protocolo de gestiÓn de fauna acuÁtica...

FERROVIAL AGROMÁN S.L.

PROTOCOLO

Protocolos de actuación2014

PROTOCOLO DE GESTIÓN PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DEDURANTE LAS LABORES DERESTAURACIÓN RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIAMURCIA

Ref: DT2014/016

PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA

ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE

RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO

SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIAPROTOCOLO

Ref: DT2014/016

PROMOTORFERROVIAL AGROMÁN S.L.

COORDINADORAlberto Perán Rex (Lcdo. Biología)

AUTORES:

Pedro Alfonso Miñano Alemán

COLABORA:

Dpto. Zoología y Antropología FísicaGrupo de Investigación E0A0-04:

Zoología básica y aplicada a la gestión y la conservación

Dr. Francisco J. Oliva PaternaDra. Mar Torralva ForeroDr. David Verdiell Cubedo

MURCIA, MARZO 2014

MURCIA

Polígono Industrial Oeste

C/ Uruguay, s/n - Parc 8/27 Nave 31

30820 Alcantarilla (MURCIA)

Tfno: 968 845 265 / Fax: 968 894 354

[email protected]

CANARIAS

C/ Amanecer, Nº30. Local 3 Dcha.

La Laguna. 38206 S/C Tenerife.

Tfno: 922 514 696 / Fax: 922 825 596

[email protected]

COMUNIDAD VALENCIANA

C/ Reina Victoria, Nº 114, bajo.

03201 Elche (Alicante).

Tfno: 659 204 218

[email protected]

Copyright © 2014 Taxon Estudios Ambientales, S.L.

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autores.

índice

1. PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA pag. 1

1.1. OBJETIVO pag. 1

1.2. ALCANCE pag. 1

1.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA pag. 2

1.4. DEFINICIONES pag. 2

1.5. RESPONSABILIDADES pag. 3

1.6. EQUIPAMIENTO pag. 4

1.6.1. MATERIAL GENERAL pag. 4

1.6.2. PESCA ELÉCTRICA pag. 5

1.6.3. REDES ACTIVAS Y TRAMPAS PASIVAS pag. 5

1.6.4. MANIPULACIÓN FAUNA ACUÁTICA pag. 5

1.7. PROTOCOLOS DE EXTRACCIÓN FAUNA ACUÁTICA pag. 6

1.7.1. DESCRIPCIÓN METODOLÓGICA DE LOS PROCEDIMIENTOS DE EXTRACCIÓN Y CAPTURA pag. 8

1.8. PROTOCOLOS DE MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE EJEMPLARES pag. 15

1.8.1. GENERALIDADES pag. 15

1.8.2. SELECCIÓN DE PUNTOS DE SUELTA Y LIBERACIÓN pag. 18

1.8.3. CONTROL SANITARIO pag. 19

1.8.4. ANESTÉSICOS pag. 19

1.8.5. FAUNA EXÓTICA pag. 19

1.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 19

1.9.1. SEGURIDAD PESCA ELÉCTRICA pag. 20

1.9.2. PESCA ELÉCTRICA DESDE EMBARCACIONES pag. 20

1.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS pag. 21

1.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES pag. 21

1.12. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO pag. 22

2. PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES pag.

23


2.2. ALCANCE pag. 23




2.6. EQUIPAMIENTOS Y TOMA DE MUESTRAS pag. 26


2.6.2. MATERIAL VARIO pag. 27

2.6.3. ENVASES pag. 27

2.6.4. EQUIPOS pag. 28

2.7. PROTOCOLOS pag. 29


2.7.2. VIGILANCIA Y PREVENCIÓN DE MORTANDADES pag. 29

2.7.3. RETIRADA Y GESTIÓN DE EJEMPLARES pag. 31

2.7.4. PROTOCOLO DE INVESTIGACIÓN pag. 32

2.8. CONTROL DE CALIDAD pag. 35

2.8.1. IDENTIFICACIÓN Y REGISTRO pag. 35

2.8.2. CUSTODIA Y ENTRADA EN EL LABORATORIO pag. 35

2.8.3. CONTROLES Y BLANCOS pag. 36




3. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA pag. 39






3.6. EQUIPAMIENTO pag. 42


3.6.2. MANIPULACIÓN Y EUTANASIA DE FAUNA EXÓTICA pag. 43

3.7. PROTOCOLO O PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 44


3.7.2. ESPECIES AFECTADAS: pag. 44

3.7.3. PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 45

3.7.4. METODOLOGÍA DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 46

3.8. MANEJO Y ELIMINACIÓN DE CADÁVERES pag. 50



3.9.1. SEGURIDAD EN LOS PROCEDIMIENTOS DE EXTRACCIÓN pag. 51


4. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL pag.

53

4.1. OBJETIVOS pag. 53





4.6. METODOLOGIA pag. 55


4.6.2. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 57

4.6.3. EQUIPAMIENTO PARA LA MANIPULACIÓN DE RESIDUOS SANDACH pag. 57

4.7. PROCEDIMIENTO DE RETIRADA DE BAJAS pag. 59

4.7.1. REGISTRO DE ACTUACIÓN: pag. 60

4.7.2. DOCUMENTOS DE LA RECOGIDA pag. 60

4.7.3. CUSTODIA HASTA RETIRADA pag. 61



4.10. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO pag. 62

5. ANEXO. DESINFECCIÓN DE EQUIPOS pag. 63

5.1. VACIADO DEL AGUA, INSPECCIÓN VISUAL Y ELIMINACIÓN DE RESTOS ADHERIDOS pag. 63

5.2. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN pag. 63

5.3. SECADO pag. 64

6. CONTROL DE CAMBIOS pag. 65

1. PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN YTRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA

1.1. OBJETIVO

El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida por el

personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en las actuaciones de extracción, control

y translocación de la fauna acuática presente en los recintos de dragado durante las

obras de Restauración Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia promovidas por

la Confederación Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial Agromán S.L...

El objetivo de la extracción y translocación es la disminución de la densidad y retirada

ejemplares de fauna piscícola y otros vertebrados acuáticos (ej. galápagos) del interior

de los recintos de dragado. De este modo, se evitarán las mortandades masivas de los

ejemplares que pudieran quedar retenidos en el interior de dichos recintos durante las

actuaciones de dragado (desecación, drenaje, extracción de sedimentos u otras). Para

la consecución de este objetivo se emplearán diversos procedimientos

complementarios entre sí de manera que se asegure la máxima efectividad en la

extracción y control. La translocación hace referencia a las acciones de manipulación y

transporte de los ejemplares capturados a otros sectores del río que serán

consensuados previamente con el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca Fluvial de la

CARM, siempre de acuerdo con la normativa existente.

1.2. ALCANCE

El procedimiento tiene como objetivo definir las directrices metodológicas que permitan

la extracción, control y translocación de ejemplares de la fauna acuática en los recintos

del dragado inmerso en el “Proyecto de Recuperación Ambiental del Río Segura en la

ciudad de Murcia”.

Abarca los siguientes temas:

• Identificación del equipo de muestreo y metodología.

• Procedimiento con pesca eléctrica.

• Procedimiento con redes activas.

• Procedimiento con trampas pasivas.

• Manipulación y translocación de ejemplares.

• Control de la calidad y seguridad.

PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA 1

1.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA

• Orden de 13 de mayo de 2013, de la Consejería de Presidencia, por la que se

regula el ejercicio de la pesca fluvial para la temporada 2013/2014 y

reglamentaciones para la conservación de la fauna ictícola de la Comunidad

Autónoma de la Región de Murcia (BORM nº 113, 18/5/2013)

• Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo español

de especies exóticas invasoras (BOE Nº 185, 3 de agosto de 2013)

• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado y

catálogo español de especies exóticas invasoras.

• Real Decreto 1082/2009, de 3 de julio, por el que se establecen los requisitos de

sanidad animal para el movimiento de animales de explotaciones cinegéticas,

de acuicultura continental y de núcleos zoológicos, así como de animales de

fauna silvestre.

• Ley 42/2007, de 13 de diciembre, del Patrimonio Natural y de la Biodiversidad.

• Ley 7/2003, de 12 de noviembre, de Caza y Pesca Fluvial de la Región de Murcia.

• Ley 7/1995, de 21 de abril, de la fauna silvestre, caza y pesca fluvial.

• UNE-EN14011:2003. Calidad del agua. Muestreo de peces con electricidad.

• UNE-EN 14757:2006. Calidad del Agua. Muestreo de peces con redes de agalla

con diferente luz de malla.

• EN 14962:2004 Directrices para el campo de aplicación y selección de métodos

de muestreo de peces.

• Protocolos de muestreo y análisis para ictiofauna. Serie Metodología para el

establecimiento el Estado Ecológico según la Directiva MARCO del Agua. 2005.

Confederación Hidrográfica del Ebro (Ministerio de Medio Ambiente).

• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo de

galápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territori

i Medi Ambient. 31 pp.

1.4. DEFINICIONES

Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada por

ésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia y

densidad o impedir la dispersión una especie.

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Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución y

de dispersión natural.

Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,

incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieran

sobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural y

de su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin la

introducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.

Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podría

convertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado ese

carácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.

Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en un

ecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio y

amenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamiento

invasor, o por el riesgo de contaminación genética.

Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de una

especie.

Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UE

para la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados al

consumo humano

SANDACH: acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo

Humano.

Translocación: accion de transporte de poblaciones animales a otra localidad

diferentes del punto de captura.

1.5. RESPONSABILIDADES

La Dirección de Obra del proyecto de Dragado es responsable de comunicar al

Responsable Técnico de Muestreo (RTM) de Taxon Estudios Ambientales el inicio de la

creación de los diferentes recintos de dragado y coordinar con éste las fechas previstas

para su desagüe y cierre de manera que se otorgue margen temporal suficiente para la

realización de los despesques.

La Dirección de Obra velará por que todo el personal de la misma conozca y cumpla

con los protocolos de gestión de fauna en los casos de hallazgo de ejemplares o

cadáveres durante el transcurso de la actuación.

El RTM de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe coordinar e instruir al equipo de

muestreo sobre los objetivos y requerimientos del proceso antes de llegar al área de


trabajo. Así mismo será responsable de cumplimentar todos los documentos

relacionados con la recogida y gestión de ejemplares, así como de informar al

coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante los procedimientos

(observaciones, localización, desviaciones, conflictos, etc.). También será responsable

de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo necesario para los

procedimientos garantizando su disponibilidad.

Todo el personal del Área de Muestreo (AM) o trabajo debe cumplir con los

requerimientos especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon,

especialmente en relación con normas y equipos de seguridad en el trabajo, manejo de

sustancias tóxicas y peligrosas (Formol, ácidos, etc..) y manipulación de ejemplares.la

recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor autorizado

Cuando el procedimiento de extracción y control de ejemplares requiera del uso de

embarciones, el AM debe contar con al menos una persona con las titulaciones

necesarias para el patronaje de la embarcación. El resto de perosnal debe tener los

conocimientos necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o

porque hayan sido instruidos por el responable técnico.

Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos descritos en

este documento para la manejo de metodología, recolección y manipulación de

ejemplares.

En el caso de completar con toma de muestras de los ejemplares, el técnico encargado

de realizar la toma será el responsable también de su conservación, transporte y

custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en el Laboratorio.

1.6. EQUIPAMIENTO

El equipamiento básico para la realización de la toma de muestra se compone tanto de

los equipos mínimos necesarios para la toma de ejemplares, como de los envases y

diverso material auxiliar.

1.6.1. Material general

• Embarcación adecuada a las condiciones de los recintos de trabajo.

• Salvavidas (embarcaciones y aguas vadeables profundas).

• Botas altas o vadeadores (material no conductor de la electricidad).

• Redes de cierre, profundímetro, cuerdas y boyas para fijar transectos.

• Contenedores para especies nativas.

• Contenedores para especies exóticas.


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• Botiquín, equipo de primeros auxilios.

• Extintor, para el uso en zonas con riesgo de incendio por proximidad delgenerador eléctrico.

• Cámara fotográfica.

• Neveras.

1.6.2. Pesca eléctrica

• Conductivímetro para medir conductividad y ajustar la intensidad del

convertidor de corriente.

• Sacaderas o salabres

• Guantes de alta tensión

• Grupo electrógeno

• Transformador de corriente

• Pértiga o ánodo

• Rollo de cable

• Cátodo y cables de conexión

• Alargador

1.6.3. Redes activas y trampas pasivas

• Red de arrastre de longitud adecuada.

• Red de cierre para recintos.

• Trampas minnow y nasas

• Etiquetas

1.6.4. Manipulación fauna acuática

• Sacaderas y salabres

• Cubos de goma o plásticos (10-12 L) para trasladar los peces hasta los

contenedores.

• Contenedores para peces de diferentes tamaños para su traslado. Sus

dimensiones deben ser las adecuadas para evitar elevadas densidades durante

el traslado.


• Contenedores de rejilla, que permitan el paso del agua a través. Funcionan como

vivero para mantener los peces en buenas condiciones hasta que son devueltos

al río.

• Oxigenador y caudalímetros: para evitar la asfixia de los peces durante el

traslado debido al agotamiento del oxígeno en el agua de la cuba de traslado.

• Hielo o refrigerantes, especialmente durante el verano para evitar un shock

térmico a la fauna.

Fotografía 1.1: Ejemplar de barbo (Luciobarbus sclateri) capturado

(Fotografía: Dpto. Zoología y Antropología Física).

1.7. PROTOCOLOS DE EXTRACCIÓN FAUNA ACUÁTICA

La operación de extracción y control se ejecutará de forma individualizada para cada

recinto y tendrá una duración aproximada de cuatro días en función del número total de

procedimientos empleados y la efectividad de las metodologías. La secuencia de

operaciones prevista es la siguiente (ver esquema en ANEXO I):

1. Inicialmente la Dirección de Obra comunicará al Responsable Técnico de

Muestreo de TAXON (RTM), con al menos cuatro días de antelación, la creación

de cada recinto de dragado.

2. El RTM de TAXON coordina con la Dirección de Obra las condiciones y permisos

de acceso al recinto y las localizaciones más adecuadas para la colocación de

los contenedores de forma que no se obstaculice el resto de la obra

3. El RTM de TAXON avisará a la empresa gestora de residuos SANDACH para la

colocación en las inmediaciones de los contenedores homologados.


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4. El primer día el personal del AM de TAXON realiza una primera campaña de

evacuación de fauna mediante el uso de redes de arrastre y cerco. Realizando

diversas pasadas hasta cubrir todo el recinto y verificar la efectividad de la

actuación. Al término procede al cierre del recinto con una red plomada para

evitar la re-entrada de la fauna evacuada.

5. Colocación de las nasas y sistemas de trampeo elegido (ver más adelante) para

la captura selectiva de galápagos y otra fauna que pudiera quedar escondida

entre la vegetación y rizomas.

6. Al día siguiente se revisarán las nasas y trampas y procederá a la realización de

nuevos despesques mediante el uso de pesca eléctrica. Los ejemplares

capturados serán transferidos a contenedores provisionales para su

determinación y gestión según se detalla en el apartado de PROTOCOLOS DE

MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE EJEMPLARES.

7. El responsable técnico de muestreo de TAXON avisa a la Dirección de Obra del

término de las operaciones de despesque para que puedan proceder al desagüe

del recinto.

8. Se procede al desagüe del recinto en presencia del personal de muestreo de

TAXON que de forma coordinada debe proceder a la retirada de las redes de

cierre del mismo.

9. Una vez finalizado el desagüe el personal de muestreo de TAXON revisa el

recinto para asegurar que no ha quedado atrapada fauna acuática de

consideración en el mismo, y en tal caso procede a su rescate. Para esta

operación dadas las dificultades de acceso por el grado de enfangamiento la

dirección de obra puede facilitar el acceso mediante la maquinaria de que

disponga (ej. excavadoras)

10. El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON dejará a la dirección de obra unos

contenedores adecuados para depositar los galápagos y otra fauna que al

permanecer enterrada pueda ir apareciendo durante las operaciones de

dragado. Así mismo comunicará a TAXON tales hallazgos para que proceda a su

identificación y gestión. En el caso de localización de cadáveres, estos pueden

ser depositados directamente por el personal de la obra en los contenedores

SANDACH situados al efecto.


1.7.1. DESCRIPCIÓN METODOLÓGICA DE LOS procedimientos de

extracción Y CAPTURA

En este apartado se exponen las directrices metodológicas para el desarrollo de los

distintos procedimientos. Su aplicación está condicionada por la profundidad en los

recintos, la conductividad del agua y las especies a capturar.

El rescate de la fauna acuática no implica necesariamente su captura, en ocasiones es

preferible su evacuación directa del tramo o recinto afectado. Los procedimientos de

extracción son variados y complementarios, y deben ser seleccionados específicamente

a los objetivos de cada proyecto y en función de las condiciones ambientales y

logísticas presentes en cada situación.

REDES ACTIVAS

A) Descripción

Se trata de redes de tamaño y luz de malla variables, generalmente <1 cm, que se

puede emplear en ríos de poca profundidad (< 1 m) y escasa corriente, también en

zonas litorales de embalses o lagunas siempre que el tipo de sustrato lo permita. La red

suele ir provista en el lado superior de una línea de boyarines y en el opuesto de una

línea de fondeo, garantizando así que ocupa toda la columna de agua.

B) Preparación del equipo y organización de la extracción

Previamente a la utilización de esta metodología se extenderá por completo la red en la

orilla y se comprobará que no existe rotura o nudo que pudiera afectar su eficacia y

operatividad.

C) Procedimiento con redes activas

Cuando el objetivo sea la evacuación de fauna del interior de recintos, la ejecución de

los arrastres se realizará en dirección a la abertura o punto de fuga predeterminado,

obligando a los peces a abandonar el recinto a través de esta abertura. La red debe

extenderse a lo ancho de toda la sección del río a evacuar, evitando los tramos

inhábiles para el arrastre (zonas de vegetación, troncos, raíces, etc.). Si la profundidad

lo permite ocupará también toda la columna de agua, para lo que dispondrá de

flotadores en superficie y de una línea plomada en su base de modo que vaya próxima

al fondo evitando así el escape de ejemplares. Para su arrastre puede ser necesario el

apoyo de una embarcación desde la que se operará con uno de los extremos de la red,

mientras que el otro extremo será manejado desde el dique longitudinal.

Una alternativa a dicha forma de proceder es la utilización de la red en secciones

semicirculares. El operario que está en la orilla mantiene fija su posición y desde la

embarcación, una vez desplegada la red de forma perpendicular al dique longitudinal,


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se realiza el arrastre trazando una línea curva en dirección a este último. Una vez en el

dique, se levanta la red desde la orilla tirando de su extremo inferior y se extraen los

ejemplares capturados. Esta operación se repetirá a lo largo de toda la longitud del

recinto.

Fotografía 1.2: Muestreo con red de arrastre en este caso operada sin embarcación (Fotografía:

Dpto. Zoología y Antropología Física).

La utilización de salabres y sacaderas podrá resultar efectiva para la captura de

ejemplares de otros vertebrados (ej. aves en fase juvenil, aves con escasa movilidad,

galápagos, etc.). Estos serán utilizados por los operarios en momentos o zonas

específicas de cada recinto de dragado en función de la necesidad concreta.

D) Conflictos

La efectividad de esta metodología se verá afectada por el tipo de sustrato sobre el que

se realice el arrastre. Es recomendable su utilización en zonas libres de guijarros, raíces,

troncos y ramas sumergidas que impidan o dificulten la operación de arrastre. También

la densidad de fangos en los recintos de trabajo puede dificultar la operación.


PESCA ELÉCTRICA

A) Descripción

El fundamento de la pesca eléctrica consiste en crear un campo eléctrico dentro la

masa de agua de manera que los peces que se encuentran dentro de éste se vean

forzados a nadar hacia el ánodo (galvanotaxia), y una vez próximos sufran una

relajación muscular y una pérdida de sentido (galvanonarcosis), lo que facilita su

captura.

La realización de la pesca eléctrica requiere tener en cuenta aspectos de seguridad en

la manipulación de los equipos y procedimientos. Descripción en apartado 6.6.


El primer paso consiste en la toma de medidas de conductividad y temperatura del

agua para determinar la intensidad a la que debe operar el convertidor/transformador

de corriente (en aguas de baja conductividad es necesaria mayor intensidad).

A continuación, se procederá al montaje y conexión de los componentes estáticos del

equipo de pesca eléctrica, teniendo presente que el generador y el convertidor se

situarán en el dique longitudinal en una localización adecuada que permita actuar tanto

aguas arriba como aguas abajo, abarcando la máxima superficie posible. En función de

la extensión del recinto de dragado, habrá que realizar desplazamientos de los

componentes estáticos para poder abarcar la totalidad del recinto. Previo a la conexión

de componentes deberá desplegarse la pértiga (ánodo) en la orilla del recinto con un

cable suficientemente largo que facilite la progresión de la pesca en el mismo. El

cátodo debe quedar ubicado en un punto intermedio de la superficie de pesca para

limitar las fluctuaciones de la intensidad de corriente.

Los contenedores para los ejemplares capturados se dispondrán a lo largo del dique

longitudinal, próximos a la orilla, con agua lo más limpia posible y en zona sombreada

siempre que sea posible. Cuando sea usada embarcación, ésta también debe disponer

de contenedores para las capturas.

B) Procedimiento de Pesca eléctrica en zonas vadeables

El equipo de trabajo estará compuesto por, al menos, cuatro operarios adecuadamente

equipados con vadeadores y guantes aislantes (alta tensión), portando uno de ellos el

ánodo. La acción de este operario contará con la ayuda de otros dos que colaborarán

en el proceso de captura y manipulación de ejemplares. Para ello, dispondrán cada uno

de una sacadera de mano (luz de malla de 5 mm máximo) y un recipiente óptimo para

el transporte de los peces. El cuarto operario será el encargado de las misiones

auxiliares relativas a la seguridad y manipulación de los equipos (ej. desconexión

inmediata en caso de accidente, etc.).


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Se realizarán barridos con el ánodo y desplazamientos suaves abarcando cuadrantes de

pesca y la totalidad de hábitats en el ancho fluvial. En función de la fase de actuación,

evacuación de la fauna antes del cierre de los recintos o en la revisión y rescate de

ejemplares atrapados en los recintos, los cuadrantes de pesca se ajustarán a las

necesidades de actuación del cada recinto. En zonas de difícil acceso por fangos, los

barridos de pesca se desarrollarán con ayuda de embarcación con los criterios descritos

en el apartado referente a zonas no vadeables.

Es recomendable trabajar con voltajes inferiores a los 400-500 V e intensidades no

superiores a 2 A. No obstante estos parámetros serán ajustados en función de la

conductividad y temperatura del agua.

Fotografía 1.3: Algunos componentes del equipo de pesca eléctrica; generador,

convertidor/transformador y bobina de cable conectada a salabre (Fotografía: Dpto.

Zoología y Antropología Física).

D) Pesca eléctrica desde embarcación en zonas no vadeables

La embarcación debe incluir contenedores para los peces y asegurar la operatividad del

personal encargado de realizar la pesca. Se recomienda que sean tres operarios los que

realicen su actividad desde la embarcación, uno de ellos portando el ánodo, otro

provisto de sacadera para captura y manejo de ejemplares y un tercero para maniobrar

la embarcación. Otro operario debe estar siempre próximo a los componentes estáticos

del equipo (generador y transformador) y estará encargado de las misiones auxiliares


relativas a la seguridad y manipulación de los equipos (ej. desconexión inmediata en

caso de accidente, etc.).

Las actuaciones de barrido serán similares a las descritas en el apartado sobre zonas

vadeables. El movimiento de la embarcación podrá controlarse, si es necesario,

mediante cuerdas desde la orilla. Es necesario que la embarcación esté preparada para

la realización de la pesca y el operario portador del ánodo debe evitar totalmente el

contacto con material metálico de la propia embarcación.

Los peces capturados se depositarán en primer lugar en los contenedores de la

embarcación y se mantendrán en estos evitando densidades excesivas que puedan

conllevar la muerte de los ejemplares por asfixia. Para ello ser realizará de forma

periódica el trasvase de ejemplares a los contenedores situados en la orilla o viveros

sumergidos convenientemente alejados de la zona de pesca.

C) Conflictos

La eficacia de esta metodología puede verse reducida significativamente si la

conductividad del agua es muy elevada (> 1500 µS/cm), así como si ésta presenta una

gran turbidez que dificulte la detección visual y captura de los ejemplares. Además, la

efectividad sobre ejemplares de talla pequeña (< 10 cm) podría ser inferior respecto a

los ejemplares de mayor talla.

Fotografía 1.4: Muestreo con pesca eléctrica. (Fotografía TAXON)


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TRAMPAS

A) Descripción

El uso de estas trampas es opcional en función de la efectividad obtenida en los pasos

previos y de las condiciones del medio. Por ello será necesario elegir el modelo y diseño

óptimo en función de las especies a capturar y el tipo de ambiente, con el fin de

optimizar el esfuerzo.

• Trampas tipo minnow y nasas: El uso de estas metodologías está

recomendado para zonas litorales poco profundas y de escasa corriente, y

permiten la captura de peces de talla pequeña (< 15 cm de longitud), así como

la captura de otros vertebrados acuáticos objetivo de la extracción,

principalmente herpetofauna (ej. galápagos y culebra de agua). Es

recomendable dejar siempre una parte de la trampa fuera del agua para evitar

la muerte de herpetofauna por ahogamiento. Es recomendable su utilización

durante un periodo de captura de 12 a 24 horas.

• Trampas flotantes: Son específicas para los galápagos. Consisten en un

bastidor de tubo de PVC al que envuelve una red en forma de bolsa. La parte

superior permanece abierta y es atravesada por una tabla basculante y dos

pequeñas rampas que conectan la tabla con el agua. El funcionamiento se basa

en la necesidad de termorregulación que presentan los galápagos y que les

obliga a permanecer bajo el sol hasta que adquieren una temperatura corporal

lo suficientemente alta como para comenzar su actividad. Así, las tortugas

suben a la trampa por las rampas para solearse, pero al alcanzar la tabla

basculante caen al interior de la trampa, de donde no pueden salir. Una de las

ventajas de este tipo de trampas es que la profundidad de la masa de agua no

es obstáculo para su emplazamiento siempre que se disponga de algún tipo de

embarcación para su colocación y revisión. Otra ventaja es que debido a su gran

selectividad el intervalo de revisión no es tan importante como con las nasas.

Generalmente se revisan semanalmente en la época de mayor actividad de los

galápagos y cada 15 días o mensualmente, el resto del año.

• Trampas con cebo: También específicas para galápagos. Se trata de otro

modelo de trampa flotante consistente en un bastidor de forma de caja,

completamente recubierto de malla plástica que impide que las capturas

puedan escapar. La parte superior posee una plancha de poliestireno extruido,

que permite que la trampa se mantenga en la superficie, provista de una

abertura que permite a la fauna respirar. En dos extremos opuestos de la caja

existen sendas aberturas con embudos de red que permiten a la fauna entrar,

pero impide que pueda salir. En el interior de la trampa debe colocarse un cebo,

generalmente pescado, que sirva de reclamo para que las tortugas se


introduzcan en la trampa. La efectividad de estas trampas es alta mientras

permanezca el cebo en su interior, pero al terminarse éste, pierde

completamente su efecto, por lo que las revisiones deben realizarse con una

frecuencia de 4-5 días.


Previamente a la instalación de las trampas y/o nasas debe confirmarse que se

encuentran en buen estado, es decir, que no presentan roturas en la malla y que

dispongan de su correspondiente sujeción y etiquetado. Podrán cebarse o no.

C) Procedimiento con trampas en recintos cerrados

El procedimiento de extracción y control de fauna con trampas pasivas puede utilizarse

tanto en la fase de evacuación previa al cierre de los recintos, como en la fase posterior

al cierre con redes de dichos recintos. Podrá ser recomendable su colocación posterior a

la aplicación de los procedimientos con redes activas y pesca eléctrica en la

evacuación.

En general para la captura de peces, las trampas pasivas se instalan al atardecer y se

revisan a primera hora de la mañana. No obstante, en función del objetivo de captura

en los recintos (ej. galápagos) o de las características del recinto de trabajo, el tiempo

de pesca podrá ser variable. Es recomendable un periodo de captura mínimo de 12 a

24 horas.

El número de trampas a utilizar por recinto de trabajo será adecuado en función de sus

características. Es recomendable la utilización de un número aproximado a las 15

trampas por recinto.

Es recomendable dejar siempre una parte de la trampa fuera del agua para evitar la

muerte por ahogamiento de otros vertebrados acuáticos diferentes a los peces (ej.

herpetofauna). También para la captura de galápagos puede ser recomendable el

cebado.

Procedimiento opcional con trampas en tramo de ejecución de obra

El procedimiento de extracción y control de fauna con trampas pasivas también podrá

utilizarse en zonas externas a los recintos de dragado durante la ejecución completa de

la obra. En estos casos, el objetivo principal será la reducción de densidades del tramo

de obra de vertebrados acuáticos diferentes a los peces, principalmente herpetofauna.

La aplicación de este procedimiento será evaluada en función de las primeras

actuaciones en los recintos.

Serán utilizadas trampa pasivas óptimas para la herpetofauna. Es recomendable dejar

siempre una parte de estas trampas fuera del agua para evitar la muerte por


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ahogamiento de estos vertebrados. También para la captura de galápagos puede ser

recomendable el cebado.

C) Conflictos

La efectividad de esta metodología puede verse reducida si las entradas quedan

obstruidas por acúmulos de hojas y/o raíces. También si quedan parcialmente

enterradas en el sustrato si este presenta consistencia limosa, como es el caso de la

zona de trabajo.

Fotografía 1.5: Uso de nasas, derecha detalle de la nasa izquierda ejemplo de su colocación en el medio

((Fotografías: Dpto. Zoología y Antropología Física).

1.8. PROTOCOLOS DE MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE

EJEMPLARES

1.8.1. GENERALIDADES

PECES

Los ejemplares capturados mediante las distintas metodologías se depositan

inicialmente en viveros ubicados directamente en el agua o contenedores de plástico

asegurando una oxigenación adecuada.

Para la manipulación puede ser conveniente el uso de un producto anestésico que los

relaje y facilite el trabajo. No obstante, esto será dependiente del tipo y tiempo de

manipulación pues es muy importante controlar el tiempo de exposición al anestésico.

Los ejemplares deberán ser identificados a nivel de especie, clasificados y separados en

función de su carácter exótico o autóctono. La identificación se realizará “in situ”

mediante la observación de caracteres morfológicos externos. Si existen dudas en la

identificación de alguna especie o ejemplar, se conservarán algunos individuos para su

posterior análisis en el laboratorio.


Los ejemplares identificados de las especies de peces nativos [barbo gitano

(Luciobarbus sclateri) y anguila (Anguilla anguilla)[ y de especies pescables

consideradas no nocivas por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial [carpa

común (Cyprinus carpio) y boga del tajo (Pseudochondrostoma polylepis)] serán

evaluados en relación a su estado sanitario y translocados a localidades consensuadas

con dicho Servicio.

El traslado se realizará en contenedores con agua fresca y oxigenada con una tasa de

carga o capacidad de transporte evaluada en función del tamaño de los ejemplares,

temperatura y duración del transporte. Se utilizará agua del mismo río para rellenar los

contenedores, siempre y cuando no presente un exceso de sedimentos o sólidos en

suspensión. El transporte de los ejemplares debe realizarse preferiblemente en aguas

que se encuentren en el rango de 15ºC a 20ºC. La aclimatación a los contenedores de

transporte debe hacerse de forma gradual. Deberá vigilarse periódicamente el estado

de dichos ejemplares y en época estival puede resultar conveniente enfriar el agua

mediante barras refrigerantes, manteniendo una temperatura no superior a la indicada.

El traslado debe efectuarse el mismo día de recogida para reducir el tiempo de

permanencia en contenedores. Los contenedores deben presentan un sistema de

suministro de oxígeno mediante difusores. El oxígeno disuelto es dependiente del

tamaño de los peces, especie, temperatura del agua y nivel de actividad de los peces.

Los peces con niveles de stress elevado van a consumir más OD. El stock de transporte

puede sufrir pérdidas con niveles de oxígeno disuelto inferiores a 5 mg/l.

Los individuos se deben mantener tranquilos durante el transporte. Es conveniente que

se mantengan a oscuras, a salvo de ruidos repentinos y movimientos bruscos. La tasa

de carga o capacidad de transporte será evaluada en función del tamaño de los

ejemplares, temperatura y duración del transporte.

Los individuos transportados se aclimatarán gradualmente al agua en la que van a ser

liberados. Para ello es conveniente su traslado a un vivero ubicado en el cauce fluvial

antes de la suelta hasta observar una natación y respiración normales. En el caso de

existir una notable diferencia en las condiciones ambientales (ej. conductividad o

temperatura) puede procederse a la sustitución progresiva del agua del tanque de

transporte por agua del medio receptor para evitar un choque térmico y el consiguiente

aturdimiento.

Los ejemplares identificados de las especies de peces exóticas [ejemplos: pez sol

(Lepomis gibbosus), lucioperca (Sander lucioperca), alburno (Alburnus alburnus),

gambusia (Gambusia holbrooki), etc.] consideradas nocivas por el Servicio de

Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán gestionadas de acuerdo con las actuaciones

especificadas en el protocolo de gestión de fauna exótica. Dicho Servicio no autoriza la

devolución al medio acuático de ejemplares de estas especies y, en consecuencia,


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serán sacrificadas y gestionadas como SANDACH.

OTROS VERTEBRADOS

Los ejemplares identificados de especies de galápagos nativos [galápago leproso

(Mauremys leprosa)] serán evaluados en relación a su estado sanitario y translocados a

localidades consensuadas con dicho el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial.

En el caso de detectar ejemplares heridos o hembras grávidas se entregarán al Centro

de Recuperación de Fauna del Valle.

Los ejemplares identificados de especies de galápagos exóticos (ejemplos: galápago de

Florida (Trachemys scripta elegans), tortuga de orejas amarillas (Trachemys scripta

scripta), Graptemys sp., Pseudemys sp., etc.] consideradas nocivas por el Servicio de

Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán gestionadas de acuerdo con las actuaciones

especificadas en el protocolo de gestión de fauna exótica. Dicho Servicio no autoriza la

devolución al medio acuático de ejemplares de estas especies y, en consecuencia,


Los ejemplares identificados de otros vertebrados nativos [ejemplos: culebra viperina

(Natrix natrix), anfibios, aves acuáticas, etc.] serán liberados en puntos próximos al

punto de captura, siempre fuera del recinto de dragado y en zonas con efectos futuros

mínimos durante la ejecución de la obra.


Fotografía 1.6: Ejemplar de galápago leproso (Mauremys leprosa) , especie nativa de la zona de trabajo

(Fotografía: Dpto. Zoología y Antropología Física).

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1.8.2. SELECCIÓN DE PUNTOS DE SUELTA Y LIBERACIÓN

La translocación de los ejemplares debe ser previamente comunicada a la

administración, en el caso de la CARM el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial,

al que debe solicitarse permiso de pesca y translocación.

De acuerdo a las indicaciones de este Servicio, los ejemplares de fauna íctica autóctona

capturados pueden ser liberados en la zona de la Contraparada. En el caso de los

galápagos leprosos la translocación puede ser en el tramo superior de la zona de

actuación, con límite máximo en Archena por tener una calidad de aguas

prácticamente similar.

Para los galápagos se seleccionarán localidades que presenten condiciones de hábitat

adecuadas no sólo en relación al medio acuático, sino también a las orillas, presencia

de soleaderos (playazos, rocas, etc.), tramos arenosos que faciliten la excavación de

nidos, y vegetación que faciliten su ocultación.

1.8.3. CONTROL SANITARIO

Antes de efectuar la liberación de los ejemplares, una muestra representativa de éstos

deberá ser sometida a un control sanitario por técnico competente para determinar la

carga parasitaria, presencia de enfermedades potencialmente contagiosas y caso de

detectarse alguna de las Enfermedades de Declaración Obligatoria comunicarlo a las

autoridades. En caso de existir riesgo de transmisión de nuevas enfermedades deberá

procederse al sacrificio de los ejemplares capturados.

Las bajas accidentales acontecidas durante la pesca, manipulación y traslado, así como

los ejemplares sacrificados serán gestionadas como residuos SANDACH.

1.8.4. ANESTÉSICOS

Para facilitar el trabajo y evitar que los ejemplares se autolesionen durante la

manipulación puede ser aconsejable el uso de un anestésico. Los anestésicos de peces

más utilizados con resultados satisfactorios son: Tricaina-metano-sulfonato

(denominado MS-222) o bien el aceite esencial de clavo de olor (euglenol). El producto

se añade a los depósitos de agua en la cantidad adecuada (por ejemplo, unos 10-30

mg/L en el caso de MS-222).

1.8.5. FAUNA EXÓTICA

La gestión de estas especies es objeto de un protocolo específico que debe ser

consultado para su manipulación.


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1.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD

En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben aplicar los operarios

durante los procedimientos descritos.

Evitar la realización de los procedimientos en zonas peligrosas y con situaciones

ambientales desfavorables. Las condiciones de luz durante los procedimientos deben

ser tales que aseguren la detección de cualquier contingencia, una buena

caracterización visual del entorno, no recomendándose continuar con la toma cuando

sea necesario el empleo de luz artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las

condiciones meteorológicas con el fin de garantizar la seguridad del personal y equipos.

El personal operario evaluara las condiciones del recinto para realizar los

procedimientos bien vadeando o trabajando desde embarcación. La embarcación

estará debidamente equipada con las medidas de seguridad correspondientes

(chalecos salvavidas, radioteléfono, etc.). Así mismo el propio personal utilizará la

vestimenta adecuada a las condiciones imperantes (vadeador, botas de agua, traje de

agua, etc).

Para evitar intoxicaciones accidentales durante la manipulación de ejemplares, los

tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario adecuado para su

protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de declaración obligatoria

deberán emplear trajes de bioseguridad desechables. En cuanto a normas de higiene

personal a observar, se puede citar la necesidad de lavarse adecuadamente tras una

toma de muestras, y antes de realizar otras actividades que puedan facilitar la

intoxicación accidental (beber, comer, contacto con mucosas, etc.).

1.9.1. Seguridad pesca eléctrica

Cabe señalar que, siempre y cuando se desarrolle con cierta precaución, la pesca

eléctrica no supone peligro alguno. Sin embargo, existen ciertas premisas que todo

operario debe conocer y tener en cuenta al hacer uso de esta técnica:

• Es muy recomendable aplicar esta metodología con el asesoramiento y

supervisión de expertos en la materia.

• Trabajar con botas y guantes en buen estado. Llevar recambios por si se

producen roturas.

• Comprobar previamente todo el equipo y revisar que los cables estén en

perfecto estado.

• Graduar el tipo de corriente y la intensidad en función de la conductividad del

agua, para evitar la electrocución de los peces. Se recomienda trabajar con

voltajes entre 200-400 V e intensidades inferiores a 2 A.


• Es conveniente que un operario esté siempre próximo al generador y al

transformador, para desconectarlo inmediatamente en caso de que se produzca

algún accidente, o bien para regular o modificar la intensidad y voltaje,

respectivamente.

• Realizar la pesca siempre aguas arriba, evitando en la medida de lo posible

enturbiar el agua ya que esto dificulta la captura de los peces.

1.9.2. Pesca eléctrica desde embarcaciones

• El generador se fijará a la embarcación de forma que se evite su balanceo .

• Se dispondrá de une extintor a bordo.

• El personal dispondrá de chalecos salvavidas en todo el tiempo.

1.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS

El Responsable Técnico de Muestreo es responsable de la guarda y custodia de los

diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra. Se elaborará una

ficha de registro del procedimiento de extracción y control por recinto de trabajo.

1.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES

• Protocolo de gestión de fauna exótica.

• Protocolo de Gestión de Residuos biológicos (SANDACH)

• UNE-EN14011:2003. Calidad del agua. Muestreo de peces con electricidad.

• UNE-EN 14757:2006. Calidad del Agua. Muestreo de peces con redes de agalla

con diferente luz de malla

• EN 14962:2004 Directrices para el campo de aplicación y selección de métodos

de muestreo de peces


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1.12. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO

PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA / Protocolo extracción y translocación fauna acuática / DT2014/016

CREACIÓN DEL RECINTO DE DRAGADO

EVACUACIÓN FAUNA ACUÁTICA1:

1)REDES ACTIVAS2) PESCA ELÉCTRICA

CONTROL Y EXTRACCION DE FAUNA ACUÁTICA1:

1) REDES ACTIVAS2)PESCA ELÉCTRICA3) TRAMPAS PASIVAS

CERRADO CON REDES DEL RECINTO

DESAGÜE Y CERRADO DEFINITIVO RECINTOS

REVISIÓN Y RESCATE DE EJEMPLARES ATRAPADOS

IDENTIFICACIÓN EJEMPLARES CAPTURADOS

DRAGADO DEL RECINTO

REVISIÓN ESTADO SANITARIO

ANESTESIADO Y SACRIFICIO

(PROTOCOLO DE GESTIÓN DE EXÓTICAS)

(Autóctona)

(Exótica)

(LibreEfermedadescontagiosas) TRASLADO Y

SUELTA EN OTRA LOCALIDAD DEL MISMO TRAMO

GESTIÓN COMO SANDACH

(PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS)

TRASLADO Y SUELTA EN OTRA LOCALIDAD DEL MISMO TRAMO

(PresenciaEfermedadescontagiosas)

CENTRO DE RECUPERACIÓN

DE FAUNAHembrás grávidasEjemplares heridos

(galápagos)

(1Procedimientos complementarios)

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2. PROTOCOLO DE VIGILANCIAAMBIENTAL Y GESTIÓN DEMORTANDADES

2.1. OBJETIVO


personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L., en el proceso de retirada y gestión de

ejemplares, toma de muestras biológicas y análisis de aguas en episodios de

mortandad de fauna piscícola. Este Protocolo de Trabajo Normalizado cubre la retirada,

manipulación y gestión de los cadáveres, así como la toma de muestras para la

realización de análisis toxicológicos, patológicos o histopatológicos concretos, y el

manejo de las muestras desde su toma hasta su llegada al laboratorio.

Este protocolo se realiza para su aplicación en el contexto de las obras de Restauración

Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia promovidas por la Confederación

Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial Agromán S.L.

2.2. ALCANCE


la retirada de fauna y toma de muestras de ejemplares de peces y muestras de agua

ante la aparición de episodios de mortandad en tramos del río Segura en el contexto

del desarrollo del “Proyecto de Recuperación Ambiental del Río Segura en la ciudad de

Murcia”.


• Identificación del equipo y metodología.

• Procedimiento con retirada de cadáveres y toma de muestras.

• Manipulación y gestión de ejemplares.

• Control de la calidad y seguridad en el procedimiento.


• Protocolo de Toma de Muestras y Envío al Laboratorio en Peces. Dirección

General de Recursos Agrícolas y Ganaderos. Secretaría General de Agricultura y

Alimentación. Ministerio de Medio Ambiente, Medio Rural y Marino.

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• Field Manual for the Investigation of Fish Kills. U.S. Fish & Wildlife Serv. Res. Publ.

No. 177, Washington, D.C.

• Collection and Submission of Samples for Fish-Kill Investigation and Toxic-

Substance Analysis. Pierce II R.A, May T.W., Hicks Ch.E. University of Missouri

Extension, 2011.

• Real decreto 1528/2012, de 8 de noviembre, por el que se establecen las

normas aplicables a los subproductos animales y los productos derivados no

destinados al consumo humano.

• El Reglamento (CE) Nº 1069/2009 , del Parlamento Europeo y del Consejo y el

Reglamento (UE) Nº 142/2011, de la Comisión, constituyen desde el 4 de marzo

de 2011 el marco legal comunitario aplicable a los subproductos animales no

destinados al consumo humano y los productos derivados de los mismos,

(SANDACH).

2.4. DEFINICIONES

Cadena de Custodia: Documento/s asociado/s de forma inseparable a la

muestra desde el momento de su toma hasta su eliminación, quedando en el

mismo registrados los responsables de cada uno de los procesos al tiempo que

van desarrollándose éstos.

Gestor SANCDACH autorizado: Establecimientos autorizados en toda la UE


consumo humano.

Muestra: Cantidad representativa (propiedades de la muestra idénticas a la de

la población) y estable (propiedades de la muestra inalterables desde su

obtención hasta la realización del ensayo), subconjunto de una población, que

se obtiene para determinar en ella los valores de ciertas propiedades, que

posteriormente se utilizan para realizar inferencias respecto a las propiedades

de la población de la que se obtiene la muestra.

Muestra puntual: Muestra discreta tomada de un agua en función del

momento y/o del emplazamiento. Se trata de una muestra obtenida usando una

botella hidrográfica, una bomba o un balde.

Muestras replicadas: Serie de muestras tomadas de forma simultánea, en el

mismo punto de muestreo y siguiendo el mismo procedimiento, tomadas para

recoger la variabilidad natural del punto de muestreo.


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Muestra compuesta: Dos o más muestras o submuestras de un mismo sitio,

mezcladas en proporciones adecuadas (discreta o continuamente), que

analizadas como una muestra única, a partir de la cual se puede obtener el valor

medio de la característica deseada del punto muestreado.

Muestreador o tomamuestras: Conjunto de dispositivos empleados para

obtener una muestra de agua (Botellas hidrográficas, bombas de succión, balde,

etc.).

Punto de toma de muestra: Estación de muestreo, lugar preciso desde el que

se obtiene la muestra representativa del agua a valorar. Vendrá definida al

menos por su posición geográfica (coordenadas UTM) y profundidad.

Punto de referencia o control: Punto de toma de muestra seleccionado para

representar las condiciones ambientales naturales de un área determinada.

Punto de impacto: Punto de toma de muestra seleccionado para representar

las condiciones ambientales alteradas por efecto de actividades humanas en un

área determinada.

SANDACH: Acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo

Humano.

Submuestra: Cantidad representativa y estable que se obtiene de una muestra

homogénea. Cada uno de los envases de que se compone una muestra puntual.

Parte alícuota de una muestra.

Toma de muestra. proceso de obtención de la muestra a ensayar con el

objetivo de asegurar la validez del resultado evitando errores debidos a

contaminación, degradación, etc. de las muestras a ensayar.


La decisión de iniciar una campaña de recogida y/o investigación de mortandades es

responsabilidad del Coordinador del Trabajo quien previamente se coordinará con el

Director de Obra.

El técnico encargado de la vigilancia y prevención de mortandades es responsable de la

viglancia y detección de mortandades en el río. También es responsable de las recibir

alertas ciudadanas que se reciban a través de los cauces publicitados en las campaña

informativa y página web ( teléfono, mail o web). Actúa bajo la supervisión del RTM pero

debe comunicar al Coordinador de Proyecto las incidencias detectadas.

PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 25

El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe

coordinar el muestreo en el campo según las instrucciones del Coordinador del

Laboratorio. Debe instruir al equipo de muestreo sobre los objetivos y requerimientos

del trabajo antes de llegar al área de trabajo. Así mismo será responsable de

cumplimentar todos los documentos relacionados con la recogida y gestión, así como

de informar al coordinador del proyecto y del laboratorio de todas las incidencias

ocurridas durante la toma de muestra (observaciones, localización, desviaciones, etc.).

Todo el personal del Área de Muestreo (AM) debe cumplir con los requerimientos

especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon, especialmente en relación

con las normas y equipos de seguridad en el trabajo, y el manejor de sustancias tóxicas

y peligrosas (Formol, ácidos, etc..).

Cuando las tareas de retirada de bajas requieran del uso de embaraciones, el AM debe

contar con, al menos, una persona a bordo con las titulaciones necesarias para el

patronaje de la embarcación. El resto de personal debe tener los conocimientos

necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o porque hayan

sido instruidos por los técnicos de la AM.

Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos estándar

descritos en este documento para la recolección y el procesamiento de aguas, incluídas

aquellas que requieren tratamientos especiales.

El técnico encargado de realizar la toma de muestra será el responsable también de su

conservación, transporte y custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en

el Laboratorio.

También será responsable de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo

necesario para la toma de muestra, garantizando su disponibilidad. En el caso de los

equipos portátiles para la determinación de parámetros in situ (sondas

multiparamétricas, etc.) se encargará de su mantenimiento, verificación y calibración

según figura en las correspondientes Instrucciones Técnicas.

2.6. EQUIPAMIENTOS Y TOMA DE MUESTRAS

El equipamiento básico para la retirada de ejemplares y la realización de la toma de

muestra se compone tanto de los equipos mínimos necesarios para la toma de

ejemplares, como de los envases y diverso material auxiliar necesario para las

muestras biológicas y de aguas.


En este apartado se describe de forma resumida el material auxiliar necesario para la

toma de muestras:


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• Equipos de protección individual (EPIs).

• Medio de transporte con capacidad de almacenamiento de material y

contenedores de fauna.

• Sacaderas o salabres.



• Contenedores.

• Red de arrastre de longitud adecuada.

• Arnés, cuerda de seguridad, elementos de amarre y mosquetones.

• Gafas de seguridad, botas de seguridad, guantes desechables.

• Botas altas o vadeador, guantes de goma, traje de agua.

• Pértiga, embudo y recipiente muestreador.

• Mascarillas y media máscara con filtros.

• Botiquín.

2.6.2. Material vario

• Cámara fotográfica, GPS, sonda de profundidad, teléfono portátil.

• Sondas multiparamétricas.

• Registros para la toma de muestra.

• Material para identificar muestras (bolígrafo, lápiz, rotulador indeleble,

pegatinas, etc.).

• Envases para las muestras, embudos, bolsas de plástico fuerte, frascos

lavadores, etc.

• Recipientes aislantes, neveras, hielo, acumuladores de frío, etc.

2.6.3. Envases

Para la toma de cadáveres de peces se deben utilizar contenedores y bolsas de

plástico.

• Contenedores. El contenedor debe ser estanco, de forma que no sea posible la

pérdida de líquidos, permaneciendo la tapa constantemente cerrada. Debe tener

una capacidad adecuada en función de la cantidad de cadáveres detectados en


cada mortandad y la frecuencia de recogida. Además, se procederá a un manejo

adecuado del mismo, es decir, es imprescindible que todos los cadáveres estén

dentro del contenedor y no alrededor del mismo. Una frecuencia de recogida

alta puede facilitar que no se produzca esta práctica, por ello ésta debe ser

como máximo cada 48 horas. Es importante precisar su localización.

• Bolsas de plástico. Cuando la retirada de los SANDACH no es inmediata

resulta conveniente la utilización de bolsas de plástico, desechables, resistentes

y de cierre seguro para evitar problemas de bioseguridad y malos olores. Las

bolsas a su vez deben deposistarse en el contenedor o punto de recogida, se

procede al vaciado de la bolsa en el camión y se almacenan las bolsas de

plástico utilizadas para su posterior destrucción y evitar de esta forma su

reutilización.

Para la toma de muestras de agua se recomienda el empleo de envases nuevos de

vidrio topacio (dada la naturaleza orgánica de muchos tóxicos, su rápida degradación

con la luz solar, así como la posible presencia de metales pesados).

2.6.4. Equipos

Equipos para la toma de muestras de agua

Los equipos que se utilicen serán función de los parámetros a determinar, y se hallarán

comprendidos en los siguientes:

• Directamente mediante la botella o recipiente que se va a enviar al laboratorio.

• Contenedor metálico o de plástico (cubo) y sistema de sujeción (cabos, cadena,

etc.) que permita el manejo desde altura (especialmente útil en arquetas).

Equipos para la determinación de parámetros in situ

Se dispone de los siguientes equipos para la medida de parámetros in situ:

• Medidores portátiles o sistemas multiparamétricos portátiles para la

determinación de pH, conductividad, oxígeno disuelto, temperatura, salinidad,

potencial redox, etc. (ver sus correspondientes Instrucciones de Trabajo).

• Disco de Secchi

2.7. PROTOCOLOS

2.7.1. generalidades

El objetivo de la gestión de mortandades consiste en la aplicación de metodologías que

permitan la retirada de cadáveres de fauna del medio acuático y su posterior gestión

como residuo.


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La gestión de cadáveres está regulada a través del Real Decreto 1528/2012, de 8 de

noviembre, por el que se establecen las normas aplicables a los subproductos animales

y los productos derivados no destinados al consumo humano (SANDACH), cuyo objetivo

es garantizar que, durante su gestión, no se generan riesgos para la salud humana, la

sanidad animal o el medio ambiente y especialmente para garantizar la seguridad de la

cadena alimentaria humana y animal. El transporte y gestión de este tipo de residuos

sólo puede ser realizado por empresas autorizadas y registradas.

Cualquier tratamiento de los cadáveres diferente a los aplicables a subproductos

SANDACH serán consensuados previamente con el Servicio de Biodiversidad Caza y

Pesca Fluvial de la CARM, siempre de acuerdo con la normativa existente.

De forma complementaría se realizarán las tomas de muestras biológicas y de aguas

necesarias para investigar sobre las posibles causas de mortandad. Esta toma de

muestras se debe llevar a cabo con máximo cuidado dada la posible presencia de

tóxicos en el agua, así como por la presencia y manipulación de animales muertos.

El personal del Área de Muestreo de Taxon es el encargado de la recolección de

muestras, su procesamiento y transporte hasta el laboratorio. La muestra de agua debe

ser homogénea y representativa, no deben modificarse sus características, desde la

propia toma hasta que se haya concluido su análisis.

2.7.2. VIGILANCIA Y PREVENCIÓN DE MORTANDADES

El técnico encargado de la vigilancia e inspección (TVI) realiza diariamente (lunes a

viernes) y durante el periodo de dragado un recorrido del curso del río tanto aguas

arriba de la zona de actuación (hasta el azud del Malecón), como aguas abajo (al

menos dos kilómetros), prolongando este recorrido en función de criterios “de visu”

como la turbidez, hallazgos previos, etc. cuanto sea preciso para incluir toda el posible

área de afección. Las primeras inspecciones permitirán acotar más precisamente este

tramo.

También revisará diariamente los comunicados de ciudadanos sobre hallazgos o

episodios de mortandad vía teléfono, mail o página web., Estará encargado informar y

responder a las cuestiones planteadas por éstos.

Comprobará la disposición de barreras antiturbidez durante las fases de generación de

sólidos en suspensión, y la no disminución del caudal del río a unos niveles que

comprometan la supervivencia de la fauna.

Como apoyo para su labor irá equipado de una sonda de conductividad y temperatura,

cámara fotográfica y dispositivos GPS. Así como con el material portátil necesario para

una investigación preliminar, la recogida de ejemplares muertos y la toma de muestras

de tejidos y agua.


Rellenará diariamente un parte inspección y, en caso de localizar un episodio de

mortandad, el parte incluirá también los siguientes aspectos que facilitarán una

primera valoración del episodio:

Sobre la fecha del evento y tramo afectado:

• Datos de identificación del punto de toma (localidad, coordenadas, etc.).

• Tipo de muestras (matriz y procedencia).

• Datos cronológicos de la toma de muestra: fecha y hora.

• Identificación del operario que toma la muestra.

• Metodología de la toma de muestras y técnica de conservación aplicada.

• Descripción del entorno del punto de toma de muestra (vertidos, residuos

urbanos/industriales, ganado, etc.) y de las condiciones meteorológicas.

• Apreciaciones visuales (presencia/ausencia de espumas, residuos flotantes,

hidrocarburos, aspecto, etc.).

• Determinaciones in situ mediante equipos portátiles.

Sobre las características f/q

Determinaciones realizadas mediante examen visual:

• Presencia/ausencia de espumas.

• Presencia/ausencia de residuos flotantes.

• Presencia/ausencia de hidrocarburos visibles.

• Transparencia (m). Mediante el uso del disco de Secchi.

Determinaciones efectuadas mediante equipos portátiles:

• Temperatura.

• pH.

• Conductividad.

• Oxígeno disuelto

Sobre la gravedad del episodio

• Número aproximado de peces afectados,

• Localización de los ejemplares muertos,


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• Comportamiento de ejemplares vivos,

• Especies y estados de desarrollo afectados,

• Tramo afectado, Lo que implica la búsqueda otras posibles zonas de

retención de cadáveres.

• Cercanía a núcleos urbanos y zonas protegidas

Toda la información será reflejada en la Ficha de Campo de Toma de muestra de peces -

mortandad (FR/TX/08-11).Comunicará inmediatamente con el Coordinador del proyecto

el hallazgo de ejemplares muertos, trasladándole toda la información recogida.

El Coordinador decidirá la gravedad del episodio y la necesidad de realizar una recogida

de ejemplares. Avisará de esta necesidad al Director de Obra el cual debe dar el visto

bueno.

En caso de organizarse una campaña de investigación o recogida el TVI guiará al

equipo de muestreo de TAXON hasta la zona de recogida, Para ello localiza posibles

áreas de acceso al tramo afectado y, finalmente, colaborará en las labores de retirada

de fauna e investigación de causas.

2.7.3. RETIRADA Y GESTIÓN DE EJEMPLARES

Una vez aprobada la actuación de retirada y/o investigación de un episodio de

mortalidad de fauna acuática, ésta se ejecutará de forma individualizada para cada

punto o tramo en el que sea detectado La operación deberá realizarse con la mayor

celeridad posible, siendo recomendable actuar en un periodo de tiempo inferior a las 12

horas desde el aviso de presencia de mortandad. La secuencia de operaciones prevista

es la siguiente:

1. Acceso al tramo afectado según indicaciones del TVI.

2. Retirada de ejemplares mediante los medios extractivos más efectivos en

función de las características físicas del punto o tramo afectado, a decidir caso

por caso por el responsable técnico de muestreo de Taxon (RTM).

3. Se completará la toma de muestras bióticas y de aguas iniciada por el TVI.

4. Se vigilará y revisará el tramo afectado para asegurar que no ha quedado

atrapada fauna acuática de consideración en el mismo, y en tal caso proceder a

su retirada.

5. Los ejemplares retirados se depositarán en contenedores estancos o bolsas de

plástico y serán trasladados a los contenedores de obra de residuos SANDACH

homologados, donde se almacenarán hasta su posterior retirada por empresa


autorizada.

6. Si el volumen de residuos retirado así lo requiere el RTM avisará a la empresa

gestora de residuos sandach para la disposición de contenedores adicionales, o

retirada el mismo día.

7. Se realizarán visitas de control una vez finalizada la retirada, al menos durante

los siguientes 2 días. La aparición de ejemplares muertos puede ser continua

durante las horas posteriores a la detección y retirada de cadáveres.

La retirada de ejemplares se realizará mediante los medios extractivos que resulten

más efectivos según las características del tramo afectado (profundidad, corriente,

etc.). Podrán utilizarse diferentes metodologías (extracción manual, sacaderas, redes

de arrastre, etc). La extracción se podrá realizar desde la orilla y, si fuera necesario, con

la ayuda de una embarcación que permita la retirada de los ejemplares alejados de la

misma. Los operarios irán provistos de vadeadores y guantes de protección que les

permitan manipular con seguridad los ejemplares retirados.

La descripción detallada de los procedimientos y metodologías de extracción se

detallan en el documento DT 2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE

FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO

SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.

2.7.4. protocolo de INVESTIGACIÓN

Toda mortandad detectada en la fauna acuática no ha de ser forzosamente debida a la

actuación de dragado. Habitualmente se están produciendo eventos de mortalidad

debido a otros vertidos, epidemias y/o episodios de clima extremo. Por este motivo

puede ser conveniente complementar la actuación de recogida con una investigación

sobre las posibles causas del episodio que permita determinar su origen. Para ello es

muy importante recoger la información necesaria con inmediatez, por lo que esta

actuación se plantea de forma conjunta a la retirada.

TOMA DE MUESTRAS DE AGUAS.

La obtención de una muestra implica que no debe deteriorarse o contaminarse antes

de llegar al laboratorio, para lo que se recomienda tener presente las siguientes

consideraciones:

➢ El personal que toma la muestra debe manipular el material de muestreo con

guantes de protección.


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➢ Todo el material empleado en la toma de sucesivas muestras (botellas,

embudos, recipientes de muestreo, sondas, etc.) se debe lavar cuidadosamente

entre tomas con abundante agua destilada para evitar la contaminación

provocada por los residuos de muestras anteriores.

➢ La toma de muestras de aguas se realiza llenando el recipiente hasta el máximo

volumen, evitando la presencia de cámara de aire o burbujas en el interior

(excepto en el caso de muestras que se vayan a congelar), de esta manera se

reduce la interacción con la fase gaseosa y se minimiza la agitación de la

muestra durante su transporte.

➢ Si se observa la presencia de partículas grandes o materiales groseros, tales

como hojas o detritos, se debe descartar la muestra y tomar una nueva.

➢ Al tomar la muestra, debe evitarse la contaminación procedente del lugar de

muestreo durante la toma, como por ejemplo el arrastre accidental de tierras y

lodos del fondo.

➢ Se evitará tocar la muestra con los dedos o los guantes, así como la superficie

interna de los recipientes, incluidos los tapones.

➢ Es esencial almacenar y transportar los recipientes vacíos con sus tapas

debidamente ajustadas para evitar su contaminación.

➢ Los recipientes deberán ir debidamente etiquetados.

➢ Durante el transporte los recipientes se mantendrán en posición vertical y se

introducirán en refrigeradores portátiles o en neveras rígidas con hielo lo antes

posible, debiendo permanecer refrigeradas hasta su entrega en el laboratorio.

➢ Los envases se deben enjuagar con agua de donde se va a tomar la muestra.

➢ No fumar durante la toma de muestra.

➢ En todo caso habrán de tenerse en cuenta las condiciones de seguridad.

TOMA DE MUESTRAS DE PECES.

Se recogerán dos grupos de muestra para análisis de compuestos orgánicos e

inorgánicos, respectivamente. Cada grupo estará compuesto por un número

comprendido entre 3 y 6 individuos adultos moribundos o que presenten conducta

alterada. De no encontrarse ejemplares vivos, se recogerán ejemplares que muestren

signos de muerte reciente (coloración del cuerpo característica, no pálida, apariencia

normal de mucus sin agregados, o branquias de color rojo). Si tampoco son detectados

ejemplares de muerte reciente se tomarán ejemplares a criterio del técnico.

Si se detectan ejemplares juveniles afectados se recogerán 5 ejemplares para su

análisis, aún vivos a ser posible.

TOMA MANUAL DE MUESTRAS DE AGUA


Las muestras se toman directamente con el envase colector de la muestra (recipientes

sin conservante o reactivos) o bien a través de dispositivos que requieren tanto el

manejo como la presencia del técnico muestreador en el momento en que se realiza la

recogida (uso de pértiga, botellas hidrográficas, etc.). Dichos dispositivos deberán

cumplir con los mismos condicionantes de material y limpieza que los envases

empleados para el muestreo.

De igual forma que con los peces, se tomarán dos grupos de muestras:

• Análisis de compuestos orgánicos: 3 muestras en diferentes puntos del tramo

afectado. Se utilizarán envases de vidrio topacio. La muestra se tomará sin

realizar ningún enjuague o lavado en campo.

• Análisis de compuestos inorgánicos: 3 muestras en los mismos puntos que los

anteriores. Se utilizarán envases de plástico. Al tomar la muestra de forma

manual, el recipiente colector deberá lavarse, al menos, tres veces con agua del

mismo punto a muestrear, excepto cuando se tome directamente en un envase

estéril, el recipiente contenga algún conservante o reactivo previamente

adicionado.

Tratamiento, transporte y conservación

Muestras de peces

Los ejemplares adultos recogidos para análisis de contaminantes orgánicos serán

lavados con agua limpia y envueltos en papel de aluminio con la cara opaca hacia el

pez. Serán introducidos directamente en neveras con hielo y mantenidas a 4°C ±

0,5°C.

Los ejemplares destinados a análisis inorgánicos serán lavados con agua limpia e

introducidos directamente en bolsas de plástico resistente, debidamente etiquetadas, a

las que se les adicionará hielo. Las bolsas serán transportadas en neveras con hielo y

mantenidas a 4°C ± 0,5°C.

Muestras de agua

Serán transportadas en neveras con hielo y mantenidas a 4°C ± 0,5°C. Los envases

transportados en el interior de las neveras se dispondrán de manera que se prevenga

las fracturas de los mismos (alternando material plástico con vidrio, o mediante

material amortiguador).

El sistema de transporte empleado debe asegurar el mantenimiento de las condiciones

originales de la muestra durante el periodo de tiempo que dure el mismo.

El sistema de transporte empleado por Taxon asegura la entrega de las muestras en el

laboratorio el mismo día de la toma, de forma que, generalmente, las submuestras se

acondicionan una vez que han llegado al laboratorio.


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La conservación necesaria para asegurar la estabilidad de las muestras consistirá, de

forma general, en mantenerlas refrigeradas (4°C ± 0,5°C) y en oscuridad

inmediatamente después de que hayan sido tomadas y durante su transporte hasta el

laboratorio. Para ello, se introducirán en nevera rígida portátil junto a bolsas de hielo o

acumuladores de frío, de manera que durante el transporte la muestra se mantenga a

temperaturas inferiores a la observada durante el proceso de toma.

Las muestras que por exigencias analíticas precisen de algún tipo de conservante

químico, recibirán el mismo antes de cerrar los envases, y se consignarán en la ficha de

muestreo. En estos casos se utilizarán las condiciones de conservación de muestra que

el laboratorio de referencia indique.

2.8. CONTROL DE CALIDAD

2.8.1. Identificación y registro

En el momento de la toma de muestras biológicas y de aguas, cada una las muestras

quedará identificada mediante un código único de Identificación.

El Número de muestra se anotará en la Ficha Muestreo. Peces. Mortandad (FR/TX/08-

11), y en la etiqueta de muestreo; así mismo, se incluirá en el resto de documentos

relacionados con ella (boletín de análisis, faxes, actas entrega de muestras, etc.), para

asegurar la trazabilidad de la muestra en todo momento.

Este código permanecerá registrado en la muestra, incluso cuando ésta esté

compuesta de varios recipientes.

2.8.2. CUSTODIA Y ENTRADA EN EL LABORATORIO

Una cadena de custodia es un documento o documentos asociados de forma

inseparable a la muestra desde el momento de su toma hasta su desaparición y que

permite seguir la trazabilidad de la misma; en dichos documentos se registran los

responsables de cada uno de los procesos “sufridos” por la muestra (toma,

conservación, transporte, entrada en el laboratorio y análisis), así como datos propios

de la misma (origen, cronología, número de muestra, tratamiento de conservación,

etc.) junto al nombre y firma del tomador de muestra.

En el caso del Laboratorio los documentos que conforman la cadena de custodia son:

• Etiqueta de muestreo. Para asegurarse de que cada muestra o envase esté

inequívocamente identificada deberá ir acompañada de su correspondiente

identificación mediante etiqueta adherida al envase.


• Ficha Muestreo. Peces. Mortandad (FR/TX/08-11). En estos documentos se hacen

constar los datos de campo que se consideran de interés sobre cada una de las

muestras. Debe ser cumplimentada por el tomador de muestra y acompañará a

la muestra hasta su entrega al laboratorio donde se cumplimentarán los campos

de “recepción en laboratorio” de la Ficha Muestreo. Se entregará copia firmada

por el laboratorio al tomador.

2.8.3. CONTROLES Y BLANCOS

Como control de calidad, para descartar cualquier efecto de contaminación externa y/o

cruzada que pudiera darse durante el proceso de toma de muestra, en cada serie de

muestreo se realizará un control consistente en analizar un blanco de muestreo

constituido por agua ultra-pura.

Dicho blanco de muestreo seguirá el mismo tratamiento que una muestra real, es decir,

se llevará al punto de muestreo y permanecerá destapado durante el proceso de toma

de muestra; posteriormente será transportado en las mismas condiciones que las

muestras “reales”.










El personal operario evaluara las condiciones del punto o tramo en el que se detecta la

mortalidad para realizar los procedimientos bien vadeando o trabajando desde

embarcación. La embarcación estará debidamente equipada con las medidas de

seguridad correspondientes (chalecos salvavidas, radioteléfono, etc.). Así mismo el

propio personal utilizará la vestimenta adecuada a las condiciones imperantes

(vadeador, botas de agua, traje de agua, etc).

Para evitar intoxicaciones accidentales durante la retirada de ejemplares y la toma y

manipulación de las muestras, los operarios usarán guantes desechables y el vestuario

adecuado para su protección. Si se sospecha de la existencia de vapores tóxicos, la

muestra solo se tomará en lugares bien ventilados o mediante el uso obligatorio de


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máscaras adecuadas.

En cuanto a normas de higiene personal a observar, se puede citar la necesidad de

lavarse adecuadamente tras una toma de muestras, y antes de realizar otras

actividades que puedan facilitar la intoxicación accidental (beber, comer, contacto con

mucosas, etc.).



diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra.


• PG/TX/08. Procedimiento General de Manejo de Muestras

• FR/TX/08-11. Ficha Muestreo. Peces – Mortandad.

• FR/TX/08-10. Condiciones Conservación Muestras

• PG/TX/12. Procedimiento General de No Conformidades y Reclamaciones

• PNT/TX/09-26. Determinación Temperatura "in situ"

• PNT/TX/09-12. Determinación O2 "in situ"

• IT/TX/09-11-01. Sonda pH ECOSAN

• IT/TX/09-11-02. Sonda pH PC Ibérica

• IT/TX/09-22-01. Sonda Multiparamétrica CTD SBE-19+

• IT/TX/09-22-02. Sonda Multiparamétrica YSI 6920

• IT/TX/09-23-01. Instrumento RBR TR1060, XR-420 y DUO

• IT/TX/09-23-02. Instrumento CT SBE-37IMP

• IT/TX/04-10 Datalogger HOBO


3. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNAACUÁTICA EXÓTICA

3.1. OBJETIVO


personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en las actuaciones de gestión,

manipulación y eutanasia de la fauna exótica extraída de los recintos de dragado

durante las obras de Restauración Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia

promovidas por la Confederación Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial

Agromán S.L.

El Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo Español de

Especies Exóticas Invasoras, prohíbe la liberación de especies, subespecies o razas

exóticas cuando éstas sean susceptibles de competir con las especies silvestres

autóctonas, alterar su pureza genética o los equilibrios ecológicos. Por tanto, los

ejemplares de las especies animales incluidas en dicho Catálogo que sean capturados,

retenidos o extraídos de los recintos de dragado no podrán ser devueltos al medio.

Este procedimiento estará consensuado previamente con el Servicio de Biodiversidad

Caza y Pesca Fluvial de la CARM, y se realizará siempre de acuerdo con el resto de

normativa existente.

3.2. ALCANCE


la gestión, manipulación y eutanasia de ejemplares de la fauna acuática exótica

presente en los recintos del dragado.


• Identificación del equipo de muestreo y metodología.

• Procedimiento de extracción de los ejemplares (DT 2014/016 PROTOCOLO DE

EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE

RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA).

• Manipulación, eutanasia o traslado de ejemplares.

• Control de la calidad y seguridad.

PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 39


• Ley 32/2007, de 7 de noviembre, para el cuidado de los animales, en suexplotación, transporte, experimentación y sacrificio.

• Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo españolde especies exóticas invasoras (BOE Nº 185, 3 de agosto de 2013)

• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado ycatálogo español de especies exóticas invasoras.

• Real Decreto 1082/2009, de 3 de julio, por el que se establecen los requisitos desanidad animal para el movimiento de animales de explotaciones cinegéticas,de acuicultura continental y de núcleos zoológicos, así como de animales defauna silvestre.

• REAL DECRETO 54/1995, DE 20 DE ENERO, SOBRE PROTECCION DE LOSANIMALES EN EL MOMENTO DE SU SACRIFICIO O MATANZA. (BOE del 15 defebrero). Modificado por Real Decreto 731/2007, de 8 de junio, por el que semodifican determinadas disposiciones para su adaptación a la normativacomunitaria sobre piensos, alimentos y sanidad de los animales (BOE 20 dejunio)

• Recomendaciones para la eutanasia de Animales de Experimentación: Partes 1 y2. DGXI de la Comisión Europea, utilizado en el desarrollo de la Directiva86/609/EEC del 24 de Noviembre de 1986, relativa a la aproximación de lasdisposiciones legales, reglamentarias y administrativas de los Estados miembrosrespecto a la protección de los animales utilizados para experimentación y otrosfines científicos (Nº L358, ISSN 0378-6978).

• Ley 42/2007, de 13 de diciembre, del Patrimonio Natural y de la Biodiversidad.

• Ley 7/2003, de 12 de noviembre, de Caza y Pesca Fluvial de la Región de Murcia.

• Ley 7/1995, de 21 de abril, de la fauna silvestre, caza y pesca fluvial.

• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo degalápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territorii Medi Ambient. 31 pp.

3.4. DEFINICIONES

Aturdimiento: todo procedimiento que, cuando se aplique a un animal,provoque de inmediato un estado de inconsciencia que se prolongue hasta quese produzca la muerte

Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada porésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia ydensidad o impedir la dispersión una especie.

Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución yde dispersión natural.

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Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieransobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural yde su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin laintroducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.

Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podríaconvertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado esecarácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.

Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en unecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio yamenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamientoinvasor, o por el riesgo de contaminación genética.

Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de unaespecie.

Eutanasia: esta palabra significa muerte buena y debe considerarse como unprocedimiento de matanza humanitario con el mínimo de dolor y estrés para elanimal.

Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UEpara la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados alconsumo humano

Matanza: todo procedimiento que provoque la muerte de un animal.

Sacrificio: muerte del animal por sangradoSANDACH: acrónimo deSubproducto Animal No Destinado Al Consumo Humano.

Sujeción: la aplicación al animal de todo procedimiento concebido para limitarsus movimientos a fin de facilitar el aturdimiento o el sacrificio eficaces.


El RTM de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe coordinar e instruir al equipo de

muestreo sobre los objetivos y requerimientos del proceso antes de llegar al área de

trabajo. Así mismo será responsable de cumplimentar todos los documentos

relacionados con la recogida y gestión de ejemplares, así como de informar al

coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante los procedimientos

(observaciones, localización, desviaciones, conflictos, etc.). También será responsable

de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo necesario para los

procedimientos garantizando su disponibilidad.

El RTM debe coordinar con la persona encargada de los sacrificios, preferiblemente un

veterinario, los muestreos, identificación y sacrificio para que transcurra el menor

tiempo posible desde su captura hasta el sacrificio. Asimismo velará por las condiciones

de conservación de los ejemplares capturados para reducir al máximo su estrés.


Todo el personal del Área de Muestreo (AM) o trabajo debe cumplir con los

requerimientos especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon,

especialmente en relación con normas y equipos de seguridad en el trabajo, manejo de

sustancias tóxicas y peligrosas (Formol, ácidos, etc.) y manipulación de ejemplares.la

recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor autorizado.

Toda persona que intervenga en la conducción, estabulación, sujeción, aturdimiento,

sacrificio o matanza de animales deberá poseer la preparación y destreza necesarias

para llevar a cabo estos cometidos de forma humanitaria y eficaz.

Cuando el procedimiento de extracción de ejemplares requiera del uso de embarciones,

el AM debe contar con al menos una persona con las titulaciones necesarias para el

patronaje de la embarcación. El resto de personal debe tener los conocimientos

necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o porque hayan

sido instruidos por el responable técnico.

Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos descritos en

este documento para la manejo de metodología, recolección y manipulación de

ejemplares.

En el caso de completar con toma de muestras de los ejemplares, el técnico encargado

de realizar la toma será el responsable también de su conservación, transporte y

custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en el Laboratorio

correspondiente.

3.6. EQUIPAMIENTO







• Botas altas o vadeadores.

• Redes de cierre, profundímetro, cuerdas y boyas para fijar transectos.

• Contenedores para especies exóticas.

• Botiquín, equipo de primeros auxilios.

• Anestésicos seleccionados para el sacrificio de ejemplares.


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• Extintor, para el uso en zonas con riesgo de incendio por proximidad delgenerador eléctrico.

• Cámara fotográfica.

• Neveras.

• Sistema de aireación de contenedores.

3.6.2. Manipulación y eutanasia de fauna exótica

• Sacaderas y salabres

• Cubos de goma o plásticos (10-12 L) para trasladar los peces hasta loscontenedores.

• Contenedores para peces de diferentes tamaños para su traslado. Susdimensiones deben ser las adecuadas para evitar elevadas densidades duranteel traslado.

• Contenedores de rejilla, que permitan el paso del agua a través. Funcionan comovivero para mantener los peces en buenas condiciones hasta que son devueltosal río

• Anestésicos.

• Hielo o refrigerantes.

Fotografía 3.1: Ejemplares de perca sol (Lepomis gibbosus) (Fotografía: Dpto. Zoología yAntropología Física). Ejemplar de tortuga de florida (Trachemys scripta elegans) (Fotografíatomada del Informe LIFE-Trachemys, nº10).


3.7. PROTOCOLO O PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN YEUTANASIA

3.7.1. GENERALIDADES

• Los procedimientos detallados para la captura y extracción de la fauna acuática

exótica objeto del presente protocolo se detallan en el documento DT 2014/016

PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS

LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE

MURCIA.

• Los animales capturados serán procesados lo antes posible. Si no puede evitarse

el retraso de la operación, se les protegerá de las inclemencias del tiempo y se

les proporcionará una ventilación y temperatura adecuada.

• Se mantendrán separados los animales susceptibles de dañarse entre sí (ej.

cangrejos y/o galápagos predadores del resto de peces).

• No se causará a los animales agitación, dolor o sufrimiento evitables durante las

operaciones de traslado, conducción, estabulación, sujeción, aturdimiento y

matanza.

• Los instrumentos y equipamiento utilizado para aturdir y sacrificar deben estar

seleccionados de manera que la actuación sea rápida y eficaz.

• En caso de que los métodos utilizados no causaren la muerte instantánea, se

adoptarán las medidas oportunas para que su sedación o aturdimiento, y , en

todo caso, para que la muerte acontezca con la mayor rapidez posible.

• Todos los métodos de eutanasia son susceptibles de ejecutarse incorrectamente,

y por ello, el personal responsable de la eutanasia debe estar adecuadamente

formado para su realización efectiva y humanitaria, preferiblemente un

veterinario o, en caso de fauna menor (ej. invertebrados y especies de pequeño

tamaño), o empleo de métodos no químicos por personal con formación.

3.7.2. Especies afectadas:

Peces: Los ejemplares identificados de las especies de peces exóticas

[ejemplos: pez sol (Lepomis gibbosus), lucioperca (Sander lucioperca), alburno

(Alburnus alburnus), gambusia (Gambusia holbrooki), etc.] consideradas nocivas

por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán objeto del presente el

protocolo de gestión de fauna exótica.

Galápagos exóticos: Los ejemplares identificados de especies de galápagos

exóticos (ejemplos: galápago de Florida (Trachemys scripta elegans), tortuga de


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orejas amarillas (Trachemys scripta scripta), Graptemys sp., Pseudemys sp.,

etc.] consideradas nocivas por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial

también serán gestionados de acuerdo con las actuaciones especificadas en

este protocolo.

Otros componentes de fauna exótica: Los ejemplares identificados de otras

especies de fauna exótica (ejemplos: Cangrejo rojo o americano (Procambarus

clarkii), Almeja asiática (Corbicula fluminea), etc.] consideradas nocivas por el

Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial también serán gestionados de

acuerdo con las actuaciones especificadas en este protocolo.

La Dirección General del Medio Natural de la CARM no autoriza la devolución al medio

acuático de ejemplares de los tres grupos de especies descritos y, en consecuencia,


3.7.3. PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA

La manipulación y eutanasia se ejecutará mayormente el periodo de actuación de la

extracción y control específico realizada en cada recinto de dragado. La secuencia de

operaciones prevista es la siguiente:

1. El RTM de TAXON coordina con la persona encargada de la matanza las fechas y

horarios de las actuaciones para que transcurra el menor tiempo posible entre la

captura y la matanza.

2. El RTM de TAXON se asegura previamente de la disponibilidad de contenedores

SANDACH homologados

3. Se realizan las capturas según DT 2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y

CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN

AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.

4. Se procede a la identificación de los ejemplares y su clasificación según se trate

de especies exóticas o nativas.

5. Los ejemplares de exóticas con destino a la matanza son almacenados en

contenedores adecuados para su mantenimiento y custodia hasta sacrificio de

acuerdo a los requisitos de bienestar animal.

6. Caso de transcurrir más de un día hasta matanza el RTM velará por las

condiciones de almacenamiento y custodia, así como por el bienestar animal de

los ejemplares capturados hasta su matanza.


7. Una vez personado el veterinario o persona responsable de la matanza se

procede a la eutanasia de los ejemplares de acuerdo a las metodologías

expuestas en el apartado 7.3 del presente documento.

8. Una vez confirmada la muerte de los ejemplares, los cadáveres y residuos serán

depositados en los contenedores SANDACH.


retirada de los contenedores homologados

3.7.4. METODOLOGÍA DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA

En este apartado se exponen las directrices metodológicas para el desarrollo de los

distintos procedimientos. Su aplicación está condicionada por el grupo faunístico objeto

de manipulación y eutanasia.

Los procedimientos de eutanasia son variados y deben ser seleccionados

específicamente. El personal encargado debe tener formación en la ejecución más

adecuada de los mismos.

PECES EXÓTICOS

A) Descripción de métodos físicos y químicos seleccionados

• La concusión es un método físico adecuado para grandes ejemplares. Esta

técnica implica un golpe en la parte trasera de la cabeza y, si lo realiza personal

experimentado, es un método humanitario de eutanasia. Se debe confirmar la

muerte destruyendo el cerebro.

• La dislocación cervical es un método útil para ejemplares pequeños y

medianos. Se introduce un instrumento (palo, pinzas, etc.) por la boca, se

inmoviliza al ejemplar con la otra mano y se desplaza el instrumento

dorsalmente. El estrés producido por la manipulación en ejemplares grandes

obliga a trabajar con individuos anestesiados en estos casos.

• La congelación rápida (ej. inmersión en nitrógeno líquido) con ejemplares

anestesiados también es otro método viable. Con individuos anestesiados se

estudiará la posibilidad de matanza con dióxido de carbono.

• Los métodos químicos más comunes para la eutanasia consisten en la

sobreexposición de los ejemplares a anestésicos, ya que estos son agentes que

producen la ausencia de percepción y permiten, por tanto, la matanza animal en

ausencia de sufrimiento y dolor.


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Todos los peces son sensibles a los cambios en los parámetros físico-químicos del agua

(temperatura, gases disueltos, salinidad, pH, etc.), pero unas especies son mucho más

tolerantes que otras a los cambios en alguno de estos parámetros. Por ello, a menos

que se conozca la respuesta de las especies, es recomendable realizar la eutanasia en

el mismo tipo de agua que sea habitual para la especie. Se reducirá el nivel de agua

para asegurar una sedación rápida, pero no demasiado para no producir angustia antes

de añadir el agente. De este modo también se reduce la cantidad total de sustancia a

utilizar. La dosificación en contenedores es siempre preferible a la inyección ya que esta

última implica manipulación del pez y esto le produciría estrés. Los contenedores que

se utilicen deben permitir al personal observar los peces y reaccionar rápidamente si

hay signos de sufrimiento.

A menudo la temperatura del agua altera la eficacia del fármaco y la inducción es

generalmente más rápida a temperaturas más altas. Sin embargo, no se debe elevar la

temperatura hasta niveles que puedan provocar estrés a los peces. Generalmente se

utilizan para la eutanasia agentes anestésicos al doble o al triple de la dosis anestésica

recomendada.

La sobreexposición a un anestésico se manifiesta primeramente por el cese de los

movimientos respiratorios, seguido de la sobreextensión espasmódica o

ensanchamiento de los opérculos. Al principio, estos procesos se producen cada 15-30

segundos y después a intervalos más largos. Cuando los intervalos entre espasmos son

aproximadamente de 1 minuto, en pocos minutos se producirá la parada cardiaca y la

muerte.

En todos los casos debe confirmarse la muerte. Se puede reconocer la muerte por el

cese de la respiración (movimiento opercular) y el cese del latido cardiaco (palpación).

Cuando sea posible, se debe confirmar la muerte por destrucción del cerebro.

B) Empleo de Anestésicos

La eficacia de los anestésicos dependerá de factores biológicos (especie, peso, tamaño,

etc.) y ambientales (temperatura, pH, conductividad del agua, etc.). Por tanto, la

elección del tipo de anestésico a emplear se realizará en función de su eficacia, pero

también según su disponibilidad, facilidad de uso y seguridad del manipulador.

Los anestésicos más empleados para el sacrificio humanitario en peces son los

siguientes:

• Tricaína metano sulfonato (MS-222 tamponado): el uso de MS-222 es un

método de eutanasia humanitario y seguro para peces. Es soluble tanto en agua

salada como dulce, pero necesita ser neutralizado con bicarbonato, imidazol,

fosfato ácido de sodio, o hidróxido sódico para reducir la irritación y el daño

tisular. La efectividad del MS-222 varia con la especie, tamaño, temperatura y


dureza del agua. El MS-222 no es estable a la luz solar y las soluciones

almacenadas se deberán guardar en botellas de vidrio ámbar u opacas. Se

puede utilizar junto con quinaldina o sulfato de quinaldina lo que lo hace mas

eficaz, necesitándose menores cantidades que si se utilizasen cualquiera de los

agentes por separado. Concentración mínima recomendada: 160 mg/l.

• Aceite de clavo (Eugenol): El aceite de clavo es un producto natural obtenido

por destilación de tallos, flores y hojas trituradas de la planta del clavo cuyo

principal ingrediente activo es el eugenol (70-90 % del total). Por ser una

sustancia empleada como aditivo alimentario puede ser utilizado con garantías

de seguridad por los manipuladores. Concentración mínima recomendada:

80 mg/l.

• Benzocaina (etil aminobenzoato): este agente, disuelto en acetona o alcohol

etílico antes de añadirlo al agua del tanque, es un método efectivo y

humanitario para sacrificar peces. Actúa deprimiendo el sistema nervioso

central. Posee eficacia pH-independiente, pero reduce el pH del agua del tanque,

por lo que deberá tamponarse a pH 7.5 para reducir la irritación. El tiempo de

descomposición en agua es de unas 4 horas lo que hace que sea

medioambientalmente seguro y además lo es para el personal. Se ha de

confirmar la muerte por medios físicos. Concentración efectiva

recomendada: 200 mg/l.

• Etomidato y metomidato: Ambos son agentes hipnóticos no-barbituricos que

actúan deprimiendo el sistema nervioso central. Son de actuación relativamente

rápida y están considerados como agentes humanitarios para la matanza de

peces. Son altamente solubles en agua.

GALÁPAGOS EXÓTICOS

Los instrumentos y equipamiento utilizado para aturdir y sacrificar deben estar

seleccionados de manera que la actuación sea rápida y eficaz.

El aturdimiento mediante enfriamiento reduce sus procesos metábólicos y locomotores

facilitando la manipulación previa a la eutanasia. Para ello se dispondrán los ejemplares

en contenedores con un volumen mínimo de agua con hielo hasta alcanzar una

temperatura aproximada no superior a 5 ºC (estas temperaturas pueden incluso matar

a algunas especies tropicales). La anestesia de los ejemplares también podrá realizarse

mediante el uso de tranquilizantes y analgésicos.

A) Descripción de métodos físicos y químicos seleccionados


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• La concusión que implica un golpe en la parte trasera de la cabeza o la

decapitación siempre que lo realice personal experimentado. Los ejemplares

deben ser aturdidos o insensibilizados antes de la misma, ya que son muy

resistentes a la anoxia. Debe realizarse con individuos totalmente anestesiados,

es un método válido de eutanasia. Se debe confirmar la muerte destruyendo el

cerebro. Este método será realizado principalmente con ejemplares pequeños.

• La congelación rápida (ej. inmersión en nitrógeno líquido) con ejemplares

anestesiados también podría ser otro método viable.

• Los métodos químicos con agentes inyectables son métodos efectivos. La

administración de una dosis de pentabarbital sódico (2-3 mL) administrada en el

seno venoso postoccipital (ej. inyección de Doletal®) es un método efectivo y

humanitario para la eutanasia de reptiles. La vía intravenosa puede ser utilizada

si el personal tiene experiencia previa pero si no es así es recomendable la vía

intraperitoneal, aunque actúa más despacio. No se inyectará por vía

intracardiaca o intrapulmonar ya que están consideradas dolorosas e irritantes.

Concentración efectiva recomendada: 200 mg/kg.

Fotografía 3.2: procedimiento de eutanasia mediante inyección

en seno venoso postoccipital (Fotografía tomada de los Informes

LIFE-Trachemys, nº10)

En los galápagos la retracción de la cabeza y la protección del caparazón pueden

dificultar la eutanasia. Además, al tratarse de animales poiquilotermos, están

adaptados a las fluctuaciones de su temperatura corporal y su sistema nervioso central

es menos sensible a un descenso en la tensión de oxígeno y, en consecuencia, tienen

una prolongada tolerancia a la hipoxia. Dado que es difícil determinar en los reptiles

cuando están inconscientes o muertos se recomienda confirmar la muerte por

destrucción del cerebro. Frecuentemente, pero no siempre, la falta de respuesta de la


membrana nictitante implica la falta de consciencia. El rigor mortis y la ausencia

prolongada de latido cardiaco y/o circulación son indicadores fiables de la muerte.

3.8. MANEJO Y ELIMINACIÓN DE CADÁVERES

3.8.1. Generalidades

Deben evaluarse los posibles riesgos hacia los humanos cuando se conozca que los

animales son portadores de agentes zoonósicos.

Los ejemplares capturados mediante las distintas metodologías se depositan

inicialmente en viveros ubicados directamente en el agua o contenedores de plástico

asegurando una oxigenación adecuada.

Para la manipulación puede ser conveniente el uso de un producto anestésico que los

relaje y facilite el trabajo. No obstante, esto será dependiente del tipo y tiempo de

manipulación pues es muy importante controlar el tiempo de exposición al anestésico.

Los ejemplares deberán ser identificados a nivel de especie, clasificados y separados en

función de su carácter exótico o autóctono. La identificación se realizará “in situ”

mediante la observación de caracteres morfológicos externos. Si existen dudas en la

identificación de alguna especie o ejemplar, se conservarán algunos individuos para su

posterior análisis en el laboratorio.

Los ejemplares identificados de peces, galápagos y otros componentes de fauna exótica

serán incluidos en los depósitos dispuestos para el proceso de eutanasia mediante

métodos físicos o químicos en función de la logística desarrollada en cada recinto de

trabajo.

Una vez se haya confirmado la muerte de los ejemplares estos se depositarán en los

contenedores para material SANDACH.











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Para evitar intoxicaciones accidentales durante la manipulación de ejemplares, los

tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario adecuado para su

protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de declaración obligatoria

deberán emplear trajes de bioseguridad desechables. En cuanto a normas de higiene

personal a observar, se puede citar la necesidad de lavarse adecuadamente tras una

toma de muestras, y antes de realizar otras actividades que puedan facilitar la

intoxicación accidental (beber, comer, contacto con mucosas, etc.).

3.9.1. Seguridad en los procedimientos de extracción

Los procedimientos detallados sobre la seguridad en la captura y extracción de la fauna

acuática exótica objeto del presente protocolo se detallan en el documento DT

2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS

LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.


• PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS

LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE

MURCIA.

• PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS BIOLÓGICOS (SANDACH).


4. PROTOCOLO DE GESTIÓN DERESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGENANIMAL

4.1. OBJETIVOS

El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida, por el

personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en el proceso de gestión de subproductos

animales no aptos para el consumo humano (en adelante SANDACH) recogidos de

medios acuáticos (peces, galápagos, cangrejos, etc.) ante la aparición episodios de

mortandad o por requerimientos específicos de la actuación. Este Protocolo de Trabajo

Normalizado cubre la manipulación de bajas hasta su entrega a gestor autorizado

El personal del Área de Muestreo de Taxon es el encargado de la recolección de

muestras, y su custodia hasta recogida por gestor autorizado.

4.2. ALCANCE

Este protocolo es de aplicación, única y exclusivamente para la gestión de los residuos

SANDACH derivados de las acciones de rescate de fauna acuática, sean consecuencia

de su sacrificio (caso de fauna exótica), o por bajas producidas durante su

manipulación. También se incluyen la gestión de residuos de origen animal procedentes

de episodios de mortalidad masivas acontecidos en el río.


• Protocolo de despesque y translocación de fauna acuática

• Protocolo de gestión de fauna exótica exóticas

• Protocolo de gestión urgente de mortandades

• Real decreto 1528/2012, de 8 de noviembre, por el que se establecen las

normas aplicables a los subproductos animales y los productos derivados no

destinados al consumo humano.

• El Reglamento (CE) Nº 1069/2009 , del Parlamento Europeo y del Consejo y el

Reglamento (UE) Nº 142/2011, de la Comisión, constituyen desde el 4 de marzo

de 2011 el marco legal comunitario aplicable a los subproductos animales no

destinados al consumo humano y los productos derivados de los mismos,

(SANDACH).

• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado y

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catálogo español de especies exóticas invasoras.

4.4. DEFINICIONES

Cadena de Custodia: Documento/s asociado/s de forma inseparable a la

muestra desde el momento de su toma hasta su eliminación, quedando en el

mismo registrados los responsables de cada uno de los procesos al tiempo que

van desarrollándose éstos.

Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada por

ésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia y

densidad o impedir la dispersión una especie.

Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución y

de dispersión natural.

Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,

incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieran

sobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural y

de su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin la

introducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.

Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podría

convertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado ese

carácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.

Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en un

ecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio y

amenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamiento

invasor, o por el riesgo de contaminación genética.

Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de una

especie.

Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UE


consumo humano

SANDACH: acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo

Humano.

Translocación: accion de transporte de poblaciones animales a otra localidad

diferentes del punto de captura.

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El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe

coordinar la recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor

autorizado. Debe instruir al equipo de muestreo sobre los objetivos y requerimientos del

proceso antes de llegar al área de trabajo. Así mismo será responsable de

cumplimentar todos los documentos relacionados con la recogida y gestión y de

informar al coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante la toma

de muestra (observaciones, localización, desviaciones, etc.).

Todo el personal del Área de Muestreo (AM) debe cumplir con los requerimientos

especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon, especialmente en relación

con las normas y equipos de seguridad en el trabajo, y el manejor de sustancias tóxicas

y peligrosas (Formol, ácidos, etc..).

Cuando las tareas de retirada de bajas requieran del uso de embarcaciones, el AM debe

contar con al menos una persona a bordo con las titulaciones necesarias para el

patronaje de la embarcación. El resto de la tripulación debe tener los conocimientos

necesarios de seguridad en el mar, bien porque tengan la titulación necesaria o porque

hayan sido instruidos por los técnicos de la AM.

Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos estándar

descritos en este documento para la recolección y el procesamiento de aguas marinas,

incluídas aquellas que requieren tratamientos especiales.

El técnico encargado de realizar la toma de muestra será el responsable también de su

conservación, transporte y custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en

el Laboratorio.

También será responsable de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo

necesario para la operación garantizando su disponibilidad.

4.6. METODOLOGIA

4.6.1. Generalidades

Durante las operaciones de despesque y translocación de fauna acuática pueden

generarse volúmenes destacables de residuos SANDACH procedentes bien del sacrificio

intencionado de exóticas o de bajas accidentales acontecidas durante su manipulación

y traslado. En su gran mayoría se tratará de especies de fauna exótica que no hayan

podido evacuarse de los recintos de dragado durante los arrastres y cercos. En otros

casos las bajas pueden proceder de las operaciones de translocación o de episodios de

mortandad súbita acontecidos por causas naturales o fruto de algún evento de

contaminación ambiental. Su acumulación en determinados diques y remansos del


cauce fluvial supone un riesgo ambiental y sanitario por lo que debe procederse a su

retirada según el Protocolo de Gestión de Mortandades y a su procesamiento según el

presente protocolo..

En relación al sacrificio de exóticas debe recordarse que el Real Decreto 1628/2011, de

14 de noviembre, por el que se regula el listado y catálogo español de especies

exóticas invasoras, prohíbe la liberación de especies subespecies o razas exóticas

cuando éstas sean susceptibles de competir con las especies silvestres autóctonas,

alterar su pureza genética o los equilibrios ecológicos. Por tanto Los ejemplares de las

especies animales incluidas en el Catálogo de exóticas que sean capturados, retenidos

o extraídos de la naturaleza por cualquier procedimiento, no podrán ser devueltos al

medio natural excepto por razones de investigación.

Por su parte la Orden de 13 de mayo de 2013, por la que se regula el ejercicio de la

pesca fluvial para la temporada 2013/2014 y reglamentaciones para la conservación de

la fauna ictícola de la Comunidad Autónoma de la Región de Murcia señala que las

“especies exóticas Lucioperca (Sander lucioperca), Lucio (Esoxlucius), Alburno

(Alburnus alburnus), Perca sol (Lepomis gibbosus) y Gambusia (Gambusia holbrooki) ...,

al considerarse especies nocivas para los ecosistemas acuáticos de la Región de Murcia

y potencialmente invasoras de los mismos, no se autoriza la devolución a las aguas de

cualquier ejemplar que pudiera capturarse de las citadas especies”.

Tras consulta al Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca Fluvial, la actuación

recomendada es el sacrifico controlado de la toda la fauna exótica capturada, a

excepción de aquellas especies pescables consideradas no nocivas [carpa común

(Cyprinus carpio) y boga del tajo (Pseudochondrostoma polylepis)] que serán evaluados

en relación a su estado sanitario y translocados a localidades consensuadas con dicho

Servicio.

La gestión de estos cadáveres está regulada a través del Real Decreto 1528/2012, de 8

de noviembre, por el que se establecen las normas aplicables a los subproductos

animales y los productos derivados no destinados al consumo humano (SANDACH),

cuyo objetivo es garantizar que durante su gestión no se generan riesgos para la salud

humana, la sanidad animal o el medio ambiente y especialmente para garantizar la

seguridad de la cadena alimentaria humana y animal.

Según esta reglamentación los SANDACH generados durante este tipo de operaciones

se clasificarían como categoría C2 donde se incluyen:

e) Animales o partes de animales que no sean los mencionados en el artículo 4,

que mueran sin ser sacrificados para el consumo humano, incluidos los animales

sacrificados para erradicar una enfermedad epizoótica;

El transporte y gestión de este tipo de residuos sólo puede ser realizado por empresas


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autorizadas y registradas. Por lo que resulta obligado la contratación de sus servicios de

manera previa a la ejecución de acciones de rescate y translocación.

4.6.2. Condiciones de seguridad

En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben observar el personal

que lleve a cabo la toma de muestras según lo especificado en el presente

procedimiento.

Es conveniente evitar, en la medida de lo posible la toma de muestras en zonas

peligrosas y con situaciones ambientales desfavorables.

El personal encargado de la toma de muestras se desplazará hasta el punto de toma

bien vadeando el cuerpo de agua, si es posible, o bien en una embarcación

debidamente equipada con las medidas de seguridad correspondientes (chalecos

salvavidas, radioteléfono, bengalas,...etc). Así mismo el propio personal utilizará la

vestimenta adecuada a las condiciones imperantes (vadeador, botas de agua, traje de

agua, etc).

Las condiciones de luz en el momento de la recogida deben ser tales que aseguren la

detección de cualquier contingencia así como una buena caracterización visual del

entorno, no admitiéndose continuar con la toma cuando sea necesario el empleo de luz

artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las condiciones meteorológicas

con el fin de garantizar la seguridad del personal y de los equipos.

Para evitar intoxicaciones accidentales durante la toma y manipulación de las

muestras, los tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario

adecuado para su protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de

declaración obligatoria deberán emplear trajes de bioseguridad desechables.

En cuanto a normas de higiene personal a observar, se puede citar la necesidad de

lavarse adecuadamente tras una toma de muestras, y antes de realizar otras

actividades que puedan facilitar la intoxicación accidental (beber, comer, contacto con

mucosas, etc.).

4.6.3. Equipamiento para la MANIPULACIÓN DE RESIDUOS

SANDACH





Material general

En este apartado se describe de forma resumida el material auxiliar necesario para la

toma de muestras:

• Trajes de bioseguridad (caso enfermedades de declaración obligatoria)

• Mascarillas y media máscara con filtros.

• Papel secamanos y disolución desinfectante.

• Botiquín.

Envases

• Contenedores: El contenedor debe ser estanco, de forma que no sea posible la

pérdida de líquidos, permaneciendo la tapa constantemente cerrada. Debe tener

una capacidad adecuada en función de los kilos de cadáveres generados en

cada explotación y la frecuencia de recogida. Además, se procederá a un

manejo adecuado del mismo, es decir, es imprescindible que todos los

cadáveres estén dentro del contenedor y no alrededor del mismo. Una

frecuencia de recogida alta puede facilitar que no se produzca esta práctica, por

ello ésta debe ser como máximo cada 48 horas. Es importante precisar su

localización.

• Bolsas de plástico: cuando la retirada de los SANDACH no es inmediata

resulta conveniente la utilización de bolsas de plástico, desechables, resistentes

y de cierre seguro para evitar problemas de bioseguridad y malos olores. Las

bolsas a su vez deben deposistarse en el contenedor o punto de recogida, se

procede al vaciado de la bolsa en el camión y se almacenan las bolsas de

plástico utilizadas para su posterior destrucción y evitar de esta forma su

reutilización.

Material vario

• Cámara fotográfica, GPS, sonda de profundidad, teléfono portátil.

• Bolígrafo, lápiz, rotulador indeleble, pegatinas, …

• Envases para el transporte de los ejemplares hasta contenedor adecuado

• Recipientes aislantes, neveras, hielo, acumuladores de frío, …


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4.7. PROCEDIMIENTO DE RETIRADA DE BAJAS

En todos los casos la retirada y almacenamiento de bajas debe efectuarse lo antes

posible tras el sacrificio o recogida en el mismo lugar de captura. Para su traslado hasta

el contenedor dispuesto al efecto se emplearán bolsas de plástico o recipientes

estancos adecuados para su vertido directo al contenedor. El Responsable Técnico de

Muestreo velará por que no queden restos o ejemplares sin recoger.

Procedentes de las actuaciones de extracción y translocación de fauna

acuática

1. Inicialmente la Dirección de Obra comunicará al Responsable Técnico de

Muestreo de TAXON (RTM), con al menos cuatro días de antelación, la creación

de cada recinto de dragado.

2. El RTM de TAXON coordina con la Dirección de Obra las condiciones y permisos

de acceso al recinto y las localizaciones más adecuadas para la colocación de

los contenedores de forma que no se obstaculice el resto de la obra.


colocación de los contenedores homologados en las localizaciones acordadas

con la Dirección de Obra. Confirma su instalación y vela por que estén

convenientemente señalizados.

4. La bajas de la extracción y sacrificio son almacenadas en los contenedores.

5. Finalizada la campaña de extracción y translocación el RTM o persona delegada

comunica a la empresa gestora de residuos para la retirada de contenedores,

firma y guarda copia de la ficha de retirada.

6. Al menos un contenedor de residuos debe quedar en el recinto de obra, para la

retiradas de ejemplares muertos hallados durante la inspección del río aguas

abajo o durante las labores de dragado.

Procedentes de episodios de mortandad masiva aguas abajo.

1. El encargado de vigilancia fluvial de mortandades localiza un acúmulo de peces

muertos aguas abajo de la zona de dragado y dentro de su zona de influencia.

Avisa al RTM para que disponga de un grupo de recogida de los cadáveres

hallados.

2. El grupo de recogida se persona en el tramo del río afectado y recoge los

ejemplares, almacenándolos provisionalmente en bolsas de plásticos o

contenedores.

3. Traslada las bajas al contenedor de la zona de obra y avisa a la empresa gestora


para su recogida.

4. El RTM o persona delegada firma y guarda copia de la ficha de retirada.

En estos casos puede ser conveniente analizar las causas del hallazgo pues puede

deberse a otro tipo de vertidos. Para ello se apartarán algunos de los ejemplares

recogidos de acuerdo al protocolo PN/TX/09-28 de TOMA DE MUESTRAS PECES.

INVESTIGACIÓN EPISODIOS DE MORTANDAD.

En el caso de gestión de exóticas resulta tambíen conveniente el análisis de algunos

ejemplares de acuerdo al mencionado protocolo para examen de carga parasitaria o

detección de enfermedades de declaración obligatoria.

Procedentes de hallazgos fortuitos durante la obra.

Durante las labores de dragado pueden encontrarse cadáveres de ejemplares no

recogidos durante los despesques debido a su inaccesibilidad, hallarse enterrados en el

fango (ej. galápagos) o reentrada. En tales casos los operarios de obra pueden proceder

directamente a su retirada y depósito en el contenedor SANDACH avisando al RTM de

este tipo de hallazgos.

4.7.1. Registro de actuación:

Se elaborará una ficha registro de cada actuación de retirada de ejemplares

Ficha de retirada de bajas. En estos documentos se hacen constar los datos de campo

que se consideran de interés sobre cada una de las muestras. Debe ser cumplimentada

por el tomador de muestra “in situ”.

4.7.2. Documentos de la recogida

El gestor de los SANDACH requerirá el cumplimentado de una ficha de recogida en la

que normalmente incluirá la siguiente información:

• Fecha en la que el material sale de la explotación.

• Nombre del establecimiento o explotación de la que sale el residuo.

• Descripción del material.

• Cantidad. Nº aproximado de peces afectados.

• Localización de los ejemplares muertos

• Lugar de origen y destino.

• Nombre y dirección del transportista y matrícula del vehículo.


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• Nombre y dirección del consignatario y, en su caso número de autorización.

El documento comercial deberá presentarse por triplicado: el original irá al destino final

(el consignatario deberá conservarlo), una copia será para el productor y la otra para el

transportista. Los documentos comerciales se deberán conservar durante un periodo

mínimo de dos años para su eventual presentación a las autoridades competentes.

4.7.3. Custodia hasta retirada

Deberá precisarse la localización geográfica de los contenedores de residuos SANDACH.

Estas ubicaciones serán seleccionadas para garantizar la custodia de los mismos, bien

en el interior de recintos cerrados, o zonas dotadas de algún tipo de vigilancia

(cámaras, seguridad privada, etc.).

A la retirada por gestor autorizado se rellenará la ficha de recogida.


En este caso los impresos y registros son proporcionados por la empresa gestora de los

SANDACH.


diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra.


• Protocolo de despesque y translocación de fauna acuática fluvial (TAXON, 2014).

• Protocolo de Gestión de fauna exótica (TAXON, 2014)

• Protocolo de Gestión de episodios de mortandad. (TAXON, 2014)

• Protocolos de muestreo y análisis para ictiofauna. Serie Metodología para el

establecimiento el Estado Ecológico según la Directiva MARCO del Agua. 2005.

Confederación Hidrográfica del Ebro (Ministerio de Medio Ambiente).

• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo de

galápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territori

i Medi Ambient. 31 pp.


4.10. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO

Traslado y translocación fauna

autóctona

Sacrificio especies exóticas

Episodios de mortandad

Hallazgos fortuitosdurante obra

(Protocolo de extracción y translocacion de fauna

acuática)

(Protocolo de gestión de fauna exótica)

(Protocolo devigilancia y control de mortandades)

Colocación de contenedores

sandach en recinto de obra

Depósito y custodia de residos sandach

Retirada contenedores por gestor autorizado

bajas

PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL / Protocolo extracción y translocación fauna acuática / DT2014/016

62

5. ANEXO. DESINFECCIÓN DE EQUIPOS

En aquellas ocasiones en las que se tenga que acudir a dos o más estaciones de

muestreo localizadas en diferentes cauces o cuerpos de agua en un tiempo inferior a 10

días, se procederá a asegurar la desinfección de todos lo equipos que hayan entrado en

contacto con el agua para evitar posible contaminación biológica. Se prestará especial

atención tras la realización de trabajos en cuerpos de agua en los que se haya

constatado la presencia de especies invasoras especialmente dañinas.

El protocolo de desinfección de los equipos constará de tres fases:

5.1. VACIADO DEL AGUA, INSPECCIÓN VISUAL Y ELIMINACIÓN DE

RESTOS ADHERIDOS

• En el mismo lugar de muestreo, pesca o baño se procederá al minucioso vaciado

del agua acumulada en los equipos utilizados.

• Se inspeccionará visualmente todo el equipo para la eliminación de ejemplares

de cualquier especie que sean visibles y restos de vegetación acuática adherida.

• Los guantes de látex y el material desechable utilizado (pipetas, papel, etc.) se

guardarán en una bolsa para ser depositados en el contenedor adecuado una

vez hayan finalizado los trabajos.

5.2. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN

Las artes de pesca (redes, nasas, etc.), equipos de muestreo y todos los complementos

de baño deben ser desinfectados por inmersión o fumigación con una solución

desinfectante de 5 mg de cloro libre por litro.

Para conseguir la solución de agua clorada se empleará agua procedente de la red de

abastecimiento mezclada con lejía en la proporción que a continuación se indica para

obtener una concentración de 5 mg de cloro libre por litro (teniendo en cuenta que un

litro de lejía doméstica tiene aproximadamente 35 gramos de cloro activo o libre).

Volumen de agua tratada Volumen de lejía

10 litros 1,5 ml ó 30 gotas

100 litros 15 ml o una cucharada sopera

1 m3 150 ml

Anexo. Desinfección de equipos 63

5.3. SECADO

En el caso de que el equipo no vaya a utilizarse antes de diez días, se debe secar

manualmente en la medida de las posibilidades y posteriormente dejar secar al sol al

menos 10 días; se ampliará el plazo a 20 días si las condiciones de temperatura y

humedad relativa del lugar lo requieren, antes de volver a utilizarlo en otra masa de

agua.

Anexo. Desinfección de equipos

Proto

colo

extr

acc

ión

y t

ran

sloca

ción

fau

na a

cuáti

ca /

DT2

01

4/0

16

64

6. CONTROL DE CAMBIOS

PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA DEPROTOCOLO

HOJA DE REGISTRO DE MODIFICACIONES

REVISIÓN FECHA MODIFICACIÓN REALIZADA

0 Mar 2014 Emisión inicial del protocolo

En Murcia, marzo de 2014

Fdo. Alberto Javier Perán Rex

Lcdo. en Biología

Control de cambios 65

protocolo de gestiÓn de fauna acuÁtica...

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