toxocara y toxoplasma en población de riesgo ocupacional
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D R . I G N A C I O T R O N C O S O T O R O R E D Z O O N O S I S . S O C I E D A D C H I L E N A D E Z O O N O S I S . S O C I E D A D
C H I L E N A D E I N F E C T O L O G Í A
TOXOCARA Y TOXOPLASMA EN POBLACIÓN DE RIESGO
OCUPACIONAL
Chillán, 26 de Junio 2015
SOCIEDAD CHILENA DE ZOONOSIS
TOXOCARIOSIS
Vol. XLIX, N° 1, Enero-Julio, 2009 5
Delgado O. & Rodríguez-Morales A. J.
En relación a la toxocariasis ocular, síndrome
de larva migrans ocular (SLMO) u oftalmitis
granulomatosa, ésta también fue descrita por primera
vez en los Estados Unidos de América (Wilder,
1950), incluso 2 años antes que el SLMV, y ha sido
descrita en diferentes partes del mundo, pero aun
relativamente poco estudiada, comparada con otras
entidades oftalmológicas y parasitarias. En Venezuela
el primer caso de toxocariasis ocular fue comprobado
por Cordero-Moreno en 1978 (Cordero-Moreno,
1978). Al igual que con el SLMV, en otros países
latinoamericanos, como Perú, la descripción del SLMO
ha sido mas reciente (1999) (Miranda et al., 1999).
ETIOLOGÍA
Taxonomía
Toxocara canis Werner (1782), es el ascarídeo
de los perros domésticos (Canis famil iaris). Su
morfología es similar a la del nemátodo Ascaris
lumbricoides, los machos adultos miden de 4 a 10 cms
de longitud y las hembras de 6,5 a 18 cms de longitud
(Fig. 3). Los huevos miden aproximadamente 85 x
75 μm, son de mayor tamaño que los de Ascaris (que
miden habitualmente 60 x 30 μm) (Fig. 3) (Garcia,
2007; John et al., 2006; Manson et al., 2003). Los
huevos de T. canis no se encuentran en el ser humano,
sólo en las heces de los perros y en suelos contaminados
(Tabla I) (Manson et al., 2003).
Toxocara cati Schrank (1788), es el ascarídeo
de los gatos. Su morfología es muy similar a la de
T. canis, los machos adultos miden de 3 a 6 cms de
longitud y las hembras de 4 a 7 cms de longitud. Los
huevos miden aproximadamente 75 x 70 μm, siendo de
menor tamaño que los de T. canis, pero mayores que
los de A. lumbricoides (Bouchet et al., 2003; Eberhard
& Alfano, 1998). Al igual que ocurre con los huevos
de T. canis, los de T. cati no se encuentran en el ser
humano, solo en las heces de los gatos y en suelos
contaminados (Garcia, 2007; Manson et al., 2003).
Otras especies del género Toxocara han sido
descritas en diferentes hospedadores vertebrados tales
como T. malaysiensis (Gibbons, 2001), reportada en
gatos domésticos (Felis catus) en Malasia (Gibbons
et al., 2001; Li et al., 2006); T. lyncis (Macchioni,
1999), caracterizada en linces (Lynx caracal) en
Somalia (Macchioni, 1999); T. vitulorum (Goeze,
1782), descrita en ganado (vacas, bufalos, bisones)
y en otros mamíferos (roedores, conejos) (Ferreira &
Starke-Buzetti, 2005; Goossens et al., 2007; Lamina,
1971); T. genettae (Warren, 1972), documentada en
vivérridos (Genetta genetta) en Europa (Sanmartin
et al., 1992). En la la Tabla II se presenta una lista
detallada de las especies del género Toxocara y su
ubicación taxonómica.
Desafortunadamente existen aun pocos
estudios sobre la estructura genética del género
Toxocara, a la fecha han sido secuenciados relativamente
pocos nucleótidos de las especies que lo componen. En
el GeneBank®, la base de datos de secuencias genéticas
del NIH (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/), se
encuentran secuencias de nucleótidos solo para cinco
especies del género Toxocara. En la Fig. 4 se muestran
las secuencias de los genes ITS 2 (internal transcribed
spacer) de dichas especies, y sus relaciones evolutivas
inferidas por el método de máxima parsimonia.
Ciclo de Vida
En el perro el ciclo de vida de T. canis
es similar al observado en A. lumbr icoides en
el ser humano, con la diferencia de la infección
transplacentaria y transmamaria. Los cachorros nacen
infectados e inician con el tiempo la eliminación de
Fig. 2. Relación entre la prevalencia de infección
por Toxocara canis y la edad del perro (generado
a partir de los datos de Acha et al., 2001; Barriga,
1988; Hoskins et al., 1982; Jordan et al., 1993;
Kirkpatrick, 1988; Lightner et al., 1978; Ramirez-
Barrios et al., 2004; Vanparijs et al., 1991; Visco et
al., 1977; Visco et al., 1978)
TOXOCARIOSIS
ETIOLOGÍA
• Hembra puede llegar a depositar 200.000 huevos.
• Dimorfismo sexual.
• Huevos no se encuentran en el ser humano.
(Alvarez, 2000).
CICLO BIOLÓGICO
Migración y localizaciones de Toxocara spp en el hombre (Archelli y col., 2008)
EPIDEMIOLOGÍA
Distribución mundial de la toxocariasis (Overgaauw, 1997).
ESTUDIO EPIDEMIOLÓGICO
• Enfermedad en los animales:
- Nivel mundial 2 %– 43% (Maguiña y col., 2004)
- Chile En perros 27% - 50% (Alcaíno y Tagle, 1970; Torres y col., 1972)
En gatos 84% - 99% (Franjola y Matzner, 1982; Alcaíno y col., 1992)
• Contaminación ambiental:
- Rangos de contaminación 0 a 1,3% como 66 – 68,3% (De la Fé y col., 2006)
- Santiago, Chile 33,3% (Castillo y col., 1999)
- Temuco, La Araucanía, Chile 48,3% helmintos de los que un 12,4% corresponde a Toxocara spp. (Armstrong y col., 2011)
• Toxocariosis humana:
- Nivel mundial 2,6% - 83% (Maguiña y col., 2004)
- América Latina 7,3% - 39% (Maguiña y col., 2004)
ESTUDIO EPIDEMIOLÓGICO
TRANSMISIÓN
• Vía oral directa o geofagia
• Vía oral indirecta
(Archelli y Kozubsky, 2008).
SIGNOS CLÍNICOS
Las formas clínicas de la toxocariosis en humanos pueden ser clasificadas de la siguiente manera: (Pawlowski, 2001)
i. Sistémica: Larva Migrans Visceral (LMV), completa o clásica e incompleta.
ii. Compartimentada: Toxocariosis Ocular (TO) y Neurológica (TN).
iii. Encubierta (TE).
iv. Asintomática (TA).
Santiago Pablo, 2015. Seguridad alimentaria bromatología y microbiología de los alimentos.
Bol. Mal. Salud Amb.12
Aspectos clínico-epidemiológicos de la toxocariasis
y destruida por la reacción granulomatosa lo cual
bloquea su potencial migración pero también conlleva
a patología (Manson et al., 2003). En el ser humano
las larvas no se desarrollan, pero pueden permanecer
vivas tanto como 11 años, de acuerdo a lo que se ha
demostrado experimentalmente (Despommier, 2003;
Manson et al., 2003). En el pasado, y recientemente,
se ha sugerido el poder encontrar parásitos adultos
de T. canis o T. cati en seres humanos, lo cual debe
entenderse más como una exposición a estos estadios,
sin desarrollo en el ser humano, que una infección por
los mismos (Eberhard & Alfano, 1998; von Reyn et al.,
1978). Es posible que los niños, estando en contacto
o manipulando los parásitos adultos expulsados por
cachorros de perros o gatos, puedan ingerir los vermes
y consecuentemente vomitarlos o expulsarlos con las
heces (Eberhard & Alfano, 1998).
Transmisión
La principal fuente de infección son los
cachorros, los cuales, como se ha mencionado,
excretan grandes cantidades de huevos (Despommier,
2003; Manson et al., 2003). La infección es adquirida
por los niños al jugar en suelos contaminados o en
parques, similar a lo que ocurre en la infección por
A. lumbricoides, y también ocurre en asociación con
el fenómeno de ingestión de tierra, y quizá con otras
formas de pica (CIE-9 307.52; CIE-10 F98.3)(Manson
et al., 2003), fenómeno común en niños, pero que
también se observa en otros grupos etarios (Glickman
& Schantz, 1981). La infección directa a través de
la manipulación de los cachorros no se considera un
riesgo mayor debido a que la embrionación de los
huevos excretados de T. canis requiere un mínimo
de dos semanas (Manson et al., 2003; Overgaauw,
1997a).
Adicionalmente a los perros y gatos, otros
animales, particularmente peridomésticos, como
ardillas, liebres y otros mamíferos pequeños y
medianos, pueden jugar un papel importante en la
dispersión de los huevos embrionados (Despommier,
2003; Dubinsky et al., 1995). Las aves que se alimentan
primariamente en el suelo (como pichones, palomas,
gorriones) pueden ser hospedadores paraténicos,
Fig. 6. Ciclo de Vida de Toxocara spp. en el Ser Humano.
DIAGNÓSTICO
Actualmente, se debe tener en cuenta hasta cinco datos clínicos para catalogar una toxocarosis sintomática: (Smith y col, 2009; Pawlowski,
2001).
I. Características de la historia del paciente
II. Signos y síntomas clínicos encontrados
III. Inmunoserología positiva
IV. Presencia de eosinofilia
V. Niveles incrementados de IgE total
PREVENCIÓN
• Control de la contaminación ambiental.
• Desparasitación de las mascotas.
• Lavado de manos continuo.
• Mantener limpia el área donde viven las mascotas.
• Educación de la población.
DATOS PUBLICADOS
• Prevalencia en Médicos veterinarios de la VIII
Región.
Felipe Cábala 2014
7.5%
92.5%
Positivos
Negativos
20
14
6
5%
7.14%
6.6%
0 5 10 15 20 25
25-35 AÑOS
36-44 AÑOS
≥ 45 AÑOS
positivos Total
DATOS NO PUBLICADOS
19
21
0
3
0
14.3%
0 5 10 15 20 25
MUJERES
HOMBRES
porcentaje Seropositivos Total
40
35
3
27
27
11.1%
6
6
0
2
2
0
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45
TOTAL
CON MASCOTA
POSITIVOS
No realiza Con protección Sin protección Total
• Prevalencia en Médicos veterinarios de la VIII
Región.
Felipe Cábala 2014
DATOS NO PUBLICADOS
SEXO POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
FEMENINO 2/28 7,1%
MASCULINO 0/12 0%
TOTAL 2/40 5%
Prevalencia en
estudiantes de
Medicina Veterinaria
Carolina Abarca
DATOS NO PUBLICADOS
POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
SI 2/32 6,2%
NO 0/6 0%
NO CONTESTA 0/2 0%
TOTAL 2/40 5%
DATOS NO PUBLICADOS
POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
SI 0/14 0%
NO 2/24 8,3%
NO CONTESTA 0/2 0%
TOTAL 2/40 8,3%
DATOS NO PUBLICADOS
TOXOPLASMOSIS
TOXOPLASMOSIS
SEM de un quiste cerebral en un ratón
©David Ferguson.
Taquizoítos (Trofozoítos)
© Dennis Kunkel Microscopy
Toxoplasma gondii es un protozoo, perteneciente al orden Coccidia y al
Phyllum Apicomplexa.
Se presenta en tres formas:
•Ooquiste que contiene esporozoítos.
•Taquizoíto, forma proliferativa.
•Bradizoíto, que vive en los quistes tisulares.
Ooquiste esporulado
© Facultad de Biología UCM
ETIOLOGÍA
Ciclo vital de Toxoplasma gondii (Koneman et al., 2004).
CICLO BIOLÓGICO
Según la Organización Mundial de la Salud (2006), existen 7,5 millones
de infectados y 55.185 nuevos casos por año. En América hay 80 a 100
millones de personas en riesgo de adquirir la enfermedad (Payá et al.,
2012).
Prevalencia mundial de infección gestacional y congénita de T. gondii
(Pappas et al., 2009)
EPIDEMIOLOGÍA
20 - 40% Población adulta - E.E.U.U.
(Sanz, 2010)
50 a 80% Población Adulta –
Europa. (Sanz, 2010)
54% Mujeres embarazadas -
Francia.
(Rosso et al., 2007)
12% Mujeres embarazadas -
Suecia.
(Rosso et al., 2007)
58% - Costa Rica*
52,5% - mujeres gestante-
Colombia*
47% - Población general*******
35,8% - Trinidad y Tobago*
43 a 60% - Venezuela*
44% - Mujeres gestantes - La Habana, Cuba*
56,6% - Minas Gerais – Brasil*
56,6% - Paraná – Brasil*
20% - Región de los Lagos – Chile*****
10% - Med. Vet - Región del Bíobío – Chile**
37 y 25%. Población general - Chile*****
60% - Benef. Anim. Región del Bíobío – Chile***
36,9%. Población adulta joven - Chile****** * Reátegui y Vela, 2011.
** Poblete, 2013.
*** Soto, 2013.
**** Zamorano et al. 1998
***** Payá et al., 2012
****** Canales et al., 2010
******* Blanco et al., 2011
VÍA DE ADQUISICIÓN FORMA INFECTANTE
Digestiva*
Congénita**
Transfusión de sangre o leucocitos
Transplante de órganos
Inoculación accidental en
laboratorio
Reinfección endógena***
Quiste, ooquiste*
Taquizoíto**
Taquizoítos
Quistes, taquizoítos
Taquizoítos, quistes, ooquistes
Quistes, taquizoítos***
Principales modos de transmisión de T. gondii en humanos (Carrada-Bravo, 2004).
TRANSMISIÓN
•Toxoplasmosis sistémica congénita
•Toxoplasmosis sistémica adquirida
•Toxoplasmosis en el huésped inmunocomprometido
•Toxoplasmosis ocular (Mesa et al., 2011).
Toxoplasmosis ocular Toxoplasmosis cutánea Toxoplasmosis congénita
SIGNOS CLÍNICOS
INDIRECTAS
•TÉCNICA SABIN Y FELDMAN: Método clásico y específico, trabaja con parásitos vivos. Los parásitos se tiñen con azul de metileno.
•INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA (IFI): Mide IgG , no requiere trabajar con parásitos vivo. Se adhieren a la pared del parásito que observan fluorescentes.
•ENZYM LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY (ELISA): Detección de IgA específica
•INMUNOANÁLISIS QUIMIOLUMINISCENTE: IgA, IgG, IgM, técnica simple, suero.
DIRECTAS
•POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR): Amplifica ADN del parásito. Indica le presencia del parasito en liquido y tejidos.
•INOCULACIÓN Y CULTIVO: Aísla el parásito en infecciones agudas en sangre, LCR,
esputo y en tejidos infectados.
DIAGNÓSTICO
La eliminación diaria de las deposiciones contenidas en cajas de
arena, minimiza la infección con ooquistes (al menos 24 horas a
temperatura ambiente para esporular y ser infectantes) (López et al.,
2013).
De manera universal, son importantes el lavado frecuente de manos
e higiene en la manipulación de alimentos. No ingerir carne poco
cocida y frutas o verduras mal lavadas (Mora, 2011; Payá et al., 2012).
La toxoplasmosis congénita es una enfermedad prevenible mediante
el chequeo pregestacional y la adopción de medidas de profilaxis
primarias en las gestantes seronegativas (Baquero-Atigao et al., 2013).
Siempre se debe realizar un screening serologico en donantes y
receptores en trasplante de sangre y médula ósea (TMO). La transmision de un donante seropositivo a un receptor seronegativo es
posible pero muy infrecuente (Mora, 2011).
PREVENCIÓN
Toxoplasma
gondii Oocyst–
specifi c Antibodies
and Source of
Infection
Claudia A. Muñoz-Zanzi, Paulina Fry, Blaz Lesina,
and Dolores Hill
Infection source can determine cost-effective public
health interventions. To quantify risk of acquiring Toxoplas-
ma gondii from environmental sources versus from meat, we
examined serum from pregnant women in Chile. Because
43% had oocyst-specifi c antibodies, we conclude that con-
taminated meat remains the primary source of infection but
that environmental sources also pose substantial risk.
Toxoplasmosis is a zoonotic disease that occurs world-
wide and is caused by the protozoon Toxoplasma gon-
dii. The public health relevance of toxoplasmosis relates to
congenital (1) and postnatal infection (2–4). The distribu-
tion of postnatal infection is highly variable worldwide, or
even within a country, probably because of environmental,
socioeconomic, and cultural factors. Seroprevalence esti-
mates range from 11% in the United States (5) to >70% in
Brazil (6). Postnatal infection is caused by ingestion of un-
dercooked meat containing tissue cysts; ingestion of water,
fruits, vegetables, and shellfi sh contaminated with oocysts;
or unintentional ingestion of cat feces or soil that contain
oocysts (7,8). Population studies to determine specifi c risk
factors for infection and source attribution have been based
on the epidemiologic analysis of information from ques-
tionnaires administered to infected and uninfected persons;
however, applicability of this method is limited. The rela-
tive roles of various potential sources are not known and
probably vary from population to population. Knowledge
of sources of infection within a specifi c type of commu-
nity can provide valuable information for designing cost-
effective food safety and public health interventions. Our
objective, therefore, was to quantify the risk of acquiring
infection from environmental sources (oocysts) compared
with the risk from eating meat. We did so by detecting an-
tibodies against a recombinant sporozoite-specifi c protein
(SSP), which is found only in the oocyst (sporozoite) stage
of the parasite (9,10).
The Study
We used 494 banked serum samples from pregnant
women in Valdivia Province, southern Chile, who had
participated in an unrelated study. T. gondii prevalence
in this population was high (39%). A convenience sample
was selected from among women who were at least 18
years of age at the time of their fi rst prenatal visit at 1 of
5 public clinics, which served mostly low-income persons
from urban communities. Information available was age,
gestation time, residency (urban or rural), socioeconomic
status, and education level. Because of the small sample
size, p<0.1 was considered signifi cant. The study protocol
(0901E57685) was approved by the University of Minne-
sota Institutional Review Board.
Past exposure to T. gondii was determined qualitatively
by immunoglobulin (Ig) G, detected by using a commercial
enzyme immunoassay kit (Toxoplasma IgG EIA, Bio-Rad
Laboratories, Redmond, WA, USA). According to the man-
ufacturer, sensitivity and specifi city of this assay were 83%
and 93%, respectively. Approximate timing of infection for
patients with IgG-positive samples was ascertained by us-
ing a commercial solid-phase enzyme immunoassay (Toxo-
plasma gondii IgG Avidity EIA; Ani Labsystems Ltd. Oy,
Vantaa, Finland) to determine avidity (binding ability) in-
dex. According to manufacturer recommendations, results
were interpreted as follows: avidity <15%, acute infection;
15%–30%, possible infection during the past 6 months; and
>30%, infection not within the past 3 months.
A Western blot assay developed at the Animal Para-
sitic Diseases Laboratory of the US Department of Agri-
culture, with estimated sensitivity and specifi city of 88%
and 100%, respectively, was used to qualitatively evaluate
IgG-positive serum samples for antibodies to SSP. Details
of the assay protocol and validation procedures have been
submitted for publication (D. Hill et al., unpub. data, www.
ars.usda.gov/research/projects/projects.htm?ACCN_NO=
409642&showpars=true&fy=2009).
A total of 193 samples were positive for T. gondii
IgG; overall seroprevalence was 39.1% (90% confi dence
interval [CI] 34.9%–43.5%) (Figure). Age of seropositive
women was higher than that of seronegative women (p =
0.011). In addition, college-level education was protec-
tive for T. gondii exposure (p = 0.077) (Table). Of 180 T.
gondii IgG–positive women with available SSP results, 64
(35.5%) had SSP antibodies. Validation of the SSP assay
indicated that SSP antibodies tend to decrease over time
and can become undetectable after 6–8 months (Hill et al.,
unpub. data); therefore, we calculated the proportion of
the study population with SSP antibodies among women
with evidence of recent (within the past 6 months) infec-
Emerging Infectious Diseases • www.cdc.gov/eid • Vol. 16, No. 10, October 2010 1591
Author affi liations: University of Minnesota, Minneapolis, Minneso-
ta, USA (C. Muñoz-Zanzi); Universidad Austral de Chile, Valdivia,
Chile (C. Muñoz-Zanzi, P. Fry, B. Lesina); and United States De-
partment of Agriculture, Beltsville, Maryland, USA (D. Hill)
DOI: 10.3201/eid1610.091674
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Boletín chileno de parasitologíaversión impresa ISSN 0365-9402
Bol. chil. parasitol. v.55 n.3-4 Santiago jul. 2000
http://dx.doi.org/10.4067/S0365-94022000000300012
Frecuencia de anticuerpos anti Toxoplasm a gondii
en gatos de la ciudad de Valdivia, Chile.
Francisca Ovalle1, Alejandro García2, Jorge Thibauth3 y Myriam Lorca2
1) Facultad de Ciencas Veterinarias y Pecuarias, Universidad Autral de
Chile. 2) Programa de Parasitología, ICBM, Facultad de Medicina, Universidad
de Chile. 3) Departamento de Inmunología, Facultad de Ciencias Veterinarias
y Pecuarias, Universidad Austral de Chile.
Abstract
Frequency of anti-Toxoplasm a gondii antibodies in cats from Valdivia city,
Chile
Toxoplasmosis is a parasitic zoonosis. The importance of the cat as related to
this parasitose lies in the fact that it is not only the definite host of the parasite, but responsible for its
dissemination through the release of oocysts, which subsequently infect both humans and other animals.
The objective of this study was to determine the serological prevalence of Toxoplasm a gondii in the feline
population of the city of Valdivia (Chile) and to establish the possible epidemiological implications of this
prevalence. With these goals in mind the technique of indirect immunofluorescence was implemented to detect
anti- T. gondii species - specific IgG. Blood samples from 97 cats (selected using a directed sampling process)
from different sectors of Valdivia were collected. The sample included 46 males and 51 females of different ages,
Positive and negative control sera obtained from de United States were used to verify the results, observed by UV
microscopy. The anti-feline IgG antibody was used as directed by the manufecturer (Sigma).
Of the 97 selected cats, 32 were found to be positive with a titre higher than 1:4, a prevalence of 33.0%. The
number of infected males as compared to the number of infected females was found to be statiscally insignificant,
using the chi-square analysis with p less than 0.1. In contrast, a definite correlation between age and seropositivity
was found; infection levels were higher in older animals.
These results are consistent with those obtained in different studies on this topic that have been performed in
different parts of the world. However, they would seem to be in conflict with other, similar studies that have been
done recently in Chile; this may be due to the fact that the cats selected for this study were exposed to different
climatic conditions than those examined in previous works.
In conclusion, it has been determined that in Valdivia exist cats infected by T. gondii, which indicate the presence
of the necessary epidemiological conditions for the persistence of this parasitic cycle and the source of infection for
humans and other animals.
Palabras clave ( Key w ords) : toxoplasmosis; infección en gatos (cats infection); diagnóstico (diagnosis);
prevalencia (prevalence).
De un total de 97 gatos muestreados y analizados mediante la prueba de IFI, 32 resultaron positivos a la presencia
de IgG específica anti-T. gondii, lo que corresponde a una prevalencia de 33,0% (Tabla I).
TABLA I
Resultados serológicos obtenidos mediante IFI para toxoplasmosis, según edad y sexo en 97 gatos de
Valdivia, Chile.
Edad Machos Hembras Total
(Años) N exami- Positivos N exami- Positivas N exami- Positivos
nados nadas nados
N % N % N %
0-1 22 5 22,7 17 03 17,7 39 08 20,5
2-4 28 8 40,0 27 10 37,0 47 18 38,3
0>5 04 1 25,0 07 05 71,4 11 06 54,6
Total 46 140 30,4 51 18 35,3 97 32 33,0
*Resultados estadísticamente significativos. p<: 0.001
La prevalencia en machos alcanzó a 30,4 y a 35,3% en hembras, no apreciándose diferenciasestadísticamente significativas. De acuerdo a los resultados obtenidos según edad y sexo y además los
resultados en cada grupo etáreo, la prevalencia osciló entre 20,5 y 54,6%, observándose una correlación
estadística con la edad.
En la Tabla II se pueden observar las manifestaciones clínicas que se constataron en 16 de los 97 gatos
muestreados; 9 de los gatos presentaron manifestaciones clínicas asociadas a serología positiva.
TABLA IIAsociación entre seropositividad y manifestaciones clínicas encontradas en 16 de los 97 gatos
muestreados para T. gondii en Valdivia.
Manifestaciones
Clínicas
Total Resultado serológico
NegativoPositivo
Diarrea6 6
-
Neumonia 3 - 3
Compromiso general* 3 - 3
Lesiones oculares 2 - 2
Anemia2
1 1
Total160 7 9
DATOS PUBLICADOS
DATOS PUBLICADOS
2
16
10,00%
2
13
14,30% 0
11
0% 0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
Positivos Total Porcentaje
25-34 años 35-44 años ≥ 45 años • Prevalencia de Toxoplasma Médicos veterinarios de la VIII Región
• Tesis Marcela Poblete
DATOS NO PUBLICADOS
Hábitos alimenticios Positivos/ total Porcentaje
Carne y verduras 4/38 10,53%
Sólo verduras 0/2 0%
Total 4/40 10,53%
Poseen mascotas total Porcentaje
Si 35 87,5%
No 5 22,5%
Total 40 100%
DATOS NO PUBLICADOS
Recolección Heces Positivos/total Porcentaje
Con Protección 1/6 16,6%
Sin Protección 3/27 11,1%
No realiza 0/7 0%
• Prevalencia de
Toxoplasma Médicos
veterinarios de la VIII Región
• Tesis Marcela Poblete
DATOS NO PUBLICADOS
• Prevalencia de
Toxoplasma en criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS
• Prevalencia de
Toxoplasma en criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS
• Prevalencia de
Toxoplasma en
criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS
22%
78%
Positivos Negativos
94%
6%
Mayores de 21 años Menores de 21 años
• Prevalencia de Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS
25%
75%
Hombres Mujeres
• Prevalencia de
Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea
Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS
23%
7%
44%
0%
77%
93%
56%
100%
S I E M P RE C AS I S I E M PRE O C AS I O N AL M E N T E N U N C A
Positivos Negativos• Prevalencia de
Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea Cuevas
22% 19%
37%
78% 81%
63%
C O N P R O T E C C I Ó N S I N P R O T E C C I Ó N N O R E AL I Z A
Positivo Negativo
DATOS NO PUBLICADOS
12%
63%
19%
6%
LIMPIEZA DE HECES
Con Protección Sin Protección No Realiza No Posee Mascotas
• Prevalencia de Toxoplasma en estudiantes
• Tesis Andrea Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS
24
61,5
0
10
20
30
40
50
60
70
N° de individuos
Porcentaje de individuos seropositivos
• Prevalencia de Toxoplasma en operarios de planta faenadora
Tesis Natalia Soto
DATOS NO PUBLICADOS
66,60% 35,90% 87,20% 94,90%
17
8
19
1
Guantes Mascarilla Desinfección del material Lavado de manos luego de
manipular carne
Uso/Realiza Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS
33% 64,10%
12,80% 5,10%
7
16
5
1
Guantes Mascarilla Desinfección del Material Lavado de Manos luego de
manipular carne
No Uso/ No Realiza Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS
12,80% 41% 100% 2
10
24
consumo de carne
cruda
consumo de carne
poco cocida
lavado de manos
antes de comer
si consume/realiza seropositivos
87,20% 59%
22
14
consumo de carne
cruda
consumo de carne
pococ cocida
lavado de manos
antes de comer
no consume/ realiza seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS
Tiempo
(años)
N°
individuos
Positivos Prevalencia
1 12 7 58,3%
3 9 6 66,6%
5 6 3 50%
10 1 0 0%
>10 11 8 72,7%
2
37
1
23
0
5
10
15
20
25
30
35
40
Hasta 3 días 4-7 días
N° individuos Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS
INFORMACIÓN ZOONOSIS