ulusalgidareferanslaboratuvari/ · 2014-06-18 · ofinfectedpersons(106–7pergramofstoolormore)...
TRANSCRIPT
2
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
“G›da konusunda bilimsel, anlaş›l›r veyenilikçibak›şaç›s› ilekamuveözelsek-törde liderlik vasf›n› koruyarak güncel vekullan›labilir bilgiyi halk sağl›ğ› ve toplumrefah›içinsunmakt›r.”
“Kuruluş kanunumuzdanald›ğ›m›zgüçileulu-salveuluslararas›bilgipaylaş›m›naaçık,yenilik-çi, rehber, lider ve uzman bak›ş aç›m›zla kalitelive sayg›n bilimsel yay›nlar› bilim dünyas›nda aitolduğu hakl› yere getirmektir. Sağlanan katmadeğertoplumsalrefah,halksağl›ğ›vemilliekono-miyönündendeğerlendirildiğindesürekliiyileştir-meyeaç›kveyenilikçibiryaklaş›mlaseçkinder-gileraras›ndayeralacakt›r.”
Misyonumuz
Vizyonumuz
3
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
İçindek i l e r
Food-BorneViruses:AGlobalHealthProble ....................................................................................5
ExtractionandAnalysisofPesticideResiduesinBeeswax
Balmumunda Pestisit Kalıntılarının Ekstraksiyonu ve Analizi ..............................................................9
OrganikAsitlerleKarkasDekontaminasyonu
Decontamination of Carcasses with Organic Acids .........................................................................19
SofralıkYumurtalardaSalmonella spp.Riski
Increasing Risk of Salmonella spp. in Table Eggs ...........................................................................27
OsmanlıDevleti’ndeHayvanSağlıkZabıtasıÜzerineBirİnceleme
A Review of Animal Health Control in The Ottoman State ............................................................35
3
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
44
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
5
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
INTRODUCTIONAccordingtoWHOreportsin2005,1.8millionpeo-
plediedfromdiarrhealdiseasesmainlyassociatedwithconsumptionofcontaminatedfoodanddrinkingwater(www.who.int/mediacentre/factsheets/fs237/en/).Foodmaycontainviruses,bacteria,parasites,prions,chemicalandphysicalagentswhichmaycauseillnesswhen ingested (Koopmans and Duizer 2004, Cliver,2010).Food-bornevirusesmayinfectpeoplethroughcontaminatedfoodandwater.Prevalencedependsongeographic area, sanitary conditions and socioeco-nomiclevels.Norovirusisthemostcommoncauseoffood-borne illnessaccounting for54 food-bornedis-easeoutbreaksinrecentyears(CDC2009,Pateletal.,2009).Everyyearnewfood-bornepathogensincludedtocauseillnessinpeopleandnewoneswillbediscov-eredinfuture. Someofthemareemergingandalsoknown pathogens can evolve and may cause moreseriouspublichealthproblems(Siebengaetal.,2009,Ozkul et al., 2011). Recent studies have focused onepidemiology,reduction,inactivationanddetectionoffood-bornevirusesaswellasapplicationofhygiene,sanitationandHACCPprinciples.
Viruses Associated with Food and Water-BorneInfections
Viruses belonging to 11 families known to causefoodandwater-borneillness.Inthepasttwodecades,SARScoronavirus,WestNilevirus,Nipahvirus, tick-borneencephalitisvirus,newgenotypesofhepatitisE,norovirus, rotavirus and highly pathogenic avianinfluenzaviruses(HPAI)ofsubtypesH7N7,H5N1andH1N1weretheviralagentscausingsignificantpublichealth problems in people (Newell et al., 2010). Thezoonotic potentials of those viruses and possibletransmission via food payed particular attention tofoodconsumedbypeople.
Moreimportantly,thereareverywellknownviruseswhich causes food-and water-borne illness in peopleworld-wide. Amongst those noroviruses, rotaviruses,hepatitisAandEviruseshavebeenmostlydocumentedasfoodandwater-bornebutseveralotherviruseshavealsobeenidentifiedlikeaichivirus,astrovirus,sapovirus,enterovirus, adenovirus and others (Koopmans andDuizer, 2004, Cliver, 2010, Girones et al., 2010).Norovirus, rotavirus, adenovirus, sapovirus, aichivirusand astrovirus are the agents of acute gastro-enteritis
Aysun YILMAZ1 Hüseyin YILMAZ2
1Cevre Industrial Analysis Laboratory, Merkez Mahallesi, Ceylan Sokak, No. 24, Mart Plaza, Kat 2, Kagıthane, Istanbul, Turkey
2Department of Virology, Veterinary Faculty, University of Istanbul, Avcilar, Istanbul, Turkey
Food-BorneViruses:AGlobalHealthProblem
6
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
withdiarrheaandvomitingwhilehepatitisAandEvirus-esmaycausehepatitiswithabdominalpainsandjaun-dice(Pateletal.,2009,Mengetal.,2010).Enterovirusesmaycauseavariousdisorders,varyingfromdiarrheatomeningitisandrashillnesses(Newelletal.,2010).Wearenowinasituationthatthepossibilityoftheemergenceof new viruses or the evolution of old ones into newforms which affects demographic, economical, andsociologicalfactors(Siebengaetal.,2009).
Importance and Characteristics of Food-borneViruses
Mostofthefood-bornevirusestransmitandspreadrapidlyfromonepersontoother.Also,onlylownum-ber of infectious particles (10–100 for norovirus) areneededtocauseinfectioninpeople(Pateletal.,2009).Consideringveryhighnumberofvirusesshedinfecesofinfectedpersons(106–7pergramofstoolormore)indicates the importance of fecal contamination offoodandwater(Newelletal.,2010).Theimmunitytosomeoffood-borneviruseslikenorovirusisnotlong-lasting and there is no vaccine for some food-borneviruses at present (Donaldson et al., 2009). Entericvirusescanremaininfectiousonfoodsurfacesfor7to10 days (Mattison et al., 2007, Patel et al., 2009). Inmanycountries,thereisnosystematicsurveillanceforfood-borne viral diseases and viruses in food andwater.
Transmission
Foodandwater-bornevirusillnessesareassociat-ed with consumption of contaminated raw or under-cookedfood,preparedfood,shellfishandwater(Patelet al., 2009, Girones et al., 2010). Transmission offood-borne viruses occurs mainly by the fecal-oralroute and person-to-person contact. Shellfish andwateraremainreservoirfortheseviruses.Vegetablesand fruits may serve as a vehicle for transmissionwhentheyare irrigatedorwashedwithsewage-con-taminated water or prepared by infected food han-dlers. Food-borne viral infections spread quickly oncruise ships and student campuses because of theclose living environment, shared toilets, commonrooms,foodhandlers,saladbars,andcanteens,andclose contact mainly in hospitals (Koopmans andDuizer,2004,Pateletal.,2009,Mengetal.,2010)
Diagnosis and Detection of Viruses in Food
ELISA, PCR, real-time PCR (SYBR Green andProbeassays)and transmissionelectronmicroscopy(TEM)havebeenusedinthediagnosisofmanyfoodborne-viral infections inhumanwithvaryingsensitivi-tiesandspecificities.PCRhasbeenfoundtohaveahighersensitivitythanTEMandELISA,whilespecifici-tywashighestforTEM(Pateletal.,2009,Mengetal.,
2010,Newelletal.,2010,Cliver,2010).Nostandard-izedmethodsfordetectingfood-bornevirusesinfoodandwateratpresentbutvariousmethodsofviruscon-centrationanddetectionhavebeenutilizedbyseveralinvestigators(Loisyetal.,2005,Rzezutkaetal.,2005,Rutjesetal.,2006,Gironesetal.,2010,Yilmazetal.,2011). After viral concentration, PCR and real- timePCR are the preferred methods to detect viruses infoodandwater(Loisyetal.,2005,Rutjesetal.,2006,Gironesetal.,2010,Yilmazetal.,2011).Researchershavebeenworkingtodevelopstandardizedmethodstodetectvirusesinfoodandwater.
Epidemiology of Food-Borne Viruses
Prevalenceof food-borneviral infectionsdependsongeographicarea,sanitaryconditionsandsocioeco-nomiclevels.InEurope,viralagentswereresponsiblefor 10.2% of the food-borne outbreaks during 2006and were pointed out as the second most commoncausativeagent,afterSalmonella(EFSA,
2007). Estimates of the proportion of viral illnessattributable to food are debatable but range fromaround 5% for hepatitis A to 12–47% for norovirus(Newell et al., 2010). Norovirus is the most commoncause of food-borne illness accounting for 54 food-bornediseaseoutbreaksinrecentyears(CDC2009).Norovirusesarerecognisedasoneofthemostcom-moncausesoffoodandwaterborneinfectionsworld-widecausingoutbreaksofgastroenteritis resulting inover 267 million cases annually (Donaldson et al.,2009).Rotavirusinfectionsarethesecondmostpreva-lent food-borne illness. Hepatitis A and hepatitis Eviruses come after those viruses. Hepatitis A virus(HAV)infectionaccountsfor75%ofallhepatitiscasesintheworld (Sohnetal.,2000)andabout1.5millionsymptomaticcasesofhepatitisAoccurannuallyintheworld (Ghorbani et al., 2007). Interestingly, IgG anti-HEV prevalence in some industrialized countries ismuch higher than expected: for example, in someregionsoftheUnitedStates,upto30%ofthenormalblooddonorswerepositiveforIgGanti-HEVandmayreach to 70% in some countries (Meng 2010). InEurope, variants of hepatitis E virus seems to bespreading and causing infections in some Europeancountries.HoweverinJapan,infectionsbysapovirus-eshaveincreased.Aichiviruseshavebeendetectedinanimalsandhumanrecently(Mengetal.,2010,Newelletal.,2010).
Humannorovirus infectionsoccurworld-wideandhave been widely investigated. Although thegenetic/antigenic diversity of human noroviruses ishigh,afewgenotype4(GII4)strainsofgeno-groupIIare predominant worldwide. GII4 norovirus evolved
7
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
rapidly in the last 15 years and variants have beenidentifiedinEurope.InterestinglynewvariantsofGII4emergedin2002,2004and2006;eachtimedisplac-ingtheresidentviruspopulationwithinmonthsacrossEurope indicating viral evolution (Siebenga et al.,2009). The GII4/2006b strain detected in Italy andBulgaria was also detected in a study performed inTurkishchildren(Ozkuletal.,2011).Thisstudyindicat-edthatnorovirusGIIispresentinTurkishchildrenwithdiarrhea.Itisimportanttoemphasizetheexistenceoftwo variants of GII-4 (GII4-2006b and GII4-2008),GII16 and recombinant noroviruses (GIIb/HilversumandGIIe)strainsinIstanbul(Ozkuletal.,20011).
Noroviruses and other food-borne viruses havealsobeeninvestigatedinshellfish,fooditems(vegeta-bles, fruits, sandwiches, diried domatoes etc) andwaterwithvaryingfrequencydependingonregionandcountry(Cliveretal.,2010,Gironesetal.,2010,Mengetal.,2010,Yilmazetal.,2010,Yilmazetal.,2011).NoVGIIwasdetectedinTurkeyin1greenonionsam-ple and 1 tomato sample by both SYBR green andProbe based real-time RT-PCR (Yilmaz et al., 2011).Norovirus GII was also detected in mussel samples(5.3%) collected from Bosphorus, Turkey (Yilmaz etal.,2010).Surveillanceanddatacollectionareneces-sary tostudyepidemiologyof food-borneviral infec-tions. In recent years, the Food-borne Viruses inEuropenetwork(FBVE)hasdevelopedajointelectron-ic database to facilitate data comparison and strainnomenclature (www.rivm.nl/bnwww, Duizer et al.,2008;Koopmansetal.,2003).
Prevention and Control of Food-Borne Viruses
Standards for the microbiological quality controlcriteria for food is not sufficient to protect peopleagainst food-borne infections caused by viruses.Therefore,newstandardsarenecessary inanalyzingandpreventionoffoodsforviruses.Strategiestopre-ventfood-bornediseasesshouldconcentrateonearlypreventionofcontaminationoffoodbyvirusescauseillnessinpeople.Accordingtoexpertadviceonfood-borne viruses for Codex Alimentarius(www.who.int/foodsafety/publications/micro/mra13/en/index.html ) there are five virus-commodity combi-nations for which prevention and control measure-mentsshouldbetakenintoaccount:
1. NorovirusesandhepatitisAinbivalvemolluscanshellfish: Surveillance and preventive measurementsare necessary in production and harvesting areas
(Loisyetal.,2005,Yilmazetal.,2010).Also,preven-tionforhepatitisAinfectionthroughvaccinationisrec-ommendedforfood-handlers.
2. Noroviruses and hepatitis A in fresh produce:Noroviruses and hepatitis A virus are also frequentlyreported in fresh produce and such as vegetables,fruitsandsaladitems(Newelletal.,2010,Yilmazetal.,2011).Therefore,thosetypeoffoodmightbecontam-inatedwithvirusesduringharvestingandpollutedirri-gationandwashingwater.
3. NorovirusesandhepatitisAinpreparedfoods:Iftheyarenotcooked;mainsourceoffood-borneviralinfectionsarepreparedfoodsandready-toeatfoodscontaminatedduringpreparationoffoodbyfood-han-dlerssheddingviruses(Newelletal.,2010,Yilmazetal., 2011). For prevention hygiene, sanitation andHACCP rulesshouldbeapplied in thepremisesandmarketsetc.
4. Rotavirusesinwaterusedforfoodpreparation:Contaminatedwaterseemstobe themajor infectionaswellasfoodforGroupArotavirusesGironesetal.,2010).Therefore,improvinghygieneandwaterqualitywillbemainpointinpreventionofrotaviraldiarrhea.
5. Emerging viruses in selected commodities:Newly emerging viruses like SARS, avian influenza,Nipah virus, tick-borne encephalitis virus and someothers may come from food but efficient food-bornetransmission needs to be evaluated (Newell et al.,2011). For this systematic surveillances necessarywherethosevirusesareprevalent.
Conclusions and Future Challenges
The true incidence, cause, detection, source andprevention (hygiene, inactivation and methods ofpackagingetc)offood-bornevirusesneedtobestud-iedextensively.Alsostandardizedmethodsareneces-saryfordetectionofvirusesinfood.ManyresearchersandEUhavebeenworkingonthisandwasdiscussedintheCOST929meeting(FutureChallengesinFoodand Environmental Virology) which was held inIstanbul in October 2011. Due to evolution of foodviruses, new primers and probes are necessary toimprovemoleculartechniques.
Thereisaneedforqualitycontrolcriteriaforfood-borne viruses. Strategies to prevent food-borne viralinfections should concentrate on prevention of con-taminationoffoodearlyinthefoodchainduringpre-harvesting,harvesting,processing,washingandirriga-tion.
8
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
REFERENCESDonaldson EF, Lindesmith LC, Lobue AD, Baric RS. 2008.
Norovirus pathogenesis: mechanisms of persistence and immune
evasioninhumanpopulations.ImmunolRev.225:190-211.
EFSA:2007.ECDCreportfor2007.
Ghorbani GA, Alavian SM, Esfahani AA, Assari SH. 2007.
SeroepidemiologyofhepatitisAvirusinIraniansoldiers.HepatMon,
7:121–124.
GironesR,FerrúsMA,AlonsoJL,Rodriguez-ManzanoJ,Calgua
B, Corrêa Ade A, Hundesa A, Carratala A, Bofill-Mas S. 2010.
Molecular detection of pathogens in water--the pros and cons of
moleculartechniques.Review,WaterRes.44(15):4325-4339.
Loisy F, Atmar RL, Guillon P, Le Cann P, Pommepuy M, Le
Guyader FS. 2005. Real-time RT-PCR for norovirus screening in
shellfish.JVirolMethods,123:1-7.
MattisonK,KarthikeyanK,AbebeM,MalikN,SattarSA,Farber
JM,BidawidS.2007.Survivalofcalicivirusinfoodsandonsurfaces:
experiments with feline calicivirus as a surrogate fornorovirus. J.
FoodProt.70:500–503.
MengXJ.2010.HepatitisEvirus:Animalreservoirsandzoonot-
icrisk.Review.VetMicrobiol.140(2010):256–265.
NewellDG,KoopmansM,VerhoefL,DuizerE,Aidara-KaneA,
SprongH,OpsteeghM,LangelaarM,ThrefallJ,ScheutzF,vander
GiessenJ,KruseH.2010.
Food-bornediseases-thechallengesof20yearsagostillper-
sist while new ones continue to emerge. Review. Int J Food
Microbiol.30;139Suppl1:S3-15.
OzkulAA,KocazeybekBS,TuranN,ReuterG,BostanK,Yilmaz
A,AltanE,UyunmazG,KaraköseAR,MuratogluK,ElevliM,Helps
CR,YilmazH.2011.Frequencyandphylogenyofnorovirusindiar-
rheicchildreninIstanbul,Turkey.JClinVirol.[Epubaheadofprint]
PatelMM,HallAJ,VinjéJ,ParasharUD.2009.Noroviruses:a
comprehensivereview.JClinVirol.44:1-8.
Rutjes SA, Lodder-Verschoor F, van der Poel WH,
vanDuijnhoven YT, de Roda Husman AM. 2006. Detection
ofnoroviruses in foods: a study on virus extraction procedures in
foodsimplicatedinoutbreaksofhumangastroenteritis.JFoodProt.
69:1949–1956.
Rzezutka A, Alotaibi M, D’Agostino M, Cook N. 2005.
Acentrifugation-basedmethodforextractionofnorovirusfromrasp-
berries.JFoodProt.68:1923–1925.
Sohn YM, Rho HO, Park MS, Park JH, Choi BY, Ki M, et al.
2004.ThechangingepidemiologyofhepatitisAinchildrenandthe
consideration of active immunization in Korea. Yonsei Med J,
41(1):34–39.
SiebengaJJ,VennemaH,ZhengDP,VinjéJ,LeeBE,PangXL,et
al.2009.Norovirusillnessisaglobalproblem:emergenceandspread
ofnorovirusGII.4variants,2001-2007.JInfectDis.200:802-12.
YilmazH,BostanK,TuranN,MuratogluK,YılmazA,OzkulAA,
Kocazeybek B, Helps CR. 2010. Real-Time PCR Detection of
Norovirus in Mussels Collected from the Bosphorus in Istanbul,
Turkey.FoodEnvironVirol.2:64-68.
YilmazA,BostanK,AltanE,MuratogluK,TuranN,TanD,Helps
C, Yilmaz H. 2011. Investigations on the Frequency of Norovirus
ContaminationofReady-to-EatFood Items in Istanbul,Turkey,by
Using Real-Time Reverse Transcription PCR. (2011). J Food Prot.
74(5):840-843.
9
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
ABSTRACTBeeswaxisoneoftheimportantbeeproductsproducedbytheworkerbeesandisusedasaconstruction
materialforthecombs.Waxmanufacturewasperformedbyrecyclingoldcombsandpiecesofwax.Apartfromitsuseforfoundationsinbeekeeping,beeswaxisalsoextensivelyusedincosmeticandpharmaceuticalindus-tries,candlemaking,artandformanyotherpurposes.Honeyandbeeproductshavetheimageofbeingnatu-ral,healthyandcleanandbeekeepersandvariousindustriesbenefitfromthishealthyandpureimage.However,todaybeeproductsareproducedinanenvironmentpollutedbydifferentsourcesofcontaminationandresultsofsurveyshaveshownthatresiduesarewidelypresentinbeeswax.Therearetwomainsourcesofpesticideresidues inbeeswax:apiculturalandenvironmental.Mostof thestudiesonanalysisofpesticide residues inbeeswaxhavebeenperformedbygaschromatography(GC)withmostlyelectroncapturedetection(ECD),aftercarryingoutsamplepreparationproceduresmainlybasedonliquid/liquidpartitioningfollowedbysolidphase
Özge Çetinkaya AÇAR*, Sevilay KIRIŞ, Fazıl DİLER, Ayşe AVCI
Ulusal Gıda Referans Laboratuvarı, Kalıntı Bölümü, Pestisit Birimi
ExtractionandAnalysisofPesticideResiduesinBeeswaxBalmumunda Pestisit Kalıntılarının Ekstraksiyonu ve Analizi
* So rum lu ya zar : [email protected] [email protected]
Ad res : Ulusal Gıda Referans Laboratuvarı, Kalıntı Bölümü, Pestisit Birimi FSM Bulvarı Tarım Kampüsü No:70 Yenimahalle/Ankara
Telefon : 327 41 81/1186 Faks: 327 41 56
10
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
1. INTRODUCTIONHoneyandbeeproductshavetheimageofbeing
natural, healthy and clean. Beekeepers and variousindustries benefit from this healthy and pure imagethat bee products present to the public. However,today bee products are produced in an environmentpolluted by different sources of contamination.Contamination of bee products with pesticides hasbeenwidelydocumentedformanyyears.Suchdocu-mentswilldamage thegood imageofbeeproducts;thusitisimportantforbeekeeperstominimizeorelim-inate the different contamination sources(Bogdanov,2006,Wallner,1999).
1.1.Beeswax
Beeswaxisproducedbythewaxglandsofworkerbees and is used as a construction material for thecombs.Succesfullcombmanagementisanimportantrequirement for thebeekeeping.Eachyearbeekeep-ers should discard old combs out of the hive, thusstimulatingbeestobuildnewcombs.Oldcombsandcrudewaxaretherawproductsofthewaxmanufac-ture.Thus,alloldcombsandpiecesofwaxaresup-pliedtowaxmanufacturersforrecyclingintopurewax(Bogdanov,2011).Apartfromitsuseforfoundationsinbeekeeping,beeswaxisalsoextensivelyusedincos-metic and pharmaceutical industries, candle making,artandformanyotherpurposes(Bogdanov,2004).
1.2. Manufacture of beeswax
Worldwide, beeswax is produced by specializedbeeswax manufacturers. Beekeepers provide eitheroldcombsorcrudewaxtothesemanufacturers.Thegoodqualityof thebeeswaxgreatlydependson theproduction method. Beeswax is processed in twosteps: in the first step the wax is extracted andcleaned;inthesecondstepitispurified.Therearetwowaxextractionmethods:meltingandchemicalextrac-tion.Waxcanbemeltedbyboilinginwater,bysteamor by heat from electrical or solar power. Chemicalextraction by solvents is feasible only in laboratorywhere small scale wax production is needed(Bogdanov,2004,Bogdanov,2011).Thewaxrecoverydepends on the combs and the method used.Generally,recoveryfromoldcombsarearound50%.Forindustrialpurposes,beeswaxarepurifiedbyfiltra-tionandcentrifugation(Bogdanov,2011).
1.3. Composition of beeswax
Beeswaxisanextremelycomplexmaterialcontain-ingover300differentsubstances.Itmainlyconsistsofcomplex mixtures of monoesters (35%), diesters(12%), hydrocarbons (14%), free fatty acids (12%),hydroxy polyesters (8%), hydroxy monoesters (4%),triesters(3%),acidpolyesters(2%),acidesters(1%),freealcohols(1%)andsomeunidentifiedcompounds(6%)(Tutkun,2000;Sorkunetal.,2010;Serra-Bonvehi
extraction(SPE)performedcommonlybyFlorisilcolumns.Massspectrometric(MS)detectionwasalsousedindifferentstudies.Afewstudieswithhighperformanceliquidchromatography(HPLC)werealsoreported.Thepresent study summarizes the presence and extraction/analysis methods of different pesticide residues inbeeswax.
Keywords: Beeswax,pesticideresidues,extraction,analysis
ÖZETBalmumuişçiarılartarafındanüretilenönemlibirarıürünlerindenbirisidirvepetekyapımındayapımalzeme-
siolarakkullanılır.Ticaribalmumu,eskipetekvebalmumuparçalarınınyenidenişlenmesiileüretilir.Arıcılıktesis-lerindekibukullanımıdışında,balmumukozmetikve ilaçsanayinde,mumyapımında,sanattavediğerbirçokamaçlayaygınolarakkullanılmaktadır.Balvearıcılıkürünleridoğal,sağlıklıvetemizürünlerkimliğinesahiptirvearıcılarveçeşitliendüstrikollarıbusağlıklıvesafürünimajındanfaydalanırlar.Ancak,günümüzdearıcılıkürün-lerifarklıkontaminasyonkaynaklarıtarafındankirletilmişbirçevredeüretilmektedirvetaramasonuçlarıbalmu-mundayüksekorandakalıntıbulunduğunugöstermektedir.Balmumundapestisitkalıntılarınınikitemelkaynağıvardır:Arıcılıktangelenkalıntılarveçevredengelenkalıntılar.Balmumundapestisitkalıntılarıanaliziçalışmalarınınbirçoğu,genelliklesıvı/sıvıdağılımıprensibinedayalıörnekhazırlamaprosedürlerinitakibenuygulanan,Florisilkolonlarınkullanıldığıkatıfazekstraksiyonunun(SPE)ardından,elektronyakalamadedektörü(ECD)içerengazkromatografisi (GC)sistemlerikullanılarakgerçekleştirilmiştir.Farklıçalışmalardakütlespektrometrisi (MS)dekullanılmıştır.Yüksekperformanslısıvıkromatografisinin (HPLC)kullanıldığıbirkaççalışmadabildirilmiştir.Buçalışmadabalmumundafarklıpestisitkalıntılarınınvarlığıveekstraksiyon/analizyöntemleriözetlenmektedir.
Anahtar kelimeler: Balmumu,pesitsitkalıntıları,ekstraksiyon,analiz
11
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
and Orantes-Bermejo, 2010; Aichholz and Lorbeer,1999;Bogdanov,2004).Purebeeswaxiswhitebutthepresenceofpolenandpropoliscauses it tobecomeyellow. For special purposes, beeswax is refined bybleachingprocesswithdiatomaceousearthandacti-vated carbon (Serra-Bonvehí and Orantes-Bermejo,2010).
2. PESTICIDE RESIDUES IN BEESWAX2.1. Sources of pesticide residues in beeswax
Results of surveys have shown that residues arewidelypresentinbeeswax(Wallner,1999,Bogdanovetal.,1998a,Tananakietal.,2006).Thesourcesofpesti-cideresiduesinbeeswaxcanroughlybedividedintotwo:apiculturalandenvironmental.Amongtheapicul-turalsourcesareacaricidesappliedforVarroacontrolandamongtheenvironmentalsourcespesticidesusedinthesurroundingcropsareprimarilyimportant.
2.1.1. Apicultural sources
Themainsourcesofpesticideresiduesinbeeswaxare acaricides applied against Varroasis, a diseasecausedbyparasiticmiteVarroadestructor.Varroasisispresentlyconsideredthemajorthreatforapiculturethroughout the world (Rosenkranz et al.,2010,Adamczyketal.,2010).Thismitecausesacripplingof bees and a decrease in the colony, which cansometimesleadtoitsbreakdown,andcanalsotrans-mitviraldiseases(Rosenkranzetal.,2010).Inordertopreventcolonylosses,beekeepersmustdecreasethenumberofmitesintheircoloniesandthemostwidelyused method is the chemical control with syntheticacaricides(Adamczyketal.,2010).
Acaricides can be divided basically into twogroups:Firstgroupisthemostwidelyusedlipophilicsynthetic acaricides. Second group is the group ofnon-toxic acaricides such as thymol and organicacids,whichareallowedtouseinorganicbeekeeping.Fat-soluble subtances mainly accumulate in wax,while water-soluble substances accumulate more inhoney. Most acaricides used for the control ofVarroasisarefatsoluble,non-volatileandaccumulateinbeeswax(Bogdanovetal.,2003;Serra-BonvehíandOrantes-Bermejo,2010).Thefrequentlydetectedaca-ricides in beeswax include: fluvalinate (Bogdanov etal.,1998a, Frison et al., 1999, Tsigouri, 2000,Bogdanovetal.,2003,Jiménezetal.,2004,Jiménezetal.,2005, Adamczyk et al.,2007, Serra-Bonvehí andOrantes-Bermejo,2010, Adamczyk et al.,2010, Mullinet al.,2010), coumaphos (Bogdanov et al.,1998a,Bogdanovetal.,2003,Adamczyketal.,2007,Mullinetal.,2010), bromopropylate (Korta et al.,2003,Bogdanov et al.,2003, Adamczyk et al.,2007), chlor-
fenvinphos(Kortaetal.,2003),flumethrin(Bogdanovetal.,2003), amitraz (Korta et al.,2003), tetradifon(Wallner, 1997, Mullin et al.,2010), chlordimeform(Korta et al.,2003), cymiazole (Korta et al.,2003),acrinathrin (Vesely et al., 1988, Szerletics Túri andSzalaiMátray,2003). Duetothepersistenceofsyn-thetic acaricides, mites, resistent to pyrethroids andcoumaphoshaveappearedinmanycountriesandthishadledtotheuseofalternativecontrolmeasureswithnon-toxic substances such as thymol and organicacids for Varroa destructor control worldwide(Bogdanov,2003,Nozaletal.,2002)
Pesticides applied to control wax moth Galleriamellonelladuring thestorageofbeeswaxcombsarethe other sources of pesticide residues in beeswax.Some beekeepers use para-dichlorobenzene (PDCB)forthecontrolofwaxmoth(Wallner,1992,Bogdanovet al.,2004; Tananaki et al.,2006). Other toxic sub-stances used for wax moth control are naphthaleneand 1,2-dibromoethane (DBE) (Tananaki et al.,2006,EC,2001).
Ascospheriosis is another disease caused by themite Ascosphera apis that effects the larvae of thehoneybee,resultinginthemajormortalityinthecolonyand economical losses, not only to the apiarists butalso to the surrounding farmers through pollination.Thefungicidesbenomylandcarbendazimseemtobethetwoofthemostsuitablechemicalstocontrolthedisease(Bernaletal.,1997).
2.1.2. Environmental sources
Contaminants from environmental sources (pesti-cides,heavymetals,bacteriaetc.)canreachthebeeproducts by air, water, plants and soil and then betransported into the bee hive by the bees(Bogdanov,2003). Agricultural pesticides used in thesurrounding crops of beehives result in pesticideresidues in beeswax. Analysis of parathion methyl(RossandHarvey,1981),bromofenvinphos(Nowacka-KrukowskaandLudwicki,1999),DDE(JanandČerne,1993),benomylandcarbendazime(Bernaletal.,1997)in beeswax were reported. Presence of azinphos-methyl, chlorpyriphos, cyfluthrin, cypermethrin,deltamethrin, endosulfan, fenitrothion, lindane,malathion, parathion, tau-fluvalinate, procymidoneand vinclozolin was reported in a survey study per-formedinFrance,inwhichtau-fluvalinate,coumaphosand endosulfan were reported to be the most fre-quentlyoccuringresiduesandcoumaphosinthehigh-est average quantities (Chauzat and Faucon, 2007).Mullinetal. (2010)reportedthedetectionofapproxi-mately90pesticidesandmetabolitesinwaxsamplesfrom North American bee colonies and emphasized
12
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
thathoneybeesacrossNorthAmericaareextensivelyexposedtomultiplepesticides.
2.2.The importance of presence of pesticideresidues in beeswax
Beeswaxhasalargecapacitytoholdcontaminantsandmostcontaminantsarestableandremainpracti-cally unchanged in the purified beeswax (Serra-BonvehiandOrantes-Bermejo,2010).Theuseofsyn-thetic lipophilic acaricides leads to accumulation ofthesesubstancesinbeeswaxandtheresiduesinwaxareverypersistentandtheacaricideleveldropsveryslowlyafterterminationofthetreatment(Bogdanovetal.,1998b). Old beeswax were recycled to producenewonesandrecyclingofoldwaxcombsthroughaprocessthatliqufiesitdoesnotchangetheconcentra-tionofpesticidestoanysignificantdegree,exceptforunstableoneslikeamitraz,chlordimeformetc.(Serra-BonvehiandOrantes-Bermejo,2010).Longtermstud-iesinbeeswaxclearlyshowedthat,contaminationofrecycledbeeswaxafteracertainacaricidestartstobeintensivelyusedisratherfast.Ontheotherhand,ifanacaricideisnolongerused,ittakesalongtimefortheresiduestodisappear(Bogdanovetal.,1998a).Besidethe use in beekeeping, great amont of beeswax areprocessedforpharmaceuticalpurposesorforthefoodandcosmeticindustries,sothepresenceofpesticideresiduescausesseriosproblems(Wallner,1999).
3. EXTRACTION AND ANALYSIS METHODS OF PESTICIDE RESIDUES IN BEESWAX
The main steps of analysis of pesticide residues,especiallyacaricidesinbeeswaxwereshowninFigure1.
Table1summarizestheextractionandanalysismeth-odsreported inthe literatureforthedeterminationofvarious pesticides in beeswax. As can be seen fromthe Table 1, most of the studies about pesticideresidues in beeswax have been performed by gaschromatography (GC) with mostly electron capturedetection(ECD),aftercarryingoutsamplepreparationprocedures mainly based on liquid/liquid partitioningfollowed by solid phase extraction (SPE) performedcommonlybyFlorisilcolumns(Bogdanovetal.,2004,Jiménezetal.,2005).Massspectrometric(MS)detec-tion was also used in different studies (Frison etal.,1999,Kortaetal.,2003,Jiménezetal.2005).Afewstudieswithhighperformanceliquidchromatography(HPLC) were also reported (Bernal et al.,1997,Adamczyketal.,2007).
Themainstepsofanalyticalproceduresappliedindeterminationofpesticideresidues inbeeswaxsam-plesweresummarizedbelow:
3.1. Sample pretreatment
Inmostofthestudies,beeswaxsampleswerepre-treated in order to remove the impurities such ashoney,bees,polenandanydebris.Themostcommonmethod to remove the impurities was to boil thebeeswax-watermixtureforaperiodoftimeandrepeatthe procedure with fresh water for several times. Bythis way, impurities were dissolved in water andplacedatthebottomofthesolidifiedbeeswax,whichis less dense than water. Impurities were thenremovedwithascraper(Jiménezetal.,2004,Frisonetal.,1999, Jiménez et al.,2005). An alternative proce-durewastowashthebeeswaxwithdistilledwateranddry in an oven at about 40-50 °C (Adamczyk etal.,2007).
3.2. Extraction of analytes
Extraction of beeswax samples was commonlyperformed by dissolving beeswax in an organic sol-vent, most commonly in n-hexane (Bogdanov etal.,1998, Tsigouri et al.,2000, Bogdanov et al.,2003,Jiménez et al.,2004, Jiménez et al.,2005), isooctane(Adamczyk et al.,2007), ethanol (Bogdanov etal.,2004), acetonitrile (Frison et al.,1999), methanol(Kortaetal.,2003)orcombinationsof thesesolvents;followed by either heating (Adamczyk et al.,2007) orkeepinginultrasonicbathforaperiodoftime(Tsigourietal.,2000,Bogdanovetal.,2003, Kortaetal.,2003,Bogdanov et al.,2004). In the study conducted byBogdanov et al. (1998b) in which thymol residues inhoney and wax were examined, wax samples werehomogenized by grinding while frozen with a coffeemillbeforedissolvinginethanol.
Beeswax sample
Sample pretreatment
Extraction of analytes
Clean-up
Final determination
Figure 1. The main steps of analytical procedures applied indetermination of pesticide residues, especially acaricides inbeeswax samples
13
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
Repeatedfreezing,subsequentcoldcentrifugationanddecantationoftheclearsupernatantwasacom-monly applied procedure, firstly described byZimmermann et al. (1993) and then modified byBogdanov et al.(1998a), in order to remove the highmolecularweigtwaxcomponents.
3.3.Clean-up
Solidphaseextraction (SPE)wascommonlyusedas a clean-up procedure. The clean-up techniquedescribedbyBogdanovetal.(1998a),inwhichFlorisilcartridges were used, was the most common tech-niquewhichwaslatermodifiedandadaptedbysever-alresearchers(Tsigourietal.,2000,Frisonetal,1999,Adamczyk et al.,2007). Alternatively C18 cartridgeswereused(Kortaetal.,2003).Bogdanovetal. (2004)used C18 cartridges for the analysis of para-dichlorobenzene. Jiménez et al. (2004) studied onanalysisof lipophilicpesticides inbothbleachedandnon-bleachedbeeswaxandassayeddifferentsamplepreparation and solid-phase extraction (SPE) meth-ods.FortheoptimizationofSPEandclean-upproce-dure,theystudiedwithdifferentcommercialcartridgesand their combinations and also Florisil packedcolumns.Theyreportedthemostadvisableprocedurefortheanalysisofbleachedbeeswaxastheliquid-liq-uidextraction,followedornotbyaSPEonpolymericcartridges as a clean-up mode. The precision wasreportedtobenotgood intheuseofFlorisil-packedcolumns. For the non-bleached beeswax samples,new clean-up procedures was necessary in order toremove interferingcompoundsandcombinationofalow-capacity octadecylsilane (ODS) cartridge beforethe polymeric cartridge was advised to remove theinterferences(Jiménezetal.,2004).
Nozaletal.(2002)recommendedanalternativedis-tillationprocedurebeusedfortheanalysisofbeeswaxsamples, in which the beeswax-water mixture washeatedandthedistillatewastrappedintoaSPEcar-tridge.
3.4.Determination of analytes
The most commonly used analytical systems forthe determination of residues of beeswax were gaschromatographywithelectroncapturedetection(GC-ECD) (Bogdanov et al.,1998a, Tsigouri et al.,2000,Bogdanov et al.,2003, Jiménez et al.,2004). Flameionizationdedector(FID)wasalsousedfortheanaly-
sis of certain residues like para-dichlorobenzene(Bogdanov et al.,2004), thymol (Bogdanov etal.,1998b,Nozaletal.,2002),eucalyptol,menthol,cam-phor(Nozaletal.,2002)
Jiménez and co-workers reported a revisedmethod in which GC/MS was used instead of GC-ECD. The selective detection in SIM mode allowedthem to remove the clean-up step. They analyzedtotally15lipophiliccontaminantsinbeeswax(Jiménezetal.,2005).GC/MSmethodwasalsoreportedfortheanalysisoffluvalinate(Frisonetal.,1999)andformul-tiresidueanalysisofamitrazresidues,bromopropylate,chlordimeform, cymiazole, chlorfenvinphos (Korta etal,2003).IntheframeofasurveystudyperformedinFrance, inwhichthepresenceoftotally18pesiticideresidues in beeswax were investigated, GC/MS/MSsystenwasusedforthechromatographicmultiresidueanalysis(ChauzatandFaucon,2007).
4. PREVENTIVE MEASURES AGAINST CONTAMINATION OF BEESWAX
Forthebestbeeswaxquality,itisobviousthattheuse of synthetic chemicals in beekeeping should bekept minimal. The use of alternative Varroa controlpreventstheacaricideresidues.Toalternatethecom-poundsusedandtoselectnaturalsubstancesthatdonotcarryrisksfortheconsumeristhetrendapproachto prevent residues. Organic acids such as formic,lacticoroxalicandalsotheuseofsomecompoundsofessentialoilsareamongthealternativecompoundson which the attention has been focused (Nozal etal.,2002).
Additionally,waxcanbeprotectedfromwaxmothsby simple physical or chemical measures; such as,storingthecombsinacoolplace(<15°C)atgoodaircirculation, freezing the comb for several hoursdepending on the freezing temperature, heating thecomb at about 50 °C for approximately one hour ortreating by non-toxic chemicals such as sulphur,aceticacid,formicacid(Bogdanov,2011).
Applyingthepesticidesoutsidethebloomperiod,or at least not during the foraging time of bees andplacingthehivesmorethan3kmawayfromagricul-turalplanttreatedwithpesticidesareamongthepre-ventive measures to avoid environmental residues(Bogdanov,2004).
14
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
AnalytesSample
PretreatmentExtraction
Clean-up
Final determina-tion/ detection
Reference
Benomyl,carbendazim
---
•Add1mlof0.05MHCland15mlmethanolover1gbeeswax
•Shakefor15min
•Centrifugateanddecantsupernatant
•Repeatextractionwith15mlmethanol
•Combinesupernatantsandevaporatetodryness
•Dissolvetheresiduein2mlofmethanolandfilter
--- HPLCBernaletal.(1997)
Bromopropylate,coumaphos,fluvalinate,flumethrin
---
•Dissolve1.0gbeeswaxin10mlhexane
•Extractinultrasonicbathfor45min
•Placesampleindeep-freezerforatleast1.5h
•Centrifugateat10000xgfor15minat-5°C
•Decantsupernatant
•Repeatfreezingandcentrifugation
•Decantsupernatant
SPE-Florisil
GC-ECDBogdanov
etal.(1998a)
Fluvalinate
•Heatbeeswaxfor3hat50°C
•Soakinwaterwithatleast
threechangesofwater
•Airdrythefinalwaxina
glasscontainer
•Add25gofanhydroussodiumsulfateon10gofbeeswax
•Dissolvein100mlofacetonitrile
•Blendfor1min
•Filterundervacuum
•Repeatextractiontwicewith25mlofacetonitrile
•Rinsewith10mlofacetonitrile
•Transferthefiltratetoaseparatoryfunnelalongwith750mlofwater,5gsodiumchloride,100mlof5%dichloromethane:petroleumetherandshake
•Filtertheetherlayerover2ganhydroussodiumsulfate
•Repeatextractionwith50mlof5%dichloromethane:petroleumether
•Rinsewith10mlofpetroleumetherandcombineextracts
•Evaporatetheextracttodryness
•Dissolvetheresiduein10mlofpetroleumether
SPE-Florisil
GC/MSFrisonetal.(1999)
Table 1. Extraction and analysis methods reported in the literature for the determination of various pesticidesin beeswax
15
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
Table 1. Extraction and analysis methods reported in the literature for the determination of various pesticidesin beeswax (continued)
AnalytesSample
PretreatmentExtraction
Clean-up
Final determination/detection
Reference
Fluvalinate ---
•Dissolve0.5gbeeswaxin3.5mln-hexane
•Extractinultrasonicbathfor20minatroomtemperature
•ApplyextracttoExtrelut3extractioncolumn
SPE-Florisil
GC-ECDTsigourietal.
(2000)
Amitrazresidues,bromopropylate,chlordimeform,
cymiazole,chlorfenvinphos
---
•Dissolve2gofbeeswaxin15mlofmethanol
•Extractinultrasonicbathfor1hatroomtemperature
•Centrifugateat9000xgfor20minat20°C
•Decantsupernatantandplaceindeep-freezerforatleast2h
•Centrifugateat10000xgfor15minat-4°C
•Decantsupernatant
•Mix7mlofsupernatantwih63mloftris(hydroxymethyl)-aminomethanebuffer
SPE-C18
GC/MSKortaetal.
(2003)
Bromopropylate,fluvalinate,
coumaphos,flumethrin
---
•Dissolve1.0gbeeswaxin10mlhexane
•Extractinultrasonicbathfor45min
•Placesampleindeep-freezerforatleast1.5h
•Centrifugateat10000xgfor15minat-5°C
•Decantsupernatantandplaceagainindeep-freezerforatleast4h
•Centrifugateat10000xgfor15minat-5°C
•Decantsupernatantandwarmtoroomtemperature
SPE-Florisil
GC-ECDBogdanovet
al.(2003)
Para-dichlorobenzene
---
•Dissolve1gofgroundbeeswaxin10mlethanol
•Extractinultrasonicbathfor1h
•Centrifugatefor20minat4°C
•Decantsupernatantandfreeze
•Centrifugatefor20minat4°C
•Decantsupernatant
SPE-C18
GC-FIDBogdanovet
al.(2004)
16
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
Table 1. Extraction and analysis methods reported in the literature for the determination of various pesticidesin beeswax (continued)
AnalytesSample
PretreatmentExtraction Clean-up
Final determina-tion/ detection
Reference
Lindane,chlorpy-riphos,z-chlor-fenvinphos,endo-sulfanAandB,4-4’-DDE,4,4’-TDE,acrinathrine,bromopropylate,tetradifon,coumaphos,fluvalinate
•Boilwater-beeswaxmixturefor20min.
•Substitutewaterandheatagain.
•Removeimpuritieswithascraper.
•Dissolve0.1gbeeswaxin10mln-hexane
•Add10mlacetonitrileandshakefor15min
•Add2mlmethanoltoimprovetheseparationofphases
•Collectacetonitrilephase
SPE-Combined
ODS-polymericcartridges
GC-ECDJiménezetal.(2004)
Chlordimeform,chlorfenvinphos,bromopropylate,coumaphos,tetradifon,acrinathrin,fluvalinate
•Boilwater-beeswaxmixturefor20min.
•Coolatroomtemperature
•Removeimpuritieswithascraper.
•Repeatthetreatmenttwicemore
•Dissolve0.1gbeeswaxin10mln-hexane
•Add10mlacetonitrileandshakefor15min
•Add2mlmethanoltoimprovetheseparationofphases
•Collectacetonitrilephaseandevaporate
•Dissolvetheresiduein1mlacetoneandpassthroughaPTFEfilter
--- GC/MSJiménezetal.(2005)
Fluvalinate,coumaphos,bromopropylate,4-4’-dibromoben-zophenone
•Washwithwateronacolanderoverabeaker
•Dryinovenat40°Cfor2-4h.
•Dissolve0.2gbeeswaxin10mlisooctane
•Heatupto70°Cfor5min.
•Coldcentrifugationat-10°Cfor15min
•Twostepsmorewith6mlisooctane
•Combinesupernatants
SPE-Florisil
HPLC-DADAdamczyk
etal.(2007)
Azinphos-methyl,chlorpyrifos,coumaphos,cyfluthrin,cypermethrin,deltamethrin,endosulfan,fenitrothion,fenthion,lindane,malathion,methidathion,mevinphos,parathin,parathion-methyl,tau-fluvalinate,procymidone,vinclozolin
---
•Dissolve2gbeeswaxin40mlhexane•Extractinultrasonicbathbyheatingat40°C•Freezeandcentrifugateat1424xgfor15min•Decantsupernatantandevaporateat40°Cuntil6mlremained•Add6mlhexaneandthen20mlhexane:acetonitrile(1:9)•Shakeandallowtoseparate•Collectacetonitrilephase•Extarcthexanefractionagain•Collectacetonitrilephasestogetherandconcentrateto2mlonrotaryevaporator
SPE-C18
GC/MS/MSChauzat
andFaucon(2007)
17
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
REFERENCESAdamczyk S., Lázaro R., Pérez-Arquille C., Herrera A. 2007.
Determinationofsyntheticacaricidesresiduesinbeeswaxbyhigh-
performanceliquidchromatographywithphotodiodearraydetector.
AnalyticaChimicaActa581:95-101.
AdamczykS.,LázaroR.,Pérez-ArquilleC.,BayarriS.,HerreraA.
2010.Impactoftheuseoffluvalinateondifferenttypesofbeeswax
from Spanish hives. Archives of Environment Contamination and
Toxicology58:733-739.
AichholzR.,LorbeerE.1999.Investigationofcombwaxofhon-
eybeeswithhigh-temperaturegaschromatographyandhigh-tem-
peraturegaschromatography–chemicalionizationmassspectrom-
etry I. High-temperature gas chromatography. Journal of
CromatographyA855:601-615.
Bernal J.L., del Nozal M.J., Toribio L., Jiménez J.J., Atienza
J.1997.High-performanceliquidchromatographicdeterminationof
benomylandcarbendazimresiduesinapiariansamples.Journalof
ChromatographyA787:129-136.
Bogdanov S. 2004. Quality standards of pollen and beeswax.
Apiacta38:334-341.
Bogdanov, S. 2011. Beeswax: Production, Properties,
Composition and Control. In Beewax Book. Erişim adresi:
h t t p : / / w w w . b e e - h e x a g o n . n e t / e n / p r o t e c t e d - s i d -
V2F4Qm9vazIucGRm.htm,Erişimtarihi04.06.2011.
BogdanovS.,KilchenmannV.,BütikoferU.2003.Determination
of acaricide residues in beeswax: Collaborative study. Apiacta
38:235-245.
Bogdanov S., Kilchenmann V., Imdorf A.1998a. Acaricide
residues in some bee products. Journal of Apicultural Research
37(2):57-67.
Bogdanov S., Imdorf A., Kilchenmann V. 1998b. Residues in
waxandhoneyafterApilifeVAR®treatment.Apidologie29:513-524.
Bogdanov S., Kilchenmann V., Seiler K., Pfefferli H., Frey T.,
RouxB.,WenkP.,NoserJ.2004.Residuesofpara-dichlorobenzene
inhoneyandbeeswax.JournalofApiculturalResearch43(1):14-16.
Bogdanov S.2006.Contaminats of bee products. Apidologie
37:1-18.
ChauzatM.P.,FauconJ.P.2007.Pesticideresidues inbeeswax
samples collected from honey bee colonies (Apis mellifera L.) in
France.PestManagementScience63:1100-1106.
EC,2001.FinalreportofamissioncarriedoutinTurkeyfrom8
to12October2001, inordertoevaluatethecontrolofresiduesin
live animals and animal products, Report No:3389. EC Food and
Veterinary Office, Brussels (BELGIUM); Available from:
http://ec.europa.eu/food/fs/inspections/vi/reports/turkey/vi_rep_tur
k_3389-2001_en.pdf
FrisonS.,BreitkreitzW.,CurrieR.,NelsonD.,SpornsP.1999.
TheanalysisoffluvalinateinbeeswaxusingGC/MS.FoodResearch
International32:35-41.
Jan J., Černe K., 1993. Distribution of some organochlorine
compounds(PCB,CBz,andDDE)inbeeswaxandhoney.Bulletinof
EnvironmentalContaminationandToxicology51(5):640-646.
JiménezJ.J.,BernalJ.L.,NozalM.J.,AlonsoC.2004.Liquid-liq-
uidextractionfollowedbysolid-phaseextractionforthedetermina-
Table 1. Extraction and analysis methods reported in the literature for the determination of various pesticidesin beeswax (continued)
AnalytesSample
PretreatmentExtraction Clean-up
Final determina-tion/ detection
Reference
Chlorfenvinphos,fluvalinate,amitraz,bromopropylate,acrinathrin,flumethrin,coumaphos,chlorpyrifos,chlordimeform,endosulfan,malathion
---
•Dissolve0.2gbeeswaxin3mlhexane
•Heatat50°Cfor3min
•Shakegently
•Centrifugateat3300xgfor15minat-5°C
•Decantsupernatant
•Repeatextractiontwicemore
•Collectsupernatants
SPE-Florisil GC-μECD/MSSerra-BonvehiandOrantes-
Bermejo,(2010)
SPE:SolidPhaseExtraction;GC:Gaschromatography;ECD:ElectronCaptureDedector;FID:FlameIonizationDedector;HPLC:HighPerformanceLiquidChromatography;DAD:DiodeArrayDedector;ODS:Octadecylsilane;MS:MassSpectrometry;PCB:Polychlorinatedbiphenyl
18
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
tion of lipophilic pesticides in beeswax by gas chromatography-
electroncapturedetectionandmatrix-matchedcalibration.Journal
ofChromatographyA1048:89-97.
Jiménez J.J., Bernal J.L., Nozal M.J., Martin M.T. 2005.
Residuesoforganiccontaminantsinbeeswax.EuropeanJournalof
LipidScienceandTechnology107:896-902.
Korta E., Bakkali A., Berrueta L.A., Gallo B., Vicente F.,
Bogdanov S.2003. Determination of amitraz and other acaricide
residuesinbeeswax.AnalyticaChimicaActa475:97-103.
Mullin C.A., Frazier M, Frazier J.L., Ashcraft S, Simonds R,
vanEngelsdorph D., Pettis J.S.2010. High levels of miticides and
agrochemicals in North American apiaries: Implications for honey
bee health. PLoS ONE 5(3): e9754.
doi:10.1371/journal.pone.0009754
Nowacka-Krukowska H, Ludwicki J.K. 1999. Determination of
bromfenvinphos in bee products. Part II. Beeswax and propolis.
ChemiaAnalityczna44(2):235-242.
NozalM.J.,BernalJ.L.,JiménezJ.J.,GonzálezM.J.,HigesM.
2002. Extraction of thymol, eucalyptol, menthol and camphor
residues from honey and beeswax- Determination by gas chro-
matography with flame ionization detection. Journal of
ChromatographyA954:207-215.
Rosenkranz P., Aumeier P., Ziegelmann B. 2010. Biology and
controlofVarroadestructor.JournalofIntervebratePathology103:
S96-S119.
Ross B., Harvey A.J.,1981, A Rapid, inexpensive, quantitative
procedure for the extraction and analyses of Penncap-M (methyl
parathion) fromhoneybees (ApismelliferaL.),beeswaxandpolen.
JournalofAgriculturalandFoodChemistry29:1095-1096.
Serra-BonvehiJ.,Orantes-BermejoJ.2010.Acaricidesandtheirresidues in Spanish commercial beeswax. Pest ManagementScience66:1230-1235.
Sorkun K., Yılmaz B., Özkırım A., Özkök A., Gençay Ö.
Bölükbaşı D.N. 2010. Yaşam İçin Arılar. Türkiye Arı Yetiştiricileri
MerkezBirliğiYayınNo:3.Ankara.
SzerleticsTúriM,SzalaiMátrayE.2003.Honeyandwaxanaly-
sisforachrinathrinresidues.Apiacta38:34-39.
Tananaki C., Thrasyvoulou A., Karazafiris E., Zotou A. 2006.
Contaminationofhoneybychemicalsappliedtoprotecthoneybee
combsfromwax-moth (GalleriamellonellaL.).FoodAdditivesand
Contaminants23(2):159-163.
Tsigouri A. 2000.Determination of fluvalinate residues in
beeswax by gas chromatography with electron-capture detection.
JournalofAOACInternational83(5):1225-1228.
TutkunE.2000.TeknikArıcılıkElKitabı.TürkiyeKalkınmaVakfı
YayınNo:6.Ankara.
VeselyV.,MalonovaH.,TiteraD.1988.Acrinathrin,aneffective
varroacide and its residues in stores, honey and wax. Apidologie
26:321-322.
WallnerK.1992.TheresiduesofP-dichlorobenzeneinwaxand
honey.AmericanBeeJournal132(8):538-541.
WallnerK.1997.Theactualbeeswaxquality in foundations in
themarket.Apidologie28:168-171.
Wallner ,K. 1999. Varroacides and their residues in bee prod-
ucts.Apidologie30:235-248.
ZimmermannS.,GierschnerK.H.,VorwohlG.1993.Bestimmungvonbromopropylat,4-4-dibrombenzophenon,coumaphosundfluvali-natinbienenwachs.DeutscheLebensmittelRundschau89:341-343.
19
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
ÖZETBuderlemedeorganikasitlerleyapılankarkasdekontaminasyonuileilgiliçalışmalarincelendi.Organikasit-
lerinkarkasauygulanmasıilepatojenvesaprofitmikroorganizmalarıngelişimisınırlanırvesayılarıazaltılır.Sığırve tavuk eti kaynaklı gıda zehirlenmeleri organik asit uygulamaları ile azaltılabilir. Ancak kontaminasyondankorunmakiçinhijyenuygulamalarıaslaihmaledilmemelidir.Hayvanlargıdakaynaklıpatojenlerinorijiniolabile-ceğindensonyıllardaetkilidekontaminasyonuygulamalarınailgiartmıştır,dekontaminasyonlakesimhanesüre-cindeoluşabilecekkontaminasyonönemlidüzeydeazaltılabilmektedir.Organikasitlersığırvetavukkarkasıüze-rinespreylemeveyadaldırmagibiyöntemlerleuygulanmaktadır.Organikasitlergenelliklespreykabinlerikulla-nılaraktatbikedilirler.Fiziksel(subazlıyöntemler, irradyasyon-radyoterapi,ultrason,havasoğutmaveyadon-durma)vekimyasal(organikasitler,klorbazlıyöntemler,fosfatbazlıyöntemler)müdahalelerkarkasdekonta-minasyonunda uygulanabilir. Ayrıca bazı kombine uygulamalar ile daha fazla oranda azalma sağlanmaktadır.Dekontaminasyonuygulamalarıherzamanentegregıdagüvenliğisistemininbirparçasıolarakkabuledilmelidir.
Anahtar kelimeler: dekontaminasyon,organikasit,kanatlıkarkası,sığırkarkası,ethijyeni
CARCASSES DECONTAMINATION WITH ORGANIC ACIDSABSTRACTThisreviewexaminedstudiesregardingthedecontaminationofcarcasseswithorganicacids.Organicacids
areappliedtocarcassestolimitthegrowthofpathogenandsaprophyticmicroorganismsandtoreducetheir
Halil YALÇIN*1 Özlem Pelin CAN** Ali ARSLAN***
* Mersin İl Kontrol Laboratuar Müdürlüğü, TR-33130 Mersin-TÜRKİYE
**Cumhuriyet Üniversitesi Mühendislik Fakültesi, Gıda Mühendisliği Bölümü, Sivas-TÜRKİYE
*** Fırat Üniversitesi Veteriner Fakültesi, Gıda Hijyeni ve Teknolojisi Bölümü, TR-23119 Elazığ-TÜRKİYE
OrganikAsitlerleKarkasDekontaminasyonuDecontamination of Carcasses with Organic Acids
* So rum lu ya zar : [email protected]
Ad res : İl Kontrol Lab. Müd. Gazi Mh. 1314 Sk. No:7 33130 Yenişehir-Mersin
Telefon : 0505 638 23 87
20
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
GİRİŞGenelolarak,sağlıklıhayvanlarınkaslarısterilkabul
edilmektedir (Huffman, 2002; Sofos, 1994). Hijyenproblemleri hayvanın mezbahaneye getirilmesindenöncebaşlar,çiğettedevameder.Hayvanlarmezbaha-neye çeşitlibakterilerlegelebilir, karkaseksternal veintestinalpatojenlerlekontamineolabilir(Bolder,1997;Jhonsonveark.,1988).Karkas,mide-bağırsakiçeriği,feçes, deri, alet ekipman, insan teması ve karkastankarkasa çapraz kontaminasyonla kontamine olabilir(Anon. 2001). Karkastaki kontaminasyonun büyükçoğunluğupostmortembulaşmadır,buyollabulaşma-dayüzeybakterileriçokönemli yer tutar.Sığırkesimhattındaderininsoyulmasıveiçorganlarınçıkarılmasıbasamakları oldukça önemlidir, bu nedenle bu basa-maklarda çok dikkatli olunmalıdır. Çünkü bu işlemlersırasında karkasın mide-bağırsak içeriği ve deridekikirlerle bulaşma riski çok yüksektir (Bolton ve ark.,2001).Sığıretindekötükokuveyüzeydekayganlığınoluşabilmesiiçin1cm2’dekimikroorganizmasayısının1,2x106-1,0x108 kob/cm2 arasında olması gerektiğibildirilmiştir. Mikrobiyolojik faaliyet sonucu oluşanperoksitler, H2S, NH3, aromatik monoaminler (hista-min, triamin, triptamineve feniletilenaminvb.), indol,biyojenikaminler(kadaverin,putresinvb.)gibibileşik-leretteveetürünlerindelezzetverenkbozukluklarınave insanlarda ciddi sağlık sorunlarına neden olurlar.Mikroorganizmalaretteçokçeşitlibozukluklaranedenolurlar. Katula ve Katula’ya (2000) göre,Pseudomonas,Acinetobacter,Morexella,Aeromonas,Alteromonas putrefaciens, Lactobacillus, veBrochothrixthermosphactaetinbozulmasındaenetki-li olan bakterilerdir (Katula ve Katula, 2000).Pseudomonas, Lactobacillus ve Micrococcuslaryüzeyde yapışkanlığa; Streptecoccus veLactobacillus’lar asitleşmeye; Pseudomonas veClostridium’lar kokuşmaya; Pseudomonas veEnterobactericeae’larsümüksüyapıya,renkvelezzetdeğişimine;PseudomonasveBacilluscoagulanspro-teolitik etkiye; Lactobacillus’lar yeşil lekelere;
Penicillum,AspergillusveCladosporiumchaetocladi-oides küflenmeye neden olurlar (Arslan, 2002).Escherichia coli O157:H7, Salmonella spp., Listeriamonocytogenes, Campylobacter, Clostridium botuli-num,Clostridiumperfringens,Staphylococcusaureus,AeromonashydrophilaveBacilluscereusettebuluna-bilecek patojenlerdir (Katula ve Katula, 2000).Nastasijevicveark.(2009)141sığırkarkasındayaptık-larıçalışmada4karkasta (%2,8) E.coliO157tespitetmişlerdir.
Kanatlıların bağırsak içeriği, derileri ve tüylerindemikroorganizmalaryoğunolarakbulunur.Kanatlıkar-kaslarında,kesimsırasındasindirimsistemiiçeriğindenkaynaklanan kontaminasyonlar önemli bir sorundur.Broylerler kesim hattına alındıktan itibaren doğrudanve dolaylı olarak kontamine olabilmektedir. Broylerkarkasıkesimhanelerdekesimaletleri,tüyıslatma,tüyyolma, iç açma, iç organların çıkarılması, soğutma,parçalamagibiaşamalardakontamineolabilmektedir.Ayrıcaambalajlamaişlemlerisırasındavepersonel,su,alet-ekipman ile de kontaminasyon söz konusudur.(Bolton ve ark., 2001; Bremner ve Johnston, 1996;Davies ve Board, 1998; Mountney ve Parkhurst,1995;Whyteveark.,2003).Kanatlıkesimhanelerindebirimzamandaçoksayıdakesiminyapılmasıvebirçokkontaminasyon noktasının (tüy ıslatma, tüy yolma, içorganların çıkarılması ve soğutma) bulunmasındandolayı,çaprazkontaminasyonkaçınılmazdır.
Avustralya, ABD ve Japonya’da E. coli O157:H7gibipatojenbakterilertarafındanoluşturulangıdasal-gınlarısıkçagörülmüştür(Bellveark.,1994;SofosveSmith,1993).USDA-FSIS (UnitedStatesDepartmentof Agriculture-Food Safety and Inspection Service)tarafından1993’te“CattleCleanMeatProgram”(SığırEti Temizleme Proğramı) veya “Zero Tolerance” (SıfırTolerans)olarakbilinendüşüncehareketegeçirilmiştir.Sıfır tolerans, karkasın feçesten, mide-bağırsak içeri-ğinden, inek karkaslarının süt bulaşmalarından tama-men arındırılmasını ifade eder. Bu kurumlar kontrolmemurlarını, sığır karkaslarında ilk yıkamadan ve
numbers. Food poisoning caused by beef and poultry meat can be reduced with organic acid treatments.However,processhygienetopreventcontaminationshouldneverbeneglected.Inrecentyears,therehasbeenanincreasinginterestineffectivedecontaminationtreatmentsduetoanimalscanharborfood-bornepathogens,andslaughterlinecontaminationinplantscanbevirtuallypreventedbyapplyingdecontaminationtreatments.Organicacidsareappliedonpoultryandbeefcarcasseswithimmersionorsprayingtechnique.Often,organicacidsareappliedusingspraycabinets.Physical(water-basedtreatments,irradiation,ultrasound,airchilling,orfreezing)andchemicalinterventions(organicacids,chlorine-basedtreatments,orphosphate-basedtreatments)are applicable at carcasses decontamination. Besides, some combination treatments further enhanced thereduction.Decontaminationtreatmentsalwaysmustbeconsideredpartofanintegralfoodsafetysystem.
Key words: decontamination,organicacid,poultrycarcasses,beefcarcasses,meathygiene
21
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
soğutmadanöncegörülebilirtümfizikselkontaminas-yonun bıçakla tıraşlayıp uzaklaştırılması konusundaeğitime tabi tutmuşlardır (Bolton ve ark., 2001; FSIS,1993;Horne,1993).FSIS1996yılındatümkırmızıetvekanatlı eti işleyen fabrikalarda standart sanitasyonprosedürlerinin ve HACCP’in (Hazard Analysis andCriticalControlPoint)uygulamasını,HACCP’indoğru-lanmasındatemelolanSalmonellaspp.veE.coli içinmikrobiyolojik performans kriterlerinin oluşturulmasınıönermiştir (Bolder, 1997; Sofos, 1993). Amerika’dakanatlıkesimhanelerindeyıkamasuyundaorganikasit-lerinkullanılmasıFSIStarafından11.24.1992tarihinde6340noludirektifleonaylanmıştır(Skřivanová,2011).
Buderlemedekanatlıvesığırkarkaslarındakibakte-riyel yükü azaltmak veya elimine etmek için organikasitlerleyapılandekontaminasyonçalışmalarıyla ilgilimakalelerincelenerek,konuileilgilenenakademisyen-lerinilgisinesunulmuştur.
Karkas Dekontaminasyonu
Etlerdenkaynaklanangıdazehirlenmelerininönünegeçilmesi,bozulmayasebepolanmikroorganizmalarınsayısınınazaltılması,yokedilmesiveyaçoğalmalarınıngeciktirilmesineticesindehalksağlığınınkorunmasıvesoğutulmuş karkasın raf ömrünün uzatılması için bir-çokyöntemuygulanmaktadır.Organikasitlerinkarkasyüzeyine uygulanması da bu yöntemlerden biridir.Organikasitlerinbakterisidalvebakteriostatiketkisiüçfaktörebağlıdırbunlar;pH,asidinçözünmemiktarıveasitmoleküllerininözeletkisidir.Asidehassasmikroor-ganizmalar pH’nın düşmesi ile ölürler. Zayıf asitlerinçözünmemişformlarının10-600katdahaetkiliolduğubildirilmiştir.Çözünmemişasitlerdifüzyonyoluilehüc-reye girmekte ve burada çözünerek hücre pH’sınıdeğiştirmek sureti ile biyolojik aktiviteyi azaltma veyahücresel metabolizmayı engelleme yoluna giderler(Smulders,1995).
Avrupa birliğinde laktik asit ve bunların tuzlarınınkullanımıbirliğin95/2/CEnoludirektifiiledüzenlenmiş-tir(EPC,1995).Amerika’daFederalYasalarcaorganikasit ve tuzlarının antilisterial madde olarak kullanımıonaylanmıştır(FSIS,2000).Organikasitlervebunlarıntuzları(asetik,laktik,propiyonikvesorbikasit)antibak-teriyelaktivitegösterirler. Organikasitlergıdakatkısıolarak E.C., FAO/WHO ve FDA tarafından GRAS(generallyrecognizedassafe)olarakonaylanmışolupgelenekselolarakgıdakoruyucumaddeolarakkulla-nılmaktadır(SurekhaveReddy,2000).Organikasitleruygulayıcılartarafındaninhaleedilebilir,derivegözler-de irritasyona neden olabilir (Bolton ve ark., 2001).Asitlerinbakterisitetkisiuygulananasidinkonsantras-yonu,uygulamasüresiveısısıarttırılarakveyakesim-den hemen sonra uygulanması ile arttırılabilir. Asidin
letal etkisinin, ozmotik basıncı değiştirilen sukroz veNaCl gibi maddeler ile arttırılabileceği belirtilmiştir.Etkinliği yüzey yapısı, spreyleme basıncı, uygulamabölgesi, doku tipi ve mikroorganizmaya göre değişir(AndersonveMarshal,1989;Bolder,1997;DicksonveAnderson,1992).
Organikasitlerin,ucuzolması(karkasbaşına0,015-0,3$),doğalolması,çevreyezararlıolmamasıvegenelolarak güvenli kabul edilmesi (GRAS), kabinlerde veellekullanılantaşınabilirspreyleyicilerlekullanılabilme-sivediğerbirçokbileşiktenfarklıolarakuygulamadansonraoluşacakkontaminasyonlarakarşıkalıcıantimik-robiyeletkisağlayabilmesindendolayıendüstritarafın-dan potansiyel dekontaminasyon maddesi olarakkabuledilmektedir (Çalıcıoğluveark.,2002).Organikasitlerinetkilidozuuygulandığındabazenrenkbozuk-luklarına neden olur, bu durum tamponlanmış laktikasit uygulanarak engellenebilir (Bolder, 1997).Smulders (1995),%1-2gibiasetikve laktikasitetkilidozlarınınkullanılmasıileetyüzeyininduyusalkalitesi-neönemlibiretkietmediğiniyanısıraasetikasitkulla-nıldığı zaman duyusal özelliklerin laktik aside göredahafazlaetkilendiğinibildirmiştir.
Organikasitkarışımlarının(laktik,asetik,propiyonikasit,vb.)Gram(-)bakterilerüzerindedahafazlainhi-bitör etki yaptığı bildirilmektedir. Karkasın asılmasın-dan ve yıkamadan dolayı boyun kısmının bakteriyoğunluğudahayüksektir.Martinez(2002),tarafındanyapılançalışmadasığırkarkasınınboyunbölgesiyıkan-dıktan sonra % 1,5 laktik asit, 500 IU/ml nisin veyakarışımları uygulanmış ve çalışma sonucunda laktikasitvenisininbirliktekullanımınıntoplammezofilbak-teri,toplamkoliformveE.colisayısındaçokazdüşüşsağlandığı bildirilmiştir. Yine aynı araştırmacı tarafın-danlaktikasitvenisinkarışımınınspreylemeşeklindesığırkarkasınauygulanmasısonucundabakteripopü-lasyonunun2logkob/cm2kadarazaldığıbildirilmiştir
Kanatlılarda dekontaminasyonun en son ve enönemlibasamağıolansoğutmasuyunadaldırmaişle-minin Salmonella için çapraz kontaminasyon noktasıolduğu belirtilmiştir (Lillard, 1989). Arslan ve ark.(2006), yaptıkları çalışmada deneysel olarakSalmonella spp. kontamine edilmiş kanatlı karkasla-rında%1laktikasitkullanarak1,02logve%2laktikasitkullanarak2,96logazalmasağlamışlardır.Karkasdekontaminasyon yöntemlerinin amacı fekal orijinlikontaminasyonunminimizeedilmesidir.
Laktik Asit
Laktikasit(LA)karkaslarındekontaminasyonuama-cıylaençokkullanılanorganikasittir.%2’liklaktikasitsoğutulmuşkarkaslarauygulandığındaetkisininçokazolduğu,ancak%4’lüklaktikasituygulandığındabak-
22
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
teri sayısında önemli düşüş sağlandığı bildirilmiştir(Castillo ve ark., 2001a). Laktik asidin ayrışmama(andissosiye)yeteneğindendolayıbakterihücremem-branındaki proton pompasını etkisiz hale getirerekbakterisitetkisağladığı ifadeedilmiştir (Goncalvesveark.,2005;Zeitz,2004).
Mulderveark.(1987),SalmonellaTyphiileyaptıkla-rı bir çalışmada, kanatlı karkaslarını bakteri yükü 107kob/mlolankontaminasyonsıvısıilekontamineetmiş-ler. Daha sonra %1’lik laktik asit uygulaması ile 10dakikada bakterilerin hepsinin inhibe edildiğini bildir-mişlerdir.Laktikasituygulamasıilehafifbirrenkdeği-şikliğiolmasınarağmenherhangibirkötükokubelirt-memişlerdir. İzat ve ark. (1988), Soğutma işlemindensonrasuniolarakSalmonellaspp.aşılanmışkarkasla-ra %2-5 laktik asidi spreyleme yolu ile uygulamışlar.YapılanbuuygulamanınSalmonellaspp.üzerindeher-hangi bir etki oluşturmadığını bildirmişlerdir. Gill veBadoni (2004), sığır etine spreyleme yöntemi ile %4’lüklaktikasituygulamasından5.ve60.dakikadaalı-nanörneklerdeanaerobbakteriler,koliformveE.colisayısında≥ 1,5logkob/cm2düşüşsağlandığıbildiril-miştir.Fakat%2laktikasituygulamasında60.dakika-daalınanörneklerde1log,%4laktikasituygulama-sında ise≤ 2 logazalmasağlandığınıbildirerek,%4laktikasidinçiğetindekontaminasyonundakullanılabi-leceğinibelirtmişlerdir.
Laktikasitveyaasetikasidin55oC’de,karkaslaraspreylenmesiyle Salmonella ve E. coli O157:H7’ninsayısıüzerindeinhibeedicietkigösterdiğibelirtilmiştir(Castilloveark.,2001a).%2asetikasitve%2laktikasidin1/1sıcak(55oC)karışımıilespreylenenfiletolar-damuhafazasüresince(84gün,-1oC)psikrofil,aerob,anaerob ve laktik asit bakterilerinin sayısında düşüştespitedilmiştir(Goddartveark.,1996).
Sıcakkarkasyüzeyindepatojenbakterilerinvarlığı-nıazaltmadaorganikasitlerinetkinliğibiliniyor,ancaksoğutulmuş karkasların dekontaminasyonunda uygu-lanması tamolarakdeğerlendirilmemiştir.Yapılan birçalışmada (Castillo ve ark., 2001a), budlar E. coliO157:H7 ve Salmonella Typhimurium ile kontamineedilmiş,soğutmadanöncesadecesuveyasuyutaki-ben15saniyelaktikasitspreylenmiş(250ml,%2lak-tik asit, 55 oC), 24 saat 4oC’de bekletildikten sonrabutlara30saniyelaktikasitspreylenmiş(500ml,%4laktik asit, 55oC). Soğutmadan önce su ile yapılanspreylemedeherikipatojen3,3-3,4logazaltılmıştır.Suvelaktikasituygulamasıile5,2logdüşüşsağlanmıştır.Soğutma öncesi su ve su+laktik asit uygulanan kar-kaslarasoğutmasonrasılaktikasitspreylenmesiylebiröncekidüşüşeilavetenE.coliO157:H7sayısı2,0-2,4log, S. Typhimurium sayısı 1,6-1,9 log azaltılmıştır.
Soğutmadan sonra karkaslarda patojenleri elimineetmekiçinorganikasitlerkullanılabilir.Özelliklesoğut-ma öncesi su, su+laktik asidin kullanılmasının dahaetkiliolduğuifadeedilmiştir.Laktikasidinsoğukdepo-lamasüresinceantimikrobiyeletkinliğinindevamettiğiE.coliO157:H7veSalmonellagibibakterilerinçoğal-malarınınengellendiğibelirtilmiştir.
Castilloveark.(2001b),sığırkarkaslarınasoğutmaöncesi sıcak su ve % 4 laktik asit spreylemişler.Karkasyüzeybölgelerinebağlıolaraktoplammezofilbakteri sayısında3,0-3,3düşüşsağlanmış,E.coli vekoliform sayısı tespit edilemez seviyeye düşürülmüş-tür.Koliformgrububakteriler,döşte%52,5,boyunda%62,5vediğerkarkasparçalarında%92,5oranındabelirlenmiş, laktikasituygulamasındansonrabubak-terilertamamenyıkımlanmıştır.Aynıörneklerdesırasıy-laE.colidağılımı%7,5,%7,5ve%30,0olaraksap-tanırken, laktik asit uygulamasından sonra bakterilertamameninhibeedilmiştir.Toplammiktarı500mlolan% 4 laktik asidin 55 oC’de 35 saniye soğuk karkasyüzeyine uygulanmasıyla önemli bakteriyel azalmanınsağlandığıbelirtilmiştir.
Kombineuygulamalarlakarkasdekontaminasyonudeğişik maddeler kullanılarak birçok araştırmacı tara-fındançalışılmıştır.YalçınveArslan(2011),kanatlıkar-kaslarınıdaldırmayöntemiile%2ve%4laktikasidetabi tutarak deneysel olarak inoküle edilen E. coliO157:H7’de sırasıyla 1,91 log10 kob/ml, 2,44 log10kob/ml ve Listeria monocytogenes’te sırasıyla 1,84log10kob/mlve2,15log10kob/mlazalmasağlamış-lardır.Aynıçalışmada%2LAve%8TSP’ninkombineuygulaması ile E. coli O157:H7 sayısında 2,5 log10kob/mlveListeriamonocytogenessayısında2,6log10kob/mlazalmasağlanmıştır.
Çalıcıoğluveark. (2002),noniyoniksürfektanolantween20’yiönspreylemeilesığırkarkasınalaktikasit-tenöncespreylemişler.Büyüketparçalarına(≤5kg),suilespreylemeninardındantekbaşına%2laktikasit,%2laktikasit+%5sodyumbenzoat(SB)ve%2lak-tikasit+%0,05SB+%5tween20(60ml)spreylen-diktensonra3gün4oC’dedepolamışlar.AraştırmadaE.coliO157:H7sayısında1,6-1,8logkob/cm2düşüştespitedilmiştir.Büyüketparçaları(≤5kg),tween20ile ön spreylemeye tabi tutulduğunda laktik asidinetkinliğinin arttığı belirtilmiştir (2,8-3,2 log kob/cm2).Karkas % 5 tween 20 ile muamele edildikten sonrasterilsuileyapılanyıkamasonucundaE.coliO157:H7sayısında2,0,laktikasidlisuileyıkamada3,1velaktikasit+sodyumbenzoatkombinasyonuileyıkamada3,4logkob/cm2düşüşsağlanmıştır.Karkaslarönce%5tween 20 ile ön spreylemeye tabi tutulup arkasındanlaktik asit kullanılmasının E. coli O157:H7 üzerindedahaetkiliolacağıbildirilmiştir.
23
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
Laktikasitlekarkasdekontaminasyonuorganolep-tikavantajlardasağlamaktadır.Prasaiveark. (1991),% 1 laktik asidle sığır karkaslarının spreylenmesininrenk üzerine etkisinin olmadığını belirtmişlerdir. Uijl(1999),yaptığıçalışmada%1laktikasituygulamasın-dansonrasığıretindereversiblbirrenkkaybıvedanaetinde%2laktikasituygulamasıileönemlibirdeğişik-liğin olmadığını gözlemlemiştir. Laktik asidin yüzeyspreylenmesi ilesığıretinin renginönemsizderecedeetkilendiğibildirilmiştir(Pipekveark.,2005).Genelola-rak sığır karkasında laktik asidin E. coli O157:H7’yekarşı, asetik asitten daha etkili olduğu belirtilmiştir(Hardinveark.1995).
Asetik asit
Asetikasitindeğişikkonsantrasyonlarınınkanatlıkar-kasında aerobik bakteri, koliform, Enterobacteriaceae,E.coliveSalmonellaüzerinedeğişikderecelerdeetkiliolduğu belirtilmiştir. Fabrizio ve ark. (2002), yaptıklarıçalışmadakanatlıkarkasınaasetikasitspreylenmesiilekoliform ve enterobacteriaceae sayısının azalmadığınıbununyanındadaldırmavesoğutma(4oC’de45dk.)ilekoliform sayısında 3 log, E. coli sayısında 2,8 log, S.Typhimuriumsayısında1,4logveaerobikbakterisayı-sında2,0logazalmasağladıklarınıbildirmişlerdir.Zhaove Doyle (2006), satış reyonlarından aldıkları tavukkanatlarını %2 asetik asite daldırarak (4 oC’de 20-50saniye)Campylobacterjejunisayısında1,2-1,4logazal-masağlamışlardır.
Sakhareveark.(1999),yaptıklarıçalışmadakesim-hanedekanatlıkarkasına%0,5asetikasidispreyşek-linde uygulayarak doğal kontaminasyonu 0,1-1,0 logazaltmışlardır.Bununyanındaaynışartlardadaldırmauygulayarak koliform sayısında 0,9-2,2 log azalmasağlamışlardır. Yine bu çalışmada Staphylococcusaureussayısıspreylemeile1,3-1,8logdaldırmaile0,5-0,7 logazaltılmıştır.Koliformgrububakterileredaldır-mayöntemidahaetkiliolurkenStaphylococcusaure-us’akarşıasetikasidispreylemenindahaetkiliolduğugörülmektedir. Kesim hattında ardışık şekilde birkaçnoktadan dekontaminasyon uygulaması ile bakteriyelyükün azaltılmasında daha iyi sonuç alınacağı vurgu-lanmıştır.
Sağlıklıhayvanlarınderisi,tüylerivegastrointestinalkanalı mikroorganizma içerir (Sofos, 1994).Mezbahaneyegetirilmedenöncehayvanınyıkanması,hayvanaeksternalkaynaklardan(kıl,kir,dışkı,çamur…vs.)oluşacakbulaşmayıazaltır(Schnellveark.,1995;Sofosveark.,1998).Sığırdersindenkaynaklıkontami-nasyonuönlemekiçinkir,dışkıvekıllarıntaşıdığımik-roorganizmalarakarşıkimyasalepilasyonunetkinliğiniaraştırmak içindeğişikçalışmalaryapılmıştır (BowlingveClayton,1992;Carlsonveark.,2008).Kimyasalepi-
lasyon amacı ile yıkama kabinlerinde sodyum sülfit,hidrojen peroksit ve su uygulamaları (Bowling veClayton,1992)yanısıraasetikasitileilgiliçalışmalardayapılmıştır(Carlsonveark.,2008).Sığırderisinelabo-ratuar şartlarında değişik derecelerde %10 asetikasidispreyşeklindeuygulanması ile aerobikbakterisayısında23oC’de0,8log,55oC’de2,6log/100cm2,koliformsayısında(55oC’de)2,7log/100cm2,E.coliO157:H7sayısında23oC’de0,7log55oC’de2,1logazalmasağlamışlardır(Carlsonveark.,2008).BununlaberaberMiesveark.(2004),yaptıklarıçalışmada;sığırderisineinoküleedilenSalmonellaTyphimuriumsayısı-nı konsantrasyona (%2-6) bağlı olarak 2,4-4,8 logazaltmışlardır. Asetik asitin daha yüksek konsantras-yonlarının kullanılmasının hayvan refahı açısındanuygunolmayacağıgözönündebulundurulmalıdır.
Bellveark.(1997),sığırkarkasındaasetikasidinikiaşamalıspreylenmesiile(25oC,15sn)E.coli,ListeriainnocuaveS.Wentworthsayısında2,4-3,5logazalmasağladıklarınıbildirmişlerdir.Ticarişartlardaasetikasi-din kesim hattının son aşamasında uygulanması ilekarkasta doğal olarak bulunan koliform,EnterobacteriaceaeveE.colisayısın0,6-1,4logazal-dığını bildirilmiştir (Algino ve ark., 2007). Buna karşınAvens ve ark. (1996), kesimhanede asetik asidin ikikere sprey şeklinde uygulanması ile (49 oC) hemenhemen hiç azalma sağlanmadığını rapor etmişlerdir.Hardinveark.(1995),suveasetikasidinkombinekul-lanılması (35 ve 55 oC) ile sığır karkasında E. coliO157:H7sayısında2,4-3,7veS.Typhimuriumsayısın-da3,2-5,1logazalmasağlamışlardır.BununlaberaberCutter(1999),suveasetikasituygulamasıile(40oC)S.Typhimuriumsayısında2,9 logazalmasağlamıştır.Bu sonuçlardan da görüleceği gibi sıcaklıkla beraberasetik asidin etkisi artmaktadır. Bell ve ark. (1997),H2O2’yi takiben asetik asit veya sodyum bikarbonatkombinasyonunun,bumaddelerintekbaşınakullanıl-masındandahaetkiliolduğunubildirmişlerdir.
Peroksiasetik Asit
Peroksiasetikasit(POAA)sığırvetavukkarkasındadekontaminasyonamacıilekullanılanbirdiğerorganikasittir. Peroksiasetik asidin düşük dozunun (%0,02)etteaerobbakterisayısı,koliformveE.coliüzerineçokaz (<1 log)etkiliolduğubildirilmiştir (Gillve Badoni,2004).Soğutulmuşsığırkarkasıyüzeyineasetikasidinsprey seklinde uygulanmasının (200 ppm, 43 oC) E.coli O157:H7 ve S. Typhimurium etkisinin olmadığıbelirtilmiştir. POAA’in 600 ppm dozunda 45 ve 55oC’deuygulanmasıiledeaynısonucavarılmıştır.1000ppm dozunda uygulamanın E. coli O157:H7 ve S.Typhimurium sayısını sırasıyla 1,7 ve 1,3 log azalttığıbelirtilmiştir. POAA’in sıcak karkasa uygulanması ile
24
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
herikibakterisayısında0,7logazalmasağlandığıbil-dirilmiştir (King ve ark., 2005). Penny ve ark. (2007),yaptıkları bir çalışmada deneysel olarak kontamineedilensıcaksığırkarkasındaE.coliO157:H7sayısın-da oldukça yüksek bir azalma (3,56-2,59 log) sağla-mışlardır. Çok önemli bir insan patojeni olan E. coliO157:H7’ninsığırkarkasındakiseviyesininazaltılmasıiçin POAA formülasyonlarının uygulanmasının etkiliolacağı sonucuna varılmaktadır. Bu çalışmaların yanısıraDelRioveark.(2007),ticaribirperoksiasetikasitpreparatı olan Inspexx’i (Ecolab Inc., St. Paul, MN.,USA)piliçkanadınauygulamışlardır.Daldırmayöntemiile (18 oC, 15 dk.) değişik bakteri türlerinde 1,1 logazalma sağlanmasına rağmen koliform bakteriler,Enterobacteriaceae,laktikasitbakterilerivepsikrotrofbakterilereçokazetkiettiğibildirilmiştir.
Diğer Organik Asitler
Laktikveasetikasidinyanısıradiğerorganikasitler-le(sorbik,propiyonik,bütirik,kaproikasitgibi)yapılmışdeneysel çalışmalarda vardır. Cutter ve Siragusa(1994),%1-5sitrikasitkullanarak(24oC)sığırkarka-sındaE.coliO157:H7sayısını1,2-1,8logazaltmışlardır.
Sorbikasitvebununtuzlarınıngıdakoruyucuolarakfaydalarıvardır.Bununyanındaantimikotikaktiviteveözellikleaerobikkatalaz(+)bakterilerekarşıinhibisyonözelliği vardır (Thomas, 2000). Suksinik asitin %3’lükkonsantrasyonukullanılarak(60oC)kanatlıderisindeyapılan çalışma neticesinde Salmonella spp. sayısıazaltılamamıştır (Juvenveark.,1974).Benzerşekildedüşükdoz(10mg/l)asetikasidin4oC’desığırkarka-sında kullanılmasının etkisiz bir dekontaminasyonuygulamasıolduğusonucunavarılmıştır(Avensveark.,1996).
İnsanlarda bakteriyemi ve enteritise sebep olanArcobacter butzleri, kanatlı derisindeki sayısı 17 ayrıorganikasit(asetik,propiyonik,bütirik,kaproik,kapri-lik, kaprik, laurik, myristik, palmitik, sorbik, benzoik,fenilasetik,fumarik,suksinik,laktik,malikvesitrikasit)kullanılarakdeğişikoranlardaazaltılmıştır.BuorganikasitlerdenbazılarınınkanatlıderisindeA.butzleriüzeri-ne etkileri şöyledir; asetik asit 1,54 log, kaproik asit
1,03log,laurikasit<0.1,myristikasit1,48log,palmi-tikasit2,55log,fumarikasit1,30log,malikasit0,78log, sitrik asit 0,82 log azalma sağlamıştır.Araştırmacılarkanatlıderisineuygulananorganikasit-lerdenduyusalolarakenuygunununbenzoikasitoldu-ğunubelirtmişlerdir(Skřivanováveark.,2011).
Sonuç olarak, son yıllarda gelişen teknoloji küçükveyabüyükkarkasparçalarınakısasüredeuygulanabi-lir,ucuzveuzunsüreetkilidekontaminasyonavantajısağlamaktadır.Karkasdekontaminasyonundadeğişikorganikasitlerkullanılmasınarağmendeneyselolaraklaktikasit,asetikasitvebunlarınklorvetrisodyumfos-fatkombinasyonlarınındahaçokkullanıldığıgörülmek-tedir. Asetik ve laktik asit karkasdaki bakteriyel yüküazaltmadaetkilimaddelerdir.Bakteriyelyüküazaltma-dadaldırmaveardındansoğutmauygulanmasısprey-lemeveyadaldırmanıntekbaşınauygulanmasıilesağ-lanandan daha fazla etki göstermektedir.Dekontaminasyonunetkinliğiuygulamaşekline(daldır-ma, soğutma, sprey vs.) konsantrasyona, uygulamasıcaklığına,maruzkalmasüresine,uygulamanoktasınave kontaminasyon seviyesine göre değişir. Karkasdekontaminasyonundaorganikasitlervediğerkimya-sallarkullanılırkenuygulamadozu,sağlığaolanetkisi,ekolojiketkilerivekorozivetkilerigözönündebulundu-rulmalıdır. İncelenen araştırmalarda organik asitlerinkarkasta bulunabilecek bir çok mikroorganizmayakarşıdeğişikoranlardaetkiliolduğuvurgulanmaktadır.Kesimhanelerdeuygulanantümkarkasdekontaminas-yon yöntemlerine rağmen et kaynaklı patojenler tamolarakengellenememektedir.Kesimhanelerdeuygula-nan dekontaminasyon yöntemleri güvenli, ekonomik,kolay uygulanabilir, çevreye zararsız, ürünün organo-leptik özelliklerini değiştirmeyen ve tüketiciler tarafın-dankabuledilebilirolmasıgerekir.
Karkastaki bakteriyel yükü azaltmak amacı ileuygulanan dekontaminasyon yöntemleri her zamangıda güvenliği sistemine entegre bir şekilde düşünül-melidir(Loretzveark.,2010).Böylecegüvenligıdaüre-timinekatkısağlanarakhalksağlığıkorunmuşveetle-rinrafömrüuzatılmışolur.
25
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
KAYNAKLARAlginoR.J.,InghamS.C.,ZhuJ.2007.Surveyofantimicrobial
effectsofbeefcarcass interventiontreatments inverysmallstate-
inspectedslaughterplants.JournalofFoodSci.,72:173-179.
AndersonM.E.,MarshalR.T.1989.Interactionofconcentrati-
onandtemperatureofaceticacidsolutiononreductionofvarious
speciesofmicroorganismsonbeefsurfaces.J.FoodProt.,52:312-
315.
Anon.2001.KanatlıEtleriveGıdaGüvenliği.BeyOfset.Ankara.
Türkiye.
Arslan A. 2002. Et Muayenesi ve Et Ürünleri Teknolojisi.
MedipresMatbaacılık.Malatya.184-195.
ArslanA.,YalçınH.,DikiciA.,ÖzdemirP.,AydınI.,ÇalıcıoğluM.
2006. Salmonella ile kontamine edilmiş tavuk karkaslarında laktik
asit,cetylpyridiniumklorid,trisodyumfosfat’ınvetween20ilekom-
binasyonlarının antibakteriyel etkisinin incelenmesi. 2. Ulusal
Veteriner Gıda Hijyeni Kongresi (Uluslararası Katılımlı). İstanbul,
Türkiye.18-20Eylül2006.Sözlüsunu.
AvensJ.S.,ClaytonP.,JonesD.K.,BolinR.,LloydW.,Jankow
D.1996.Aceticacidspray ineffectiveonbeefcarcasseswith low
bacteriacounts.Lebens.WissenschaftundTech.,29:28-32.
BellB.P.,GoldoftM.,GriffinP.M.,DansM.A.,GordonD.C.,
TarrP.J.,BartlesonC.A.,LewisJ.H.,BarretT.J.,Wells J.W.,
Baron R., Kabayashi J. 1994. A multi state outbreak of E. coli
O157:H7–associatedbloodydiarrheaandhemolyticuremicsyndro-
me from hamburgers, the Washington experience. J. Am. Med.
Assoc.272:1249-1353.
BellK.Y.,CutterC.N.,SumnerS.S.1997.Reductionoffood-
borne microorganisms on beef carcass tissue using acetic acid,
sodium bicarbonate, and hydrogen peroxide spray washes. Food
Mic.,14:439-448.
BolderN.M.1997.Decontaminationofmeatandpoultrycar-
casses.TrendsinFoodScienceandTechnology,8:221-227.
BolderN.M. (1997).Decontaminationofmeatandpoultry
carcasses.TrendsinFoodScienceandTechnology,8,221-227.
BoltonD.J.,DohertyA.M.,SheridanJ.J.2001.BeefHACCP:
intervention and non-intervention systems. İnt. J. of Food
Microbiology,66:119-129.
BowlingR.A., ClaytonR.P.1992.Method fordehairingani-
mals.U.S.PatentNumber5:149-295.
BremnerA.,JohnstonM.1996.Poultrymeathygieneand ins-
pection.W.B.SaundersCompanyLtd.London.UK.
CarlsonB.A.,GeornarasI.,YoonY.,ScangaJ.A.,SofosJ.N.,
Smith G. C., Belk K. E. 2008. Studies to evaluate chemicals and
conditions with low-pressure applications for reducing microbial
countsoncattlehides.JournalofFoodProtection,71:1343-1348.
Castillo A., Lucia L. M., Roberson D. B., Stevenson T. H.,
MercadoI.,AcuffG.R.2001a.Lacticacidspraysreducebacterial
pathogensoncoldbeefcarcasssurfacesandinsubsequentlypro-
ducedgroundbeef.J.FoodProtection,64(1):58-62.
CastilloA.,LuciaL.M.,MercadoI.,AcuffG.R.2001b.In-plant
evaluationoflacticacidtreatmentforreductionofbacteriaonchil-
ledbeefcarcasses.J.Food.Prot.,64(5):738-740.
CutterC.N.1999.Combinationspraywashesofsaponinwith
wateroraceticacidtoreduceaerobicandpathogenicbacteriaon
leanbeefsurfaces.JournalofFoodProtection,62:280-283.
CutterC.N.,SiragusaG.R.1994.Efficacyoforganicacidsaga-
instEscherichiacoliO157:H7attachedtobeefcarcasstissueusing
apilotscalemodelcarcasswasher.J.ofFoodProt.,57:97-103.
ÇalıcıoğluM.,KapsarC.W.,BuegeD.R.,LuchanskyJ.B.2002.
EffectivenessofsprayingwithTween20andlacticacidindeconta-
minatinginoculatedE.coliO157:H7andindigenousE.colibiotype
Ionbeef.J.Food.Prot.,65:26-32.
Davies A, Board R.1998.The microbiology of meat and
poultry.BlackieacademicandProfessional.UK.
delRíoE.,Panio-MoránM.,PrietoM.,Alonso-CallejaC.,Capita
R.2007.Effectofvariouschemicaldecontaminationtreatmentson
natural microflora and sensory characteristics of poultry. Int. J. of
FoodMicrobiology,115:268–280.
DicksonJ.S.,AndersonM.E.1992.Microbiolgicaldecontami-
nationoffoodanimalcarcassesbywashingandsanitizingsystems:
AriviewinJ.FoodProt.55:133-140.
EuropeanParliamentandoftheCouncil(EPC).1995.European
Directive 95/2/CE relative to food additives other than colors and
sweeteners.OfficialJournal,L61:1–40.
Fabrizio K. A., Sharma R. R., Demirci A., Cutter C. N. 2002.
Comparisonofelectrolyzedoxidizingwaterwithvariousantimicro-
bial interventionstoreduceSalmonellaspeciesonpoultry.Poultry
Science,81:1598–1605.
Food Safety and Inspection Service (FSIS). 1993. Immediate
actions: Cattle clean meat program. FSIS Correlation Packet,
InterimGuidelinesforInspectors.FSIS,UnitedStatesDepartmentof
Agriculture,Washington,DC.
FoodSafetyandInspectionService(FSIS).2000.Foodadditives
for use in meat and poultry products: Sodium diactetate, sodium
acetate,sodiumlactateandpotassiumlactate.FederalRegister,65:
3121–3123.
GillC.O.,BadoniM.2004.Effectsofperoxiaceticacid,acidifi-
edsodiumchloriteorlacticacidsolutionsonthemicrofloraofchil-
ledbeefcarcasses.Int.J.ofFoodMicrobiology,91:43-50.
GoddartB.L.,MikelW.B.,ConnerD.E.,JonesW.R.1996.Use
oforganicacidstoimprovethechemical,physicalandmicrobialatt-
ributesofbeefstriploinsstoredat-10Cfor112days.J.FoodProt.,
59:849-853.
GoncalvesA.C.,AlmeıdaR.C.C.,AlvesM.A.O.,AlmeıdaP.F.
2005.Quantitative investigation on the effects of chemical treat-
mentsinreducingListeriamonocytogenespopulationsonchicken
breastmeat.FoodControl,16(7):617-622.
HardinM.D.,AcuffG.R.,LuciaL.M.,OmanJ.S.,SavellJ.W.
1995.Comparisonofmethodsfordecontaminationfrombeefcar-
casssurfaces.JournalofFoodProtection,58,368-374.
HorneW.S.1993.Trimmingdefects-beefcarcassesandbone-
less beef. Notice to inspectors-in-charge and plant operations.
March2.UnitedStatesDepartmentofAgriculture,FoodSafetyand
InspectionService,Washington,DC.
26
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
Huffman R. D. 2002. Current and future Technologies for the
decontamination of carcasses and fresh meat. Meat Science, 62:
285-294.
İzatA.L.,AdamsM.H.,ColbergM.,ReıbermanA.,WaldroupP.
W.1988.productionandprocessingstudiestoreducetheinciden-
ceandSalmonellaoncommonbroilers.Journaloffoodprotection,
52(9):670-673.
JhonsonJ.L.,DoyleM.P.,CassensR.G.,SchoneiJ.L.1988.
FateofL.Monocytogenesintissuesofexperimentallyinfectedcatt-
leandinhardsalami.AppliedEnvironmentalMicrobiology,54:497-
501.
JuvenB.,CoxN.A.,MercuriA.J.,ThompsonJ.E.1974.AHot
AcidTreatmentforEliminatingSalmonellaFromChickenMeat’inJ.
MilkFoodTechnol.,37(5):237-240.
Katula K. L., Katula A.W. 2000. Microbial ecology of different
typesoffood-freshredmeats.InB.M.Lund,T.C.Baird-Parker,ve
G.W.Gould(Eds.,themicrobiologicalsafetyandqualitiyoffood.
Gaithersburg,M.D.,ApsenPublishers,Inc.359-388
King D. A., Lucia L. M., Castillo A., Acuff G. R., Harris K. B.,
SavellJ.W.2005.Evaluationofperoxyaceticacidasapost-chilling
interventionforcontrolofEscherichiacoliO157:H7andSalmonella
Typhimuriumonbeefcarcasssurfaces.MeatScience,69:401–407.
LillardH.S.1989.Theimpactofcommercialprocessingproce-
dures on the bacterial contamination and cross-contamination of
broilercarcasses.Journaloffoodprotection,53(3):202-204.
LoretzM.,StephanR.,ZweifelC.2010.Aantimicrobiyalactivity
of decontamination treatments for poultry carcasses: a literature
survey.FoodControl,21:791-804.
MartinezY.B.,FerrerK.,SalasE.M.2002.Combinedeffectof
lactic acid and nisin solution in reducing levels of microbiological
contaminationinredmeatcarcasses.J.FoodProt.,65(11):1780-
1783.
MiesP.D.,CovingtonB.R.,HarrisK.B.,LuciaL.M.,AcuffG.
R.,SavellJ.W.2004.Decontaminationofcattlehidespriortosla-
ughterusingwasheswithandwithoutantimicrobialagents.Journal
ofFoodProtection,67:579-582.
Mountney G. J., Parkhurst C. R. 1995. Poultry Products
Technology.FoodProductsPres.USA.
MulderR.W.,VanderhustM.C.,BolderN.M.1987.Salmonella
decontaminationofbroilercarcasseswithlacticacid,l-cysteinand
hydrogenperoxide.PoultryScience,66:1555-1557.
Nastasijevic I.,MitrovicR.,BuncicS.2009.Theoccurrenceof
EscherichiacoliO157in/onfaeces,carcassesandfreshmeatsfrom
cattle.MeatScience82:101–105.
PenneyN.,BigwoodT.,BareaH.,PulfordD.,LeRouxG.,Cook
R.,JarvisG.,BrightwellG.2007.Efficacyofaperoxyaceticacidfor-
mulationasanantimicrobialinterventiontoreducelevelsofinocula-
tedEscherichiacoliO157:H7onexternalcarcasssurfacesofhot-
bonedbeefandveal.JournalofFoodProtection,70:200-203.
PipekP.,SikulovaM.,JelenikovaJ.,IzumimotaM.2005.Colour
changesaftercracassesdecontaminationbysteamandlacticacid.
MeatScience,69:673-680.
PrasaiR.K.,AcuffG.R.,LuciaL.M.,HaleD.S.,SavellJ.W.,
MorganL.B.1991.Microbiologicaleffectsofaciddecontamination
of beef carcasses at various locations in processing. J. of Food
Processing,54(11):868-872.
SakhareP.Z.,SachindraN.M.,YashodaK.P.,NarashimaRao
D.1999.Efficacyofintermittentdecontaminationtreatmentsduring
processing in reducing the microbial load on broiler chicken car-
cass.FoodControl,10:189–194.
SchnellT.D.,SofosJ.N.,LittlefieldV.G.,MorganJ.B.,Gorman
B.M.,ClaytonR.P.,SmithG.C.1995.Effectsofpostexsanguinati-
ondeharingonthemicrobialloadandvisualcleanlinessofbeefcar-
casses.J.FoodProt.,58:1297-1302.
Skřivanová E., Molatová Z., Matěnová M., Houf K., Marounek
M.2011.Inhibitoryeffectoforganicacidsonarcobactersinculture
andtheiruseforcontrolofArcobacterbutzlerionchickenskin.Int.
J.ofFoodMicrobiology,144:367–371.
SmuldersF.M.1995.Preservaitonbymicrioldecontamination;
thesurfacetreatmentofmeatsbyorganicacids.“newmethodsof
food preservaiton” . gould, G.W. Blackie Academic and
Profeesional.Glasgow,UK,257,271,272
SofosJ.N.1993.HACCPsysteminmeatprocessingandins-
pectionintheUnitedStates.MeatFocusInt.2:217-225.
Sofos J. N., Smith G. C. 1993. The headache of the United
Statesmeatindustry:E.coliO157:H7.MeatFocusInt.2:317-325.
Sofos J. N. 1994. Microbial growth and its control in meat,
poultryandfish.In:Person,A.M.,Dutson,T.R.(Eds.),Qualityattri-
butes and their measurement in meat, poultry and fish products.
BlackieAcademicandProfessional,Glasgow,359-403.
SofosJ.N.,SmithG.C.1998.Nonacidmeatdecontamination
technologies:Modelstudiesandcommercialapplications.İnt.J.of
FoodMicrobiology,44:171-188.
SurekhaM., ReddyS.M.2000.Preservatives.ClassiWcation
and properties. In R. K. Robinson, C. A. Batt, & C. Patel (Eds.),
EncyclopediaofFoodMic.NewYorkAcademicPress.1710–1717.
Thomas L. V. 2000. Preservatives. Sorbic acid. In R. K.
Robinson,C.A.Batt,&C.Patel(Eds.),Encyclopediaoffoodmicro-
biologyNewYork:AcademicPress.1769–1776
UijlC.H.1999.Thepreservatingeffectoflacticacidandlacta-
tes.CCABipchemGorinchem.
YalçınH.,ArslanA.2011.EscherichiacoliO157:H7veListeria
monocytogenesİleKontamineEdilmişBroylerKarkaslarındaLaktik
Asit, Cetylpyridinium Chloride ve Trisodyum Fosfat’ın Tekil ve
KombineEtkilerininİncelenmesi.KafkasUniv.Vet.Fak.Derg.17(4):
625-630.
WhyteP.,McgillK.,CollinsJ.D.2003.Anassesmentofsteam
pasteurationandhotwaterimmersiontreatmentsforthemicrobio-
logical decontamination of broiler carcasses Int. J. of Food
Microbiology,20:111-117.
ZeitzD.2004.Applicationofnovelhurdletechnologiestomeat
carcass trimmings for reductıon of pathogens. A Final Report to
USDA, FSIS, OPPD. USDA-FSIS Non-Assistance Cooperative
Agreement,FSIS-C-14.
ZhaoT.,DoyleM.P.2006.ReductionofCampylobacterjejuni
on chicken wings by chemical treatments. Journal of Food
Protection,69:762–767.
27
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
ÖZETYıllardırbirçokülkedeyumurtacıtavuklardauygulananSalmonella kontrolprogramlarınarağmen,sonyıllar-
dayumurtakaynaklıSalmonella spp.infeksiyonlarınınsayısındabelirginbirartışgörülmektedir.BusebepleABülkeleriKontrolProgramları’ndaüretimyerlerindenalınanyumurtalardaSalmonella spp.analiziyapılmayabaş-lanmıştır.BöyleceinsansağlığıaçısındanönemlibirriskoluşturansofralıkyumurtalardatüketimesunulmadanöncesonnoktadaSalmonella spp.analizleriyapılarakenfeksiyonlarınazaltılmasısağlanabilecektir.ÜlkemizdedebukonudadahadetaylıaraştırmalaryapmakvesofralıkyumurtalardaSalmonella spp.analizlerininTürkGıdaKodeksiveGıdaİzlemeProgramınaalınarakizlenmesigerekmektedir.BumakalesonyıllardatümdünyadaartışgösterenyumurtakaynaklıSalmonella spp. infeksiyonlarınınülkemizdedeönemleüzerindedurulmasıgerekliolanbirkonuolduğunuvurgulamakiçinsunulmuştur.
Anahtar kelimeler: Salmonella spp.,yumurta,infeksiyon.
Dr. Sibel ÖZKÖK
Ulusal Gıda Referans Laboratuvarı,
Mikrobiyoloji Bölümü
SofralıkYumurtalardaSalmonella spp.RiskiIncreasing Risk of Salmonella spp. in Table Eggs
* So rum lu ya zar : [email protected]
Ad res : Fatih Sultan Mehmet Bulvarı No:70 PK:43 06010 Yenimahalle/ANKARA
Telefon: +90 312 3274181/1172 Fax: +90 312 3274156
28
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
Ülkemiz yumurta üretimi bakımından dünyada 11.sıradayeralmaktadır.Ülkemizde2011yılında12.8mil-yar adet yumurta üretimi gerçekleşmiştir. AyrıcaTürkiyebirçokülkeyeyumurtaihracatıdayapmaktadır.2010yılında156milyondolarolanihracat%83arta-rak 286 milyon dolara yükselmiş ve bir rekora imzaatmıştır.3.5milyaradetyumurtaihracatıgerçekleşmiş-tir. Bu miktar toplam yumurta üretiminin yaklaşık %25’ine tekabül etmektedir. Ülkemizde kişi başınayumurta üretimi 2011 yılında 188 adettir (Anonim2012).
2005 yılında gıda kökenli salgınların en önemlisebepleriSalmonella spp.veCampylobacter spp.ola-rakbildirilmiş,Salmonellaspp.salgınlarınınenyaygınkaynaklarının yumurta ve unlu mamullerken,Campylobacter spp.salgınlarının ise tavuketiolduğutespitedilmiştir.Salmonella spp.’nınyolaçtığısalgınlarCampylobacter spp.’lerin neden olduğu salgınlardandahaçokkişiyietkilemişvedahafazla insanınhasta-nedetedaviedilmesinigerektirmiştir.Salmonella spp.infeksiyonlarınaençokevlerdeverestoranlardamaruzkalındığıraporedilmekleberaber,yurtdışıseyahatlerdedesıklıklaSalmonella spp.salgınlarıgörüldüğübildiril-miştir.Salgınlardaenyaygınkaynaklar yumurta,unlumamüller ve tavuk eti olmuştur. AB ülkelerinde 2005yılında,insanlarda176,395 Salmonella spp.vakasıbil-dirilmiş ve yumurtaların, insanlarda görülenSalmonella spp. infeksiyonlarında en büyük kaynakolduğuraporedilmiştir(EFSA2005).
Salmonella spp. insanlardahastalık,ölümveeko-nomikkayıplaranedenolan,gıdakaynaklıönemlihas-talıketkenidir.Öncekiyıllardaolduğugibi,SalmonellaEnteriditisileSalmonella Typhimuriumensıkraporedi-len serotipler olmuştur. AB’de insanlarda görülenSalmonella spp. infeksiyonlarının % 50’si SalmonellaEnteritidis’ten kaynaklanmaktadır. İkinci rapor edilenserotipolanSalmonella Typhimurium’unnedenolduğuinfeksiyonlarıniseyumurtalardankaynaklandığıbildiril-mektedir(EFSA2005).
ABülkelerindeyumurtacıtavukçiftliklerindeortala-ma olarak % 30.8 oranında Salmonella spp. saptan-
mıştır(%0–79.5).Buçiftliklerin%20.4’üSalmonellaEnteritidis/Salmonella Typhimuriumyönündenpozitifbulunmuştur.Sofralıkyumurtayailişkinolarak,testedi-len yumurtaların % 0 ila % 6’sında Salmonella spp.olduğubelirtilmiştir(EFSA2005).
Salmonella spp.pozitiförneklerinenyüksekoranla-rısebzedeneldeedilenyemmaddelerindevespesifikolarakdayağlıtohumlarilebunlarınürünlerinde(%0.4ila%7pozitif)bulunmuştur.Karmayemmaddelerin-de,testedilenörneklerin%0ila%6’sındaSalmonellaspp.izoleedilmiştir(EFSA2005).
EFSA2008yılıraporunda,insanlardagörülenzoo-nozhastalıklardansalmonellozis’in131.468doğrulan-mışvakaileikincisıradayeraldığıbildirilmektedir.ABülkelerinde en çok görülen gıda kaynaklı salgınlaraSalmonella spp.’lerin neden olduğu, domuz etindensonrayumurtaveçiğyumurtalıürünlerinenönemlisal-gınkaynaklarıolduğubildirilmiştir.Dahaöncekiyıllardada olduğu gibi Salmonella Enteritidis ve SalmonellaTyphimurium’uninsanlardaensıkrastlananserotiplerolduğu (% 79.9) belirtilmektedir. AB’de toplam 5.332salgın rapor edilmiştir. Bu salgınlarda 45.622 vakagörülmüş,6.230’uhastanelerdetedaviyealınmışve32kişiiseölmüştür.RaporedilengıdakaynaklısalgınlarınbüyükbirkısmınıSalmonella spp.(%35.4),viruslar(%13.1), bakteriyal toksinler (% 9.8) ve Campylobacterspp.(%9.2)oluşturmaktadır.Enönemligıdakaynaklısalgınlaryumurtaveyumurtaürünleri(%23.1),domuzetiveürünleri(%10.2)vebüfeyemekleriolaraktespitedilmiştir (% 9.2). Salmonella Enteritidis salgınlarınınençokyumurtaveyumurtaürünlerivefırıncılıkürün-leriileilgiliolduğubildirilmiştir.İnsanlardakiSalmonellaEnteritidis salgınlarının ise çoğunlukla kontamineyumurta ve kanatlı eti kaynaklı olduğu bildirilirken,Salmonella Typhimurium salgınlarının kontaminedomuz,kanatlıvesığıretiileilişkiliolduğubildirilmek-tedir(EFSA2005).
EFSA 2009 raporuna göre, yumurta kabuklarınınişleme aşamasında (yumurta tasnif, paketleme, vb.)çapraz kontaminasyona uğradığı bildirilmektedir.Teknoloji vekullanılanhijyenikuygulamalarnedeniyle
ABSTRACTAgainstallSalmonella controlprogramsholdforyears,thenumbersofegg-bornesalmonellozishasbeen
increasing.WiththispurposeEuropeanUnion(EU)startedtoanalyzeeggscollectedfromproductionfacilities.ThiscontrolwillleadadecreaseinthenumbersofSalmonella ineggsbeforeretailsales.Inourcountrydetai-ledstudiesshouldbemadeandSalmonella spp.Analysisshouldbemadeineggsinofficialcontrolprogram-mesandshouldtakeplaceinTurkishFoodCodex.Thispaperisdesignedtounderlinethenationalimportanceofemergingeggbornesalmonelloziswhichisacceptedasanimportantsourceforsalmonellosisglobally.
Keywords: Salmonella spp.,egg,infection.
29
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
çaprazbulaşmaolabileceği,yumurtaişlemesırasındayumurta ve yumurta kabuğu üzerindeki Salmonellaspp.nedeniyleyumurtanıntüketicileriçinriskoluştur-duğu düşünülmektedir. Gıdalarda Salmonella spp.konusundaVeterinerHalkSağlığıBilimselKomitesi’ningörüşüne göre (2003), gıda kategorileri içindeSalmonellozisaçısından,halksağlığıiçinenfazlariskiyumurta ve çiğ yumurta içeren ürünlerin oluşturduğubildirilmiştir.2007yılında154.099salmonellozisvaka-sıgörülmüş,2006yılındayumurtaveyumurtaürünlerien sık bildirilen gıda kaynaklı Salmonella spp. salgınkaynağı olmuştur (EFSA, 2007a). İnsanlarda görülenSalmonella spp.infeksiyonlarının%60’ındanfazlasınınS. Enteritidisolduğuveyumurtakaynaklıinfeksiyonla-rındahaçokgörüldüğütespitedilmiştir(EFSA,2009).
Amerika’da (Temmuz 2010) 20 senenin en büyüksalgını olarak tanımlanan çok sayıda Salmonella spp.vakasına rastlanmış, ülkede Salmonella spp. yönün-den alarm verilmiş, kaynağın yumurta olduğu tespitedildiktensonra380milyonyumurtaraflardantoplatıl-mıştır.KuzeyCarolina,Minnesota,Kaliforniyaeyaletle-rinde270’denfazlakişideSalmonella spp.infeksiyonuteşhisikonularaktedavialtınaalınmıştır.Ülkedefabri-ka,marketverestoranlardadagenişçaplıincelemelerhalihazırdadevametmektedir(Anonim2011).
EFSABiyolojikAjanPaneli’nde(2009),ABülkelerin-de, direktifler doğrultusunda “Yumurtacı TavuklarSalmonella spp. Kontrol Programı”nın titizlikle uygu-lanmasına rağmen, tüketiciler için Salmonella spp.infeksiyonları yönünden riskin giderek arttığı saptan-mış; değişik bölgelerden gelen yumurtaların yumurtaişlememerkezlerinde(özellikleboylamavepaketlemeesnasında) kontamine olarak, tüketiciler içinSalmonella spp. infeksiyonuyönündenrisklihalegel-dikleri konusundahemfikirolunmuştur. ÖzelliklesonyıllardaSalmonella spp.infeksiyonlarındagörülenartışdikkat çekici hale gelmiştir. Bu nedenle panel sonu-cunda,2009yılındatüketicilerinSalmonella spp.infek-siyonlarındankorunmalarıiçinilaveyöntemlerinuygu-lanmasıgerektiğininbirzorunlulukolduğufikrindebir-leşilmiştir.
ABtarafındanKasım2010itibari ile9farklısurveyprotokolühazırlanmışvebuprotokolleriçindepaketle-me merkezlerinde ve marketlerdeki sofralık yumurta-larda Salmonella spp. analizi de yer almıştır (EFSA2010).
2010yılında insansalmonellozisvakalarında2009yılınaoranla%8.8artışgörülmüştür.Salmonella spp.infeksiyonlarıistatistikselolarakABülkelerindealtıyıl-dır artış eğilimindedir. 2010 yılında toplam 99,020insanvakasıkonfirmeedilerekbildirilmiştir.Salmonellaspp.sıklıklabroilervehindietindesaptanmıştır.Rapor
edilen 5.262 gıda kaynaklı salgında Salmonella spp.,viruslar,Campylobacter spp. ve bakteriyel toksinleringıdakaynaklarınınyumurta,karışımvebüfeyemeklerivesebzelerolduğutespitedilmiştir(EFSA2012).
Hoque ve ark. (1997) yaptıkları çalışmada,Amerika’da 1976 ve 1995 yılları arasında insanlardaSalmonella entericaserotypeEnteritidis(SE)izolasyonoranının%5’den%25’eyükseldiğiniraporetmişlerdir.1990, 1994 ve 1995 yıllarında Amerika’da en yaygınolanSalmonella serotipininSEolduğuveUSDAtara-fındantavukkesimhanelerindevepastörizeedilmeyensıvıyumurtalardayapılansurveyçalışmasısonucunda1991 ve 1995 yılları arasında SE prevalansında artışolduğusaptanmıştır.İnsanvekanatlıSEpt4izolatla-rınmoleküleryapılarıvevirulensleridiğerülkelerdeki-lerdeki izolatlarla karşılaştırılmış ve bu faj tipininAmerika’da insanlar ve kanatlılar için potansiyel birtehlike oluşturabileceği bildirilmiştir. Bu bölgede SEkontrolprogramınınbaşarılıolmasıileinsanlardagörü-len hastalığın azalabileceği belirtilmiştir. PennsylvaniaEggQualityAssuranceProgramsayesindekümesler-deki SE enfeksiyonlarının azaldığı tespit edilmiştir.Bununla beraber 1990-1995 yılları arasında USDAtarafından uygulanan geri izlemeve gıda işleyicilerineğitimi ve güvenli gıda işleme prosedürlerine rağmenhem insanlarda görülen SE infeksiyonlarının insiden-sindehemdekümeslerdekivepastörizeedilmeyensıvıyumurtalardaki SE prevalansında belirgin bir düşmeolmamıştır. Üretimden tüketime kadar, yumurta işle-meninherbasamağındaSEkontrolününyapılmasınınbirgereklilikolduğu,insanlardakiSEenfeksiyonlarınınazalması için en pratik yolun yumurtalardaki SE’ inazaltılması olduğu bildirilmiştir. Bunun için de devlet,endüstri,tüketicilerveakademisyenlerarasındakuru-lan disiplinler arası çabaların sonucunda en etkili veuzunsolukluuygulamalaraulaşılabileceğibildirilmiştir.
Poppe(1994),Kanada’dainsanlardaSEprevalansı-nın % 9’dan % 12’ye yükseldiğini bildirmiştir. Ulusalsurveyprogramındayumurtacıtavukkümesleriçevre-sel örneklerinde % 2.7 ve broyler kümesleri çevreselörneklerde%3oranındaSEizolasyonuolduğunu, ikienfekte tavuk kümesinden alınan SE kontamineyumurtalarınprevalansınında%0.06olarakbulundu-ğunubildirmişlerdir.
Coquardveark.(1999),suyuninsanvehayvanlar-da görülen salmonellozisin nedenlerinden veSalmonella spp.içinanageçişyollarındanbiriolduğu-nu bildirmiş, PCR bazlı PROBELIA metotudun ISO6340metodundandahahızlıvedahaduyarlıuygulana-bilirbirmetotolduğunuraporetmişlerdir.
1998 yılında United States Department ofAgriculture’s Food Safety and Inspection Service
30
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
(FSIS) ve The Food and Drug Administration (FDA)tarafındanyumurtalardaSE’denkaynaklananveinsan-lariçinriskteşkiledenhastalıklarınazaltılmasıileilgiliolarakriskdeğerlendirilmesiyapılmış,Amerika’daüre-tilentümyumurtaların12saatsonra7.2°C’desaklan-masıvepastörizasyonuileyumurtalardakiSE’denkay-naklanan infeksiyonların sayısında 130.000’den28.000’ekadarbirdüşüşgörülmüşvehızlısoğutmavepastörizasyonun yumurtalardaki SE’den kaynaklananinfeksiyonlarınazaltılmasındaoldukçaetkiliolduğubil-dirilmiştir(Schroederveark.,2005).
ÇiftliklerdenalınançevreselörneklerdeSalmonellaspp.prevalansınınsaptanmasıileilgiliyapılanbirçalış-mada,24ayda,18 farklıçiftlikten toplam2.496örnek(etçivesütçüsığırçiftlikleri,domuzçiftliklerivekanat-lı(broilervehindi)kümesleri)toplanmış,FDAmetodukullanılmışveSalmonella spp.izolatlarıribotiplendirmeile karakterize edilmiştir. Tüm örneklerin % 4.7’sindeSalmonellaserotipleritespitedilmiştir.Verilerçiftlikler-deki çevresel etkenlerin, kontaminasyon kaynaklarıolarak çok önemli bir etkiye sahip olduklarını göster-mektedir(Rodriguezveark.,2006).
Braden (2006), SE ve yumurtalarla ilgili yaptığı biraraştırmada, epidemiyolojik ve laboratuar çalışmalarısonucunda, insanlardaki SE enfeksiyonlarının enbüyük kaynağının yumurtalar olduğunu rapor etmiş;1996’danbuyanainsanlardagörülenSEenfeksiyonla-rında önemli bir azalma görüldüğünü, buna rağmenbirçok salgının SE ile kontamine olan yumurtalardankaynaklandığınıbildirmiştir.
WangveMustapha(2010)yaptıklarıbirçalışmada,TaqManproplarkullanarakEMA-RT-PCRmetoduilepiliç ve yumurtalarda canlı Salmonella spp.’leri tespitedebilenbirmetotbulmuşlarvepiliçrinsleriveyumur-tabuyyonlarından12saatlikzenginleştirmedensonraEthidiumbromidemonoazide(EMA)boyasıilekombi-ne RT-PCR ile 10 CFU/mL canlı Salmonella spp.’lerisaptayabilmişlerdir.
Amerika’da 1999-2001 yılları arasında yumurta ileilişkiliSalmonella Enteritidissalgınlarıileilgiliyapılanbirçalışmada, 1995 yılında CDC raporlarına göre 3.8kişi/100.000 popülasyon ile SE enfeksiyonlarının pikyaptığı,bununlabirlikte1999yılındakültürkonfirmas-yonunun 1,9 olduğu deklare edilmiştir. 2001 yılınakadar deklarasyon olmamış ancak salgınlar devametmişvearaştırmalarsonucundagıdalaridentifiyeedil-diğindeensıkrastlanankaynağınpişmemişçiğyumur-ta olduğu bildirilmiştir. Raporda yumurta ile ilgili olanSEsalgınlarınınveSEkontrolprogramınınyapılmasınınçok büyük ihtiyaç olduğu belirtilmiştir (MMWRMorbMortalWklyRep.,2003).
Edirne’de2001yılındaaskeribirtaburdameydanagelenS. Enteritidis’innedenolduğubesinkaynaklıbirsalgının epidemiyolojisi tanımlanmıştır. Bu çalışmadaüretilen izolatlarınbirsalgınadahiloluportakbirkay-naktan köken aldıklarını göstermek için Salmonellacinsibakterilerdeönerilen;serolojiktiplendirme,fajtip-lendirmesi, antibiyotik direnç testleri gibi gelenekselyöntemlerileplazmitprofili,ribotiplendirme,pulse-fieldgelelektroforesis(PFGE)gibimoleküleryöntemlerkul-lanılmıştır.Çalışmadason20yıldırzoonotikSalmonellaenfeksiyonlarına bağlı enfeksiyonların sayısının pekçokülkedearttığı,S. Enteritidis’ebağlıenfeksiyonlarındünyada1980yılındanberiartmayadevamettiği,buartışınEdirne’dedegörüldüğübildirilmiştir.Buartışınnedeni S. Enteritidis’in kanatlılara uyum sağlamışönemlibirpatojenolmasıveyumurtalarıntransovarialveyatavukdışkısıilekontamineolmasınabağlanmıştır.Butürbirsalgınıntekraryaşanmamasıiçintümtavukçiftliklerindekontrolünsağlanması,yumurtalarınsoğukzinciriçindenakledilmesiveiyicepişirilerektüketilme-siönerilmektedir(Tanselveark.,2003).
Gelişmekteolanülkelerde insanlar içinSalmonellaTyphi infeksiyonları önemli bir problemdir. Gelişmişülkelerde ise Salmonella Typhi enfeksiyonlarındakiazalmayakarşınSalmonella spp.infeksiyonlarıgide-rekönemkazanmaktadır.SonyıllardaAvrupaülkele-rinde Salmonella Enteritidis’in SalmonellaTyphimuriumileyerdeğiştirerekbesinzehirlenmeleri-ninensıkgörülenetkeniolduğubildirilmektedir.Ülke-mizdedeinsankaynaklıSalmonella spp.’lerdenhalenenyaygınolanserovarSalmonella Typhimuriumolma-sınarağmen,Salmonella Enteritidis’inoranınıngiderekartmakta olduğu vurgulanmaktadır. Türkiye’de 1973yılında serotiplendirilen 487 Salmonella suşunun %93’ünün Salmonella Typhimurium olduğu bildirilmişolmasına rağmen 1994-2000 yılları arasındaSalmonella Enteritidis’in (% 64.9) en yaygın serotipolduğuanlaşılmıştır(Erdemveark.,2004)
2000ile2002yıllarıarasındaTürkiye’de10ilikap-sayaninsanlarınçeşitliklinikörneklerindenizoleedilen620 adet Salmonella serotiplendirilmiş, Türkiye’deSalmonella enfeksiyonları ve Salmonella’ların önemlisağlıksorunlarındanbiriolmayadevametmekteoldu-ğu,Salmonella enfeksiyonluhastaların1/3’ündenfaz-lasınınhastanedeyatırılaraktedaviedilmesinedeniylebelirtilerin ayaktan tedavi edilebilecek kadar hafifolmadığıvehastalıknedeniyleoluşanekonomikkayıp-ların az olmadığı, Salmonella enfeksiyonlarının etkinsürveyansyöntemleriileizlenmesigerektiğibildirilmiş-tir. Bu çalışmada insan kaynaklı Salmonella enfeksi-yonlarınınveSalmonella’larınTürkiye’yeözgüözellikle-riniortayakoymaküzere13klinikmikrobiyolojilabora-tuvarındaizoleedilenSalmonella enterica suşlarısero-
31
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
tiplendirilmiş,serotiplerinenfeksiyontablolarıileilişki-leri ve izole edildikleri klinik örneklerdeki dağılımlarıincelenmiştir.Buçalışmadaepidemiyolojikaraştırma-lardaSalmonella’larınserotiplendirininbelirlenmesininilkveenönemliadımolduğu,sıkgörülmeyenserotip-lerinnedenolduğuenfeksiyonların/salgınlarınincelen-mesindeserotiplendirmenintekbaşınayeterliolabile-ceği, oysa en yaygın serotiplerin incelendiği çalışma-larda yeterli epidemiyolojik veri sağlanamayacağı, budurumdaantibiyogram,fajtiplendirmevediğertiplen-dirme yöntemlerinin serotiplendirme ile birlikte yapıl-ması gerektiği bildirilmektedir. İki yıl süren bu sürve-yans sırasında iki salgın/epidemi (Edirne ve Kayseri)belirlenmiştir. Bu çalışmada Türkiye’de halk sağlığınıtehditedenenfeksiyonhastalıklarıvemikrobiyolojiala-nında laboratuvar destekli çok merkezli çalışmalarabüyükgereksinimolduğubildirilmiştir(Erdem,2003).
Erdemveark.(2005)tarafındanTürkiye’nin10ayrıbölgesinden 1 Temmuz 2000-30 Haziran 2002 yıllarıarasındaçeşitliinsanörneklerinden(47dışkı,4kan,2idrar)53adetSalmonella entericaCgrupizoleedilmiş,serotiplendirilmiş ve antibiyotik dirençliliklerine bakıl-mıştır.İzolatların11’iS.Cholerasuis,7’siS. Hadar,4’üS. Irumu, 3’ü S.Virchow, 3’ü S. Tallahassee, 2’siS. Paratyphi C, 2’si S. Braenderup, 2’siS. Othmarschen,2’siS. Menston,2’siS. Concord,2’siS. Infantis, 2’si S. Kottbus, 1’i S. Edinburg, 1’iS. Oranienburg,1’iS. Muenchenve1’ideS. Malmoeolarak tespitedilmiştir.Antibiyotikdirençlilikleri iseS.EntericaC1grupveC2grubunampicilinekarşı%26ve%60,amoxicillin/clavulanicasidekarşı%11ve%40,chloramphenicol(%16ve%27)vetetracycline’ekarşı%3ve%40dirençlibulunmuştur.
S. Typhimuriumsuşlarınınçoğunluğu,90kbç (60-62megadalton-MDa)büyüklüğündeserotipeözgübirplazmit taşımaktadır.Buna rağmen,suşlararasındakiepidemiyolojikilişkiyitanımlamaktaplazmitprofilana-lizinin en az faj tiplendirme yöntemi kadar spesifikolduğukabuledilir.PlazmitprofilanalizininvePFGE’inS. TyphiandS. ParatyphiBsuşlarınıntiplendirilmesin-deenuygunmetotlarolduğunuveantibiyogramındaayırtedicidiğerbirtiplendirmemetoduolduğunuvur-gulanmışlar,buüçtestinbirliktesalgınlarınepidemiyo-lojilerinin araştırılmasında kullanılabileceğini vurgula-mışlardır(Dolapçıveark.2010).
UEPLA (Ulusal Enterik Patojenler Surveyans Ağı)kapsamındailküçayiçerisinde(Ekim–Aralık2007)325etkendoğrulanmışveserotiplendirilerekantimikrobiyalduyarlılık testleri çalışılmıştır. Doğrulanan suşların %59.1’i Shigella, % 33.3’ü Salmonella spp.’dir.DoğrulamaveserotiplendirmesonucuensıkgörülenSalmonella serotipi % 35.8 ile S. Enteritidis’tir.
Referans Laboratuvar tarafından Salmonella spp. veShigella spp. suşlarının antimikrobiyallere dirençdurumlarıdeğerlendirilmiş,Salmonella spp.suşlarındaenyüksekdirenç%18.3ilenalidiksikasitekarşıgöz-lenmiştir. Siprofloksasine direnç görülmemektedir.Nalidiksikasitdirencininflorlukinolonlarakarşıdirençgelişiminin de bir göstergesi olabileceği düşünülerek,siprofloksasinekarşıduyarlılıktaazalmavarlığınınaraş-tırılması planlanmaktadır (Kayalı Güleşen ve ark.,2008).
AnkaraGarnizonu’nda7ayrıaskeribirlikvekurum-ların ihtiyacı içinalınanyumurtaların,Salmonella spp.yönündenmikrobiyolojikkalitelerinibelirlemekamacıy-la gerçekleştirilen bir çalışmada, 6 aylık periyot içeri-sinde değişik zamanlarda alınan 882 adet yumurtaincelenmiş.İncelenenyumurtalardaizolasyonamacıy-la,yumurtalarınkabuk,akvesarısındanalınanörnek-lereklasikSalmonellaspp. izolasyonprotokolüuygu-lanmıştır. Bu sonuçlara göre; Ankara Garnizonu’ndatüketimesunulanyumurtalardan, incelenenörneklerinhiç birinde Salmonella spp. varlığına rastlanmamıştır.Salmonella spp. varlığının saptanmaması; üreticilerinmevcut yasal koşulları yerine getirmeleri ile tedarikçifirmalarınTSK’nınbelirlediğiyumurtaözelliklerişartla-rınauymazorunluluğunavebilinçlenmelerinebağlıola-bileceğini düşündürmüştür (Çakıroğlu ve Gümüşsoy,2005).
TavuklarındışkıveyumurtalarındaSalmonellaspp.etkenlerininklasikyöntemlerlevePCRiletanısıamaç-lanan bir çalışmada, Salmonella spp. izolasyonu içinAnkara’dayeralan50ticariyumurtacıkümesziyaretedilerekherkümesten20’şeradetolmaküzerekloakalsvap ve yine aynı kümeslerden 10’ar adet yumurtaörneği toplanmıştır. Her kümesten alınan 20 kloakalsvap2grubaayrılıp,10adedi1örnekkabuledilerekdeğerlendirilmeyealınmış.Toplam500yumurta10’arlıgruplarhalinde50örnekolarakkabuledilipSalmonellavarlığıyönündenincelenmiştir.Çalışmanınsonucunda,kloakalsvapalınan50kümesin6(%12)’sındaveörnekbazındada100örneğin6(%6)’sındanselektifzengin-leştirmedensonrayapılanPCRveklasikkültürmetoduileSalmonella’nıncinsdüzeyindevarlığıtespitedilmiş-tir. Yumurta örneklerinden ise her iki metotla daSalmonellabelirlenememiştir.Buçalışmada,tavukdış-kılarından Salmonella etkenlerinin PCR yöntemi iletanısı yapılabileceği ortaya konulmuş ve rutin teşhisamacıyla uygulanabilirliği belirlenmiştir (Ata ve Aydın,2008).
Salmonella’nınyumurtaveyumurtaürünlerindevar-lığıilebuzdolabıvekaynamasıcaklığındayaşamsüre-siaraştırılanbirçalışmadaAnkarapiyasasındansağla-
32
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
nan 250 adet tavuk yumurtası, 180 adet bıldırcınyumurtası,100adetmayonezve25adetkremaörneğiolmak üzere toplam 555 adet yumurta ve yumurtaürünü örneğinde çalışılmıştır. Örneklerde Salmonellaspp.’nin saptanmasında Uluslararası StandartlarOrganizasyonu’nun(ISO)yöntemikullanılmıştır.Sonuçolarak;bıldırcınyumurtalarında,mayonezörneklerindeve kremalarda Salmonella spp. izole edilememiş,ancak 250 tavuk yumurtasının 15’inde (% 6) izole veidentifiye edilmiştir. Bu örneklerin halk sağlığı açısın-danpotansiyelzararoluşturabileceğidüşünülmektedir.S. Enteritidisileinokuleedilenyumurtalarönerilenkay-natma prosedürlerine uygun olarak pişirilmiştir. S.Enteritidis’itamamenyoketmekiçinsekizdakikasüreile kaynatma işleminin gerekli olduğu saptanmıştır.Buzdolabı sıcaklığında 21 güne kadar bekletildiktensonraiseS.Enteritidis’inyaşamınıdevamettirdiğigöz-lenmiştir(Öktemveark.2009).
Ülkemizde 2008 yılından itibaren “YumurtacıTavuklarda Salmonella spp. Kontrol Programı” uygu-lanmayabaşlanmıştır.AncakABvediğerülkelerdedeolduğugibi,ülkemizdedetesadüfiörneklemeuygula-nan kontrol programında, Salmonella spp. yönündenanaliziyapılmayançiftliklerdengelerekpaketlemetes-islerindekontamineolanyumurtaların,Salmonella spp.analizlerinin yapılarak tespit edilmesi gerekmektedir.Ayrıcayumurtaüretimçiftlikleri vepaketleme tesisle-rindendeörnekleralınarakSalmonella spp.’lerdenilerigelenenfeksiyonkaynaklarımutlakasaptanmalıdır.
''TürkGıdaKodeksiYumurtaveYumurtaÜrünleriTebliği'' yumurtanın üretiminden tüketimine kadargeçensüreçtekitümaşamalardastandartlarıvemikro-biyolojik kriterleri belirtmesine rağmen, Gıda Kodeksi“MikrobiyolojikKriterlerTebliği”ndeyumurtaanalizleriAB’neuyumgereğiyeralmamaktadır.Bunabağlıola-rak Bakanlığımızca uygulanan “Gıda İzlemeProgramı”ndayumurtaanalizibulunmamakta,yalnızcayumurtaürünleri (pastörizeyumurtaveyumurta tozu)analizleriyeralmaktadır. İnsanlardakiSalmonella spp.infeksiyonlarının önlenmesi amacı ile yumurtada
Salmonella spp. analizleri mutlaka yapılarak, hem“Mikrobiyolojik Kriterler Tebliği”ne hem de “GıdaİzlemeProgramı”nailaveedilmelidir.
ÜlkemizdegıdakaynaklıSalmonella spp.’lerinsero-tiplendirilmesi ve moleküler tiplendirilmesi (PFGE) ileilgilimünferitçalışmalarolmasınarağmen,buçalışma-lar rutin olarak yapılmamaktadır. Ancak gıdalardanizoleedilentümSalmonella spp’’lerinserotiplendirile-rek hangi serotiplerin görüldüğünün saptanması veizole edilen Salmonella spp.’’lerin klonal ilişkilerininincelenereksalgınsuşlarınınbelirlenmesigerekmekte-dir.GıdakaynaklısalgınsuşlarısaptanarakinsanlardagörülenSalmonella spp.’denilerigelenenfeksiyonlarındaönünegeçilmişolacaktır.
BununlabirliktebirçokülkegıdakaynaklıetkenlerinPFGEsonuçlarını(genprofilleri)uluslararasısistemleregirerek(Pulse-NetInternational:Gıdakaynaklıbakteri-lerin rutinstandardizemoleküleralt tiplendirmesi veritabanıveelektronikveriaktarımsistemi)karşılaştırabil-mekte ve diğer ülkelerde de görülen enfeksiyonlarındurumu hakkında bilgi edinilerek izlenebilmektedir.Ülkemizde ise yalnızca insan kaynaklı Salmonellaspp.’leringenprofillerisistemegirilmektedir.Gıdakay-naklıSalmonella spp.’leringenprofilleridesistemegiri-lerekdiğerülkesuşlarıilekarşılaştırılarak,aynısuştankaynaklanansalgınlarıntespitiileenfeksiyonlarınazal-masısağlanabilecektir.
Ülkemizdeüreticikurumlarilelaboratuvarlararasın-daçokfazla işbirliğibulunmamaktavebilgipaylaşımıolmamaktadır.Sektörlerarasındailişkikurularakkarşı-lıklı bilgi alışverişinde bulunulmasına ve problemlerinbirlikte çözülmesine ihtiyaç vardır. Enfeksiyonlarınsayısında görülen azalma hem ülkemizdeki yumurtaüretim sayısını hem de yurtdışına ihraç edilecekyumurta sayısını arttıracak ve tüketicilere Salmonellaspp.yönündenkontrolleriyapılmışyumurtaların temi-ninisağlayacaktır.Bukonudadahaçokçalışmayapı-larak ülkemizde sofralık yumurtalardaki Salmonellaspp.riskibelirlenmelidir.
33
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
KAYNAKLARAnonim2011.http://www.sagliklikanatli.com/Salmonella-news-
archive.asp.Erişimtarihi14.10.2010.
Anonim 2012. http://www.yum-bir.org/templates/resimler/Image/sektor_haberleri/2012_veri.pdf.Erişimtarihi30.04.2012.
Ata Z., Aydın N. Ankara Bölgesi’ndeki tavukçuluk işletmelerin-denSalmonellaspp.izolasyonu,AnkaraÜnivVetFakDerg,55,161-166,2008.
Bayhan Öktem A., Kaynak Onurdağ F., Er B., Demirhan B. AresearchofSalmonellaspp.ineggandeggproductsandsurvivalofSalmonella different temperatures. Turk J. Pharm. Sci. 6 (3), 147-154,2009.
BradenCR.SalmonellaentericaserotypeEnteritidisandeggs:anational epidemic in the United States. Clin Infect Dis. 2006 Aug15;43(4):512-7.Epub2006Jul3.
Coquard D, Exinger A, Jeltsch JM. Routine detection ofSalmonellaspeciesinwater:comparativeevaluationoftheISOandPROBELIApolymerasechain reactionmethods.JAOACInt.1999Jul-Aug;82(4):871-6.
ÇakıroğluHS.,GümüşsoyKS.,AnkaraGarnizonunda tüketimesunulan tavuk yumurtalarının Salmonella spp. yönünden analizi.SağlıkBilimleriDergisi (JournalofHealthSciences)14(3)158-162,2005.
Dolapçıİ.,ErdemB.,TekeliA.,UsB.,BayramovaM.,SaranB.,Şahin F. Molecular analyses of Salmonella serotype Typhi andSalmonellaserotypeParatyphiBstrains isolated inTurkey.TurkJMedSci2010;40(3):447-458.
EFSA2005.OpinionoftheScientificPanelonbiologicalhazardsontherequestfromtheCommissionrelatedtothemicrobiologicalrisksonwashingoftableeggs.TheEFSAJournal269:1-39.
EFSA2008.CommunitySummaryReport.TrendsandSourcesofZoonosesandZoonoticAgentsandFood-borneOutbreaksintheEuropeanUnionin2008.EFSAJournal;20108(1):1496
EFSA 2009. The Community Summary Report on trends andsourcesofzoonosesandzoonoticagentsintheEuropeanUnionin2007.TheEFSAJournal:223.
EFSA2010.ScientificReport,Developmentofharmonizedsur-vey methods for food-borne pathogens in foodstuffs in theEuropeanUnion.22November2010.
EFSA 2012. The European Union Summary Report on trendsand sources of zoonoses, Zoonotic Agents and Food-borneOutbreaksin2010.EFSAJournal2012;10(3):2597.
ErdemB.:Türkiye’deSalmonellaSurveyansı:Onili(13labora-
tuvarı) kapsayan çok merkezli bir çalışma.TÜBİTAK ( Proje kodu:
SBAG2246-199S224),Ankara,Haziran2003.
Erdem B., Tekeli A., Koyuncu E., Bayramova M.: Türkiye’de
insanlardanizoleedilenSalmonellaentericasubspentericaserotip
Enteritidis ve serotip Typhimurium suşlarının RAPD (Randomly
Amplified Polymorphic DNA) yöntemi ile incelenmesi. TÜBİTAK
(Projekodu:SBAG-AYD-440-103S181),Ankara,Aralık2004.
ErdemB,ErcisS,HascelikG,GurD,AysevAD.Antimicrobial
resistance of Salmonella enterica group C strainsisolatedfromhu-
mans in Turkey, 2000-2002. Int. J Antimicrob. Agent. 2005
Jul;26(1):33-7.
HogueA,WhiteP,Guard-PetterJ,SchlosserW,GastR,EbelE,
FarrarJ,GomezT,MaddenJ,MadisonM,McNamaraAM,Morales
R,ParhamD,SparlingP,SutherlinW,SwerdlowD.Epidemiology
and control of egg-associated Salmonella enteritidis in the United
StatesofAmerica.Rev.Sci.Tech.1997Aug;16(2):542-53.
KayalıGüleşenR.,SezenSevimliF.,veUEPLAÇalışmaGrubu
Üyeleri,UlusalEnterikPatojenlerSurveyansAğı(UEPLA)verilerinin
ilküçaylıkanalizsonuçları.TürkHij.Den.Biyol.Derg.2008;65(1):1-
3.
MMWR MorbMortalWklyRep. 2003 Jan 3;51(51-52):1149-52.
Outbreaks of Salmonellaserotypeenteritidisinfectionassociatedwit-
heatingshelleggs-UnitedStates,1999-2001.
RodriguezA,PangloliP,RichardsHA,MountJR,DraughonFA.
PrevalenceofSalmonellaindiverseenvironmentalfarmsamples.J
FoodProt.2006Nov;69(11):2576-80.
PoppeC.SalmonellaEnteritidisinCanada.IntJFoodMicrobiol
.1994Jan;21(1-2):1-5.
TanselO,EkukluG,OtkunM,OtkunMT,AkataF,TuğrulM.A
food-borneoutbreakcausedbySalmonellaEnteritidis.YonseiMed
J.2003Apr30;44(2):198-202.
SchroederCM,LatimerHK,SchlosserWD,GoldenNJ,Marks
HM, Coleman ME, Hogue AT, Ebel ED, Quiring NM, Kadry AR,
KauseJ.OverviewandsummaryoftheFoodSafetyandInspection
Service risk assessment for Salmonella Enteritidis in shell eggs,
October2005.FoodbornePathogDis.2006Winter;3(4):403-12.
WangL,MustaphaA.EMA-real-timePCRasareliablemethod
fordetectionofviableSalmonellainchickenandeggs.Food.Sci.
2010Apr;75(3):M134-9.
34
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
35
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
ÖZETOsmanlıDevleti’ndeveterinerhalksağlığı,hayvansağlığıveveterinerhekimliğialanlarındagerçekleştirilen
yasal yapılanmalar, on dokuzuncu yüzyılın sonunda başlatılmıştır. Bu düzenlemeler arasında yer alan hayvansağlıkzabıtasıileilgiliyasalmetinler,temeldehayvanvehayvansalürünlerden,insanvehayvanlarageçebilecekbulaşıcıhastalıklarlamücadeleedebilmekamacıylayürürlüğegirmiştir.Hayvansağlıkzabıtasıhakkındakiyasaldüzenlemelerin,5Ocak1893tarihindeyayımlanan“Zabıta-iSıhhiye-iHayvaniyeTalimat-ıMuvakkatesi”ilebaş-ladığıkabuledilmektedir.GeçiciolarakyürürlüğegirenbuTalimat,aynızamandaveterinerhalksağlığıçalışma-larınadayasaldayanakoluşturmuştur.Dahasonragerçekleştirilendüzenlemelerilegüncellenenhayvansağlıkzabıtasımevzuatı,geçerliliğiniuzunyıllarkorumuştur.Bununlabirlikte,hayvansağlıkzabıtasıileilgiliçalışmalarsadece yasal metinlerle sınırlı kalmamış, veteriner öğrencilerin eğitim-öğretim programına da yansımıştır. Bumakalede,OsmanlıDevleti’ndegerçekleştirilenhayvansağlıkzabıtası ile ilgilidüzenlemelerin,eldeedilenyenibilgilerışığındaveterinerhekimliğitarihiaçısındandeğerlendirilmesiamaçlanmıştır.
Anahtar Kelimeler: hayvansağlıkzabıtası,veterinerhekimliğimevzuatı,veterinerhekimliğitarihi
Berfin Melikoğlu GÖLCÜ
Ondokuz Mayıs Üniversitesi Veteriner Fakültesi
OsmanlıDevleti’ndeHayvanSağlıkZabıtasıÜzerineBirİncelemeA Review of Animal Health Control in The Ottoman State
So rum lu ya zar : [email protected]
Ad res : Yrd. Doç. Dr., Ondokuz Mayıs Üniversitesi Veteriner Fakültesi, Veteriner Hekimliği Tarihi ve Deontoloji AD, 55139, Kurupelit-Samsun
Telefon: 362 3121919-3788
36
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
GİRİŞOsmanlıDevleti’ndeondokuzuncuyüzyılsüresince
salgın hayvan hastalıklarının özellikle de sığır vebasısalgınlarının olanca şiddetiyle devam etmesi, birçokbölgede büyük zararlar veren epidemilere nedenolmuştur.AskeriveSivilVeterinerOkullarındayetiştiri-lenveterinerhekimlerinçabalarıylasalgınhayvanhas-talıklarıylamücadeleedilmeyeçalışılmışsada,konuyailişkin örgütlenmenin ve yasal alt yapının eksikliğinedeniyle uzun yıllar etkin bir sonuç alınamamıştır(Başağaç, 2001, Dinçer, 1999). Bununla birlikte,Ondokuzuncu yüzyılın son çeyreğinden itibaren ger-çekleştirilendüzenlemelerileönceveterinerhalksağlı-ğıkapsamındakasaplıkhayvanlarınveetlerinmuaye-nesiilekesimşartlarınınsağlıkvehijyenyönündeniyi-leştirilmesineyönelikuygulamalaryasalgüvencealtınaalınmış, daha sonra bu düzenlemelerin tamamlayıcısıolarak hayvan sağlık zabıtasına ilişkin esaslar hükmebağlanmıştır (Bekman, 1940, Osman Nuri, 1924).İzleyenyıllardagerçekleştirilençeşitlidüzenlemelerilegeçerliliğiniuzunsürekoruyanhayvansağlık zabıtasıile ilgili yasalyapılanmalar, temelolarakbulaşıcıhay-vanhastalıklarının,hayvanveinsansağlığı ileuluslar-arasıhayvan-hayvansalürünticaretinevereceğizarar-lardankorumayıamaçlamıştır (Bekman,1950,Özgür,2003).
Bu çalışma, başta Başbakanlık Devlet ArşivleriGenel Müdürlüğünün Osmanlı Arşivi Belgeleri olmaküzere saptanabilen ilk elden kaynaklar ışığındaOsmanlı Devletinde hayvan sağlık zabıtası ile ilgilidüzenlemelerin,tarihselvebilimselaçıdanirdelenme-sineolanaksağlamakamacıylagerçekleştirilmiştir.
Gereç ve Yöntem
Çalışmanın ana materyalini, Başbakanlık DevletArşivleri Genel Müdürlüğünün Osmanlı ArşiviBölümünden, Atatürk Üniversitesi Kütüphanesinden
sağlanan ilk elden kaynaklar oluşturmuştur. Orijinalbelgelerinkünyebilgileriveaçıklayıcıekbilgilerdipnot-lardagösterilmiştir.Çalışmadaincelenenarşivbelgele-rinin metin içerisinde kullanımında günümüzTürkçesine uygun sadeleştirmeleri yapılmıştır. Konukronolojik olarak ele alınmış, saptanabilen ilk eldenkaynaklarincelenerekbelgeanaliziyapılmıştır.
Bulgular
OsmanlıDevleti’ndeondokuzuncuyüzyılsonlarınakadar,hayvanyetiştiriciliğivesağlığı ile ilgiliuyulmasıgereken kurallar, mezbahaların kurulması, karantina,dezenfeksiyon,aygırlarındağıtımı,merinosyetiştiricili-ğigibikonulardaçeşitlimakamlartarafındançıkartılanemirve tebliğlerlesınırlı kalmıştır.Budönem,hayvansağlık zabıtasına dair bilgilerin, Askeri VeterinerOkulu’nda okutulan klasik kitaplarda yer alan vehükmebağlanmamışbilgilerden ibaretolduğubildiril-miştir(Bekman,1940).Bununlabirlikte,SivilVeterinerOkulunun 1896 yılına ait ders programında yer alan“zabıta-isıhhıye-ibaytariye”adıaltındakidersin içeri-ğine göre, hayvan sağlık zabıtası ile ilgili olarak 21Temmuz 1881 tarihli bir nizamnamenin kullanıldığıbelirlenmiştir. Nizamnamede, hayvanlarda görülenbulaşıcıhastalıklarveizlenecekyollar,tazminatkoşul-ları, hayvanların giriş-çıkışları, gerekli izinler ile geneldüzenlemelere yer verildiği anlaşılmıştır (Anonim,1896).
Sivilkesimeyönelikveterinerhekimliğihizmetlerininbaşlaması ile birlikte, hayvansal gıda maddelerininsağlıkdenetimindengeçirilmesiileilgiliçalışmalarart-tırılmış, veteriner hekimliği ve hayvancılık alanlarındaçeşitli yasal düzenlemeler gerçekleştirilmeye başlan-mıştır (ErkveDinçer,1970,OsmanNuri,1924,SubhiEthem, 1918). Bu yasal düzenlemelerden biri de“Zabıta-i Sıhhiye-i Hayvaniye Talimat-ıMuvakkatesi”dir (Ek 1 ve Resim 1). Talimat, hayvan
1Başbakanlık Osmanlı Arşivi, Tarih: 9/Ca/1312, Dosya No: 212, Gömlek No: 57, Fon Kodu: ŞD.2Osmanlı Devletinin idari yönetiminde ayrılan bölgelerden biri olan Hüdavendigar Vilayeti, 1893 yılı kayıtlarına göre, MerkezSancağı, Kütahya Sancağı, Ertugrul Sancağı (Bilecik), Karahisar Sancağı (Afyon) ve Karesi Sancağından (Balıkesir) oluşmaktadır.3Sancak: Yerel yönetimde kaza ile vilayet arasında bir derece, liva
ABSTRACTIntheOttomanState,legislativeorganisationinthefieldsofveterinarypublichealth,animalhealthandvete-
rinarymedicinewereinitiatedinthelatenineteenthcentury.Oftheselegalarrangements,legislativetextsrela-tedtoanimalhealthcontrolwereenforced,basically,tocontrolinfectiousdiseasesthatmaybespreadbyani-malsandanimalproductstohumansandanimals.Thefirstlegalarrangementonanimalhealthcontrolisaccep-tedasthe“Zabıta-iSıhhiye-iHayvaniyeTalimat-ıMuvakkatesi”publishedon5January1893.ThisInstruction,whichwasputintoforcetemporarily,alsoconstitutedthelegalbasisforveterinarypublichealthactions.Theani-mal health control legislation, updated through various amendments, remained in force for many years.Nevertheless,animalhealthcontrolserviceswerenotlimitedtothelegislativeframework,andwerealsoreflec-tedinveterinarycurricula.ThepresentstudyisaimedattheevaluationoflegalarrangementsmadeinthefieldofanimalhealthcontrolintheOttomanState,inviewofnewlyrevealeddata,andfromtheperspectiveofthehistoryofveterinarymedicine.
Key words: Animalhealthcontrol,veterinarylegislation,historyofveterinarymedicine.
37
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
sağlık zabıtası nizamnamesi çıkarılana kadar, hayvanhastalıkları ile mücadelede gerekli önlemlerin uygula-nabilmesiamacıyla5Ocak1893tarihinde,geçiciola-rakyürürlüğegirmiştir(Özgür,2003).Talimathükümle-rinin, öncelikle Bursa ve çevre illerden oluşanHüdavendigar Vilayetinde (Kadan, 2002), gereklidüzenlemeler yapıldıktan sonra diğer bölgelerde degeçerlikılınacağıbildirilmiştir.Talimatınuygulanmasın-dan“DahiliyeveTicaretveNafiaNezaretleri”sorumlututulmuştur.
Talimattaherhangibirbölgedesalgınhayvanhasta-lığından şüphe edildiği takdirde hayvan sahiplerinin,yerelyönetimlerinvegörevlendirilenveterinermüfettiş-lerin yapacağı işler, yetki ve sorumlulukları bildirilmiş,söz konusu hastalığa karşı bilimsel temellere dayalıönlemlerinalınacağıöngörülmüştür.Ayrıca,hayvanvehayvansalmaddelerinithalatveihracatındadikkatedi-lecekkurallar,şehregirişveçıkışbölgelerdegerçekleş-tirilecek uygulamalar, hayvan sahiplerinin bulundurul-ması gereken belgeler hakkında bilgi verilmiştir.Bununla birlikte, Talimat amacının tam olarak yerinegetirilebilmesiiçinşehiriçindebulunanhayvanpazarla-rı,mezbahalar,kasapdükkânlarıvepanayırlarındüzen-lenmesi ile ilgiliayrıcabaşkabirtalimatınhazırlanmasıgerekliliğivurgulanmış,sözkonusutalimatınkalemealı-nabilmesi amacıyla “Bulaşıcı Hayvan HastalıklarıKomisyonu”nun oluşturulmasına karar verilmiştir.Talimatın sonunda ise hayvanların cinsi, hayvansalmaddelerin türü ve miktarına göre alınacak muayenevergilerinedairtarifeler(Ek2,3ve4)eklenmiştir1.
Saptanabilen Osmanlı Arşivi belgelerine1 göreHüdavendigar Vilayetinde bu yasal metnin tam anla-mıylauygulanabilmesiiçinvilayetdahilinde-VeterinerGenelMüfettişliğidışında-bağlıtümsancaklarvehay-vanların şehir içine giriş yaptığı bölgelerde toplamsekizveterinerhekimingörevlendirilmesitalepedilmiş-tir.Buihtiyacınmevcutsivilveterinerhekimlerden,sivilveteriner hekim sayısının yetersizliği durumunda iseaskeri veteriner hekimlerden karşılanması istenmiştir.Ancak,1Mayıs1893tarihlikomisyonraporunagöre,otarihteyedisivilveterinerhekiminbulunduğu,bukişi-lerindeillerdeveterinermüfettişiolarakgörevlendirildi-ği, askeri veteriner hekimlerin ise henüz atamalarınınyapılmadığıbelirtilmiş,SivilVeterinerOkulumezunları-nınsayılarınınartmasıilebusorununçözüleceğiifadeedilmiştir. Ayrıca, izleyen yıllarda sadece İstanbul’dadeğil,tümOsmanlıtopraklarında,hattaSivilVeterinerOkulu’nun varlığından habersiz olan bölgelerde bileveterinerhekimliğihizmetlerininyürütüleceğivurgulan-mıştır1.Bekman(1940),yetiştirilmekteolansivilveteri-ner hekimlerin Hüdavendigar Vilayetine tayinleri ger-
çekleşene kadar bu geçici talimatın hükümlerinin ilkdefa Vet. Hek. Binbaşı Mehmet Emin ve Ali RızaBeyler, Vet. Hek. Kolağası4 Yani Bey, Vet. Hek.Sağkolağası Hasan Tahsin, Mehmet Nuri, MehmetŞemsiveNaimBeylerileVet.Hek.YüzbaşıHamdiBeytarafından uygulandığını bildirmiştir. Yine, 31 Mayıs1894tarihliyazışmadanhayvansağlıkzabıtasıileilgiliveterinerhekimlerdenoluşanbirkomisyonunmeydanagetirildiği ve daha sonra ikisi Askerî ve on ikisi SivilVeteriner Okulundan mezun 14 veteriner hekimin adıgeçenvilayetetayinedildiğibelirlenmiştir1.
Diğer taraftan, askeri ve sivil veteriner okullarındaeğitim-öğretimgörevlerininyanısırabirihayvansağlıkzabıtasıişlerinde,diğerihayvanatdepolarıveharalarınidaresiilehayvanıslahıçalışmalarındagörevlendirilmeküzerebinerFrankmaaşlaAvrupa’danikiveterinerheki-min getirtilmesi düşünülmüş, bu veteriner hekimlerinyönlendirmeleriyle hayvan sağlık zabıtası ve ıslahı ileilgili yasal düzenlemelerin gerçekleştirilmesi gerektiğibildirilmiştir1.KonuileilgiliolarakOsmanlıHükümetininFransa’danveterinerhekimtalepettiğianlaşılmıştır.BuamaçlaönceFransaHükümetitarafındanönerilenVet.Hek. Martel görevlendirilmiş ancak kendisinin dahasonra İstanbul’a gelmekten vazgeçmesi üzerine AlfortVeterinerOkulumezunlarındanVet.Hek.Trbioux’unüçsenesüreylegörevlendiridiğibelirlenmiştir5.
Hayvan sağlık zabıtası ile ilgili veteriner hekimliğihizmetleribelirleyenkurallarsadeceyasalmetinlerleilesınırlı kalmamış, veteriner öğrencilerin eğitim-öğretimprogramına da yansımıştır. Sivil Veteriner Okulunun1896yılınaaitdersprogramındayeralan“zabıta-isıh-hıye-ibaytariye”adlıdersin,öğretiminsonsenesindeverildiğivekonuileilgilibilgilerinsondereceayrıntılıbirşekildeişlendiğisaptanmıştır.Dersiçeriğinde,bulaşıcıhayvanhastalıklarınakarşıalınacakönlemlerdenbah-sedilmiş,özelliklesığırvebası,bulaşıcıpleuropneumo-ni,şaphastalığı,koyunçiçeği,uyuz,ruamveurre,bey-gir frengisi, kuduz ve antraks hastalıkları üzerindedurulmuştur.Ayrıca,tazminatkoşulları,sınırlardahay-vansağlıkzabıtasıileilgiliuygulanacakkurallar,tahaf-fuzhanelerde istihdam eden veteriner hekimleringörevleri, pazar panayır ve mezbahalarla ilgili geneldüzenlemelerveburalardaveterinerhekimliğihizmet-leri,geneldezenfeksiyonkuralları,dezenfekteedilecekyerler,eşyalar,aletlervebulaşıcıhastalıklarınherbiri-nekarşıuyulmasıgerekendezenfeksiyonuygulamala-rı, bulaşıcı hastalığın mevcudiyeti halinde hayvansahiplerinin,bölgemüdürlüğününveveterinerhekim-leringörevleri,panayır,pazarvemezbahalardayapıla-cakdenetimler,ihbarname,itlafşehadetnamesi,raporsuretleri,tazminatdilekçesi,belirlihastalıklariçinotop-
4Kolağası: Osmanlı ordusunda yüzbaşı ile binbaşı arasındaki rütbedir. Sağ ve sol olmak üzere ikiye ayrılan bu rütbede sağ kolağalığı, sol kolağalığından daha kıdemli sayılmıştır
5Başbakanlık Osmanlı Arşivi, Tarih: 25/Ca/1311, Dosya No: 322, Gömlek No: 24091, Fon Kodu: BEO, Tarih: 11/C/1311, Dosya No: 330, Gömlek No: 24725, Fon Kodu: BEO
38
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
si raporu gibi çeşitli resmi yazıların hazırlanması,Hüdavendigar Vilayetinde yürürlüğe konulan zabıta-isıhhıye-ihayvaniyetalimatı,hayvanvehayvansalmad-delerin cinisine ve miktarına göre alınacak muayenevergilerine dair tarifeler vb. bilgilerin ders kapsamınaalındığıbelirlenmiştir.
Veterinerhekimliğihizmetlerivehayvansağlıkzabı-tasıileilgiliolarakgerekokuliçindegereksedersprog-ramında görülen iyileştirme çalışmalarının yanı sırayasal düzenlemelere de devam edilmiştir (Erk veDinçer,1970,Başağaç,2001).Bukapsamdaöncelikle“Zabıta-i Sıhhiye-i Hayvaniye Talimat-ı Muvakkatesi”uyarınca “Bulaşıcı Hayvan Hastalıkları Komisyonu”kurulmuştur. Komisyonun çalışmaları doğrultusunda“Panayır ve Pazar ve Mezbahalarda İcra OlunacakZabıta-i Sıhhıye-i Hayvaniyye ve Muamelatına DairTalimatname” ile “Demiryolu ve Merakib-i Bahriye ileNaklolunanHayvanat içinMüsta’melEşyanınFennenTathirineDairTalimatname”,sözkonusugeçicitalima-tıntamamlayıcısıolarak15Ocak1899tarihindeyayım-lanmıştır(Başağaç,2001,Bekman,1940).
Bu dönem, Belediye Veteriner İşleri Müfettişliğitarafından kaleme alınan diğer bir belgede6 “Zabıta-iSıhhıye-i Hayvaniyye Talimat-ı Muvakkatesi”nin bazımaddelerinde yeniden düzenlemeye gidildiği saptan-mıştır. Düzenleme uyarınca, özellikle İstanbul’a girişçıkışbölgeleridikkatealınmış,bubölgelerdegörevlen-dirilen veteriner hekimler tarafından hayvanların olasıbulaşıcıhastalıklaryönündenmuayeneedilmesiöngö-rülmüştür. Düzenlemede, sığırların, sığır vebası, sığırciğer ağrısı, şap, antraks, verem, barbon, koyun vekeçilerin,çiçek,uyuz,şap,antraksvekeçilerdeayrıcakeçiciğerağrısı,köpeklerin,kuduz,atların,ruam,sıra-cavebeygir frengisigibibulaşıcıhastalıklarüzerindedurulmuştur. Ayrıca, karşılaşılan hastalıklara görekasaplıkhayvanlarınkesimindeveetlerinintüketimindeizlenenyollarayrıntılıolarakbildirilmiştir.
Ondokuzuncuyüzyılsonuveyirminciyüzyılbaşın-daveterinerhekimliğialanındagörülengelişmelerözel-likledemikrobiyolojiçalışmalarınınhızkazanarakhas-talıketkenlerininbiyolojikkarakterleri,bulaşmayollarıgibikonulardayenibilgilerinedinilmesi,hayvansağlıkzabıtası ile ilgilimevzuatınbelirlidönemlerdeyenidendüzenlenmesini gerektirmiştir (Bekman, 1950).Nitekim, II. Meşrutiyet’in ilanından sonra Talimathükümlerininülkeihtiyaçlarınıtamolarakkarşılayama-dığı gerekçesiyle önce 18 Aralık 1913 tarihinde“Zabıta-iSıhhıye-iHayvaniyeKanunuMuvakkati”dahasonraisekanunaişlerlikkazandıran“Zabıta-iSıhhıye-iHayvaniye Talimatnamesi” 19 Mart 1914 tarihindeyürürlüğe girmiş ve Cumhuriyetin ilk yıllarına kadargeçerliklerinikorumuşlardır(Özgür,2003).
Tartışma
Türkiye’de bilimsel temellere dayalı veterinerhekimliği öğretiminin 1842 yılında başlatılmasına rağ-men (Erk ve Dinçer, 1970, Subhi Ethem, 1918) ondokuzuncuyüzyılsonunakadargerekveterinerhekim-liği hizmetleri gerekse bulaşıcı hayvan hastalıklarıylamücadelekapsamındayeterlibiryasalaltyapınınkuru-lamadığıilerisürülebilir.Bununlabirlikte,SivilVeterinerOkulunun 1896 yılına ait ders programında yer alan“zabıta-isıhhıye-ibaytariye”adıaltındakidersin içeri-ğinde,hayvansağlıkzabıtasıileilgiliolarak21Temmuz1881tarihlibirnizamnamedenbahsedilmesi(Anonim,1896),konuyailişkinyasaldüzenlemelerintemelininbutarihteatıldığıyönündedeğerlendirilebilir.Ancakçeşit-li veteriner hekimliği tarihi kaynaklarında (Bekman,1940,ErkveAkkerman1969),1893yılındayürürlüğegiren “Zabıta-i Sıhhıye-i Hayvaniyye Talimat-ıMuvakkatesi”nin1 (Ek1)hayvansağlıkzabıtasınailişkinilk düzenleme olarak kabul edilmesi, 1881 tarihlinizamnameninhayvansağlıkzabıtasıözelindedüzen-lenenyasalbirmetinolmadığınıdüşündürmektedir.
Hayvansağlıkzabıtasıileilgilihukukimetinlerin,genelolarakhayvanvehayvansalmaddelerdeninsanve hayvanlara geçebilen hastalıklardan korunmayı vebulaşıcıhayvanhastalıklarınakarşımücadeleyiamaç-ladığı (Anonim,1940,Özgür,2003)görülmektedir.Bukapsamda hazırlanan “Zabıta-i Sıhhıye-i HayvaniyyeTalimat-ıMuvakkatesi”nin,hayvansağlığınınyanısırahalksağlığıvegıdagüvenliğiileilgilidüzenlemeleredeyasaldayanakoluşturduğu ileri sürülebilir.Talimatta1hastalıklarakarşıalınacakönlemlerde“bilimsellik”esa-sınayerverilmesi,Talimatın,oyıllardayenigelişenbirbilim dalı olan mikrobiyolojinin (Unat, 1970), OsmanlıDevleti’nde veteriner hekimliği alanında uygulandığınıgösteren ilk düzenlemelerden biri olduğu şeklindeyorumlanabilir.
Talimatın1 hayvan sağlık zabıtası ile ilgili veterinerhekimliğihizmetlerikonusundagenelbirçerçeveçizdi-ğisöylenebilir.Bununlabirlikte,sivilveterinerokulunundersprogramındayeralan“zabıta-isıhhıye-ihayvani-ye” adlı dersin içeriği incelendiğinde, hayvan sağlıkzabıtasına ilişkin oldukça ayrıntılı bir eğitim verildiği(Anonim,1896)görülmektedir.Budurum,hayvansağ-lık zabıtası uygulamalarının dönemin koşullarına göreoldukça kapsamlı ele alındığı ancak tam anlamıylayasalgüvencealtınaalınmadığıyönündedeğerlendiri-lebilir. Diğer taraftan, izleyen yıllarda gerek mezunveteriner hekim sayısının artması (Bekman, 1940,Subhi Ethem, 1918) gerekse çıkarılan talimatnamelerve gerçekleştirilen düzenlemeler (Anonim, 1940,Başağaç,2001,Özgür2003) ilebualandakiveterinerhekimliğiuygulamalarınıngeliştirildiğigörülmektedir.
6Başbakanlık Osmanlı Arşivi, Tarih: 04/Ra/1323, Dosya No: 826, Gömlek No: 16, Fon Kodu: ŞD.
39
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
KAYNAKLARAnonim.1896.MülkiyeBaytarDersProgramı.İstepanMatbaası,
İstanbul
Anonim. 1940. Veteriner Kanunları. T.C. Ziraat VekâletiNeşriyatı:480,Ankara.
BaşağaçR.T.2001.Türkiye’deikidünyasavaşıarasındavete-rinerhekimliğihizmetlerivehayvancılıkpolitikalarıüzerindearaştır-malar., Ankara Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü,YayımlanmamışDoktoraTezi.
Bekman M. 1940. Veteriner Tarihi. Ankara Basım ve Ciltevi,Ankara.
Bekman M. 1950. Klasik Hayvan Sağlık Zabıtası – “PoliceSanitaire”.HüsnütabiatBasımevi,İstanbul.
Dinçer F. 1999. Türkiye Cumhuriyeti’nin 75. Yılında VeterinerHekimliğin Bilimsel Bilançosu. Türkiye Cumhuriyeti’nin 75. YılındaBilim “Bilanço 1923-1998” Ulusal Toplantısı, Türkiye BilimlerAkademisi,Ankara,s.:335-368.
ErkN.,Akkerman,N.C.1969.Türkiye’deSığırVebasıSalgınlarıveEradikasyonuTarihi.A.Ü.Basımevi,Ankara.
ErkN.,DinçerF.1970.Türkiye’deVeterinerHekimlikÖğretimiveAnkara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Tarihi. Ankara ÜniversitesiBasımevi,Ankara.
KadanÜ.2002.HüdavendigarVilayeti’ninKurulusu,Teskilativeİdaresi. Uludağ Üniversitesi, Sosyal Bilimler Enstitüsü,YayımlanmamışYüksekLisansTezi.
Osman Nuri. 1924. İstanbul’un bir senelik et sarfiyatı veKaraağaçMezbahası.İstanbulŞehremanetiMecmuası,4,65-77.
Özgür A. 2003. Türkiye’de hayvan sağlık zabıtası mevzuatı vegelişimtarihi.VeterinerHekimleriDerneğiDergisi,74(3-4):23-30.
SubhiEdhem.1918.Nevsal-iBaytari.AgopMatasyonMatbaası,İstanbul.
Unat E. K. 1970. Osmanlı İmparatorluğunda Bakteriyoloji veViroloji. İ.Ü. Cerr. Tıp Fak. Yayınları 4/1568, Çeltüt Matbaacılık,İstanbul.
40
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
Resim 1: Zabıta-i Sıhhiye-i Hayvaniye Talimat-ı Muvakkatesi
41
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
42
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY
Ek 1: Zabıta-i Sıhhiye-i Hayvaniye Talimat-ıMuvakkatesi
1. Madde: Herhangibirbölgedeortayaçıkanhay-vanhastalığınınsalgınhastalıkolduğundanşüpheedi-lirisehayvansahibi,kasabaihtiyarmeclisiyadamuh-tarıdurumuenyakınbölgeveyakazanınmülkiidaresiaracılığıyla liva7 merkezinebildirecekvekonu ile ilgilibiremribeklemedenhastahayvanlarderhaldiğerlerin-denayrılarakayrıbiryerdekorumaaltınaalınacaklar-dır.
2. Madde: Livanın en büyük idare amiri, hastalığıhaber alır almaz en geç 24 saat içinde bir veterinermüfettişihastalığınortayaçıktığıbölgeyegöndererek,hastalığındurumunuilmerkezinebildirecektir.
3. Madde: Veterinermüfettiş,hastalıkolanbölgeyegidergitmezhastavesağlamhayvanlarayrılmamışsaayrılmasınısağlayacak,hastalığıntürvecinsiniaraştı-rarakhastalığındereceveönemine,bölgenindurumu-na ve bilimsel esaslara uygun gerekli önlemleri, yerelyönetimindesteğiveyardımıylauygulattıracakvehas-talığın, sığır vebası hastalığında olduğu gibi pek çokzararvekaybayolaçmasıdurumundayerelyönetim-dengenelmüfettiştalepedecektir.
4. Madde: Hastalık ortaya çıkan bölgede sağlamhayvanlaraşılanırsa,aşıyapılmadanöncegörevlivete-rinermüfettiş,çıkanizinveemreuygunolarakhareketetmeyemecburdur.
5. Madde: Çıkan hastalık ne türden olursa olsun,hastalığınortadankaldırılması içinuygulamayakonu-lan önlemlerin eksikliğinden veteriner müfettişler veuygulanmasısırasındagörülendikkatsizliklerdenyerelyönetimmemurlarısorumluolacaklardır.
6. Madde: Hastalıkhakkındagerekveterinermüfet-tişinönerilerigerekseyerelhükümetmemurlarınınaldı-ğıtedbirler,derhalilmakamınabildirileceğigibihasta-lığıngündengünegidişatı,verdiğikayıplarvs.hakkın-dadadüzenliolarakbilgilerverilecektir.
7. Madde: Yollardagirişçıkışındurdurulmasıveyahastalığınbulaşmasınaaracıolabilecekbirkısımhay-vanın veya büyük sürülerin itlafı gibi önemli tedbirleralınmadanönceilmakamınabildirilecektir.
8. Madde: Hastalığınçıktığıbölgedeyürütülensağ-lıkişlerininidaresiylegörevlendirilenveterinermüfetti-şin uygulamalarına hiç kimse tarafından müdahaleedilmeyecektir.
9. Madde: Hastalıktankurtulanbölgede,hastalığıntekrar çıkmayacağına kanaat getirilerek veterinermüfettişler tarafındankarantinaönlemlerivekorunmayollarının kaldırılması yazılı olarak teklif edilmedikçe,bölgedebulaşmayasebepolabilecekhayvanlarvehertürlümaddeninihracınakesinlikleizinverilmeyecektir.
10. Madde: İlsınırlarıdışındaçıkanhayvanhastalı-ğının şehir içine bulaşmasından korkulacak olur ise ilmakamınınbildirimiilebulaşmayasebepverecekhay-vanlarınvediğermaddelerinithaliyasaklanacaktır.
11. Madde: Hastalığın görülmediği zamanlardaşehre giriş yapacak hayvanlar için özel iskeleler ilekarada giriş kapıları tahsis kılınacak ve bu yerlerdetahaffuzhanelerinşaedilerekveterinerhekimlergörev-lendirilecektir.Şehregirişiistenenhayvanların,sınırlar-dagörevlendirilenveterinerhekimlertarafındanyapılanmuayenesindeherhangibirsakıncagörülmezse,dam-galandıktansonragirişlerineizinverilecekancakbey-gir, katır ve merkeplere damga vurulmayacaktır. Sözkonusuhayvanlardahastalıkbelirtisigörülürveyahas-talık olduğundan şüphe edilir ise veteriner müfettiştarafındangerekliönlemleruygulanacaktır.
12. Madde: Hayvansahipleri,ildışınahayvançıka-rabilmek içinyerelbelediyedairesindenhayvanlarınınsayısını,mümkünolduğuncaşekilvedurumunu,ayrıcaher tür bulaşıcı hastalıktan sağlam olduğunu belirtenbirşahadetnamealarakyerelyönetimeonaylattıracak-tır. Bu şahadetnamede, belediyede görevli veterinerhekimlerdenbirininmevcutolmadığıdurumlardabele-diyedoktorununmühürveyaimzasıolacaktır.
13. Madde: Hayvanlarınbelirlenençıkışkapısındandışarıçıkarılmalarıyadahayvanlar içinayrılan iskele-den gemi veya kayığa bindirilmeleri sırasında, oradagörevliveterinerhekimler tarafındanhayvansahibininelinde bulunan şehadetnameler incelenecek ve hay-vanların sağlık durumları kontrol edilecektir. Herşeyinyolunda olduğu anlaşıldığı takdirde hayvan sahibininelindekişahadetnameyeelkonularakkendisinebaşkabirbasılıruhsattezkeresiverilecektir.
14. Madde: Hayvansal ürünlerden deri, yün, boy-nuz,tırnakvb.maddelerinithalveihraçlarısırasındadaaynı muamele uygulanacaktır. Fakat ithal veya ihraçedilmekistenilenhayvansalürünler,bulaşıcıhastalıkla-rın ortadan kaldırılmasından dolayı karantinaların lağ-vedildiği bölgelerden getirilir ise hayvan sahibindensözkonusubölgedegörevliveterinermüfettişi tarafın-danhayvansalmaddelerindezenfeksiyonununyapıldı-ğınıgösterirşehadetnametalepolunacakvebumad-delerçuvallarda iseağızlarıkurşunmühürlemühürle-necek, deri ise başka kurşun mühürle bağlanacaktır.Durumlarıincelenenvemuayenesiyapılarakilleresevkve ihraç edilecek hayvanlar ile hayvansal maddelerinsahibine,çıkışkapısındagörevlisağlıkmemurutarafın-danheryerdemakbulvegeçerlitutulacakruhsatşeha-detnameleri verilecektir. İstanbul’a ya da sahillerdenbirininiskelesineçıkarılanhayvanlarınşehadetnamele-rionlarıntekrarmuayeneedilmemelerinigerektirmez.
7Livâ: Mülki İdarede il ve ilçe arasındaki derece, sancak
43
UGRLDERG‹S‹/JOURNAL of NFRL
15. Madde: Biryerdeortayaçıkanhayvanhastalı-ğının bulaşmasından önce bağlı oldukları bölge veyakazamerkeziidaresineveyaenyakınzabıtamemuru-nahabervermeyenmuhtarveihtiyarmeclisiheyetlerikanunen cezalandırılacakları gibi büyük ve küçükmemurlarilezabıtaheyetlerinindeihmalkârlıkderece-sivedikkatsizliklerinegöresorumluluklarıyasalgüven-cealtınaalınacaklardır.Veterinermüfettişlerinteklifiveyerel hükümetin emri ile uygulanması kararlaştırılanönlemlerekarşıgelerekbulaşıkolanhayvanlarınıdiğersağlam hayvanlarla temas ettirenler, hasta hayvansatanveyahutsatınalanlar,ölenhayvanlarıgömüldük-leriyerlerdençıkaranlar,karantinauygulamalarını ihlaledenler kısacası kararlaştırılan önlemleri isteyerek vebilerek hükümsüz bırakmaya çalışanlar veya bu yüz-den hastalığın bulaşmasına ve yayılmasına sebebiyetverenlervebutalimatakarşıgelerekbelirlenenbölge-lerdışındakiyerlerdenhayvangirişiveyaçıkışıyaptırankişiler,cezakanununauygunolarakcezalandırılacak-lardır.
16. Madde: Butalimatınamacınıntamolarakyeri-ne getirilebilmesi için şehir içinde bulunan hayvanpazarları,mezbahalar,kasapdükkanlarıvepanayırlarındüzenlenmesi,iyileştirilmesiveherbirininidaresihak-kındaayrıcabirtalimathazırlanacaktır.
17. Madde: Bu talimatın tamamıyla uygulamayakonulmasını temin için Vali Başkanlığında gerekenmemurlardan oluşan bir Bulaşıcı Hayvan HastalıklarıKomisyonu oluşturulacaktır. Sözü edilen komisyonPazar ve panayırlar ile mezbahaların durumunundüzenlenmesiileilgiliönlemleriiçerenveöncekimad-dedebildirilentalimatlayihasınıkalemealacaktır.
18. Madde: DahiliyeveTicaretveNafiaNezaretleributalimatınuygulanmasındansorumludur.
8Kıyye: 1283 gramı karşılayan eski bir ağırlık ölçüsü, Okka.
Ek 3: Hayvansürülerindenalınacakmuayenevergileri
Ek 4: Hayvansalürünlerdenalınacakvergiler
Ek 2: Hayvantürünegörealınacakmuayenevergileri
Muayene Vergisi Hayvan Türü
2Kuruş(Hayvanbaşına) Beygir,katır,merkep
1Kuruş20Para(Hayvanbaşına)
Koşuöküzüvemanda
1Kuruş(Hayvanbaşına) İnek,dana,buzağı
5Para(Hayvanbaşına)Hertürkoyun,keçi,kuzu
veoğlak
3Kuruş(Hayvanbaşına) Domuz,köpek
Muayene Vergisi Hayvan Sürüsü
40Kuruş50başıaşanhertürkarasığırve
mandasürüsü
60Kuruş100başıaşanhertürkarasığırve
mandasürüsü
100Kuruş200’denfazlabaşıaşanhertür
karasığırvemandasürüsü
Muayene Vergisi Hayvansal Ürün
1Kuruş
Boynuz,tırnak,yün,tiftik,kılvesaireninherbirçuvalından
(bugibieşyanınçuvaliçindenakillerizorunludur)
5ParaHayvanderilerininherbir
kıyyesinden8.
2Paraİthalveihraçedilmekistenilen
derininmiktarıyüzkıyyeyigeçeriseherbirkıyyesinden.
44
ULUSALGIDAREFERANSLABORATUVARI/NATIONAL FOOD REFERENCE LABORATORY