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Tierärztliche Hochschule Hannover
Tierart- und erregerspezifische Maßnahmen zur Optimierung des Gesundheitsmanagements für nordamerikanische Säugetiere in Zoologischen
Gärten
INAUGURAL-DISSERTATION Zur Erlangung des Grades einer Doktorin der Veterinärmedizin
- Doctor medicinae veterinariae - ( Dr. med. vet. )
vorgelegt von Stefanie Markowski
Gelsenkirchen
Hannover 2013
Wissenschaftliche Betreuung : Prof. Dr. Michael Böer
Institut für Tierhygiene, Tierschutz und Nutztierethologie
1. Gutachter: Prof. Dr. med. vet. Michael Böer
2. Gutachter: Prof. Dr. med. vet. Thomas Blaha Tag der mündlichen Prüfung: 06. Mai 2013
Thorsten, meinen Eltern, Großeltern und Melanie
in Liebe und Dankbarkeit
Inhaltsverzeichnis Einleitung ............................................................................................................. 1 1
Literatur ............................................................................................................... 3 2
2.1 Biber ............................................................................................................. 3
2.2 Wolf .............................................................................................................. 5
2.3 Braunbär ...................................................................................................... 9
2.4 Eisbär ..........................................................................................................12
2.5 Luchs ...........................................................................................................14
2.6 Robbe ..........................................................................................................16
2.7 Elch .............................................................................................................20
2.8 Rentier .........................................................................................................24
2.9 Allgemeine Anforderungen im Rahmen der Quarantäne .............................28
Material und Methoden ...................................................................................... 30 3
3.1 Beteiligung Zoologischer Gärten .................................................................30
3.2 Verteilung der Tiergruppen ..........................................................................31
3.2.1 Biber (Castor) ........................................................................................ 31
3.2.2 Wolf (Canis lupus) ................................................................................. 32
3.2.3 Braunbär (Ursus arctos) ........................................................................ 32
3.2.4 Eisbär (Ursus maritimus) ...................................................................... 32
3.2.5 Luchs (Lynx) ......................................................................................... 32
3.2.6 Robben ................................................................................................. 32
3.2.7 Elch (Alces) ........................................................................................... 33
3.2.8 Rentier (Rangifer tarandus) .................................................................. 33
3.3 Verteilung der Tiergruppen auf die Gesamtmenge der untersuchten Tiere .33
Ergebnisse ........................................................................................................ 35 4
4.1 Erregerspezifische Analyse .........................................................................35
4.1.1 Erregerspezifische Analyse - Bakterien ................................................ 35
4.1.2 Enterobacteriaceae ............................................................................... 37
4.1.3 Streptokokkus ....................................................................................... 38
4.1.4 Staphylokokkus ..................................................................................... 40
4.1.5 Clostridium ............................................................................................ 41
4.1.6 Salmonella ............................................................................................ 42
4.1.7 Pseudomonas ....................................................................................... 43
4.2 Erregerspezifische Analyse - Parasiten .......................................................44
4.2.1 Strongyloidea ........................................................................................ 46
4.2.2 Trichuris ................................................................................................ 47
4.2.3 Capillaria ............................................................................................... 48
4.2.4 Askaridoidea ......................................................................................... 49
4.2.5 Kokzidia ................................................................................................ 51
4.2.6 Nematoda ............................................................................................. 52
4.2.7 Trichostrongyloidea ............................................................................... 53
4.3 Erregerspezifische Analyse - Viren .............................................................54
4.3.1 Parvovirus ............................................................................................. 56
4.3.2 BVD / MD bei verschiedenen Tierarten ................................................. 57
4.3.3 Bovines Herpesvirus 1 (BHV – 1) ......................................................... 57
4.3.4 Virus des Bösartigen Katarrhalfiebers ................................................... 58
4.3.5 Staupevirus ........................................................................................... 58
4.3.6 Orthopoxvirus........................................................................................ 59
4.4 Tierartspezifische Analyse ..........................................................................60
4.4.1 Biber ..................................................................................................... 60
4.4.2 Wolf ....................................................................................................... 62
4.4.3 Braunbär ............................................................................................... 64
4.4.4 Eisbär .................................................................................................... 66
4.4.5 Luchs .................................................................................................... 68
4.4.6 Robbe ................................................................................................... 70
4.4.7 Elch ....................................................................................................... 72
4.4.8 Rentier .................................................................................................. 74
Diskussion ......................................................................................................... 76 5
5.1 Diskussion artspezifischer Ergebnisse ........................................................76
5.1.1 Diskussion Biber ................................................................................... 76
5.1.2 Diskussion Wolf .................................................................................... 79
5.1.3 Diskussion Braunbär ............................................................................. 83
5.1.4 Diskussion Eisbär ................................................................................. 86
5.1.5 Diskussion Luchs .................................................................................. 89
5.1.6 Diskussion Robben .............................................................................. 92
5.1.7 Diskussion Elch ..................................................................................... 95
5.1.8 Diskussion Rentier ................................................................................ 98
5.2 Empfehlungen für tiermedizinische Maßnahmen im Rahmen von
Überwachungsprogrammen .............................................................................103
5.2.1 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Bibern ............................ 105
5.2.2 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Wölfen ........................... 106
5.2.3 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Bären ............................ 107
5.2.4 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Luchsen ........................ 108
5.2.5 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Robben ......................... 109
5.2.6 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Hirschen ........................ 110
Zusammenfassung .......................................................................................... 113 6
Summary ......................................................................................................... 116 7
Schrifttum ........................................................................................................ 119 8
Anhang I ................................................................................................................. 150
Anhang II ................................................................................................................ 151
Anhang III ............................................................................................................... 155
Anhang IV ............................................................................................................... 161
Anhang V ................................................................................................................ 174
Anhang VI ............................................................................................................... 180
Anhang VII .............................................................................................................. 195
Anhang VIII ............................................................................................................. 200
Anhang IX ............................................................................................................... 206
Anhang X ................................................................................................................ 220
Anhang XI ............................................................................................................... 234
Anhang XII .............................................................................................................. 244
Anhang XIII ............................................................................................................. 257
Anhang XIV ............................................................................................................ 270
Anhang XV ............................................................................................................. 284
Anhang XVI ............................................................................................................ 297
1
Einleitung 1 Die Haltung von exotischen Tieren in Menschenhand war im Laufe der Jahrhunderte
einem starken Wandel unterzogen. Nach der Zurschaustellung von Wildtieren und
der Gestaltung von zoologischen Einrichtungen mit Menageriecharakter begann im
ersten Drittel des vergangenen Jahrhunderts die Präsentation von Zootieren unter
naturnahen Verhältnissen. Moderne zoologische Einrichtungen der heutigen Zeit
verstehen sich als Institutionen des Tier - und Artenschutzes, in denen ein
artgerechtes Tiermanagement, Forschungsarbeiten zur Arterhaltung in menschlicher
Obhut und im natürlichen Lebensraum sowie eine Bewusstseinsförderung und
Aufklärung der Öffentlichkeit hinsichtlich der biologischen Vielfalt betrieben wird
(PIES – SCHULZ - HOFEN 2004).
Infektionskrankheiten wie beispielsweise die Tuberkulose führten in den letzten
hundert Jahren zu zahlreichen Verlusten in den Zootierbeständen (DITTRICH 2000).
Trotz des wissenschaftlichen Fortschritts der Tiermedizin sind viele Fragen bezüglich
des Infektionsgeschehens exotischer Tierarten offen. Die Empfänglichkeit für
einzelne Infektionserreger bei verschiedenen Spezies wie auch der aktuelle
Infektionsstatus in zoologischen Einrichtungen ist in vielen Fällen ungeklärt.
Das Wissen um die Bedeutsamkeit der einzelnen Krankheitserreger für die
verschiedenen Spezies ist eine Grundlage zur Erstellung durchdachter
Prophylaxeprogramme durch den betreuenden Zootierarzt, die von der EU -
Zoorichtlinie von den einzelnen Einrichtungen gefordert werden.
Mit Etablierung der Zuchtprogramme zur Arterhaltung findet ein häufiger
Tieraustausch zwischen den verschiedenen Zoologischen Gärten statt. Zur
Vermeidung des Einbringens von Infektionskrankheiten in den Tierbestand wird in
der Regel eine Quarantäne bei den betreffenden Tieren durchgeführt, die abhängig
von Art und Herkunft gesetzlich geregelt ist. Neben den gesetzlich vorgeschriebenen
2
Verfahrensweisen der Diagnostik muss der Zootierarzt im Einzelfall entscheiden,
welche Erkrankung für die jeweilige Tierart und seinen Tierbestand bedeutsam ist. In
vielen Fällen muss die Notwendigkeit einer Probenentnahme genau abgewogen
werden, da aufgrund der erschwerten Zugänglichkeit bei Wildtieren oft ein
Gesundheitsrisiko durch eine nötige Immobilisierung besteht sowie einhergehende
Managementmaßnahmen damit verbunden sind.
Die vorliegende Arbeit soll für einen Teil der exotischen Tiere in deutschen
Zoologischen Gärten Aufschluss über die aktuelle Bedeutsamkeit verschiedener
bakterieller, parasitärer und viraler Infektionserreger sowie Hinweise zum Vorgehen
im Rahmen von Prophylaxe - beziehungsweise Quarantänemaßnahmen liefern. Mit
Neugestaltung der ZOOM Erlebniswelt in Gelsenkirchen werden die Tiere gemäß
ihrer natürlichen geographischen Herkunft präsentiert. Mit der Fertigstellung des
ersten Zooabschnitts „Alaska“ sind eine Neubeschaffung und Quarantänisierung
vieler Tierarten verbunden. Anlässlich dieses aktuellen Geschehens beschränkt sich
die vorliegende Untersuchung zur Eingrenzung der Artenzahl auf einige Säugetiere
Nordamerikas.
3
Literatur 2 Die unten aufgeführten Tabellen zeigen die Literaturstellen zu parasitären,
bakteriellen und viralen Infektionskrankheiten bei den in dieser Arbeit behandelten
Tierarten. Außerdem werden allgemeine Anforderungen im Rahmen der Quarantäne
vorgestellt.
2.1 Biber
Tabelle 1: Bakterien bei Bibern in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli Kein Bestandteil der physiologischen Darmflora bei vielen Nagetieren
MATTHES et al. 1969
Yersinia pseudotuberkulosis
Untersuchungen zu infektiösen Todesursachen in Deutschland zwischen 1988 und 1994
NOLET et al. 1997
Yersinia pseudotuberkulosis
bedeutende Erkrankung aller Nagetiere mit großer Verbreitung
RUEMPLER 1995
Leptospira sp. Untersuchungen zu infektiösen Todesursachen in Deutschland zwischen 1988 und 1994
NOLET et al. 1997
Streptokokkus sp. Nachweis bei Bibern LAWSON et al. 2005
Streptokokkus castoreus sp. nov.
Definition einer neuen Streptokokkenspezies LAWSON et al. 2005
Aeromonas hydrophila
meist perakute Erkrankung mit häufig letalem Verlauf
RUEMPLER 1995
Tabelle 2: Parasiten bei Biben in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Castorstrongylus castoris
Nachweis als Vertreter der Strongyloidea CHAPIN 1925
Castorstrongylus castoris
Parasitologische Untersuchung verschiedener Säugetiere Kanadas
THRELFALL 1969
Castorstrongylus castoris
Spezifischer Helminth des Bibers ROMASHOV 1976
Eimeria Isolation von Oozysten KORNER 1978
Protozoa Isolation bei 6,4% von 62 untersuchten Bibern 2002 bis 2004 in Massachusetts
FAYER et al. 2006
Toxoplasma gondii Antikörpernachweis bei 10% von 62 Bibern in Massachusetts
JORDAN et al. 2003
Eimeria sprehni Nachweise 1998 bis 2000 in Polen DROZDZ et al. 2004
Stichorchis subtriquestrus
häufiger Vertreter der Trematoda beim Biber VENGUST et al. 2009
4
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Stichorchis subtriquestrus
häufiger Vertreter der Trematoda beim Biber MAZEIKA et al. 2003
Stichorchis subtriquestrus
häufiger Vertreter der Trematoda beim Biber KOUBKOVA et al. 2002
Stichorchis subtriquestrus
Nachweis in Polen JOSZT 1964
Stichorchis subtriquestrus
spezifischer Helminth für den Biber ROMASHOV 1976
Stichorchis subtriquestrus
Nachweis Anfang der achtziger Jahre SOLOV`EV et al. 1983
Stichorchis subtriquestrus
Positiver Nachweis in über 90% bei Untersuchungen von frei lebenden Bibern in Polen zwischen 1998 und 2000
DROZDZ et al. 2004
Fasciola hepatica Nachweis beim Biber SHIMALOV u. SHIMALOV 2000
Travassosius americanus
Nachweis als Vertreter der Trichostrongyloidea CHAPIN 1925
Travassosius rufus spezifischer Helminth für den Biber ROMASHOV 1976
Travassosius rufus positiver Nachweis bei Bibern SOLOV`EV et al. 1983
Travassosius rufus positiver Nachweis bei Bibern MAZEIKA et al. 2003
Travassosius rufus über 60% untersuchter frei lebender Biber in Polen DROZDZ et al. 2004
Trichostrongylus axei Positiver Nachweis DROZDZ et al. 2004
Trichostrongylus capricola
Isolierung Anfang der sechziger Jahre in Polen JOSZT 1964
Strongyloides spp. Nachweise in sechziger und siebziger Jahren KORNER 1978, JOSZT 1964
Trichuris spp. Nachweise in sechziger und siebziger Jahren KORNER 1978, JOSZT 1964
Askaris castoris Nachweise in sechziger und siebziger Jahren KORNER 1978, JOSZT 1964
Cestoda nicht weiter differenziert, Nachweis in Polen JOSZT 1964
Echinokokkus granulosus
Nachweis 1998 bis 2000 bei frei lebenden Bibern in Polen
DROZDZ et al. 2004
Echinokokkus multilokularis
Positiver Nachweis dokumentiert JANOVSKY et al. 2002
5
Tabelle 3: Viren bei Bibern in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Orthopoxvirus Nachweis bei Bibern in einem deutschen Zoo HENTSCHKE et al. 1999
In der Literatur sind Yersinia, Leptospira, Streptokokken und Aeromonas hydrophila
als bakterielle Erreger des Bibers beschrieben. Positive Nachweise von Vertretern
der Strongyloidea und der Trematoda beim Biber sind häufig aufgeführt. Es
existieren kaum Hinweise auf virale Infektionen beim Biber. Die in dieser Arbeit
beschriebenen Fälle von Orthopoxviren beim Biber sind dokumentiert.
2.2 Wolf
Tabelle 4: Bakterien bei Wölfen in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Salmonella enterica Nachweis von Salmonella enterica subspezies enterica Serovar nessziona beim Wolf
CHANDRA et al. 2008
Mykobakterium Tuberkuosenachweis 1978 bei zwei Wölfen in Kanada
LUTZE - WALLACE et al. 2005
Leptospira interrogans
1122 Wölfe 1984 bis 2000 in Kanada und Alaska serologisch negativ
ZARNKE et al. 2004
Leptospira interrogans
11% von 457 wild lebenden Wölfen in Nordminnesota serologisch positiv 1972 und 1986
KHAN et al. 1991
Brucella sp. Nachweis beim Wolf RAUSCH et al. 1972
Brucella sp. Nachweis 1975 bis 1998 in Alaska ZARNKE et al. 2006
Tabelle :5 Parasiten bei Wölfen in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Toxaskaris leonina Nachweis in Kanada SAMUEL et al. 1978
Toxaskaris leonina dominante Helminthenspezies beim Wolf CRAIG u. CRAIG 2005
Toxaskaris leonina Nachweise in Polen 2002 bis 2004 POPIOEK et al. 2007
Toxaskaris leonina Nachweis bei Wölfen MOKS et al. 2006
Toxokara sp. Nachweise in Minnesota 1969 bis 1971 BYMAN et al. 1977
Toxokara canis Nachweise in Polen 2002 bis 2004 POPIOEK et al. 2007
Toxokara canis Nachweis bei Wölfen MOKS et al. 2006
Capillaria sp. In einer Probe von 204 in Minnesota 1969 bis 1971 nachgewiesen
BYMAN et al. 1977
6
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Unkinaria stenocephala
dominanter Vertreter der Nematoda beim Wolf der Tundraregion
CRAIG u. CRAIG 2005
Unkinaria stenocephala
Isolierung in Kanada SAMUEL et al. 1978
Unkinaria stenocephala
Nachweis in über 40% von 34 Wölfen BAGRADE et al. 2009
Unkinaria stenocephala
mit 37% der häufigste nachgewiesene Parasit freilebender Wölfe in Polen 2002 bis 2004
POPIOEK et al. 2007
Unkinaria stenocephala
häufiges Vorkommen bei Wölfen MOKS et al. 2006
Ankylstoma caninum in über 10% der Fälle in Polen 2002 bis 2004 bei frei lebenden Wölfen diagnostiziert
POPIOEK et al. 2007
Ankylostoma sp. Nachweis einer nicht weiter differenzierten Spezies in Minnesota 1969 bis 1971
BYMAN et al. 1977
Trichinella britovi Nachweis bei 90% von 315 Trichinella positiven Wölfe 1996 bis 2007
BECK et al. 2009
Trichinella britovi Nachweis bei Untersuchung von 26 Wölfen MOKS et al. 2006
Trichinella spiralis Nachweis bei 9% von 315 Trichinella positiven Wölfe 1996 bis 2007
BECK et al. 2009
Trichinella spiralis nativa
5 Nachweise bei 63 wildlebenden Wölfen Nordamerikas 1980 bis 1986
SMITH u. SNOWDON 1988
Trichinella sp. positiver Nachweis bei 36% von 148 Wölfen in Alaska 1993 und 1994
ZARNKE et al. 1999
Trichinella sp. zwischen 1998 und 2000 zeigten 97,3% von 75 frei lebenden Wölfen im europäischen Teil Russlands positive Nachweise
CASULLI et al. 2001
Trichinella sp. in Untersuchungen 2003 und 2008 die häufigste Nematodenart
BAGRADE et al. 2009
Taenia sp. Nachweis in Minnesota bei 13 von 18 Proben BYMAN et al. 1977
Taenia hydatigena Nachweis in Kanada in den siebziger Jahren SAMUEL et al. 1978
Taenia hydatigena Nachweis in Kanada in den achtziger Jahren MC NEILL u. RAU 1984
Taenia hydatigena Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Taenia hydatigena Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia multiceps Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Taenia multiceps Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia (ovis) krabbei Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Taenia (ovis) krabbei Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
7
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Taenia pisiformis Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Taenia pisiformis Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia crassiceps Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia polyacantha Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia spp. Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Taenia spp. Nachweis bei 11,2% von 89 Proben zwischen 2002 und 2004
POPIOEK et al. 2007
Echinokokkus granulosus
Nachweis in Kanada in den siebziger Jahren SAMUEL et al. 1978
Echinokokkus granulosus
Nachweis in Kanada in den achtziger Jahren MC NEILL u. RAU 1984
Echinokokkus granulosus
Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Echinokokkus granulosus
Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Echinokokkus multilocularis
Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Diphyllobothrium latum
Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Diphyllobothrium latum
Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Mesocestoides lineatus
Nachweis von sechs weiteren Cestodenspezies MOKS et al. 2006
Mesocestoides lineatus
Untersuchung an 34 Wölfen zwischen 2003 und 2008
BAGRADE et al. 2009
Alaria sp. Häufigster Trematoda der Tundrawölfe CRAIG u. CRAIG 2005
Alaria sp. Nachweis in Minnesota 1969 bis 1971 in 18 von 204 Kotproben
BYMAN et al. 1977
Alaria marcianae Isolierung in den siebziger Jahren in Kanada SAMUEL et al. 1978
Alaria marcianae 1981 bis 1983 in Kanada 18 von 25 untersuchten Wölfen positiv
MC NEILL u. RAUl 1984
Alaria arisaemoides Isolierung in den siebziger Jahren in Kanada SAMUEL et al. 1978
Alaria alta bei einer Untersuchung von 26 Wölfen häufigster Parasit
MOKS et al. 2006
Alaria alta häufigster Parasit mit 85,3% von 34 Wölfen BAGRADE et al 2009
Kokzidia sp. erste Fall einer Kokzidiose beim frei lebenden Wolf bei vier Monate altem Jungtier mit letalem Verlauf 1997 in Minnesota
MECH u. KURTZ 1999
Eimeriidae Nachweis in 20 von 204 Kotproben in Minnesota 1969 bis 1971
BYMAN et al. 1977
8
Tabelle 6: Viren bei Wölfen in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Canines Parvovirus Antikörpernachweise bei freilebenden Wölfen in Minnesota seit 1977
MECH et al. 1986
Canines Parvovirus kein positiver Antikörpernachweis bei Untersuchungen von frei lebenden Wölfen in Alaska 1975 bis 1979
ZARNKE u. BALLARD 1987
Canines Parvovirus von 1979 bis 1982 positiver Antikörpernachweis bei zehn von 32 frei lebenden Tieren
ZARNKE u. BALLARD 1987
Canines Parvovirus 7% von 57 Wölfen zeigten bei einer Untersuchung frei lebender Wölfe in Alaska einen Antikörpertiter
STEPHENSON et al. 1982
Canines Parvovirus
positive Nachweise (Elektronenmikroskopie, ELISA oder HA) bei Untersuchungen an 115 frei lebenden Wölfen in Italien 1994 und 1995
MARTINELLO et al. 1997
Canines Parvovirus
erste Infektionen der ungeimpften Wolfpopulation in den USA mit Caninem Parvovirus zeitgleich oder sogar vor Infektionen der Hundepopulation (HI-Test)
GOYAL et al. 1986
Canines Parvovirus
Antikörperprevalenz (abhängig von Region) zwischen 12% und 70% bei Untersuchungen von 1122 gefangenen Wölfen in Alaska und Kanada zwischen 1984 und 2000
ZARNKE et al. 2004
Canines Parvovirus bei neun von 28 wildlebenden Wölfen Portugals positiver Antikörpernachweis im Zeitraum von 1995 bis 2006
SANTOS et al. 2009
Canines Distempervirus
12% von 1975 bis 1982 untersuchten Wölfen wiesen Antikörper auf
ZARNKE u. BALLARD 1987
Canines Distempervirus
Antikörperprevalenz (abhängig von Region) zwischen 0% und 41% bei Untersuchungen von 1122 gefangenen Wölfen in Alaska und Canada zwischen 1984 und 2000
ZARNKE et al. 2004
Canines Distempervirus
bei drei von 27 wildlebenden Wölfen Portugals positiver Antikörpernachweis im Zeitraum von 1995 bis 2006
SANTOS et al. 2009
Phocid Distemper Virus
Erster Nachweis beim Wolf 1984 bis 2001 PHILIPPA et al. 2004
Tollwutvirus Tollwutausbruch bei Wölfen in Alaska BALLARD u. KRAUSMANN 1997
Tollwutvirus neun Fälle im Jahr 2001 dokumentiert
WHO Collaborating Centre for Rabies Surveillance and Research, 2001
Tollwutvirus seit 1960 15 Fälle in Ontario, Kanada THEBERGE et al. 1994
Tollwutvirus in Ostkanada von Januar bis Juni 1992 fünf WANDELER u.
9
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
positive Fälle dokumentiert CASEY 1993
Tollwutvirus in Westkanada von Januar bis Juni 1991 drei positive Nachweise
LOEWEN et al. 1991
Tollwutvirus 1% von 88 Tieren in Alaska 1975 bis 1982 ZARNKE u. BALLARD 1987
Tollwutvirus in den Jahren 1997 bis 2002 in Europa Tollwutfälle beim Wolf dokumentiert
WHO Collaborating Centre for Rabies Surveillance and Research, 2001 u. 2002
Tollwutvirus in den Jahren 1997 bis 2002 in Europa Tollwutfälle beim Wolf dokumentiert
MULLER et al. 1997-2000
Tollwutvirus Dokumentation von Tollwut in den achtziger Jahren in Europa und Kanada
GREGORY 1986
Coronavirus Antikörpernachweis bei 70% im Frühjahr und 25% im Herbst von 425 in Alaska gefangenen Wölfen
ZARNKE et al. 2001
In der Literatur beim Wolf beschriebene Bakterien sind Salmonella, Mykobakterium,
Leptospira und Brucella. Neben Infektionen mit Spul - und Hakenwürmern ist ein
häufiges Vorkommen von Cestoden - und auch Trematodeninfektionen dokumentiert.
Die für den Wolf beschriebenen Viren sind Parvo -, Distemper -, Tollwut - und
Coronavirus.
2.3 Braunbär
Tabelle 7: Bakterien bei Braunbären in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Enterobacteriaceae größter Anteil bakterieller Infektionen bei Zootieren zwischen 2001 bis 2007
SPECK et al. 2007
E. coli häufigstes Bakterium bei Zookarnivoren 2001 bis 2007
SPECK et al. 2007
E. coli kann als Sekundärerreger Sepsis und Jungtierverluste verursachen
KUNTZE 1995
Klebsiella s.p. kann als Sekundärerreger Sepsis und Jungtierverluste verursachen
KUNTZE 1995
Clostridium perfringens
Infektion des Bären verläuft septikämisch oder als Enterotoxämie ohne vorherige Krankheitssymptome
KUNTZE 1995
Streptokokkus sp. in der Regel als Auslöser für Sekundärinfektionen bei Bären anzusehen
KUNTZE 1995
Staphylococcus sp. in der Regel als Auslöser für Sekundärinfektionen bei Bären anzusehen
KUNTZE 1995
Mykobakterium sp. tritt mittlerweile selten auf KUNTZE 1995
Mykobakterium avium subsp.
Bär mögliches Reservoir und potenzieller Vektor KOPECNA et al. 2006
10
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
paratuberculosis
Brucella spp. freilebende Braunbären hohe Antikörpertiter gegen Brucella spp.
KUNTZE 1995
Brucella spp. erster Brucellanachweis bei einem Braunbären in Alaska
NEILAND 1975
Brucella spp. positiven Antikörpernachweis 1975 bis 1998 in Alaska
ZARNKE et al. 2006
Tabelle 8: Parasiten bei Braunbären in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Askaridoidea bei fast alle Ursiden massive Spulwurminfektionen KUNTZE 1995
Askaridoidea hohe Belastung bei in zoologischen Einrichtungen gehaltenen Bären
ABDEL - RASOUL u. FOWLER 1980
Toxaskaris transfuga
Anfang der fünfziger Jahre beim Braunbären beschrieben
RUKHLYADEV u. RUKHLYADEVA 1953
Toxaskaris transfuga
Nachweis Anfang der sechziger Jahre in Jugoslawien
BRGLEZ u. VALENTINCIC 1968
Toxaskaris leonina Infektionen bei Bären häufig ABDEL - RASOUL u. FOWLER 1980
Baylisaskaris transfuga
Infektionen bei Bären häufig ABDEL - RASOUL u. FOWLER 1980
Baylisaskaris transfuga
in Kanada Ende der sechziger Jahre beschrieben CHOQUETE et al. 1969
Baylisaskaris sp. Nachweis 1995 und 1996 in Kanada GAU et al. 1999
Ankylostoma malayanum
häufig bei Bären KUNTZE 1995
Ankylostoma malayanum
Nachweis in Japan ASAKAWA et al. 2006
Unkinaria yukonensis
häufig bei Bären KUNTZE 1995
Unkinaria stenocephala
Nachweis Anfang der fünfziger Jahre RUKHLYADEV u. RUKHLYADEVA 1953
Unkinaria rauschi neue Spezies des Braunbären in Alaska OLSEN 1968
Unkinaria yukonensis
Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Dochmoides yukonnis
Nachweis in Kanada Ende der sechziger Jahre CHOQUETE et al. 1969
Dirofilaria uni Nachweis in Kanada Ende der sechziger Jahre CHOQUETE et al. 1969
Trichinella spiralis Nachweis in Kanada Ende der sechziger Jahre CHOQUETE et al. 1969
11
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Nematodirus Nachweis in Kanada 1995 und 1996 GAU et al. 1999
Protostrongylus s.p. Nachweis in Kanada 1995 und 1996 GAU et al. 1999
Diphyllobothrium sp.
Nachweis in Kanada Ende der sechziger Jahre CHOQUETE et al. 1969
Diphyllobothrium sp Nachweis in Kanada 1995 und 1996 GAU et al. 1999
Taenia krabbei Nachweis in Kanada Ende der sechziger Jahre CHOQUETE et al. 1969
Kokzidia Nachweis in Kanada 1995 und 1996 GAU et al. 1999
Mikrophallus pirum Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Maritrema afanassjewi
Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Phocitrema fusiforme
Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Cryptocotyle lingua Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Molineus sp. Nachweis Ende der siebziger Jahre in Sibirien RAUSCH et al. 1979
Tabelle 9: Viren bei Braunbären in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Herpesvirus suis induziert auch bei Bären Aujeszky Disease KUNTZE 1995
Herpesvirus suis Infektion bei Bären in Italien nach Verzehr von rohem Schweinefleisch
ZANIN et al. 1997
Canines Distempervirus
Nachweis von Antikörpern bei in Zoos lebenden und freilebenden Ursiden in Italien 1991 bis 1995
MARSILIO et al. 1997
Canines Parvovirus - 2
Nachweis von Antikörpern bei in Zoos lebenden und freilebenden Ursiden in Italien 1991 bis 1995
MARSILIO et al. 1997
Canines Parvovirus - 2
Nachweis von Antikörpern in Kroatien MADIC et al. 1993
Phocid Distempervirus
Antikörpernachweisachweis in Kanada 1984 bis 2001
PHILIPPA et al. 2004
Tollwutvirus Nachweis von Antikörpern in Slowenien MUTINELLI et al. 2001
Es werden vor allem bakterielle Infektionen mit Vertretern der Enterobacteriaceae
und Brucella spp. beschrieben. Bei Untersuchungen zu parasitologischen Infektionen
sind hauptsächlich Spul - und Hakenwürmer nachgewiesen worden. Neben Herpes -
und Tollwutvirus sind Antikörpernachweise für Distemper - und Parvovirus
dokumentiert.
12
2.4 Eisbär
Tabelle 10: Bakterien bei Eisbären in der Literatur Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli Infektionen bei Eisbären beschrieben ELZE et al.1986
E. coli Septikämien bei Jungtieren KUNTZE 1995
Klebsiella Infektionen bei Eisbären beschrieben ELZE et al. 1986
Klebsiella Septikämien bei Jungtieren KUNTZE 1995
Clostridium perfringens
Infektionen septikämisch oder als Enterotoxämie KUNTZE 1995
Clostridium perfringens
Nachweis 2001 in Norwegen bei 40 von 92 Proben JORES et al. 2008
Clostridium perfringens
Typ A wird als normaler Darmbewohner bei Polarbären vermutet
JORES et al. 2008
Streptokokkus in erster Linie Sekundärerreger KUNTZE 1995
Staphylokokkus in erster Linie Sekundärerreger KUNTZE 1995
Brucella Antikörperprävalenz von 5,4% bei 297 Polarbärseren TRYLAND et al. 2001
Leptospira vermehrt bei jungen Eisbären KUNTZE 1995
Leptospira interrogans
tödlich verlaufenden Infektion bei einem juvenilen Eisbären
KOHM 1988
Tabelle 11: Parasiten bei Eisbären in der Literatur Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Askaridoidea häufig bei Eisbären KUNTZE 1995
Askaridoidea häufig bei Eisbären ABDEL - RASOUL u. FOWLER 1980
Toxaskaris transfuga
schwere Infektion beim Eisbären MASTACAN et al.1969
Toxaskaris transfuga
schwere Infektion beim Eisbären KUNTZE u. BUCHWALDER 1988
Askaris Anfang der siebziger Jahre Nachweis bei drei verendeten Eisbären
PERE VERZE et al. 1971
Trichinella Anfang der siebziger Jahre Nachweis bei drei verendeten Eisbären
PERE VERZE et al. 1971
Trichinella spiralis
häufig in der Muskulatur im Rahmen pathologischer Untersuchungen beim Eisbären diagnostiziert
KUNTZE 1995
Ankylostomatidae häufig beim Eisbären KUNTZE 1995
Ankylostoma malayanum
Infektion beim Eisbären SUGIYAMA et al. 2000
13
Tabelle 12: Viren bei Eisbären in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Staupevirus perinatale Infektionen bei Eisbären SCHONBAUER et al. 1984
Morbillivirus Antikörpernachweise bei frei lebenden Eisbären FOLLMANN et al. 1996
Phocid Distemper Virus
Antikörpernachweis 1989 bis 1996 in kanadischer Arktis
CATTET et al. 2004
Phocid Distemper Virus
Antikörpernachweis in Kanada zwischen 1984 und 2001
PHILIPPA et al. 2004
Canines Distemper Virus
Antiköperspiegel gegen CDV höher als gegen andere Morbillviren, Morbillivirus der Polarbären scheint terrestrischen Ursprung zu haben
GARNER et al. 2000
Canines Distemper Virus
Antikörpernachweis 1989 bis 1996 in kanadischer Arktis
CATTET et al. 2004
Canines Distemper Virus
Seroprävalenz von 8% bei Untersuchungen 1990 bis1998
TRYLAND et al. 2005
Calicivirus Seroprävalenz von 2% bei Untersuchungen 1990 bis1998
TRYLAND et al. 2005
Phocid Herpesvirus -1
Kein Antikörpernachweis bei Untersuchungen 1990 bis1998
TRYLAND et al. 2005
Tollwutvirus Kein Antikörpernachweis bei Untersuchungen 1990 bis1998
TRYLAND et al. 2005
Tollwutvirus erster Tollwutfall bei einem Eisbären in Kanada beschrieben
LOEWEN et al. 1990
Tollwutvirus erster Tollwutfall bei einem Eisbären in Kanada beschrieben
LOEWEN et al. 1991
Herpesvirus suis bei Eisbären beschrieben KUNTZE 1995
Herpesvirus suis 1997 Nachweis in Spanien BANKS et al. 1999
Equines Herpesvirus 9
Nachweis bei einem Eisbären SCHRENZEL et al. 2008
In der Literatur werden im Rahmen bakterieller Infektionen bei Eisbären häufig
Nachweise von Enterobacteriaceae und Clostridien beschrieben. Leptospirosen
scheinen vor allem juvenile Eisbären zu betreffen. Askaridoidea und
Ankylostomatoidea sind häufige Parasitosen. Unter den Viren kommen den
Distemperviren beim Eisbären besondere Bedeutung zu.
14
2.5 Luchs
Tabelle 13: Bakterien bei Luchsen in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli Infektionen bei Zoofeliden beschrieben BEHLERT 1995
Klebsiella Infektionen bei Zoofeliden beschrieben BEHLERT 1995
Yersinia pestis Infektionen bei sechs kanadischen Luchsen 2003 in Kanada postmortal zum nachgewiesen
WILD et al. 2006
Salmonella typhimurium
häufigster Salmonellatyp bei Feliden BEHLERT 1995
Salmonella arizonae Bericht einer septikämischen Erkrankung beim Eurasischen Luchs
MACRI et al. 1997
Tabelle 14: Parasiten bei Luchsen in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Nematoda bedeutendste Parasitengruppe der Feliden BEHLERT 1995
Nematoda Nachweis von 6 Arten 2001 bis 2006 SZCZESNA et al. 2008
Askaridoidea bedeutende Parasitengruppe der Feliden BEHLERT 1995
Ankylostoma bedeutender Parasit der Feliden BEHLERT 1995
Toxokara Nachweis zu 68% zwischen 1999 und 2001 VALDMANN et al. 2006
Toxokara cati Nachweis beim Luchs FAGASINSKI 1961
Toxokara cati Nachweis zwischen 2001 und 2006 SZCZESNA et al. 2008
Toxaskaris leonina Infektionen in Kanada beschrieben THRELFALL 1969
Toxaskaris leonina Infektionsrate von 100% bei in einem chinesischen Zoo gehaltenen Luchsen
TANG et al. 1988
Toxokara mystax Isolation in Litauen BAGRADE et al. 2003
Taeniidae spp. Nachweis zwischen 2001 und 2006 SZCZESNA et al. 2008
Taenia sp. Infektionen in Kanada beschrieben THRELFALL 1969
Taenia sp. Nachweis zwischen 1999 und 2001 VALDMANN et al. 2006
Taenia sp. Isolation in Litauen BAGRADE et al. 2003
Diphyllobothrium latum
Nachweis zwischen 1999 und 2001 VALDMANN et al. 2006
Diphyllobothrium latum
Nachweis zwischen 2001 und 2006 SZCZESNA et al. 2008
Spirometra janickii Nachweis zwischen 2001 und 2006 SZCZESNA et al. 2008
Trichinella Nachweis zwischen 1999 und 2001 VALDMANN et al. 2006
15
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Alaria alata Nachweis zwischen 2001 und 2006 SZCZESNA et al. 2008
Tabelle 15: Viren bei Luchsen in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Felines Parvovirus bei Kanadischen Luchsen in Nordamerika in sechs Untersuchungsregionen Serokonversion nach Feldinfektion
BIEK et al. 2002
Felines Parvovirus pathologisch-anatomische Diagnose bei einem ungeimpften Eurasischen Luch, PCR-Nachweis erfolgt, Impfung wird postuliert
WASIERI et al. 2009
Coronavirus positive Antikörpernachweise bei Kanadischen Luchsen in Nordamerika
BIEK et al. 2002
Felines Leukosevirus
Virusinfektionskrankheit von Zoofeliden BEHLERT 1995
Canines Distemper Virus
1993 bis 1999 Nachweise (PCR, Nukleinsequenzierung) bei freilebenden ungeimpften Kanadischen Luchsen, Encephalitiden als klinische Symptome
DAOUST et al. 2009
Canines Distemper Virus
bei Kanadischen Luchsen in Nordamerika Serokonversion nach Feldinfektion
BIEK et al. 2002
Phocid Distemper Virus
Serokonversion bei wildlebenden Luchsen in Kanada 1984 bis 2001
PHILIPPA et al. 2004
Felines Calicivirus Antikörpernachweis bei Kanadischen Luchsen in Nordamerika
BIEK et al. 2002
Felines Herpesvirus Nachweis bei Kanadischen Luchsen in Nordamerika
BIEK et al. 2002
Orthopoxvirus 1993 bis 1996 in Norwegen, Schweden und Finnland erster Nachweis von Antikörpern beim Luchs
TRYLAND et al. 1998
Neben Vertretern der Enterobacteriaceae sind Salmonellainfektionen beim Luchs
dokumentiert. Es werden vermehrt Askariden- und Cestodeninfektionen beschrieben.
Bei virologischen Untersuchungen dominieren Corona- und Distemperviren.
16
2.6 Robbe
Tabelle 16: Bakterien bei Robben in der Literatur Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli häufig nachgewiesen 1992 bis 2003 bei in Washington gestrandeten Seehunden
LOCKWOOD et al. 2006
E. coli häufiger Erreger entzündlicher Läsionen von über 500 Robben an der kalifornischen Küste 1995 und 1996
THORNTON et al.1998
E. coli
häufiger bakterieller Erreger von Bronchopneumonien, Gastroenteritiden, Dermatitiden und Septikämien bei Seehunden an der schleswig-holsteinischen Küste 1996 bis 2005
SIEBERT et al. 2007
Enterokokkus häufig nachgewiesen 1992 bis 2003 bei in Washington gestrandeten Seehunden
LOCKWOOD et al. 2006
Enterokokkus häufiger Erreger entzündlicher Läsionen von über 500 Robben an der kalifornischen Küste 1995 und 1996
THORNTON et al. 1998
Streptokokkus häufig nachgewiesen 1992 bis 2003 bei in Washington gestrandeten Seehunden
LOCKWOOD et al. 2006
Streptokokkus häufiger Erreger entzündlicher Läsionen von über 500 Robben an der kalifornischen Küste 1995 und 1996
THORNTON et al. 1998
Streptokokkus
häufiger bakterieller Erreger von Bronchopneumonien, Gastroenteritiden, Dermatitiden und Septikämien bei Seehunden an der Schleswig-Holsteinischen Küste 1996 bis 2005
SIEBERT et al. 2007
Streptokokkus begleitender pathogener Erreger bei PDV-Infektionen
BAKER 1992
Streptokokkus equi subsp. zooepidemicus
alle Isolate bei Untersuchungen in der Nordsee von Seehunden und Kegelrobben 1988-2005 wurden als diese Subspezies klassifiziert
AKINEDEN et al. 2007
Streptokokkus equi subsp. zooepidemicus
Nachweis während des Staupeausbruchs 2002 bei Seehunden
AKINEDEN et al. 2005
Streptokokkus phocae
Nachweis einer neuen Spezies des Erregers bei Robben
SKAAR et al. 1994
Streptokokkus phocae
bei Kaspirobben viele schwerwiegende Infektionen im Frühjahr und Sommer 2000
KUIKEN et al. 2006
Streptococcus halichoeri sp.nov.
neue Spezies bei Kegelrobben LAWSON et al. 2004
Streptokokkus marimammalium sp. nov.
neue Streptokokkenspezies bei Robben LAWSON et al. 2005
Pseudomonas aeruginosa
häufig nachgewiesen 1992 bis 2003 bei in Washington gestrandeten Seehunden
LOCKWOOD et al. 2006
Clostridium perfringens
häufiger bakterieller Erreger von Bronchopneumonien, Gastroenteritiden,
SIEBERT et al. 2007
17
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Dermatitiden und Septikämien bei Seehunden an der schleswig-holsteinischen Küste 1996 bis 2005
Mykobakterium pinnipedii sp. nov.
neuer Stamm der Pinnipeden COUSINS et al. 2003
Mykobakterium pinnipedii
Vorkommen bei Südamerikanischen Seelöwen JURCZYNSKI et al. 2007
Mykobakterium pinnipedii
Übertragung von in den Niederlanden infizierten Seelöwen auf den Menschen
KIERS et al. 2008
Tabelle 17: Parasiten bei Robben in der Literatur Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Nematoda Prävalenz von 88% beim nördlichen Seebär in Alaska 1987 bis 1997
SPRAKER et al. 2003
Pseudoterranova decipiens
Nachweis bei Kegelrobben MARCOGLIESE 1997
Pseudoterranova decipiens
Nachweis bei Seehunden 1988 und 1989 am Wattenmeer
CLAUSSEN et al. 1991
Corynosoma Nachweis bei Robben NICKOL et al. 2002
Corynosoma Nachweis bei Robben O`NEILL u. WHELAN 2002
Corynosoma Nachweis bei Robben STRAUSS et al. 1991
Corynosoma Nachweis bei nördlichen Seebären 2007 in Alaksa IONITA et al. 2008
Unkinaria lucasi Nachweis bei nördlichen Seebären 2007 in Alaksa IONITA et al. 2008
Unkinaria Vorkommen bei Kalifornischen Seelöwen und beim Nördlichen Seebären
LYONS et al. 1997
Unkinaria Vorkommen bei Kalifornischen Seelöwen und beim Nördlichen Seebären
LYONS et al. 2001
Unkinaria Vorkommen bei Kalifornischen Seelöwen und beim Nördlichen Seebären
LYONS et al. 2003
Otostrongylus circumlitus
Nachweis bei Ringelrobben in Kanada ONDERKA 1989
Otostrongylus circumlitus
Nachweis bei Seehunden 1988 und 1989 am Wattenmeer
CLAUSSEN et al. 1991
Filaroides hispidus Nachweis bei Ringelrobben in Kanada CLAUSSEN et al. 1991
Parafilaroides gymnurus
Nachweis bei Seehunden 1988 und 1989 am Wattenmeer
CLAUSSEN et al. 1991
Dipetalonema spirocauda
Nachweis bei Seehunden 1988 und 1989 am Wattenmeer
CLAUSSEN et al. 1991
Contracaecum osculatum
Nachweis bei Seehunden 1988 und 1989 am Wattenmeer
CLAUSSEN et al. 1991
Eimeria phocae schwere Enterokolitis beim Seehund VAN BOLHUIS et al. 2007
Toxoplasma Protozoenerkrankung von Bedeutung bei Robben, NEUROHR
18
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
u.a. Diarrhoen und Vomitus 1995
Toxoplasma gondii Infektionen verschiedener Robbenarten DUBEY et al. 2003
Toxoplasma gondii Vorkommen beim Seehund, Induktion Encephalitis MILLER et al. 2001
Neospora caninum Infektionen verschiedener Robbenarten DUBEY et al. 2003
Sarcocystis neurona Vorkommen beim Seehund, Induktion Encephalitis MILLER et al. 2001
Giardia duodenalis Nachweis bei Ringelrobben und Bartrobben in Kanada
DIXON et al. 2008
Kryptosporidium Nachweis bei Ringelrobben und Bartrobben in Kanada
DIXON et al. 2008
Tabelle 18: Viren bei Robben in der Literatur Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Morbillivirus bei verschiedenen Robbenarten VISSER et al. 1993
Phocid Distemper Virus
1988 erstmals Idendifikation eines Morbillivirus als Todesursache mariner Säugetiere
DE SWART et al.1995
Phocid Distemper Virus
1988 und 2002 in der Nordsee Verenden vieler tausend Seehunde, Tod bei 20000 Seehunden im Nordwesten Europas
RIJKS et al. 2008
Phocid Distemper Virus
Klassifikation der bei Robben isolierten Morbilliviren als Phocid Distemper Virus-1 (ein neu identifiziertes Morbillivirus) und Phocid Distemper Virus -2 (eine Variante des CDV)
VISSER et al. 1993, BAUMGARTNER et al. 2003
Phocid Distemper Virus
Ausbruch bei Baikalrobben 1987 begründet sich in Infektion mit Caninem Distemper Virus ähnlichen Typ, Bezeichnung als PDV-2
DE SWART et al. 1995, BARRETT et al. 1992
Phocid Distemper Virus
erster Fall bei Robben in kanadischen Gewässern 1991, im Winter 1991/1992 epizootischer Ausbruch bei Seehunden an der nordöstlichen Küste der USA mit Antikörperanstieg auf 83%
DAOUST et al. 1993, DUIGNAN et al. 1995
Phocid Distemper Virus
Kegelrobben bei Infektion keine schwerwiegende klinische Symptomatik, evtl. wichtige Rolle bei Virusverbreitung
HAMMOND et al. 2005
Phocid Distemper Virus - 1
In deutschen Gewässern Isolation bei Robben während des Staupeausbruchs 2002
MULLER et al. 2004
Canines Distemper Virus
1987 und 1988 hohe Verlusten bei Baikalrobben in der Baikalsee, Nachweis 1992 bei Robben der Baikalsee
MAMAEV et al. 1996
San Miguel Sea Lion - Virus
arttypischer Verteter der Caliciviren bei Robben mit 13 verschiedenen Serotypen
GAGE 1990
San Miguel Sea Lion
Nachweis der Serotypen 4 und 5 SMITH et al. 1977
San Miguel Sea Lion
Isolation SMSV-6 SMITH et al. 1979
19
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
San Miguel Sea Lion
Nachweis fünf weiterer Serotypen in Alaska und Californien (SMSV-8, SMSV-10, SMSV-9, SMSV-11 und SMSV-12)
SMITH et al. 1981
Pockenvirus Erkrankungen bei marinen Säugetieren SMITH et al. 1979
Pockenvirus bei Nördlichem Seebären in Alaska aus Gewebeproben eines 1951 verstorbenen Tieres nachgewiesen
HADLOW et al. 1980
Sealpoxvirus Nachwies bei Kegelrobben HICKS u. WORTHY 1987
Parapoxvirus Infektion bei Kegelrobben im Winter 1991/1992 an der Küste Cornwalls
SIMPSON et al. 1994
Parapoxvirus Isolation bei Kegelrobbe in den neunziger Jahren NETTLETON et al. 1995
Parapoxvirus Nachweis bei Seehunden in Schleswig-Holstein im Sommer 2000
MULLER et al. 2003
Seal Herpesvirus erste Nachweis beim Seehund OSTERHAUS et al. 1985
Seal Herpesvirus Nachweis während Staupeausbruch 1988 bei 23 von 114 Robben in dänischen Gewässern
HAVE et al. 1991
Seal Herpesvirus Differenzierung in Phocid Herpestyp -1 und Phocid Herpestyp -2
HARDER et al. 1996
Seal Herpesvirus Von 286 Seehunden in Alaska 1976 bis 1999 93% positiv für PhHV -1, alle negativ für PhHV -2 getestet
ZARNKE et al. 2006
Phocid Herpesvirus - 2
Isolation bei europäischen und amerikanischen Seehunden
MARTINA et al. 2003
Streptokokken werden relativ häufig als Erreger bakterieller Infektionen bei Robben
genannt. Neben verschiedenen Vertretern der Nematoda wird von einigen Autoren
auch der Nachweis einzelliger Parasiten beschrieben. Neben aufgetretenen Herpes -
und Calicivirusinfektionen sind in der Literatur vor allem die Staupeausbrüche,
induziert durch Distemperviren, dokumentiert.
20
2.7 Elch
Tabelle 19: Bakterien bei Elchen in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli 2001 bis 2003 keine Isolierung verotoxinbildender E. coli bei wildlebenden Elchen
LILLEHAUG et al. 2005
E. coli bei Untersuchung an 72 klinisch gesunden Elchen im Jahr 2000 positiver Nachweis für E. coli zu 68,1%, negativ für Shigatoxin bildende E.coli
KEMPER et al. 2004
Yersinia bei Untersuchung an 72 klinisch gesunden Elchen im Jahr 2000 kein positiver Nachweis
KEMPER et al. 2004
Enterokokkus bei Untersuchung an 72 klinisch gesunden Elchen im Jahr 2000 positiver Nachweis zu 98,6%
KEMPER et al. 2004
Enterokokkus Nachweis verschiedener Spezies zwischen 2001 und 2003 gelang bei wild lebenden Elchen
LILLEHAUG et al. 2005
Salmonella 2001 bis 2003 keine Isolierung bei wild lebenden Elchen
LILLEHAUG et al. 2005
Salmonella erster serologischer Nachweis bei frei lebenden Elchen 1993 bis 2000 in Norwegen, Antikörpertiter bei 1,98% von 303 klinisch unauffälligen Tieren
ASCHFALK et al. 2003
Salmonella bei Untersuchung an 72 klinisch gesunden Elchen im Jahr 2000 kein positiver Nachweis
KEMPER et al. 2004
Clostridium bei Untersuchung zur Feststellung von Todesursachen bei Elchen in 19% der Fälle nachgewiesen
CLAUSS et al. 2002
Mycobacterium avium subsp. Paratuberculosis
Antikörpertiter bei 1,9% von 537 Elchen im Rahmen einer serologischen Untersuchung
TRYLAND et al. 2004
Brucella abortus 1979 in Quebec von 208 Elchen keiner serologisch positiv
BOURQUE u. HIGGINS 1984
Brucella suis biovar 4
1996 19% von 47 Elchen serologisch positiv O`HARA et al. 1998
Brucella suis biovar 4
Elche für diesen Erreger exponiert EDMONDS et al. 1999
Tabelle 20: Parasiten bei Elchen in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Trichuris Häufig Verluste bei in Zoos gehaltenen Elchen VON HEGEL 1995
Trichuris Besondere Bedeutung beim Elch PFISTER et al. 1989
Trichuris Vorkommen von 34% bei 140 Elchen in Kanada Mitte der achtziger Jahre
STOCK u. BARRETT 1983
Trichuris
Beteiligung am so genannten Wasting Syndrome Complex, der bei einer Untersuchung von 19 verschiedenen zoologischen Einrichtungen in 48% der Fälle die Haupttodesursache von Elchen darstellte
CLAUSS et al. 2002
Trichuris ovis Nachweis 1985 in Kanada HOEVE et
21
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
al.1988
Trichuris discolor 1985 in Kanada zum ersten Mal beim Elch nachgewiesen
HOEVE et al. 1988
Elaphostrongylus Nachweis bei 25% von 103 Elchen 1975 HALVORSEN u. WISSLER 1983
Elaphostrongylus erster Larvennachweis in Polen 2007 dokumentiert
GOLISZEWSKA u. DEMIASZKIEWICZ 2007
Elaphostrongylus rangiferi
Nachweis in Kanada LANKESTER u. FONG 1998
Elaphastrongylus cervi
Prävalenz von 35% 1982 in Norwegen STUVE 1986
Parelaphostrongylus andersoni
Nachweis in Kanada LANKESTER u. FONG 1998
Parelaphostrongylus tenuis
im Cranium isoliert LANKESTER 1974
Parelaphostrongylus tenuis
in siebziger Jahren bei 28,2% von 153 Elchen in Maine, USA festgestellt
GILBERT 1974
Parelaphostrongylus tenuis
Nachweis in Kanada THOMAS u. DODDS 1988
Elaeophora schneideri
erstmals Anfang der siebziger Jahre bei Elchen in Montana diagnostiziert
WORLEY et al. 1972
Elaeophora schneideri
Nachweis bei pathologischen Untersuchungen WORLEY 1975
Elaeophora schneideri
Vorkommen bei zwei Elchen in Colorado MADDEN et al. 1991
Nematodirella alcidis
Nachweis beim Elch HALVORSEN u. WISSLER 1983
Trichostrongylus capricola
Nachweis beim Elch FRUETEL u. LANKESTER 1988
Dictyocaulus viviparus
Nachweis beim Elch LICHTENFELS u. PILITT 1983
Toxoplasma gondii 1974 bis 1982 bei 25 von 110 untersuchten Elchen in Alaska seropositive Ergebnisse
KOCAN et al. 1986
Toxoplasma gondii 12,6% von 2142 Elchen in Norwegen seropositiv VIKOREN et al. 2004
Toxoplasma gondii Nachweis in der Skelettmuskulatur eines Elches in Montana
DUBEY et al. 1981
Toxoplasma gondii Antikörpernachweis in 15% von 125 Serumproben SIEPIERSKI et al. 1990
Trypanosoma erster Nachweis in Europa KINGSTON et al. 1984
Trypanosoma Nachweis bei einem Elch in Südschweden DIRIE et al. 1990
Taenia hydatigena 38 von 50 Elchen 1963 bis 1965 in Kanada positiv getestet
ADDISON et al. 1979
22
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Taenia hydatigena Nachweis beim Elch in Nordamerika SAMUEL et al. 1976
Taenia hydatigena 1988 Nachweis in Kanada PYBUS 1990
Taenia (ovis) krabbei
40 von 50 Elchen 1963 bis 1965 in Kanada positiv getestet
ADDISON et al. 1979
Taenia (ovis) krabbei
erster Nachweis einer Larve im Gehirn eines Elches
GIBBS u. EATON 1983
Taenia (ovis) krabbei
Nachweis beim Elch in Nordamerika SAMUEL et al. 1976
Echinokokkus granulosus
36 von 50 Elchen 1963 bis 1965 in Kanada positiv getestet
ADDISON et al. 1979
Echinokokkus granulosus
Nachweis beim Elch in Nordamerika SAMUEL et al. 1976
Echinokokkus granulosus
1988 Nachweis in Kanada PYBUS 1990
Echinokokkus granulosus
bei höherer Wolfdichte in Gebieten frei lebender Elche steigt Infektionsrate
MESSIER et al. 1989
Monieza Nachweis Mitte der achtziger Jahre in Ontario FRUETEL u. LANKESTER 1988
Monieza 1985 Nachweis in Kanada HOEVE et al. 1988
Monieza expansa erster Nachweis beim Elch in Nordamerika SAMUEL et al. 1976
Paramphistomum cervi
Mitte der siebziger Jahre in Kanada Nachweis bei über 80% der untersuchten Elche
Lankester et al. 1979
Paramphistomum cervi
Nachweis in Kanada KENNEDY et al. 1985
Paramphistomum cervi
Nachweis in Kanada HOEVE et al. 1988
Paramphistomum liorchis
Nachweis in Kanada KENNEDY et al. 1985
Fasciola hepatica Antikörpernachweis bei zwei von 125 Elchen Ende der siebziger Jahre in Kanada
BRINDLE et al. 1979
Zygocotyle lunata Nachweis in Kanada HOEVE et al. 1988
Tabelle 21: Viren bei Elchen in der Literatur
Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
MCFV (Maligne catarrhal fever virus)
Bei 3 von 219 Elchen Antikörper nachgewiesen ZARNKE et al. 2002
MCFV
ursächliche Erreger sind mindestens vier Viren der Unterfamilie Gammaherpesvirus bekannt, AlHV1 induziert in Afrika bei Wildwiederkäuern das so genannte Gnu-originäre BKF, OvHV2 stellt die Schaf-assoziierte Form dar, CpHV2 besitzt eine pathogene Wirkung für Hirsche, wobei eine genetische Verwandtschaft mit dem BHV1 besteht und auch als BHV6 bezeichnet wird, viertes Virus ist das MCF-WTD
FRÖLICH 2010, MARKOWSKI u. BÖER 2008
MCFV engverwandte apathogene Viren sind AlHV2 bei Kuhantilopen und HiHV1 bei Pferdeantilopen
MUSHI u. RURANGIRWA
23
1981, REID u. BRIDGEN 1991
MCFV Doppelinfektionen von Viren, wie beispielsweise von CpHV2 und OvHV2 bei der Ziege sind beschrieben
FÖRSTER et al. 2008
MCFV Nachweis von OHV-2 als ursächlichen Erreger bei zwei Krankheitsfällen von BKF bei wildlebenden Elchen in Kanada
NEIMANIS et al. 2009
MCFV bei Elchen in zwei niederländischen Zoos OHV-2 als Erreger diagnostiziert
KIK et al. 2005
MCFV in Oslo 1982 bis 2005 häufigste Erreger des BKF mit schwerwiegenden klinischen Symptomen OvHV-2 und CpHV-2
VIKOREN et al. 2006
MCFV in 19 Elchhaltungen BKF zu 12% Haupttodesursache
CLAUSS et al. 2002
BVDV Antikörpernachweis 1974 bis 1982 in verschiedenen Regionen Alaskas bei 13 von 110 Elchen
KOCAN et al. 1986
BVDV Antikörpernachweis in Skandinavien FEINSTEIN et al. 1987
BVDV Antikörpernachweis bei neun von 21 Elchen REHBINDER et al. 2004
BVDV 2% untersuchter Elche in Norwegen serologisch positiv
LILLEHAUG et al. 2003
Bovines Herpesvirus1
Nachweis Anfang der achtziger Jahre ZARNKE u. YUILL1981
Bovines Herpesvirus1
1974 bis1982 Antikörpernachweis in verschiedenen Regionen Alaskas bei sechs von 110 Elchen
KOCAN et al. 1986
MCFV = Malignant Catarrhal Fever Virus BVDV = Virus der Bovinen Virusdiarrhoe
In der Literatur wird die Bedeutung verschiedener Enterobacteriaceae und
Salmonellainfektionen sowie das Vorkommen von Brucella beim Elch angesprochen.
Zahlreich werden Infektionen mit Trichuris und Vertretern der Protostrongylidae
beschrieben. Außerdem sind Nachweise einiger Cestoda und Trematoda
dokumentiert. Als Viruserkrankungen der Elche werden das Bösartige
Katarrhalfieber, die Bovine Virusdiarrhoe sowie Infektionen mit dem Bovinen
Herpesvirus 1 genannt.
24
2.8 Rentier
Tabelle 22: Bakterien bei Rentieren in der Literatur
Bakterien Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
E. coli Positiver Nachweis bei mehr als 90% von über 2000 untersuchten Rentieren in Norwegen und Finnland
KEMPER et al. 2006
E. coli Großteil der E. coli- u nd Enterokokkusstämme physiologisch, Anteil pathogener Kolistämmen weniger als 2%
KEMPER et al. 2004
E. coli apathogene Stämme können bei Jung- oder immunsupremierten Tieren klinische Krankheitsgeschehen bedingen
THING u. CLAUSEN 1980
Enterokokkus Positiver Nachweis bei mehr als 90% von über 2000 untersuchten Rentieren in Norwegen und Finnland
KEMPER et al. 2006
Clostridium perfringens
Rentiere besonders empfänglich für Clostridiosen induziert durch Clostridium perfringens Typ A - E
VON HEGEL 1995
Clostridium perfringens
häufiges Vorkommen in Norwegen Ende der siebziger Jahre
KUMMENEJE 1980
Clostridium perfringens
zahlreiche Infektionen in Norwegen Ende der siebziger Jahre
KUMMENEJE 1980
Clostridium perfringens
positives Ergebnis 1999 in Norwegen bei166 Individuen von 595 klinisch gesunden Tieren
ASCHFALK et al. 2002
Clostridium perfringens
vermehrte Nachweise im Jahr 2000 in Norwegen
ASCHFALK et al. 2003, KEMPER et al. 2003
Streptokokkus häufiges Vorkommen in Norwegen Ende der siebziger Jahre
KUMMENEJE 1980
Pasteurella multocida häufiges Vorkommen in Norwegen Ende der siebziger Jahre
KUMMENEJE 1980
Pasteurella zahlreiche Ausbrüche beim Rentier seit Anfang des 20. Jahrhunderts beschrieben
KUMMENEJE 1976
Pasteurella Dokumentation von Ausbrüchen seit Anfang der siebziger Jahre
NORDKVIST 1971
Brucella
1990 bis 1994 in Norwegen bei 5792 Rentieren kein positiver Nachweis, kein Bericht über das Vorkommen einer Brucellainfektion bei Rentieren in Norwegen zu diesem Zeitpunkt
ASBAKK et al. 1999
Brucella positive Antikörpernachweise in den achtziger Jahren in Kanada
FERGUSON 1997
Brucella 1975 bis 1998 in Alaska positive Antikörpernachweise bei Rentieren
ZARNKE et al. 2006
Brucella suis Typ 4 Rentier typischer Wirt in Alaska MORTON 1985
Brucella suis regelmäßig vorkommender Erreger bei wildlebenden Rentieren in Alaska
RAUSCH 1972
25
Mykobakterium avium subsp. paratuberkulosis
3,4 % von halbdomestizierten Rentieren, keines von 91 wildlebenden Rentieren positive Ergebnisse in Norwegen
TRYLAND et al. 2004
Tabelle 23: Parasiten bei Rentieren in der Literatur
Parasiten Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und Jahr
Trichostrongyloidea Nachweis in Kanada (acht Ostertagiinaespezies, vier Nematodirinaespezies, Trichostrongylus , Dictyocaulus viviparus, und Nematodirus odocoilei)
FRUETEL und LANKESTER 1989
Trichostrongyloidea bei Untersuchung an 63 Rentieren alle mit Vertretern der Trichostrongylidae infiziert
BYE et al. 1987
Trichostrongyloidea 1978 bis 1985 verschiedene Ostertagia spp. in der Arktis (Spitsbergen) festgestellt
HALVORSEN u. BYE 1999
Trichostrongyloidea positive Nachweise 1974 bis 1976 in South Georgia von Ostertagia gruehneri beim Rentier
LEADER-WILLIAMS 1980
Trichostrongyloidea Untersuchungen von Schlachttieren in Finnland 2002-2004 belegen das Vorkommen von Ostertagia gruehneri und Nematodirus sp.
HRABOK et al. 2007
Trichostrongyloidea bei zweijähriger Untersuchung in Finnland war der häufigste Parasit Ostertagia gruehneri, auch Nachweis von Nematodirinae
HRABOK et al. 2006
Trichostrongyloidea Tod zweier Rentiere aufgrund einer Nematodeninfektion im Zoo Leipzig, an der Ostertagia sp. beteiligt war
REHBEIN et al. 1997
Trichostrongyloidea Ostertagia gruehneri und Ostertagia arctica typische Parasiten von Rentieren
LICHTENFELS et al. 1990
Trichostrongyloidea Ostertagia gruehneri und Ostertagia arctica stellen eine Spezies dar
DALLAS et al. 2000
Trichostrongyloidea 36 % von knapp 500 Rentierkälbern positiv getestet OKSANEN et al. 1990
Trichostrongyloidea Dictyocaulus viviparus üblicher Parasit des Rentiers KUMMENEJE 1977
Capillaria Nachweis in Kanada FRUETEL und LANKESTER 1989
Capillaria Nachweis bei zweijähriger Untersuchung in Finnland HRABOK et al. 2006
Parelaphostrongylus Infektion von Rentieren in den USA TRAINER 1973
Parelaphostrongylus andersoni
Ende der achtziger Jahre erster Nachweis, dass Rentiere in Kanada als Wirte fungieren
LANKESTER u. HAUTA 1989
Parelaphostrongylus odocoilei
1976 bis 1982 in Canada Infektionen beim Rentier GRAY u. SAMUEL 1986
Parelaphostrongylus tenuis
im National Zoological Park's Conservation and Research Centre, Virginia seit 1982 aufgetreten
NICHOLS et al. 1986
26
Elaphostrongylus cervi
erster Nachweis 1979 beim Rentier in Nordamerika
LANKESTER u. NORTHCOTT 1979
Elaphostrongylus rangiferi
Isolierung beim Rentier in Schweden
STEHEN et al. 1989
Elaphostrongylus rangiferi
Anfang der siebziger Jahre als bedeutende Infektionskrankheit der Rentiere benannt
NORDKVIST 1971
Elaphostrongylus rangiferi
Infektionen beim Rentier LANKESTER u. FONG 1998
Kokzidia von 195 Kälberproben Nachweis zweier Eimeriaspezies, neuem Stamm Diagnose von Eimeria mayeri
GUDMUNDSDOTTIR u. SKIRNISSON 2005
Kokzidia von 500 Rentierkälbern 36% Oozysten OKSANEN et al. 1990
Echinococcus granulosus
Nachweis in Kanada 1980 bis 1987 THOMAS 1996
Taenia hydatigena Nachweis in Kanada 1980 bis 1987 THOMAS 1996
Taenia ovis krabbei positive Nachweise in Svalbard BYE 1985
Moniezia benedini positive Nachweise in Svalbard BYE 1985
Moniezia benedini Nachweis 1974 bis 1976 in South Georgia LEADER - WILLIAMS 1980
Fascioloides magna Infektionen beim Rentier LANKESTER u. LUTTICH 1988
Paramphistomum leydeni
Infektionen beim Rentier NIKANDER 1991
Tabelle 24: Viren bei Rentieren in der Literatur Viren Nachweise und Infektionsgeschehen, Lokalität Autor und
Jahr
Herpesvirus endemisch in Rentierpopulationen Norwegens TRYLAND et al. 2005
BHV-1 1974 bis 1980 in Finnland Nachweis von IBR/IPVV bei Rentieren
EK - KOMMONEN et al. 1982
BHV-1 Infektionen bei Rentieren in Alaska DIETERICH 1979
BHV-1 in Karibouherde in Kanada Antikörperprävalenz knapp 40 % 1978, 14,2 % 1979
ELAZHARY et al. 1981
BHV-1 Karibus in Alaska serologisch positiv ZARNKE 1983
BHV-1 1992 bis 1995 in Kanada bei über 50 % von 42 Rentieren positiver Antikörpenachweis
JORDAN et al. 2003
27
BHV-1 endemisch in den Rentierpopulationen Norwegens (Untersuchungen 1993 bis 2000)
LILLEHAUG et al. 2003
BHV-1 52 % von 121 Rentiere in Kanada 1997 bis 1999 serologisch positiv
TESSARO et al. 2005
BHV-1 Nachweis bei Rentieren THIRY et al. 2008
CerHV-2 endemisch in den Rentierpopulationen Norwegens (Untersuchungen 1993 bis 2000)
LILLEHAUG et al. 2003
Pestivirus endemisch in Rentierpopulationen Norwegens TRYLAND et al. 2005
BVDV zwei von 67 Karibous in Alaska serologisch positiv ZARNKE 1983
BVDV endemisch in den Rentierpopulationen Norwegens (Untersuchungen 1993 bis 2000)
LILLEHAUG et al. 2003
BVDV Infektionen bei Rentieren in Alaska DIETERICH 1979
BVDV in Karibuherde in Kanada 1978 bis 1979 Antikörperprävalenz von über 60 %
ELAZHARY et al. 1981
Rotavirus in Karibuherde in Canada 1978 bis 1979 Antikörperprävalenz von 4,5 %
ELAZHARY et al. 1981
Rotavirus vorwiegend Neugeborene vieler Tierarten starke klinische Symptome
ROLLE u. MAYR 2006
MCFV Erkrankung beim Rentier VON HEGEL 1995
MCFV klinische, pathologisch-anatomische und histologiche Diagnose bei einem Rentier Anfang der siebziger Jahre in einem deutschen Zoo
ALTMANN et al. 1973
MCFV klinische Symptome beim Rentier, Induktion durch OvHV-2
HEUSCHELE et al. 1988
MCFV erster Nachweis beim Rentier KIUPEL et al. 2004
MCFV Antikörpernachweise bei Rentieren VIKOREN et al. 2006
MCFV Antikörpernachweis bei 4% von 232 Rentieren ZARNKE et al. 2002
MCFV ein nicht publizierter Fall in Norddeutschland vor 20 Jahren von den Herren WOHLSEIN und BÖER dokumentiert
MARKOWSKI u. BÖER 2008
BHV - 1 = Bovines Herpesviirus -1 BVDV = Bovines Virus Diarrhoe – Virus MCFV = Malignant Catarrhal Fever - Virus
In der Literatur werden unter anderem bakterielle Infektionen mit E. coli, Clostridien,
Pasteurella und Brucella beschrieben. Häufige parasitologische Erreger sind
Vertreter der Trichostrongyloidea und der Metastrongyloidea. Bedeutende Viren sind
das BHV - 1, BVDV und MCFV.
28
2.9 Allgemeine Anforderungen im Rahmen der Quarantäne
Im Allgemeinen wird ohne die Kenntnis des Vorliegens einer Infektionserkrankung
eine Quarantänedauer von 30 Tagen empfohlen. Die Quarantäneeinrichtung sollte in
räumlicher Abtrennung zu anderen Tierunterbringungen errichtet sein, wobei in
Hinblick auf die zu wählende Distanz Luftübertragungswege der zu erwartenden
Krankheitserreger der jeweiligen Tierarten zu beachten sind. Außerdem muss die
Station von einer geeigneten Eingrenzung umgeben sein. Vorrichtungen zum
Entladen neu zugehender Tiere müssen so beschaffen sein, dass ein Tier bei dem
Transportvorgang nicht entweichen kann. Der Zugangsbereich sollte über ein
Schleusensystem verfügen, das zum einen ein Entweichen der Tiere verhindert, zum
anderen den Hygienemaßnahmen dient. Alle Oberflächen und Bodenbeläge der
Quarantäneeinrichtung sowie die Arbeitsmaterialien sollten leicht zu reinigen und zu
desinfizieren sein. Außerdem sollten sie eine entsprechende Widerstandsfähigkeit
gegenüber den einzusetzenden Desinfektionsmitteln aufweisen. Zum Ausschluss
von Vektoren in Form von Insekten sollten die Fenster der Quarantänebereiche mit
Fliegengittern versehen werden. Um die Gefahr der Luftübertragung von
Krankheitserregern zu minimieren empfiehlt sich der Einbau eines Luftfiltersystems.
Der Tierbereich sollte nur in Schutzkleidung betreten werden, bei Verlassen des
Tierbereiches sind Hände und Schuhwerk zu desinfizieren. Arbeitsmaterialien
verbleiben zum Gebrauch in den Einheiten der Quarantänestation. Der Tierbesatz
einer Quarantäne erfolgt im „all in - all out“ – System. Das bedeutet, dass sich bei
Vergesellschaftung innerhalb der Quarantäne die Isolationsdauer nach dem jüngsten
Neuzugang für alle Tiere ausrichtet und sich gegebenenfalls für einige Individuen
verlängert. Der Gesundheitszustand der Tiere muss täglich durch eingewiesenes
Personal kontrolliert werden, und sie müssen für medizinische Behandlungen
separiert werden können. Die täglichen Beobachtungen werden dokumentiert und
der Report für zehn Jahre verwahrt. Der Bericht beinhaltet neben dem Datum, der
Quarantänedauer und der Identifikation des betreffenden Tieres Kopien der
Transportpapiere, Angaben zu den täglichen Beobachtungen des
Gesundheitszustandes, datierte Ergebnisse von diagnostischen Untersuchungen und
29
Befunden sowie medizinische Behandlungen. Der Personenverkehr ist während der
Quarantäne beschränkt. Alle Personen, die die Quarantäneeinrichtung betreten,
müssen in einem Besucherbuch mit Datum, Namen und Adresse vermerkt werden.
Die Quarantäneeinrichtung und insbesondere das Futterlager sind von Schadnagern
und anderen potentiellen Vektoren frei zu halten. Der anfallende Müll wird gesammelt
und anschließend wie der Stallmist unschädlich entsorgt (KAANDORP et al. 2010).
Während und insbesondere nach Beendigung der Quarantäne erfolgen Reinigung
und Desinfektion in geeigneter Schutzkleidung. Die Reinigung muss immer der
Desinfektion vorausgehen (KIUPEL et al. 2010).
Reinigung bedeutet die Entfernung aller organischen Materialen (Blut, Kot, Urin,
Futter usw.). Nach der Trockenreinigung folgt die Nassreinigung in den vier Schritten
einweichen, waschen, spülen und trocknen. Die Abtrocknung sollte zur Vermeidung
einer Bakterienvermehrung schnell erfolgen. In der sich anschließenden Desinfektion
ist die Wahl des Desinfektionsmittels u. a. abhängig von den zu erwartenden
Krankheitserregern. Das Desinfektionsmittel sollte über ein großes antimikrobielles
Spektrum verfügen und keine Toxizität, Teratogenität oder Karzinogenität aufweisen.
Es darf keine korrosiven Eigenschaften besitzen, muss aktiv bei organischen
Ablagerungen sein und Stabilität unabhängig von Außentemperaturen zeigen. Das
zu wählende Präparat zeichnet sich weiterhin durch eine lange Haltbarkeitsdauer
und Umweltfreundlichkeit aus (KIUPEL et al. 2010).
Zur Desinfektion eigenen sich in Abhängigkeit vom zu erwartenden bzw.
nachgewiesenen Infektionserreger die vom Ausschuss „Desinfektion in der
Veterinärmedizin“ gelisteten und von der Deutschen Veterinärmedizinischen
Gesellschaft veröffentlichten Präparate (Deutsche Veterinärmedizinische
Gesellschaft 2003).
Nach der durchgeführten Desinfektion sollte vor Neubesatz eine Ruhephase von
mindestens sieben Tagen liegen (KAANDORP et al. 2010).
30
Material und Methoden 3
Es wurden 5389 Untersuchungsfälle bei acht verschiedenen Tiergruppen hinsichtlich
des Vorkommens von bakteriellen, parasitologischen und virologischen
Infektionskrankheiten ausgewertet. Die Datenerhebung erfolgte durch Sichtung und
Dokumentation der Krankendateien, Laborbefunde und Sektionsberichte aus zwölf
deutschen zoologischen Gärten mit anschließender statistischer Auswertung.
3.1 Beteiligung Zoologischer Gärten
An der Untersuchung beteiligten sich 12 Zoologische Gärten Deutschlands, in dem
sie ihre Krankenaufzeichnungen, Laborbefunde und Obduktionsberichte zur
Verfügung stellten. Eine Liste dieser zoologischen Einrichtungen ist dem Anhang I zu
entnehmen. Zur Wahrung der Anonymität ist die Nummerierung in der folgenden
Abbildung und Tabelle zufällig gewählt.
Zoo
12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1
% 40
30
20
10
0
Abbildung 1: Verteilung der Untersuchungsfälle auf die zwölf beteiligten zoologischen Einrichtungen
31
Tabelle 25: Verteilung der Untersuchungsfälle auf die zwölf beteiligten zoologischen Einrichtungen
Zoo Nr. Anzahl der Proben
Prozent
1 825 15,3
2 158 2,9
3 946 17,6
4 277 5,1
5 200 3,7
6 164 3,0
7 174 3,2
8 1638 30,4
9 431 8,0
10 1 0,0
11 551 10,2
12 24 0,4
gesamt 5389 100,0
3.2 Verteilung der Tiergruppen
Die Untersuchung umfasst die Ordnung der Paarhufer in Form von Elch und Rentier,
eine Nagetierart (Biber) und Raubtiere (Eis - und Braunbären, Wölfe, Luchse und
Robben). Zu den Robbenartigen im Rahmen der Untersuchung zählen
Südamerikanischer Seebär, Mähnenrobbe, Kalifornischer Seelöwe, Walross,
Seehund, Baikalrobbe, Kegelrobbe und See - Elefant. Die im Diskussionsteil
angesprochenen und in der Literatur dargestellten Infektionserreger zeigen ein
weitgehend einheitliches Infektionsgeschehen dieser Tiergruppe, das eine
Zusammenfassung der Familie bei der Auswertung ermöglichte.
3.2.1 Biber (Castor)
Bei den Individuen dieser Studie handelt es sich um Eurasische (Castor fiber) und
Amerikanische Biber (Castor canadensis). Während das Verbreitungsgebiet des
Amerikanischen Bibers sich über Kanada und die USA bis Nordmexiko erstreckt, tritt
der Eurasische Biber im mittleren und nördlichen Europa sowie im nördlichen Asien
auf (PUSCHMANN et al. 2009). Aufgrund des einheitlichen Infektionsgeschehens
wurden beide Arten in die Auswertung mit einbezogen.
32
3.2.2 Wolf (Canis lupus)
Der Wolf kommt in Eurasien, Nord - und Mittelamerika vor (Sillero -Zubiri 2009). In
Tiergärten werden in der Regel Europäischer-, Timber- und Tundrawolf präsentiert
(PUSCHMANN et al. 2009).
3.2.3 Braunbär (Ursus arctos)
Das Verbreitungsgebiet der Braunbären erstreckt sich über weite Teile Nordamerikas
und Eurasiens. Seine verschiedenen Unterarten werden häufig in Zoologischen
Gärten gezeigt (PUSCHMANN et al. 2009).
3.2.4 Eisbär (Ursus maritimus)
Der Eisbär zählt wie der Braunbär zu den Arten „Echte Bären“ und wird ebenfalls
häufig in Tiergärten gehalten. Es existieren keine Unterarten (PUSCHMANN et al.
2009).
3.2.5 Luchs (Lynx)
Von den vier Arten dieser Gattung ist neben dem Kanadischen Luchs (Lynx
canadensis), der mit drei Unterarten in Alaska, Kanada und den Rocky Mountains
beheimatet ist, der Eurasische Luchs (Lynx lynx) in dieser Untersuchung erfasst
(PUSCHMANN et al. 2009). Da der Eurasische Luchs in vielen Zoologischen
Einrichtungen gehalten wird und das gleiche Infektionsgeschehen wie der
Kanadaluchs aufweist, ist der Einbezug in diese Untersuchung sinnvoll.
3.2.6 Robben
In die Auswertungen dieser Studie sind Untersuchungsergebnisse verschiedener
Vertreter der Robbenartigen eingeflossen, die aufgrund des einheitlichen
Infektionsgeschehens zusammengefasst wurden. Als Mitglieder der Familie
Ohrenrobben (Otariidae) sind Dokumentationen über den Südamerikanischen
Seebären (Unterfamilie: Pelzrobben (Arctocephalinae)), den Kalifornischen
Seelöwen und die Mähnenrobbe (Unterfamilie Haarrobben (Otariinae)) vorhanden.
Außerdem liegen Ergebnisse für das Walross (Familie Walross (Odobenidae)) und
Vertreter der Hundsrobben (Phocidae) mit den Unterfamilien Seehunde ((Phocinae):
Seehund, Baikalrobbe, Kegelrobbe) und Rüsselrobben ((Cystophorinae): See-
Elefant) vor (PUSCHMANN et al. 2009).
33
3.2.7 Elch (Alces)
Die Daten beider Elcharten mit ihren jeweils zwei Unterarten sind Bestandteil dieser
Arbeit. Der Eurasische Elch (Alces alces) lebt in Nordeuropa, Nordrussland bis
Westsibirien, südlich über der Ukraine bis Nordchina. Der Amerikanische Elch (Alces
americanus) bewohnt Ostsibirien, Nordamerika über die Nordstaaten bis Alaska
(PUSCHMANN et al. 2009).
3.2.8 Rentier (Rangifer tarandus)
Zu den Rentieren dieser Untersuchung zählt das eigentliche Rentier, auch als
Wildren bezeichnet und die domestizierte Hausrenform Rangifer tarandus f.
domesticus. Das Wildren kommt auf Inseln und Festland des Polar - und
Subpolargebietes der Nordhalbkugel vor. Die Hausform entstand aus dem
Nordeuropäischen Wildren (Rangifer tarandus tarandus) und aus dem sibirischen
Rangifer tarandus sibiricus (PUSCHMANN et al. 2009).
3.3 Verteilung der Tiergruppen auf die Gesamtmenge der untersuchten Tiere
% 20
15
10
5
0 Robbe Biber Luchs Wolf Rentier Elch Braun-
bär Eisbär
Abbildung 2: Verteilung der Tiergruppen auf die Gesamtmenge der untersuchten Tiere
34
Die Verteilung von Geschlecht, Alter, Herkunft des Untersuchungsmaterials sowie
der Untersuchungsergebnisse auf die Untersuchungsjahrzehnte kann dem Anhang I
entnommen werden.
Die einzelnen Tierarten sind zu unterschiedlichen Anteilen an der Untersuchung
beteiligt. Die Tierart, auf die sich die meisten Untersuchungssätze bezieht, ist das
Rentier mit 19,5%.
Alle Daten wurden einer erreger- und tierartspezifischen Analyse unterzogen. Der
Anteil positiver Laborbefunde an der Gesamtzahl aller Laborbefunde in Prozent für
einzelne Erregergruppen wurde ebenso ermittelt wie die Häufigkeit, mit der einzelne
Erregergruppen bei den entsprechend untersuchten Säugerarten vorkommen.
Ergebnisse aus verschiedenen Jahrzehnten wurden miteinander verglichen und
Unterschiede auf deren Signifikanz hin überprüft, um auch die zeitliche Variable des
quantitativen Vorkommens einzelner Erregergruppen bei den verschiedenen
Säugerspezies zu dokumentieren.
35
Ergebnisse 4Die Ergebnisse der erregerspezifischen und tierartspezifischen Analyse werden
vorgestellt und dann der entsprechenden Literatur gegenübergestellt und diskutiert.
4.1 Erregerspezifische Analyse
Das Vorkommen bakterieller, parasitologischer und virologischer Erreger wurde bei
den verschiedenen Tierarten untersucht und statistisch ausgewertet.
4.1.1 Erregerspezifische Analyse - Bakterien
Die unten aufgeführte Übersicht zeigt die bei den Untersuchungsfällen aller acht
Tierarten dieser Arbeit nachgewiesenen bakteriologischen Erreger.
Tabelle 26: Bakterien dieser Studie
Schraubenbakterien Leptospira Campylobakter / Helicobakter Gramnegative aerobe/mikroaerophile Stäbchen und Kokken Pseudomonas Brucella Bordetella Gramnegative fakultativ anaerobe Stäbchenbakterien Enterobacteriaceae: E.coli, Edwardsiella, Citrobakter, Klebsiella, Serratia, Proteus, Yersinia Salmonella Pasteurella Aeromonas Gramnegative obligat anaerobe Stäbchenbakterien Fusobakterium necrophorum Grampositive Kokken Staphylokokkus Streptokokkus Sporenbildende Stäbchenbakterien Bacillus anthracis Clostridium Regelmäßige, sporenlose grampositive Stäbchen Listeria Erysipelothrix
36
Actinomyceten Aktinomyces Arkanobakterium Mykobakterium bovis/tuberkulosis Mykobakterium paratuberkulosis Mykoplasma Chlamydiales Chlamydia Rickettsiales Rickettsia, Coxiella Sonstige Bakterien
Im Rahmen der Untersuchung zählen E. coli, Edwardsiella, Citrobakter, Klebsiella,
Serratia, Proteus und Yersinia zu den erfassten Vertretern der Enterobacteriaceae.
Die Gattung Salmonella wäre systematisch hier einzugliedern, ist in der Auswertung
aber gesondert betrachtet worden. Mykobakterium bovis und Mykobakterium
tuberkulosis sind als eine Erregergruppe ausgewertet worden.
Abbildung 3: Bakterien im Gesamtkollektiv
% 50
40
30
20
10
0
so
nsti
ge B
akte
rien
Myko
pla
sm
a
Lis
teri
a
Lep
tosp
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Fu
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37
Abbildung 3 zeigt die Verteilung des Vorkommens der nachgewiesenen Bakterien im
Gesamtkollektiv. Eine detaillierte Auflistung des Vorkommens der verschiedenen
bakteriellen Erreger ist den Tabellen im Anhang II zu entnehmen. Eine ausführliche
statistische Auswertung aller beteiligter Bakterien führt im Rahmen dieser Arbeit zu
einem zu großen Untersuchungsaufwand, so dass Bakterien mit einem geringen
prozentualen Vorkommen (< 3 %) nicht weiter ausgewertet werden. Mit einer
Häufigkeit ab 3 % werden die Erreger der Enterobacteriaceae, Streptokokkus,
Staphylokokkus, Clostridium, Salmonella und Pseudomonas näher beschrieben und
weiter analysiert.
Die Quotienten der folgenden Abbildungen geben den jeweiligen prozentualen Anteil
einer Tierart an positiven Bakteriennachweisen beziehungsweise den prozentualen
Anteil der einzelnen positiven Bakteriennachweise an einem Untersuchungsjahrzehnt
an.
4.1.2 Enterobacteriaceae
Enterobacteriaceae bei verschiedenen Tierarten
Am häufigsten wurden Enterobacteriaceae bei Robben, Rentieren und Eisbären
nachgewiesen. Bezüglich dieser Aussagen liegt eine höchste statistische Signifikanz
(Chi – Quadrat - Test; p <0,01) vor.
Abbildung 4: Enterobacteriaceae bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil der 537 positiven Enterobacteriaceaenachweise
38
Enterobacteriaceae im zeitlichen Verlauf
Die positiven Nachweise steigen ab 1981 auf über 20 %. Der Nachweis von positiven
Fällen ab dem Jahr 2000 ist nicht repräsentativ, da es sich nicht um eine volle
Dekade handelt. Für die beschriebenen Ergebnisse bezüglich des zeitlichen Verlaufs
des Vorkommens der Enterobacteriaceae liegt statistische Signifikanz (Chi – Quadrat
-Test; p < 0,05) vor.
Abbildung 5: Enterobacteriaceae im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil der 537 positiven Enterobacteriaceaenachweise
4.1.3 Streptokokkus
Streptokokkus bei verschiedenen Tierarten
Am häufigsten mit fast 50 % wurden Streptokokken bei Robben diagnostiziert.
Hinsichtlich dieser beschriebenen Unterschiede lässt sich höchste statistische
Signifikanz berechnen (Chi – Quadrat - Test; p < 0,01).
39
Abbildung 6: Streptokokkus bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Streptokokkusnachweise
Streptokokkus im zeitlichen Verlauf
Im Untersuchungsjahrzehnt 1981 - 1990 sind die meisten positiven Ergebnisse zu
verzeichnen. Es liegt eine statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,05)
vor.
Abbildung 7: Streptokokken im zeitlichen Verlauf X Tierart Y prozentualer Anteil aller posotoven Streptokokkennachweise
40
4.1.4 Staphylokokkus
Staphylokokkus bei verschiedenen Tierarten
Weder beim Elch noch beim Luchs konnten im Rahmen der Untersuchung
Staphylokokken nachgewiesen werden. Das größte Vorkommen ist bei den Robben
zu finden. Es liegt hohe statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,01) für
diese Ergebnisse vor.
Abbildung 8: Staphylokokkus bei verschiedenen Tierarten
X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Staphylokokkusnachweise
Staphylokokkus im zeitlichen Verlauf
Im Untersuchungsjahrzehnt 1981 - 1990 sind die meisten positiven Ergebnisse zu
verzeichnen. Es liegt keine statistische Signifikanz vor (Chi-Quadrat-Test; p> 0,05).
Abbildung 9: Staphylokokkus im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil der positiven Staphylokokkusnachweise
41
4.1.5 Clostridium
Clostridium bei verschiedenen Tierarten
Das Rentier ist die Tierart, bei der die meisten positiven Nachweise für Clostridien
erfolgten. Hinsichtlich dieser Ergebnisse lässt sich höchste statistische Signifikanz
(Chi – Quadrat - Test; p < 0,001) berechnen.
Abbildung 10: Clostridium bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Clostridiennachweise
Clostridium im zeitlichen Verlauf
Die meisten positiven Ergebnisse sind für die nicht volle Dekade ab dem Jahr 2000
zu verzeichnen. Es liegt höchste statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p <
0,001) vor.
Abbildung 11: Clostridium im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil der positiven Clostridiennachweise
42
4.1.6 Salmonella
Salmonella bei verschiedenen Tierarten
Salmonella ist am häufigsten bei Robbe und Luchs vorhanden. Für diese Ergebnisse
liegt höchste Signifikanz (Chi – Qudrat - Test; p < 0,001) vor.
Abbildung 12: Salmonella bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Salmonellanachweise
Salmonella im zeitlichen Verlauf
Das Samonellavorkommen hat seinen Höhepunkt zwischen 1971 und 1980.
Es liegt keine statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p > 0,05) vor.
Abbildung 13: Salmonella im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Salmonellanachweise
43
4.1.7 Pseudomonas
Pseudomonas bei verschiedenen Tierarten
Die Hälfte der dokumentierten positiven Nachweise der Pseudomonaden sind bei
den Robben festgestellt worden. Die Ergebnisse sind als statistisch signifikant (Chi -
Quadrat - Test; p < 0,01) zu bezeichnen.
Abbildung 14: Pseudomonas bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Pseudomonasnachweise
Pseudomonas im zeitlichen Verlauf
Pseudomonaden sind zwischen 1981 - 1990 am häufigsten aufgetreten.
Diese Ergebnisse sind nach dem Chi – Quadrat - Test (p > 0,05) nicht signifikant.
Abbildung 15: Pseudomonas im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Pseudomonasnachweise
44
4.2 Erregerspezifische Analyse - Parasiten
Die unten aufgeführte Übersicht zeigt die zu unterschiedlichen Anteilen bei den acht
Tierarten bzw. Gruppen dieser Arbeit nachgewiesenen parasitologischen Erreger.
Tabelle 27: Parasiten dieser Studie
Protozoa Leishmania Trichomonas Kokzidia Toxoplasma sonstige Protozoa Cestoda Diphyllobotrium Echinokokkus sonstige Cestoda Trematoda Fasciola sonstige Trematoda Nematoda Strongyloides Strongyloidea: Strongylus, Chabertia, Oesophagustomum Ankylostomatoidea: Ankylostoma,Unkinaria Trichostrongyloidea:Ostertagia, Trichostrongylus, Cooperia, Dictyocaulus, Nematodirus Metastrongyloidea: Protostrongylus, Otostrongylus, Muellerius, Filaroides, Parafilaroides Askaridoidea: Askaris, Baylisaskaris, Toxaskaris, Toxokara, Anisakis, Contracaecum Spiruroidea: Spirocerca, Capillaria, Trichuris, Trichinella, Lungenwurm Akantocephalea sonstige Nematoda
45
Abbildung 16: Parasiten im Gesamtkollektiv
Die Abbildung 16 zeigt die Verteilung des Vorkommens der nachgewiesenen
Parasiten im Gesamtkollektiv.
Das prozentuale Vorkommen der beteiligten Parasiten ist in den Tabellen des
Anhang III aufgeführt.
Analog zu den Bakterien wird vom Autor eine Mindestgröße des Vorkommens der
Parasiten (> 1,0 %) zur weiteren Untersuchung festgelegt. Mit einem Vorkommen
über 1,0 % werden die Parasiten Strongyloidea, Trichuris, Capillaria, Askaridoidea,
Kokzidia, Nematoda und Trichostrongyloidea näher beschrieben beziehungsweise
analysiert.
Die Quotienten der folgenden Abbildungen geben den jeweiligen prozentualen Anteil
einer Tierart an positiven Parasitennachweisen beziehungsweise den prozentualen
Anteil der einzelnen positiven Parasitennachweise an einem Untersuchungsjahrzehnt
an.
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46
4.2.1 Strongyloidea
Strongyloidea bei verschiedenen Tierarten
Am stärksten sind die Strongyloidea bei den Rentieren und den Elchen vertreten.
Die Ergebnisse sind hoch signifikant (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 17: Strongyloidea bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Strongyloideanachweise
Strongyloidea im zeitlichen Verlauf
Fast die Hälfte aller positiven Nachweise von Strongyloidea erfolgte im
Untersuchungszeitraum 1991 - 2000. Hinsichtlich dieser Ergebnisse liegt eine hohe
statistische Signifikanz (Chi –Quadrat - Test, p > 0,001) vor.
Abbildung 18: Strongyloidea im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Strongyloideanachweise
47
4.2.2 Trichuris
Trichuris bei verschiedenen Tierarten
Der entschieden größte Anteil positiver Nachweise von Trichuris ist beim Elch zu
finden. Für diese Ergebnisse liegt eine höchste statistische Signifikanz (Chi –
Quadrat - Test; p < 0,001) vor.
Abbildung 19: Trichuris bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Trichurisnachweise
Trichuris im zeitlichen Verlauf
Fast die Hälfte der positiven Trichurisnachweise ist im Untersuchungszeitraum 1991
bis 2000 dokumentiert. Die Ergebnisse sind statistisch höchst signifikant (Chi –
Quadrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 20: Trichuris im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Trichurisnachweise
48
4.2.3 Capillaria
Capillaria bei verschiedenen Tierarten
Das größte Vorkommen von Capillaria ist beim Rentier zu verzeichnen. Für diese
Ergebnisse liegt höchste statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001)
vor.
Abbildung 21: Capillaria bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Capillarianachweise
Capillaria im zeitlichen Verlauf
In den Jahren zwischen 1950 und 1960 liegt kein positiver Nachweis von Capillaria
vor. Ab 1991 steigt das positive Vorkommen auf über 30 %. Es liegt höchste
statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001) vor.
Abbildung 22: Capillaria im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Capillarianachweise
49
4.2.4 Askaridoidea
Askaridoidea bei verschiedenen Tierarten
Vertreter der Askarisdoidea kommen häufig bei Luchs und Eisbär vor. Bei Elchen ist
in keinem Fall ein Erreger der Askarioidea festgestellt worden. Diese Ergebnisse sind
höchst statistisch signifikant (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 23: Askaridoidea bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Askaridoideanachweise
Askaridoidea im zeitlichen Verlauf
Bis zum Untersuchungsjahrzehnt 1981 bis 1990 ist ein kontinuierlicher Anstieg des
Vorkommens bei den betreffenden Tierarten der Untersuchung zu verzeichnen. Ab
1991 kommt es wieder zu einem geringen Abfall der positiven Nachweise. Es liegt
höchste statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001) für diese
Ergebnisse vor.
50
Abbildung 24: Askaridoidea im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Askaridoideanachweise
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Askaridoidea X
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1991-2000
1981-90
1971-80
1961-70
1950-60
Jahrzehnt
51
4.2.5 Kokzidia
Kokzidia bei verschiedenen Tierarten
Der einzellige Parasit Kokzidia ist am häufigsten beim Wolf nachgewiesen worden.
Die Ergebnisse sind statistisch höchst signifikant (Chi – Qudrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 25 Kokzidia bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Kokzidianachweise
Kokzidia im zeitlichen Verlauf Der größte Anteil, fast die Hälfte positiv nachgewiesener Kokzidien liegt im
Untersuchungsintervall 1991 - 2000. Es liegt höchste statistische Signifikanz (Chi –
Quadrat - Test; p ≤ 0,001) vor.
Abbildung 26: Kokzidia im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Kokzidianachweise
52
4.2.6 Nematoda
Nematoda bei verschiedenen Tierarten
Die in den vorliegenden Untersuchungsberichten nicht weiter differenzierten
Nematoda sind hauptsächlich bei den Hirschen zu verzeichnen. Die Ergebnisse sind
höchst signifikant (Chi – Quadrat - test; p < 0,001).
Abbildung 27: Nematoda bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Nematodanachweise
Nematoda im zeitlichen Verlauf
Es kommt zu einem Anstieg des Vorkommens der nicht weiter differenzierten
Nematoda bis zum Zeitraum 1971 bis 1980. Nach einem Abfall steigen die positiven
Nachweise erneut zwischen 1991 und 2000. Hinsichtlich dieser Ergebnisse liegt
höchste statistische Signifikanz vor (Chi –Quadrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 28: Nematoda im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Nematodanachweise
53
4.2.7 Trichostrongyloidea
Trichostrongyloidea bei verschiedenen Tierarten
Mit Abstand am häufigsten ist ein Vertreter der Trichostrongyloidea beim Rentier
nachgewiesen worden. Bei Bären und Luchs ist kein positives Untersuchungs-
ergebnis dokumentiert. Die Ergebnisse sind statistisch höchst signifikant (Chi –
Quadrat - Test; p < 0,001).
Abbildung 29: Trichostrongyloidea bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Trichostrongyloideanachweise
Trichostrongyloidea im zeitlichen Verlauf
Im ersten Untersuchungszeitraum 1950 bis 1960 ist kein Vorkommen der
Trichostrongyloidea beschrieben. Der größte Anteil der Trichostrongyloidea im
Untersuchungsgut ist in der nicht vollständigen Dekade ab dem Jahr 2000 zu finden.
Für die Ergebnisse bezüglich der Zeitverteilung der Trichostrongyloidea liegt höchste
statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,001) vor.
Abbildung 30: Trichostrongyloidea im zeitlichen Verlauf X Jahrzehnt Y prozentualer Anteil aller positiven Trichostrongyloideanachweise
54
4.3 Erregerspezifische Analyse - Viren
Die unten aufgeführte Übersicht zeigt die bei den zu unterschiedlichen Anteilen bei
den acht Tierarten bzw. Gruppen dieser Arbeit nachgewiesenen virologischen
Erreger.
Tabelle 28: Viren dieser Studie
DNA – Viren RNA - Viren
Poxviridae Orthopoxvirus Pockenvirus Herpesviridae BHV-1 (Bovines Herpesvirus 1) SuHV-1 (Suid Herpesvirus 1) CaHV-1 (Canines Herpesvirus 1) CaHV-1 (Canines Herpesvirus 1) Herpesvirus MCFV (Malignant Catarrhal Fever Virus) Adenoviridae Adenovirus Parvoviridae Felines Panleukopenie Virus Parvovirus
Reoviridae Rotavirus Flaviviridae BVD/MD Virus (Virus der Bovinen Virusdiarrhoe) Coronaviridae Coronavirus FIPV (Virus der Felinen infektösen Peritonitis) Paramyxoviridae Staupevirus Rhabdoviridae Tollwutvirus Retroviridae Leukosevirus FeLV (Felines Leukosevirus) FIV (Felines Immundefizienzvirus) CAEV (Caprines Arthritis-Encephalitis Virus) Caliciviridae Calicivirus
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Abbildung 31: Viren im Gesamtkollektiv
Die Abbildung 31 zeigt die Verteilung des Vorkommens der nachgewiesenen Viren
im Gesamtkollektiv.
Für einzelne Erreger existieren in den Aufzeichnungen unterschiedlich präzise
Angaben bezüglich der Spezifizierung, so dass zum Beispiel Parvovirus und
Panleukopenievirus differenziert betrachtet werden. Es ist zu beachten, dass aber
die Gruppe Parvovirus auch das Panleukopenievirus beinhaltet. Gleiches gilt für
Pocken - und Orthopoxvirus sowie Leukose - und Felines Leukosevirus.
Relativ häufig treten das Staupevirus, das Parvovirus und das Orthopoxvirus auf.
Eine Auflistung des prozentualen Vorkommens aller in dieser Arbeit dokumentierten
Viren ist den Tabellen in Anhang IV zu entnehmen.
Die weitere unten aufgeführte Untersuchung bezieht sich auf Viren ab einem
Vorkommen von über 4 % an positiven Nachweisen und somit nur auf einen Teil der
in den Unterlagen der Zoos beschriebenen Viren. Hierzu zählen das Virus der
Bovinen Virusdiarrhoe / Mucosal Disease (BVD), das Bovine Herpesvirus 1 (BHV -1),
56
Orthopoxvirus, Staupevirus und Parvovirus. Aufgrund ihrer Bedeutung für
Erkrankungen bei Wiederkäuern werden Viren, die das Bösartige Katarrhalfieber
induzieren, mit einem Vorkommen von nur 3,4 % ebenfalls mit in die weitere Analyse
einbezogen.
Für die Bären wird keine folgende Analyse durchgeführt, da keine dokumentierten
virologischen Untersuchungsergebnisse für diese Tierarten vorliegen.
4.3.1 Parvovirus
Parvovirus bei verschiedenen Tierarten
Das Parvovirus ist bei drei Tierarten aufgetreten. Die häufigsten Fälle sind beim Wolf
zu verzeichnen.
Zu beachten ist die aufgrund der geringen Fallzahl (Wolf n = 15, Luchs n = 3; Robbe
n = 1) eingeschränkte Validität.
Abbildung 32: Parvovirus bei verschiedenen Tierarten
X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Parvovirusnachweise
57
4.3.2 BVD / MD bei verschiedenen Tierarten
Virus der Bovinen Virusdiarrhoe / Mucosal Disease (BVD/MD)
Das Virus der BVD / MD ist ausschließlich bei Hirschen nachgewiesen worden.
Aufgrund einer noch kleineren Fallzahl als beim Caninen Parvovirus (Rentier n= 3,
Elch = 1) wird auf die geringe Validität hingewiesen.
Abbildung 33: BVD / MD bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven BVD/MD-Nachweise
4.3.3 Bovines Herpesvirus 1 (BHV – 1)
BHV–1 bei verschiedenen Tierarten
Mit einer geringen Fallzahl von n = 4 ist das Bovine Herpesvirus 1 ausschließlich
beim Rentier als einziger Tierart nachgewiesen worden. Hinsichtlich der Ergebnisse
liegt keine statistische Signifikanz (Chi – Quadrat - Test p > 0,05) vor.
Abbildung 34: BHV – 1 bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven BHV-1-Nachweise
58
4.3.4 Virus des Bösartigen Katarrhalfiebers
MCFV bei verschiedenen Tierarten
MCFV ist nur beim Elch positiv nachgewiesen worden, alle anderen Tiere zeigen
negative Untersuchungsergebnisse. Die Fallzahl ist mit n = 2 beim Elch sehr gering.
Auffällig ist allerdings, dass im Gegensatz zum BHV - 1 die meist beprobte Art die
andere Hirschart Rentier mit 23 negativen Untersuchungsergebnissen ist. Beim Elch
existieren nur vier negative Nachweise. Für diese Ergebnisse liegt eine statistische
Signifikanz (Chi – Quadrat - Test; p < 0,01) vor.
Abbildung 35: MCFV bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven MCFV-Nachweise
4.3.5 Staupevirus
Staupevirus bei verschiedenen Tierarten
In der Hälfte aller positiven Staupenachweise ist das Virus bei den Robben (n = 4,
50,0 %) nachgewiesen worden. Zu beachten ist auch die für dieses Virus insgesamt
sehr geringe Fallzahl und damit eingeschränkte Validität.
Es liegt keine statistische Signifikanz (Chi – Qudrat - Test; p < 0,05) vor.
59
Abbildung 36: Staupevirus bei verschiedenen Tierarten X Tierart Y prozentualer Anteil aller positiven Staupevirusnachweise
4.3.6 Orthopoxvirus
Orthopoxvirus bei verschiedenen Tierarten
Der Biber ist die einzige Tierart, bei der ein Orthopoxvirus nachgewiesen wurde.
Allerdings ist die Fallzahl mit 13 Tieren und dadurch die Validität sehr gering.
Abbildung 37: Orthopoxvirus bei verschiedenen Tierarten X Tierart (Biber) Y prozentualer Anteil aller positiven Virusnachweise beim Biber
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4.4 Tierartspezifische Analyse
4.4.1 Biber
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang IX zu entnehmen.
Biber - Bakterien
Die Graphik stellt den prozentualen Anteil der einzelnen Erreger von allen positiven
bakteriologischen Untersuchungsergebnissen dar. Fast ein Drittel (27,9 %) der 147
beprobten Biber zeigte einen positiven Enterobacteriaceae-nachweis.
Abbildung 38: Bakterien Biber - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Biber - Parasiten
Von 181 parasitologischen Untersuchungen zeigten weniger als 4,0 % der Biber ein
positives Ergebnis. Vertreter der Strongyloidea traten mit 3,9 % am häufigsten auf.
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Abbildung 39: Parasiten Biber - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Biber – Viren
Lediglich beim Biber sind Orthopoxviren festgestellt worden, die mit 76,9 % den
größten Anteil der viralen Erreger ausmachen. Allerdings ist zu beachten, dass für
nur 13 Tiere virologische Untersuchungsergebnisse vorliegen. Bei zwei von vier
getesteten Tieren wurden Herpesviren nachgewiesen. Staupevirus trat zu 30 % bei
zehn Tieren, ein nicht weiter differenziertes Leukosevirus bei einem von vier Bibern
auf.
Abbildung 40: Viren Biber - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
(%)
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4.4.2 Wolf
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang X zu entnehmen.
Wolf - Bakterien
Mit 44,6 % von 74 untersuchten Tieren ist fast die Hälfte der Nachweise beim Wolf
positiv für Enterobacteriaceae.
Abbildung 41: Bakterien Wolf - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Wolf - Parasiten
Den größten Anteil der Parasiten beim Wolf bilden mit knapp 20,0 % die
Askaridoidea. Kokzidia und Capillaria wurden in 481 Fällen zu 13,7 % bzw. 10,2 %
festgestellt.
Abbildung 42: Parasiten Wolf - Positive Befunde bei Untersuchungen
X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
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DWolf - Viren
Bei allen untersuchten Wölfen wurden lediglich zwei Viren festgestellt. Von 27
beprobten Tieren zeigten mehr als die Hälfte (55,6 %) einen positiven
Parvovirusnachweis. Bei einer kleineren Fallzahl von 17 wurde bei 5,9 % der Wölfe
eine Staupevirusinfektion diagnostiziert.
Abbildung 43: Viren Wolf - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
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4.4.3 Braunbär
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang IX zu entnehmen.
Braunbär - Bakterien
Von den 31 dokumentierten bakteriologischen Untersuchungen erfolgte in über der
Hälfte mit 58,1 % ein positiver Nachweis der Enterobacteriaceae.
Abbildung 44: Bakterien Braunbär - Positive Befunde bei Untersuchungen
X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Braunbär – Parasiten
Die Askaridoidea machen bei den Braunbären den größten Anteil der parasitären
Erreger aus. In den 433 parasitologischen Untersuchungsfällen wurden sie zu
19,1 % nachgewiesen.
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Abbildung 45: Parasiten Braunbär - Positive Befunde bei Untersuchungen
X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Braunbär – Viren
Eine Analyse zu dem Vorkommen von viralen Erregern beim Braunbär entfällt, da es
keinen positiven Virusnachweis für diese Tierart gibt.
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4.4.4 Eisbär
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang XII zu entnehmen.
Eisbär – Bakterien
Den größten Anteil an den Bakterien mit 70,0 % von 110 Untersuchungsfällen
machen bei den Eisbären die Enterobacteriaceae aus.
Abbildung 46: Bakterien Eisbär- Positive Befunde bei Untersuchungen
X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Eisbär – Parasiten
Askaridoidea sind die im Rahmen dieser Untersuchung die häufigsten parasitären
Erreger der Eisbären. Sie waren zu 34,3 % von 559 Untersuchungsfällen
nachweisbar.
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Abbildung 47: Parasiten Eisbär - Positive Befunde bei Untersuchungen
X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Eisbär - Viren
Eine Analyse zu dem Vorkommen von viralen Erregern beim Eisbär entfällt, da es im
Zeitraum der Untersuchung keinen positiven Virusnachweis für diese Tierart gibt.
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4.4.5 Luchs
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang XIII zu entnehmen.
Luchs - Bakterien
Beim Luchs treten drei Bakteriengruppen in über 10,0 % der Fälle auf. Davon liegt
bei 83 Tieren der Anteil der Enterobacteriaceae bei 47,0 %, der der Streptokokken
bei 20,5 % und der der sonstigen Bakterien bei 12,5 %.
Abbildung 48: Bakterien Luchs - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Luchs – Parasiten
In 666 Fällen liegen Ergebnisse einer parasitologischen Untersuchung vor.
Mit 30,2 % bilden die Askaridoidea den größten Anteil.
Abbildung 49: Parasiten Luchs - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
(%)
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DLuchs – Viren
Bei der Angabe von Parvovirusnachweisen erfolgte keine weitere Benennung
beziehungsweise Spezifizierung des Virusisolats, so dass in die Gruppe auch
Panleukopenieviren fallen können. Der Nachweis von allgemein nachgewiesenem
Parvovirus beim Luchs liegt bei 37,5 % der untersuchten Tiere. Zusätzlich wurden in
weiteren Untersuchungsfällen zu 33,3 % Panleukopenievirus nachgewiesen, so dass
in über 70 % aller Fälle Parvovirus bei den Luchsen feststellbar war. Fast ein Drittel
(28,6 %) der Luchse wurde positiv für das Virus der Felinen Infektiösen Peritonitis
getestet. Felines Leukosevirus trat dagegen relativ selten in 5,9 % der Fälle auf.
Abbildung 50: Viren Luchs - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
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4.4.6 Robbe
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang VIX zu entnehmen.
Robbe - Bakterien
Die beiden dominierenden bakteriellen Erreger bei den Robbenartigen sind die
Enterobacteriaceae (48,0 % von 346 Fällen) und Streptokokken (27,8 % von 335
Fällen).
Abbildung 51: Bakterien Robbe - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Robbe – Parasiten
Weniger als 5,0 % der beprobten Robben zeigen ein positives parasitologisches
Untersuchungsergebnis. Es liegen für die einzelnen positiv und negativ getesteten
Parasiten zwischen 667 und 671 Untersuchungsfälle vor.
Hiervon machen knapp 5,0 % die nicht weiter differenzierten Nematoda aus. Die
Kokzidia liegen bei ca. 4,0 %, die Askaridoidea bei 2,7 % von 668 Fällen.
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Abbildung 52: Parasiten Robbe - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Robbe - Viren Bei den Vertretern der Robbenartigen sind in den untersuchten zoologischen
Einrichtungen drei verschiedene Viren nachgewiesen worden. Am häufigsten wurde
eine Staupevirusinfektion (11,8 % von 34 Untersuchungen) diagnostiziert. Calicivirus
wurde bei 8,3 % von 12 Tieren, Parvovirus bei 6,3 % von 16 Fällen festgestellt.
Abbildung 53: Viren Robbe - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
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4.4.7 Elch
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang XV zu entnehmen.
Elch - Bakterien Über die Hälfte der 45 bakteriellen Untersuchungen zeigte für die Enterobacteriaceae
beim Elch (55,6 %) ein positives Ergebnis. Mit 34,8 % von 46 Untersuchungsfällen
und 22,7 % von 44 Fällen waren Streptokokken bzw. Clostridien ebenfalls häufig
vertreten. Von 459 Untersuchungen auf die Gattung Salmonella wurde nur in 0,7%
der Fälle Salmonella nachgewiesen.
Abbildung 54: Bakterien Elch - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Elch – Parasiten Ein Trichurisbefall ist bei 41,9 % von 779 untersuchten Tieren nachgewiesen worden.
73
Abbildung 55: Parasiten Elch - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Elch – Viren
Lediglich zwei virale Erkrankungen liegen bei kleiner Fallzahl für den Elch
dokumentiert vor. Das Virus des bösartigen Katarrhalfiebers wurde bei 33,3 % von 6
auf dieses Virus getesteten Tieren, das BVD / MD - Virus bei 7,7 % von 13 Tieren
festgestellt.
Abbildung 56: Viren Elch - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
74
4.4.8 Rentier
Die statistischen Auswertungen sind dem Anhang XVI zu entnehmen.
Rentier – Bakterien
Fast die Hälfte (46,5 %) der 297 untersuchten Rentierproben zeigte einen positiven
Nachweis für Enterobacteriaceae. Andere Bakterien wurden deutlich seltener
diagnostiziert.
Abbildung 57: Bakterien Rentier - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Rentier – Parasiten
Bei den meisten positiven parasitologischen Untersuchungen der Rentiere kann der
Parasit nicht genau benannt werden, in 16,1 % von 741 Untersuchungen wurden
nicht weiter differenzierte Nematoden festgestellt.
75
Abbildung 58: Parasiten Rentier - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
Rentier - Viren Bei den Rentieren wurden in den verschiedenen zoologischen Einrichtungen drei
Virusnachweise dokumentiert. Als einzige Tierart zeigt das Rentier ein Vorkommen
von Bovinem Herpes - Virus 1, das den größten Anteil festgestellter viraler Erreger
(11,1 % von 36 Untersuchungsfällen) bildet. Das Virus der Bovien Virusdiarrhoe und
der Mucosal Disease trat in 5,5 % von 55 Fällen, das Rotavirus zu 4,5 % auf.
Abbildung 59: Viren Rentier - Positive Befunde bei Untersuchungen X Erreger Y prozentualer Anteil positiver Nachweise an Untersuchungen auf jeweiligen Erreger
76
Diskussion 5
5.1 Diskussion artspezifischer Ergebnisse
5.1.1 Diskussion Biber
Biber - Bakterien
Fast ein Drittel der beprobten Biber zeigte einen positiven
Enterobacteriaceaenachweis. Auch in der Literatur werden Infektionen von Bibern
mit Enterobacteriaceae beschrieben. E. coli als typischer Vertreter dieser
Bakteriengruppe ist bei Nagetieren kein physiologischer Bestandteil der Darmflora
und kann zu schweren Enteritiden führen (EWRINGMANN u. GLÖCKNER 2005,
MATTHES 1969). Die Gattung Yersinia wurde häufig beim Biber nachgewiesen und
besitzt ein großes Wirtsspektrum. Im Allgemeinen sind drei Spezies von besonderer
Bedeutung, Yersinia pseudotuberkulosis, Yersinia enterocolitica und Yersinia pestis.
Die Infektion kann über kontaminiertes Futter bzw. Wasser, aber auch durch direkten
Kontakt erfolgen (SELBITZ 2007). Die Yersiniose, verursacht durch Yersinia
pseudotuberkulosis, gilt als bedeutende Erkrankung aller Nagetiere mit großer
Verbreitung (RUEMPLER 1995). Der Erreger kann akute septikämische
Krankheitsverläufe induzieren, chronisch verlaufend entwickeln sich Nekroseherde in
verschiedenen Organen und den Darmlymphknoten (ROLLE u. MAYR 2007). Neben
Yersinia pseudotuberkulosis wird auch Leptospira in einer Untersuchung als Erreger
infektiöser Todesursachen beim Biber benannt (NOLET et al. 1997), allerdings ist
seine Bedeutung bei den untersuchten Zootieren gering und wurde in weniger als 2%
der Fälle nachgewiesen.
Der zweithäufigst diagnostizierte bakterielle Erreger dieser Arbeit ist Streptokokkus.
LAWSON et al. (2005) beschreiben ebenfalls die Isolation von Streptokokkus spp.
bei Bibern und definieren Streptokokkus castoreus sp. nov. als neue
Streptokokkenspezies dieser Tierart. Die Besiedlung verschiedener Organsysteme
und die damit verbundene klinische Symptomatik von Streptokokkeninfektionen
77
variiert bei jeder Spezies, wobei die Manifestation einer Erkrankung von
begünstigenden Faktoren abhängt (SELBITZ 2007).
Aeromonaden, die in weniger als 5 % der untersuchten Fälle diagnostiziert wurden,
induzieren bekanntermaßen Erkrankungen bei Bibern. Infektionen mit Aeromonas
hydrophila beim Biber verlaufen meist perakut und oft letal (RUEMPLER 1995). Die
Bakterien siedeln sich häufig im Süßwasser an (SELBITZ 2007), so dass Biber
aufgrund ihrer Haltung mit Wasseranteil besonders exponiert sind. Eine mögliche
gute Wasserqualität unter Zoobedingungen erklärt die wenigen Krankheitsfälle im
Rahmen dieser Untersuchung.
Biber – Parasiten
Von 181 parasitologischen Untersuchungen zeigten weniger als 4,0 % der Biber ein
positives Ergebnis, so dass bei diesen Tieren in Zoos Parasitosen wahrscheinlich
weniger bedeutsam für die tiermedizinischen Überwachungsmaßnahmen sind.
Der am häufigsten nachgewiesene Parasit der Biber mit 3,9 % zählt zu der Familie
der Strongyloidea. Infektionen mit Strongyloidea sind ebenfalls in der Literatur
beschrieben. Als typischer Vertreter wird Castorstrongylus castoris genannt (CHAPIN
1925, THRELFALL 1969, ROMASOV 1976). Da die adulten Stadien sich im Kolon
ansiedeln (MÜLLER - SCHWARZE u. SUN 2003), können die Parasiten zu
Schleimhautläsionen und Enteritiden führen und sind somit von klinischer
Bedeutung.
Kokzidia sind mit 2,8 % die zweithäufigst nachgewiesenen Parasiten beim Biber
dieser Untersuchung. Infektionen mit diesen einzelligen Darmparasiten werden in
anderen Studien sogar zu höheren Prozentsätzen nachgewiesen (KORNER 1978,
FAYER et al. 2006, JORDAN et al. 2005, DROZDZ et al. 2004). Da die Kokzidiose
bei Nagetieren zu Diarrhöen oder Hepatopathien führen kann (GÖBEL u.
KRAWINKEL 2006), ist die Bekämpfung dieser Parasitose bei Bibern unbedingt
erforderlich.
78
Während Trichostrongyloidea in dieser Arbeit in weniger als 1 % der
Untersuchungsfälle nachgewiesen wurden, wird Travassosius als Bestandteil dieser
Ordnung häufig in der Literatur als Parasit des Bibers benannt (CHAPIN 1925,
ROMASHOV 1976, SOLOV`EV et al. 1983, MAZEIKA et al. 2003). Von anderen
Trichostrongylusinfektionen sind Einzelfälle beschrieben (DROZDZ et al. 2004,
JOSZT 1964). Auch wenn Infektionen in dieser Studie selten nachgewiesen wurden,
sollte die Anfälligkeit des Bibers und der klinische Infektionsverlauf (Induktion von
katarrahlischen Enteritiden, ECKERT 2000) bedacht und dieser Parasit mit in den
Überwachungsplan einbezogen werden.
In dieser Untersuchung wurden Trematoda selten beim Biber festgestellt, in der
Literatur hingegen werden sie als typische parasitäre Erreger dieser Tierart
betrachtet. Besonders häufig wird Stichorchis subtriquestrus beim Biber genannt
(VENGUST et al. 2009, MAZEIKA et al. 2003, KOUBKOVA et al. 2002, JOSZT 1964,
ROMASHOV 1976, SOLOV`EV et al. 1983, DROZDZ et al. 2004). Ein anderer beim
Biber nachgewiesener Trematode ist Fasciola hepatica (SHIMALOV u. SHIMALOV
2000). Infektionen mit Fasciola können bei Nagetieren Hepatitiden und Cholangitiden
mit schweren klinischen Symptomen hervorrufen (ECKERT 2000). Die Futterhygiene
in zoologischen Einrichtungen, die die Aufnahme von Pflanzen mit anhaftenden
infektiösen Metazerkarien bzw. anhaftenden Zwischenwirten verhindert, kann das
geringe Auftreten von Trematodeninfektionen in zoologischen Einrichtungen
erklären.
Auch bei Cestodainfektionen kann die geringere Aufnahmemöglichkeit von
Zwischenwirten in Zoologischen Gärten bedingen, dass in dieser Untersuchung
keine Bandwurminfektion dokumentiert ist, während in der Literatur Infektionen mit
Cestoda beschrieben sind (JOSZT 1964, DROZDZ et al. 2004, JANOVSKY et al.
2002).
79
Biber – Viren
Es ist zu beachten, dass für nur 13 Tiere Untersuchungsergebnisse bezüglich der
Virusnachweise vorliegen, so dass Prozentanteile einzelner viraler Erreger nicht
repräsentativ für das Vorkommen dieser Viren bei Bibern in Zoologischen Gärten zu
interpretieren sind.
Als einzige der untersuchten Tierarten sind beim Biber Orthopoxviren festgestellt
worden, die mit 76,9 % den größten Anteil der viralen Erreger bei dieser Tierart
ausmachen. Die in dieser Arbeit beschriebenen Fälle von Orthopoxviren beim Biber
sind 1999 veröffentlicht (HENTSCHKE et al. 1999). Allerdings existieren keine
weiteren Dokumentationen von Orthopoxvirusinfektionen, so dass es sich nicht um
eine zwingend zu kontrollierende Infektionserkrankung bei dieser Tierart handelt.
Weitere Viren wurden bei den untersuchten Tieren in eher seltenen Fällen
nachgewiesen. Zudem liegen kaum dokumentierte Virusinfektionen des Bibers in den
Literaturangaben vor, so dass folglich virale Infektionserkrankungen wenig
bedeutsam für die Gesundheitsprophylaxe dieser Tierart sind.
5.1.2 Diskussion Wolf
Wolf - Bakterien Obwohl die Bakteriengruppe der Enterobacteriaceae in der Literatur beim Wolf keine
besondere Erwähnung findet, ist E. coli einer Untersuchung des IZW Berlin zufolge
das häufigste Bakterium bei Zookarnivoren (SPECK et al. 2007). Enterobacteriaceae
wurden im Rahmen dieser Arbeit in fast der Hälfte der Untersuchungen beim Wolf
positiv nachgewiesen. Infektionen mit E. coli können bei Welpen Septikämien oder
bei Adulten schwerwiegende Infektionen der harnableitenden Wege, der laktierenden
Mamma oder des Uterus induzieren (SUTER 2001).
80
Nach den Enterobacteriaceae wurden Streptokokken und Staphylokokken mit 13,7 %
bzw. 9,6 % relativ häufig nachgewiesen. Aufgrund ihrer Ansiedlung in Haut und
Schleimhaut können unterschiedliche Organsysteme von zum Teil eitrigen
Infektionen betroffen sein, allerdings ist die Manifestation einer Erkrankung häufig
von begünstigenden Faktoren abhängig (SELBITZ 2007). Staphylokokken sind als
fakultativ pathogene Keime anzusehen (SELBITZ 2007). In der Literatur existieren
keine Hinweise auf schwere Krankheitsverläufe durch Streptokokken - oder
Staphylokokkeninfektionen beim Wolf, sie sollten aber aufgrund der Ergebnisse
dieser Arbeit als häufige ursächliche Erreger bakterieller Infektionen beim Wolf in
Betracht gezogen werden.
Verschiedene Gattungen der Clostridien sind in der vorliegenden Arbeit in 6,8 % der
Untersuchungsfälle zu verzeichnen. Eine besondere Empfänglichkeit für
Clostridieninfektionen beim Wolf ist in der Literatur nicht dokumentiert, so dass die in
dieser Arbeit nachgewiesenen Infektionen mit der potentiellen Sporenbildung
abhängig von der Bodenbeschaffenheit (SELBITZ 2007) der zoologischen
Einrichtungen korrelieren können.
Wolf – Parasiten Den größten Anteil der Parasiten beim Wolf bilden mit knapp 20,0 % die
Askaridoidea. Auch in der Literatur werden vielfach Infektionen mit Vertretern dieser
Parasitengruppe, vor allem mit Toxaskaris und Toxokara beschrieben (SAMUEL et
al. 1978, CRAIG u. CRAIG 2005, BYMAN et al. 1977, POPIOEK et al. 2007, MOKS
et al. 2006). Vertreter der Askaridoidea sind Askaris, Baylisaskaris, Toxaskaris,
Toxokara, Anisakis und Contracaecum. Die Ansiedlung der Parasiten im Dünndarm
kann zu Enteritiden führen, im Falle einer Immunsuppression oder nicht
ausreichenden Immunkompetenz können Organschädigungen durch Wanderlarven
auftreten (ECKERT 2000).
81
Infektionen mit Capillaria sp. sind in über 10 % der Fälle beim Wolf dokumentiert und
stellen somit einen relativ häufig vorkommenden Parasiten dieser Tierart dar, obwohl
in der vorgestellten Literatur nur ein Fall erwähnt ist (BYMAN et al. 1977). Diese
Diskrepanz kann sich durch die Tatsache erklären, dass den Literaturangaben meist
Freilanduntersuchungen zugrunde lagen. Die Parasiten besiedeln bei Karnivoren den
Gastrointestinal - und Respirationstrakt, die Leber und die Harnblase, wobei schwere
Krankheitssymptome, abhängig vom befallenden Organsystem, wie Vomitus,
Polydipsie, Polyurie und Ikterus auftreten können (ECKERT 2000).
Obwohl in der vorliegenden Arbeit das Vorkommen von Vertretern der
Ankylostomatidae bei unter 2 % liegt, existieren viele Dokumentationen dieser
Parasiten in der Literatur (CRAIG u. CRAIG 2005, SAMUEL et al. 1978, BAGRADE
et al. 2009, POPIOEK et al. 2007, BYMAN et al. 1977, MOKS et al. 2006). Die
Vertreter der Ankylostomatidae dieser Arbeit sind Ankylostoma und Unkinaria. Die
Schädigung von Haut, Lunge und Darm bei Unkinariainfektionen kann verschiedene
Krankheitsbilder bei Karnivoren hervorrufen (ECKERT 2000). Aufgrund der in
zoologischen Einrichtungen durchgeführten parasitologischen Behandlungen lässt
sich das geringe Vorkommen in den untersuchten Zoos erklären. Aufgrund der in der
Literatur dargestellten Anfälligkeit des Wolfes gegenüber diesen Parasiten und der
klinischen Symptomatik sollte eine Überwachung von Ankylostomatidae regelmäßig
erfolgen.
Während in den untersuchten Einrichtungen kein Trichinellanachweis beim Wolf
dokumentiert ist, sind in der Literatur zahlreiche Nachweise von Trichinellainfektionen
beim Wolf beschrieben (BECK et al. 2009, ZARNKE et al. 1999, SMITH u.
SNOWDON 1988, CASULLI et al. 2001, BAGRADE et al. 2009, MOKS et al. 2006).
Die Infektionen verlaufen in der Regel latent (ECKERT 2000) und erfolgen über
infiziertes Muskelfleisch. Die Futterhygiene (keine Verfütterung von rohem
Schweinefleisch) in zoologischen Einrichtungen erklärt möglicherweise die fehlenden
Nachweise im Gegensatz zu untersuchten Tieren im Freiland, so dass
82
Trichinellainfektionen bei in zoologischen Einrichtungen gehaltenen Wölfen nicht
bedeutsam sind.
Cestoda sind mit weniger als 2 % in der vorliegenden Arbeit relativ selten bei den
Wölfen der verschiedenen zoologischen Einrichtungen dokumentiert. In den
Literaturstellen wird dagegen häufig von Bandwurminfektionen bei Wölfen berichtet
(BYMAN et al. 1977, SAMUEL et al. 1978, MC NEILL u. RAU 1984, MOKS et al.
2006, BAGRADE et al. 2009, POPIOEK et al. 2007). Mögliche Ursache für das
geringe Auftreten von Cestoden in zoologischen Gärten ist das Fehlen von
Zwischenwirten, die für den Entwicklungszyklus der Parasiten nötig sind. Gleiches
gilt für die Trematoda. Während im Rahmen dieser Untersuchung kein einziger
Vertreter der Trematoda dokumentiert ist, wird ihr Vorkommen in der Literatur relativ
häufig beschrieben (CRAIG u. CRAIG 2005, SAMUEL et al. 1978, BYMAN et al.
1977, MC NEILL u. RAU 1984, MOKS et al. 2006, BAGRADE et al. 2009). Trotz der
seltenen Nachweise sollte aufgrund der klinischen Bedeutung und des möglichen
zoonotischen Potentials vor allem das Vorliegen von Bandwurminfektionen,
insbesondere bei naturnah gestalteten Anlagen, regelmäßig kontrolliert werden.
Der Wolf stellt in dieser Arbeit die Tierart dar, die am häufigsten mit Kokzidia infiziert
ist. Kokzidieninfektionen beim Wolf sind auch in der Literatur, in einem Fall mit
letalem Krankheitsverlauf bei einem Jungtier, beschrieben (MECH u. KURTZ 1999,
BYMAN et al. 1977) und zählen zu den zu überwachenden Parasiteninfektionen
dieser Tierart.
Wolf - Viren Bei allen untersuchten Wölfen wurden lediglich zwei Virenarten festgestellt. Von 27
beprobten Tieren zeigten mehr als die Hälfte Antikörpertiter gegen Parvovirus. Bei
einer kleineren Fallzahl von 17 wurde bei 5,9 % der Wölfe eine Staupevirusinfektion
diagnostiziert. Den Untersuchungsunterlagen zufolge handelt es sich nicht um
impfbedingte, sondern um durch Feldinfektionen induzierte Antikörpertiter. In den
vorgestellten Literaturquellen existieren ebenfalls zahlreiche Antikörpernachweise
83
gegen Parvo - und das Staupevirus. Diese sind auch auf Feldinfektionen, hier bei im
Freiland lebenden Tieren, zurückzuführen (MECH et al. 1986, ZARNKE u. BALLARD
1987, ZARNKE et al. 2004, SANTOS et al. 2009, STEPHENSON et al. 1982,
MARTINELLO et al. 1997, GOYAL et al. 1986). Die Parvovirose führt bei Kaniden zu
Depression, Anorexie, Vomitus und unstillbaren Diarrhöen. Typische klinische
Symptome der akuten Staupevirusinfektion sind katarrhalische Entzündungen der
Schleimhäute, biphasisches Fieber und Leukopenie (MAYR u. KAADEN 2007). Da
Parvo - und Staupevirusinfektionen mit einer schweren klinischen Symptomatik und
hohen Mortalitätsrate bei Wölfen einhergehen können (BRAHM 1995), sollten beide
Erreger in die tiermedizinischen Prophylaxeprogramme integriert sein.
Während in der vorliegenden Untersuchung bei den in menschlicher Obhut
gehaltenen Wölfen kein Fall von Tollwut zu verzeichnen ist, demonstriert die Literatur
die Anfälligkeit von freilebenden Wölfen gegenüber dem Tollwutvirus (BALLARD u.
KRAUSMANN 1997, WHO Collaborating Centre for Rabies Surveillance and
Research 2001 u. 2002, THEBERGE et al. 1994, WANDELER u. CASEY 1993,
LOEWEN et al.1991, ZARNKE u. BALLARD 1987, MULLER et al. 1997, 1998, 1999
u. 2000, GREGORY 1986). Die Wahrscheinlichkeit einer Infektion von in
Zoologischen Gärten gehaltenen Wölfen ist abhängig von der Kontaktmöglichkeit zu
Virusträgern (Füchse in Tollwutgebieten, Musteliden, Nager).
5.1.3 Diskussion Braunbär
Braunbär - Bakterien Von den 31 dokumentierten bakteriologischen Untersuchungen beim Braunbären
erfolgte in über der Hälfte mit 58,1 % ein positiver Nachweis der Enterobacteriaceae.
Vor allem als Sekundärerreger können Vertreter dieser Bakteriengruppe
verschiedene Krankheitsbilder bedingen, wobei beschrieben ist, dass beispielsweise
E. coli als häufiges Bakterium der Zookarnivoren (SPECK et al. 2007) über eine
Sepsis zu perinatalen und Jungtierverlusten (KUNTZE 1995) bei Bären führen kann.
84
Clostridien waren mit 16,1 % der zweithäufigste bakterielle Erreger der Braunbären.
Die Clostridium perfringens - Infektion verläuft bei Bären mit schweren klinischen
Symptomen septikämisch oder als Enterotoxämie ohne vorherige
Krankheitssymptome (KUNTZE 1995). Wie bereits in dieser Arbeit dargestellt, sind
das Infektionsrisiko und somit gesundheitsprophylaktische Maßnahmen abhängig
von der Umgebungsbelastung und potentieller Sporenbildung in der Aussenwelt
(SELBITZ 2007).
Streptokokken und Staphylokokken waren zu jeweils 9,7 % nachweisbar. Allerdings
gelten sie nicht als primär pathogen, sondern werden bei Bären als Auslöser für
Sekundärinfektionen beschrieben (KUNTZE 1995).
Die Gattung Salmonella wurde zu 6,1 % in 49 Proben gefunden. Salmonellosen
werden als jederzeit mögliche Infektionen von Bären angesehen, die durch
regelmäßige bakteriologische Kotuntersuchung kontrolliert werden sollten (KUNTZE
1995).
Die früher relativ häufig aufgetretende Tuberkulose wird in jüngster Zeit selten
festgestellt (KUNTZE1995), und es konnte auch in allen Untersuchungen der
vorliegenden Studie in keinem Fall ein Mykobakterium nachgewiesen werden.
Allerdings bleibt zu beachten, dass der Bär als mögliches Reservoir und potenzieller
Vektor für Mykobakterium avium subsp. paratuberkulosis in Erwägung gezogen
werden muss (KOPECNA et al. 2006).
Während freilebende Braunbären hohe Antikörpertiter gegen Brucella spp. aufweisen
(KUNTZE 1995, NEILAND 1975, ZARNKE et al. 2006), zeigte die vorliegende
Untersuchung keinen einzigen Brucellanachweis beim Braunbären. Eine
Untersuchung auf Brucellainfektionen bei Bären, die aus Zoologischen Gärten
stämmen, ist folglich nicht zwingend erforderlich.
85
Braunbär – Parasiten Den größten Anteil parasitärer Erreger beim Braunbären bilden die Askaridoidea mit
19,1 % von 433 Untersuchungsfällen. Es ist bekannt, dass bei fast allen Ursiden und
auch beim Braunbären massive Spulwurminfektionen zu verzeichnen sind (KUNTZE
1995, RUKHLYADEV u. RUKHLYADEVA 1953, BRGLEZ u. VALENTINCIC 1968,
CHOQUETE et al. 1969). Untersuchungen bei in zoologischen Einrichtungen
gehaltenen Bären dokumentieren eine hohe Belastung durch Askaridoidea (ABDEL -
RASOUL u. FOWLER 1980), wobei Infektionen mit Toxaskaris leonina und
Baylisaskaris transfuga besonders häufig sind. Neben zum Teil schweren Enteritiden
können Organschädigungen durch wandernde Larven entstehen (ECKERT 2000).
Hakenwürmer wie Ankylostoma und Unkinaria werden häufig bei Bären
nachgewiesen (KUNTZE 1995, RUKHLYADEV u. RUKHLYADEVA 1953, OLSEN
1968, RAUSCH et al. 1979, ASAKAWA et al. 2006) und stellen mit weniger als 2 %
den dritthäufigsten Parasiten bei Braunbären dieser Arbeit dar.
Hakenwurminfektionen können analog zum Wolf Haut, Lunge und Darm schädigen
und somit die Entstehung verschiedener Krankheitserscheinungen an den einzelnen
Organsystemen induzieren (ECKERT 2000). Klinische Symptome wie
Gewichtsabnahme, Absatz von blutigen Fäzes und schwere hämorrhagische
Enteritiden treten vor allem bei Jungtieren auf (KUNTZE 1995).
Braunbär – Viren Für den Braunbären ist im untersuchten Zeitraum bei keinem Individuum ein Fall
einer Virusinfektion dokumentiert.
In der Literatur dagegen werden verschiedene virale Infektionserkrankungen der
Braunbären vorgestellt. Hierzu zählen die durch das Herpesvirus suis induzierte
Aujeszky Disease (KUNTZE 1995, ZANIN et al. 1997), Infektionen mit Distemper -
und Staupeviren (MARSILIO et al. 1997, MADIC et al. 1993, PHILIPPA et al. 2004)
sowie Infektionen mit dem Tollwutvirus (MUTINELLI et al. 2001).
86
5.1.4 Diskussion Eisbär
Eisbär – Bakterien Mit 70,0 % von 110 Untersuchungsfällen machen bei den Eisbären die
Enterobacteriaceae die größte Gruppe bakterieller Erreger aus. Infektionen mit E.
coli und Klebsiellen werden in der Literatur beschrieben (ELZE et al. 1986). Wie
bereits beim Braunbären dargestellt, kann besonders E. coli zu Enteritiden oder als
Sekundärerreger bei Jungtieren zu Septitiden führen (KUNTZE 1995).
Clostridien wurden mit 30,6 % in 111 Untersuchungsfällen ebenfalls häufig
nachgewiesen. Clostridium perfringens - Infektionen wurden auch bei frei lebenden
Eisbären festgestellt und können bei Bären, wie beim Braunbären beschrieben,
septikämisch oder als Enterotoxämie verlaufen (KUNTZE 1995). Allerdings wird
vermutet, dass Clostridium perfringens Typ A als normaler Darmbewohner von
Polarbären anzusehen ist (JORES et al. 2008).
Streptokokken mit 25,9 % von 108 Fällen und Staphylokokken (10,2 %) waren relativ
häufig im Rahmen dieser Untersuchung beim Eisbären nachweisbar und werden
auch in der Literatur als Krankheitserreger dieser Tierart beschrieben. Allerdings sind
Streptokokken und Staphylokokken hierbei in erster Linie als Sekundärerreger
primärer Grunderkrankungen der Eisbären anzusehen (KUNTZE 1995).
Analog zu Braunbären erfolgte die Diagnose von Brucella beim Eisbären bei frei
lebenden Tieren (TRYLAND et al. 2001), in der vorliegenden Arbeit gelang jedoch
kein einziger Nachweis einer Infektion mit Brucella spp. bei dieser Tierart, so dass
eine gezielte Untersuchung auf dieses Bakterium bei Eisbären in menschlicher
Obhut nicht erforderlich erscheint.
Auch eine Leptospira - Infektion beim Eisbären wurde im Untersuchungsgut dieser
Studie nicht dokumentiert, obwohl Erkrankungen mit zum Teil tödlichen Verlauf bei
juvenilen Eisbären beschrieben sind (KUNTZE 1995, KOHM 1988). Wildnager wie
87
Mäuse und Wanderratten werden als Überträger angesehen, wahrscheinlich nimmt
die Möglichkeit einer Leptospirainfektion mit der Höhe des Rattenvorkommens zu
(STRAUBE 2007), so dass abhängig von der Schadnagerbelastung in zoologischen
Gärten Leptospiren in das Prophylaxeprogramm einbezogen werden sollten.
Eisbär – Parasiten Askaridoidea sind die im Rahmen dieser Untersuchung häufigsten parasitären
Erreger der Eisbären und waren zu 34,3 % von 559 Untersuchungsfällen
nachweisbar. Massive Askaridosen sind beim Eisbären häufig beschrieben (KUNTZE
1995) und bei Polarbären von besonderer Bedeutung (ABDEL - RASOUL u.
FOWLER 1980), wobei vor allem Toxaskaris leonina und Baylisaskaris transfuga
diagnostiziert wurden. Wie beim Braunbären oder Wolf können Enteritiden oder
Organschädigungen durch Wanderlarven entstehen (ECKERT 2000).
Obwohl Hakenwürmer laut Literaturangaben häufig beim Eisbären nachgewiesen
werden (KUNTZE 1995), sind sie in der vorliegenden Arbeit nur zu einem kleinen
Prozentsatz dokumentiert.
In der Literatur ist beschrieben, dass Trichinella spiralis häufig in der Muskulatur
beim Eisbären diagnostiziert wird und zu schweren klinischen Symptomen wie
Bewegungsunfähigkeit, bedingt durch Larven in der Muskulatur, führen kann
(KUNTZE 1995). In der vorliegenden Untersuchung liegt dagegen nur eine sehr
kleine Infektionsrate vor. Die bereits beim Wolf dargestellte verbesserte
Futterhygiene könnte erklären, dass Trichineninfektionen in den untersuchten
deutschen Zoos weniger von Bedeutung sind.
88
Eisbär - Viren Im vorliegenden Untersuchungsgut existiert kein positiver Virusnachweis. Aufgrund
der geringen Fallzahl virologischer Untersuchungen sind die dargestellten
Ergebnisse nicht sehr aussagekräftig.
In der Literatur liegen Berichte über Antikörpertiter gegen Morbillivirusinfektionen bei
frei lebenden Eisbären vor (SCHONBAUER et al. 1984, FOLLMANN et al. 1996,
PHILIPPA et al. 2004, TRYLAND et al. 2005), wobei sowohl gegen Canine
Distempervirus (CDV), als auch gegen das Phocine Distempervirus (PDV) gerichtete
Antikörper nachgewiesen werden konnten (CATTET et al. 2004). GARNER et al
zeigten im Jahr 2000, dass die Antiköperspiegel gegen CDV höher liegen als gegen
andere Morbillviren, so dass das Morbillivirus der Polarbären wahrscheinlich einen
terrestrischen Ursprung besitzt.
Weitere In der Literatur beschriebene Virusinfektionen, die bei Eisbären in seltenen
Fällen beschrieben sind, sind Infektionen mit dem Tollwutvirus (LOEWEN et al. 1990,
LOEWEN et al. 1991), mit dem Equinen Herpesvirus 9 (SCHRENZEL et al. 2008)
sowie die durch das Herpesvirus suis bedingte Aujeszky - Krankheit (KUNTZE 1995,
BANKS et al. 1999).
Da in zoologischen Gärten kein Schweinefleisch, welches als mögliche
Infektionsquelle für Herpesvirus suis anzusehen ist, verfüttert wird, ist das Auftreten
der Aujeszky - Krankheit bei Zooeisbären unwahrscheinlich. Aufgrund der wenigen
Tierkontakte in zoologischen Einrichtungen lässt sich das Ausbleiben von Staupe -
oder Tollwuterkrankungen bei nicht frei lebenden Eisbären erklären. Eine
Untersuchung auf diese Viruserkrankungen sowie eine Prophylaxe ist somit
abhängig von möglichen Übertragungswegen.
89
5.1.5 Diskussion Luchs
Luchs - Bakterien Den größten Anteil der bakteriellen Erreger beim Luchs bilden mit 47 % die
Enterobacteriaceae. Infektionen mit Vertretern dieser Bakteriengruppe sind allerdings
nur in Einzelfällen (BEHLERT 1995, WILD et al. 2006) beschrieben.
Enterobacteriaceae gehören größtenteils zur physiologischen Darmflora von Feliden,
können aber abhängig von der Lokalisation ihrer Ansiedlung (z. B. in den Harnwegen
oder Haut) als sekundäre Krankheitserreger in Erscheinung treten (WEBER 2003).
Die zweithäufigste Bakteriengruppe stellen die Streptokokken mit 20,5 % dar. Im
Gegensatz zur Häufigkeit dieser Bakterien im vorliegenden Untersuchungsgut sind in
der aufgeführten Literatur keine Infektionsfälle beim Luchs beschrieben. Allerdings ist
zu beachten, dass Streptokokkeninfektionen bei Feliden zu eitrigen Entzündungen
verschiedener Schleimhäute führen können, wobei insbesondere bei Jungtieren auch
letale Krankheitsverläufe zu verzeichenen sind (WEBER 2003).
Sonstige Bakterien, die eine Infektion bei den untersuchten Luchsen ohne
Erregerbestimmung induziert haben, treten zu 12,5 % auf. Alle übrigen
nachgewiesenen Bakterien sind in weniger als 10 % der Fälle dokumentiert. Den
größten Anteil hiervon macht die Gattung Salmonella mit 7,2 % aus. Der häufigste
Salmonellatyp bei Feliden ist Salmonella typhimurium (BEHLERT 1995). MACRI et
al. (1997) berichten von einer Sepsis durch Salmonella arizonae beim Kanadischen
Luchs. Die meisten Salmonellainfektionen der Feliden verlaufen jedoch klinisch
unauffällig (WEBER 2003), allerdings besteht bei latent infizierten Tieren eine
Infektionsgefahr bei Vergesellschaftungen mit anderen Tieren.
Luchs – Parasiten Mit über 30 % bilden die Askaridoidea den größten Anteil der parasitologischen
Erreger beim Luchs, die laut Literaturangaben zu den bedeutendsten Parasiten der
Feliden gehören (BEHLERT 1995, VALDMANN et al. 2006). Es sind Infektionen
90
beim Luchs mit Toxokara cati, Toxaskaris leonina und Toxokara mystax beschrieben
(FAGASINSKI 1961, THRELFALL 1969, TANG et al. 1988, BAGRADE et al. 2003).
Während Toxokara mystax als häufigster Wurmparasit bei Feliden angesehen wird,
sind Großkatzen in zoologischen Gärten meist mit Toxaskaris leonina infiziert
(GÖBEL u. HASSLINGER 2003). Mit Ausnahme des Spontanabgangs oder des
Erbrechens von Würmern im Fall einer Toxokara mystax - Infektion sind zu Beginn
der Erkrankung meist nur bei Jungtieren klinische Symptome wie Gastroenteritiden,
Diarrhöen, Gewichtsverlust, Anämie und zum Teil zentralnervöse Störungen
feststellbar (BEHLERT 1995).
Ankylostomatoidea sind laut Literatur eine weitere bedeutende Parasitengruppe der
Feliden (BEHLERT 1995). Sie sind allerdings in der vorliegenden Untersuchung in
weniger als 5 % der Fälle nachgewiesen worden, so dass wahrscheinlich die
Spulwürmer bei Zooluchsen häufiger zu parasitären Infektionen führen. Im
Gegensatz zu den Askaridoidea, bei denen kurzfristig meist keine klinischen
Symptome auftreten, können Ankylostomainfektionen zu blutigen Diarrhöen und
Anämien führen (GÖBEL u. HASSLINGER 2003).
Während in dieser Arbeit keine Cestoda - und Trematodainfektionen beim Luchs
dokumentiert sind, sind Infektionen mit verschiedenen Bandwürmern
(Diphyllobothrium latum, Spirometra janickii und Taeniidae spp.) und Alaria alata bei
frei lebenden Luchsen bekannt (VALDMANN et al. 2006, SZCZESNA et al. 2008).
Wie bereits beim Wolf beschrieben, kann das Fehlen solcher Infektionen unter
Zoobedingungen in der Eindämmung der Aufnahme von für den Entwicklungszyklus
notwendigen Zwischenwirten begründet sein.
Luchs – Viren Bei der Angabe von Parvovirusnachweisen erfolgte keine weitere Benennung
beziehungsweise Spezifizierung des Virusisolats, so dass in die Gruppe auch
Panleukopenieviren fallen können. Der Nachweis von allgemein nachgewiesenem
Parvovirus beim Luchs liegt bei 37,5 %. Zusätzlich wurden in weiteren
91
Untersuchungsfällen zu 33,3 % Panleukopenievirus diagnostiziert, so dass in über
70 % aller Fälle Parvovirus bei den Luchsen nachweisbar war.
Die Empfänglichkeit von Luchsen gegenüber einer Parvovirusinfektion ist in
verschiedenen Literaturstellen beschrieben (BIEK et al. 2002, WASIERI et al. 2009).
Es handelt sich hierbei um Serokonversionen nach Feldinfektionen freilebender
Tiere. Die Übertragung kann direkt über alle Sekrete und Exkrete oder indirekt über
kontagiöse Gegenstäne erfolgen. Leukopenie und schwere Enteritiden sind die
Folge. Als Reservoir gelten Dauerausscheider oder klinisch inapperent infizierte
Tiere (MAYR u. KAADEN 2007).
Fast ein Drittel (28,6 %) der Luchse wurde positiv für das Virus der Felinen
Infektiösen Peritonitis getestet, deren Erreger ein Coronavirus ist (BEHLERT 1995).
Positive Nachweise von Coronaviren bei Luchsen gelangen auch BIEK et al. 2002 in
Nordamerika. Die klinische Symptomatik manifestiert sich in unterschiedlichen
Verlaufsformen mit Apathie, Schwellung des Abdomens und
Hypergammaglobulinämie, Meningoenzephalitis oder Augenläsionen. Obwohl nur ein
geringer Prozentsatz der infizierten Tiere erkrankt, sterben die meisten Feliden
wenige Wochen nach Krankheitsbeginn (MAYR u. KAADEN 2007).
Felines Leukosevirus trat relativ selten in 5,9 % der Fälle auf. Diese
Virusinfektionskrankheit wird zwar bei Zoofeliden beschrieben (BEHLERT 1995), es
sind aber keine Fälle in der aufgeführten Literatur beim Luchs dokumentiert.
Obgleich bei Hauskatzen nur ca. 10 % der Tiere Leukämien oder assoziierte
Erkarnkungen aufweisen, zeigen klinisch erkrankte Tiere eine hohe Mortalität (MAYR
u. KAADEN 2007).
Obwohl in dieser Arbeit kein positiver Nachweis dokumentiert ist, sind Infektionen mit
dem Staupevirus beim Luchs beschrieben (DAOUST et al. 2009, BIEK et al. 2002).
Bei frei lebenden ungeimpften Kanadischen Luchsen, die klinische Symptome in
Form von Enzephalitiden zeigten, wurde mittels PCR Canines Distemper Virus
92
nachgewiesen. Bei anderen frei lebenden Kanadischen Luchsen wurden Antikörper
gegen das CDV nach Feldinfektion festgestellt. Neben dem CDV gelang bei frei
lebenden Tieren Kanadas auch der Nachweis des Phocid Distemper Virus
(PHILIPPA et al. 2004).
5.1.6 Diskussion Robben
Robben - Bakterien Bakterielle Infektionen werden nach Organbesiedlung und Sepsis als eine der
häufigsten Todesursachen von Robben in Zoologischen Gärten angesehen
(NEUROHR 1995).
Die beiden dominierenden bakteriellen Erreger dieser Untersuchung bei den
Robbenartigen sind Enterobacteriaceae (48,0 % von 346 Fällen) und Streptokokken
(27,8 % von 335 Fällen).
Verschiedene in der Literatur beschriebene Untersuchungen bestätigen das häufige
Auftreten von Enterobacteriaceae bei Robben (LOCKWOOD et al. 2006,
THORNTON et al. 1998, SIEBERT et al. 2007), wobei ihnen eine klinische
Bedeutung zugesprochen wird. So konnte E. coli eine Beteiligung an entzündlichen
Läsionen und Dermatitiden, an Bronchopneumonien, Gastroenteritiden und
Septikämien nachgewiesen werden.
Hervorzuheben ist, dass die nachgewiesenen Streptokokkeninfektionen im Rahmen
dieser Untersuchung bezogen auf alle beteiligten Tierarten den größten Anteil bei
den Robben aufweisen. Auch in der Literatur sind zahlreiche
Streptokokkennachweise dokumentiert (LOCKWOOD et al. 2006, THORNTON et al.
1998, SIEBERT et al. 2007, BAKER 1992). Die verschiedenen Spezies führten in
diesen Studien zu entzündlichen Läsionen, Dermatitiden, Bronchopneumonien,
Gastroenteritiden und Septikämien. Außerdem konnte gezeigt werden, dass zu den
begleitenden pathogenen bakteriellen Erregern im Zusammenhang mit
93
Staupeausbrüchen verschiedene Streptokokkenspezies, darunter Streptokokkus equi
subsp. zooepidemikus, zählen (BAKER 1992, AKINEDEN et al. 2005).
Die zum Tuberkulosekomplex zählenden Mykobakterien werden in der jüngsten Zeit
bei Vertretern der Robben häufig diskutiert, treten aber in der vorliegenden
Untersuchung zu nur 1,2 % in Erscheinung. COUSINS et al. (2003) verglichen
Isolate des Mykobakterium tuberkulosis - Komplexes bei Robben und benannten den
neuen Stamm der Pinnipeden Mykobakterium pinnipedii sp. nov. JURCZYNSKI et al.
beschreiben 2007 das Vorkommen von Mykobakterium pinnipedii in
Südamerikanischen Seelöwen. Eine Übertragung von Mykobakterium pinnipedii von
in den Niederlanden infizierten Seelöwen auf den Menschen wurde von KIERS et al.
2008 nachgewiesen.
Robben – Parasiten Weniger als 5,0 % der beprobten Robben zeigten ein positives parasitologisches
Untersuchungsergebnis. Den größten Anteil mit allerdings nur knapp 5,0 % machen
die nicht weiter differenzierten Nematoda aus. Der Anteil der Askaridoidea kann
somit größer sein als die dokumentierten 2,7 %. Untersuchungen an frei lebenden
Tieren, wie beispielsweise bei Seebären in Alaska zeigten dagegen eine deutlich
höhere Nematodenprävalenz von 88 % (SPRAKER et al. 2003).
In dieser Arbeit wurden Kokzidia in ca. 4,0 % der Untersuchungsfälle festgestellt und
machen somit einen relativ großen Anteil aus. In der Literatur ist beschrieben, dass
diese einzelligen Parasiten zu deutlich klinischen Symptomen bei Robbenartigen
führen können. VAN BOLHUIS et al. berichten 2007 von schweren Enterokolitiden
beim Seehund verursacht durch Eimeria phocae.
Während in dieser Untersuchung weitere Protozoa nicht weiter differenziert
dokumentiert sind, sind in der Literatur verschiedene Protozoeninfektionen aufgeführt
(DIXON et al. 2008, DUBEY et al. 2003, MILLER et al. 2001), unter denen der
Toxoplasmose eine besondere Bedeutung zukommt (NEUROHR 1995). Toxoplasma
94
gondii wurde bei verschiedenen Robben, unter anderem beim Seehund,
nachgewiesen und kann zu Vomitus, Diarrhöen, Dyspnoe und zentralnervösen
Störungen führen.
Obwohl in der vorliegenden Studie weniger als 5 % der Robben parasitologisch
positive Ergebnisse zeigten, sollte aufgrund der in der Literatur beschriebenen
klinischen Fälle eine parasitologische Überwachung in der Quarantäne erfolgen.
Robben - Viren
Die wie im Literaturteil dargestellt wohl bekannteste Virusinfektion bei Robben, die
auch im Rahmen der vorliegenden Untersuchung (11,8 % der Virusinfektionen bei
Robben) den größten Anteil bei dieser Tierart ausmacht, ist die Morbillivirusinfektion.
Die Schwere der klinischen Symptome variiert bei den einzelnen Robbenarten,
allerdings können symptomlose Tiere, wie am Beispiel der Kegelrobben beschrieben
(HAMMOND et al. 2005), eine Rolle bei der Virusverbreitung spielen. Folglich sollten
Robben auf das Vorhandensein von Staupevirusinfektionen im Rahmen der
Quarantäne kontrolliert werden.
Bei 6,3 % von 16 Robben dieser Untersuchung ist ein positiver Nachweis von
Parvovirus - Antikörpern dokumentiert, wobei ein durch dieses Virus induziertes
Krankheitsgeschehen in den vorliegenden Fällen nicht dokumentiert war. In der
aufgeführten Literatur werden Parvovirusinfektionen nicht als bedeutend für Robben
hervorgehoben.
Bei 8,3 % von 12 Tieren dieser Untersuchung wurde Calicivirus nachgewiesen.
Arttypischer Verteter der Caliciviren bei Robben ist das San Miguel Sea lion virus
(SMSV), von dem 13 verschiedene Serotypen existieren (GAGE et al. 1990).
Verschiedene Virusnachweise sind im Literaturteil dargestellt. Das SMSV führt bei
erkrankten Tieren hauptsächlich zu vesikulären Läsionen der Haut. Betroffen sind
hier unter anderem die Regionen im Bereich der Mundöffnung und die Flipper
95
(GAGE et al. 1990). Häufig heilen die Läsionen spontan wieder ab, bei Kalifornischen
Seelöwen sind Aborte beobachtet worden (NEUROHR 1995), so dass bei Abortfällen
SMSV als Ursache differntialdiagnostisch in Betracht gezogen werden muss.
Aufgrund der ansonsten geringen klnischen Symptome mit Spontanheilung ist eine
Untersuchung auf SMSV in der Quarantäne nicht zwingend erforderlich.
Pocken - und Herpesviren sind zwar in der Literatur beschrieben, scheinen jedoch
nach den vorliegenden Ergebnissen unter Gehegebedingungen keine Relevanz für
Quarantänemaßnahmen zu haben.
5.1.7 Diskussion Elch
Elch - Bakterien Über die Hälfte der 45 bakteriellen Untersuchungen zeigte für die Enterobacteriaceae
beim Elch (55,6 %) ein positives Ergebnis. Die Bedeutung und klinische Relevanz
von E. coli – Infektionen in Form von Diarrhöen und zum Teil septikämischen
Krankheitsgeschehen bei Jungtieren sind in der Literatur dargestellt (VON HEGEL
1995).
Obwohl zahlreiche Fälle von Salmonellosen bei Hirschen im Allgemeinen
beschrieben sind (VON HEGEL 1995), scheint das Bakterium sowohl bei frei
lebenden als auch bei in Zoo gehaltenen Elchen (ein positiver Nachweis gelang in
nur 0,7 % der Fälle) nicht zu den wichtigen darmpathogenen Erregern dieser Tierart
zu zählen.
Der beim Elch am zweithäufigsten nachgewiesene bakterielle Erreger dieser
Untersuchung ist Streptokokkus. Streptokokkeninfektionen sind allerdings in der
Literatur nicht als typische Erkrankungen dieser Tierart beschrieben und treten bei
Elchen wahrscheinlich abhängig vom betroffenen Organsystem als Sekundärerreger
in Erscheinung.
96
Ebenfalls häufig in über 20 % der Fälle sind beim Elch Clostridieninfektionen
dokumentiert. Dieser Nachweis deckt sich mit einer Untersuchung zur Feststellung
von Todesursachen bei Elchen, bei der eine Clostridieninfektion zu 19 %
nachgewiesen wurde (CLAUSS et al. 2002). Hirsche gelten als besonders
empfänglich: Eine vorgeschädigte Darmschleimhaut kann als Eintrittspforte fungieren
und zur Manifestation der Infektion beitragen. Betroffene Tiere zeigen Gas - und
Ödembildung in der Subkutis und blutige Diarrhöen. Einige Tiere versterben bereits
nach wenigen Stunden (VON HEGEL 1995).
Auffallend ist, dass in dieser Untersuchung kein einziger Nachweis der für
Wiederkäuer typischen bakteriellen Erreger Mykobakterium avium subsp.
paratuberkulosis und Brucella spp. vorliegt. Diese Feststellung spiegelt sich in
verschiedenen Untersuchungen wider. So gelang bei 537 frei lebenden Elchen nur in
1,9 % der Fälle ein serologischer Nachweis von Mykobakterium avium subspezies
paratuberkulosis (TRYLAND et al. 2004). 1979 wurden in Quebec 208 Elche
serologisch untersucht, wobei kein Tier positiv für Brucella abortus getestet wurde
(BOURQUE u. HIGGINS 1984).
Elch – Parasiten In fast der Hälfte aller 779 Untersuchungsfälle und am häufigsten unter den
beteiligten Tierarten wurde beim Elch Trichuris nachgewiesen. Zahlreiche
Literaturstellen dokumentieren den häufigen Befall von Elchen mit diesem Parasiten
(PFISTER et al. 1989, STOCK u. BARRETT 1983, HOEVE et al. 1988). Trichuris
induziert vor allem bei Jungtieren chronische Diarrhöen, Gewichtsverluste und im
weiteren Krankheitsverlauf Anämien und fordert bei in Zoos gehaltenen Elchen
häufig Verluste (VON HEGEL 1995). Trichurisinfektionen sind am so genannten
Wasting Syndrome Complex der Elche beteiligt, der bei einer Untersuchung von 19
verschiedenen zoologischen Einrichtungen in 48 % der Fälle die Haupttodesursache
darstellte (CLAUSS et al. 2002). Der häufige Nachweis von Trichuris bei Elchen in
zoologischen Einrichtungen sowie die klinische Bedeutung fü diese Tierart zeigt,
97
dass dieser Parasit einer der wichtigsten Erreger für die tiermedizinische Prophylaxe
beim Elch darstellt.
Die Gattungen Elaphostrongylus (Elaphostrongylus rangiferi, Elaphastrongylus cervi)
und Parelaphostrongylus (Parelaphostrongylus tenuis, Parelaphostrongylus
andersoni) der Protostrongylidae sowie Elaeophora schneideri sind im Literaturteil
dokumentiert, ließen sich aber im vorliegenden Untersuchungsgut nicht nachweisen
und scheinen für die in Europa in Zoos gehaltenen Elche keine Bedeutung zu
besitzen.
Cestoda wurden nur zu einem sehr geringen Anteil von weniger als 1 %
nachgewiesen. Bei frei lebenden Elchen in Kanada dagegen liegt die Anzahl
positiver Untersuchungsergebnisse für Bandwürmer deutlich höher. Zu den
nachgewiesenen Cestoda zählen Taenia hydatigena, Taenia krabbei, Echinokokkus
granulosus, Monieza expansa (ADDISON et al. 1979, SAMUEL et al. 1976, GIBBS u.
EATON 1983, FRUETEL u. LANKESTER 1988, HOEVE et al. 1988, PYBUS 1990).
Generell ist bei frei lebenden Elchen zu beachten, dass mit einer höheren Wolfdichte
die Infektionen mit Echinokokkus granulosus beim Elch steigen (MESSIER et al.
1989). Dies und die mögliche Aufnahme von Zwischenwirten bei frei lebenden
Elchen erklärt die hohe Prävalenz von Cestoda im Gegensatz zu in menschlicher
Obhut gehaltenen Elchen, für die Infektionen mit Bandwürmern kaum Bedeutung
haben. Ähnliches gilt für Trematoda, die in der vorliegenden Untersuchung in keinem
Fall, jedoch bei frei lebenden Tieren in Kanada nachgewiesen wurden (KENNEDY et
al. 1985).
Elch – Viren Lediglich zwei virale Erkrankungen liegen bei kleiner Fallzahl für den Elch
dokumentiert vor.
Bei 33,3 % von sechs getesteten Tieren wurde Bösartiges Katarrhalfieber (BKF)
nachgewiesen. Als ursächliche Erreger sind mindestens vier Viren der Unterfamilie
98
Gammaherpesvirus bekannt (Alcephalines Herpesvirus - 1 bei Wildwiederkäuern,
Ovines Herpesvirus - 2 beim Schaf, Caprines Herpesvirus - 2 mit pathogener
Wirkung für Hirsche, White – Tailed –Deer – MCFV, FRÖLICH 2010, MARKOWSKI
u. BÖER 2008). OvHV - 2 konnte als ursächlicher Erreger bei Elchen diagnostiziert
werden (NEIMANIS et al. 2009, KIK et al. 2005). Die Erkrankung führt beim Elch zu
schwerwiegenden klinischen Symptomen (VIKOREN et al. 2006) mit häufiger
Todesfolge (CLAUSS et al. 2002) und ist somit als gefährliche und zu überwachende
Infektionserkrankung anzusehen.
Das Virus der Bovinen Virusdiarrhoe und der Mucosal Disease (BVD / MD) wurde in
der vorliegenden Untersuchung bei 7,7 % von 13 Tieren festgestellt.
Antikörpernachweise gelangen in verschiedenen Regionen Alaskas (KOCAN et al.
1986) und in Skandinavien (FEINSTEIN et al. 1987, REHBINDER et al. 2004,
LILLEHAUG et al. 2003). Betroffene Hirsche zeigen hämorrhagische Enteritiden,
Apathie und Konjunktividen (VON HEGEL 1995). Die Infektion erfolgt über die
Schleimhäute, den Blutweg (auch über Vektoren) oder diaplazentär, wobei es sich
bei den heranwachsenden Jungtieren um persistent infizierte Tiere mit ausgebildeter
Immuntoleranz und Anfälligkeit gegenüber der Mucosal Disease handelt (MAYR u.
KAADEN 2007) .
5.1.8 Diskussion Rentier
Rentier – Bakterien Quantitativ herausragend zeigen fast die Hälfte (46,5 %) der 297 untersuchten
Rentiere einen positiven Nachweis für Enterobacteriaceae. Eine Untersuchung von
über 2000 Rentieren in Norwegen und Finnland beinhaltet ähnliche Ergebnisse, über
90 % der Tiere wiesen ein positives Ergebnis für E. coli und Enterokokkus sp. auf
(KEMPER et al. 2006). Es ist anzumerken, dass ein Großteil der E. coli - und
Enterokokkusstämme als physiologisch anzusehen sind. Der Anteil an pathogenen
Kolistämmen liegt einer Untersuchung zufolge bei weniger als 2 % (KEMPER et al.
99
2004). Allerdings können auch apathogene E. coli - Stämme bei Jungtieren oder
immunsuprimmierten Individuen ein klinisches Krankheitsgeschehen bedingen
(THING u. CLAUSEN 1980) und somit für durch Transporte gestresste Individuen
von Bedeutung sein.
Clostridien nehmen bei den Rentieren dieser Untersuchung den zweiten Platz der
bakteriellen Infektionen mit einem Vorkommen von 13,1 % ein. Rentiere gelten in der
Literatur als besonders empfänglich für Clostridiosen induziert durch Clostridium
perfringens Typ A - E (VON HEGEL 1995). Zahlreiche Clostridium perfringens -
Infektionen, vor allem bei Rentieren in Norwegen, sind dokumentiert (KUMMENEJE
1980, ASCHFALK et al. 2002, ASCHFALK et al. 2003, KEMPER et al. 2003). Wie
bereits erwähnt sind klinische Symptome einer Clostridiose Gas - und Ödembildung
in der Unterhaut sowie schwere Enteritiden (VON HEGEL 1995).
Streptokokken werden mit fast 10 % in dieser Untersuchung ebenfalls relativ häufig
nachgewiesen, werden in der Literatur aber nur am Rande erwähnt (KUMMENEJE
1980) und treten wahrscheinlich eher als Sekundärerreger in Erscheinung.
Während Pasteurella spp. einen vergleichsweise kleinen Anteil der bakteriellen
Infektionen dieser Arbeit bedingen, sind in der Literatur zahlreiche Ausbrüche einer
Pasteurellose beim Rentier seit Anfang des 20. Jahrhunderts beschrieben
(KUMMENEJE 1976, KUMMENEJE 1980, NORDKVIST 1971). Pasteurella multocida
induziert als Erreger der so genannten Rentierseuche Pneumonien und Pleuritiden.
Diese früher häufig aufgetretene Epidemie ist heute laut Literaturangaben in
Zoologischen Gärten weniger von Bedeutung (VON HEGEL 1995).
Brucella wird in der Literatur als regelmäßig vorkommender Erreger bei wildlebenden
Rentieren in Alaska und Kanada beschrieben (RAUSCH 1972, ZARNKE et al. 2006,
FERGUSON 1997). Infektionen mit Brucella abortus und Brucella rangiferi treten bei
fast allen Hirscharten auf (VON HEGEL 1995). In den untersuchten zoologischen
Einrichtungen Deutschlands ist allerdings kein einziger Fall einer Brucella - Infektion
100
in über 50 Jahren aufgetreten. Auch Untersuchungen in Norwegen zeigten keinen
positiven Brucellanachweis. Dieser bakterielle Erreger scheint somit für die in
deutschen Zoos gehaltenen Rentiere keine große Bedeutung zu besitzen.
Infektionen mit Mykobakterium avium subsp. paratuberkulosis wurden sowohl in dem
vorliegenden Untersuchungsgut als auch bei serologischen Untersuchungen an
Rentieren in Norwegen (TRYLAND et al. 2004) nur selten nachgewiesen.
Rentier – Parasiten Capillaria spp., Trichuris spp. und Vertreter der Trichostrongyloidea sind bei
Rentieren dieser Studie die am häufigsten nachgewiesenen Nematoden, wobei
Infektionen mit Capillaria und Trichostrongyloidea auch in der Literatur bei Rentieren
häufig beschrieben sind (FRUETEL u. LANKESTER 1989, BYE et al. 1987,
HRABOK et al. 2006). Verschiedene Trichostrongyloidea bewirken katarrhalische
Entzündungen mit zum Teil starker Beeinrächtigung der Resorption von Nährstoffen
(KUTZER 2000). Während Dictyocaulus zu trockenem Husten und Kümmern von
Jungtieren führt, kann Trichostrongylus bei Jungtieren zu schweren Enteritiden mit
letalem Verlauf führen (VON HEGEL 1995). 1997 wird der Tod zweier Rentiere
aufgrund einer Nematodeninfektion des Abomasus im Zoo Leipzig beschrieben, an
der Ostertagia sp. beteiligt war (REHBEIN et al. 1997).
Die Metastrongyloidea treten bei den in dieser Arbeit untersuchten Rentieren als
parasitäre Erreger nicht in den Vordergrund. Allerdings werden Infektionen mit
Parelaphostrongylus und Elaphostrongylus als Vertreter dieser Überfamilie in der
Literatur vielfach genannt. Elaphostrongylus kann sich zwischen den Hirnhäuten
ansiedeln und bei betroffenen Tieren zu zentralnervösen Störungen führen (KUTZER
2000).
Bei dieser Untersuchung machten die Kokzidia mit knapp 6 % bei den Rentieren
einen verhältnismäßig großen Anteil aus. In Literaturangaben liegen positive
Nachweise zum Teil noch höher (OKSANEN et al. 1990). Allerdings besitzt die
101
Kokzidiose bei Hirschen eine geringe klinische Bedeutung. Durch diese einzelligen
Parasiten verursachte Diarrhöen treten in der Regel nur bei Jungtieren auf (VON
HEGEL 1995).
Im vorliegenden Untersuchungsgut sind Cestoda beim Rentier nur zu einem sehr
geringen Anteil vertreten. In der Literatur existieren dagegen mehrere
Fallbeschreibungen. Ähnlich wie bei den Elchen begünstigen die andere
Zwischenwirtsituation wie die Verbreitung der Cestoda durch beispielsweise
karnivore Tiere unter Freilandbedingungen ein vermehrtes Auftreten von
Bandwurminfektionen bei Rentieren, die aber in zoologischen Einrichtungen eine
untergeordnete Bedeutung besitzen. Gleiches gilt für Infektionen mit Trematoda, für
die in dieser Arbeit kein Fall dokumentiert ist.
Rentier - Viren Der beim Rentier am häufigsten nachgewiesene virale Erreger ist das Bovine Herpes
Virus 1 (BHV - 1). Auch in der Literatur wird die Bedeutung von BHV -1 - Infektionen
für diese Tierart deutlich (EK - KOMMONEN et al. 1982, DIETERICH 1979,
ELAZHARY et al. 1981, ZARNKE 1983, JORDAN et al. 2003, TESSARO et al. 2005,
THIRY et al. 2008). Es konnte nachgewiesen werden, dass Herpesviren noch immer
endemisch in Rentierpopulationen Norwegens vorhanden sind (TRYLAND et al.
2005, LILLEHAUG et al. 2003). Sowohl Erkrankungen des Atmungsapparates, als
auch ulzerative Veränderungen des Genitalbereiches wurden bei Hirschen
beobachtet (VON HEGEL 1995). Es bleibt festzuhalten, dass BHV – 1 - Infektionen
eine gefährliche Infektionserkrankung für Rentiere in zoologischen Einrichtungen
darstellen.
Das Virus der Bovinen Virusdiarrhoe (BVDV) trat in dieser Arbeit in 5,5 % von 55
Fällen auf und ist somit als relativ häufig vorkommende Infektionserkrankung bei
Rentieren in zoologischen Einrichtungen anzusehen. Die Ergebnisse bezüglich des
Vorkommens von BVD bei Rentieren decken sich mit Angaben der Literatur. Wie bei
102
den Elchen beschrieben zeigen erkrankte Tiere Apathie, hämorrhagische Enteritiden
und Konjunktivitiden (VON HEGEL 1995).
Infektionen mit Rotavirus sind in dieser Untersuchung bei 4,5 % der beprobten
Rentiere nachgewiesen worden. In der Literatur werden Rotavirusinfektionen bei
Rentieren nicht besonders hervorgehoben. Aufgrund der starken klinischen
Symptome in Zusammenhang mit Diarrhöen bei Neugeborenen vieler Tierarten
(MAYR u. KAADEN 2007) sollte das Rotavirus zumindest bei Jungtieren Beachtung
finden.
Kein Rentier der vorliegenden Arbeit zeigte einen positiven Nachweis für das Virus
des Katarrhalfiebers (Malignant Catarrhal Fever Virus, MCFV). Das Vorkommen der
Erkrankung beim Rentier wird 1995 von VON HEGEL beschrieben. Anhand des
klinischen, pathologisch - anatomischen und histologischen Befundes wird Anfang
der siebziger Jahre in einem deutschen Zoo Bösartiges Katarrhalfieber bei einem
Rentier diagnostiziert (ALTMANN et al. 1973). HEUSCHELE et al. dokumentierten
1988 klinische Symptome einer MCF - Erkrankung beim Rentier. Der erste
tatsächliche Nachweis einer BKF -Infektion beim Rentier gelang KIUPEL et al. 2004,
wobei die Infektion durch das OvHV - 2 induziert wurde. Zudem existieren Berichte
über Antikörpernachweise gegen MCFV bei Rentieren (ZARNKE et al. 2002,
VIKOREN et al. 2006). Ein nicht publizierter Fall von BKF bei einem Rentier in
Norddeutschland ist vor 20 Jahren von den Herren WOHLSEIN und BÖER laut
mündlicher Mitteilung von Herrn Prof. Dr. M. BÖER, Hodenhagen 2010,
dokumentiert. Auch wenn in der vorliegenden Arbeit kein Nachweis einer Infektion
erfolgte und das Rentier für MCFV weniger empfänglich als der Elch erscheint, zeigt
die Literatur die Möglichkeit einer Erkrankung mit klinischen Symptomen der oben
genannten vier Verlaufsformen bei Rentieren auf.
103
5.2 Empfehlungen für tiermedizinische Maßnahmen im Rahmen von Überwachungsprogrammen
Im Folgenden sollen die für die einzelnen untersuchten Tierarten relevanten
Infektionserreger aufgrund ihrer Bedeutung für die jeweilige Tierart in
Überwachungsprogrammen im Rahmen von Quarantänemaßnahmen
Berücksichtigung finden. Die Empfehlungen zu Diagnostik, Prophylaxe und Therapie
sind hierbei zur besseren Übersicht tabellarisch dargestellt. Die antibakterielle
Therapie richtet sich streng nach Antibiogramm, die Mittel der ersten Wahl sind mit
Dosierungsvorschlägen aufgeführt.
Im Falle einer Quarantäne muss der Katalog der diagnostischen und
prophylaktischen Maßnahmen des Tierarztes um die gesetzlich festgelegten
Anforderungen der zuständigen Behörde erweitert werden (z. B. vorgeschriebene
Untersuchungen auf Brucellose und Leukose bei Wiederkäuern). Zu beachten sind
hierbei unter anderem der Anhang C der EU - Richtlinie 92 / 65 / EWG über die
tierseuchenrechtlichen Bedingungen über den Handel mit Tieren, Samen, Eizellen
und Embryonen, geregelt durch die die Verordnung 1282 / 2002 / EG, die
Binnenmarkt -Tierseuchenschutzverordnung sowie der Tiergesundheitskodex des
OIE (The World Organisation For Animal Health).
Im Vorfeld sei erwähnt, das sich neben den in Abschnitt „Literatur“ beschriebenen
allgemeinen Empfehlungen zur Quarantäne (KIUPEL et al. 2010, KAANDORP et al.
2010) die unten aufgeführten speziellen Empfehlungen auf Diagnostikmöglichkeiten
und die medizinische Therapie beziehen. Selbstverständlich wird eine allgemeine
tägliche Gesundheitsüberwachung der Tiere durch Adspektion, Kontrolle auf
Abweichung des physiologischen Verhaltens, des Kot - und Urinabsatzes sowie der
Futteraufnahme vorausgesetzt. Ebenfalls bedeutsam zur Verhinderung einer
Infektionserkrankung ist die Einschränkung von Reinfektionen insbesondere in
Hinblick auf parasitäre Erreger durch eine regelmäßige Reinigung und Desinfektion
der Tierunterbringungen und Arbeitsgerätschaften. Zu berücksichtigen sind hierbei
neben Tenazität und geeignetem Desinfektionsmittel auch die unterschiedlichen
104
Präpatenzen der einzelnen Parasiten. Da in dieser Arbeit vielfach auf
Erregergruppen oder – familien eingegangen wird, werden Präpatenzen oder
Tenazitäten der verschiedenen Erreger nicht einzeln aufgeführt.
105
5.2.1 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Bibern
Tabelle 29: Empfehlungen für die Quarantäne von Bibern
Routine/ Quarantäne
Bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime, Flotations - und Sedimentationsverfahren
Desinfektion Neopredisan 135-1 4%, 2 Stunden Einwirkzeit
Biber Diagnostik Immunisierung/ Prophylaxe
Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
auch bei asymptomatischen Ausscheidern, Fluorchinolone, Colistin und Gentamicin (SELBITZ 2007), z.B. Enrofloxacin 5 -10 mg/kg (HAMEL 2002), symptomatischen Therapie Rehydratation, Spasmolyse, Analgesie (SELBITZ 2007)
Yersinia Erregeranzucht auf Selektivmedien (SELBITZ 2007)
Totvakzine gegen Yersinia pseudotuberkulosis 2x in sechswöchigem Abstand, dann jährlich, Einsatz bei Wasserschweinen erfolgreich (RUEMPLER 1995), Bekämpfung von Vektoren (Ratten und Mäusen) (SELBITZ 2007)
häufig erfolglos, Chloramphenicol 20 – 50 mg/kg über 1 Woche, Tetrazyklin 20 - 50 mg/kg über 1 Woche (RUEMPLER 1995)
Streptokokkus
Anzüchtung auf Blutagar mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
nach Antibiogramm (SELBITZ 2007)
Aeromonas hydrophila
Erregeranzucht auf Selektivmedien (SELBITZ 2007)
Wasserqualität kontrollieren, da sich Erreger in Süßwasser ansiedelt
Chloramphenicol 20 – 50 mg/kg (RUEMPLER 1995)
Strongyloidea Flotationsvefahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 5 – 50 mg/kg (RUEMPLER 1995)
Trichostrongyloidea Flotationsvefahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 5 – 50 mg/kg (RUEMPLER 1995)
Kokzidia Flotationsverfahren (RUEMPLER 1995)
Sulfadimidin 60 -100 mg/kg 7 Tage, 4 Tage Pause, Intervall 3 x wiederholen (RUEMPLER 1995)
Trematoda Sedimentationsverfahren (ECKERT 2000)
Praziquantel 5mg/kg (HAMEL 2002)
106
Bei pockenähnlichen Hautveränderung sollte die Möglichkeit einer
Kuhpockeninfektion in Betracht gezogen werden.
5.2.2 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Wölfen
Tabelle 30: Empfehlungen für die Quarantäne von Wölfen
Routine/ Quarantäne
Bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime, Koproskopie, Flotationsverfahren, Sedimantationsverfahren, Parvovirus Antigen-Elisa aus Kot, Serologie Staupevirus
Desinfektion Lysovet N 1 %, 2 Stunden Einwirkzeit oder Neopredisan 135 - 1 4%, 2 Stunden Einwirkzeit
WÖLFE Diagnostik Immunisierung Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
Fluorchinolone, Colistin und Gentamicin (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg (KROKER 2006)
Streptokokkus
Anzüchtung auf Blutagar mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
Penicilline (SELBITZ 2007), z. B. Procain – Penicillin 15000 I. E. Alle 24 Stunden (KROKER 2006)
Staphylokokkus Anzüchtung auf Blutagar (SELBITZ 2007)
ß – Lactamantibiotika, Erythromycin, Lincomycin, Gentamcin, Florfenicol und Fluorchinolone (SELBITZ 2007).
Askaridoidea Flotationverfahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 30-50 mg/kg 3 – 5 Tage (BRAHM 1995)
Ankylostomatidae Koproskopie (ECKERT 2000) Fenbendazol 30 - 50mg/kg 3 – 5 Tage (BRAHM 1995)
Capillaria Koproskopie (ECKERT 2000)
Fenbendazol 25 – 50 mg/kg 5-10 Tage, Mebendazol 12,5 – 50 mg/kg 5d, Ivermectin 0,2 -0,3 mg/kg (ECKERT 2000)
Kokzidia
Nachweis von Oozysten (SUTER 2001)
Sulfadimethoxin 25 mg/kg 5 -10 Tage (BRAHM 1995)
Cestoda Koproskopie (ECKERT 2000) Praziquantel 5 mg/kg (ECKERT 2000)
Trematoda Sedimentationsverfahren (ECKERT 2000)
Praziquantel 5 mg/kg (ECKERT 2000)
Parvovirus Direktnachweis oder über Antigen – ELISA (MAYR u. KAADEN 2007)
inaktivierter Impfstoff, zweimalige Grundimmunisierung,
Rehydrierung, Antibiose gegen bakterielle
107
dann jährliche Wiederholungsimpfung (MAYR u. KAADEN 2007)
Sekundärinfektionen (MAYR u. KAADEN 2007)
Staupevirus
Serologie über den Nachweis eines Antikörperanstiegs bei Serumpaaren gestellt werden (MAYR u. KAADEN 2007)
zweimalige Grundimmunisierung, dann jährliche Wiederholungsimpfung (BRAHM 1995 )
Immunglobuline und Antibiose zur Bekämpfung bakterieller Sekundärinfektionen, Antipyretika, Analgetika und Spasmolytika (MAYR u. KAADEN
2007)
5.2.3 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Bären
Aufgrund des ähnlichen Erregervorkommens beider Bärenarten werden die
Quarantäneempfehlungen für Braun - und Eisbär gemeinsam besprochen.
Tabelle 31: Empfehlungen für die Quarantäne von Bären
Routine/ Quarantäne
Bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime, Flotationsverfahren
Desinfektion Neopredisan 135 -1 2%, 2 Stunden Einwirkzeit
Bären Diagnostik Immunisierung Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
Fluorchinolone, Colistin und Gentamicin (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg über 5 Tage (KUNTZE 1995)
Clostridium
Beurteilung von Orginalausstrichen des veränderten Gewebes beziehungsweise des Magen - und Darminhaltes (SELBITZ 2007)
häufig erfolglos, Penicilline, Aminopenicilline oder Tetrazykline, z. B. Ampicillin 10 – 20 mg/kg 3 x täglich (KUNTZE 1995), bei Clostridium tetani - und Clostridium botulinum - Infektionen antitoxische Serumpräparate (SELBITZ 2007)
Streptokokkus
Anzüchtung auf Blutagar, mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
Penicilline (SELBITZ 2007), z. B. Veracin comp. 0,1 ml/kg alle 48 Stunden (KUNTZE 1995)
108
Staphylokokkus Anzüchtung auf Blutagar (SELBITZ 2007)
ß – Lactamantibiotika, Erythromycin, Lincomycin, Gentamcin, Florfenicol und Fluorchinolone (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg über 5 Tage (Kuntze 1995)
Askaridoidea Flotationverfahren (ECKERT 2000)
Mebendazol 15 – 40 mg/kg 2 – 5 Tage, Ivermectin 0,2 mg/kg, Wiederholung in 10 -12 Tagen (KUNTZE 1995)
Ankylostomatidae Flotationverfahren (ECKERT 2000)
Mebendazol 15 – 40 mg/kg 2 – 5 Tage, Ivermectin 0,2 mg/kg, Wiederholung in 10 -12 Tagen (KUNTZE 1995)
5.2.4 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Luchsen
Tabelle 32: Empfehlungen für die Quarantäne von Luchsen
Routine/Quarantäne bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime einschließlich Salmonella, Flotationsverfahren, Parvovirus Antigen-Elisa aus Kot, Serologie FeLV mittels Neutralisationstest oder Immunfluoreszenz
Desinfektion Lysovet N 1 %, 2 Stunden Einwirkzeit, Neopredisan 135-1 2%, 2 Stunden Einwirkzeit
Luchse Diagnostik Immunisierung Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
Fluorchinolone, Colistin und Gentamicin (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg (KROKER 2006)
Salmonella Anreicherungsmedien und Differenzialnährböden (SELBITZ 2007)
Enrofloxacin und Aminopenicilline (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg (KROKER 2006), Rehydrierung (BEHLERT 1995)
Streptokokkus
Anzüchtung auf Blutagar mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
Penicilline (SELBITZ 2007), z. B. Procain – Penicillin 15000 I. E. Alle 24 Stunden (KROKER 2006)
Askaridoidea Flotationverfahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 20 mg/kg (BEHLERT 1995)
Ankylostomatidae Flotationverfahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 20 mg/kg (BEHLERT 1995)
109
Parvovirus Direktnachweis oder über Antigen-ELISA (MAYR u. KAADEN 2007)
aktiv Imunisierung (BEHLERT 1995), zur besseren Verträglichkeit Vakzine aus inaktivierten Erregern, Erstimpfung ab 8. Lebenswoche, Wiederholungsimpfung nach vier Wochen, Auffrischungsimmunisierung sind alle ein bis zwei Jahre (MAYR u. KAADEN 2007)
Immunseren und Antibiotika zur Eindämmung von bakteriellen Sekundärinfektionen, Rehydrierung (Ringer-Laktat, Antiemitka, Spasmolytika (BEHLERT 1995)
FIPV
serologische Antikörperbestimmung mit heterologem IF und TGE – Virus, allerdings keine sichere Diagnosestellung (MAYR u. KAADEN 2007)
Kein wirksamer Impfstoff, Ausschluß von Tieren mit humoralen Antikörpern (MAYR u. KAADEN 2007)
kausale Therapie nicht möglich (MAYR u. KAADEN 2007)
FeLV ELISA, Neutralisation, Immunfluoreszenz (MAYR u. KAADEN 2007)
aktive Immunisierung (BEHLERT 1995), Auftreten von tumorösen Erkrankungen wird gesenkt, allerdings kein sicherer Infektionsschutz durch Impfung (MAYR u. KAADEN 2007)
Antibiotika zur Eindämmung von bakteriellen Sekundärinfektionen (HARTMANN 2003)
5.2.5 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Robben
Tabelle 33: Empfehlungen für die Quarantäne von Robben
Routine/ Quarantäne
bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime, Flotationsverfahren, Larvenauswanderungsverfahren nach Baerman, Serologie Staupevirus
Desinfektion Lysovet N 1 %, 2 Stunden Einwirkzeit
Robben Diagnostik Immunisierung Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
Fluorchinolone, Colistin oder Gentamicin (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5,5 mg/kg (NEUROHR 1995)
Streptokokkus sp.
Anzüchtung auf Blutagar mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
Penicilline (SELBITZ 2007), z. B. Benzyl – Penicillin 20000 – 40000 I. E. (NEUROHR 1995)
Nematoda Flotations -, Larvenauswanderverfahren (ECKERT 2000)
Fenbendazol 10 mg/kg 3 Tage, Ivermectin 0,1 - 0,2 mg/kg (NEUROHR 1995)
110
Distempervirus
Immunfluoreszenz in Leukozyten, im Konjunktivalabstrich, im Harnblasen - oder Urinzellsediment, Serologie (Antikörperanstieg bei Serumpaaren) (MAYR u. KAADEN 2007)
aktive Immunisierung (MAYR u. KAADEN 2007), allerdings impfinduzierten Erkrankungen bei handelsüblichen Vakzinen, gut verträgliche modifizierte Vakzine nicht erhältlich (KAANDORP et al. 2010), präventiv daher Kontakt mit möglichen Virusträgern vermeiden (KAANDORP et al. 2010)
Hyperimmunseren, Globulinpräparate und Chemotherapeutika zur Bekämpfung von Sekundärinfektionen, Spasmolytka und Analgetika (MAYR u. KAADEN 2007)
SMSV
Antigennachweis, Differenzierung durch Neutralisationstest (MAYR u. KAADEN 2007)
Infektion i.d.R. selbst limitierend, Sekundärinfektionen: Ampicillin 8 mg/kg 3 x täglich, Benzyl-Penicillin 20000 - 40000 IE (NEUROHR 1995)
5.2.6 Schlussfolgerungen für die Quarantäne von Hirschen
Aufgrund des ähnlichen Erregervorkommens beider Hirscharten werden die
Quarantäneempfehlungen für Elch und Rentier gemeinsam besprochen.
Tabelle 34: Empfehlungen für die Quarantäne von Hirschen
Routine/ Quarantäne
bakteriologische Untersuchung auf darmpathogene Keime einschließlich Salmonella, Flotationsverfahren, Larvenauswanderungsverfahren nach Baerman, Sedimantationsverfahren, BVDV Serologie, BHV-1 Serologie (ELISA)
Desinfektion Lysovet N 1%, 2 Stunden Einwirkzeit, Neopredisan 135-1 2%, 2 Stunden Einwirkzeit
Hirsche Diagnostik Immunisierung Therapie
Enterobacteriaceae
Erregeranzucht auf Selektivmedien, bei E. coli Nachweis von Virulenzmarkern (SELBITZ 2007)
bei Yersinia pseudotuberkulosis Einsatz einer stallspezifischen Vakzine, Bekämpfung von Nagetieren als Reservoirwirte (VON HEGEL 1995)
Fluorchinolone, Colistin und Gentamicin (SELBITZ 2007), z. B. Enrofloxacin 5 mg/kg (VON HEGEL 1995), Behandlungsversuch bei Yersinia pseudotuberkulosis mit Tetrazyklinen 20 – 40 mg/kg (VON HEGEL 1995)
Salmonlla Anreicherungsmedien und Differenzialnährböden
Chloramphenicol 20 mg/kg 2 x täglich,
111
(SELBITZ 2007) Enrofloxacin 5 mg/kg, Rehydrierung (VON HEGEL 1995)
Clostridium
Beurteilung von Orginalausstrichen des veränderten Gewebes beziehungsweise des Magen - und Darminhaltes (SELBITZ 2007)
zweimal jährliche Immunisierung mit polyvalenten Vakzinen (VON HEGEL 1995), sollte gut abgewogen werden, da bei Rentieren eine Schutzimpfung ein schweres Abszessgeschehen induzieren kann (KRAWINKEL 2010, mündl. Mitteilung)
häufig erfolglos, Penicilline (Verazin comp. 0,1 – 0,2 ml/kg) oder Tetrazykline 20 – 40 mg/kg (VON HEGEL 1995), bei Clostridium tetani - und Clostridium botulinum - Infektionen antitoxische Serumpräparate (SELBITZ 2007)
Streptokokkus
Anzüchtung auf Blutagar mit Differenzierung über die Zellwandpolysaccharide (SELBITZ 2007)
Penicilline (SELBITZ 2007), z. B. Verazin comp. 0,1 – 0,2 ml/kg (VON HEGEL 1995)
Trichuris Flotationsverfahren (SCHNIEDER 2000)
5 x 5 mg/kg Fenbendazol, Febantel, Mebendazol, Flubendazol (KUTZER 2000)
Capillaria Flotationsverfahren (SCHNIEDER 2000)
Fenbendazol 1 x 10 mg/kg, Febantel 1 x 15 mg/kg, Thiabendazol 1 x 100 mg/kg oder 3 x 75 mg/kg oder 5 x 50 mg/kg, Pyrantel-Tartrat 1 x 25 mg/kg, Ivermectin 1 x 0,3 - 0,4 mg/kg oder 2 x 0,2 mg/kg oder 7x 0,1 mg/kg oder 5 x 0,15mg/kg (KUTZER 2000)
Trichostrongyloidea Flotationsverfahren (SCHNIEDER 2000)
Fenbendazol 1 x 10 mg/kg, Febantel 1 x 15 mg/kg, Thiabendazol 1 x 100 mg/kg oder 3 x 75 mg/kg oder 5 x 50 mg/kg, Pyrantel-Tartrat 1 x 25 mg/kg, Ivermectin 1 x 0,3-0,4 mg/kg oder 2 x 0,2 mg/kg oder 7x 0,1 mg/kg oder 5 x 0,15 mg/kg (KUTZER 2000)
Protostrongylidae / Elaphostrongylus
Larvenauswanderverfahren / Baermann - Methode
Fenbendazol 5 x 5 mg/kg oder
112
(ROMMEL 2000) Ivermectin 0,3 - 0,4 mg/kg, Wiederholung nach einer Woche (KUTZER 2000)
Trematoda Sedimentationsverfahren (SCHNIEDER 2000)
Oxyclozanid 15 mg/kg oder Resorantel 65 mg/kg (KUTZER 2000)
BVDV
Serologie, Isolierung über Zellkultur aus stabilisiertem Blut, Nasen - und Konjunktivalsekret oder Genitalabstrichen mittels Immunfluoreszenz oder ELISA (MAYR u. KAADEN 2007)
Lebend – oder Totvakzine gegen BDV-1, Lebendvakzine lang anhaltender Schutz, allerdings Möglichkeit der inapperenten Ausscheidung oder diaplazentaren Infektionen, kurzer Schutz bei Totvakzinen (PROBST 2007), nur mit Genehmigung der zuständigen Behörde, Einsatz sollte für jeden Einzelfall gut abgewogen werden
BHV-1
Erregernachweis über Zellkultur aus Augensekret, Vaginaltupfer oder Präputialspülprobe oder Serologie (ELISA) (MAYR u. KAADEN 2007)
zur Vermeidung bakterieller Sekundärinfektionen antibiotische Behandelung (PROBST 2007)
MCFV Erregernachweis schwierig, Anzucht nicht möglich (MAYR u. KAADEN 2007)
räumliche Trennung von Schafen und Ziegen
Symptomatische Therapie (antibiotisch, nicht steroidal antiphlogistisch) (PROBST 2007)
113
Zusammenfassung 6 Stefanie Markowski Tierart- und erregerspezifische Maßnahmen zur Optimierung des Gesundheits-managements für nordamerikanische Säugetiere in Zoologischen Gärten
Ziel der Arbeit war es, durch Auswertung von 5389 Untersuchungsfällen bei acht
nordamerikanischen Tierarten in Zoologischen Gärten, ergänzt durch entsprechende
Literaturstudien, die wichtigsten bakteriologischen, parasitologischen und
virologischen Infektionserreger zu bestimmen, um entsprechende tiermedizinische
Überwachungs – und Kontrollprogramme zu optimieren.
Mit den Ergebnissen der Literaturstudie lassen sich bedeutende Erreger bei den
untersuchten Tierarten eingrenzen. Häufig traten verschiedene Enterobacteriaceae,
bei Wölfen, Luchsen und Elchen auch Salmonellainfektionen, auf. Ebenfalls zahlreich
waren Clostridien, Brucellainfektionen und Leptospirosen, bei Robben auch
Streptokokkeninfektionen dokumentiert. Dominierende parasitäre Infektionen waren
durch Askaridoidea, Ankylostomatoidea, Strongyloidea, Tricho- und
Metastrongyloidea sowie Trichuris bei den Elchen induziert. Cestodainfektionen
waren vor allem bei Luchs und Wolf, Trematodanachweise bei Bibern und Wölfen
beschrieben. Zu den bedeutenden in der Literatur genannten Virusinfektionen zählen
vor allem Distempervirusinfektionen. Ebenfalls häufig traten Parvo – und
Tollwutvirusinfektionen auf. Bei den Hirschen dominierten Infektionen mit Erregern
des Katarrhalfiebers, der Bovinen Virusdiarrhoe sowie mit dem Bovinen
Herpesvirus 1.
Die Auswertung der 5389 Untersuchungsfälle zeigte, dass bei allen acht beteiligten
Tierarten Vertreter der Enterobacteriaceae in großer Zahl den größten Anteil der
nachgewiesenen Bakterien ausmachten. Ebenfalls häufig waren Streptokokken und
Clostridien dokumentiert. Ähnlich den Ergebnissen der Literaturstudie wurden
Askaridoidea und Trichuris (bei den Elchen) als wichtige parasitologische Erreger
114
identifiziert. Staupevirusinfektionen traten am häufigsten bei Robben auf,
Parvovirusinfektionen bei Wölfen und Luchsen. Das Virus der Bovinen Virusdiarrhoe
wurde für beide Hirscharten nachgewiesen. Bei Elchen wurden Infektionen mit einem
Erreger des Katarrhalfiebers, bei Rentieren mit dem Bovinen Herpesvirus 1 und
Rotaviren dokumentiert. Für Biber besaßen Virusinfektionen eine untergeordnete
Bedeutung, für Bären erfolgte in keinem Untersuchungsfall ein positiver
Virusnachweis.
Schlussfolgernd aus den Ergebnissen der Literaturstudie und den Auswertungen der
Untersuchungsfälle sind die für die jeweilige Tierart bedeutenden Infektionserreger
identifiziert worden. Möglichkeiten und Empfehlungen zu Diagnostik, Prophylaxe und
Therapie werden im Diskussionsteil erörtert. Enterobacteriaceae bilden bei allen
Tierarten die bedeutendste bakterielle Erregergruppe, speziesabhängig gefolgt von
Streptokokken, Staphylokokken, Salmonellen und Clostridien. Folglich sollte bei
prophylaktischen Untersuchungsmaßnahmen eine Untersuchung auf darmpathogene
Keime erfolgen sowie bei den entsprechenden Tierarten im Verdachtsfall auf
angesprochene Bakterien getestet werden. Askaridoidea und Ankylostomatoidea
sind bei Wölfen, Bären und Luchsen die häufigsten Parasiten. Wölfe sollten
außerdem auf das Vorkommen verschiedener Cestodaarten untersucht werden.
Strongyloidea und Trichostrongyloidea zählen zu den bedeutenden parasitären
Erregern bei Bibern. Bei Robben dominierten die nicht weiter differenzierten
Nematoda, bei den Hirschen Infektionen mit Trichuris (Elch) und Capillaria (Rentier).
Für alle untersuchten Tierarten sollte folglich eine Untersuchung mittels
Flotationsverfahren, teilweise ergänzt durch das Larvenauswanderverfahren
durchgeführt werden. Trematoda besitzen Bedeutung für Wolf und Biber und werden
mit Hilfe des Sedimentationsverfahrens erweiternd bei diesen Tierarten
diagnostiziert. Virusinfektionen sind für Biber und Bären entsprechend den
Ergebnissen dieser Arbeit von untergeordneter Bedeutung. Parvovirusinfektionen
können Wölfe und Luchse in Zoologischen Gärten gefährden, so dass eine aktive
Immunisierung bei diesen Tierarten anzuraten ist. Luchse sind außerdem anfällig für
das Feline Leukosevirus, so dass auch eine Schutzimpfung gegen diesen Erreger
115
abhängig von Kontaktmöglichkeiten zu Überträgertieren sinnvoll erscheint. Die
bedeutendste Virusinfektion der Robben wird durch das Staupevirus induziert,
allerdings ist das Infektionsrisiko unter Zoobedingungen als gering einzuschätzen.
Viruserkrankungen mit BVDV und BHV -1 können bei beiden Hirscharten dieser
Arbeit auftreten. Der Einsatz eines Impfstoffes sollte allerdings für jeden Einzelfall gut
abgewogen werden und bedarf bei der BVDV – Prophylaxe der behördlichen
Genehmigung. Ebenfalls bedeutend, insbesondere bei Elchen, sind Infektionen mit
Erregern des Katarrhalfiebers, wobei eine Schutzimpfung leider nicht möglich ist.
Eine zusammenfassende Tabelle für jede beteiligte Tierart ermöglicht einen
Überblick über die wichtigsten Infektionserreger sowie über empfohlene Diagnostik -,
Prophylaxe -, Therapie – und Desinfektionsmaßnahmen und deren unmittelbare
Anwendung in der tiergartenbiologischen Praxis.
116
Summary 7 Stefanie Markowski Animal- and agent specific measurements for optimizing the health management for North American mammals in zoological gardens The objective of this study was to optimize veterinary monitoring and control
programs for specific North American species kept in zoological gardens by
identifying most important bacteriological, parasitological, and virological agents.
Once these agents have been identified, monitoring and control programs may be
more specifically targeted on these pathogens. For this purpose 5389 case reports
relating to eight Northern American animal species were analyzed and related
literature was reviewed.
The reviewed literature allowed to determine relevant pathogens for the animal
species in question. According to literature, there is frequent occurrence of various
Enterobacteriaceae in all of these animal species under investigation. Wolves,
lynxes, and mooses are frequently infected with Salmonella. Likewise, incidences of
Clostridia, infections with Brucella, and Leptospirae are numerous. It has also been
documented that infections with Strepptococcus were numerous in seals. Dominant
parasitic infections are induced by Ascaridoidea, Ancylostomatoidea, Strongyloidea,
Tricho- and Metastrongyloidea, as well as Trichuris in mooses. Infections with
Cestodes were predominantly documented in lynxes and wolves, while evidence for
incidences of Trematodes was provided for beavers and wolves. Amongst the most
important viral infections cited in literature was Distemper. Infections caused by
Parvovirus and Lyssa virus were frequent as well. Malignant catarrhal fever, Bovine
virus diarrhea, as well as Bovine Herpes virus 1 were prevalent infections in mooses
and reindeers.
Analyses of 5389 case reports showed Enterobacteriaceae in large numbers to form
the major group amongst all bacteria that were detected, followed by Streptococcus
and Clostridia with likewise frequent occurrences. Consistent with literature review,
117
Ascaridoidea and (in mooses) Trichuris were identified as important parasitological
agents. Infections with the Distemper virus were documented most frequently in
seals, infections with Parvo virus in wolves and lynxes. Bovine Virus diarrhea was
detected in both species of deer. In mooses infections with malignant catarrhal fever
and in reindeer infections with Bovine Herpes virus 1 and Rota virus were
documented. Infections with viruses are only of minor importance with regard to
beavers and as far as bears are concerned, no positive evidence of infections with
viruses was established at all.
By drawing conclusions from both, reviewed literature and analysis of case reports,
the relevant pathogens for each animal species were identified. In a next step,
different options for diagnostics, prophylaxis, and therapy were discussed and certain
approaches recommended.
Enterobacteriaceae were the prevalent bacterial group of pathogens, followed -
depending on the respective species - by Streptococcus, Staphylococcus,
Salmonella and Clostridia. Therefore, it is recommended to focus prophylaxis on
intestinal pathogens. In suspected cases and if the respective animal species is
concerned, tests targeting the bacteria identified in this study should be performed.
Ascaridoidea and Ancylostomatoidea were the most common parasites in wolves,
bears, and lynxes. It is recommended that wolves are examined for incidences of
various types of Cestodes. Strongyloidea and Trichostrongyloidea were amongst the
most important parasitical agents in beavers. In seals Nematodes - that were not
further differentiated - and in deer infections with Trichuris (moose) and Capillaria
(reindeer) were dominant. Consequently, flotation techniques - in part supplemented
by larvae migration techniques - should be applied to all host species examined in
this study. Trematodes were relevant with regard to wolves and beavers and were
diagnosed by means of sedimentation processes. According to this study, virus
infections were of only minor importance for beavers and bears. Infections with Parvo
viruses may endanger wolves and lynxes in zoological gardens; therefore, active
immunization is recommended for these species. Lynxes are susceptible to Feline
Leucose virus, thus, it seems reasonable to vaccinate against this pathogen
118
independent of potential exposure to animals carrying the pathogen. The most
important virus infection in seals is induced by the Distemper virus, albeit, with risk of
infection in a zoological environment being rather modest. Virus diseases attributable
to BVDV and BHV - 1 might occur in both types of deer taken under scrutiny in this
study. Benefits and risks of using a vaccine should, however, be carefully weighed up
against each other in each single case of a BVDV or BHV - 1 infection; it should be
noted that using a vaccine for BVDV prophylaxis requires approval by the competent
public authority. Furthermore, while infections with pathogenic agents of Malignant
catarrhal fever are equally important, no vaccination is available yet.
In conclusion, the most important pathogenic agents for each animal species as well
as the recommended measures for diagnosis, prophylaxis, therapy, and disinfection
are listed in a schedule for quick reference and immediate application in
zoobiological management.
119
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150
Anhang I Liste der an der Untersuchung beteiligten Zoologischen Gärten
Zoo Berlin Dr. A. Ochs
Zoo Braunschweig Dr. P. Grothmann
Zoo Dortmund Dr. C. Osmann
ZOOM Erlebniswelt Gelsenkirchen
Dr. P. Krawinkel
Erlebniszoo Hannover Dr. A. Knieriem
Zoo Köln Dr. O. Behlert
Zoo Krefeld Dr. M. Straube
Zoo Landau Dr. J.-O. Heckel
Zoo Magdeburg Dr. M. Tanner
Tiergarten Nürnberg Dr. B. Neurohr
Zoo Osnabrück Dr. S. Klomburg
Zoo Wuppertal Dr. A. Lawrenz
151
Anhang II Verteilung von Geschlecht, Alter und Herkunft des Untersuchungsmaterials sowie
der Untersuchungsergebnisse auf die Untersuchungsjahrzehnte
8.1.1. Verteilung des Geschlechts der beprobten Tiere
Tabelle 35: Verteilung aller Proben
Häufigkeit Prozent
männlich 1474 27,4
weiblich 2189 40,6
unbekannt 1726 32,0
Gesamt 5389 100,0
Tabelle 36: Verteilung der Proben mit bekanntem Geschlecht der beprobten Tiere
Häufigkeit Prozent
männlich 1474 40,2
weiblich 2189 59,8
Gesamt 3663 100,0
8.1.2. Verteilung des Alters
Einteilung in Altersgruppen
Tabelle 37: Altersgruppen der in dieser Arbeit beprobten Tiere
Jungtier Adult Alttier
Eisbär bis zum vollendeten 3. LJ 4-30 Jahre ≥ 30 Jahre
Braunbär bis zum vollendeten 2. LJ 4-30 Jahre ≥ 30 Jahre
Elch bis 18 Monate 1,5-10 Jahre ≥ 10 Jahre
Rentier bis zum vollendeten 1. LJ 1-10 Jahre ≥ 10 Jahre
Wolf bis 18 Monate 1,5-12 Jahre 12 Jahre
Luchs bis 18 Monate 1,5-15 Jahre ≥ 15 Jahre
Biber bis 18 Monate 1,5-12 Jahre 12 Jahre
Kalifornischer Seelöwe
bis zum vollendeten 4. LJ 5-20 Jahre ≥ 20 Jahre
Mähnenrobbe bis zum vollendeten 2. LJ 3-20 Jahre ≥ 20 Jahre
Kegelrobbe bis zum vollendeten 4. LJ 5-30 Jahre ≥ 30 Jahre
Seehund bis zum vollendeten 2. LJ 3-24 Jahre ≥ 25 Jahre
LJ = Lebensjahr
152
Tabelle 38: Übersicht über die Altersklassen der beprobten Tiere
Häufigkeit Prozent
Foetus 44 0,8
neonatologisch 149 2,8
Jungtier 446 8,3
adult 599 11,1
Alttier 107 2,0
unbekannt 4044 75,0
Gesamt 5389 100,0
Tabelle 39: Übersicht über die bekannten Altersklassen der beprobten Tiere
Häufigkeit Prozent
Foetus 44 3,3
neonatologisch 149 11,1
Jungtier 446 33,2
adult 599 44,5
Alttier 107 8,0
Gesamt 1345 100,0
Abbildung 60: graphische Darstellung der prozentualen Verteilung des Probenmaterials auf die Altersklassen
% 50
40
30
20
10
0 Alttier Adult Jungtier Neonat
Foetus
153
8.1.3. Verteilung der Herkunft des Untersuchungsmaterials
Tabelle 40: Übersicht über den Vitalitätszustand der Tiere während der Probenentnahme
Häufigkeit Prozent
lebend 4412 81,9 tot 912 16,9 unbekannt 65 1,2 Gesamt 5389 100,0
Abbildung 61: prozentuale Verteilung von Proben hinsichtlich des Vitalitätszustandes bei der
Probenentnahme
%
100
80
60
40
20
0 unbekannt tot lebend
154
8.1.4. Untersuchungszeitraum
Tabelle 41: zeitliche Verteilung der Probenentnahme
Abbildung 62: Darstellung der Probenanzahl in Bezug auf das Jahrzehnt der Entnahme
Häufigkeit Prozent
1950-60 63 1,2
1961-70 307 5,7
1971-80 881 16,4
1981-1990 1567 29,1
1991-2000 1776 33,0
> 2000 794 14,7
Gesamt 5388 100,0
Jahrzehnt
> 2000 1991-2000 1981-90 1971-80 1961-70 1950-60
%
40
30
20
10
0
155
Anhang III Häufigkeit des Vorkommens der einzelnen Bakterien Die unten aufgeführten Tabellen zeigen den Anteil der bakteriologischen
Untersuchungen für die einzelnen Erreger sowie Häufigkeit in Fallzahl und Prozent
der negativen und positiven Nachweise.
Tabelle 42: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
negativ 596 52,6
positiv 537 47,4
Gesamt 1133 100,0
Fehlend 4256
Gesamt 5389
Tabelle 43: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
negativ 906 81,5
positiv 206 18,5
Gesamt 1112 100,0
Fehlend 4277
Gesamt 5389
Tabelle 44: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
negativ 1044 94,9
positiv 56 5,1
Gesamt 1100 100,0
Fehlend 4289
Gesamt 5389
156
Tabelle 45: Clostridium
Häufigkeit Prozent
negativ 985 89,2
positiv 119 10,8
Gesamt 1104 100,0
Fehlend 4285
Gesamt 5389
Tabelle 46: Salmonella
Häufigkeit Prozent
negativ 1951 97,0
positiv 61 3,0
Gesamt 2012 100,0
Fehlend 3377
Gesamt 5389
Tabelle 47: Coxiella
Häufigkeit Prozent
negativ 1110 97,3
positiv 31 2,7
Gesamt 1141 100,0
Fehlend 4248
Gesamt 5389
Tabelle 48: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
negativ 1118 99,3
positiv 8 0,7
Gesamt 1126 100,0
Fehlend 4263
Gesamt 5389
157
Tabelle 49: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
negativ 1138 99,6
positiv 5 0,4
Gesamt 1143 100,0
Fehlend 4246
Gesamt 5389
Tabelle 50: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
negativ 1046 95,1
positiv 54 4,9
Gesamt 1100 100,0
Fehlend 4289
Gesamt 5389
Tabelle 51: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
negativ 1069 97,3
positiv 30 2,7
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 52: Brucella
Häufigkeit Prozent
negativ 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 53: Bordetella bronchiseptika
Häufigkeit Prozent
negativ 1096 99,7
positiv 3 0,3
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
158
Tabelle 54: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
negativ 1076 97,9
positiv 23 2,1
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 55: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
negativ 1085 98,5
positiv 16 1,5
Gesamt 1101 100,0
Fehlend 4288
Gesamt 5389
Tabelle 56: Campylobacter /Helicobacter
Häufigkeit Prozent
negativ 1090 99,0
positiv 11 1,0
Gesamt 1101 100,0
Fehlend 4288
Gesamt 5389
Tabelle 57: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
negativ 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 58: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
negativ 1098 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
159
Tabelle 59: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
negativ 1097 99,8
positiv 2 0,2
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 60: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
negativ 1094 99,5
positiv 5 0,5
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 61: Leptospira
Häufigkeit Prozent
negativ 1097 99,8
positiv 2 0,2
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 62: Listeria
Häufigkeit Prozent
negativ 1097 99,8
positiv 2 0,2
Gesamt 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
Tabelle 63: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
negativ 1099 100,0
Fehlend 4290
Gesamt 5389
160
Tabelle 64: Sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
negativ 1023 92,8
positiv 79 7,2
Gesamt 1102 100,0
Fehlend 4287
Gesamt 5389
161
Anhang IV Tabellen der relevanten Bakterien bei verschiedenen Tierarten und im zeitlichen Verlauf Die unten dargestellten Tabellen zeigen in Fallzahlen für die jeweilige Tierart sowie
prozentual bezogen auf die einzelne Tierart und die Erregergruppe den Anteil von
positiven und negativen bakteriologischen Untersuchungsergebnissen. Zudem
werden die positiven und negativen Fallzahlen der einzelnen Bakterien in einem
Untersuchungsjahrzehnt aufgeführt. Positive wie negative Nachweise bezogen auf
das jeweilige Untersuchungsjahrzehnt sowie auf die Gesamtnachweise des
einzelnen Bakteriums werden prozentual dargestellt. Die Tabellen beinhalten wie
weiter oben beschrieben nur die bedeutenden Erreger für die einzelnen Tierarten.
162
Enterobacteriace
Tabelle 65: Enterobacteriaceae bei verschiedenen Tierarten
Entero-bacteriaceae
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 33 77 110
% von Tierart 30,0% 70,0% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 5,5% 14,3% 9,7%
Braunbär Anzahl 13 18 31
% von Tierart 41,9% 58,1% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 2,2% 3,4% 2,7%
Elch Anzahl 20 25 45
% von Tierart 44,4% 55,6% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 3,4% 4,7% 4,0%
Rentier Anzahl 159 138 297
% von Tierart 53,5% 46,5% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 26,7% 25,7% 26,2%
Wolf Anzahl 41 33 74
% von Tierart 55,4% 44,6% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 6,9% 6,1% 6,5%
Luchs Anzahl 44 39 83
% von Tierart 53,0% 47,0% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 7,4% 7,3% 7,3%
Biber Anzahl 106 41 147
% von Tierart 72,1% 27,9% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 17,8% 7,6% 13,0%
Robbe Anzahl 180 166 346
% von Tierart 52,0% 48,0% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 30,2% 30,9% 30,5%
Gesamt Anzahl 596 537 1133
% von Tierart 52,6% 47,4% 100,0%
% von Enterobacteriaceae 100,0% 100,0% 100,0%
163
Tabelle 66: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 47,979 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 1133
Tabelle 67: Enterobacteriaceae im zeitlichen Verlauf
Entero-bacteriaceae
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 16 6 22
% von Jahrzehnt 72,7% 27,3% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
2,7% 1,1% 1,9%
1961-70 Anzahl 78 54 132
% von Jahrzehnt 59,1% 40,9% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
13,1% 10,1% 11,7%
1971-80 Anzahl 105 103 208
% von Jahrzehnt 50,5% 49,5% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
17,6% 19,2% 18,4%
1981-90 Anzahl 132 139 271
% von Jahrzehnt 48,7% 51,3% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
22,1% 25,9% 23,9%
1991-2000 Anzahl 163 119 282
% von Jahrzehnt 57,8% 42,2% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
27,3% 22,2% 24,9%
> 2000 Anzahl 102 116 218
% von Jahrzehnt 46,8% 53,2% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
17,1% 21,6% 19,2%
Gesamt Anzahl 596 537 1133
% von Jahrzehnt 52,6% 47,4% 100,0%
% von Enterobacteriaceae
100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 68: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 13,839 0,017 Anzahl der gültigen Fälle 1133
164
Streptokokkus
Tabelle 69: Streptokokkus bei verschiedenen Tierarten
Streptokokkus
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 80 28 108
% von Tierart 74,1% 25,9% 100,0%
% von Streptokokkus 8,8% 13,6% 9,7%
Braunbär Anzahl 28 3 31
% von Tierart 90,3% 9,7% 100,0%
% von Streptokokkus 3,1% 1,5% 2,8%
Elch Anzahl 30 16 46
% von Tierart 65,2% 34,8% 100,0%
% von Streptokokkus 3,3% 7,8% 4,1%
Rentier Anzahl 265 28 293
% von Tierart 90,4% 9,6% 100,0%
% von Streptokokkus 29,2% 13,6% 26,3%
Wolf Anzahl 63 10 73
% von Tierart 86,3% 13,7% 100,0%
% von Streptokokkus 7,0% 4,9% 6,6%
Luchs Anzahl 66 17 83
% von Tierart 79,5% 20,5% 100,0%
% von Streptokokkus 7,3% 8,3% 7,5%
Biber Anzahl 132 11 143
% von Tierart 92,3% 7,7% 100,0%
% von Streptokokkus 14,6% 5,3% 12,9%
Robbe Anzahl 242 93 335
% von Tierart 72,2% 27,8% 100,0%
% von Streptokokkus 26,7% 45,1% 30,1%
Gesamt Anzahl 906 206 1112
% von Tierart 81,5% 18,5% 100,0%
% von Streptokokkus 100,0% 100,0% 100,0%
165
Tabelle 70: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 60,587 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 1112
Tabelle 71: Streptokokkus im zeitlichen Verlauf
Streptokokkus
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 22 0 22
% von Jahrzehnt 100,0% 0,0% 100,0%
% von Streptokokkus 2,4% 0,0% 2,0%
1961-70 Anzahl 114 18 132
% von Jahrzehnt 86,4% 13,6% 100,0%
% von Streptokokkus 12,6% 8,7% 11,9%
1971-80 Anzahl 165 43 208
% von Jahrzehnt 79,3% 20,7% 100,0%
% von Streptokokkus 18,2% 20,9% 18,7%
1981-90 Anzahl 211 53 264
% von Jahrzehnt 79,9% 20,1% 100,0%
% von Streptokokkus 23,3% 25,7% 23,7%
1991-2000 Anzahl 230 44 274
% von Jahrzehnt 83,9% 16,1% 100,0%
% von Streptokokkus 25,4% 21,4% 24,6%
> 2000 Anzahl 164 48 212
% von Jahrzehnt 77,4% 22,6% 100,0%
% von Streptokokkus 18,1% 23,3% 19,1%
Gesamt Anzahl 906 206 1112
% von Jahrzehnt 81,5% 18,5% 100,0%
% von Streptokokkus 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 72: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 11,633 0,040
Anzahl der gültigen Fälle 1112
166
Staphylokokkus Tabelle 73: Staphylokokkus bei verschiedenen Tierarten
Staphylokokkus
Gesamt negativ Positiv
Tierart Eisbär Anzahl 97 11 108
% von Tierart 89,8% 10,2% 100,0%
% von Staphylokokkus 9,3% 19,6% 9,8%
Braunbär Anzahl 28 3 31
% von Tierart 90,3% 9,7% 100,0%
% von Staphylokokkus 2,7% 5,4% 2,8%
Elch Anzahl 43 0 43
% von Tierart 100,0% ,0% 100,0%
% von Staphylokokkus 4,1% ,0% 3,9%
Rentier Anzahl 280 11 291
% von Tierart 96,2% 3,8% 100,0%
% von Staphylokokkus 26,8% 19,6% 26,5%
Wolf Anzahl 66 7 73
% von Tierart 90,4% 9,6% 100,0%
% von Staphylokokkus 6,3% 12,5% 6,6%
Luchs Anzahl 79 0 79
% von Tierart 100,0% ,0% 100,0% % von Staphylokokkus
7,6% ,0% 7,2%
Biber Anzahl 137 5 142
% von Tierart 96,5% 3,5% 100,0%
% von Staphylokokkus 13,1% 8,9% 12,9%
Robbe Anzahl 314 19 333
% von Tierart 94,3% 5,7% 100,0%
% von Staphylokokkus 30,1% 33,9% 30,3%
Gesamt Anzahl 1044 56 1100
% von Tierart 94,9% 5,1% 100,0%
% von Staphylokokkus 100,0% 100,0% 100,0%
167
Tabelle 74: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 18,771 0,009 Anzahl der gültigen Fälle 1100
Tabelle 75: Staphylokokkus im zeitlichen Verlauf
Staphylokokkus
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 21 1 22
% von Jahrzehnt 95,5% 4,5% 100,0%
% von Staphylokokkus
2,0% 1,8% 2,0%
1961-70 Anzahl 126 6 132
% von Jahrzehnt 95,5% 4,5% 100,0%
% von Staphylokokkus
12,1% 10,7% 12,0%
1971-80 Anzahl 195 11 206
% von Jahrzehnt 94,7% 5,3% 100,0%
% von Staphylokokkus
18,7% 19,6% 18,7%
1981-90 Anzahl 245 15 260
% von Jahrzehnt 94,2% 5,8% 100,0%
% von Staphylokokkus
23,5% 26,8% 23,6%
1991-2000 Anzahl 258 11 269
% von Jahrzehnt 95,9% 4,1% 100,0%
% von Staphylokokkus
24,7% 19,6% 24,5%
> 2000 Anzahl 199 12 211
% von Jahrzehnt 94,3% 5,7% 100,0%
% von Staphylokokkus
19,1% 21,4% 19,2%
Gesamt Anzahl 1044 56 1100
% von Jahrzehnt 94,9% 5,1% 100,0%
% von Staphylokokkus
100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 76: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 1,083 0,956
Anzahl der gültigen Fälle 1100
168
Clostridium Tabelle 77: Clostridium bei verschiedenen Tierarten
Clostridium
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 77 34 111
% von Tierart 69,4% 30,6% 100,0%
% von Clostridium 7,8% 28,6% 10,1%
Braunbär Anzahl 26 5 31
% von Tierart 83,9% 16,1% 100,0%
% von Clostridium 2,6% 4,2% 2,8%
Elch Anzahl 34 10 44
% von Tierart 77,3% 22,7% 100,0%
% von Clostridium 3,5% 8,4% 4,0%
Rentier Anzahl 253 38 291
% von Tierart 86,9% 13,1% 100,0%
% von Clostridium 25,7% 31,9% 26,4%
Wolf Anzahl 68 5 73
% von Tierart 93,2% 6,8% 100,0%
% von Clostridium 6,9% 4,2% 6,6%
Luchs Anzahl 76 3 79
% von Tierart 96,2% 3,8% 100,0%
% von Clostridium 7,7% 2,5% 7,2%
Biber Anzahl 142 0 142
% von Tierart 100,0% ,0% 100,0%
% von Clostridium 14,4% ,0% 12,9%
Robbe Anzahl 309 24 333
% von Tierart 92,8% 7,2% 100,0%
% von Clostridium 31,4% 20,2% 30,2%
Gesamt Anzahl 985 119 1104
% von Tierart 89,2% 10,8% 100,0%
% von Clostridium 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 78: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 81,260 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 1104
169
Tabelle 79: Clostridium im zeitlichen Verlauf
Clostridium
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 22 0 22
% von Jahrzehnt 100,0% 0,0% 100,0%
% von Clostridium 2,2% 0,0% 2,0%
1961-70 Anzahl 122 10 132
% von Jahrzehnt 92,4% 7,6% 100,0%
% von Clostridium 12,4% 8,4% 12,0%
1971-80 Anzahl 189 19 208
% von Jahrzehnt 90,9% 9,1% 100,0%
% von Clostridium 19,2% 16,0% 18,8%
1981-90 Anzahl 224 35 259
% von Jahrzehnt 86,5% 13,5% 100,0%
% von Clostridium 22,7% 29,4% 23,5%
1991-2000 Anzahl 255 14 269
% von Jahrzehnt 94,8% 5,2% 100,0%
% von Clostridium 25,9% 11,8% 24,4%
> 2000 Anzahl 173 41 214
% von Jahrzehnt 80,8% 19,2% 100,0%
% von Clostridium 17,6% 34,5% 19,4%
Gesamt Anzahl 985 119 1104
% von Jahrzehnt 89,2% 10,8% 100,0%
% von Clostridium 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 80: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 30,983 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 1104
170
Salmonella Tabelle 81: Salmonella bei verschiedenen Tierarten
Salmonella
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 130 7 137
% von Tierart 94,9% 5,1% 100,0%
% von Salmonella 6,7% 11,5% 6,8%
Braunbär Anzahl 46 3 49
% von Tierart 93,9% 6,1% 100,0%
% von Salmonella 2,4% 4,9% 2,4%
Elch Anzahl 456 3 459
% von Tierart 99,3% ,7% 100,0%
% von Salmonella 23,4% 4,9% 22,8%
Rentier Anzahl 391 3 394
% von Tierart 99,2% ,8% 100,0%
% von Salmonella 20,0% 4,9% 19,6%
Wolf Anzahl 104 2 106
% von Tierart 98,1% 1,9% 100,0%
% von Salmonella 5,3% 3,3% 5,3%
Luchs Anzahl 244 19 263
% von Tierart 92,8% 7,2% 100,0%
% von Salmonella 12,5% 31,1% 13,1%
Biber Anzahl 148 5 153
% von Tierart 96,7% 3,3% 100,0%
% von Salmonella 7,6% 8,2% 7,6%
Robbe Anzahl 432 19 451
% von Tierart 95,8% 4,2% 100,0%
% von Salmonella 22,1% 31,1% 22,4%
Gesamt Anzahl 1951 61 2012
% von Tierart 97,0% 3,0% 100,0%
% von Salmonella 100,0%
100,0% 100,0%
171
Tabelle 82: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 37,708 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 2012
Tabelle 83: Salmonella im zeitlichen Verlauf
Salmonella
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 26 1 27
% von Jahrzehnt 96,3% 3,7% 100,0%
% von Salmonella 1,3% 1,6% 1,3%
1961-70 Anzahl 176 7 183
% von Jahrzehnt 96,2% 3,8% 100,0%
% von Salmonella 9,0% 11,5% 9,1%
1971-80 Anzahl 487 18 505
% von Jahrzehnt 96,4% 3,6% 100,0%
% von Salmonella 25,0% 29,5% 25,1%
1981-90 Anzahl 545 17 562
% von Jahrzehnt 97,0% 3,0% 100,0%
% von Salmonella 27,9% 27,9% 27,9%
1991-2000
Anzahl 453 15 468
% von Jahrzehnt 96,8% 3,2% 100,0%
% von Salmonella 23,2% 24,6% 23,3%
> 2000 Anzahl 263 3 266
% von Jahrzehnt 98,9% 1,1% 100,0%
% von Salmonella 13,5% 4,9% 13,2%
Gesamt Anzahl 1950 61 2011
% von Jahrzehnt 97,0% 3,0% 100,0%
% von Salmonella 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 84: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 4,246 0,515
Anzahl der gültigen Fälle 2011
172
Pseudomonas Tabelle 85: Pseudomonas bei verschiedenen Tierarten
Pseudomonas
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 99 9 108
% von Tierart 91,7% 8,3% 100,0%
% von Pseudomonas 9,5% 16,7% 9,8%
Braunbär Anzahl 30 1 31
% von Tierart 96,8% 3,2% 100,0%
% von Pseudomonas 2,9% 1,9% 2,8%
Elch Anzahl 41 2 43
% von Tierart 95,3% 4,7% 100,0%
% von Pseudomonas 3,9% 3,7% 3,9%
Rentier Anzahl 285 6 291
% von Tierart 97,9% 2,1% 100,0%
% von Pseudomonas 27,2% 11,1% 26,5%
Wolf Anzahl 72 1 73
% von Tierart 98,6% 1,4% 100,0%
% von Pseudomonas 6,9% 1,9% 6,6%
Luchs Anzahl 79 0 79
% von Tierart 100,0% ,0% 100,0%
% von Pseudomonas 7,6% ,0% 7,2%
Biber Anzahl 134 8 142
% von Tierart 94,4% 5,6% 100,0%
% von Pseudomonas 12,8% 14,8% 12,9%
Robbe Anzahl 306 27 333
% von Tierart 91,9% 8,1% 100,0%
% von Pseudomonas 29,3% 50,0% 30,3%
Gesamt Anzahl 1046 54 1100
% von Tierart 95,1% 4,9% 100,0%
% von Pseudomonas 100,0%
100,0%
100,0%
173
Tabelle 86: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 21,458 0,003 Anzahl der gültigen Fälle 1100
Tabelle 87: Pseudomonas im zeitlichen Verlauf
Pseudomonas Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 22 0 22
% von Jahrzehnt 100,0%
,0% 100,0%
% von Pseudomonas 2,1% ,0% 2,0%
1961-70 Anzahl 128 4 132
% von Jahrzehnt 97,0% 3,0% 100,0%
% von Pseudomonas 12,2% 7,4% 12,0%
1971-80 Anzahl 200 6 206
% von Jahrzehnt 97,1% 2,9% 100,0%
% von Pseudomonas 19,1% 11,1% 18,7%
1981-90 Anzahl 243 17 260
% von Jahrzehnt 93,5% 6,5% 100,0%
% von Pseudomonas 23,2% 31,5% 23,6%
1991-2000 Anzahl 254 15 269
% von Jahrzehnt 94,4% 5,6% 100,0%
% von Pseudomonas 24,3% 27,8% 24,5%
> 2000 Anzahl 199 12 211
% von Jahrzehnt 94,3% 5,7% 100,0%
% von Pseudomonas 19,0% 22,2% 19,2%
Gesamt Anzahl 1046 54 1100
% von Jahrzehnt 95,1% 4,9% 100,0%
% von Pseudomonas 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 88: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 5,902 0,316
Anzahl der gültigen Fälle 1100
174
Anhang V Tabellen Häufigkeiten des Vorkommens der einzelnen Parasiten Die unten aufgeführten Tabellen zeigen den Anteil der parasitologischen
Untersuchungen für die einzelnen Erreger sowie Häufigkeit in Fallzahl und Prozent
der negativen und positiven Nachweise.
Tabelle 89: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
negativ 4435 98,6
positiv 64 1,4
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 90: Trichuris
Häufigkeit Prozent
negativ 4114 91,4
positiv 387 8,6
Gesamt 4501 100,0
Fehlend 888
Gesamt 5389
Tabelle 91: Capillaria
Häufigkeit Prozent
negativ 4316 95,9
positiv 183 4,1
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
175
Tabelle 92: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
negativ 3920 87,0
positiv 586 13,0
Gesamt 4506 100,0
Fehlend 883
Gesamt 5389
Tabelle 93: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
negativ 4289 95,3
positiv 211 4,7
Gesamt 4500 100,0
Fehlend 889
Gesamt 5389
Tabelle 94: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
negativ 4481 99,6
positiv 18 0,4
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 95: Nematoda
Häufigkeit Prozent
negativ 4212 93,4
positiv 296 6,6
Gesamt 4508 100,0
Fehlend 881
Gesamt 5389
176
Tabelle 96: Trematoda
Häufigkeit Prozent
negativ 4491 99,8
positiv 8 0,2
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 97: Cestoda
Häufigkeit Prozent
negativ 4471 99,4
positiv 28 0,6
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 98: Trichinella
Häufigkeit Prozent
negativ 4493 99,8
positiv 10 ,2
Gesamt 4503 100,0
Fehlend 886
Gesamt 5389
Tabelle 99: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
negativ 4482 99,5
positiv 23 0,5
Gesamt 4505 100,0
Fehlend 884
Gesamt 5389
177
Tabelle 100: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
negativ 4454 99,0
positiv 45 1,0
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 101: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
negativ 4447 98,8
positiv 53 1,2
Gesamt 4500 100,0
Fehlend 889
Gesamt 5389
Tabelle 102: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
negativ 4487 99,7
positiv 12 0,3
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 103: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
negativ 4486 99,7
positiv 13 0,3
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
178
Tabelle 104: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
negativ 4498 100,0
positiv 1 0,0
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 105: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
negativ 4495 99,9
positiv 4 0,1
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 106: Leishmania
Häufigkeit Prozent
negativ 4498 100,0
positiv 1 0,0
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 107: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
negativ 4496 99,9
positiv 3 0,1
Gesamt 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
179
Tabelle 108: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
negativ 4499 100,0
Fehlend 890
Gesamt 5389
Tabelle 109: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
negativ 4482 99,6
positiv 18 0,4
Gesamt 4500 100,0
Fehlend 889
Gesamt 5389
Tabelle 110: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
negativ 4499 100,0
positiv 2 0,0
Gesamt 4501 100,0
Fehlend 888
Gesamt 5389
Tabelle 111: Fasciola
Häufigkeit Prozent
negativ 4497 99,9
positiv 4 0,1
Gesamt 4501 100,0
Fehlend 888
Gesamt 5389
180
Anhang VI Tabellen der Parasiten bei verschiedenen Tierarten und im zeitlichen Verlauf
Die unten dargestellten Tabellen zeigen in Fallzahlen für die jeweilige Tierart sowie
prozentual bezogen auf die einzelne Tierart und die Erregergruppe den Anteil von
positiven und negativen parasitologischen Untersuchungsergebnissen. Zudem
werden die positiven und negativen Fallzahlen der einzelnen Parasiten in einem
Untersuchungsjahrzehnt aufgeführt. Positive wie negative Nachweise bezogen auf
das jeweilige Untersuchungsjahrzehnt sowie auf die Gesamtnachweise des
einzelnen Parasiten werden prozentual dargestellt. Die Tabellen beinhalten wie
weiter oben beschrieben nur die bedeutenden Erreger für die einzelnen Tierarten.
181
Strongyloidea Tabelle 112: Strongyloidea bei verschiedenen Tierarten
Strongyloidea
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 556 0 556
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Strongyloidea 12,5% 0,0% 12,4%
Braunbär Anzahl 432 1 433
% von Tierart 99,8% 0,2% 100,0%
% von Strongyloidea 9,7% 1,6% 9,6%
Elch Anzahl 753 23 776
% von Tierart 97,0% 3,0% 100,0%
% von Strongyloidea 17,0% 35,9% 17,2%
Rentier Anzahl 712 28 740
% von Tierart 96,2% 3,8% 100,0%
% von Strongyloidea 16,1% 43,8% 16,4%
Wolf Anzahl 481 0 481
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Strongyloidea 10,8% 0,0% 10,7%
Luchs Anzahl 665 0 665
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Strongyloidea 15,0% 0,0% 14,8%
Biber Anzahl 174 7 181
% von Tierart 96,1% 3,9% 100,0%
% von Strongyloidea 3,9% 10,9% 4,0%
Robbe Anzahl 662 5 667
% von Tierart 99,3% 0,7% 100,0%
% von Strongyloidea 14,9% 7,8% 14,8%
Gesamt Anzahl 4435 64 4499
% von Tierart 98,6% 1,4% 100,0%
% von Strongyloidea 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 113: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 81,384 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4499
182
Tabelle 114: Strongyloidea im zeitlichen Verlauf
Strongyloidea
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 46 1 47
% von Jahrzehnt 97,9% 2,1% 100,0%
% von Strongyloidea 1,0% 1,6% 1,0%
1961-70 Anzahl 214 9 223
% von Jahrzehnt 96,0% 4,0% 100,0%
% von Strongyloidea 4,8% 14,1% 5,0%
1971-80 Anzahl 714 9 723
% von Jahrzehnt 98,8% 1,2% 100,0%
% von Strongyloidea 16,1% 14,1% 16,1%
1981-90 Anzahl 1329 8 1337
% von Jahrzehnt 99,4% 0,6% 100,0%
% von Strongyloidea 30,0% 12,5% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1509 31 1540
% von Jahrzehnt 98,0% 2,0% 100,0%
% von Strongyloidea 34,0% 48,4% 34,2%
> 2000 Anzahl 622 6 628
% von Jahrzehnt 99,0% 1,0% 100,0%
% von Strongyloidea 14,0% 9,4% 14,0%
Gesamt Anzahl 4434 64 4498
% von Jahrzehnt 98,6% 1,4% 100,0%
% von Strongyloidea 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 115: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 22,467 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 4498
183
Trichuris Tabelle 116: Trichuris bei verschiedenen Tierarten
Trichuris
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 556 0 556
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Trichuris 13,5% 0,0% 12,4%
Braunbär Anzahl 430 3 433
% von Tierart 99,3% 0,7% 100,0%
% von Trichuris 10,5% 0,8% 9,6%
Elch Anzahl 452 326 778
% von Tierart 58,1% 41,9% 100,0%
% von Trichuris 11,0% 84,2% 17,3%
Rentier Anzahl 690 50 740
% von Tierart 93,2% 6,8% 100,0%
% von Trichuris 16,8% 12,9% 16,4%
Wolf Anzahl 481 0 481
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Trichuris 11,7% 0,0% 10,7%
Luchs Anzahl 657 8 665
% von Tierart 98,8% 1,2% 100,0%
% von Trichuris 16,0% 2,1% 14,8%
Biber Anzahl 181 0 181
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Trichuris 4,4% 0,0% 4,0%
Robbe Anzahl 667 0 667
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Trichuris 16,2% 0,0% 14,8%
Gesamt Anzahl 4114 387 4501
% von Tierart 91,4% 8,6% 100,0%
% von Trichuris 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 117: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 1359,267 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4501
184
Tabelle 118: Trichuris im zeitlichen Verlauf
Trichuris
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 46 1 47
% von Jahrzehnt 97,9% 2,1% 100,0%
% von Trichuris 1,1% 0,3% 1,0%
1961-70 Anzahl 205 20 225
% von Jahrzehnt 91,1% 8,9% 100,0%
% von Trichuris 5,0% 5,2% 5,0%
1971-80 Anzahl 633 90 723
% von Jahrzehnt 87,6% 12,4% 100,0%
% von Trichuris 15,4% 23,3% 16,1%
1981-90 Anzahl 1256 81 1337
% von Jahrzehnt 93,9% 6,1% 100,0%
% von Trichuris 30,5% 20,9% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1369 171 1540
% von Jahrzehnt 88,9% 11,1% 100,0%
% von Trichuris 33,3% 44,2% 34,2%
> 2000 Anzahl 604 24 628
% von Jahrzehnt 96,2% 3,8% 100,0%
% von Trichuris 14,7% 6,2% 14,0%
Gesamt Anzahl 4113 387 4500
% von Jahrzehnt 91,4% 8,6% 100,0%
% von Trichuris 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 119: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 57,662 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 4500
185
Capillaria Tabelle 120: Capillaria bei verschiedenen Tierarten
Capillaria
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 554 2 556
% von Tierart 99,6% 0,4% 100,0%
% von Capillaria 12,8% 1,1% 12,4%
Braunbär Anzahl 429 4 433
% von Tierart 99,1% 0,9% 100,0%
% von Capillaria 9,9% 2,2% 9,6%
Elch Anzahl 727 49 776
% von Tierart 93,7% 6,3% 100,0%
% von Capillaria 16,8% 26,8% 17,2%
Rentier Anzahl 667 73 740
% von Tierart 90,1% 9,9% 100,0%
% von Capillaria 15,5% 39,9% 16,4%
Wolf Anzahl 432 49 481
% von Tierart 89,8% 10,2% 100,0%
% von Capillaria 10,0% 26,8% 10,7%
Luchs
Anzahl 661 4 665
% von Tierart 99,4% 0,6% 100,0%
% von Capillaria 15,3% 2,2% 14,8%
Biber Anzahl 180 1 181
% von Tierart 99,4% 0,6% 100,0%
% von Capillaria 4,2% 0,5% 4,0%
Robbe Anzahl 666 1 667
% von Tierart 99,9% 0,1% 100,0%
% von Capillaria 15,4% 0,5% 14,8%
Gesamt Anzahl 4316 183 4499
% von Tierart 95,9% 4,1% 100,0%
% von Capillaria 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 121: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 202,933 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4499
186
Tabelle 122: Capillaria im zeitlichen Verlauf
Capillaria
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 47 0 47
% von Jahrzehnt 100,0% 0,0% 100,0%
% von Capillaria 1,1% 0,0% 1,0%
1961-70 Anzahl 220 3 223
% von Jahrzehnt 98,7% 1,3% 100,0%
% von Capillaria 5,1% 1,6% 5,0%
1971-80 Anzahl 689 34 723
% von Jahrzehnt 95,3% 4,7% 100,0%
% von Capillaria 16,0% 18,6% 16,1%
1981-90 Anzahl 1307 30 1337
% von Jahrzehnt 97,8% 2,2% 100,0%
% von Capillaria 30,3% 16,4% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1480 60 1540
% von Jahrzehnt 96,1% 3,9% 100,0%
% von Capillaria 34,3% 32,8% 34,2%
> 2000 Anzahl 572 56 628
% von Jahrzehnt 91,1% 8,9% 100,0%
% von Capillaria 13,3% 30,6% 14,0%
Gesamt Anzahl 4315 183 4498
% von Jahrzehnt 95,9% 4,1% 100,0%
% von Capillaria 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 123: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 56,326 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4498
187
Askaridoidea Tabelle 124: Askaridoidea bei verschiedenen Tierarten
Askaridoidea
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 367 192 559
% von Tierart 65,7% 34,3% 100,0%
% von Askaridoidea 9,4% 32,8% 12,4%
Braunbär Anzahl 351 83 434
% von Tierart 80,9% 19,1% 100,0%
% von Askaridoidea 9,0% 14,2% 9,6%
Elch Anzahl 776 0 776
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Askaridoidea 19,8% 0,0% 17,2%
Rentier Anzahl 737 3 740
% von Tierart 99,6% 0,4% 100,0%
% von Askaridoidea 18,8% 0,5% 16,4%
Wolf Anzahl 394 88 482
% von Tierart 81,7% 18,3% 100,0%
% von Askaridoidea 10,1% 15,0% 10,7%
Luchs Anzahl 465 201 666
% von Tierart 69,8% 30,2% 100,0%
% von Askaridoidea 11,9% 34,3% 14,8%
Biber Anzahl 180 1 181
% von Tierart 99,4% 0,6% 100,0%
% von Askaridoidea 4,6% 0,2% 4,0%
Robbe Anzahl 650 18 668
% von Tierart 97,3% 2,7% 100,0%
% von Askaridoidea 16,6% 3,1% 14,8%
Gesamt Anzahl 3920 586 4506
% von Tierart 87,0% 13,0% 100,0%
% von Askaridoidea 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 125: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 732,235 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4506
188
Tabelle 126: Askaridoidea im zeitlichen Verlauf
Askaridoidea Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 43 5 48
% von Jahrzehnt 89,6% 10,4% 100,0%
% von Askaridoidea 1,1% 0,9% 1,1%
1961-70 Anzahl 176 48 224
% von Jahrzehnt 78,6% 21,4% 100,0%
% von Askaridoidea 4,5% 8,2% 5,0%
1971-80 Anzahl 646 80 726
% von Jahrzehnt 89,0% 11,0% 100,0%
% von Askaridoidea 16,5% 13,7% 16,1%
1981-90 Anzahl 1140 199 1339
% von Jahrzehnt 85,1% 14,9% 100,0%
% von Askaridoidea 29,1% 34,0% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1353 187 1540
% von Jahrzehnt 87,9% 12,1% 100,0%
% von Askaridoidea 34,5% 31,9% 34,2%
> 2000 Anzahl 561 67 628
% von Jahrzehnt 89,3% 10,7% 100,0%
% von Askaridoidea 14,3% 11,4% 13,9%
Gesamt Anzahl 3919 586 4505
% von Jahrzehnt 87,0% 13,0% 100,0%
% von Askaridoidea 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 127: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 24,981 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4505
189
Kokzidia Tabelle 128: Kokzidia bei verschiedenen Tierarten
Kokzidia
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 548 8 556
% von Tierart 98,6% 1,4% 100,0%
% von Kokzidia 12,8% 3,8% 12,4%
Braunbär Anzahl 431 2 433
% von Tierart 99,5% 0,5% 100,0%
% von Kokzidia 10,0% 0,9% 9,6%
Elch Anzahl 756 20 776
% von Tierart 97,4% 2,6% 100,0%
% von Kokzidia 17,6% 9,5% 17,2%
Rentier Anzahl 696 44 740
% von Tierart 94,1% 5,9% 100,0%
% von Kokzidia 16,2% 20,9% 16,4%
Wolf Anzahl 415 66 481
% von Tierart 86,3% 13,7% 100,0%
% von Kokzidia 9,7% 31,3% 10,7%
Luchs Anzahl 627 39 666
% von Tierart 94,1% 5,9% 100,0%
% von Kokzidia 14,6% 18,5% 14,8%
Biber Anzahl 176 5 181
% von Tierart 97,2% 2,8% 100,0%
% von Kokzidia 4,1% 2,4% 4,0%
Robbe Anzahl 640 27 667
% von Tierart 96,0% 4,0% 100,0%
% von Kokzidia 14,9% 12,8% 14,8%
Gesamt Anzahl 4289 211 4500
% von Tierart 95,3% 4,7% 100,0%
% von Kokzidia 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 129: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 132,768 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4500
190
Tabelle 130: Kokzidia im zeitlichen Verlauf
Kokzidia
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 47 0 47
% von Jahrzehnt 100,0% 0,0% 100,0%
% von Kokzidia 1,1% 0,0% 1,0%
1961-70 Anzahl 215 8 223
% von Jahrzehnt 96,4% 3,6% 100,0%
% von Kokzidia 5,0% 3,8% 5,0%
1971-80 Anzahl 705 18 723
% von Jahrzehnt 97,5% 2,5% 100,0%
% von Kokzidia 16,4% 8,5% 16,1%
1981-90 Anzahl 1283 55 1338
% von Jahrzehnt 95,9% 4,1% 100,0%
% von Kokzidia 29,9% 26,1% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1448 92 1540
% von Jahrzehnt 94,0% 6,0% 100,0%
% von Kokzidia 33,8% 43,6% 34,2%
> 2000 Anzahl 590 38 628
% von Jahrzehnt 93,9% 6,1% 100,0%
% von Kokzidia 13,8% 18,0% 14,0%
Gesamt Anzahl 4288 211 4499
% von Jahrzehnt 95,3% 4,7% 100,0%
% von Kokzidia 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 131: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 20,038 0,001
Anzahl der gültigen Fälle 4499
191
Nematoda Tabelle 132: Nematoda bei verschiedenen Tierarten
Nematoda Gesamt
negativ positiv negativ
Tierart Eisbär Anzahl 533 27 560
% von Tierart 95,2% 4,8% 100,0%
% von Nematoda 12,7% 9,1% 12,4%
Braunbär Anzahl 413 20 433
% von Tierart 95,4% 4,6% 100,0%
% von Nematoda 9,8% 6,8% 9,6%
Elch Anzahl 710 66 776
% von Tierart 91,5% 8,5% 100,0%
% von Nematoda 16,9% 22,3% 17,2%
Rentier Anzahl 622 119 741
% von Tierart 83,9% 16,1% 100,0%
% von Nematoda 14,8% 40,2% 16,4%
Wolf Anzahl 458 23 481
% von Tierart 95,2% 4,8% 100,0%
% von Nematoda 10,9% 7,8% 10,7%
Luchs Anzahl 660 5 665
% von Tierart 99,2% ,8% 100,0%
% von Nematoda 15,7% 1,7% 14,8%
Biber Anzahl 178 3 181
% von Tierart 98,3% 1,7% 100,0%
% von Nematoda 4,2% 1,0% 4,0%
Robbe Anzahl 638 33 671
% von Tierart 95,1% 4,9% 100,0%
% von Nematoda 15,1% 11,1% 14,9%
Gesamt Anzahl 4212 296 4508
% von Tierart 93,4% 6,6% 100,0%
% von Nematoda 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 133: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 168,282 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 4508
192
Tabelle 134: Nematoda im zeitlichen Verlauf
Nematoda
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 42 5 47
% von Jahrzehnt 89,4% 10,6% 100,0%
% von Nematoda 1,0% 1,7% 1,0%
1961-70 Anzahl 192 36 228
% von Jahrzehnt 84,2% 15,8% 100,0%
% von Nematoda 4,6% 12,2% 5,1%
1971-80 Anzahl 636 87 723
% von Jahrzehnt 88,0% 12,0% 100,0%
% von Nematoda 15,1% 29,4% 16,0%
1981-90 Anzahl 1280 57 1337
% von Jahrzehnt 95,7% 4,3% 100,0%
% von Nematoda 30,4% 19,3% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1464 80 1544
% von Jahrzehnt 94,8% 5,2% 100,0%
% von Nematoda 34,8% 27,0% 34,3%
> 2000 Anzahl 597 31 628
% von Jahrzehnt 95,1% 4,9% 100,0%
% von Nematoda 14,2% 10,5% 13,9%
Gesamt Anzahl 4211 296 4507
% von Jahrzehnt 93,4% 6,6% 100,0%
% von Nematoda 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 135: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 87,194 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4507
193
Trichostrongyloidea Tabelle 136: Trichostrongyloidea bei verschiedenen Tierarten
Trichostrongyloidea
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 556 0 556
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 12,5% 0,0% 12,4% Braunbär Anzahl 433 0 433
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 9,7% 0,0% 9,6%
Elch Anzahl 770 6 776
% von Tierart 99,2% 0,8% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 17,3% 11,3% 17,2%
Rentier Anzahl 706 34 740
% von Tierart 95,4% 4,6% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 15,9% 64,2% 16,4%
Wolf Anzahl 472 9 481
% von Tierart 98,1% 1,9% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 10,6% 17,0% 10,7%
Luchs Anzahl 665 0 665
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 15,0% 0,0% 14,8%
Biber Anzahl 180 1 181
% von Tierart 99,4% 0,6% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 4,0% 1,9% 4,0%
Robbe Anzahl 665 3 668
% von Tierart 99,6% 0,4% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 15,0% 5,7% 14,8%
Gesamt Anzahl 4447 53 4500
% von Tierart 98,8% 1,2% 100,0%
% von Trichostrongyloidea 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 137: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 100,672 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 4500
194
Tabelle 138: Trichostrongyloidea im zeitlichen Verlauf
Tricho-strongyloidea
Gesamt negativ positiv
Jahrzehnt 1950-60 Anzahl 47 0 47
% von Jahrzehnt 100,0%
0,0% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
1,1% 0,0% 1,0%
1961-70 Anzahl 215 9 224
% von Jahrzehnt 96,0% 4,0% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
4,8% 17,0% 5,0%
1971-80 Anzahl 711 12 723
% von Jahrzehnt 98,3% 1,7% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
16,0% 22,6% 16,1%
1981-90 Anzahl 1330 7 1337
% von Jahrzehnt 99,5% 0,5% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
29,9% 13,2% 29,7%
1991-2000 Anzahl 1529 11 1540
% von Jahrzehnt 99,3% 0,7% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
34,4% 20,8% 34,2%
> 2000 Anzahl 614 14 628
% von Jahrzehnt 97,8% 2,2% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
13,8% 26,4% 14,0%
Gesamt Anzahl 4446 53 4499
% von Jahrzehnt 98,8% 1,2% 100,0%
% von Trichostrongyloidea
100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 139: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 31,245 0,000
Anzahl der gültigen Fälle 4499
195
Anhang VII Häufigkeiten des Vorkommens der einzelnen Viren Die unten aufgeführten Tabellen zeigen den Anteil der virologischen Untersuchungen
für die einzelnen Erreger sowie Häufigkeit in Fallzahl und Prozent der negativen und
positiven Nachweise.
Tabelle 140: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
negativ 94 95,9
positiv 4 4,1
Gesamt 98 100,0
Fehlend 5291
Gesamt 5389
Tabelle 141: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
negativ 68 94,4
positiv 4 5,6
Gesamt 72 100,0
Fehlend 5317
Gesamt 5389
Tabelle 142: MCFV
Häufigkeit Prozent
negativ 57 96,6
positiv 2 3,4
Gesamt 59 100,0
Fehlend 5330
Gesamt 5389
196
Tabelle 143: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
negativ 89 91,8
positiv 8 8,2
Gesamt 97 100,0
Fehlend 5292
Gesamt 5389
Tabelle 144: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
Tabelle 145: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
negativ 66 77,6
positiv 19 22,4
Gesamt 85 100,0
Fehlend 5304
Gesamt 5389
Tabelle 146: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 96,4
positiv 2 3,6
Gesamt 56 100,0
Fehlend 5333
Gesamt 5389
Tabelle 147: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
negativ 53 96,4
positiv 2 3,6
Gesamt 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
197
Tabelle 148: FIPV
Häufigkeit Prozent
negativ 57 96,6
positiv 2 3,4
Gesamt 59 100,0
Fehlend 5330
Gesamt 5389
Tabelle 149: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
negativ 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
Tabelle 150: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 84,4
positiv 10 15,6
Gesamt 64 100,0
Fehlend 5325
Gesamt 5389
Tabelle 151: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 98,2
positiv 1 1,8
Gesamt 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
Tabelle 152: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
198
Tabelle 153: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
Tabelle 154: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
Tabelle 155: Felines Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
negativ 66 98,5
positiv 1 1,5
Gesamt 67 100,0
Fehlend 5322
Gesamt 5389
Tabelle 156: FIV
Häufigkeit Prozent
negativ 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
Tabelle 157: CAEV
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
199
Tabelle 158: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 98,2
positiv 1 1,8
Gesamt 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
Tabelle 159: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 98,2
positiv 1 1,8
Gesamt 55 100,0
Fehlend 5334
Gesamt 5389
Tabelle 160: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
negativ 54 100,0
Fehlend 5335
Gesamt 5389
200
Anhang VIII Tabellen der Viren bei verschiedenen Tierarten Die unten dargestellten Tabellen zeigen in Fallzahlen für die jeweilige Tierart sowie
prozentual bezogen auf die einzelne Tierart und die Erregergruppe den Anteil von
positiven und negativen Untersuchungsergebnissen ausgewählter Viren, die wie
oben beschrieben von größerer Bedeutung für die untersuchten Tierarten dieser
Arbeit sind.
Parvovirus Tabelle 161: Parvovirus bei verschiedenen Tierarten
Parvovirus
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 7 0 7
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Parvovirus 10,6% 0,0% 8,2%
Elch Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Parvovirus 4,5% 0,0% 3,5%
Rentier Anzahl 21 0 21
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Parvovirus 31,8% 0,0% 24,7%
Wolf Anzahl 12 15 27
% von Tierart 44,4% 55,6% 100,0%
% von Parvovirus 18,2% 78,9% 31,8%
Luchs Anzahl 5 3 8
% von Tierart 62,5% 37,5% 100,0%
% von Parvovirus 7,6% 15,8% 9,4% Biber Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Parvovirus 4,5% 0,0% 3,5%
Robbe Anzahl 15 1 16
% von Tierart 93,8% 6,3% 100,0%
% von Parvovirus 22,7% 5,3% 18,8%
Gesamt Anzahl 66 19 85
% von Tierart 77,6% 22,4% 100,0%
% von Parvovirus 100,0% 100,0% 100,0%
201
Tabelle 162: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 30,385 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 85
BVD / MD Tabelle 163: BVD / MD bei verschiedenen Tierarten
BVD / MD Gesamt
negativ positiv negativ
Tierart Eisbär Anzahl 7 0 7
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von BVD/MD 7,4% 0,0% 7,1%
Elch Anzahl 12 1 13
% von Tierart 92,3% 7,7% 100,0%
% von BVD/MD 12,8% 25,0% 13,3%
Rentier Anzahl 52 3 55
% von Tierart 94,5% 5,5% 100,0%
% von BVD/MD 55,3% 75,0% 56,1%
Wolf Anzahl 5 0 5
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von BVD/MD 5,3% 0,0% 5,1%
Luchs Anzahl 4 0 4
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von BVD/MD 4,3% 0,0% 4,1%
Biber Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von BVD/MD 3,2% 0,0% 3,1%
Robbe Anzahl 11 0 11
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von BVD/MD 11,7% 0,0% 11,2%
Gesamt Anzahl 94 4 98
% von Tierart 95,9% 4,1% 100,0%
% von BVD/MD 100,0%
100,0%
100,0%
Tabelle 164: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 1,974 0,922 Anzahl der gültigen Fälle 98
202
BHV - 1 Tabelle 165: BHV - 1 bei verschiedenen Tierarten
BHV - 1 Gesamt
negativ positiv negativ
Tierart Eisbär Anzahl 7 0 7
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 10,3% 0,0% 9,7%
Elch Anzahl 6 0 6
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 8,8% 0,0% 8,3%
Rentier Anzahl 32 4 36
% von Tierart 88,9% 11,1% 100,0%
% von BHV-1 47,1% 100,0% 50,0%
Wolf Anzahl 5 0 5
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 7,4% 0,0% 6,9%
Luchs Anzahl 4 0 4
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 5,9% 0,0% 5,6%
Biber Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 4,4% 0,0% 4,2%
Robbe Anzahl 11 0 11
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von BHV-1 16,2% 0,0% 15,3%
Gesamt Anzahl 68 4 72
% von Tierart 94,4% 5,6% 100,0%
% von BHV-1 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 166: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 4,235 0,645 Anzahl der gültigen Fälle 72
203
MCFV Tabelle 167: MCFV bei verschiedenen Tierarten
MCFV Gesamt
negativ positiv negativ
Tierart Eisbär Anzahl 7 0 7
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 12,3% 0,0% 11,9%
Elch Anzahl 4 2 6
% von Tierart 66,7% 33,3% 100,0%
% von MCFV 7,0% 100,0% 10,2%
Rentier Anzahl 23 0 23
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 40,4% 0,0% 39,0%
Wolf Anzahl 5 0 5
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 8,8% 0,0% 8,5%
Luchs Anzahl 4 0 4
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 7,0% 0,0% 6,8%
Biber Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 5,3% 0,0% 5,1%
Robbe Anzahl 11 0 11
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von MCFV 19,3% 0,0% 18,6%
Gesamt Anzahl 57 2 59
% von Tierart 96,6% 3,4% 100,0%
% von MCFV 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 168: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 18,287 0,006 Anzahl der gültigen Fälle 59
204
Staupevirus Tabelle 169: Staupevirus bei verschiedenen Tierarten
Staupevirus
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 8 0 8
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Staupevirus 9,0% 0,0% 8,2%
Elch Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Staupevirus 3,4% 0,0% 3,1%
Rentier Anzahl 21 0 21
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Staupevirus 23,6% 0,0% 21,6%
Wolf Anzahl 16 1 17
% von Tierart 94,1% 5,9% 100,0%
% von Staupevirus 18,0% 12,5% 17,5%
Luchs Anzahl 4 0 4
% von Tierart 100,0% 0,0% 100,0%
% von Staupevirus 4,5% 0,0% 4,1%
Biber Anzahl 7 3 10
% von Tierart 70,0% 30,0% 100,0%
% von Staupevirus 7,9% 37,5% 10,3%
Robbe Anzahl 30 4 34
% von Tierart 88,2% 11,8% 100,0%
% von Staupevirus 33,7% 50,0% 35,1%
Gesamt Anzahl 89 8 97
% von Tierart 91,8% 8,2% 100,0%
% von Staupevirus 100,0% 100,0% 100,0%
Tabelle 170: Chi-Quadrat-Test
Wert Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 10,170 0,118 Anzahl der gültigen Fälle 97
205
Orthopoxvirus Tabelle 171: Orthopoxvirus bei verschiedenen Tierarten
Orthopoxvirus
Gesamt negativ positiv
Tierart Eisbär Anzahl 7 0 7
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 13,0% 0,0% 10,9%
Elch Anzahl 3 0 3
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 5,6% 0,0% 4,7%
Rentier Anzahl 21 0 21
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 38,9% 0,0% 32,8%
Wolf Anzahl 5 0 5
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 9,3% 0,0% 7,8%
Luchs Anzahl 4 0 4
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 7,4% 0,0% 6,3%
Biber Anzahl 3 10 13
% von Tierart 23,1% 76,9% 100,0%
% von Orthopoxvirus 5,6% 100,0% 20,3%
Robbe Anzahl 11 0 11
% von Tierart 100,0%
0,0% 100,0%
% von Orthopoxvirus 20,4% 0,0% 17,2%
Gesamt Anzahl 54 10 64
% von Tierart 84,4% 15,6% 100,0%
% von Orthopoxvirus 100,0%
100,0% 100,0%
Tabelle 172: Chi-Quadrat-Test
Wert df Signifikanz
Chi-Quadrat nach Pearson 46,496 6 0,000 Anzahl der gültigen Fälle 64
206
Anhang IX Erreger beim Biber
Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Biber.
Tabelle 173: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 106 72,1
positiv 41 27,9
Gesamt 147 100,0
Fehlend System 83
Gesamt 230
Tabelle 174: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 132 92,3
positiv 11 7,7
Gesamt 143 100,0
Fehlend System 87
Gesamt 230
Tabelle 175: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 137 96,5
positiv 5 3,5
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
207
Tabelle 176: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 177: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 148 96,7
positiv 5 3,3
Gesamt 153 100,0
Fehlend System 77
Gesamt 230
Tabelle 178: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 132 93,0
positiv 10 7,0
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 179: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 141 99,3
positiv 1 0,7
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tab. 179: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
208
Tabelle 180: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 134 94,4
positiv 8 5,6
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 181: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 141 99,3
positiv 1 0,7
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 182: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 183: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 141 99,3
positiv 1 0,7
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 184: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 137 96,5
positiv 5 3,5
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
209
Tabelle 185: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 99,3
positiv 1 0,7
Gesamt 143 100,0
Fehlend System 87
Gesamt 230
Tabelle 186: Campylobakter /Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 187: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 188: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 189: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
210
Tabelle 190: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 191: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 141 99,3
positiv 1 0,7
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 192: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 193: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
Tabelle 194: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 134 94,4
positiv 8 5,6
Gesamt 142 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 230
211
Tabelle 195: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 174 96,1
positiv 7 3,9
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 196: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 197: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 180 99,4
positiv 1 ,6
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 198: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 180 99,4
positiv 1 ,6
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 199: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 176 97,2
positiv 5 2,8
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
212
Tabelle 200: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 201: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 178 98,3
positiv 3 1,7
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 202: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 180 99,4
positiv 1 0,6
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 203: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 204: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
213
Tabelle 205: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 206: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 207: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 180 99,4
positiv 1 0,6
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 208: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 209: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 179 98,9
positiv 2 1,1
Gesamt 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
214
Tabelle 210: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 211: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 212: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 213: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 214: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 215: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
215
Tabelle 216: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 217: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 181 100,0
Fehlend System 49
Gesamt 230
Tabelle 218: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 219: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 220: MCFV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
216
Tabelle 221: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 70,0
positiv 3 30,0
Gesamt 10 100,0
Fehlend System 220
Gesamt 230
Tabelle 222: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 223: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 224: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 225: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 2 50,0
positiv 2 50,0
Gesamt 4 100,0
Fehlend System 226
Gesamt 230
217
Tabelle 226: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 227: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 228: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 23,1
positiv 10 76,9
Gesamt 13 100,0
Fehlend System 217
Gesamt 230
Tabelle 229: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 230: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
218
Tabelle 231: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 232: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 233: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 234: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 235: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
Tabelle 236: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
219
Tabelle 237: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 75,0
positiv 1 25,0
Gesamt 4 100,0
Fehlend System 226
Gesamt 230
Tabelle 238: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 227
Gesamt 230
220
Anhang X Erreger beim Wolf Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Wolf.
Tabelle 239: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 41 55,4
positiv 33 44,6
Gesamt 74 100,0
Fehlend System 466
Gesamt 540
Tabelle 240: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 63 86,3
positiv 10 13,7
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 241: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 66 90,4
positiv 7 9,6
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
221
Tabelle 242: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 68 93,2
positiv 5 6,8
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 243: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 104 98,1
positiv 2 1,9
Gesamt 106 100,0
Fehlend System 434
Gesamt 540
Tabelle 244: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 75 100,0
Fehlend System 465
Gesamt 540
Tabelle 245: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 74 100,0
Fehlend System 466
Gesamt 540
Tabelle 246: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
222
Tabelle 247: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 72 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 248: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 72 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 249: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 250: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 251: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 72 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
223
Tabelle 252: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 253: Campylobakter /Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 254: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 255: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 256: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 257: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
224
Tabelle 258: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 72 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 259: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 72 98,6
positiv 1 1,4
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 260: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 261: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 68 93,2
positiv 5 6,8
Gesamt 73 100,0
Fehlend System 467
Gesamt 540
Tabelle 262: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
225
Tabelle 263: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 264: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 432 89,8
positiv 49 10,2
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 265: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 394 81,7
positiv 88 18,3
Gesamt 482 100,0
Fehlend System 58
Gesamt 540
Tabelle 266: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 415 86,3
positiv 66 13,7
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 267: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 478 99,4
positiv 3 0,6
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
226
Tabelle 268: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 458 95,2
positiv 23 4,8
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 269: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 270: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 472 98,1
positiv 9 1,9
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 271: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 272: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
227
Tabelle 273: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 472 98,1
positiv 9 1,9
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 274: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 472 98,1
positiv 9 1,9
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 275: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 276: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 277: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
228
Tabelle 278: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 279: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 280: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 479 99,6
positiv 2 0,4
Gesamt 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 281: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 282: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
229
Tabelle 283: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 284: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 481 100,0
Fehlend System 59
Gesamt 540
Tabelle 285: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 286: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 287: MCFV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
230
Tabelle 288: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 16 94,1
positiv 1 5,9
Gesamt 17 100,0
Fehlend System 523
Gesamt 540
Tabelle 289: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 290: Parvovirus
Häufigkeit Prozene
Gültig negativ 12 44,4
positiv 15 55,6
Gesamt 27 100,0
Fehlend System 513
Gesamt 540
Tabelle 291: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 292: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
231
Tabelle 293: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 294: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 295: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 296: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 297: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 298: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
232
Tabelle 299: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 300: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 301: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 302: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 303: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
Tabelle 304: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
233
Tabelle 305: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 535
Gesamt 540
234
Anhang XI Erreger beim Braunbären Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Braunbären.
Tabelle 306: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 13 41,9
positiv 18 58,1
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 307: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 28 90,3
positiv 3 9,7
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 308: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 28 90,3
positiv 3 9,7
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
235
Tabelle 309: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 26 83,9
positiv 5 16,1
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 310: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 46 93,9
positiv 3 6,1
Gesamt 49 100,0
Fehlend System 409
Gesamt 458
Tabelle 311: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 32 100,0
Fehlend System 426
Gesamt 458
Tabelle 312: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 33 100,0
Fehlend System 425
Gesamt 458
Tabelle 313: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
236
Tabelle 314: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 30 96,8
positiv 1 3,2
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 315: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 316: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 317: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 318: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 30 96,8
positiv 1 3,2
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
237
Tabelle 319: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 320: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 321: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 322: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 323: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 324: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
238
Tabelle 325: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 326: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 327: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 328: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 30 96,8
positiv 1 3,2
Gesamt 31 100,0
Fehlend System 427
Gesamt 458
Tabelle 329: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 432 99,8
positiv 1 0,2
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
239
Tabelle 330: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 430 99,3
positiv 3 0,7
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 331: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 429 99,1
positiv 4 0,9
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 332: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 351 80,9
positiv 83 19,1
Gesamt 434 100,0
Fehlend System 24
Gesamt 458
Tabelle 333: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 431 99,5
positiv 2 0,5
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
240
Tabelle 334: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 432 99,8
positiv 1 0,2
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 335: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 413 95,4
positiv 20 4,6
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 336: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 337: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 338: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
241
Tabelle 339: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 340: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 426 98,4
positiv 7 1,6
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 341: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 342: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 343: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
242
Tabelle 344: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 345: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 346: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 347: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 348: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 349: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
243
Tabelle 350: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
Tabelle 351: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 432 99,8
positiv 1 0,2
Gesamt 433 100,0
Fehlend System 25
Gesamt 458
244
Anhang XII Erreger beim Eisbären Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Eisbären.
Tabelle 352: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 33 30,0
positiv 77 70,0
Gesamt 110 100,0
Fehlend System 527
Gesamt 637
Tabelle 353: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 80 74,1
positiv 28 25,9
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 354: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 97 89,8
positiv 11 10,2
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
245
Tabelle 355: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 77 69,4
positiv 34 30,6
Gesamt 111 100,0
Fehlend System 526
Gesamt 637
Tabelle 356: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 130 94,9
positiv 7 5,1
Gesamt 137 100,0
Fehlend System 500
Gesamt 637
Tabelle 357: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 109 100,0
Fehlend System 528
Gesamt 637
Tabelle 358: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 109 100,0
Fehlend System 528
Gesamt 637
Tabelle 359: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
246
Tabelle 360: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 99 91,7
positiv 9 8,3
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 361: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 102 94,4
positiv 6 5,6
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 362: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 363: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 364: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 106 98,1
positiv 2 1,9
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
247
Tabelle 365: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 107 99,1
positiv 1 0,9
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 366: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 106 98,1
positiv 2 1,9
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 367: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 368: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 369: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 107 99,1
positiv 1 0,9
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
248
Tabelle 370: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 371: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 372: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 373: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
Tabelle 374: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 103 95,4
positiv 5 4,6
Gesamt 108 100,0
Fehlend System 529
Gesamt 637
249
Tabelle 375: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 376: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 377: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 554 99,6
positiv 2 0,4
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 378: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 367 65,7
positiv 192 34,3
Gesamt 559 100,0
Fehlend System 78
Gesamt 637
Tabelle 379: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 548 98,6
positiv 8 1,4
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
250
Tabelle 380: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 554 99,6
positiv 2 0,4
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 381: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 533 95,2
positiv 27 4,8
Gesamt 560 100,0
Fehlend System 77
Gesamt 637
Tabelle 382: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 383: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 555 99,8
positiv 1 0,2
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 384: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 552 98,6
positiv 8 1,4
Gesamt 560 100,0
Fehlend System 77
Gesamt 637
251
Tabelle 385: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 386: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 550 98,9
positiv 6 1,1
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 387: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 388: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 389: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 554 99,6
positiv 2 0,4
Gesamt 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
252
Tabelle 390: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 391: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 392: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 393: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 394: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 395: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
253
Tabelle 396: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 397: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 556 100,0
Fehlend System 81
Gesamt 637
Tabelle 398: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 399: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 400: MCVF
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 401: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 8 100,0
Fehlend System 629
Gesamt 637
254
Tabelle 402: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 403: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 404: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 405: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 406: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 9 100,0
Fehlend System 628
Gesamt 637
Tabelle 407: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
255
Tabelle 408: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 409: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 410: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 411: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 412: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 413: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
256
Tabelle 414: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 415: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 416: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 417: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
Tabelle 418: Coronavirus
Häufigkeit Prozente
Gültig negativ 7 100,0
Fehlend System 630
Gesamt 637
257
Anhang XIII Erreger beim Luchs
Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Luchs.
Tabelle 419: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 44 53,0
positiv 39 47,0
Gesamt 83 100,0
Fehlend System 671
Gesamt 754
Tabelle 420: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 66 79,5
positiv 17 20,5
Gesamt 83 100,0
Fehlend System 671
Gesamt 754
Tabelle 421: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
258
Tabelle 422: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 76 96,2
positiv 3 3,8
Gesamt 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 423: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 244 92,8
positiv 19 7,2
Gesamt 263 100,0
Fehlend System 491
Gesamt 754
Tabelle 424: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 80 100,0
Fehlend System 674
Gesamt 754
Tabelle 425: Mykobacterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 81 100,0
Fehlend System 673
Gesamt 754
Tabelle 426: Mykobacterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
259
Tabelle 427: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 428: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 76 96,2
positiv 3 3,8
Gesamt 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 429: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 430: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 78 98,7
positiv 1 1,3
Gesamt 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 431: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 78 98,7
positiv 1 1,3
Gesamt 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
260
Tabelle 432: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 78 98,7
positiv 1 1,3
Gesamt 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 433: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 434: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 435: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 436: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
261
Tabelle 437: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 438: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 439: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 440: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 79 100,0
Fehlend System 675
Gesamt 754
Tabelle 441: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 70 87,5
positiv 10 12,5
Gesamt 80 100,0
Fehlend System 674
Gesamt 754
262
Tabelle 442: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 443: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 657 98,8
positiv 8 1,2
Gesamt 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 444: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 661 99,4
positiv 4 0,6
Gesamt 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 445: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 465 69,8
positiv 201 30,2
Gesamt 666 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 754
Tabelle 446: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 627 94,1
positiv 39 5,9
Gesamt 666 100,0
Fehlend System 88
Gesamt 754
263
Tabelle 447: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 663 99,7
positiv 2 0,3
Gesamt 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 448: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 660 99,2
positiv 5 0,8
Gesamt 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 449: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 450: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 451: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
264
Tabelle 452: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 453: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 648 97,4
positiv 17 2,6
Gesamt 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 454: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 455: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 456: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
265
Tabelle 457: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 458: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 459: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 460: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 461: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 462: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
266
Tabelle 463: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 464: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 100,0
Fehlend System 89
Gesamt 754
Tabelle 465: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 466: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 467. MCVF
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 468: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
267
Tabelle 469: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 470: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 62,5
positiv 3 37,5
Gesamt 8 100,0
Fehlend System 746
Gesamt 754
Tabelle 471: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 66,7
positiv 2 33,3
Gesamt 6 100,0
Fehlend System 748
Gesamt 754
Tabelle 472: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 473: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 71,4
positiv 2 28,6
Gesamt 7 100,0
Fehlend System 747
Gesamt 754
268
Tabelle 474: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 749
Gesamt 754
Tabelle 475: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 476: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 477: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 478: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 479: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
269
Tabelle 480: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 16 94,1
positiv 1 5,9
Gesamt 17 100,0
Fehlend System 737
Gesamt 754
Tabelle 481: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 5 100,0
Fehlend System 749
Gesamt 754
Tabelle 482: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 483: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 484: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0
Fehlend System 750
Gesamt 754
Tabelle 485: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 100,0 Fehlend System 750 Gesamt 754
270
Anhang XIV Erreger bei der Robbe Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens bei Robben.
Tabelle 486: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 180 52,0
positiv 166 48,0
Gesamt 346 100,0
Fehlend System 569
Gesamt 915
Tabelle 487: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 242 72,2
positiv 93 27,8
Gesamt 335 100,0
Fehlend System 580
Gesamt 915
Tabelle 488: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 314 94,3
positiv 19 5,7
Gesamt 333 100,0
Fehlend System 582
Gesamt 915
271
Tabelle 489: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 309 92,8
positiv 24 7,2
Gesamt 333 100,0
Fehlend System 582
Gesamt 915
Tabelle 490: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 432 95,8
positiv 19 4,2
Gesamt 451 100,0
Fehlend System 464
Gesamt 915
Tabelle 491: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 341 99,4
positiv 2 0,6
Gesamt 343 100,0
Fehlend System 572
Gesamt 915
Tabelle 492: Mykobacterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 334 98,8
positiv 4 1,2
Gesamt 338 100,0
Fehlend System 577
Gesamt 915
Tabelle 493: Mykobacterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
272
Tabelle 494: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 306 91,9
positiv 27 8,1
Gesamt 333 100,0
Fehlend System 582
Gesamt 915
Tabelle 495: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 326 98,2
positiv 6 1,8
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 496: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 497: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 331 99,7
positiv 1 0,3
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 498: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 319 96,1
positiv 13 3,9
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
273
Tabelle 499: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 328 98,8
positiv 4 1,2
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 500: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 329 99,1
positiv 3 0,9
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 501: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozente
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 502: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 503: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 331 99,7
positiv 1 0,3
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
274
Tabelle 504: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 331 99,7
positiv 1 0,3
Gesamt 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 505: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 506: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 507: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 332 100,0
Fehlend System 583
Gesamt 915
Tabelle 508: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 304 91,0
positiv 30 9,0
Gesamt 334 100,0
Fehlend System 581
Gesamt 915
275
Tabelle 509: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 662 99,3
positiv 5 0,7
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 510: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 511: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 666 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 512: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 650 97,3
positiv 18 2,7
Gesamt 668 100,0
Fehlend System 247
Gesamt 915
Tabelle 513: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 640 96,0
positiv 27 4,0
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
276
Tabelle 514: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 664 99,6
positiv 3 0,4
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 515: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 638 95,1
positiv 33 4,9
Gesamt 671 100,0
Fehlend System 244
Gesamt 915
Tabelle 516: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 660 99,0
positiv 7 1,0
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 517: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 657 98,5
positiv 10 1,5
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 518: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
277
Tabelle 519: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 662 98,4
positiv 11 1,6
Gesamt 673 100,0
Fehlend System 242
Gesamt 915
Tabelle 520: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 662 99,3
positiv 5 0,7
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 521: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 665 99,6
positiv 3 0,4
Gesamt 668 100,0
Fehlend System 247
Gesamt 915
Tabelle 522: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 659 98,8
positiv 8 1,2
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
278
Tabelle 523: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 666 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 524: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 666 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 525: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 663 99,4
positiv 4 0,6
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 526: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 527: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 666 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
279
Tabelle 528: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 529: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 651 97,5
positiv 17 2,5
Gesamt 668 100,0
Fehlend System 247
Gesamt 915
Tabelle 530: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 531: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 100,0
Fehlend System 248
Gesamt 915
Tabelle 532: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
280
Tabelle 533: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 534: MCFV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 535: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 30 88,2
positiv 4 11,8
Gesamt 34 100,0
Fehlend System 881
Gesamt 915
Tabelle 536: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 537: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 15 93,8
positiv 1 6,3
Gesamt 16 100,0
Fehlend System 899
Gesamt 915
281
Tabelle 538: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 539: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 540: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 541: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 542: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 543: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 91,7
positiv 1 8,3
Gesamt 12 100,0
Fehlend System 903
Gesamt 915
282
Tabelle 544: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 545: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 546: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 547: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 548: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 549: Caprine Arthritis-Enzephalitis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
283
Tabelle 550: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 551: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
Tabelle 552: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 11 100,0
Fehlend System 904
Gesamt 915
284
Anhang XV Erreger beim Elch Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Elch.
Tabelle 553: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 20 44,4
positiv 25 55,6
Gesamt 45 100,0
Fehlend System 785
Gesamt 830
Tabelle 554: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 30 65,2
positiv 16 34,8
Gesamt 46 100,0
Fehlend System 784
Gesamt 830
Tabelle 555: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
285
Tabelle 556: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 34 77,3
positiv 10 22,7
Gesamt 44 100,0
Fehlend System 786
Gesamt 830
Tabelle 557: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 456 99,3
positiv 3 9,7
Gesamt 459 100,0
Fehlend System 371
Gesamt 830
Tabelle 558: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 42 97,7
positiv 1 2,3
Gesamt 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 559: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 46 95,8
positiv 2 4,2
Gesamt 48 100,0
Fehlend System 782
Gesamt 830
Tabelle 560: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 52 100,0
Fehlend System 778
Gesamt 830
286
Tabelle 561: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 41 95,3
positiv 2 4,7
Gesamt 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 562: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 37 86,0
positiv 6 14,0
Gesamt 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 563: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 564: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 565: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
287
Tabelle 566: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 42 95,5
positiv 2 4,5
Gesamt 44 100,0
Fehlend System 786
Gesamt 830
Tabelle 567: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 95,6
positiv 2 4,4
Gesamt 45 100,0
Fehlend System 785
Gesamt 830
Tabelle 568: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 569: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 570: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
288
Tabelle 571: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 572: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 573: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 574: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
Tabelle 575: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 39 90,7
positiv 4 9,3
Gesamt 43 100,0
Fehlend System 787
Gesamt 830
289
Tabelle 576: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 753 97,0
positiv 23 3,0
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 577: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 452 58,1
positiv 326 41,9
Gesamt 778 100,0
Fehlend System 52
Gesamt 830
Tabelle 578: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 727 93,7
positiv 49 6,3
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 579: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 580: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 756 97,4
positiv 20 2,6
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
290
Tabelle 581: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 775 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 582: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 710 91,5
positiv 66 8,5
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 583: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 584: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 773 99,6
positiv 3 0,4
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 585: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
291
Tabelle 586: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 775 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 587: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 588: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 770 99,2
positiv 6 0,8
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 589: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 775 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 590: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 774 99,7
positiv 2 0,3
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
292
Tabelle 591: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 592: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 593: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 594: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 595: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 596: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 775 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
293
Tabelle 597: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 776 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 777 100,0
Fehlend System 53
Gesamt 830
Tabelle 598: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 775 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 776 100,0
Fehlend System 54
Gesamt 830
Tabelle 599: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 12 92,3
positiv 1 7,7
Gesamt 13 100,0
Fehlend System 817
Gesamt 830
Tabelle 600: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 6 100,0
Fehlend System 824
Gesamt 830
Tabelle 601: MCFV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 4 66,7
positiv 2 33,3
Gesamt 6 100,0
Fehlend System 824
Gesamt 830
294
Tabelle 602: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 603: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 604: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 605: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 606: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 607: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
295
Tabelle 608: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 609: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 610: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 611: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 612: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 613: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
296
Tabelle 614: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 615: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 616: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 617: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 618: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
Tabelle 619: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 3 100,0
Fehlend System 827
Gesamt 830
297
Anhang XVI Erreger beim Rentier Die unten aufgeführten Tabellen zeigen in Fallzahl und Prozent die positiven und
negativen Untersuchungsergebnisse der einzelnen Erreger bezogen auf die
Gesamtzahl der Untersuchungen des jeweiligens Agens beim Rentier.
Tabelle 620: Enterobacteriaceae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 159 53,5
positiv 138 46,5
Gesamt 297 100,0
Fehlend System 728
Gesamt 1025
Tabelle 621: Streptokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 265 90,4
positiv 28 9,6
Gesamt 293 100,0
Fehlend System 732
Gesamt 1025
Tabelle 622: Staphylokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 280 96,2
positiv 11 3,8
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
298
Tabelle 623: Clostridium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 253 86,9
positiv 38 13,1
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 624: Salmonella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 391 99,2
positiv 3 0,8
Gesamt 394 100,0
Fehlend System 631
Gesamt 1025
Tabelle 625: Coxiella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 299 94,3
positiv 18 5,7
Gesamt 317 100,0
Fehlend System 708
Gesamt 1025
Tabelle 626: Mykobakterium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 301 100,0
Fehlend System 724
Gesamt 1025
Tabelle 627: Mykobakterium paratuberkulosis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 321 98,5
positiv 5 1,5
Gesamt 326 100,0
Fehlend System 699
Gesamt 1025
299
Tabelle 628: Pseudomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 285 97,9
positiv 6 2,1
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 629: Pasteurella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 284 97,6
positiv 7 2,4
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 630: Brucella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 631: Bordetella bronchiseptica
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 632: Aeromonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
300
Tabelle 633: Actinomyces pyogenes
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 284 97,6
positiv 7 2,4
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 634: Campylobakter / Helicobakter
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 287 98,6
positiv 4 1,4
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 635: Bacillus anthracis
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 636: Chlamydia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 290 99,7
positiv 1 ,3
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 637: Erysypelothrix rusiopathiae
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
301
Tabelle 638: Fusobakterium nekrophorum
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 287 98,6
positiv 4 1,4
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 639: Leptospira
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 640: Listeria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 290 99,7
positiv 1 0,3
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 641: Mykoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
Tabelle 642: sonstige Bakterien
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 275 94,5
positiv 16 5,5
Gesamt 291 100,0
Fehlend System 734
Gesamt 1025
302
Tabelle 643: Strongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 712 96,2
positiv 28 3,8
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 644: Trichuris
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 690 93,2
positiv 50 6,8
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 645: Capillaria
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 667 90,1
positiv 73 9,9
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 646: Askaridoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 737 99,6
positiv 3 0,4
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
303
Tabelle 647: Kokzidia
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 696 94,1
positiv 44 5,9
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 648: sonstige Protozoa
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 734 99,2
positiv 6 0,8
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 649: Nematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 622 83,9
positiv 119 16,1
Gesamt 741 100,0
Fehlend System 284
Gesamt 1025
Tabelle 650: Trematoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 651: Cestoda
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 735 99,3
positiv 5 0,7
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
304
Tabelle 652: Trichinella
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 738 99,7
positiv 2 0,3
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 653: Lungenwurm
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 729 98,5
positiv 11 1,5
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 654: Ankylostomatoidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 739 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 655: Trichostrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 706 95,4
positiv 34 4,6
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
305
Tabelle 656: Metastrongyloidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 737 99,6
positiv 3 0,4
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 657: Strongyloides
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 734 99,2
positiv 6 0,8
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 658: Spiruroidea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 659: Akantocephalea
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 660: Leishmania
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 739 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
306
Tabelle 661: Toxoplasma
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 662: Trichomonas
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 663: Diphyllobotrium
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 100,0
Fehlend System 285
Gesamt 1025
Tabelle 664: Echinokokkus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 99,9
positiv 1 0,1
Gesamt 741 100,0
Fehlend System 284
Gesamt 1025
Tabelle 665: Fasciola
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 740 99,7
positiv 2 0,3
Gesamt 742 100,0
Fehlend System 283
Gesamt 1025
307
Tabelle 666: BVD / MD
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 52 94,5
positiv 3 5,5
Gesamt 55 100,0
Fehlend System 970
Gesamt 1025
Tabelle 667: BHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 32 88,9
positiv 4 11,1
Gesamt 36 100,0
Fehlend System 989
Gesamt 1025
Tabelle 668: MCFV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 23 100,0
Fehlend System 1002
Gesamt 1025
Tabelle 669: Staupevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 670: SHV - 1
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
308
Tabelle 671: Parvovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 672: Panleukopenievirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 673: Herpesvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 674: FIPV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 675: Pockenvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 676: Orthopoxvirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
309
Tabelle 677: Calicivirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 678: Canines Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 679: Adenovirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 680: Lyssavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 681: FeLV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 682: FIV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
310
Tabelle 683: CAEV
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 684: Rotavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 95,5
positiv 1 4,5
Gesamt 22 100,0
Fehlend System 1003
Gesamt 1025
Tabelle 685: Leukosevirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
Tabelle 686: Coronavirus
Häufigkeit Prozent
Gültig negativ 21 100,0
Fehlend System 1004
Gesamt 1025
311
Ergebnisse dieser Studie wurden bereits in Teilen veröffentlicht: MARKOWSKI, S., u. M. BÖER (2008): Infektionskrankheiten von in zoologischen Einrichtungen gehaltenen nordamerikanischen Hirschen und Bären in: 28. Arb.tag. Zootierärzt. deutschspr. Raum, Gelsenkirchen 2008. Verh. ber., S. 11 - 17
312
Danksagung An erster Stelle danke ich Prof. Dr. Michael Böer für die wissenschaftliche Betreuung, seine Unterstützung und sein Verständnis. Seine Bereitschaft, mich dieses spannende Thema bearbeiten zu lassen, hat meinen beruflichen Werdegang maßgeblich geprägt. Mein großer Dank gilt der Leitung sowie allen Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern der ZOOM Erlebniswelt Gelsenkirchen für die vielen Jahre der Zusammenarbeit und für die Möglichkeit, diese Dissertation anfertigen zu können. Ganz besonders danke ich meiner Kollegin Dr. Pia Krawinkel für ihre fachliche wie persönliche Unterstützung und für die unzähligen tiermedizinischen und tiergartenbiologischen Erfahrungen. Allen beteiligten Zoologischen Gärten und meinen Kolleginnen und Kollegen Dr. Olaf Behlert, Dr. Pierre Grothmann, Dr. Jens-Ove Heckel, Dr. Susanne Klomburg, Dr. Andreas Knieriem, Dr. Arne Lawrenz, Dr. Bernhard Neurohr, Dr. Andreas Ochs, Dr. Christine Osmann, Dr. Manfred Tanner und Dr. Martin Straube danke ich ganz herzlich für die Bereitstellung ihrer Daten. Dr. Sjaak Kaandorp danke ich für seine Hilfe bei der Einarbeitung in die Thematik der Quarantäne von Zootieren. Für die Begutachtung meiner Arbeit danke ich Prof. Dr. Thomas Blaha. Edith Schneider danke ich für die freundliche Beantwortung meiner Fragen zur Anfertigung dieser Dissertation. Für die Beratung bei der statistischen Analyse bedanke ich mich bei Dr. Tanja Kottmann und Prof. Dr. Rainer Diaz-Bone. Dr. Wolfgang Dreßen und allen Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern des Zoo Krefeld danke ich für die Unterstützung in der letzten Arbeitsphase meiner Dissertation und für mein wunderbares Arbeitsumfeld. Bei Dr. Stefanie Maria Bohle, Marco Hoff, Timothy Hornby, Michael Geier und noch einmal bei Dir, Pia, bedanke ich mich ganz herzlich für die Hilfe bei der Gestaltung dieses Manuskripts. Silvi und all meinen Freunden danke ich für die moralische Unterstützung und das Daumenhalten. Der größte Dank gilt meinem Mann Thorsten und meiner Familie. Ohne Eure Liebe und Euren Beistand hätte es diese Dissertation nicht gegeben. Danke!