técnicas realizadas por mi persona del trabajo de graduaciónRESPUESTA DEL CULTIVO DE FRÉJOL CARÁOTA (Phaseolus vulgarís L.) A LAAPLICACIÓN FOLIAR COMPLEMENTARIA DE TRES BIOESTIMULANTES.TUMBACO, PICHINCHA llevada a cabo por parte del señor egresado: WAGNERSTALIN ESCOBAR OÑA de la Carrera de Ingeniería Agronómica, ha concluido demanera exitosa, consecuentemente el indicado estudiante podrá continuar con los trámitesde graduación correspondientes de acuerdo a lo que estipula las normativas y disposicioneslegales.
Por la atención que se digne dar a la presente, reitero mi agradecimiento.
Atentamente,
Ing. Agr. Valdano Tafur.TUTOR
RESPUESTA DEL CULTIVO DE FRÉJOL CARÁOTA (Phaseolusvulgarís L.) A LA APLICACIÓN FOLIAR COMPLEMENTARIA DETRES BIOESTIMULANTES. TUMBACO, PICHINCHA.
APROBADO POR:
Ing. Agr. Valdano Tafur.
TUTOR DE TESIS
Lie. Diego Salazar., M. Se.
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL
Ing. Agr. Manuel Pumisacho, M.Sc.
PRIMER VOCAL
Ing. Agr. Juan Pazmiño., M.Sc.
SEGUNDO VOCAL
2015
viii
CONTENIDO CAPÍTULO PÁGINAS
1. INTRODUCCIÓN 1
Objetivos 2 1.1.
2. REVISIÓN DE LITERATURA 3
2.1. Cultivo de fréjol 3
2.2. Manejo del cultivo 4
2.3. Fertilización orgánica 5
2.4. Fertilización foliar 6
2.5. Categorias de la fertilización foliar 8
2.6. Mecanismos de la absorción foliar 9
2.7. Respuesta a la fertilización foliar 9
2.8. Factores que determinen la eficiencia foliar 10
2.9. Velocidad de absorción 20
2.10. Cuando fertilizar vía foliar 21
2.11. Bioestimulantes 21
2.12. Bioestimulantes en estudio 28
3. MATERIALES Y MÉTODOS 30
Materiales 31 3.1.
Métodos 32 3.2.
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 40
Germinación de las plantas 40 4.1.
Altura de planta. 40 4.2.
Número de vainas por planta 46 4.3.
Tamaño de la vaina 49 4.4.
Número de granos por vaina 53 4.5.
Peso de 100 granos 57 4.6.
Rendimiento 60 4.7.
ix
CAPÍTULO PÁGINAS
Incidencia de insectos plagas y enfermedades 64 4.8.
Análisis financiero 64 4.9.
5. CONCLUSIONES 68
6. RECOMENDACIONES 69
7. RESUMEN 70
8. SUMMARY 74
9. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 77
10. ANEXOS 92
x
LISTA DE ANEXOS
ANEXO PÁG.
1 Disposición de tratamientos en la Localidad de Tumbaco, Pichincha 92
2 Contenidos nutrimentales de Organic Mix (Ficha técnica). 93
3 Contenidos nutrimentales de Newfol Plus (Ficha técnica). 95
4 Análisis del Biol. INIAP, y tabla de elementos para enriquecer el biol. 98
5 Análisis de Suelo. Facultad de Ciencia Agrícolas. 99
6 Análisis de Estiércol. Facultad de Ciencia Agrícolas. 101
7 Ficha Técnica. Trichoderma harzianum, Beauveria bassiana y
Bacillus thuringiensis. Bioinvest. 104
8 Principales plagas del cultivo de Fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris
L.) y su control biológico. 105
9 Tablas de promedios del libro de campo. 106
10 Fotografías. 109
xi
LISTA DE CUADROS CUADRO PÁG.
1 Velocidad de absorción de diferentes nutrimentos en la hoja de frijol.
Fregoni (1986). 20
2 Ubicación política y geográfica del ensayo 2013. 31
3 Características Agro-climáticas y edáficas en la localidad de Tumbaco,
Pichincha 2013. 31
4 Herramientas, insumos y equipos usados en campo 32
5 Tratamientos evaluados en el ensayo de aplicación de tres clases de
Bioestimulantes en tres dosis en el cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2013. 33
6 Esquema del análisis de la varianza para un diseño de bloques
completos al azar de 11 tratamientos con cuatro repeticiones, 2013. 35
7 Escala arbitraria para la determinación de la incidencia de
enfermedades, expresada en porcentaje de infección. 36
8 Escala arbitraria para la determinación de la incidencia de insectos
plaga, expresada en porcentaje de infestación. 37
9 Dosificación de cada uno de los tratamientos evaluados en el ensayo
de aplicación de tres clases de Bioestimulantes, en tres dosis en el
cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha.
2013. 38
10 Porcentaje promedio de pruebas de germinación del fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2014. 40
11 ADEVAS para seis variables en el estudio de Bioestimulantes
aplicados en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco,
Pichincha. 2014 42
12 Promedios y Pruebas de Significación en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 45
13 Promedios y Pruebas de Significación en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 56
xii
CUADRO PÁG.
14 Costos de producción de una hectárea de fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2013. 65
15 Financiamiento de producción de una hectárea de fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2015. 66
16 Análisis económico de los tratamiento en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de
tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 67
xiii
LISTA DE GRÁFICOS
GRÁFICO PÁG.
1 Promedio de altura de planta para Bioestimulantes en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 43
2 Promedio de altura de planta para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 43
3 Promedio de altura de planta para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 44
4 Promedio de altura de planta para Factorial vs Adicional en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 44
5 Promedio de número de vainas por planta para Bioestimulantes en
fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 47
6 Promedio de número de vainas por planta para Dosis en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 48
7 Promedio de número de vainas por planta para Tratamientos en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 48
8 Promedio de número de vainas por planta para Factorial vs Adicional
en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 49
9 Promedio de tamaño de la vaina para Bioestimulantes en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 51
xiv
GRÁFICO PÁG.
10 Promedio de tamaño de la vaina para Dosis en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 51
11 Promedio de tamaño de la vaina para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.0 52
12 Promedio de tamaño de la vaina para Factorial vs Adicional en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 52
13 Promedio de número de granos por vaina para Bioestimulantes en
fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 54
14 Promedio de número de granos por vaina Dosis en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 54
15 Promedio de número de granos por vaina para Tratamientos en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 55
16 Promedio de número de granos por vaina para Factorial vs Adicional
en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación
foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014. 55
17 Promedio de peso de 100 granos para Bioestimulantes en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 58
18 Promedio de peso de 100 granos para Dosis en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 59
19 Promedio de peso de 100 granos para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 59
xv
GRÁFICO PÁG.
20 Promedio de peso de 100 granos para Factorial vs Adicional en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 60
21 Promedio de rendimiento para Bioestimulantes en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 62
22 Promedio de rendimiento para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 62
23 Promedio de rendimiento para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 63
24 Promedio de rendimiento para Factorial vs Adicional en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014. 63
xvi
RESPUESTA DEL CULTIVO DE FRÉJOL CARAOTA (Phaseolus vulgaris L.) A LA
APLICACIÓN FOLIAR COMPLEMENTARIA DE TRES BIOESTIMULANTES.
TUMBACO, PICHINCHA.
RESUMEN
En la Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador, se evaluaron
Bioestimulates: b1 (Organic Mix), b2 (Newfol Plus) y b3 (Biol enriquecido con micronutrientes) y
dosis, d1 (Dosis baja, 25% menos que la dosis recomendada), d2 (Dosis media, dosis recomendada) y
d3 (Dosis alta, 25 % más que la dosis recomendada) en la fertilización foliar complementaria en fréjol
Caraota. Se utilizó un DBCA con un arreglo factorial de 3 x 3 + 2 con cuatro repeticiones. El Biol
enriquecido con micronutrientes obtuvo la mejor respuesta en las variables: Altura de planta, Número
de vainas por planta, Peso de 100 granos y Rendimiento; Newfol Plus en: Tamaño de la vaina, Número
de granos por vaina. La Dosis Media alcanzó mejor respuesta en las variables: Número de vainas por
planta, Peso de 100 granos y Rendimiento; la Dosis alta en: Tamaño de la vaina y Número de granos
por vaina. La mejor respuesta para Altura de planta se obtuvo con la Dosis baja.
PALABRAS CLAVES: BIOESTIMULANTES, CARAOTA, PHASEOLUS VULGARIS, BIOL
ENRIQUECIDO CON MICRONUTRIENTES, ORGANIC MIX, NEWFOL PLUS.
xvii
RESPONSE OF THE CARAOTA KIDNEY BEAN (Phaseolus vulgaris L.) CROPS TO
THE COMPLEMENTARY APPLICATION OF THREE BIO-STIMULANTS.
TUMBACO, PICHINCHA.
ABSTRACT
At the School of Agricultural Sciences of the “Universidad Central del Ecuador”, Bio-stimulants: b1
(Organic Mix), b2 (Newfol Plus) and b3 (micronutrient enriched Liquid Organic Fertilizer) were
evaluated along with doses, d1 (Low dose, 25% less that the recommended amount), d2 (Medium dose,
recommended amount) and d3 (High dose, 25 % more than the recommended amount) during the
complementary foliar fertilization of Caraota kidney beans. A Random Block Design was used with a
factor arrangement of 3 x 3 + 2 with four repetitions. The micronutrient enriched Liquid Organic
Fertilizer presented the best results regarding the variables: Plant height, Number of pods per plant,
Weight of 100 grains and Yield; Newfol Plus regarding: Pod size, Number of grains per pod. The
Medium Dose reached a better result regarding the variables: Number of pods per plant, Weight of 100
grains and Yield; the High Dose regarding: Pod size and Number of grains per pod. The best results for
plant height were obtained using the Low Dose.
KEYWORDS: BIO-STIMULANTS, CARAOTA, PHASEOLUS VULGARIS, MICRONUTRIENT
ENRICHED LIQUID ORGANIC FERTILIZER, ORGANIC MIX, NEWFOL PLUS.
RESPONSE OF THE CARÁOTA KIDNEY BEAN (Phaseolus vulgarís L.) CROPS TOTHE COMPLEMENTARY APPLICATION OF THREE BIO-STIMULANTS.TUMBACO, PICHINCHA.
ABSTRACT
At the School of Agricultural Sciences of the "Universidad Central del Ecuador", Bio-stimulants: bl
(Organic Mix), b2 (Newfol Plus) and b3 (micronutrient enriched Liquid Organic Fertilizer) were
evaluated along with doses, di (Low dose, 25% less that the recommended amount), d2 (Médium dose,
recommended amount) and d3 (High dose, 25 % more than the recommended amount) during the
complementary foliar fertilization of Caráota kidney beans. A Random Block Design was used with a
factor arrangement of 3 x 3 + 2 with four repetitions. The micronutrient enriched Liquid Organic
Fertilizer presented the best results regarding the variables: Plant height, Number of pods per plant,
Weight of 100 grains and Yield; Newfol Plus regarding: Pod size, Number of grains per pod. The
Médium Dose reached a better result regarding the variables: Number of pods per plant, Weight of 100
grains and Yield; the High Dose regarding: Pod size and Number of grains per pod. The best results for
plant height were obtained using the Low Dose,
KEYWORDS: BIO-STIMULANTS, CARÁOTA, PHASEOLUS VULGARÍS,MICRONUTRIENT ENRICHED LIQUID ORGANIC FERTILIZER, ORGANIC MIX,NEWFOL PLUS.
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1
1. INTRODUCCIÓN
El fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) es una leguminosa de grano originaria de Centroamérica,
difundida y cultivada en casi todos los países del trópico y de clima templado. (Guzmán, 1988). Es
una planta de la familia fabaceae (leguminosae), conocido comúnmente con los nombres de poroto,
habichuela, judía, ejote, alubia, o caraota. Es de consumo común en los países latinoamericanos y muy
apetecida en Europa, Estados Unidos y el Japón (MAGAP, 2005).
Considerada una de las once especies que alimentan al mundo, tanto así, que según la FAO, ocupa el
octavo lugar entre las leguminosas cultivadas en el planeta, convirtiendose en un producto de gran
consumo a nivel mundial (FAO, 1995), siendo conocido en los países en desarrollo de Africa y
América como la "carne del pobre" (Armas y Reyes, 2011).
Con los problemas de abastecimiento regional de alimentos, las leguminosas entran a jugar un papel
protagónico por ser una de las fuentes de abastecimiento proteico más funcionales y económicas
(Orrego, 2005); el fréjol (Phaseolus vulgaris L.) tiene un alto contenido de proteinas (22%) y calorias
(390 cal/100 g) y es usado en programas de rotación, gracias a su capacidad de fijar nitrógeno
atmosférico y mejorar la fertilidad de los suelos ( Morros, 1996).
La importancia económica y social de este cultivo en Ecuador, se debe a que es un componente
proteico importante en la dieta de la población, principalmente en las zonas rurales, donde es cultivado
por pequeños y medianos agricultores en todas las provincias de la Sierra ecuatoriana. Los sistemas de
producción siguen siendo tradicionales. A estas circunstancias se suman la incidencia de otros factores
de índole sanitaria y climática como son las enfermedades, heladas y la presencia de insectos plaga que
afectan la producción de este cultivo (Caicedo, C; Murillo, A; Peralta, E, 1998).
Por ende, su interés no ha sido ajeno a entidades, asociaciones e institutos de investigación,
mejoramiento y producción de semillas, que han visto a este cultivo como un elemento integral en el
escenario de la soberanía alimentaria; sin embargo, quizás estas mismas circunstancias han envuelto a
este producto en una nube de olvido para su propio desarrollo, a pesar de contar con zonas
agroecológicas, una base social y una oferta ambiental propias para su buen desarrollo, nuestros países
siguen importando una cantidad significativa del fréjol que consumen (Orrego, 2005).
En estudios llevados a cabo en la Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Central del
Ecuador, se manifiesta que la aplicación foliar complementaria de fertilizantes orgánicos, mejora la
producción de varios cultivos, muchos de los cuales son de fabricación artesanal, permitiendo reducir
los costos de producción a la vez que se obtienen productos de calidad sin influir negativamente el
ambiente y la salud humana (León, 2005; Llumiquinga, 2006).
2
Los bioestimulantes son sustancias usadas en la fertilización foliar complementaria, son ricos en
energía libre gracias a la abundante cantidad de nitrógeno amoniacal, hormonas, vitaminas y
aminoácidos que poseen. Estas sustancias regulan el metabolismo vegetal e impiden el desarrollo de
enfermedades y el ataque de plagas, lo que les convierte en un buen complemento a la fertilización
aplicada al suelo (Restrepo, 2001).
Por ejemplo, investigaciones como las realizadas por Cruz (1995) en arveja (Pisum sativum), Quintana
(2003) en lechuga (Lactuca sativa), Freire (2005) en rosa (Rosa sp.), Narvaéz (2008) en fréjol
(Phaseolus vulgaris L.) Var. “Paragachi” por mencionar algunos, demuestran el beneficio potencial
que produce el uso de bioestimulantes en los cultivos; estimulando un buen desarrollo de las plantas y
alcanzando buenas cosechas.
Por las consideraciones realizadas se propone la ejecución de la presente investigación, planteando los
siguientes objetivos.
Objetivos 1.1.
General 1.1.1.
Estudiar la respuesta del cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) a la aplicación foliar
complementaria de tres Bioestimulantes en las condiciones agroecológicas de Tumbaco,
Pichincha.
Específicos 1.1.2.
Determinar cuál de los bioestimulantes aplicados permite mejorar la producción de Caraota 1.1.2.1.
(Phaseolus vulgaris L.).
Determinar cuál de las dosis aplicadas permite mejorar la producción de fréjol Caraota 1.1.2.2.
(Phaseolus vulgaris L.).
Realizar los costos de producción de los tratamientos en estudio y determinar la relación 1.1.2.3.
Beneficio/Costo.
3
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1 CULTIVO DE FRÉJOL
2.1.1 Generalidades
El fréjol (Phaseolus vulgaris), es considerado como una fuente importante de proteína en América
Latina, en especial en las regiones donde existen estratos económicos bajos, llegando al 22%
dependiendo de la variedad, siendo más barata al compararla con la de origen animal (Jiménez, R.;
Ramón, M.; Lépiz, R. y Ullauri, J, 1996).
El Fréjol (Phaseolus vulgaris L) puede mejorar la fertilidad del suelo porque un microorganismo
llamado rizobia conjuntamente con la raíz del fréjol puede convertir el nitrógeno del aire en una forma
que es útil para las plantas (Figueroa, 2008).
2.1.2 Clasificación taxonómica (Isely, 1990):
Reino: Plantae
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Subclase: Rosidae
Orden: Fabales
Familia: Fabaceae
Subfamilia: Faboideae
Tribu: Phaseoleae
Subtribu: Phaseolinae
Género: Phaseolus
Especie: P. vulgaris
Nombre científico: Phaseolus vulgaris L.
2.1.3 Descripción botánica
Una planta de fréjol arbustivo puede alcanzar alturas de 50 hasta 70 cm, dependiendo de su genética y
las condiciones ambientales, con una raíz principal pivotante y muchas raíces secundarias muy
ramificadas; con tallos delgados, débiles y cuadrangulares; las hojas son alternas, pecioladas,
compuestas por 3 foliolos ovalados o rómbicos, con el ápice agudo (Isely, 1990).
Flores amariposadas con brácteas estriadas dispuestas sobre pedúnculos, ubicados en las axilas de las
hojas; el cáliz se divide en 5 lóbulos, 2 de los cuales se encuentran parcialmente unidos; la corola
rosa-púrpura a casi blanca, de 5 pétalos desiguales, el más externo es el más ancho y vistoso, llamado
4
estandarte, en seguida se ubica un par de pétalos laterales similares entre sí, llamados alas y por último
los dos más internos, también similares entre sí y generalmente fusionados forman la quilla que
presenta el ápice largo y torcido en espiral y que envuelve a los estambres y al ovario; estambres 10,
los filamentos de 9 de ellos están soldados y 1 libre; ovario angosto, con 1 estilo largo y delgado, con
pelos hacia el ápice, terminado en un estigma pequeño. (Isely, 1990).
Los frutos y semillas son legumbres lineares, de hasta 20 cm de largo, a veces cubiertos pubescencias;
semillas globosas de formas y colores variables. (Isely, 1990).
2.2 MANEJO DEL CULTIVO
Los sectores de producción del fréjol se encuentran en zonas que van desde 600 hasta casi 3000 metros
sobre el nivel del mar, (las variedades arbustivas tienen un ciclo corto con un período de 80 – 100 días
y las variedades volubles o de enredadera con un período vegetativo largo de 150 – 280 días) el fréjol
arbustivo requiere una precipitación aproximada de 400 mm de lluvia bien distribuidos; el
requerimiento hídrico desde la siembra a la floración es de 120 mm durante 30 días, durante la
floración es de 60 mm por 15 días y de 220 mm por 30 días en el período de formación, llenado de
vainas maduración. (Jaramillo, 1989).
La temperatura ideal para el desarrollo y crecimiento del fréjol (Phaseolus vulgaris L.) en los Valles y
estribaciones de cordillera en Ecuador está entre los 16 a 20 °C, y a nivel mundial va de 15 a 27 °C, las
temperaturas bajas retardan el crecimiento y las altas aceleran, los extremos pueden producir la falta de
floración (Peralta, E.; Vásquez, J. y Lépiz, R, 1994); la luz juega un papel fundamental en la
fotosíntesis afectando la fenología y morfología de las plantas, los pigmentos de clorofila solo captan
ondas de una longitud de 380 a 740 nm, representando solo el 50 % de la energía lumínica total, y de
esta solo el 85 % es absorbida por la planta, la eficiencia fotosintética se puede medir por la cantidad
de carbohidratos producidos y por el índice de área foliar. (Whait, 1988).
Esta especie prospera en casi todos los tipos de suelo, con una adecuada cantidad de materia orgánica,
profundos y bien aireados que permitan un buen desarrollo radicular (Agrios, 1999 y Molina, 1973), el
fréjol se produce de mejor manera en suelos francos y francos arenosos con pH 5.5 a 8.0, y su
preparación varía según el tipo de cultivo anteriormente sembrado siendo suficiente con un paso de
arado, uno de rastra y el trazado de surcos (guachos), evitándose suelos salinos y/o con pendientes
pronunciadas(Vázquez, J., Peralta, E., Pinzón, J. y Lepiz, R, 1998).
Se siembra sobre suelo húmedo por lo que se debe tomar en cuenta la época de lluvias de cada zona, y
que la recolección no coincida con períodos de invierno, se la realiza en los meses de marzo – abril y
en septiembre – octubre; en las estribaciones de cordillera como la zona de Intag o Noroccidente de
Pichincha se la hace en el mes de mayo (Jaramillo, 1989), en cambio en los Valles mesotérmicos,
como Catamayo y Malacatos en Loja y Yunguilla en Azuay se puede sembrar todo el año (Jiménez et
5
al., 1996), las variedades más utilizadas son de grano rojo moteado y tipo cargabello y en menor
proporción los blancos pequeños (palmito) y los negros (caraota) (Vázques et al., 1998).
Las semillas deben ser de buena calidad; es decir, seleccionadas por vigor, sanidad, pureza y que hayan
sido trilladas manualmente (Peralta et al., 1994); las distancias entre plantas depende del número de
semillas por sitio, quedando así: 1 semilla si la distancia es de 10 cm, 2 semillas si la distancia es de 20
cm y 3 semillas si la distancia es de 30 cm y con una distancia de 50 o 60 cm entre surcos (INIAP,
2008).
El fréjol es muy sensible a la competencia de las malezas en cualquier estado de desarrollo, por lo que
debe permanecer libre de malezas por lo menos la primera mitad del ciclo vegetativo para evitar la
incidencia de plagas y enfermedades (Jaramillo, 1989 y Vázques et al., 1998); entre los 12 y 21 días se
recomienda hacer la labor de rascadillo o primera pala y a inicios de la floración una deshierba y un
ligero aporque (Vázques et al., 1998); durante el desarrollo del cultivo se debe aplicar un conjunto de
técnicas, que manejadas integralmente actúen de forma preventiva y ayuden a controlar al incidencia
de plagas y enfermedades (Suquilanda, 1995).
2.3 FERTILIZACIÓN ORGÁNICA
Se define como abono orgánico a todo material de origen animal o vegetal (compost, estiércoles, abono
natural, hojas podridas e incluso basuras), que pueda ser descompuesto por la acción de microbios y el
trabajo del ser humano, incluyendo además al estiércol de las lombrices y el de millones de hongos,
bacterias y actinomicetos que ayudan a mantener la fertilidad del suelo. (Tellez, 2003).
La incorporación de materia orgánica promueve la biodiversidad de microorganismos, pues de estos
depende que los nutrientes queden disponibles para las plantas, existiendo una estrecha relación entre
suelo – planta y el balance del agroecosistema en general, dependiendo del equilibrio que haya entre
los elementos vivos y no vivos del suelo. (Acuña y Torres, 2002)
El objetivo de esta fertilización cosiste en efectuar los aportes necesarios para que el suelo sea capaz,
por medio de los fenómenos físicos-químicos y bioquímicos que tienen lugar en su seno, proporcionar
a las plantas una alimentación suficiente y equilibrada. (Suquilanda. 2003).
Este abonamiento incorpora sustancias orgánicas al suelo con el fin de mejorar su capacidad nutritiva
reponiendo los elementos nutritivos extraídos por los cultivos, esto mantiene la renovación de los
nutrientes en el suelo. Se recomienda especialmente en suelos con bajo contenido de materia orgánica
y degradados por el efecto de la erosión, pero su aplicación puede mejorar la calidad de la producción
de cultivos en cualquier tipo de suelo (Borrero, 2008).
6
2.4 FERTILIZACIÓN FOLIAR
Una de las técnicas más difundidas y que está alcanzando gran auge en muchos países en la nutrición
de cultivos, es: la "fertilización foliar", llamada también epigea, no radicular, extra-radical, consiste en
aportar nutrientes a las plantas a través de las hojas, básicamente en disoluciones acuosas. (Santos y
Aguilar, 1999). Las primeras investigaciones en condiciones de campo fueron desarrolladas en los
Estado Unidos principalmente en especies frutales con magnesio, boro, fósforo, nitrógeno, zinc y
manganeso. (Fernández y Eichert. 2009).
La fertilización foliar es una forma eficiente y rápida de aportar nutrientes al cultivo, su empleo reduce
la cantidad de fertilizante y el riesgo de contaminación ambiental y pérdidas económicas. Adecuados
niveles complementan una mejor reacción de la planta a las adversidades. Su propósito es activar y
estimular el crecimiento. De esta forma, las raíces de las plantas pueden absorber más nutrientes del
suelo y favorecer el traslado de nutrientes acumulados en el interior de la planta para la formación de
nuevos tejidos y frutos (Hartman, G; Sinclair, J y Rupe, J, 2000).
Los nutrientes disueltos en los fertilizantes foliares penetran en las hojas por los estomas y la cutícula
misma, así como también por los espacios submicroscópicos. La velocidad de absorción es tal que la
mayor parte penetra en el transcurso de varias horas de un día y dependerá del tipo de nutriente y las
condiciones ambientales (Verdesoto, 1995).
El uso de fertilizantes foliares incrementa el rendimiento; por ejemplo, en el cultivo de soja se reportó
un incremento de hasta 3.1 qq/ha, el uso de una mezcla con fungicida obtuvo 16% de aumento con 490
kg/ha y la respuesta promedio a la aplicación de fertilizantes fue del 9% con 270 kg/ha en comparación
con el testigo. (Carmona, M; Abello, A; Sautua, F y Gally, M, 2007).
En el cultivo de lechuga, la aplicación foliar de fertilizantes a base de mezcla de frutas obtuvo
producciones promedio de 34455 kg/ha y de 29212 kg/ha frente al testigo que alcanzo un promedio de
30310 kg/ha, mencionando que el rendimiento más alto de debe a la presencia de aminoácidos y el más
bajo es resultado de la diseminación del producto por los diferentes factores ambientales al momento
de la aplicación (Collaguazo, 2010).
Bajo condiciones de estrés producidas por el ambiente, la fertilización foliar es más eficiente que la
fertilización edáfica, ya que la primera suministra directamente los nutrientes requeridos en los sitios
de la demanda, siendo absorbidos rápidamente y de forma independiente de la actividad de la raíz y la
disponibilidad de agua en el suelo. (Roemheld y El-Fouly, 1999).
Por ejemplo, un ensayo de fertilización edáfica y foliar en fréjol (Phaseolus vulgaris L.), reportó un
incremento de rendimiento de 16 y 30 % con la fertilización edáfica y 33 y 37 % con Fertilización
7
foliar, en el primer caso se obtuvo 335 y 558 kg ha-1
y en el segundo a 385 y 589 kg ha-1
en
comparación al testigo que alcanzo 289 y 430 kg ha-1
sin fertilización. (Osuna, 1999).
De la misma manera, la eficiencia de aprovechamiento de un nutrimento se eleva al ser aplicado
foliarmente; en el cultivo de fréjol (Phaseolus vulgaris L.) se demostró que la fertilización foliar de
nutrientes obtuvo un promedio de rendimiento de 17.5 kg de grano por cada kg de fertilizante
aplicado, mientras que, por cada kg de nutrientes aplicados al suelo se obtuvo un promedio de 3.85 kg
de grano, incrementando hasta en 5 veces la eficiencia en el aprovechamiento del nutrimento. (Osuna,
C; Padilla, J; Martínez, M; Martínez, E y Acosta, J, 2007).
Se puede alimentar a una planta adulta por vía foliar, pero esta práctica debe ser complementaria y no
un reemplazo, llenar los requerimientos nutricionales implica un número elevado de aplicaciones y no
es recomendable usar altas concentraciones de fertilizantes foliares en los cultivos, por lo que esta
labor puede ser limitada, según Bertsch (1995), por las siguientes razones:
Presentan problemas de penetración, en particular en cultivos de hojas gruesas.
Algunos productos o nutrimentos puedes presentar muy bajas tasas de translocación, por lo
tanto son útiles en el sitio donde son absorbidos.
Puede existir perdidas por aplicarse sobre la superficie hidrofóbica.
Puede lavarse por las lluvias.
Pueden causar daños en las hojas, quemaduras, necrosis, etc.
Para lograr rendimientos y rentabilidad en base a calidad se debe considerar los siguientes aspectos con
relación a la aplicación foliar de fertilización para un cultivo específico (Roemheld y El-Fouly, 1999):
Cuál es la mayor época de aplicación, durante el ciclo de crecimiento.
Cuántas aplicaciones requiere para el rendimiento y calidad deseada.
Qué tipo de fertilizante y fórmula se debe aplicar.
La superficie exterior de las células de las hojas están cubiertas por una cutícula y una capa
epicuticular de cera con fuertes características hidrofóbicas. Para facilitar la absorción de
nutrientes se requiere utilizar aditivos de detergentes que reduzcan la tensión superficial.
Además, la aplicación foliar mineral puede ser más práctico que la aplicación de minerales del suelo,
en la que los minerales se absorben a las partículas del suelo y están menos disponibles para las raíces (
Sarkar, D; Mandal, B y Kundu, M, 2007) y (Wissuwa, M; Ismail, A y Graham, R, 2008).
8
2.5 CATEGORÍAS DE LA FERTILIZACIÓN FOLIAR
Las plantas pueden fertilizarse suplementariamente a través de las hojas mediante aplicaciones de sales
solubles en agua, de una manera más rápida que por el método de aplicación al suelo; de acuerdo al
propósito que se quiere obtener, la fertilización foliar puede dividirse en seis categorías (Boaretto y
Rosolem, 1989):
2.5.1 Fertilización correctiva
Es aquella en la cual se suministran elementos para superar deficiencias evidentes, generalmente se
realiza en un momento determinado de la fenología de las plantas y su efecto es de corta duración
cuando las causas de la deficiencia no son corregidas.
2.5.2 Fertilización preventiva
Se realiza cuando se conoce que un determinado nutrimento es deficiente en el suelo y que a través de
esta forma de aplicación no se resuelve el problema; un ejemplo de esto es la aplicación de Zn y B en
café.
2.5.3 Fertilización sustitutiva
Se pretende suplir las exigencias del cultivo exclusivamente por vía foliar, un buen ejemplo es el
manejo del cultivo de la piña. En la mayoría de los casos es poco factible suplir a las plantas con todos
sus requerimientos nutritivos utilizando exclusivamente la vía foliar, debido a la imposibilidad de
aplicar dosis altas de macronutrimentos. En el cultivo del café el uso de solamente fertilizantes foliares
sin abonamiento al suelo (seis aplicaciones por año), se ha obtenido una producción18% en relación
con la fertilización al suelo.
2.5.4 Fertilización complementaria
Consiste en aplicar una fracción del abono al suelo y otra al follaje, generalmente se utiliza para suplir
micronutrimentos y es uno de los métodos más utilizados en una gran cantidad de cultivos.
2.5.5 Fertilización complementaria en estado reproductivo
Puede realizarse en aquellos cultivos anuales en los cuales durante la floración y llenado de las
semillas, la fuerza metabólica ocasionada por ellos, reduce la actividad radicular lo suficiente como
para limitar la absorción de iones requeridos por la planta.
9
2.5.6 Fertilización estimulante
Consiste en la aplicación de formulaciones con NPK, en las cuales los elementos son incluidos en bajas
dosis, pero en proporciones fisiológicamente equilibradas, las cuales inducen un efecto estimulatorio
sobre la absorción radicular. Este tipo de abonamiento es recomendado en plantaciones de alta
productividad, de buena nutrición y generalmente se realiza en períodos de gran demanda nutricional, o
en períodos de tensiones hídricas.
2.6 MECANISMOS DE LA ABSORCIÓN FOLIAR
La hoja es el órgano de la planta más importante para el aprovechamiento de los nutrientes aplicados
por aspersión, los nutrimentos también pueden penetrar por tallos que no presenten una suberización o
lignificación muy fuerte; tal es el caso de las ramas jóvenes o el tallo de las plantas en las primeras
etapas de desarrollo. (Tisdale, S; Nelson, W y Beaton, J, 1985).
La absorción foliar de nutrimentos es un proceso de múltiples pasos, e involucra la absorción
superficial, penetración pasiva a través de la cutícula y absorción activa por las células de las hojas
debajo de la cutícula. La cutícula foliar es más permeable a los cationes que a los aniones. La
hidratación de la cutícula permite que ésta se expanda, apartando las concreciones cerosas sobre su
superficie y facilitando con ello la penetración. (Melgar, 2005).
Una vez que los nutrimentos pasan la cutícula, se encuentran con las membranas celulares de la
epidermis, que presentan prolongaciones plasmáticas o hectocítidos, antiguamente llamados
ectodermos. Los ectocítodos son espacios interfibrilares que aparecen en las paredes celulares que
rodean espacios llenos de aire. Los ectocítodos forman un continuo que se extiende desde la parte
externa de las membranas celulares hasta el límite interno de la cutícula, sin penetrar en ella. Cuando
los nutrimentos se encuentran en los ectocítodos, son translocados a las células epidérmicas por un
proceso complejo de difusión y mediante gasto de energía metabólica. (Melgar, 2005).
Los agentes humectantes favorecen la absorción al disminuir la tensión superficial de las gotas,
mientras que los agentes tenso activos pueden desplazar el aire que se encuentra en los estomas
permitiendo la entrada de los nutrientes. La característica principal del abono foliar es que sea muy
soluble en agua y que no cause efecto fitotóxico (Melgar, 2005).
2.7 RESPUESTA A LA FERTILIZACIÓN FOLIAR
La fertilización foliar ha despertado un creciente interés en productores y asesores, debido a que el uso
de fertilizantes foliares aplicados de manera adecuada, provoca en los cultivos respuestas positivas; la
planta mejora su vigor, alcanzando mejores rendimientos y calidad en el producto cosechado, de igual
manera el cultivo se recupera de forma más rápida ante una adversidad puntual o condiciones de estrés
(Ferraris, G; Ponsa, J y Couretot, L, 2008).
10
La respuesta a la aplicación foliar de los cultivos es variable y no reproducible, debido a la falta de
conocimiento de muchos factores relacionados con la penetración de la solución a través de la hoja.
(Fernández y Eichert, 2009).
La respuesta más notable de la fertilización foliar está representada por un incremento en la producción
del cultivo, por ejemplo, en las pasturas este indicativo es el aumento de la materia seca, alcanzando
2398 kg MS/ha en una pastura tratada con fertilización foliar frente a la pastura testigo con 1478 kg
Ms/ha, reportando un incremento de 61% (Martín y Spiller, 2007).
Obviamente el resultado final es el que mueve al productor a adoptar el producto y se manifiesta por un
incremento en la producción y calidad. En último lugar, debe mejorar la rentabilidad de la explotación,
es decir, debe aumentar los ingresos del productor, mediante un retorno económico. (Melgar, 2005).
2.8 FACTORES QUE DETERMINAN LA EFICIENCIA FOLIAR
La eficiencia de una aspersión de nutrientes generalmente se evalúa en relación con su penetración y
tasa de disponibilidad, reducción de fitotoxicidad , la capacidad de corrección de la eficiencia, la tasa
de procesos fisiológicos, el efecto sobre el rendimiento y los parámetros de calidad. (Fernández y
Eichert, 2009).
Dentro de los factores relacionados con la eficiencia de las aplicaciones foliares destacan: las técnicas
de aplicación, condiciones climáticas, capacidad de absorción de los tejidos, capacidad de
retranslocación de los elementos, limitaciones de las cantidades aplicadas y posibles daños de los
tejidos. (Callejas y Rojas, 2004).
Al existir muchos factores que determinan esta eficiencia, se toma básicamente en cuenta tres aspectos:
características de la especie vegetal, la disolución y las condiciones ambientales. (Santos y Aguilar,
1999).
2.8.1 Factores de la planta
2.8.1.1 Cera cuticular y epicuticular
En el proceso de la absorción foliar se consideran importantes a las dos, las ceras cuticulares son
barreras menos efectivas que las ceras epicuticulares para limitar la penetración de las moléculas de
agua y iones a través de la membrana (Marschner. 1995). Las estructuras que un nutriente debe
atravesar son la cutícula (cera epicuticular y la membrana cuticular), las paredes celulares y la
membrana plasmática. (Wójcik, 2004).
Estas cutículas son permeables a los iones de nutrientes presentes en las formas acuosas y tienen
estructuras distintas como poros, no se sabe si estos poros facilitan la entrada en las células de las
hojas, pero influyen en la permeabilidad de los iones en diferentes grados. (Kannan, 2010).
11
2.8.1.2 Edad, Haz y Envés de las hojas
Las hojas jóvenes tienen mayor capacidad de absorción foliar gracias a su mayor actividad estomática,
debido principalmente al grado de cutinización de las mismas. (Velázquez, 1998).
A mayor cutinización, lignificación y presencia de ceras en la hoja, existe menor facilidad de
absorción. Por ejemplo en Cebolla (Allium cepa) el alto grado de cutinización y la forma cilíndrica de
la hoja es un factor muy limitante a manejar en una práctica de aspersión foliar, mientras que las hojas
de fréjol (Phaseolus vulgaris) con una mayor área foliar y menor grado de cutinización permite una
mayor absorción, aun, respecto a especies de la misma familia como arveja (Pisum sativum) que
presenta una menor área foliar y mayor grado de cutinización. (Gómez y Castro, 2010).
La absorción de nutrientes es más rápida en la parte inferior de la hoja que en la parte superior, esto se
debe a la delgada membrana cuticular existente en esa región, de igual manera explica la mayor tasa de
absorción foliar de las hojas nuevas que aquellas más viejas. (Hull, H., Morton, H. y Wharrir, J, 1975).
Bajo este concepto, un ejemplo es la absorción de Ca++
en manzanos, que luego de la aplicación foliar,
es mayor en el envés que en el haz de las hojas, disminuyendo según avanza el crecimiento, lo que
resulta en una fruta de mayor firmeza y calidad en comparación con aquellas no tratadas, sin influir en
el incremento de la producción. (Schlegel y Schonherr, 2002 a, b).
2.8.1.3 Estomas, Tricomas, Lenticelas
La aparición de estructuras epidérmicas en la superficie de las plantas tales como lenticelas, estomas o
tricomas puede influir de manera significativa en la tasa de absorción de nutrientes aplicados por
aspersión (Eichert, T., Kurtz, A., Steiner, U., Goldbach, H, 2008).
Muchos estudios indican que la presencia de estomas puede promover significativamente la absorción
de solutos, especialmente bajo condiciones que favorecen la apertura estomática. Se asume que las
soluciones foliares aplicadas son infiltradas por dinámica de flujo de masas, también se le atribuye a
una alta permeabilidad alrededor de la cutícula peristomatal. Igualmente se ha propuesto que la
absorción estomatal ocurre por difusión a través de conexiones trans-estomales líquidas entre la
superficie de la hoja y el mesófilo. (Eichert y Goldbach, 2008).
Los tricomas aumentan la cantidad transportada a la hoja proporcionando un área mayor para la
absorción. (Kannan, 2010). En el caso de las manzanas jóvenes existe mayor contribución de los
estomas y tricomas en la penetración de CaCl2 (Schlegel y Schönherr , 2002 a, b), mientras que en
manzanas maduras las lenticelas son los sitios preferenciales para la absorción de las soluciones.
(Harker y Ferguson 1991).
12
2.8.1.4 Células guardas y Ectodesmos
Las células guardas de los estomas y la cutícula son los sitios principales de penetración de los
nutrimentos aplicados vía foliar, su tamaño varia en las especies e incide en el grado de permeabilidad
y absorción de nutrientes (Marschner, 1995), y al igual que el resto de la hoja están cubiertas por una
capa de cera que las protege de la pérdida de agua por transpiración (Melgar, 2005).
Son escasos los experimentos que evidencian la existencia de microcanales hidrofílicos (ectodesmos),
los cuales están presentes en la pared externa de las células epidermales como una ruta para el vapor de
agua y movimiento de solutos (Marschner, 1995). Su función principal es servir de vía para la
excreción de sustancias; un número alto de ectodesmos, una cutícula delgada y una gran área
superficial, favorecen la penetración de nutrientes vía foliar. (Soria, 2008).
2.8.1.5 Turgencia foliar
La turgencia foliar influye en el metabolismo, crecimiento y desarrollo de los tejidos y órganos de las
plantas, la turgencia que puede alcanzar un tejido depende de la elasticidad de la pared celular y el
ingreso o perdida de agua es la responsable del cierre y apertura estomática. En este sentido lo que
ocurre en las hojas tienen especial interés, ya que la eficiencia de una aplicación de fertilizante foliar o
agroquímicos depende del grado de turgencia foliar, y esta a su vez está determinada por la planta y el
ambiente hídrico circundante (atmosférico y edáfico). (Vila, 2011).
2.8.1.6 Variedad del cultivo
La variedad del cultivo es un factor a considerar. Al existir muchas especies de importancia alimenticia
es preciso determinar la técnica y los elementos nutricionales apropiados para realizar una fertilización
foliar eficiente, cada especie vegetal posee una morfología, química, composición de cutícula,
presencia de ceras y estomas y tricomas en las hojas, etapa fenológica, movilidad de nutrientes y
presencia de estrés distintos. Por lo que la respuesta de cada cultivo puede ser interpretado en términos
de su beneficio a procesos locales o totales en la planta, por ejemplo, en muchas especies la mayoría de
las aplicaciones de Zn, Mn, Ca, Fe son solo efectos localizados, limitados en las hojas, mientras que
otros elementos y compuestos si inducen a una respuesta sistemática en la planta. (Fernández y Brown,
2013).
2.8.1.7 Edad del cultivo
La respuesta al nutriente aplicado de forma foliar es casi inmediata, las deficiencias nutricionales en
diferentes etapas de crecimiento pueden corregirse durante el ciclo. Así, las sospechas de deficiencias
son más fácilmente diagnosticadas. La fertilización foliar empleada en etapas de formación de semillas
o frutas es más eficiente. (Melgar, 2005).
13
Por ejemplo, la aplicación de fertilizantes foliares en edades tempranas del cultivo de ballica bianual
(Lolium multiflorum ssp. Italicum) en el estado de tres hojas, produjo un mayor cubrimiento del suelo
haciendo más competitivas a las plantas para colonizar el espacio, lo que resultó en un 20 % de
incremento en la productividad debido a una mayor división celular y aumento en el número de
macollos. Aplicaciones más tardías no incrementan el rendimiento pero mantiene la ventaja de una
mayor densidad de plantas. (Salvo, 2006).
2.8.1.8 Capacidad de intercambio catiónico
La absorción de nutrientes está relacionada con la capacidad de intercambio catiónico en la hoja y la
valencia del ion en este intercambio. Los iones con una carga (K+
y NH4+) penetran con mayor
facilidad que aquellos con dos valencias (Ca2+
y Mg2+
). Por ejemplo, para el fósforo, el amonio estimula
mejor su absorción; el tamaño de los iones afecta la penetración al interior de la hoja, los iones con
diámetro menor penetran más rápido. (Castellanos y Santiago, 2014).
2.8.1.9 Estado nutricional de la planta
El proceso de absorción de nutrientes demanda una inversión de energía metabólica, por lo que se debe
tomar en cuenta el estado fenológico del cultivo y del nutrimento en particular, la respuesta a la
aplicación de los nutrientes depende de las condiciones particulares de la planta para definir con
propiedad un programa de fertilización integrado que incluya la fertilización foliar. (Segura, 2002).
2.8.2 Condiciones externas
2.8.2.1 Temperatura
La temperatura juega un papel importante en el desarrollo del cultivo, se recomienda en la etapa de
germinación regar las semillas con soluciones entre 5 y 6°C por encima de la temperatura ambiente,
básicamente para cultivos hidropónico. (Ruiz, 2004).
Las temperaturas bajas provocan daños en los cultivos, tal caso se reportó en una investigación en
cebada y trigo, donde las bajas temperaturas provocaron la muerte de flores y una merma en la
producción de 600 kg/ha en trigo y 1000 kg/ha en cebada. (Oropesa, 2012).
Cuando existen altas temperaturas por periodos muy amplios algunas plantas tienden a producir ceras
superficiales en las hojas, por lo que la absorción de nutrientes vía foliar será más difícil, y a baja
temperatura se inhibe la incorporación de sustancias (Velázquez, 1998).
2.8.2.2 Luz
La luz es una forma de energía llamada radiación electromagnética. Esta radiación ya sea proveniente
del sol o de lámparas, es aprovechada por las plantas para realizar la fotosíntesis que es la
transformación de la energía radiante en energía química, variando en duración (energía a través del
14
tiempo), calidad (longitud de onda), e intensidad (cantidad de luz por cada longitud de onda o color).
Cuando no existe suficiente luz, el crecimiento y la calidad del cultivo declina; y si la luz es excesiva,
la fotosíntesis y el crecimiento no incrementan. (Torres y López, 2010).
La luz juega un papel principal en la aplicación foliar de nutrientes, al estimular la penetración foliar
por el lado abaxial de la hoja y el proceso de la estimulación de los elementos desde el sitio de
aplicación. (Fernández y Eichert, 2009).
Investigaciones realizadas en Michigan States University indican que al proporcionar una cantidad de
luz entre 4 a 11 mol.m-2
.d-1
durante la etapa 2 (formación de callos) y etapa 3 (desarrollo de raíces) se
acelera la propagación de esquejes en cultivos de balsamina Nueva Guinea y petunias. De igual
manera, experimentos realizados con plántulas de celosia, balsaminas, salvia, marigold, y viola
muestran que los parámetros de calidad al trasplante mejoran cuando la cantidad de luz aumenta hasta
12 mol.m-2
.d-1
. (López y Runkle, 2008).
2.8.2.3 Fotoperiodo
El fotoperiodo es un conjunto de procesos mediante los cuales las especies vegetales regulan sus
funciones biológicas, como el crecimiento y el desarrollo. Bajo este concepto se realizó un estudio en
plantas de Althaea rosea exponiéndolas a la luz natural y a un fotoperiodo de 16 horas; se obtuvieron
promedios de 2.73 cm y 0.61 cm2 para longitud y área de pétalo respectivamente en las plantas
expuestas a la luz natural, mientras que, con el fotoperiodo más largo los resultados fueron 3.24 cm y
1.68 cm2 para las mismas variables, evidenciando la influencia del fotoperiodo y mejorando la calidad
comercial de las plantas. (Papone y Fatta, 2011).
2.8.2.4 Viento
El viento induce cambios en las condiciones atmosféricas alrededor de las hojas, lo que puede afectar
de manera positiva o negativa la aplicación de fertilizantes foliares y de forma directa e indirecta en el
desarrollo y crecimiento normal de los cultivos; es importante realizar las aspersiones en condiciones
mínimas de viento, ya que puede impedir una adecuada cobertura durante el proceso y dado que gran
parte de las zonas cultivadas están sometidas de forma frecuente a vientos fuertes, los programas de
mejoramiento promueven el uso de técnicas de aplicación foliar y genotipos tolerantes. (Golberg,
2010).
2.8.2.5 Humedad
La humedad tiene influencia directa sobre la tasa de deshidratación de la gota de rociado en la
aplicación foliar; cuando es alta, la solución estará activa por un período más largo, permitiendo el
ingreso de los solutos antes de que esta se seque por completo. Hasta cierto punto, la deshidratación
puede acelerar la tasa de penetración en la medida en que ella aumenta la concentración de solutos, de
esta forma el gradiente aumenta hasta que se seque cuando la penetración está demorada y los solutos
15
cristalizan. La humedad tiene influencia sobre el desarrollo y el estado fisiológico. En condiciones de
baja humedad el estoma se cierra y las plantas pueden desarrollar una cutícula más gruesa; en
condiciones de humedad alta, los estomas se abren y las plantas pueden desarrollar una cutícula más
delgada (Ronen, 2011).
Estudios realizados en Brassica oleracea, Eucalyptus gunnii y Tropaeolum majus, demostraron que las
plantas que crecieron con un 98% de humedad relativa disminuyeron la cantidad total de cera por área
foliar, en comparación con las plantas crecidas en baja humedad relativa (20–30%), lo que condujo a
un aumento en la deposición de la cera y la densidad de cristal sobre la superficie de la hoja,
modificando la respuesta a las aplicaciones foliares (Koch, K; Hartmann, K; Schreiber, L; Barthlott, W
and Neinhuis, C, 2006).
La elevada humedad relativa genera ambientes favorables al desarrollo de enfermedades y al lavado de
nutrientes. Bajo estas circunstancias la fertilización foliar combinada con fungicidas ayuda a mantener
condiciones favorables al cultivo; por ejemplo, en una investigación realizada en trigo esta
combinación incrementó el rendimiento con promedios que van desde los 500 hasta los 1200 Kg/ha en
comparación con el testigo (Bergh. R, Zamora. M, Seghezzo. M y Molfese. E, 2003).
2.8.2.6 Sequía
Desde un punto de vista ecofisiológico, la sequía se define como un estrés hídrico que limita el
funcionamiento óptimo de la planta causado por una disponibilidad de agua insuficiente, y su severidad
depende de varios factores, entre los que se cuentan la intensidad y duración del mismo déficit hídrico,
el grado de aclimatación de la planta y su nivel de resistencia (Medrano y Flexas, 2003).
La sequía afecta el crecimiento y desarrollo normal de los cultivos, influyendo principalmente en la
producción y rendimiento; por ejemplo, en el caso de dos variedades de plántulas de papaya (Carica
papaya) sometidas a estrés hídrico previa a la fertilización foliar, redujeron significativamente en peso
seco, el área foliar y la altura de las dos variedades de manera aditiva (Marler y Clemente, 2006).
La influencia de la fertilización foliar en plantas con estrés hídrico es difícil de determinar; por
ejemplo, en el cultivo de la soja, no se determinó una respuesta significativa al usar esta estrategia de
manera complementaria, a pesar de no encontrar diferencias estadísticas, el mejor tratamiento foliar
permitió obtener un diferencial de rendimiento con relación al testigo de hasta un 10 % (Pautasso. J,
Melchiori. R, Barbagelata. P, 2012).
La aplicación foliar de nutrientes en condiciones de sequía puede aliviar el déficit de agua o nutrientes
a corto plazo (Sarkart., et al, 2007; Wissuwa., et al, 2008).
16
2.8.2.7 Hora del día
Es importante escoger el momento adecuado del día para realizar la fertilización foliar, se recomienda
aplicar en horas del atardecer o en horas tempranas de la mañana, evitando las temperaturas altas y la
fertilización con pronóstico de lluvias dentro de las 24 o 48 horas; mientras más largo sea el tiempo de
contacto entre la solución nutritiva y la superficie foliar de los cultivos, mayor será la eficiencia de esta
fertilización (Martín y Montico, 2005).
2.8.2.8 Potencial osmótico de la zona radicular
El potencial osmótico de la zona radicular influye en el crecimiento y desarrollo del cultivo, su
desequilibrio lleva a una disminución en el diámetro de la raíz y a su deformación, lo que puede causar
necrosis del ápice radicular, esta sintomatología en las raíces produce daños en la parte aérea de la
planta, causando deshidratación del tejido foliar y necrosis en la parte distal de la hoja, influyendo en la
eficiencia de una aspersión foliar (Montoliu, 2010).
Un potencial osmótico deficiente en la zona radicular producido por toxicidad, compactación del suelo
o por un nivel freático elevado, afecta la absorción de nutrimentos por la planta y convierte a la
fertilización foliar en un medio importante para complementar la nutrición de los cultivos (Salas,
2002).
2.8.2.9 Estrés nutritivo
Las plantas que crecen con deficiencia de nutrientes muestran cambios bioquímicos y fisiológicos, así
como diferencias morfológicas y estructurales (Núñez-Moreno, H; Walworth, J; Pond, A and Kilby, M,
2009), la demanda de nutrientes por parte de la planta y sus partes cambia durante el ciclo de vida, y
muestra una relación estrecha con la tasa y las características del crecimiento (Gutiérrez, 2002).
La presencia de anormalidades puede ser causada por estrés nutritivo o en ciertos casos producto de
bloqueos en los conductos vasculares de la planta, lo que incide en la proporción de penetración de un
nutrimento a través de la hoja; la dinámica en la composición nutricional de un cultivo impone
limitaciones en el uso de la fertilización foliar, y se la emplea generalmente para corregir deficiencias
en elementos menores, para el caso de los macronutrientes esta fertilización solo puede complementar,
pero en ningún momento sustituir la fertilización del suelo (Salas, 2002).
2.8.3 Factores tecnológicos de la aplicación
2.8.3.1 Disolución
La aplicación de fertilizantes foliares requiere del cálculo adecuado de las cantidades de producto que
serán mezclados con el agua de acuerdo con la dosis sugerida del nutrimento. Realizar este proceso
requiere de mucho cuidado, ya que un mal cálculo podría causar una sobredosificación del fertilizante
17
y como éste es aplicado al follaje, el riesgo de provocar fitotoxicidad es mayor. En disoluciones de
fertilizantes se usan unidades de volumen y peso del sistema métrico decimal y se formulan tanto en
presencia sólida como líquida, y la medición de la cantidad a disolver en agua puede realizarse usando
unidades de peso y volumen según corresponda el caso (Molina, 2002).
2.8.3.2 Concentración
La concentración de la sal portadora de un nutriente en la solución foliar varía acorde al cultivo, los
cereales en general soportan mayores concentraciones que algunas especies como el fréjol, pepino y
tomate, pero es muy posible que sean más eficientes en la absorción foliar. Por ejemplo, la
concentración de urea en una solución foliar a utilizarse varia de una a otra especie, en el caso del
tomate es 0.4 – 0.6 %, del fréjol y del pepino es 0.3 – 0.4 %, de los cítricos es 0.6 – 1.0 %, de los
cereales es 0.5 – 10.0 %, del plátano es 0.6 – 0.8 %, de la caña de azúcar es 10 – 20 %, por mencionar
algunos casos (Santos y Aguilar, 1999).
2.8.3.3 Volumen y Cantidad aplicada
Las plantas requieren diversas cantidades de nutrientes en diferentes etapas de crecimiento y deben
aplicarse en el momento adecuado para que estén disponibles cuando la planta los necesite, por lo
tanto, la cantidad y momento óptimo para la aplicación foliar de fertilizantes es determinado por el
patrón de absorción de nutrientes del cultivo; para el mismo cultivo, cada nutriente tiene un patrón de
consumo individual y la cantidad aplicable por vez es limitada por posibles daños a las hojas (Bordoli
y Barbazán, 2010).
Al tener los cultivos diferentes niveles de tolerancia a la salinidad, la cantidad máxima de fertilizante
que se puede aplicar en una fertilización foliar depende del umbral límite de salinidad que puede
tolerar el cultivo, a mayor salinidad el rendimiento se ve afectado y comienza a disminuir, de la misma
manera, el volumen aplicado de la solución tiene un efecto significativo sobre la eficiencia de
absorción de nutrientes y debe ser tal, que sea suficiente para cubrir completamente el follaje de la
planta, pero no demasiado alto para que se escurra por las hojas (Martínez, M; Osuna, E; Padilla, J;
Acosta, J; y Loredo, C, 2008).
Es importante destacar que de la cantidad de producto pulverizado en una aplicación de fertilizante
foliar la planta aprovecha el 95 por ciento (Melgar, 2005).
2.8.3.4 Tipo tecnológico de aplicación
El conocimiento y empleo de la tecnología de aplicación se relaciona con la capacidad de absorción
foliar de los nutrientes, la misma que es determinada por las plantas, el ambiente, el producto y la
forma de llevar la solución a la hoja o estructuras (frutos) para su posterior asimilación (Gómez y
Castro, 2010).
18
La tecnología impulsa el desarrollo de equipos e implementos que garanticen una mejor cobertura
foliar y una disminución en la deriva de los nutrientes aplicados, existen equipos de espalda,
estacionarios y tractorizados que son usados acorde a las necesidades y área del cultivo, con el fin de
incrementar en cantidad y calidad la eficiencia de la fertilización y reducir posibles contaminaciones
ambientales (Víquez, 2002).
En la actualidad se están desarrollando nuevas tecnologías con potencialidad para mejorar la
productividad e incrementar la eficiencia de uso de los nutrientes. En este sentido, el uso de
fertilizantes foliares en esquemas optimizados de producción puede otorgar un adicional en
rendimiento y calidad del producto cosechado. Esta tecnología de fertilizantes foliares se puede
mezclar perfectamente, sin problemas de fitotoxicidad ni incompatibilidad, con los herbicidas,
fungicidas e insecticidas que generalmente se usan en todo el ciclo del cultivo, lo que reduce los costos
de aplicación (Silva. 2011).
2.8.3.5 pH
El pH de la solución para fertilización foliar juega un papel muy importante en la modificación
(alteración) de los efectos fitotóxicos así como en la absorción y translocación de los nutrientes; por
ejemplo, en el cultivo de algodón las aplicaciones de soluciones de K con pH de 7 redujeron la
quemadura de las hojas en 3.5 % en comparación a la solución estándar, y la disminución del pH en
algunos tratamientos incremento el rendimiento de fibra del cultivo (Chang y Oosterhuis, 2009).
La solución usada en la fertilización foliar mejora su penetración a cierto pH, en la mayoría de cultivos
el rango óptimo se encuentra entre 5 – 6, mientras que para una combinación de solución nutrimental
con plaguicida lo apropiado es 5.6 – 6.5. No obstante, según el elemento que se desea aplicar el rango
cambia, por ejemplo, para el Nitrógeno es mejor un pH de 5 - 6 mientras que para el Calcio un pH
neutro es más adecuado (Castellanos y Santiago, 2014).
2.8.3.6 Polaridad e higroscopia
Es importante destacar la relevancia de los efectos combinados de la estructura física, la polaridad y la
higroscopia de los componentes de la superficie vegetal y de los líquidos depositados en la superficie
ya que son un paso preliminar en la absorción de los fertilizantes foliares (Khayet y Fernández, 2012).
Estos elementos influyen en la tasa de retención o repulsión de la pulverización foliar, y dependerá de
las interacciones entre las gotas de fertilizantes y la superficie de la planta, incluso la misma
formulación de fertilizantes puede tener efectos distintos cuando se aplica a diferentes especies de
plantas, variedades u órganos (Fernández, V; Khayet, M; Montero-Prado, P; Heredia-Guerrero, J;
Liakoloulos, G; Karabourniotis, G, et al., 2011).
19
2.8.3.7 Tipo de compuestos y su estabilidad
Al momento de realizar un fertilización foliar se debe considerar el tipo de compuesto y su estabilidad,
con el fin de minimizar los riesgos de fitotoxicidad en el cultivo. La interacción de gota-hoja
dependerá de las características físico-químicas de los productos aplicados de manera foliar y de la
superficie de la planta (es decir, los efectos de rugosidad y composición química se combinan). Cuanto
mayor sea el área de contacto de las gotas de fertilizantes en la superficie de la planta, mayor será la
probabilidad de que se absorban los nutrientes a través de la cutícula o poros de los estomas
(Fernández y Brown, 2013).
2.8.3.8 Relaciones entre los nutrientes (antagónicos y sinérgicos)
Para una eficiente fertilización foliar, los elementos nutritivos deben ser absorbidos y distribuidos en
proporciones adecuadas, la perturbación de este delicado equilibrio nutricional, puede crear o
amplificar fenómenos de sinergismo y antagonismo entre los diversos elementos nutritivos (Prystupa,
P; Torres, M y Ferraris, G, 2012).
Entre los elementos nutritivos existen sinergismos y antagonismos fisiológicos específicos, causado no
por la absorción de los elementos, sino por los efectos producidos por su absorción; por ejemplo, entre
elementos como: K y Na y viceversa; entre Fe, Mn y Zn en forma recíproca; entre B y Ca, pero no
viceversa; también se da un antagonismo fisiológico genérico, cuando a consecuencia del exceso de un
elemento se manifiesta la carencia de otro, y un antagonismo fisiológico específico como el que ocurre
entre los elementos mono y bivalentes (K por un lado, Ca y Mg por el otro) (Puente, A; Aranguren, M
y Forteza, L. 2011) y (Medina, M; Medina, E; Aguilar, J y García, S, 1999).
2.8.3.9 Surfactantes y Humectantes
Los surfactantes y humectantes son llamados también coadyuvantes, y son productos que se adicionan
a los tanques de aplicación con el objetivo de mejorar la actividad de los fertilizantes y agroquímicos, o
facilitar la aplicación a través de la modificación de las características de la solución o el spray
(Arrospide, 2004).
La adición de surfactantes y humectantes-adherentes a la solución favorece el aprovechamiento del
fertilizante foliar. El mecanismo de acción de un surfactante consiste en reducir la tensión superficial
de las moléculas de agua, permitiendo una mayor superficie de contacto con la hoja; un humectante-
adherente permite una mejor distribución del nutrimento en la superficie de la hoja evitando
concentraciones de este elemento en puntos aislados cuando la gota de agua se evapora (Leece, 1976).
Este tipo de coadyuvantes son usados con el fin específico de mejorar la acción y efectividad de los
productos aplicados por aspersión, lo cual logran al proporcionar a la mezcla elementos y propiedades
favorables como: mejor cubrimiento, mayor penetración y translocación, incremento en solubilidad,
mayor adherencia, aumento en la estabilidad de la formulación, reducción de la evaporación, permite
20
una reducci+ón en la dosis de herbicidas, aumento de penetración en el suelo y aumento de poder
fitotóxico de los agroquímicos (Chávez, 1995).
2.8.3.10 Calidad de agua
La calidad del agua que se utiliza para la disolución de los fertilizantes es de gran importancia, ya que
influye directamente en la eficiencia de la aplicación y en optimización de uso del equipo de aspersión,
que debe mantenerse libre de sólidos en suspensión y microorganismos que pueden tapar los orificios
de los emisores (Molina, 2002).
Los fertilizantes foliares pueden precipitarse si se excede la solubilidad de los mismos o la solubilidad
de los productos de reacción entre el fertilizante y las impurezas del agua. Es común tener problemas
con Ca cuando las concentraciones de este elemento en el agua son superiores a 100 ppm. Por ejemplo,
a medida que se incrementa la concentración en el agua la probabilidad de precipitación de los fosfatos
añadidos aumenta. El producto precipitado se deposita en el fondo del tanque de aplicación, en las
paredes de los tubos y en los orificios de los aspersores, y disminuye la eficiencia de la aplicación y del
equipo. Si el agua contiene un elevado contenido de sales podría causar efecto fitotóxico al follaje o los
fertilizantes mezclados incrementarían el problema (Molina, 2002).
2.9 VELOCIDAD DE ABSORCIÓN
La absorción es proporcional al área foliar y comienza a los 4 segundos de mojar las hojas de la
solución nutritiva, siendo absorbida con mayor velocidad y mayor proporción que al abonar al suelo.
La velocidad es mayor en los tejidos jóvenes, varía con la especie vegetal y el elemento químico
absorbido; estas sustancias nutritivas se movilizan dentro de la planta usando las siguientes vías: la
corriente de traspiración vía xilema, las paredes celulares, el floema y otras células vivas y los espacios
intercelulares (Ortega, 2000).
Cuadro 1. Velocidad de absorción de diferentes nutrimentos en la hoja de fréjol. Fregoni (1986).
Elemento Absorbidos después de
6 h 24 h 48 h 96 h 192 h
%
K 50 70 80 90 95
Na 48 65 70 80 90
Cl 31 40 50 60 80
Zn 30 50 60 65 70
Ca 7 28 35 50 70
S 7 22 30 45 60
P 5 15 25 35 50
Mn 11 20 22 30 40
Fe 3 6 8 12 15
Fuente: Fregoni (1986).
21
2.10 CUANDO FERTILIZAR VÍA FOLIAR (OPPEN, 2000):
Para corregir las deficiencias nutricionales que en un momento dado se presentan en el
desarrollo de la planta.
Para corregir requerimientos nutricionales que no se logran cubrir con la fertilización común
del suelo.
Abastecer de nutrientes a la planta los cuales se retienen o se fijan en el suelo.
Mejorar la calidad del producto.
Acelerar o retardar alguna etapa fenológica de la planta.
Hacer eficiente el aprovechamiento nutricional de los fertilizantes.
Corregir problemas fitopatológicos de los cultivos al aplicar cobre y azufre, y respaldar o
reforzar la fertilización edáfica para optimizar el rendimiento de una cosecha.
Lo anterior indica que la fertilización foliar debe ser específica, de acuerdo con el propósito y el
problema nutricional que se quiera resolver o corregir en los cultivos.
En el momento de la aplicación foliar se deben dar las siguientes condiciones: no haber rocío ni
encontrarse con altas temperaturas, las plantas cierran sus estomas en estas circunstancias con lo cual
no pueden absorber el producto, la planta no debe pasar un estado de estrés, necesita 24 horas para su
completa aplicación. Por lo tanto una lluvia en ese período podría llegar a ser perjudicial (Barone, D;
Bossio, G y Vergniagno, A, 2006).
2.11 BIOESTIMULANTES
Los bioestimulantes son aquellos productos capaces de incrementar el desarrollo, la producción y
crecimiento de los cultivos; apuntan a entregar pequeñas dosis de compuestos activos para el
metabolismo vegetal, de tal manera que ahorre en las plantas el gasto energético innecesario en
momentos de estrés. Algunos tienen composición igual o similar a las fitohormonas o distinta con
bioactividad reguladora, de efectividad consistente sin riego de toxicidad e inocuo, permitiendo una
mejor relación del costo beneficio (Díaz, 2011)
Estas formulaciones contienen distintas hormonas en pequeñas cantidades (menos de 0,1 g.L-1
) junto
con otros compuestos químicos incluyendo aminoácidos, vitaminas, enzimas, azúcares y elementos
minerales, tienen concentraciones casi siempre bajas, los tipos de hormonas y la cantidad depende del
origen de la extracción (algas, semillas, raíces, etc.) y su procesamiento. Estimulan el desarrollo de la
planta en general sin incidir de forma directa en mayor amarre o crecimiento del fruto, catalogándose
de esta manera como auxiliares del mantenimiento fisiológico de las plantas, siendo de importancia en
condiciones limitantes del cultivo como mal clima, sequía, ataque de patógenos, etc (Díaz, 2009).
22
2.11.1 Uso de Bioestimulantes
La mayoría de los bioestimulantes se aplican solos, directamente al follaje, pero en ciertos casos se los
aplica al suelo por medio de fertirrigación o en drench. Algunos se los puede usar en mezclas con
insecticidas, fungicidas u otros fertilizantes solubles, previa comprobación de compatibilidad con el
otro producto. Se los recomienda utilizar en las etapas de crecimiento del vegetal para un mayor
aprovechamiento de sus compuestos. Cada vez son más utilizados en la agricultura convencional
ayudando a resolver las ineficiencias que se mantienen hoy en día, a pesar de la mejora de las prácticas
de producción (Carvajal, 2013).
Son usados principalmente para activar y fomentar el crecimiento y desarrollo de las plantas,
incrementando la tolerancia al estrés del ambiente y la calidad de los vegetales, con el fin de reducir
daños y mejorar las cosechas (Turgeon, 2005).
2.11.2 Bioestimulantes Foliares
Se describe a los bioestimulantes foliares como sustancias nutritivas aplicadas por aspersión al follaje y
que actúan potencializando determinadas expresiones metabólicas y/o fisiológicas; al usarse en
pequeñas cantidades afectan el crecimiento y desarrollo de las plantas, pueden incluir fitohormonas,
tales como giberelinas, citoquininas, ácido abscícico, ácido jasmónico, auxinas, entre otros (Turgeon,
2005).
Los bioestimulantes tienen la cualidad de no alterar la población microbiana del suelo y su actividad
biológica; por ejemplo, el uso de Liplant que es bioestimulante obtenido de estiércol vacuno empleado
por un largo plazo (2 años), no provocó cambios en la concentración y actividad biológica de los
microorganismos en ninguna de las dosis aplicadas, así como en las condiciones del medio donde estas
se desarrollan, las cuales pueden ingresar pequeñas cantidades de nutrientes y sustancias húmicas
beneficiosas para la actividad metabólica de los microorganismos del suelo, provocando una influencia
positiva al ambiente es su uso continuado (Arteaga., et al 2007).
Al ser extractos de otros materiales, los bioestimulates varían ampliamente sus propiedades. Por
ejemplo, la composición del extracto de algas es ampliamente influenciada por la especie de alga. Las
sustancias húmicas son extractos del suelo, turba, carbón y lignito (carbón mineral que se forma por
descomposición de la turba) y que se procesan para formar ácido húmico. Los ingredientes activos de
estas sustancias son probablemente fitohormonas (Turgeon, 2005).
2.11.3 Compuestos Comunes de los Bioestimulantes
2.11.3.1 Fitohormonas
Una definición del término hormona es considerar bajo este nombre a cualquier producto químico de
origen orgánico que sirve de mensajero químico, ya que es producido en una parte de la planta y tiene
23
como “blanco” otra parte de ella. (Gonzáles, A; Raisman, J y Aguirre, M, 2009). Las fitohormonas
(FH) son señales químicas que facilitan la comunicación entre células y coordinan sus actividades. El
control de la respuesta hormonal se realiza a través de cambios de concentración y de sensibilidad de
los tejidos a las hormonas (Fichet, 2009).
Las fitohormonas u hormonas vegetales regulan de manera predominante los fenómenos fisiológicos
de las plantas, controlando un gran número de sucesos como el crecimiento de las plantas, caída de las
hojas, floración, formación del fruto y germinación. Estas hormonas propician sus efectos mediante
complejos procesos moleculares, estableciendo procesos de antagonismo y balance hormonal que
llevan a una regulación precisa de las funciones vegetales (Srivastava, 2002).
Las hormonas vegetales más importantes reconocidas actualmente son: auxinas, giberelinas,
citoquininas, el etileno y un grupo de inhibidores; además se ha establecido la importancia de las
poliaminas, el ácido salisílico, el ácido jasmónico y los brasinoesteroides. Compuestos químicamente
diferentes y que se sintetizan en todos los órganos de la planta, sin embargo algunas tienen sitios
específicos (ejemplo: la raíz es el principal productor de citoquininas). Las hormonas ejercen su efecto
en el mismo lugar que se producen y/o se translocan a otros sitios por el floema y xilema para regular
otros procesos. Cada grupo hormonal tiene uno o varios compuestos; las auxinas son varias aunque la
más importante es el ácido indolacético, las giberelinas se encuentras en decenas donde la más
abundante es la número 3 (ácido giberélico) pero las más activas son las 9 y la 21. De las citoquininas
hay los tipos adenina (como la zeatina) y fenilurea (varios compuestos), mientras que de los
inhibidores existen distintos compuestos como el ácido abscísico; el etileno es una hormona individual.
(Rost y Weier, 1999).
Por otro lado, cuando las fitohormonas de las mezclas bioestimulantes no alcanzan el umbral, o
concentración mínima, la aplicación no tiene efecto en la planta. Además, una hormona que en un
momento dado promueve un determinado crecimiento, después lo inhibe. Por ejemplo, si se aplica el
etileno en floración o luego cuando los frutitos están creciendo, los bota, pero si se aplica en
maduración, ésta se favorece; otro ejemplo es la auxina que al principio, al igual que el ácido
giberelico, favorece el crecimiento del fruto, si se aplica cerca de maduración, ésta se retrasa, el efecto
inverso al del etileno. Entonces, los efectos difieren dependiendo de la etapa fisiológica del tejido
donde va a actuar, por lo que es importante definir la cantidad y el momento adecuado para su
aplicación y determinar el costo-beneficio de la misma (Fichet, 2009).
24
2.11.3.1.1 Auxinas
El nombre auxinas significa en griego “crecer” y es dado a un grupo de compuestos que estimulan la
elongación de las células. El ácido indolacético (AIA) es la forma natural predominante e influyen de
forma decisiva en procesos como la división celular de cambium, la diferenciación vascular, la
formación de raíces adventicias, la dominancia apical y el desarrollo de frutos; estas hormonas se
encuentran en toda la planta, las concentraciones altas se encuentran en las regiones meristemáticas por
su crecimiento activo, siendo éste el sitio de síntesis (Azcón y Talon, 2003).
2.11.3.1.1.1 Modo de Acción
Las axinas actúan a nivel génico al activar o reprimir la expresión de los genes. El AIA se liga a un
receptor de naturaleza proteica, formando un complejo receptor – hormona de carácter reversible,
específico, con alta afinidad y saturable. Este complejo activa un promotor que controla le
expresión de los genes que codifican la síntesis de las enzimas catalizadoras de los compuestos de
la pared. El efecto inicial preciso de la hormona que subsecuentemente regula este arreglo diverso
de eventos fisiológicos no es aún conocido. Durante la elongación celular inducida por la auxina, se
piensa que actúa por medio de un efecto rápido sobre el mecanismo de la bomba de protones
ATPasa en la membrana plasmática, y un efecto secundario mediado por la síntesis de enzimas
(Marassi, 2007).
2.11.3.1.1.2 Efectos Fisiológicos (Marassi, 2007):
La acción fisiológica de las auxinas puede resumirse como:
Actúan en la mitosis.
Alargamiento celular.
Formación de raíces adventicias.
Dominancia apical.
Herbicida.
Partenocarpia.
Graviotropismo.
Diferenciación de xilema.
Regeneración del tejido vascular en tejidos dañados.
Inhibición del crecimiento radical en concentraciones bajas.
Floración.
Senectud.
Geotropismo.
Retardan la caída de hojas, flores y frutos jóvenes.
25
2.11.3.1.2 Giberelinas
Las giberelinas (GA3) son un conjunto de compuestos químicos naturales con actividad reguladora en
el crecimiento y desarrollo de las plantas. Controlan diversos procesos, tales como la germinación de
las semillas, la elongación del tallo, la expansión de las hojas, el desarrollo de los tricomas y la
inducción del desarrollo de flores y frutos (Sponsel Y Hedden, 2004).
Las GA3 son ácidos carboxílicos diterpenoides tetracíclicos, se las llama ácidos giberélicos,
distinguiéndose una de otra por un subíndice: GA13, GA20, GA52. Etc Las partes vegetativas
contienen menos GA3 que las partes reproductivas, las semillas inmaduras son ricas en GA3, pero
dichos niveles disminuyen a medida que éstas maduran (Azcon y Talon, 2003).
2.11.3.1.2.1 Modo de Acción
Las giberelinas provocan la división celular al acortar la interfase del ciclo celular e inducir las
células en fase G1 a sintetizar ADN. También promueven la elongación celular al incrementar la
plasticidad de la pared y aumentar el contenido de glucosa y fructosa, provocando la disminución
del potencial de agua, lo que lleva al ingreso de agua en la célula y produce su expansión,
inducen la deposición transversal de microtúbulos y participan en el transporte de calcio. También
pueden actuar a nivel génico para provocar algunos de sus efectos fisiológicos (Marassi, 2007).
2.11.3.1.2.2 Efectos Fisiológicos (Marassi, 2007):
Controlan el crecimiento y elongación de los tallos.
Elongación del escapo floral, que en las plantas en roseta es inducido por el fotoperíodo de
día largo.
Inducción de floración en plantas de día largo cultivadas en época no apropiada
Crecimiento y desarrollo de frutos
Estimulan germinación de numerosas especies, y en cereales movilizan reservas para
crecimiento inicial de la plántula.
Inducen formación de flores masculinas en plantas de especies diclinas.
Reemplaza la necesidad de horas frío (vernalización) para inducir la floración en algunas
especies (hortícolas en general).
2.11.3.1.3 Citoquininas
Las citoquininas son hormonas vegetales naturales que estimulan la división celular en los tejidos no
meristemáticos. Inhiben el desarrollo de raíces laterales. Rompen la latencia de las yemas auxiliares.
Promueven la organogénesis en los callos celulares. Retrasan la senescencia o envejecimiento de los
órganos vegetales. Promueven la expansión celular en cotiledones y hojas. Promueven el desarrollo de
los cloroplastos. Son producidas en las zonas de crecimiento, como los meristemas en las puntas de la
26
raíces. La zeatina es una hormona de esta clase que se encuentra en el maíz. La mayor concentración se
encuentra en embriones y frutas jóvenes en desarrollo (Gonzáles et al., 2009).
2.11.3.1.3.1 Modo de Acción (Marassi, 2007):
Como derivan de una purina:
Se unen a la cromatina del núcleo
Efecto promotor sobre el ARN y las enzimas.
Estimulan el estado de transición del estado G2 en la mitosis
Actúan en la traducción del ARN.
Incrementan la rapidez de síntesis de proteínas.
2.11.3.1.3.2 Efectos Fisiológicos (Marassi, 2007):
División celular y formación de órganos.
Retardo de la senescencia (debido a su propiedad de generar alta división celular son fuente de
nutrientes, por lo que realizan su efecto de retardo de la senescencia)
Desarrollo de yemas laterales.
Inducen partenocarpia
Floración de plantas de días corto.
Reemplazo de luz roja en germinación de semillas fotoblásticas.
Por ejemplo, tomando en cuenta estos conceptos, en una investigación se demostró que la aplicación de
citoquininas en el cultivo de tejidos del alga roja Ahnfeltia plicata (Hudson) Fries, produjo mayor
crecimiento tanto en las regiones polares así como diferenciación y formación de ramificaciones
laterales del tallo, demostrando que el proceso de regeneración de los explantes fue estimulado
principalmente por el uso de la citoquinina (BAP) a una concentración de 1 ml/L (Villanueva, F;
Ávila, M; Mansilla, A; Abades, S y Cáceres, J, 2013).
2.11.3.2 Aminoácidos
Todos los seres vivos necesitan aminoácidos como unidades estructurales fundamentales para la
formación de proteínas, enzimas y materiales de partida para la síntesis de otras sustancias esenciales.
La aplicación foliar de aminoácidos tiene un efecto muy favorable sobre la nutrición de los cultivos, ya
que se suministra eslabones fundamentales para la formación de las macromoléculas biológicas, sin
necesidad de los pasos intermedios para la síntesis, posibilitando un importante ahorro de energía que
la planta lo puede usar para fomentar su crecimiento y desarrollo (Melgar, 2005)
2.11.3.2.1 Modo de Acción
Los aminoácidos son moléculas orgánicas ricas en Nitrógeno y constituyen las unidades básicas de las
proteínas. Actúan como punto de partida para la síntesis de otros compuestos, tales como vitaminas,
27
nucleótidos y alcaloides. Al ser aplicados en forma foliar, los aa son rápidamente asimilados y
transportados. Dada su forma más compleja, la planta ahorra energía al no tener que sintetizarlos. De
ahí su importancia como compuestos antiestrés (Angulo, 2009).
2.11.3.2.2 Efectos Fisiológicos (Espasa , 2007):
Incrementan la resistencia al estrés.
Incrementan la concentración de la clorofila y el proceso fotosintético.
Promueven la síntesis de proteínas.
Produce efectos quelatantes.
Influye en la polinización y cuajado de frutos.
2.11.3.3 Ácidos Húmicos
Los ácidos húmicos se podrían definir como aquella configuración química responsable de un
determinado y singular espectro de absorción en el rango del ultravioleta-visible. La principal nota
característica de esta configuración molecular estaría definida por la presencia de una serie de dobles
enlaces conjugados –C=C y C=O- distribuidos al azar en la estructura de estos polímeros lineales
(Kumada, 1987).
Son compuestos orgánicos de amplia distribución en la naturaleza, y se los encuentra en diferentes
concentraciones y fuentes, como por ejemplo: suelo, ríos, lagos, océanos, materiales orgánicos,
minerales como la leonardita, sedimentos, entre otros (Yanagi, Y; Kitayama, K; Suzuki, T; Otsuka.H .
and Fujitake. N, 2003).
2.11.3.3.1 Modo de Acción
El mecanismo esencial que justifica la acción de los ácidos húmicos en la toma de nutrientes, se basa
en la formación de complejos sistema húmico-metal; considerando que un efecto indirecto sobre el
crecimiento de las plantas lo constituye el acomplejamiento de un catión nutriente por dichos ácidos en
el medio de crecimiento, resultando en la penetración de dicho nutriente en la planta (Pizzeghello, D.,
Sessi E., Gessa, C and Nardi, S, 2000) y (Mackowiak, C; Grossl, P y Bugbee, B, 2001).
Las propiedades físicas y químicas básicas de los ácidos húmicos determinan la fortaleza de su efecto
sobre la toma de nutrientes por la planta. (García-Mina, 2000); otro mecanismo responsable de los
efectos beneficiosos de estas sustancias puede estar ligado a la acción de las mismas sobre los procesos
de respiración celular, actuando en los procesos de transferencia de electrones (Ramos, 2000).
2.11.3.3.2 Efectos Fisiológicos (Nardi, S; Pizzeghello, C; Ferrarese, L; Trainotti, L and
Casadoro, G. 2002):
Influye de manera positiva sobre el transporte de iones, lo cual facilita la absorción.
28
Aumenta la respiración y la velocidad de las reacciones enzimáticas del ciclo de Krebs, que
resulta en una mayor producción de ATP.
Aumento del contenido de clorofila.
Aumento de la velocidad de síntesis de ácidos nucleicos.
Efecto selectivo sobre la síntesis proteica.
Aumento o inhibición de la actividad de diversas enzimas.
Tomando en cuenta estos conceptos, se realizó una investigación aplicando ácidos húmicos en el
cultivo de brócoli, y se demostró que todos los tratamientos que contenían estas sustancias superaron al
testigo, mejorando el prendimiento de las plántulas y el rendimiento del cultivo, con lo que se
comprobó la eficiencia y el beneficio de la aplicación de los ácidos húmicos de manera foliar (Estévez,
2006).
2.12 BIOESTIMULANTES EN ESTUDIO
2.12.1 Organic Mix ( Ácidos Húmicos + Extracto de Algas).
El procesamiento, la calidad y la eficiencia de los extractos varía según la especie de alga marina
utilizada, Ascophyllum nodosum quizá es la especie de alga marina que más se ha investigado y usado
en aplicaciones agrícolas. La mayoría de productos obtenidos de algas marinas al ser ricos en auxinas y
citiquininas se aplican como suplementos de los nutrientes minerales en programas integrales de
nutrición de cultivos, obteniéndose efectos beneficiosos en el contenido de azúcar, tamaño y otras
características que definen la calidad de las frutas, incrementan la resistencia y tolerancia al estrés del
ambiente (por ejemplo, salinidad, estrés del agua), enfermedades y ataque de insectos, beneficios
atribuidos a hormonas naturales y otras sustancias presentes en los extractos que influyen en el
crecimiento y desarrollo de las plantas (Norrie, 2005).
Las enzimas presentes en los extractos de algas al aplicarse foliarmente refuerzan el sistema
inmunitario (más defensas), el sistema de alimento (más nutrición) y activan las funciones fisiológicas
de las plantas. (Fox y Cameron, 1961); estos extractos pueden aplicarse diluidos en agua de riego:
pivot, microaspersión, goteo, tubo perforado o por un sistema de regadío por surcos o a toda la
superficie, además en algunos casos se los puede aplicar en mezcla con otros productos obteniéndose
con ello una eficiencia mayor (por ejemplo, fungicidas, herbicidas) (Norrie, 2005).
Por ejemplo, la aplicación de extracto de algas usado en aspersiones foliares en el cultivo de apio
obtuvo las mejores respuestas en las variables número de hojas con 20.88 cm/hoja, peso con 0.523
kg/planta y rendimiento con 1.64 t/ha en comparación a los demás tratamientos que obtuvieron
resultados menores (Guamán, 2011).
Estudios hechos en la Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro y en pruebas de campo realizadas
con agricultores, reportan que se han alcanzado rendimientos extras de 1 a 3t ha-1
de maíz, trigo y
29
arroz, los básicos más importantes, cuando se les ha aplicado de 1 a 3t ha-1
de ALGAENZIMS MR,
que es un extracto de algas marinas fabricado en México (Herrera, 1995).
Investigaciones realizadas con Seaweed Extract, que es un extracto de algas a base de Ascophyllum
nodosum, en cultivos como fréjol (Phaseolus vulgaris) y en coliflor (Brassica oleracea var. Botrytis),
demostraron que, en el primer caso una dosis alta de 3ml/litro se obtuvo un mayor promedio en altura,
y con una dosis media se alcanzó un mejor rendimiento de 1184.84 kg/ha; mientras que para el
segundo caso, la aplicación de una dosis alta de 3.25 ml/litro al follaje de la coliflor en los momentos
de mayor actividad después del trasplante, permite mejores resultados en el peso de la pella con 376.19
g/pella, rendimiento 11.90 t/ha y una relación B/C de 1.77 (Gutiérrez, 2001; Oscullo, 2002).
2.12.2 Newfol Plus
Es un bioestimulante en cuya composición existe macro y micronutrientes, con una alta concentración
de aminoácidos y ácido fólico que intervienen en la nutrición de las plantas desde los primeros estadios
de desarrollo y crecimiento de los cultivos; proviene de la hidrólisis enzimática de órganos y tejidos
animales que tienen como base principal los aminoácidos (todos ellos de tipo L), nucleótidos, peptidos
y poli nucleótidos de bajo peso molecular y principios inmediatos. Los aminoácidos son los
componentes básicos de las proteína .Estos constituyen los hidratos de carbono y lipoides al tercer
grupo de sustancias fundamentales de los organismos tanto animales como vegetales (EDIFARM,
2006).
El uso de Newfol plus empleado en la fertilización foliar complementaria en la producción del cultivo
de fréjol, alcanzo los mejores resultados en las variables: Número de vainas por planta con 41.33
vainas / planta, peso de cien semillas con 61.29 gramos / 100 semillas y el rendimiento con 2. 46 kg /
parcela neta, en comparación con los demás tratamientos que alcanzaron valores inferiores
(Guamanarca, 2009).
2.12.3 Biol
Los biofertilizantes líquidos de producción local “Bioles”, son obtenidos mediante un proceso de
fermentación anaeróbica, utilizando como materia prima principal estiércol vacuno, microorganismos
de la rizósfera, bacterias acido lácticas, entre otros compuestos minerales (Magdama, 2010.)
Se considera al Biol como promotor y fortalecedor del crecimiento de las plantas, raíces y frutos,
gracias a la producción de hormonas vegetales, las mismas que son desechos del metabolismo de las
bacterias típicas de este tipo de fermentación anaeróbica (que no se presentan en el compost), su
aplicación estimula la formación y fortalecimiento de nuevas raíces, induce la floración y tiene acción
fructificante. El Biol cuenta con fitohormonas por lo que es importante en la práctica de la agricultura
orgánica, abarata costos y mejora la productividad y calidad de los cultivos (Aparcana, 2008).
30
La aplicación de biol en la fertilización foliar complementaria en el cultivo de amaranto (Amaranthus
caudatus L.) var. INIAP Perucho, obtuvo los mejores resultados debido a su efecto estimulante en las
variables de: Altura a la cosecha con 88.39 cm y tamaño de panoja con 51.39 cm; mismo efecto que
se reflejó en las variables rendimiento con 720.13 g/parcela neta y peso hectolítrico con 82.54
unidades, en comparación con el resto de tratamientos que reportaron valores inferiores (Saavedra,
2013).
Estudios realizados en diversos cultivos comprueban la eficiencia del biol, por ejemplo, en fréjol
(Phaseolus vulgaris) una dosis de 80 litro/ha con una concentración del 20 % consiguió un rendimiento
alto con 1249 kg/ha, y una relación B/C de 2.53 (Gutierrez, 2001); en vainita francesa (Phaseolus
vulgaris), el biol adelantó los días a la floración, incrementó la altura a los 30 y 60 días debido a su
contenido de fitohormonas y nutrientes, el biol el 20 % fue el tratamiento más económico (Lisintuña,
1996).
31
3. MATERIALES Y MÉTODOS
Materiales 3.1.
Ubicación del ensayo 3.1.1.
Ubicación política y geográfica. 3.1.1.1.
Cuadro 2. Ubicación política y geográfica del ensayo 2013.
Localidad
Provincia Pichincha
Cantón Quito
Parroquia Tumbaco
Sitio/Barrio La Tola (CADET)
Latitud 0° 13´ 58´´S.
Longitud 78° 22' 05´´O
Altitud 2460 msnm
Fuente: Instituto Geográfico Militar
Año-Elaboración: 2013
Características Agro-climáticas y edáficas del sitio experimental. 3.1.1.2.
Cuadro 3. Características Agro-climáticas y edáficas en la localidad de Tumbaco, Pichincha
2013.
Fuente: Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología (INAMHI), año 2012
Año-Elaboración: 2013
Características Valores
Temperatura máxima 15.6 °C
Temperatura mínima 8.7 °C
Precipitación anual 860 mm
Humedad relativa 75%
Heliofanía 5.75 horas /luz/día
Suelos Entisol
Ph 6.7 ligeramente ácido
Textura Franco-Arenoso
Clasificación ecológica de Holdrige bosque seco_ Montano Bajo (bs-MB)
32
Material experimental 3.1.2.
Cuadro 4. Herramientas, insumos y equipos usados en campo
HERRAMIENTAS
EQUIPOS
USADOS EN
CAMPO INSUMOS
- Arado
- Rastra
- Azadones
- Rastrillos
- Cinta Métrica.
- Piolas
- Cintas
- Estacas
- Etiquetas
- Baldes
- Sacos de polietileno
- Bomba de
mochila
- Libreta de
campo
- Semillas de Fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.).
- Abono Orgánico: Estiércol bovino
descompuesto.
- BIESTIMULANTES (3 clases: Organic
Mix, Newfol Plus y Biol enriquecido con
microelementos)
- Insecticidas biológicos: Bacillus
thuringiensis, Beauveria bassiana.
- Funguicidas biológicos: Trichoderma
harzianum.
- Funguicidas químicos: Kocide 2000.
- Nematicidas biológicos: Paecilomyces
lilacinus.
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
Equipos usados en el laboratorio
Cámara digital.
Computadora.
Otros materiales
Materiales de oficina.
Métodos 3.2.
Factores en estudio 3.2.1.
Los factores en estudio fueron:
33
1. Clases de Biostimulantes (B) :
(b1) Bioestimulante 1 (Organic Mix)1
(b2) Bioestimulante 2 (Newfol Plus)2
(b3) Bioestimulante 3 (Biol enriquecido con microelementos)3
2. Dosis (D):
(d1) Baja (25 % menos de la dosis recomendada).
(d2) Media (Dosis recomendada).
(d3) Alta (25 % más de la dosis recomendada).
Tratamientos 3.2.2.
Resultaron de la interacción de los niveles de los factores en estudio y se muestran en el Cuadro 5.
Cuadro 5. Tratamientos evaluados en el ensayo de aplicación de tres clases de Bioestimulantes en
tres dosis en el cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2013
Tratamiento Codificación Interpretación
1 b1d1 Bioestimulante 1dosis baja (25 % menos de la dosis recomendada)
2 b1d2 Bioestimulante 1 dosis media (Dosis recomendada)
3 b1d3 Bioestimulante 1 dosis alta (25 % más de la dosis recomendada)
4 b2d1 Bioestimulante 2 dosis baja (25 % menos de la dosis recomendada)
5 b2d2 Bioestimulante 2 dosis media (Dosis recomendada)
6 b2d3 Bioestimulante 2 dosis alta (25 % más de la dosis recomendada)
7 b3d1 Bioestimulante 3 dosis baja (25 % menos de la dosis recomendada)
8 b3d2 Bioestimulante 3 dosis media (Dosis recomendada)
9 b3d3 Bioestimulante 3 dosis alta (25 % más de la dosis recomendada)
10 Tfb Testigo con fertilizante base.
11 To Testigo absoluto 0, sin aplicaciones.
Fuente: El Autor.
Año-Elaboración: 2013
Adicionales
Tfb. Fertilización base: ORGÁNICO (Estiércol bovino descompuesto, Roca fosfórica y
Sulpomag).
1 Anexo 2: Contenidos nutrimentales
2 Anexo 3: Contenidos nutrimentales
3 Anexo 4: Contenidos nutrimentales
34
To. Absoluto: No recibió ninguna aplicación de fertilizante.
Unidad experimental 3.2.3.
La unidad experimental estuvo representada por una parcela rectangular de las siguientes dimensiones:
largo: 4.00 m x ancho: 2.50 m (10.00 m2), sobre la que se dispuso 4 surcos espaciados entre sí a 0.50
m; en donde se sembró tres semillas de fréjol por sitio, a 0.25 m de distancia entre matas, dando un
total de 204 plantas.
La parcela neta estuvo representada por una parcela rectangular de las siguientes dimensiones: largo:
2.00 m x ancho: 1.00 m (2.00 m2), sobre la que se dispuso 2 surcos espaciados entre sí a 0.50 m; en
donde se sembró tres semillas de fréjol por sitio, a 0.25 m de distancia entre matas, dando un total de
54 plantas.
Número de plantas por unidad experimental: 204
Número de plantas por parcela neta: 54
Análisis estadístico 3.2.4.
Diseño experimental 3.2.4.1.
Se utilizó un Diseño de Bloques Completos al Azar (DBCA), con un arreglo factorial de 3 x 3 + 2, para
un total de 11 tratamientos; con cuatro repeticiones, para un total de 44 unidades experimentales.
Características del área experimental 3.2.4.2.
El área experimental tuvo una superficie total de 659.3 m2 (largo: 34.7 m x ancho: 19.0 m) en la que se
dispuso 4 repeticiones con 11 unidades experimentales cada una, con un distanciamiento entre
repeticiones de 0.60 m y entre unidades experimentales de 0.60 m, con un área total de caminos de
219.3 m2.
Nº de unidades experimentales: 44
Distancia entre repeticiones: 0.60
Distancia entre unidades experimentales: 0.60
Área total del experimento: 659.3 m2 (19.0 m x 34.7 m)
Área total de caminos: 219.3 m2
35
Esquema del ADEVA 3.2.4.3.
Cuadro 6. Esquema del análisis de la varianza para un diseño de bloques completos al azar de 11
tratamientos con cuatro repeticiones, 2013.
Fuentes de variación Grados de Libertad
Total 43
Tratamientos 10
Bioestimulantes (B) 2
b1 Vs b2 b3 1
b2 Vs b3 1
Dosis (D) 2
Lineal 1
Cuadrático 1
B x D 4
Factorial x Adicional 1
Fertilización base x Absoluto 1
Repeticiones 3
Error Experimental 30 Promedio
CV
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
Análisis funcional 3.2.4.4.
Se realizó la prueba de Tukey al 5 % para Bioestimulantes, Dosis e Interacciones que mostraron
significación estadística. Además se realizó DMS al 5 % para las Comparaciones Ortogonales.
Variables y métodos de evaluación 3.2.5.
Variables agronómicas: 3.2.5.1.
3.2.5.1.1. Germinación de las plantas
Se realizó una prueba de germinación en laboratorio, colocando en un plato un total de 100 semillas, se
expresó en porcentaje.
3.2.5.1.2. Altura de planta
Se tomó a los 30 días y a los 60 días después de la siembra, para lo cual se tomaron diez plantas (5
plantas/surco) escogidas al azar, y en competencia completa dentro de la parcela neta. La altura se
medió con un flexómetro desde el nivel del suelo hasta el punto apical de las plantas y se expresó en
centímetros.
36
Variables a la cosecha: 3.2.5.2.
3.2.5.2.1. Número de vainas por planta
A la cosecha se tomaron de cada parcela neta diez plantas al azar (5 plantas/ surco) y se cuantificó el
número de vainas por planta.
3.2.5.2.2. Tamaño de la vaina
De las diez plantas escogidas en la variable Número de vainas por planta, se tomaron diez vainas al
azar, las mismas que fueron medidas utilizando un flexómetro, cuyo tamaño fue expresado en
centímetros.
3.2.5.2.3. Número de granos por vaina
De las diez plantas escogidas en la variable Número de vainas por planta, se tomaron diez vainas al
azar, las mismas que se desgranaron para contabilizar el número de granos por vaina.
3.2.5.2.4. Peso de 100 granos
De cada parcela neta se tomó al azar una muestra de 100 granos cuyo peso fue expresado en gramos.
3.2.5.2.5. Rendimiento
Con una balanza graduada en gramos, se pesó la producción de grano seco (14 % de humedad), de
cada parcela neta, y se proyectó el rendimiento a t/ha.
Variables de observación: 3.2.5.3.
3.2.5.3.1. Incidencia de insectos plaga y enfermedades.
Se realizaron monitoreos visuales cada 4 días en el ensayo para determinar la incidencia de plagas y
enfermedades (insectos, patógenos). Se expresó en porcentaje de infección e infestación. Para el efecto
se emplearon escalas arbitrarias que se muestran en los Cuadros 7 y 8.
Cuadro 7. Escala arbitraria para la determinación de la incidencia de enfermedades, expresada
en porcentaje de infección.
Calificación Valor %
Infección débil 0 – 5
Infección ligera 6 – 10
Infección moderada 11 – 25
Infección severa 26 – 50
Infección muy severa 51 – 100
Fuente: El Autor Año-Elaboración: 2013
37
Cuadro 8. Escala arbitraria para la determinación de la incidencia de insectos plaga, expresada
en porcentaje de infestación.
Calificación Valor %
Infestación débil 0 – 5
Infestación ligera 6 – 10
Infestación moderada 11 – 25
Infestación severa 26 – 50
Infestación muy severa 51 – 100
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
3.2.5.3.2. Análisis financiero
Se calcularon los costos de producción para cada uno de los tratamientos en estudio y se determinó la
relación Beneficio / Costo.
Métodos de manejo del experimento 3.2.6.
Selección del lote del experimento 3.2.6.1.
Se procedió a seleccionar un lote plano, sin influencia de sombra y con disponibilidad de agua para
riego.
Análisis de suelos 3.2.6.2.
Se tomó una muestra compuesta del área prevista para el experimento, se la envió al laboratorio de
suelos de la Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador, y se determinó sus
condiciones físico – químicas. Anexo 5.
Incorporación de materia orgánica (Fertilización base). 3.2.6.3.
Se incorporó al suelo estiércol bovino descompuesto (Anexo 4), roca fosfórica y sulpomag;
respondiendo al análisis del suelo, al requerimiento de nutrientes del cultivo y a la riqueza nutrimental
del estiércol descompuesto. La incorporación se hizo en los 15 primeros centímetros del suelo, con 30
días de anticipación de la siembra.
Elaboración del Biol. 3.2.6.4.
Para la elaboración del Biol se siguió el procedimiento descrito por Suquilanda (1995); se utilizó un
tanque plástico con capacidad para 200 litros, con su respectiva tapa hermética, al que se instaló una
válvula para escape de gases y una trampa de agua; se incorporó estiércol bovino; levadura de pan y
leguminosa picada (alfalfa). Esto fue sellado por 60 días para dar paso a la fermentación anaerobia, una
38
vez producida la biodigestión de los materiales se filtró la parte líquida. Del Biol elaborado se tomó
una muestra de 500 cc y se la envió al Laboratorio del INIAP, para su respectivo análisis.
Una vez obtenido el análisis del Biol, Anexo 4, se procedió a enriquecerlo, para lo cual se incorporó a
la mezcla 80 gramos de Carbonato de Calcio, 80 gramos de Sulpomag, 25 gramos de Sulfato de Hierro,
16 gramos de Óxido de Zinc y 8 gramos de Sulfato de Cobre, se volvió a cerrar por un período de 2
meses para que los compuestos se quelaticen, terminado este lapso se pudo usar el Biol para el
desarrollo de la investigación.
Aplicación de los tratamientos 3.2.6.5.
Las aplicaciones se iniciaron cuando en el cultivo se presentó la primera hoja trifoliada, y la última
cuando el cultivo se acercaba a la madurez fisiológica, con un total de 12 aplicaciones. Las dosis de
biestimulantes previstas en el ensayo se aplicaron al follaje y a la base de la planta utilizando para el
efecto una bomba de mochila. Las aplicaciones se hicieron cada 8 días. Las dosis en referencia son las
que se muestran en el Cuadro 9.
Cuadro 9. Dosificación de cada uno de los tratamientos evaluados en el ensayo de aplicación de
tres clases de Bioestimulantes, en tres dosis en el cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.).
Tumbaco, Pichincha. 2013
Tratamiento Codificación Interpretación
Organic Mix
Baja 1.9 cc/litro (25 % menos de la dosis recomendada )
Media 2.5 cc/litro (Dosis recomendada)
Alta 3.1 cc/litro (25 % más de la dosis recomendada)
Newfol Plus
Baja 1.31 g/litro (25 % menos de la dosis recomendada )
Media 1.75 g/litro (Dosis recomendada)
Alta 2.19 g/litro (25 % más de la dosis recomendada)
Biol enriquecido
con
microelementos
Baja 15 cc/litro (25 % menos de la dosis recomendada )
Media 20 cc/litro (Dosis recomendada)
Alta 25 cc/litro (25 % más de la dosis recomendada)
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
Riego 3.2.6.6.
Se aplicó respondiendo a los requerimientos del cultivo, usado para ellos aspersores, los mismos que se
colocaron en todo el lote.
39
Deshierba 3.2.6.7.
Se realizaron 3 deshierbas en todo el lote, un medio aporque y un aporque completo; para ello se utilizó
herramientas manuales de labranza.
Manejo fitosanitario 3.2.6.8.
El frejol Caraota está expuesto durante su desarrollo a diversas plagas y enfermedades (Anexo 8) que
pueden afectar su crecimiento y mermar su producción.
A los 7 días posteriores de la emergencia de las plantas se detectó la presencia de plagas, como, gusano
trozador (Agrotis sp) y gusano alambre (Agriotes sp); en cuanto a enfermedades se detectó la presencia
de Fusarium solani; para el manejo y control de las plagas se utilizó una mezcla de Bacillus
thuringiensis y Beauveria bassiana, para el caso de Fusarium solani, se utilizó Trichoderma
harzianum, para ambos casos la dosis fue de 4 cc/litro de agua.
En la semana 10 del desarrollo del cultivo se detectó en una sola parcela experimental la presencia de
Roya (Uromyces phaseoli), para su manejo y control se usó Kocide 2000 con una dosis de 2.5 g/litro
de agua cada 8 días.
Cosecha y Poscosecha 3.2.6.9.
La cosecha se realizó cuando el grano alcanzó su madurez fisiológica (14 % de humedad). Se arrancó
del suelo las plantas de la parcela neta y se formó parvas, se trilló el grano, a continuación se procedió
a limpiarlo y a ponerlo en fundas de papel y pesarlo.
40
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
GERMINACIÓN DE LAS PLANTAS 4.1.
En el Cuadro 10, se observa el porcentaje de germinación de las cuatro pruebas realizadas,
determinando que se trata de una semilla de calidad, dado que el promedio fue de 94.75 %. Esta
semilla fue proporcionada por la Cátedra de Agricultura Alternativa de la Facultad de Ciencias
Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador. CADET.
Cuadro 10. Porcentaje promedio de pruebas de germinación del fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.). Tumbaco, Pichincha. 2014.
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
ALTURA DE PLANTA. 4.2.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, se observa alta significancia estadística para comparación
ortogonal b3 Vs b1b2; y significancia estadística para Tratamientos, Bioestimulantes y Factorial Vs
Adicional. El coeficiente de variación fue del 10.56 %, que es bueno para este tipo de investigación y
el promedio general fue de 9.10 cm por planta.
Tukey al 5% para Bioestimulantes, Cuadro 12 y Gráfico 1, identificó dos rangos de significación
estadística. Encabezando el primer rango se encuentra b3 (Biol enriquecido con micronutrientes) con
9.95 cm/planta, mientras que en el segundo rango se ubica b2 (Newfol Plus) con 8.90 cm/planta. Esta
respuesta se debe a que el Biol es un promotor y fortalecedor del crecimiento de las plantas, raíces y
frutos, gracias a su producción de fitohormonas (Aparcana, 2008); las auxinas y giberelinas existentes
promueven la elongación celular al incrementar la plasticidad de la pared y aumentar el contenido de
glucosa y fructosa, provocando la disminución del potencial de agua, lo que lleva al ingreso de agua en
la célula produciendo su expansión (Marassi, 2007). Bajo este contexto Mora (1995) manifiesta, que
gracias a estas cualidades, el biol es usado para la prolongación de las células de los coleóptilos y
tallos.
Para Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 2, no se encontró significancia estadística, sin embargo se reportó
una diferencia matemática, obteniendo el promedio más alto d1 (Dosis Baja) con 9.75 cm/planta;
mientras que, el promedio más bajo lo obtuvo d2 (Dosis Media) con 8.85 cm/planta. Esta diferencia
puede deberse a que las medidas de esta variable fueron tomadas a los 30 y 60 días después de la
Prueba de germinación %
1 95.00
2 98.00
3 92.00
4 94.00
Promedio total 94.75
41
siembra y la aplicación se la inicio cuando se presentó en el cultivo la primera hoja trifoliada a los 21
días después de la siembra.
Para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 3, no se presentó ningún tipo de
significancia estadística, no obstante existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el
tratamiento b3d1 (Biol Enriquecido con micronutrientes + dosis baja 15cc/l) con 10.84 cm/planta;
mientras que el menor promedio fue para el tratamiento b2d2 (Newfol Plus + dosis media 1.75 g/litro)
con 8.29 cm/planta. Aún sin reportar significancia estadística se evidencia el beneficio del uso del biol
gracias a su capacidad de promover y fortalecer el crecimiento.
DMS al 5 % para Factorial vs Adicional, Cuadro 12 y Gráfico 4, detectó dos rangos de significación
estadística. En el primer rango se ubica el Factorial (Bioestimulantes) con 9.29 cm/planta y en el
segundo rango se ubica el Adicional (Testigos) con 8.26 cm/planta. Esto puede ser atribuido a las
fitohormonas, aminoácidos y ácidos húmicos que se encuentran presentes en los bioestimulantes, los
mismos que de una u otra manera influenciaron el crecimiento del cultivo.
Para Testigo fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 12, no se encontró significancia
estadística, sin embargo existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se ubica el
testigo fertilización base con 8.66 cm/planta; mientras que, el testigo absoluto reporta el menor
promedio con 7.86 cm/planta. Esta diferencia se debe a que en el suelo existió la suficiente
disponibilidad de nutrientes para esta etapa de desarrollo del cultivo. Cabe recalcar que el ensayo fue
realizado en el Área de Agricultura Alternativa de la Facultad de Ciencias Agrícolas del Ecuador.
CADET.
DMS al 5% para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 12, detectó dos rangos de
significación estadística. En el primer rango se encuentra b3 (Biol enriquecido con micronutrientes)
con 9.95 cm/planta y en el segundo rango se ubica b1b2 (Organic Mix + Newfol plus) con 8.96
cm/planta. Esta diferencia se debe a la cantidad de Nitrógeno presente en el biol, el mismo que
constituye parte de las proteínas, sustancias que son importantes en la formación de protoplastos,
elementos indispensables en el crecimiento. Estos resultados ratifican lo expuesto por Lisintuña (1996)
y Rodríguez (2009), quienes alcanzaron mejores resultados en altura de planta con el uso del biol en
sus investigaciones.
Para la comparación ortogonal b1 vs b2, Cuadro 12, no se presentó significación estadística, pese a
ello se reporta un diferencia matemática, reportando el promedio más alto b1 (Organix Mix) con 9.02
cm/planta; mientas que, el promedio más bajo lo obtuvo b2 (Newfol plus) con 8.90 cm/planta. Esta
diferencia se debe a que Organix Mic tiene la mayor concentración de ácido húmicos, investigadores
como Pizzeghello et al., (2000) y Mackowiak et al., (2001) destacan los beneficios de estas sustancias
en el crecimiento de las plantas.
42
Cuadro 11. ADEVAS para seis variables en el estudio de Bioestimulantes aplicados en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Tumbaco,
Pichincha. 2014
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2014
FUENTES DE
VARIACIÓN G.L.
CUADRADOS MEDIOS
Altura de
planta
Número de
vainas/planta
Tamaño
de la
vaina
Número de
granos/vaina
Peso de
100
granos
Rendimiento
TOTAL 43 TRATAMIENTOS 10 2.71 * 62.08 ** 0.12 * 0.18 ** 3.90 ** 9.02 * BIOESTIMULANTES (B) 2 3.92 * 37.94 * 0.03 ns 0.07 ns 4.71 ** 4.30 ns
b3vs.b1b2 1 7.76 ** 43.04 ns 0.002 ns 0.002 ns 3.88 * 7.03 ns b1vs.b2 1 0.09 ns 32.83 ns 0.06 ns 0.14 ns 5.53 ** 1.57 ns
DOSIS (D) 2 2.44 ns 223.76 ** 0.18 * 0.34 ** 7.13 ** 25.26 ** Lineal 1 1.4 ns 7.12 ns 0.07 ns 0.45 ** 8.14 ** 2.79 ns Cuadrático 1 3.48 ns 440.40 ** 0.29 * 0.23 * 6.11 ** 47.72 ** B. x D 4 1.54 ns 23.51 ns 0.03 ns 0.08 ns 1.70 * 3.59 ns FACT. VS. ADCIONAL 1 6.89 * 3.36 ns 0.63 ** 0.52 ** 8.43 ** 16.74 ns Tg. fert. base vs. Tg. Abs. 1 1.28 ns 0.01 ns 0.0003 ns 0.13 ns 0.05 ns 0.01 ns REPETICIONES 3 2.75 * 21.55 ns 0.09 ns 0.01 ns 1.47 ns 3.78 ns ERROR EXPERIMENTAL 30 0.92 11.16 0.05 0.05 0.61 4.30
PROMEDIO:
9.10 cm 38.42 9.45 cm 5.50 21.19 g 9.97 t/ha
C.V.: (%) 10.56 8.69 2.30 3.97 3.69 20.79
43
Gráfico 1. Promedio de altura de planta para Bioestimulantes en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 2. Promedio de altura de planta para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en
el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014.
44
Gráfico 3. Promedio de altura de planta para Tratamientos en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 4. Promedio de altura de planta para Factorial vs Adicional en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
45
Cuadro 12. Promedios y Pruebas de Significación en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
FACTORES DESCRIPCIÓN Altura de
planta (cm)
Número de
vainas por
Planta
Tamaño de
la vaina
(cm)
BIOESTIMULANTES (B) 1 1
b1 Organic Mix 9.02 a 36.61 b 9.46
b2 Newfol Plus 8.90 b 38.95 a 9.56
b3 Biol Enriquecido 9.95 a 40.10 a 9.49
DOSIS (D) 1 1
d1 Dosis Baja 9.75 35.54 b 9.51 a
d2 Dosis Media 8.85 43.50 a 9.3 8 b
d3 Dosis Alta 9.27 36.63 b 9.62 a
TRATAMIENTOS 1 1 1
b1d1 Organic Mix 1.9 cc/lt 8.94 a 34.91 a 9.55 a
b1d2 Organic Mix 2.5 cc/lt 9.35 a 40.43 a 9.23 a
b1d3 Organic Mix 3.1 cc/lt 8.78 a 34.50 b 9.60 a
b2d1 Newfol Plus 1.31 g/lt 9.48 a 36.58 a 9.51 a
b2d2 Newfol Plus1.75 g/lt 8.29 a 45.68 a 9.46 a
b2d3 Newfol Plus 2.9 g/lt 8.94 a 34.60 a 9.70 a
b3d1 Biol Enriquecido 15 cc/lt 10.84 a 35.13 a 9.48 a
b3d2 Biol Enriquecido 20 cc/lt 8.91 a 44.40 a 9.44 a
b3d3 Biol Enriquecido25 cc/lt 10.09 a 40.78 a 9.56 a
Testigo Fert. Base 8.66 a 37.80 a 9.20 a
Testigo Absoluto 7.86 b 37.88 a 9.19 b
COMPARACIONES
ORTOGONALES 2
b3 Vs b1 b2
b3 9.95 a 40.10 9.49
b1 b2 8.96 b 37.78 9.51
b1 Vs b2
b1 9.02 36.61 9.46
b2 8.90 38.95 9.56
FACTORIAL vs
ADICIONAL
2 2
Factorial 9.29 a 38.55 9.50 a
Testigos 8.26 b 37.84 9.19 b
1:Tukey al 5%; 2:DMS al 5%
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
46
NÚMERO DE VAINAS POR PLANTA 4.3.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, se observa alta significación estadística para Tratamientos,
Dosis, función cuadrática; y significancia estadística para Bioestimulantes. El coeficiente de variación
fue de 8.69 %, que es excelente para este tipo de investigación y el promedio general fue de 38.42
vainas/planta.
Tukey al 5% para Bioestimulantes, Cuadro 12 y Gráfico 5, identificó dos rangos de significación
estadística. Encabezando el primer rango se encuentra b3 (Biol enriquecido con micronutrientes) con
40.10 vainas/planta y en el segundo rango se ubica b1 (Organic Mix) con 36.61 vainas/planta. Esta
diferencia se puede atribuir a la mayor cantidad de micronutrientes que pudieron estar presentes en el
biol. Esos resultados concuerdan con lo expuesto por Terán (2009), quién alcanzo un mayor número
de vainas con su biol enriquecido con MgSO4 + FeSO4.
Tukey al 5% para Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 6, identificó dos rangos de significación estadística. En
el primer rango se encuentra d2 (dosis media) con 43.50 vainas/planta y al final del segundo rango se
ubica d1 (dosis baja) con 35.91 vainas/planta. Esta diferencia puede deber a que una adecuada
concentración de fitohormonas estimulan la inducción y desarrollo de flores y frutos (Sponsel Y
Hedden, 2004).
Para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 7, no presenta significancia
estadística, sin embargo existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el tratamiento
b2d2 (Newfol Plus + dosis media 1.75 g/litro) con 45.68 vainas/planta y el menor promedio lo obtuvo
b1d3 (Organo Mix + dosis alta 3.1 cc/litro) con 34.50 vainas/planta. Esta diferencia puede atribuirse a
la mayor cantidad de aminoácidos presentes en Newfol Plus, Melgar (2005) manifiesta que estos
compuestos suministran eslabones fundamentales para fomentar el crecimiento y desarrollo de las
plantas.
Para Factorial vs Adicional, Cuadro 12 y Gráfico 8, no reportó significación estadística. No obstante,
existe una diferencia matemática, el mayor promedio lo representa el Factorial (Bioestimulantes) con
38.55 vainas/planta; mientras que, el menor promedio lo obtuvo el Adicional (Testigos) con 37.84
vainas/planta. Esta diferencia se atribuye a la mayor carga hormonal y nutricional que poseen los
Bioestimulantes, beneficiando el desarrollo del cultivo.
Para Testigo Fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 12, no se encontró significancia
estadística, a pesar de ello, existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se
47
ubica el testigo absoluto con 37.88 vainas/planta; mientras que, el testigo fertilización base reporta el
menor promedio con 37.80 vainas/planta. Esta diferencia puede atribuirse a que en el lugar del ensayo
hubo la disponibilidad suficiente de nutrientes para esta etapa del cultivo.
Para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 12, no se detectó significancia estadística,
reportando solo una diferencia matemática, alcanzando el mayor promedio se encuentra b3 (Biol
enriquecido con micronutrientes) con 40.10 vainas/planta y con el menor promedio se ubica b1b2
(Organic Mix + Newfol Plus) con 37.78 vainas/planta. Esta diferencia puede deberse a la cantidad de
fitohormonas presentes en el biol, las mismas que inducen la floración y fructificación (Aparcana,
2008), estos datos concuerdan con lo expuesto por Rodríguez (2009), que alcanzó los mejores
resultados en esta variable con el uso del biol.
Para la comparación b1 vs b2, Cuadro 12, no se detectó significación estadística, pese a ello se reporta
un diferencia matemática, reportando el promedio más alto b2 (Newfol Plus) con 38.95 vainas/planta;
mientas que, el promedio más bajo lo obtuvo b1 (Organix Mix) con 36.61 vainas/planta. Esto se debe a
la gran cantidad de aminoácidos y minerales que Newfol Plus posee.
Gráfico 5. Promedio de número de vainas por planta para Bioestimulantes en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
48
Gráfico 6. Promedio de número de vainas por planta para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 7. Promedio de número de vainas por planta para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
49
Gráfico 8. Promedio de número de vainas por planta para Factorial vs Adicional en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
TAMAÑO DE LA VAINA 4.4.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, se observa alta significación estadística para Factorial vs
Adicional; y significancia estadística para Tratamientos, Dosis y función cuadrática. El coeficiente de
variación fue de 2.30 %, que es excelente para este tipo de investigación y el promedio general fue de
9.45 cm/vaina.
Para Bioestimulantes, Cuadro 12 y Gráfico 9, no identificó significación estadística, sin embargo se
registra una diferencia matemática, con el mayor promedio se ubica b2 (Newfol Plus) con 9.56
cm/vaina y el menor promedio lo obtuvo b1 (Organic Mix) con 9.46 cm/vaina. Esta diferencia puede
deberse a que Newfol Plus contiene Aminoácido, fitohormonas y micronutrientes que promueven el
desarrollo y formación de las vainas.
Tukey al 5% para Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 10, identificó dos rangos de significación estadística.
Encabezando el primer rango se encuentra d3 (dosis alta) con 9.62 cm/vaina y en el segundo rango se
ubica d2 (dosis media) con 9.38 cm/vaina. Esto pude deberse a la mayor carga hormonal y nutricional
que se aporta con mayor dosis. Srivastava (2002), argumenta que las hormonas vegetales regulan
fenómenos fisiológicos como la floración, formación de frutos y germinación.
50
Para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 12 y Gráfico 11, no presenta significancia
estadística, a pesar de ello existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el tratamiento
b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19 g/litro) con 9.70 cm/vaina y el menor promedio lo obtuvo b1d2
(Organo Mix + dosis media 2.5 cc/litro) con 9.23 cm/vaina. Esta diferencia puede atribuirse al alto
contenido de aminoácidos libres y Nitrógeno que tiene Newfol Plus y a la mayor cantidad de
bioestimulante que se aplica al cultivo.
DMS al 5% para Factorial vs Adicional, Cuadro 12 y Gráfico 12, identificó dos rangos de significación
estadística. En el primer rango se ubica el Factorial (Bioestimulantes) con 9.50 cm/vaina; mientras que,
en el segundo rango se ubica el Adicional (Testigos) con 9.19 cm/vaina. Esta diferencia pudo haber
sido causada por la mayor cantidad de fertilizante existente en los tratamientos, aportando los
nutrientes necesarios para esta etapa del cultivo.
Para Testigo Fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 12, no se encontró significancia
estadística, a pesar de ello, existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se
ubica el testigo fertilización base con 9.20 cm/vaina; mientras que, el testigo absoluto reporta el menor
promedio con 9.19 cm/vaina. Es pudo haber sido provocado por la buena disponibilidad de nutrientes
existentes en el suelo, que para ambos casos fue suficiente para tener un buen desarrollo en esta etapa
del cultivo.
Para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 12, no se detectó significancia estadística,
reportando solo una diferencia matemática, alcanzando el mayor promedio se encuentra b1b2 (Organic
Mix + Newfol plus) con 9.51 cm/vaina y con el menor promedio se ubica b3 (Biol enriquecido con
micronutrientes) con 9.49 cm/vaina. Esta diferencia pudo deberse a los aminoácidos y micronutrientes
que Newfol Plus y Organic Mix aportan al cultivo, disminuyendo el gasto de energía y facilitando el
desarrollo en esta etapa del cultivo.
Para la comparación b1 vs b2, Cuadro 12, no se presentó significación estadística, pese a ello se reporta
un diferencia matemática, alcanzando el promedio más alto b2 (Newfol Plus) con 9.56 cm/vaina;
mientas que, el promedio más bajo lo obtuvo b1 (Organic Mix) con 9.46 cm/vaina. Esta diferencia
puede ser atribuida a la mayor presencia de Aminoácidos en el Newfol Plus, estimulando el
crecimiento y desarrollo de cultivo.
51
Gráfico 9. Promedio de tamaño de la vaina para Bioestimulantes en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 10. Promedio de tamaño de la vaina para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.)
en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco,
Pichincha. 2014.
52
Gráfico 11. Promedio de tamaño de la vaina para Tratamientos en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 12. Promedio de tamaño de la vaina para Factorial vs Adicional en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
53
NÚMERO DE GRANOS POR VAINA 4.5.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, se observa alta significación estadística para Tratamientos,
Dosis, Factorial vs Adicional y función lineal; y significancia estadística para función cuadrática. El
coeficiente de variación fue de 3.97 %, que es excelente para este tipo de investigación y el promedio
general fue de 5.50 granos/vaina.
Para Bioestimulantes, Cuadro 13 y Gráfico 13, no identificó significación estadística, sin embargo se
registra una diferencia matemática, con el mayor promedio se ubica b2 (Newfol Plus) con 5.63
granos/vaina y el menor promedio lo obtuvo b1 (Organic Mix) con 5.48 granos/vaina. Esta diferencia
puede deberse a la presencia de aminoácidos en Newfol Plus que mejoran la calidad de los frutos.
Estos resultados concuerdan con lo expuesto por Guanamarca (2009), que obtuvo el mejor resultado
usando Newfol Plus en esta variable.
Tukey al 5% para Dosis, Cuadro 13 y Gráfico 14, identificó tres rangos de significación estadística. En
el primer rango se encuentra d3 (dosis alta) con 5.75 granos/vaina y en el tercer rango se ubica d2
(dosis media) con 5.44 granos/vaina. Esto puede deberse a la mayor cantidad de aminoácidos y
fitohormonas que se proporcionó al cultivo en esta etapa de desarrollo.
Para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 13 y Gráfico 15, no presenta significancia
estadística, a pesar de ello existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el tratamiento
b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19 g/litro) con 5.98 granos/vaina y el menor promedio lo obtuvo b3d2
(Biol enriquecido con micronutrientes + dosis media 20 cc/litro) con 5.40 granos/vaina. Esta diferencia
puede ser atribuida a la mayor carga hormonal que se proporcionó al cultivo.
DMS al 5% para Factorial vs Adicional, Cuadro 13 y Gráfico 16, identificó dos rangos de significación
estadística. En el primer rango se ubica el Factorial (Bioestimulantes) con 5.56 granos/vaina; mientras
que, en el segundo rango se ubica el Adicional (Testigos) con 5.28 granos/vaina. Esta diferencia puede
deberse a la presencia de aminoácidos, fitohormonas y micronutrientes presentes en cada uno de los
tratamientos. Díaz (2009), manifiesta que el uso de estos compuestos permite un mayor crecimiento del
fruto.
Para Testigo Fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 13, no se encontró significancia
estadística, no obstante, existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se ubica el
testigo fertilización base con 5.40 granos/vaina; mientras que, el testigo absoluto reporta el menor
promedio con 5.15 granos/vaina. Esta diferencia puede deberse a la fertilización edáfica que se hizo en
este testigo con Sulpomag, Roca fosfórica y estiércol bobino.
54
Gráfico 13. Promedio de número de granos por vaina para Bioestimulantes en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 14. Promedio de número de granos por vaina Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
55
Gráfico 15. Promedio de número de granos por vaina para Tratamientos en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
Gráfico 16. Promedio de número de granos por vaina para Factorial vs Adicional en fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
56
Cuadro 13. Promedios y Pruebas de Significación en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
FACTORES DESCRIPCIÓN
Número
de granos
por vaina
Peso de
100
granos
Rendimiento
t/ha
BIOESTIMULANTES (B) 1
b1 Organic Mix 5.48 20.68 b 9.70
b2 Newfol Plus 5.63 21.64 a 10.21
b3 Biol Enriquecido 5.57 21.86 a 10.89
DOSIS (D) 1 1 1
d1 Dosis Baja 5.48 b 21.69 a 9.11 c
d2 Dosis Media 5.44 c 21.98 a 11.89 a
d3 Dosis Alta 5.75 a 20.52 b 9.79 b
TRATAMIENTOS 1 1 3
b1d1 Organic Mix 1.9 cc/lt 5.40 a 21.03 a 8.84 a
b1d2 Organic Mix 2.5 cc/lt 5.48 a 20.93 a 10.19 ab
b1d3 Organic Mix 3.1 cc/lt 5.55 a 20.09 b 10.05 ab
b2d1 Newfol Plus 1.31 g/lt 5.45 a 21.54 a 9.23 a
b2d2 Newfol Plus1.75 g/lt 5.45 a 22.08 a 12.45 b
b2d3 Newfol Plus 2.9 g/lt 5.98 a 21.32 a 8.94 a
b3d1 Biol Enriquecido 15 cc/lt 5.58 a 22.49 a 9.25 a
b3d2 Biol Enriquecido 20 cc/lt 5.40 a 22.93 a 13.03 b
b3d3 Biol Enriquecido25 cc/lt 5.73 a 20.16 a 10.37 ab
Testigo Fert. Base 5.40 a 20.34 a 8.69 a
Testigo Absoluto 5.15 b 20.18 a 8.63 a
COMPARACIONES
ORTOGONALES 2
b3 Vs b1 b2
b3 5.57 21.86 a 10.89
b1 b2 5.55 21.16 b 9.95
b1 Vs b2 2
b1 5.48 20.68 b 9.70
b2 5.63 21.64 a 10.21
FACTORIAL vs
ADICIONAL 2 2
Factorial 5.56 a 21.39 a 10.26
Testigos 5.28 b 20.26 b 8.66 1: Tukey al 5%; 2: DMS al 5%, 3: LSD al 5 %
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
57
Para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 13, no se detectó significancia estadística,
reportando solo una diferencia matemática, alcanzando el mayor promedio se encuentra b3 (Biol
enriquecido con micronutrientes) con 5.57 granos/vaina y con el menor promedio se ubica b1b2
(Organic Mix + Newfol Plus) con 5.55 granos/vaina. Esta diferencia puede deberse a la mayor
disponibilidad de micronutrientes que proporciona el biol.
Para la comparación b1 vs b2, Cuadro 13, no se presentó significación estadística, pese a ello se reporta
una diferencia matemática, alcanzando el promedio más alto b2 (Newfol Plus) con 5.63 granos/vaina;
mientas que, el promedio más bajo lo obtuvo b1 (Organix Mix) con 5.48 granos/vaina. Esta diferencia
puede deberse a que Newfol Plus tiene una mayor cantidad de aminoácidos disponibles para el cultivo
en esta etapa de desarrollo.
PESO DE 100 GRANOS 4.6.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, se observa alta significación estadística para Tratamientos,
Bioestimulantes, Dosis, Factorial vs Adicional, comparación ortogonal b1 vs b2, función lineal y
función cuadrática; y significancia estadística para la interacción Biestimulantes x Dosis y
comparación ortogonal b3 vs b1b2. El coeficiente de variación fue de 3.69 %, que es excelente para
este tipo de investigación y el promedio general fue de 21.19 g/100 granos.
Tukey al 5% para Bioestimulantes, Cuadro 13 y Gráfico 17, identificó dos rangos de significación
estadística, encabezando el primer rango se ubica b3 (Biol enriquecido con micronutrientes) con 21.86
g/100 granos y el segundo rango se ubica b1 (Organo Mix) con 20.68 g/100 granos. Esta diferencia
puede deberse al aporte de micronutrientes del biol que influyeron de forma positivamente en el
llenado de las vainas. Estos resultados concuerdan con lo expuesto por Rodríguez (2009), que obtuvo
el mejor resultado con su biol Aborganliq obteniendo 100.21 g/100semillas.
Tukey al 5% para Dosis, Cuadro 13 y Gráfico18, identificó dos rangos de significación estadística. En
el primer rango se encuentra d2 (dosis media) con 21.98 g/100 granos y al final del segundo rango se
ubica d3 (dosis alta) con 20.52 g/100 granos. Este resultado puede ser atribuido a que el cultivo solo
asimila lo que necesita. Molina (2002), manifiesta que la aplicación de una dosis no adecuada podría
causar una sobredosificación y provocar fitotoxicidad causando daño al cultivo.
Tukey al 5% para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 13 y Gráfico 19, identificó dos
rangos de significancia estadística. Encabezando el primer rango se ubica b3d2 (Biol enriquecido con
micronutrientes + dosis media 20 cc/litro) con 22.93 g/100 granos y el segundo rango se ubica b1d3
(Organic Mix + dosis alta 3.1 cc/litro) con 20.09 g/100 granos. Esta diferencia puede deberse a que la
dosis media del biol enriquecido con micronutrientes satisfizo la demanda nutricional del cultivo en
esta etapa de desarrollo. Fichet (2009), manifiesta que las hormonas, aminoácidos y micronutrientes
58
que en un momento dado promueven un determinado crecimiento, después lo inhiben, por lo que
depende de la etapa fisiológica del tejido donde va a actuar, la cantidad y el momento de aplicación.
DMS al 5% para Factorial vs Adicional, Cuadro 13 y Gráfico20, identifico dos rangos de significación
estadística. En el primer rango se ubica el Factorial (Bioestimulantes) con 21.39 g/100 granos; mientras
que, en el segundo rango se ubica el Adicional (Testigos) con 20.26 g/100 granos. Esta diferencia
puede ser atribuida a las fitohormonas, aminoácidos y micronutrientes presentes en los tratamientos.
Para Testigo Fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 13, no se encontró significancia
estadística, no obstante, existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se ubica el
testigo fertilización base con 20.34 g/100 granos; mientras que, el testigo absoluto reporta el menor
promedio con 20.18 g/100 granos. Esta diferencia pudo ser causada por la fertilización edáfica que se
realizó en este testigo.
DMS al 5% para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 13, identificó dos rangos de
significación estadística. En el primer rango se ubica el b3 (Biol enriquecido con micronutrientes) con
21.86 g/100 granos; mientras que, en el segundo rango se ubica el b1b2 (Organic Mix + Newfol Plus)
con 21.16 g/100 granos. Esta diferencia pudo ser causada por la presencia de fitohormonas en el biol,
las mismas que actuaron de forma positiva en esta variable.
DMS al 5% para la comparación b1 vs b2, Cuadro 13, identificó dos rangos de significación
estadística. En el primer rango se ubica el b2 (Newfol Plus) con 21.64 g/100 granos; mientras que, en
el segundo rango se ubica el b1 (Organic Mix) con 20.68 g/100 granos. Esta diferencia puede deberse a
la gran cantidad de aminoácidos que Newfol Plus aporta al cultivo.
Gráfico 17. Promedio de peso de 100 granos para Bioestimulantes en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
59
Gráfico 18. Promedio de peso de 100 granos para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.)
en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco,
Pichincha. 2014.
Gráfico 19. Promedio de peso de 100 granos para Tratamientos en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
60
Gráfico 20. Promedio de peso de 100 granos para Factorial vs Adicional en fréjol Caraota
(Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres
bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
RENDIMIENTO 4.7.
Del análisis de la varianza, Cuadro 11, muestra significancia estadística para tratamientos al realizar
una prueba al 6 % y alta significación estadística para Dosis y función cuadrática al realizar Tukey al 5
%. El coeficiente de variación fue de 20.79 %, que es bueno para este tipo de investigación y el
promedio general fue de 9.97 t/ha.
Para Bioestimulantes, Cuadro 13 y Gráfico 21, no identificó significación estadística, no obstante, se
registra una diferencia matemática, con el mayor promedio se ubica b3 (Biol enriquecido con
micronutrientes) con 10.89 t/ha y el menor promedio lo obtuvo b1 (Organic Mix) con 9.70 t/ha. Esta
diferencia puede deberse a las fitohormonas y micronutrientes que aporta el biol y que influyeron de
manera positiva en el aumento de tamaño y peso de los granos.
Tukey al 5% para Dosis, Cuadro 13 y Gráfico 22, identificó tres rangos de significación estadística. En
el primer rango se encuentra d2 (dosis media) con 11.89 t/ha y en el tercer rango se ubica d1 (dosis
baja) con 9.11 t/ha. Esta diferencia pudo deberse a que la dosis media aporto con los nutrientes
necesarios para esta etapa del cultivo. Bordoli y Barbazán (2010), manifiestan que los cultivos
requieren dosis adecuadas y deben estar disponibles en el momento que la planta los necesite, evitando
los daños por toxicidad para no afectar el rendimiento.
61
Para la interacción Bioestimulantes x Dosis, Cuadro 13 y Gráfico 23, no presenta significancia
estadística, a pesar de ello existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el tratamiento
b3d2 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis media 20 cc/litro) con 13.03 t/ha y el menor
promedio lo obtuvo b1d1 (Organic Mix + dosis baja 1.9 cc/litro) con 8.84 t/ha. Esta diferencia puede
deberse a la adecuada proporción de fitohormonas que el biol enriquecido con micronutrientes aporta
en su dosis media al cultivo. Martínez et al., (2008), manifiesta que la cantidad máxima de fertilizante
aplicado de manera foliar depende el umbral límite de salinidad que puede tolerar el cultivo; una
inadecuada cantidad de fertilizante afecta el rendimiento y comienza a disminuir.
Para Factorial vs Adicional, Cuadro 13 y Gráfico 24, no presenta significancia estadística, a pesar de
ello existe una diferencia matemática, el mayor promedio presenta el Factorial (Bioestimulantes) con
10.26 t/ha y el menor promedio lo obtuvo el Adicional (Testigos) con 8.66 t/ha. Esta diferencia puede
deberse a la aplicación de fitohormonas, aminoácidos y micronutrientes que contenían los tratamientos
influyendo positivamente en el rendimiento.
Para Testigo Fertilización Base vs Testigo Absoluto, Cuadro 13, no se encontró significancia
estadística, no obstante, existe una diferencia matemática, presentando el promedio más alto se
encuentra el testigo fertilización base con 8.69 t/ha; mientras que, el testigo absoluto reporta el menor
promedio con 8.63 t/ha. Esta diferencia pudo ser causada por la fertilización edáfica con Sulpomag,
roca fosfórica y estiércol bobino que se realizó en este testigo.
Para la comparación ortogonal b3 vs b1b2, Cuadro 13, no se detectó significancia estadística,
reportando solo una diferencia matemática, alcanzando el mayor promedio se encuentra b3 (Biol
enriquecido con micronutrientes) con 10.89 t/ha y con el menor promedio se ubica b1b2 (Organic Mix
+ Newfol Plus) con 9.95 t/ha. Esta diferencia puede ser el efecto de las fitohormonas y micronutrientes
presentes en el biol.
Para la comparación b1 vs b2, Cuadro 13, no se presentó significación estadística, pese a ello se reporta
un diferencia matemática, alcanzando el promedio más alto b2 (Newfol Plus) con 10.21 t/ha; mientras
que, el promedio más bajo lo obtuvo b1 (Organic Mix) con 9.70 t/ha. Esta diferencia pudo deberse a
los aminoácidos de Newfol Plus que estuvieron disponibles de forma inmediata al cultivo.
62
Gráfico 21. Promedio de rendimiento para Bioestimulantes en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris
L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco,
Pichincha. 2014.
Gráfico 22. Promedio de rendimiento para Dosis en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el
estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha.
2014.
63
Gráfico 23. Promedio de rendimiento para Tratamientos en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris
L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco,
Pichincha. 2014.
Gráfico 24. Promedio de rendimiento para Factorial vs Adicional en fréjol Caraota (Phaseolus
vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar complementaria de tres bioestimulantes,
Tumbaco, Pichincha. 2014.
64
INCIDENCIA DE INSECTOS PLAGAS Y ENFERMEDADES 4.8.
A los 7 días posteriores de la emergencia de las plantas se detectó la presencia de plagas, como, gusano
trozador (Agrotis sp) y de gusano alambre (Agriotes sp); en cuanto a enfermedades se detectó la
presencia de Fusarium solani; los mismos que causaron un daño importante en todo el cultivo,
disminuyendo de forma considerable el número de plantas. De manera visual se estableció el
porcentaje de infestación e infección utilizando para el efecto una escala arbitraria, Cuadros 7 y 8, que
en ambos casos se estableció como muy severa.
Para realizar el control de estos agentes patógenos se utilizó los productos de la empresa BIOINVEST,
Inversiones Biológicas a cargo del Dr. Galo Jarrín, la misma que gentilmente nos proporcionó los
agentes necesarios para combatir los daños causado.
Para el manejo y control de Agrotis sp y de Agriotes sp, bajo sugerencia del Dr. Jarrín y sus
colaboradores, se utilizó una mezcla de Bacillus thuringiensis (Anexo 7) y Beauveria bassiana
(Anexo 7) con una dosis de 4 cc/litro de agua, de cada uno. Con aplicaciones en todo el lote cada 4
días, por un período de 2 meses. De la misma, manera para el manejo y control de Fusarium solani, se
utilizó Trichoderma harzianum (Anexo 7) con una dosis de 4 cc/litro de agua cada 4 días, durante el
mismo lapso de tiempo.
Durante el período de las aplicaciones de estos Biocontroladores se observó una reducción paulatina de
plagas y enfermedades, disminuyendo significativamente la población de Agrotis sp, Agriotes sp y de
Fusarium solani, verificando de manera visual la eficiencia de estos productos.
Una vez controlados estos percances se procedió a realizar una nueva resiembra, en la cual ya no se
presentó inconvenientes, estableciéndose definitivamente el cultivo. En la semana 10 se detectó en una
sola parcela experimental la presencia de Roya (Uromyces phaseoli) la misma que fue controlada con
Kocide 2000 con una dosis de 2.5 g/litro de agua cada 8 días, logrando ser controlada; posteriormente
ya no se evidenció presencia de plagas y enfermedades.
ANÁLISIS FINANCIERO 4.9.
En el Cuadro 14, se presentan los costos de producción de una hectárea de fréjol seco (Phaseolus
vulgaris L.) en un ciclo de producción, en Tumbaco, cantón Quito, provincia de Pichincha, al realizar
la aplicación foliar complementaria de tres tipos de bioestimulantes, donde el costo de producción por
ha es de 4121.63 USD.
En el Cuadro 16, se presentan los costos de producción para una hectárea de fréjol Caraota seco,
alcanzando el menor costo el testigo absoluto con 2217.64 USD. Esto debido a que no se utilizó ningún
tipo de fertilización; mientras que, el tratamiento con mayor costo de producción es b2d3 (Newfol Plus
65
+ dosis alta 2.19 g/l) con 7296.90 USD. Valor que es mayor debido a que utilizó una concentración
mayor de bioestimulante.
Del análisis financiero, Cuadro 16, se determina que el mejor tratamiento del factorial para el cultivo
del fréjol Caraota fue el tratamiento b3d2 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis media 20 cc/l),
pues alcanzó una relación Beneficio / Costo de 8.48, lo que indica, que por cada dólar invertido y
recuperado se ganó 7.48 USD; en tanto que, la menor relación Beneficio / Costo de los tratamientos del
factorial está representado por el tratamiento b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19 g/l) con 2.76 lo que
significa que por cada dólar invertido y recuperado se ganó 1.76 USD.
Del mismo análisis financiero, Cuadro 16, se determina que, entre los tratamientos adicionales, el
testigo absoluto fue el que alcanzó la mayor relación Beneficio / Costo de toda la investigación con
8.76, lo que indica que por cada dólar invertido y recuperado se ganó 7.76 USD, del mismo modo el
testigo con fertilización base alcanzo una relación Beneficio / Costo de 7.38, lo que indica, que por
cada dólar invertido y recuperado se ganó 6.38 USD, valor que solo es superado por el mejor
tratamiento del factorial que es el tratamiento b3d2. Esto se debe a que ambos tratamientos alcanzaron
buenas producciones para este ciclo frente a los tratamientos del factorial.
Cuadro 14. Costos de producción de una hectárea de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.).
Tumbaco, Pichincha. 2013.
CONCEPTO UNIDAD CANTIDAD PRECIO
UNIT
TOTAL
USD
I. Gastos Directos
1. Insumos y materiales de campo y laboratorio
Análisis de Suelos Unidad 1 25 25
Arriendo del terreno meses 4 41,66 166,64
Arada hora 0,5 10 5
Rastrada hora 0,5 10 5
Azadones Unidad 2 4 8
Rastrillo Unidad 2 2,5 5
Estacas Unidad 176 0,2 35,2
Carpeta para etiquetas unidad 1 0,4 0,4
Semillas Kg 3 1 3
Abono orgánico Kg 700 0,25 175
Trichoderma harzianum Litros 0,5 18 9
Bacillus thuringiensis kilo 0,5 18 9
Beauveria bassiana litro 0,5 18 9
Psecilomyces lilacinus Litros 0,5 18 9
66
Cuadro 14 (Continuación)
Kocide 2000 (600 g) 1 6 6
Piola Unidad 3 3 9
Etiquetas Unidad 48 1 48
Estracto de algas Litro 2 6,2 12,4
Newfol plus Kg 2 9,9 19,8
Biol Litro 4 0,5 2
Análisis boil unidad 1 60 60
Apoya manos Unidad 1 1,5 1,5
Cámara Fotográfica Meses 8 7 56
Subtotal 678,94
2. Suministros de oficina
Fotografías Unidad 50 1 50
Impresiones Hoja 500 0,15 75
Impresión y empastado Hoja 5 7 35
Otros materiales Unidad 20 2 40
Subtotal 200
II. Otros
Sueldo tesista mensual 8 316 2528
Gastos egresado trámite
tesis 15 10 150
Teléfono, fax. Internet minutos 300 0,3 90
Visita tesis visita 1 100 100
Subtotal 2868
SUBTOTAL 3746,94
Imprevistos 10% 374,694
TOTAL
4121,63
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
Cuadro 15. Financiamiento de producción de una hectárea de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris
L.). Tumbaco, Pichincha. 2015.
FUENTE FINANCIERA MONTO
(USD)
PORCENTAJE
Estudiante 3715.994 90 %
Facultad de Ciencias Agrícolas 369.64 9 %
Bioinvest 36.00 1 %
TOTAL 4121.634 100 % Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2013
Área de Agricultura
Alternativa
67
Cuadro 16. Análisis económico de los tratamiento en fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en el estudio de la aplicación foliar
complementaria de tres bioestimulantes, Tumbaco, Pichincha. 2014.
TRATAMIENTOS DESCRIPCIÓN
b1d1 Organimix dosis baja 1.9 cc/l
b1d2 Organimix dósis media 2.5 cc/l
b1d3 Organimix dósis alta 3.1 cc/l
b2d1 Newfol Plus dósis baja 1.31 g/l
b2d2 Newfol Plus dósis media 1.75 g/l
b2d3 Newfol Plus dósis alta 2.19 g/l
b3d1 Biol Enriquecido con micronutrientes dosis baja 15 cc/l
b3d2 Biol Enriquecido con micronutrientes dosis media 20 cc/l
b3d3 Biol Enriquecido con micronutrientes dosis alta 25 cc/l
Tf Testigo base (Roca fosfórica, Estiércol, Sulpomag).
Ta Testigo absoluto Precio de venta 2.50 USD. Abril 2014
Fuente: El Autor
Año-Elaboración: 2014
TRATAMIENTOS
b1d1 b1d2 b1d3 b2d1 b2d2 b2d3 b3d1 b3d2 b3d3 Tes. Bas. Tes. Abs.
Producción t/ha 8.84 10.19 10.05 9.23 12.45 8.94 9.25 13.03 10.37 8.69 8.63
Costos Directos/USD. 2966.84 3315.77 3664.71 4144.03 4890.77 5637.52 2417.81 2567.81 2717.81 1920.77 1574.11
Costos Indirectos/USD. 991.71 1078.94 1166.18 1286.01 1472.69 1659.38 854.45 891.95 929.45 730.19 643.53
Costos de
producción/USD. 3958.55 4394.72 4830.89 5430.04 6363.47 7296.90 3272.27 3459.77 3647.27 2650.97 2217.64
Ingreso X Venta /USD 19895.63 22933.13 22614.19 20761.31 28005.75 20123.44 20822.06 29327.06 23343.19 19561.50 19424.81
Ingreso neto /USD 15937.08 18538.41 17783.30 15331.27 21642.28 12826.54 17549.79 25867.29 19695.92 16910.53 17207.17
Relación B / C 5.03 5.22 4.68 3.82 4.40 2.76 6.36 8.48 6.40 7.38 8.76
68
5. CONCLUSIONES
El bioestimulante que tuvo mayor respuesta a la fertilización foliar complementaria en la
producción del cultivo de fréjol Caraota en Tumbaco, Pichincha fue el Biol enriquecido con
micronutrientes para las siguientes variables: Altura de planta con 9.95 cm/planta, Número de
vainas por planta con 40.10 vainas/planta, peso de 100 granos con 21.86 g/100 granos y
Rendimiento con 10.89 t/ha; mientras que, Newfol Plus fue el bioestimulante que mejor
resultado obtuvo en: Tamaño de la vaina con 9.56 cm/vaina, Número de granos por vaina con
5.63 granos/vaina.
La Dosis que alcanzó mayor respuesta fue la Dosis media para las siguientes variables:
Número de vainas por planta con 43.50 vainas/planta, Peso de 100 granos 21.98 g/100 granos
y Rendimiento con 11.89 t/ha; en tanto que, la Dosis alta resultó mayor para las variables de
Tamaño de la vaina con 9.62 cm/vaina y Número de granos por vaina con 5.75 granos vaina.
La mejor respuesta para Altura de planta con 9.75 cm/planta se obtuvo con la Dosis baja.
Desde el punto de vista económico, el mayor Beneficio / Costo del factorial fue alcanzado por
la interacción b3d2 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis media 20 cc/l) con 8.48, en
segunda instancia se ubica el tratamiento b3d3 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis
alta 25 cc/l) con 6.40; mientras que, el testigo Absoluto y el testigo Base alcanzaron relaciones
Beneficio / Costo muy buenas para este ciclo de producción con 8.76 y 7.38 respectivamente.
La semilla obtenida del Área de Agricultura Alternativa alcanzó un porcentaje de germinación
de 94.75, lo que la convierte en una semilla de calidad.
La mejor interacción que se encontró fue b3d2 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis
media 20 cc/litro) para las variables de Peso de 100 granos con 22.93 g/100 granos y
Rendimiento con13.03 t/ha; mientras que, b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19 g/litro) obtuvo
la mejor respuesta para las variables de Tamaño de la vaina con 9.70 cm/vaina y Número de
granos con 5.98 granos/vaina. La interacción b3d1 (Biol Enriquecido con micronutrientes +
dosis baja 15cc/l) obtuvo la mejor respuesta para la variable Altura de planta con 10.84
cm/planta y b2d2 (Newfol Plus + dosis media 1.75 g/litro) obtuvo la mejor respuesta para la
variable Número de vainas /planta con 45.68 vainas/planta.
69
6. RECOMENDACIONES
Utilizar Biol enriquecido con micronutrientes en la fertilización foliar complementaria en el
cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.), en las condiciones agroecológicas de
Tumbaco, Pichincha y sectores con características similares al área del presente ensayo.
Utilizar también Newfol plus en la fertilización foliar complementaria en el cultivo de fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.), en las condiciones agroecológicas de Tumbaco, Pichincha y
sectores con características similares al área del presente ensayo, ya que es de fácil acceso y es
un producto aceptado por la agricultura orgánica.
70
7. RESUMEN
El fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) es una leguminosa de grano originaria de Centroamérica, muy
consumida y apetecida en paises latinoamericanos, Europa, Estados Unidos y Japón; conocida también
como “Carne de Pobre”, es considerada una de las once especies que alimentan al mundo. Con un alto
porcentaje de proteinas (22%) y calorias (390 cal/100 g) es un cultivo de importancia económica y
social en nuestro país, por lo que ha causado interés a entidades, asociaciones e instituciones que han
buscado las circunstancias para el impulso y desarrollo de este cultivo.
Buscando este impulso, el uso de la fertilización foliar complementaria con bioestimulantes se
convierte en una excelente opción para mejorar la producción de esta legumbre sin influir
negativamente en el Ambiente y la salud humana; al ser ricos en hormonas, nitrógeno amoniacal,
vitaminas y aminoácidos que favorecen el metabolismo del vegetal, varios investigadores han probado
su eficiencia, no solo en fréjol (Phaseolus vulgaris L.), sino en muchos otros cultivos, demostrando el
beneficio del uso de estas sustancias.
Por lo expuesto anteriormente se propuso realizar el presente ensayo, para lo cual se planteó los
siguientes objetivos: Estudiar la respuesta del cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) a la
aplicación foliar complementaria de tres Bioestimulantes en las condiciones agroecológicas de
Tumbaco, Pichincha. Determinar cuál de los bioestimulantes aplicados permite mejorar la producción
de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Determinar cuál de las dosis aplicadas permite mejorar la
producción de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.). Realizar los costos de producción de los
tratamientos en estudio y determinar la relación Beneficio/Costo.
El ensayo se realizó en el Campo Docente Experimental la Tola “CADET” de la Facultad de Ciencia
Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador. Ubicado en la parroquia de Tumbaco, cantón Quito,
provincia de Pichincha a una altitud de 2460 m.s.n.m. Los factores en estudio fueron: Tipos de
Bioestimulantes, b1 (Organic Mix), b2 (Newfol Plus) y b3 (Biol enriquecido con microelementos), y
en tres dosis, para Organic Mix dosis baja 1.9 cc/litro, dosis media 2.5 cc/litro, dosis alta 3.1 cc/litro;
para Newfol Plus dosis baja 1.31 g/litro, dosis media 1.75 g/litro, dosis alta 2.19 g/litro y para Biol
enriquecido con microelementos dosis baja 15 cc/litro, dosis media 20 cc/litro, dosis alta 25 cc/litro.
Además se incorporaron dos testigos adicionales: (Tfb) testigo fertilización base y (To) testigo
absoluto.
La unidad experimental estuvo constituida por una parcela de 4.00 m de largo por 2.50 m de ancho
(10.00 m2), sobre la que se dispuso 4 surcos espaciados entre sí 0.50 m, sembrando tres semillas por
sitio, separados a una distancia de 0.25 m. La unidad experimental neta estuvo formada por una parcela
de 2.00 m de largo por 1.00 m de ancho (2.00 m2), se evaluaron dos surcos con un total de 54 plantas.
Se utilizó un diseño experimental de Bloques Completos al Azar, en un arreglo factorial de 3x3+2 con
71
4 repeticiones. Las variables evaluadas fueron: Germinación de plantas, Altura de planta, Número de
vainas por planta, Tamaño de la vaina, Número de granos por vaina, Peso de 100 granos, Rendimiento,
Incidencia de insectos plaga y enfermedades y Análisis financiero.
Primero se procedió a seleccionar un lote plano con influencia de sombra y disponibilidad de agua,
posteriormente se hizo el análisis de suelo para determinar la cantidad de fertilización base (estiércol
bovino descompuesto, roca fosfórica y sulpomag) para incorporarlo un mes antes de la siembra.
Después se procedió a la instalación de las repeticiones y de las parcelas experimentales de forma
aleatoria en el terreno, se incorporó la fertilización base y se procedió a realizar los surcos. La siembra
se la realizó colocando tres semillas por golpe.
La elaboración del Biol enriquecido con micronutrientes se lo realizó con cuatro meses de anterioridad,
utilizando un tanque plástico con capacidad para 200 litros, con tapa hermética, válvula para escape de
gases y una trampa de agua; esto fue sellado por 60 días, se filtró la parte líquida y se hizo un análisis
de biol con una muestra de 500 cc. Obtenido el análisis se procedió a enriquecerlo, para lo cual se
incorporó a la mezcla 80 gramos de Carbonato de Calcio, 80 gramos de Sulpomag, 25 gramos de
Sulfato de Hierro, 16 gramos de Óxido de Zinc y 8 gramos de Sulfato de Cobre, se volvió a cerrar por
un período de 2 meses para que los compuestos se quelaticen, terminado este lapso se pudo usar el Biol
para el desarrollo de la investigación.
Con la semilla obtenida del área de Agricultura Alternativa realizamos cuatro pruebas de germinación
en laboratorio, obteniendo un promedio de 94.75 %. Se procedió a la elaboración de las parcelas
experimentales, levantamiento de surcos y siembra de semillas a una distancia de 0.25 m entre sitio y
0.50 metros entre surco. Se procedió a realizar la aplicación de los tratamientos, usando para ello una
bomba de mochila, cada 8 días realizando una total de 12 aplicaciones, la primera aplicación fue
cuando se presentó en el cultivo la primera hoja trifoliada y la última fue cuando el cultivo se acercaba
a la madurez fisiológica.
En el manejo y control de plagas y enfermedades, se usaron productos de la Empresa BIOINVEST,
Inversiones Biológicas a cargo del Dr. Galo Jarrín. En el ensayo de presentó gusano trozador (Agrotis
sp) y de gusano alambre (Agriotes sp), para su control de utilizó una mezcla de Bacillus thuringiensis
y Beauveria bassiana; con una dosis de 4 cc/litro de agua, de cada uno. Con aplicaciones en todo el
lote cada 4 días, por un período de 2 meses.
Se detectó la presencia de Fusarium solani en el cultivo, para su manejo y control se utilizó
Trichoderma harzianum con una dosis de 4 cc/litro de agua cada 4 días, durante el mismo lapso de
tiempo. La presencia de Roya (Uromyces phaseoli) se detectó a la décima semana, la misma que fue
controlada con Kocide 2000 con una dosis de 2.5 g/litro de agua cada 8 días.
72
Al realizar el análisis estadístico los principales resultados fueron:
El bioestimulante que tuvo la mejor respuesta a la fertilización foliar complementaria en la producción
de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en Tumbaco, Pichincha fue el Biol enriquecido con
micronutrientes para las siguientes variables: Altura de planta con 9.95 cm/planta, Número de vainas
por planta con 40.10 vainas/planta, peso de 100 granos con 21.86 g/100 granos y Rendimiento con
10.89 t/ha; mientras que, Newfol Plus fue el bioestimulante que mejor resultado obtuvo en: Tamaño de
la vaina con 9.56 cm/vaina, Número de granos por vaina con 5.63 granos/vaina.
La Dosis que tuvo la mejor respuesta a la fertilización foliar complementaria en la producción de fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) en Tumbaco, Pichincha fue la Dosis media para las siguientes
variables: Número de vainas por planta con 43.50 vainas/planta, Peso de 100 granos 21.98 g/100
granos y Rendimiento con 11.89 t/ha; en tanto que, la Dosis alta resultó mayor para las variables de
Tamaño de la vaina con 9.62 cm/vaina y Número de granos por vaina con 5.75 granos vaina. La mejor
respuesta para Altura de planta con 9.75 cm/planta se obtuvo con la Dosis baja.
La mejor interacción encontrada en la realización de este ensayo fue b3d2 (Biol enriquecido con
micronutrientes + dosis media 20 cc/litro) para las variables de Peso de 100 granos con 22.93 g/100
granos y Rendimiento con13.03 t/ha; mientras que, b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19 g/litro) obtuvo
la mejor respuesta para las variables de Tamaño de la vaina con 9.70 cm/vaina y Número de granos con
5.98 granos/vaina. La interacción b3d1 (Biol Enriquecido con micronutrientes + dosis baja 15cc/l)
obtuvo la mejor respuesta para la variable Altura de planta con 10.84 cm/planta y b2d2 (Newfol Plus +
dosis media 1.75 g/litro) obtuvo la mejor respuesta para la variable Número de vainas /planta con 45.68
vainas/planta.
En cuanto al análisis financiero se determinó que la mayor relación de Beneficio / Costo del factorial
fue alcanzado por el tratamiento b3d2 (Biol enriquecido con micronutrientes + dosis media 20 cc/l)
con 8.48 y la menor relación Beneficio / Costo fue del tratamiento b2d3 (Newfol Plus + dosis alta 2.19
g/l) con 2.76. Entre los tratamientos adicionales, el testigo absoluto fue el que alcanzó la mayor
relación Beneficio / Costo de toda la investigación con 8.76.
Las recomendaciones que se establecieron fueron:
Utilizar el Biol enriquecido con micronutrientes en la fertilización foliar complementaria en el
cultivo de fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.), en las condiciones agroecológicas de
Tumbaco, Pichincha y sectores con características similares al área del presente ensayo.
Utilizar también Newfol plus en la fertilización foliar complementaria en el cultivo de fréjol
Caraota (Phaseolus vulgaris L.), en las condiciones agroecológicas de Tumbaco, Pichincha y
73
sectores con características similares al área del presente ensayo, ya que es de fácil acceso y es
un producto aceptado por la agricultura orgánica.
74
8. SUMMARY
The Caraota bean (Phaseolus vulgaris L.) is a legume of grain native to Central America, widely
consumed and appetizing in Latin American countries, Europe, USA and Japan; also known as "meat
of poor" is considered one of the eleven species that feed the world. With a high percentage of protein
(22%) and calories (390 cal / 100 g) is a growing economic and social importance in our country,
which has caused interest entities, associations and institutions that have sought the circumstances for
the promotion and development of this crop.
Seeking for this impulse, the use of the fertilization to foliate complementary with bioestimulantes
turns into an excellent option to improve the production of this legume without influencing negatively
the Environment and human health; to the being rich in hormones, ammonia nitrogen, vitamins and
amino acids that favor the metabolism of the vegetable, several investigators have proved his
efficiency, not only in bean (Phaseolus vulgaris L.), but in many other crops, demonstrating the benefit
of the use of these substances.
For the exposed thing previously it proposed to realize the present test, for which appeared the
following aims: Studies the response of the crop of bean Caraota(Phaseolus vulgaris L.) to the
application to foliate complementary of three Bioestimulantes in the conditions agroecológicas of
Tumbaco, Pichincha. To determine which of the applied bioestimulantes allows to improve the
production of bean Caraota (Phaseolus vulgaris L.). To determine which of the applied doses it allows
to improve the production of bean Caraota (Phaseolus vulgaris L.). To realize the costs of production
of the treatments in study and determines the relation Benefit / cost.
The assay was realized in the Educational Experimental Field the Tola "CADET" of the Faculty of
Science Agriculturalists of the Central University of the Ecuador. Located in Tumbaco's parish, canton
Quito, province of Bargain to an altitude of 2460 m.s.n.m. The factors in study were: Types of
Bioestimulantes, b1 (Organic Mix), b2 (Newfol Plus) and b3 (Biol enriched with microelements), and
in three doses, for Organic Mix dose lowers 1.9 cc/litro, dose happens 2.5 cc/litro, high dose 3.1
cc/litro; for Newfol Plus dose lowers 1.31 g/litro, dose happens 1.75 g/litro, high dose 2.19 g/litro and
for Biol enriched with microelements dose lowers 15 cc/litro, dose happens 20 cc/litro, high dose 25
cc/litro. In addition two additional witnesses joined: (Tfb) witness fertilization bases and (To) absolute
witness.
The experimental unit was constituted by a plot of 4.00 m of length by 2.50 m of width (10.00 m2), on
that one arranged 4 ruts spread between yes 0.50 m, sowing three seeds for site, separated to a distance
of 0.25 m. The experimental clear unit was formed by a plot of 2.00 m of length by 1.00 m of width
(2.00 m2), two ruts were evaluated by a total of 54 plants. There was in use an experimental design of
Complete Blocks at random, in an arrangement factorial of 3x3+2 with 4 repetitions. The evaluated
variables were: Germination of plants, Height of plant, Number of pods for plant, Size of the pod,
75
Number of grains for pod, Weight of 100 grains, Performance, Incident of insects infects and diseases
and financial Analysis.
First one proceeded to select a flat lot with influence of shade and water availability, later the analysis
of soil was done to know it was determining the quantity of fertilization base (bovine rotten manure,
phosphoric rock and sulpomag) to incorporate it one month before the sowing. Later one proceeded to
the installation of the repetitions and of the experimental plots of random form in the area, the
fertilization joined base and one proceeded to realize the ruts. Seeding was performed by placing three
seeds for blow.
The production of the Biol enriched with micronutrients did it to him with four months of precedence,
using a plastic tank with capacity for 200 liters, with hermetic lid, valve for gas leak and a water trap;
this was sealed for 60 days, the liquid part filtered and an analysis was done of biol by a sample of 500
cc. Obtained one proceeded the analysis to enrich it, for which joined to the mixture 80 grams of
Carbonate of Calcium, 80 grams of Sulpomag, 25 grams of Sulfate of Iron, 16 grams of Oxide of Zinc
and 8 grams of Sulfate of Copper, returned to close in a period of 2 months in order that the
compounds quelaticen, finished this space could use the Biol for the development of the investigation.
With the seed obtained of the area of Alternative Agriculture four tests of germination were realized in
laboratory, obtaining an average of 94.75 %, determining that is a quality seed. One proceeded to the
production of the experimental plots, raising of ruts and sowing seed to a distance of 0.25 m between
site and 0.50 meters between grooves. One proceeded to realize the application of the treatments, using
for it a bomb of rucksack, every 8 days realizing the total one of 12 applications, the first application
was when in the crop presented one the first leaf trifoliada and the last one was when the crop was
approaching the physiological maturity.
In the managing and control of plagues and diseases, there were used products of the Company
BIOINVEST, Biological Investments at the expense of the Dr. Galo Jarrín. In the test of he presented
worm trozador (Agrotis sp) and of worm wire (Agriotes sp), for his control of their used a mixture of
Bacillus thuringiensis and Beauveria bassiana; with a dose of 4 cc/litro of water, of each one. With
applications in the whole lot every 4 days, in a period of 2 months.
The presence of Fusarium solani was detected in the crop, for his managing and control Trichoderma
harzianum was used at a dose of 4 cc/litro of water every 4 days, during the same space of time. Roya's
presence (Uromyces phaseoli) was detected to the tenth week, the same one that was controlled by
Kocide 2000 by a dose of 2.5 g/litro of water every 8 days.
When performing statistical analysis the main results were:
The bioestimulante that had the best response to the fertilization foliate complementary in the
production of bean French bean (Phaseolus vulgaris L.) in Tumbaco, Pichincha was the Biol enriched
76
with micronutrients for the following variables: Height of plant with 9.95 cm / plants, Number of pods
for plant with 40.10 pods / plants, weight of 100 grains with 21.86 g/100 grains and Performance with
10.89 t/ha; whereas, Newfol Plus was the bioestimulante that better result obtained in: Size of the pod
with 9.56 cm / pods, Number of grains for pod with 5.63 grains / pods.
The Dose that had the best response to the fertilization foliate complementary in the production of bean
Caraota (Phaseolus vulgaris L.) in Tumbaco, Pichincha was the average Dose for the following
variables: Number of pods for plant with 43.50 pods / plants, Weight of 100 grains 21.98 g/100 grains
and Performance with 11.89 t/ha; while, the high Dose turned out to be a major for the variables of:
Size of the pod with 9.62 cm / pods and Number of grains for pod with 5.75 grains /pod. The best
response for Height of plant with 9.75 cm / plants was obtained by the low Dose.
The best interaction found in the accomplishment of this test was b3d2 (Biol enriched with
micronutrients + dose average 20 cc/litro) for the variables of Weight of 100 grains with 22.93 g/100
grains and Performance con 13.03 t/ha; whereas, b2d3 (Newfol Plus + high dose 2.19 g/litro) it
obtained the best response for the variables of Size of the pod with 9.70 cm / pods and Number of
grains with 5.98 grains / pods. The interaction b3d1 (Biol Enriquecido with micronutrients + dose goes
down 15cc/l) obtained the best response for the variable Height of plant with 10.84 cm / plants and
b2d2 (Newfol Plus + dose happens 1.75 g/litro) the best response obtained for variable Number of pods
/ plant with 45.68 pods / plants.
In the financial analysis it was determined that the greatest benefit / Cost factor was achieved by
treatment b3d2 (Biol enriched with micronutrients + mean dose 20 ml / l) with 8.48 and the lowest cost
/ benefit ratio was treatment b2d3 (NewFol Plus + high dose 2.19 g / l) with 2.76. Additional
treatments, absolute control was the one who reached the highest benefit / cost ratio of all research with
8.76.
The recommendations that were established were:
To use the Biol enriched with micronutrients in the fertilization to foliate complementary in the
crop of bean Caraota (Phaseolus vulgaris L.), in the conditions agroecological of Tumbaco,
Pichincha and sectors with characteristics similar to the area of the present essay.
Use also NewFol Plus in the fertilization to foliate complementary in the crop of bean Caraota
(Phaseolus vulgaris L.), in the conditions agroecological of Tumbaco, Pichincha and sectors
with characteristics similar to the area of the present essay, since it is of easy access and is a
product accepted by the organic agriculture.
77
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10. ANEXOS
Anexo 1. Disposición de tratamientos en la Localidad de Tumbaco, Pichincha
N Bordes
II III I IV
4 m 0.6 m 2 m
14.3m
Bordes
T10
T1
T3
T10
T2
T5
T4
T8
T6
T3
T2
T7
T10
T5
T8
T6
T1
T9
T6
T4
T9
T7 T1
T7
T2
T11
T1
T9
T4
T5
T3
T11
T8
T8
T2
T7
b2
d3
f1
b3
d2
b2
d3
b3
d3
b1
d3 T5
T9
T10 b1
d2
b2
d1
T4
T11
T6
T11
T3
93
Anexo 2. Contenidos nutrimentales de Organic Mix (Ficha técnica).
Organic Mix: Bioactivador usado al suelo y foliar. Presentación de 500 cc. Categoría
toxicológica IV.
Composición:
Ácidos húmicos…………………………………58.2 %.
Algas marinas……………………………………41.8 %.
Ingredientes derivados de Ascophylium nodosum, leonardita
Aviso al comprador:
El fabricante garantiza la composición y calidad del producto y no0 se responsabiliza
por el uso inadecuado del mismo.
Como actúa:
Aumenta la actividad microbiana del suelo y de la planta.
Mayor capacidad de intercambio catiónico (C. I. C).
Mejora la estructura del suelo.
Incentiva la producción de raíces.
Desestresante natural y atrapa los nutrientes que están en exceso para que la planta los
tome del suelo en forma equilibrada.
Uso:
Agítese antes de usar.
Vía foliar o al suelo.
No aplicar en horas de fuerte sol y altas temperaturas.
Aplicar en todo tipo de cultivos (hortalizas, frutales, pastos).
Frecuencia de aplicación:
Según el estado del cultivo y sus necesidades.
Cultivo Dosis
Por 200 lt-H2O Observaciones.
Manzana, pera, durazno, mango,
tomate de árbol, piña, banano, palma,
palmito, mora, soya, fréjol, naranjilla,
fresa, papas, lechuga, zanahoria, col,
brócoli, tomate riñón, pimiento,
papaya, pepino, coliflor, cebolla y ajo.
250 – 500 cc. Aplicación foliar.
Ornamentales:
Rosas, Crisantemos, Claveles, Gypso,
Leatris
250 – 500 cc. Aplicación foliar.
Riego por goteo y aspersión. 2.5 – 3.0 lt/ha Aplicación al suelo.
Fuente: Ficha técnica del producto
Año-Elaboración: 2013
94
Compatibilidad:
Con la mayoría de productos, insecticidas, fungicidas, bactericidas, nematicidas, etc.
Excepto con productos de reacción alcalina.
Precauciones:
No comer, no beber, no fumar durante la fumigación.
Utilizar traje de protección, guantes y mascarilla.
Después de fumigar bañarse con abundante agua y jabón.
Manténgase fuera del alcance de los niños.
Primeros auxilios:
En caso de intoxicación, sacar al paciente a un área ventilada.
No incentivar al vómito.
Llevar al centro de salud más cercano.
95
Anexo 3. Contenidos nutrimentales de Newfol Plus (Ficha técnica).
Fertilizante foliar Bioestimulante de alto rendimiento NEWFOL-Plus aumenta la resistencia
natural de la planta y corrige síntomas causados por las condiciones adversas.
COMPOSICIÓN: Es una formulación especialmente diseñada para uso foliar y radicular
compuesto por elementos nutritivos como:
Nitrógeno orgánico .............................................................9.80 %
Magnesio (Mg) ...................................................................4.00 %
Boro (B) ..............................................................................2.00 %
Hierro (Fe) ..........................................................................1.00 %
Zinc (Zn) .............................................................................1.00 %
Cobalto/Molibdeno (Co) (Mo).............................................0.03 %
Azufre (S) ...........................................................................2.60 %
Carbono orgánico.............................................................18.32 %
Aminoácidos libres de hidrólisis enzimática.....................61.25 %
Fenilalanina, Histidina, Arginina, Valina, Ácido aspártico, Treonina, Serina, Tirosina, Ácido
glutámico, Prolina, Glicina, Alanina, Hidroxiprolina, Triptófano, Cisteína, Lisina, Isoleucina,
Metionina, Leucina.
ORIGEN: NEWFOL-Plus: proviene de la hidrólisis enzimática de órganos y tejidos
animales que tienen como base principal los aminoácidos (todos ellos de tipo L), nucleótidos,
péptidos y polinucleótidos de bajo peso molecular y principios inmediatos.
FUNCIÓN DE LOS AMINOÁCIDOS: Los aminoácidos son los componentes básicos de las
proteínas. Éstos constituyen con los hidratos de carbono y lipoides, el tercer grupo de
sustancias fundamentales de los organismos tanto animales como vegetales.
Estos aminoácidos que forman NEWFOL-Plus presentan una acción de tipo bioestimulante o
biocatalizadora en los procesos fisiológicos de los vegetales.
¿CÓMO TRABAJA NEWFOL-PLUS?:
1. Ahorro de energía. Facilita la utilización de nitrógeno que normalmente necesita de una
serie de pasos y transformaciones para que éste pueda utilizarse en los procesos vegetales,
NEWFOL-Plus permite la disponibilidad inmediata de los aminoácidos para las diferentes
funciones que cumplen.
2. Eleva la resistencia de la planta a condiciones adversas, como el estrés por la falta de agua,
heladas, salinidad, toxicidad por tratamientos fitosanitarios, ataques de plagas y enfermedades,
porque al cultivo le ayuda a formar un mayor fondo de reservas.
3. Acción bioestimulante y/u hormonal. Los aminoácidos influyen en la elaboración de
algunas sustancias de acción bioestimulante u hormonal como es el caso de la metionina, que
es el primer eslabón en la síntesis del etileno (sustancia que favorece la maduración de los
frutos).
4. Trabajo específico de cada aminoácido. Por ejemplo la metionina activa la formación de
pectinas de las paredes celulares.
También los aminoácidos inducen la apertura estomática favoreciendo la fotosíntesis y
transpiración.
96
BENEFICIOS DEL NEWFOL-Plus: - Estimulación del crecimiento equilibrado en el aumento de producción.
- Anticipación de la cosecha, acentuándose la precocidad del cultivo.
- Mayor calidad del fruto, debido a una mayor uniformidad y aumento del calibre, así como
una elevación de la calidad gustativa.
- Aumento de las reservas de nitrógeno, produciendo una mayor eficacia.
- Aumento del poder de recuperación de la planta una vez superados los momentos
desfavorables.
- En cultivos con suelos muy alcalinos mejora el intercambio catiónico, lo que ayuda a mejorar
la asimilación de los nutrientes.
- Mejora los procesos de floración, polinización, fecundación y frutificación, notandose así la
acción de las sustancias bioestimulantes y/o fitohormonas del NEWFOL-Plus.
OTRAS CARACTERÍSTICAS DE NEWFOL-Plus:
1. Aporta Nitrógeno, Magnesio, Hierro, Boro, Azufre, Zinc, Molibdeno, Cobalto y
Aminoácidos.
2. Aporte balanceado de micronutrientes en un solo producto.
3. Mejora la absorción de los nutrientes disponibles en el suelo.
ADVERTENCIA: En caso de derrame recoger el producto y eliminarlo en un sitio destinado
por las autoridades locales para este fin.
MANEJO Y DISPOSICIÓN DE DESECHOS Y ENVASES: No disponer con residuos
municipales. Después de usar el contenido, enjuagar tres veces este envase y verter la solución
en la mezcla de aplicación, inutilizar el envase triturándolo o perforándolo y depositarlo en un
lugar destinado por las autoridades locales para este fin.
Mantenga el producto en sus envases originales en un lugar seguro, seco y fresco, FUERA
DEL ALCANCE DE NIÑOS, PERSONAS IRRESPONSABLES Y ANIMALES
DOMÉSTICOS.
No transporte ni almacene con productos de uso humano o pecuario. Evite almacenar a
temperaturas por encima de 35°C.
NINGÚN ENVASE QUE HAYA CONTENIDO PLAGUICIDAS DEBE UTILIZARSE
PARA CONTENER ALIMENTOS O AGUA PARA CONSUMO HUMANO O ANIMAL.
PRESENTACIONES:
Funda x 175 g.
Funda x 350 g.
REGISTRO MAGAP: 03187895.
Fabricante: MARKETING ARM. INC. USA.
Distribuido por: ECUAQUÍMICA.
PRODUCTO ORGÁNICO CERTIFICADO POR: BCS ÖKO
GARANTIE. QuickAgro
97
RECOMENDACIONES DEL USO DE NEWFOL-Plus:
Cultivo Momento de aplicación Dosis
g/ha
Observaciones
Arroz Antes del macollamiento y al inicio de
espigamiento.
350 Aplicar mínimo 2
veces por ciclo.
Hortalizas En semilleros, 15 días después del
trasplante y antes de la floración.
300 - 500 Realizar 2-3
aplicaciones a lo
largo del ciclo.
Papa Después de 45 días de la siembra y
durante la floración.
350 - 500 Aplicar por lo
menos 4 veces
durante el ciclo.
Frutales Al inicio de inducción de botones
florales.
Después de la fructificación total.
Antes de la cosecha de madurez
comercial.
350 - 700 Es conveniente
agregarlo con la
fertilización normal,
para la mejor
absorción de los
mismos.
Banano Cualquier etapa del cultivo. 300 - 500 Aplicar cada 1-2
meses.
Ornament
ales
Cualquier etapa del cultivo. 0.4 g/l Puede mezclarse con
las aplicaciones de
insecticidas y
fungicidas.
Soya A los 30 y 60 días de germinación 350 Dos aplicaciones
ciclo vegetativo Fuente: Ficha técnica del producto
Año-Elaboración: 2013
98
Anexo 4. Análisis del Biol. INIAP, y tabla de elementos para enriquecer el biol.
COMUESTOS INCORPORADOS AL BIOL (AL TOTAL) PARA
ENRIQUECERLO.
COMPUESTO CANTIDAD
Carbonato de Calcio 80 g
Sulpomag 80 g
Sulfato de Hierro 25 g
Óxido de Zinc 16 g
Sulfato de Cobre 8 g
99
Anexo 5. Análisis de Suelo. Facultad de Ciencia Agrícolas.
100
101
Anexo 6. Análisis de Estiércol. Facultad de Ciencia Agrícolas.
102
CÁLCULO PARA LA INCORPORACIÓN DE FERTILIZACIÓN BASE A LAS PARCELAS EXPERIMENTALES
Requerimientos del fréjol Caroata. Estiércol
N= 100 kg/ha 7.21 Kg N = 20.6 Kg
P= 100 kg/ha 0.150 Kg P = 0.44 Kg 1000 Kg
K= 100 kg/ha 0.570 Kg K = 1.64 Kg
100 Kg Estiércol 20.6 Kg N
35 Kg = 7.21 Kg N
100 Kg Estiércol 0.44 Kg P
35 Kg = 0.150 Kg P
100 Kg Estiércol 1.64 Kg K
35 Kg = 0.57 Kg K
NITRÓGENO
1000 Kg 7.21 Kg N
X 100 Kg
X = 13869 Kg 13.8 t/ha
FOSFORO
1000 Kg 0.150 Kg P
13869 = 2.08 Kg P
100.00 – 2.08 = 97.92
Roca Fosfórica: 33 % 100
100 Kg 16.5 Kg P
X 97.2 Kg
X = 589 Kg de Roca fosfórica
POTASIO
1000 Kg 0.57 Kg K
13869 Kg = 7.90 Kg K
Sulpomag : 60.00 – 7.90 = 52.10
100 Kg 15 Kg
X 52.10
X = 347.33 Kg Sulpomag.
103
RESPUESTA
ESTIÉRCOL: 1389 Kg.
ROCA FOSFÓRICA: 589 Kg.
SULPOMAG: 347.33 Kg.
10000 m2 13869 Kg de estiércol
10 m2 X = 13.87 Kg * 40 = 554.76 Kg de estiércol.
10000 m2 589 Kg de Roca fosfórica
10 m2 X = 0.600 Kg * 40 = 23.56 Kg de Roca fosfórica.
10000 m2 350 Kg de Sulpomag
10 m2 X = 0.350Kg * 40 = 13.90 Kg de Sulpomag.
RELACIÓN C/N
C/N = % C
% N 2.06
C = % MO/ 1.724 = 41.14 / 1.724 = 23.86
23.86 / 2.06 = 11.58
C / N = 12 /1
104
Anexo 7. Ficha Técnica. Trichoderma harzianum, Beauveria bassiana y Bacillus
thuringiensis. Bioinvest.
105
Anexo 8. Principales plagas del cultivo de Fréjol Caraota (Phaseolus vulgaris L.) y su
control biológico.
NOMBRE VULGAR NOMBRE
CIENTÍFICO
DAÑO QUE
OCASIONAN
CONTROL
1. Insectos
Gusanos trozadores Agrotis deprivata, W/
Agrotis ipsilon,H
Cortan los tallos de las
plántulas,
Roturar el campo con 30 días de
anticipación a la siembra, para
eliminar larvas, huevos y adultos.
Utilizar trampas de luz.
Asperjar el follaje con Bacillus
thuringiensis o extracto de Neem
Gusanos cortadores o
defoliadores
Copitarsia sp.,
Spodoptera sp.
Peridroma saucia, H.
Cortan hojas, tallos y
panojas
Idem
Gusano pegador de las hojas Scrobipalpula sp Pegan las hojas, mastican
la epidermis del envés
Idem
Coleoptero cortador Naupactus sp. Cortan las hojas Roturar el campo, etc.
Asperjar con Beauveria bassiana
Salton de hojas Paranatus yusti. Y Ninfas y adultos
producen picaduras,
encrespan y secan las
hojas
Roturar el campo, etc.
Asperjar el follaje con jabones
insecticidas, Neem o Verticillum
lecaníi
Chinche del follaje Proba salli. Stall Pican las hojas Roturar el campo, etc.
Asperjar con Metharrizium
anisopliae
Pulgones Aphididae sp. Pican las hojas y
succionan la savia
Roturar el campo, etc.
Asperjar el follaje con jabones
insecticidas, Neem o Verticillum
lecaníi
Minador de las hojas Liriomyza sp. Producen minas en las
hojas
Roturación del campo, etc.
Asperjar con jabones insecticidas,
Neem
2. Enfermedades
Mildiú o cenicilla Peronospora effusa Provocan defoliación
intensa
Aplicaciones foliares con Hidróxido
de cobre
Cercosporiosis Cercospora sp. Provocan defoliación
intensa
Aplicaciones foliares con de
Hidróxido de cobre
Mancha ojival Phoma exigua Manchan los tallos Idem
Mal del tallo Damping. off Estrangulan el cuello de
las plántulas
Utilizar semilla seleccionada.
Roturación anticipada del campo/
Aplicar al suelo Trichoderma sp.
Fuente: Suquilanda, M. 2013. Recomendación para control de plagas y enfermedades en fréjol.
106
Anexo 9. Tablas de promedios del libro de campo.
1. Porcentaje de pruebas de germinación. Libro de campo.
Prueba de germinación %
Primera 95.00
Segunda 98.00
Tercera 92.00
Cuarta 94.00
Promedio Total 94.75
2. Promedio de altura de planta (diferencia) a los 30 y 60 días. Datos del Libro de
campo.
Promedio de altura de planta(diferencia) a los 30 y 60 días
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 9.80 9.25 8.45 8.26 35.76 8.94
2 b1d2 10.00 8.85 8.69 9.85 37.39 9.35
3 b1d3 8.85 10.10 8.00 8.15 35.10 8.78
4 b2d1 8.35 9.75 8.90 10.90 37.90 9.48
5 b2d2 9.00 6.80 6.70 10.65 33.15 8.29
6 b2d3 9.20 8.05 8.25 10.25 35.75 8.94
7 b3d1 10.90 11.00 9.74 11.70 43.34 10.84
8 b3d2 8.20 8.20 8.35 10.90 35.65 8.91
9 b3d3 9.20 9.65 11.45 10.05 40.35 10.09
10 tes. +base 8.60 8.60 8.40 9.05 34.65 8.66
11 tes.absolut. 9.20 7.30 7.50 7.45 31.45 7.86
∑Repeticiones 101.30 97.55 94.43 107.21 400.49 9.10
3. Promedio de Número de vainas por planta. Datos del Libro de campo.
Número de vainas por planta
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 33.33 32.00 36.70 37.60 139.63 34.91
2 b1d2 38.20 35.60 40.30 47.60 161.70 40.43
3 b1d3 36.70 33.20 34.10 34.00 138.00 34.50
4 b2d1 31.20 38.60 36.80 39.70 146.30 36.58
5 b2d2 47.30 47.40 46.90 41.10 182.70 45.68
6 b2d3 38.90 30.20 34.00 35.30 138.40 34.60
7 b3d1 32.10 33.60 37.80 37.00 140.50 35.13
8 b3d2 40.20 47.70 40.30 49.40 177.60 44.40
9 b3d3 39.00 44.80 38.80 40.50 163.10 40.78
10 tes. +base 34.80 36.00 42.30 38.10 151.20 37.80
11 tes.absolut. 35.00 35.00 40.40 41.10 151.50 37.88
∑Repeticiones 406.73 414.10 428.40 441.40 1690.63 38.42
107
4. Promedio de Tamaño de vaina. Datos del Libro de campo.
Tamaño de la vaina
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 9.40 9.70 9.80 9.30 38.20 9.55
2 b1d2 9.25 9.20 9.35 9.10 36.90 9.23
3 b1d3 10.05 9.35 9.60 9.40 38.40 9.60
4 b2d1 9.20 9.85 9.80 9.20 38.05 9.51
5 b2d2 9.35 9.50 9.65 9.35 37.85 9.46
6 b2d3 9.90 9.35 9.65 9.90 38.80 9.70
7 b3d1 9.50 9.55 9.75 9.10 37.90 9.48
8 b3d2 9.40 9.70 9.35 9.30 37.75 9.44
9 b3d3 9.30 9.70 9.75 9.50 38.25 9.56
10 tes. +base 9.15 9.25 9.25 9.15 36.80 9.20
11 tes.absolut. 9.10 9.15 9.10 9.40 36.75 9.19
∑Repeticiones 103.60 104.30 105.05 102.70 415.65 9.45
5. Promedio de Número de granos por vaina. Datos del Libro de campo.
Número de granos/vaina
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 5.20 5.40 5.60 5.40 21.60 5.40
2 b1d2 5.30 6.00 5.40 5.20 21.90 5.48
3 b1d3 6.00 5.40 5.30 5.50 22.20 5.55
4 b2d1 5.20 5.50 5.70 5.40 21.80 5.45
5 b2d2 5.60 5.20 5.60 5.40 21.80 5.45
6 b2d3 6.10 5.80 6.00 6.00 23.90 5.98
7 b3d1 5.50 5.40 5.60 5.80 22.30 5.58
8 b3d2 5.30 5.70 5.30 5.30 21.60 5.40
9 b3d3 5.60 5.60 5.70 6.00 22.90 5.73
10 tes. +base 5.30 5.50 5.30 5.50 21.60 5.40
11 tes.absolut. 5.10 5.00 5.20 5.30 20.60 5.15
∑Repeticiones 60.20 60.50 60.70 60.80 242.20 5.50
108
6. Promedio de Peso de 100 granos. Datos del Libro de campo.
Peso de 100 granos
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 20.30 20.32 22.02 21.48 84.12 21.03
2 b1d2 19.96 20.90 21.34 21.52 83.72 20.93
3 b1d3 20.34 20.00 20.64 19.36 80.34 20.09
4 b2d1 21.32 21.66 21.00 22.16 86.14 21.54
5 b2d2 20.28 23.00 21.96 23.06 88.30 22.08
6 b2d3 21.72 20.44 21.94 21.16 85.26 21.32
7 b3d1 23.80 21.00 23.56 21.60 89.96 22.49
8 b3d2 21.90 22.96 23.84 23.00 91.70 22.93
9 b3d3 19.96 20.36 20.84 19.48 80.64 20.16
10 tes. +base 19.52 20.56 20.40 20.86 81.34 20.34
11 tes.absolut. 19.21 20.64 20.34 20.54 80.73 20.18
∑Repeticiones 228.31 231.84 237.88 234.22 932.25 21.19
7. Promedio de Rendimiento. Datos del Libro de campo.
Rendimiento
Tratamientos Repeticiones I II III IV ∑ TRAT. PROMEDIO
1 b1d1 5.91 8.32 12.04 9.10 35.37 8.84
2 b1d2 10.10 7.32 12.10 11.26 40.77 10.19
3 b1d3 9.69 7.24 9.75 13.53 40.20 10.05
4 b2d1 7.34 10.64 8.75 10.18 36.91 9.23
5 b2d2 12.23 15.88 12.15 9.53 49.79 12.45
6 b2d3 11.31 6.97 9.80 7.70 35.78 8.94
7 b3d1 8.53 8.18 9.34 10.96 37.02 9.25
8 b3d2 10.48 15.63 10.91 15.12 52.14 13.03
9 b3d3 8.78 13.26 10.13 9.34 41.50 10.37
10 tes. +base 8.59 7.83 9.53 8.83 34.78 8.69
11 tes.absolut. 8.53 6.35 10.37 9.29 34.53 8.63
∑Repeticiones 101.49 107.60 114.86 114.83 438.78 9.97
109
Anexo 10. Fotografías.
Selección de semilla. CADET.
Pruebas de germinación.
Elaboración y enriquecimiento del biol.
110
Preparación del terreno.
111
Pesaje e incorporación del estiércol, sulpomag y roca fosfórica al terreno.
Siembra de fréjol.
Riegos.
112
Aplicación de tratamientos
Altura de planta
Desarrollo del Cultivo
113
Cosecha
114
Longitud de vainas, peso de 100 granos, número de vainas por planta.
Lote de la tesis