mapa microbiológico resistencia 2009

Mapa Microbiológico y Resistencia Bacteriana

Hosp. EmergenciasJosé Casimiro Ulloa

Año 2009

Dr. César Balcázar BriceñoJefe (e) de Microbiología

10-03-10

N° de Cultivos realizados en el año 2009 según trimestre

Ambulatorio HospitalizadoTotal

Trimestre N° % N° %

Primero 409 62 247 38 656

Segundo 380 64 217 36 597

Tercero 313 61 197 39 510

Cuarto 348 61 227 39 575

Total 1450 62 888 38 2338

Amb: 1450

Hosp: 888

Cultivos positivos y negativos según condición de paciente – Año 2009 - HEJCU

Condición Pos Neg Total

Ambulatorio 689 761 1450

% 47,5 52,5 100

Hospitalizado 376 512 888

% 42,3 57,7 100

Total 1065 1273 2338

% 45,6 54,4 100

N° de cultivos realizados según tipo de muestra y condición – Año 2009 - HEJCU

MuestraAmbulatorio Hospitalizado TotalN° % N° %

Urocultivo 1328 81 309 19 1637Sec traqueobronquial 30 13 198 87 228Hemocultivo 25 13 170 87 195Sec biliar 0 0 54 100 54Sec Pleural 3 9 31 91 34Herida 6 19 26 81 32Sec Peritoneal 5 16 26 84 31Punta de catéter 2 7 28 93 30Coprocultivo 18 64 10 36 28LCR 6 24 19 76 25Otros 9 56 7 44 16Absceso 2 18 9 82 11Sec Faringea 9 90 1 10 10sec vaginal 5 100 0 0 5Sec Uretral 2 100 0 0 2Total general 1450 62 888 38 2338

Muestras según servicio – Año 2009 - HEJCU

Muestra Tra Cir Med UCI UCIN Total

Urocultivo 28 40 108 75 58 309

Sec traqueobronquial 12 9 43 68 66 198

Hemocultivo 5 21 29 67 48 170

Sec biliar 1 50 2 0 1 54

Sec Pleural 1 4 15 6 5 31

Punta de catéter 0 3 10 9 6 28

Herida 4 13 6 2 1 26

Sec Peritoneal 2 14 6 3 1 26

LCR 1 5 4 6 3 19

Coprocultivo 3 2 1 1 3 10

Absceso 1 3 5 0 0 9

Otros 3 3 1 1 0 8

Total general 61 167 230 238 192 888

Gérmenes aislado en Abscesos en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Gérmenes Trauma Cirugía Medicina Total

Enterobacter 2 2

Streptococcus 1 1 2

Candida 1 1

Escherichia 1 1

Staphylococcus 1 1

Total 1 3 5 9

Germenes Tra Cir Med UCI UCIN Total %

Staphylococcus 1 1 1 3 1,8

Candida 2 2 1,2

Klebsiella 2 2 1,2

Pseudomona 2 2 1,2

Enterobacter 1 1 0,6

Salmonella 1 1 0,6

Negativo 5 18 27 64 45 159 93,5

Total 5 21 29 67 48 170 100

Gérmenes aislado en Hemocultivos en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Gérmenes Cir Med UCI UCIN Total %

Staphylococcus 2 1 3 6 21,4

Pseudomona 2 1 1 4 14,3

Candida 2 1 3 10,7


Escherichia 1 1 2 7,1

Acinetobacter 1 1 3,6

Negativo 2 6 1 9 32,1

Total 3 10 9 6 28 100,0

Gérmenes aislado en Punta de Catéter en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Muestra Tra Cir Med UCIN Total %

Escherichia 11 11 20,4


Klebsiella 2 2 3,7

Pseudomona 1 1 2 3,7

Citrobacter 1 1 1,9

Proteus 1 1 1,9

Streptococcus 1 1 1,9

Negativo 33 1 34 63,0

Total 1 50 2 1 54 100

Gérmenes aislado en Secreción biliar en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Gérmenes 3º 4º 5º UCI UCIN Total %

Escherichia 3 3 11,5

Staphylococcus 3 3 11,5

Klebsiella 1 1 3,8

Pseudomona 1 1 3,8

Streptococcus 1 1 3,8

Negativo 8 6 3 17 65,4

Total 2 14 6 3 1 26 100

Gérmenes aislado en Secreción peritoneal en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Germenes 3º 4º 5º UCI UCIN Total %Pseudomona 3 6 14 14 26 63 31,8Staphylococcus 5 1 10 10 19 45 22,7Klebsiella 1 7 7 2 17 8,6Enterobacter 1 2 3 3 9 4,5Candida 1 3 1 1 6 3,0Acinetobacter 2 1 1 4 2,0Streptococcus 3 1 4 2,0Escherichia 2 1 3 1,5Burkholderia 1 1 0,5Citrobacter 1 1 0,5Flavimonas 1 1 0,5Moraxella 1 1 0,5Neisseria 1 1 0,5Proteus 1 1 0,5Negativo 1 4 26 10 41 20,7

Total 12 9 43 68 66 198 100

Gérmenes aislado en Sec. Traqueo bronquial en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Germenes Tra Cir Med UCI UCIN Total %

Escherichia 6 9 17 4 6 42 13,6

Candida 1 7 7 6 21 6,8

Enterobacter 1 1 9 1 2 14 4,5

Pseudomona 1 1 9 1 1 13 4,2

Klebsiella 1 1 8 2 12 3,9

Staphylococcus 1 5 3 2 11 3,6

Enterococcus 1 3 1 5 1,6

Proteus 1 1 2 0,6

Negativo 16 27 50 58 38 189 61,2

Total Urocultivo 28 40 108 75 58 309 100

Gérmenes aislado en Urocultivos en pacientes hospitalizados – Año 2009 - HEJCU

Estudio de resistencia antibiótica

Acción de los antibióticos

Formas de resistencia• Natural

– Proteus mirabilis a las tetraciclinas y a la colistina. – Klebsiella pneumoniae a las penicilinas (ampicilina, amoxicilina

• Adquirida– Enterobacterias, estafilococos

• Cruzada– La resistencia por impermeabilidad a las ciclinas se cruza con la

resistencia al cloranfenicol y al trimetoprim. En caso de pseudomona existe entre ceftazidima y astreonam

• Asociada– La resistencia de los estafilococos a la oxacilina va frecuentemente

asociada a las quinolonas, aminoglicósidos, macrólidos y ciclinas

Resistencia adquirirda• Mutación• Adquisición de DNA extraño

Transferencia de PlasmidiosDNA extracromosómicoGenes transportadores de resistencia,

encodados en transposones, que son móvilesTEM-1 ha sido transferido entre Enterobacteriaceae, Haemophylus influenzae y Neisseriaceae

Transporte por fagos

Factores que pueden acelerar el desarrollo de resistencia

- Niveles inadecuados de antibióticos en el lugar de la infección

- Duración de tratamiento muy corto.

- Sobrecrecimiento de microorganismos

- Sobre uso/poco uso de antibióticos

Mecanismos de resistencia

1. Inhibición enzimática2. Alteración del blanco ribosomal3. Modificación de la permeabilidad de pared - PBP4. Extracción del antibiótico – Bomba de eflujo5. Alteración de los sistemas de transporte - Porinas6. Modificación de los precursores de la pared7. Mutación de las enzimas8. Cambio de la estructura de las proteínas blanco

• La resistencia a las quinolonas puede ser: - alteración de la permeabilidad (canales de las porinas) - alteración del sitio blanco - eflujo

1.- Inhibición enzimática - Lactamasas

CLASIFICACIÓN ESTRUCTURAL Y FUNCIONALDE LAS -LACTAMASAS

GRUPO CARACTERÍSTICA MICROORGANISMOS1 Penicilinasas y otras enzimas

sensibles a IBL

K. pneumoniae, E. coli y Proteus vulgaris

2 Cefalosporinasas resisten a IBL* E.coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Enterobacter spp, Serratia spp y Citrobacter freundii

3 Metalo -lactamasas Pseudomonas aeruginosa, Bacteroides fragilis, Pseudomonas maltophilia y ciertas especies de Aeromonas, Flavobacterium y Serratia

4 Penicilinasas resisten a IBL cepas de Pseudomonas cepacia

2.- Alteración del blanco ribosomal

• Fragmentos 30 S y 50 S• La resistencia es por mutación de las

proteínas precursoras. Al modificar la estructura terciaria de las péptidos precursores, el antibiótico no puede unirse a ellos y pierde su eficacia.

Resistencia (adquisición del gen)- Fenotipo M : eflujo de macrólidos- Fenotipo MLSB: macrólidos, lincosaminas, estreptograminas Modifican el sitio blanco, puede ser constitutiva o inducible .

3.- Modificación de la permeabilidad de la pared - Porinas

• Este mecanismo ha sido descrito con mayor frecuencia en gérmenes Gram negativos.

• Por modificación de las porinas de la cápsula externa (como resultado de mutaciones cromosómicas)

• Gérmenes como E. coli, Pseudomonas aeruginosa y Serratia marcescens presentan alteraciones de las porinas, que impiden el ingreso de ß-lactámicos, imipenem y quinolonas.

• Cuando la mutación ocurre para una porina compartida por varios medicamentos, la resistencia suele ser múltiple.

• En otras ocasiones, la porina es específica para determinado agente y por lo tanto, la resistencia también, como el caso de la resistencia de Pseudomonas aeruginosa a los compuestos de tipo carbapenem

4.- Extracción del antibiótico• Extracción activa de tetraciclinas,

quinolonas y macrólidos– A través de los canales iónicos de la membrana, en

virtud de un mecanismo de transporte activo dependiente de ATP.

– Entre los gérmenes que utilizan este sistema para protegerse, están E. coli, Staphylococcus epidermidis y enterobacterias

Bomba de eflujo

6.- Modificación de los precursores de la pared

• Puede ocurrir por mutación de los genes que codifican para estos péptidos o por la adquisición de genes extraños que codifican para nuevas proteínas fijadoras de penicilina, con menor afinidad por los antibióticos ß-lactámicos.

• Este mecanismo de resistencia es importante en cocos gram positivos como Staphylococcus aureus y Streptococcus pneumoniae y se ha documentado en bacterias Gram negativas como las distintas especies de Neisseria y Haemophilus influenzae.

• En fecha reciente se encontraron varias cepas de Proteus resistentes a imipenem, como resultado de la modificación estructural de las proteínas fijadoras de penicilina

7.- Mutación de las enzimas

• Producción de ß-lactamasas.

Estas enzimas son codificadas por genes de los cromosomas o por plásmidos

• Pueden ser constitutivas o inducibles

• Las ß-lactamasas rompen el anillo lactámico de penicilinas, cefalosporinas y otros agentes relacionados, generando compuestos inactivos, como ácido penicilóico.

• Se han identificado cerca de 150 tipos diferentes de ß-lactamasas

• Las enzimas pueden ser adquiridas por las bacterias a través de plasmidios

Resistance primaria a los aminoglicósidos es debida a modificación enzimática.

8.- Cambio de la estructura de las proteínas blanco

Resistencia a Glycopéptidos: Actividad intrínseca de la bacteria.

Enterococcus / S.aureus- alteran el blanco, sustituyendo la D-ala por la D-lac y la vancomycin no puede unirse para bloquear la sintesis de peptidoglicano

Finalidad

• El propósito de realizar test de susceptibilidad antimicrobiana, es ayudar a los clinicos a seleccionar una terapia antibiótica adecuada.

• Reducir el tiempo de estancia hospitalaria.• Reducir el exceso de mortalidad relacionada a

infecciones.

Estafilococo aureus

Resistencias Naturales• Los estafilococos son resistentes a Ácido Nalidíxico,

Ácido Pipemídico y Aztreonam• Staphylococcus saprophyticus es resistente a

Fosfomicina y Novobiocina• Staphylococcus cohnii y Staphylococcus xylosus son

resistentes a Novobiocina y a Lincomicina• 40 isolates , All were resistant to beta lactams, erythromycin, ciprofloxacin, gentamicin,

and tetracycline; fusidic acid susceptibility was variable. All were susceptible to clindamycin, trimethoprim, vancomycin, linezolid, and mupirocin. The majority of patients (32 of 40, 80%) were community-based; ages ranged from < 1 to 89 years of age (median, 25 years of age). Sixty percent of the patients presented with skin infections (eg, boils, abscesses, or insect bites) and 25% with soft-tissue infections

Reglas para la interpretación del antibiogramaDisco de Penicilina: El resultado es válido también para Ampicilina y

Amoxicilina.Disco de Oxacilina:

– El resultado es válido también para Dicloxacilina y Cloxacilina.– La resistencia a Oxacilina señala una resistencia cruzada a todas las

penicilinas (asociadas o no a inhibidores De betalactamasas), cefalosporinas de todas las generaciones y carbapenems, sin excepción.

– Las cepas resistentes a Penicilina y sensibles a Oxacilina son sensibles a las penicilinas asociadas a los inhibidores de betalactamasas, a las cefalosporinas y a los carbapenems.

Disco de Tetraciclina: El resultado es válido también para Doxiciclina Y Minociclina.

Disco de Eritromicina: El resultado es válido también para la Azitromicina, Claritromicina y Roxitromicina.

Disco de Ciprofloxacina: El resultado es válido también para la Ofloxacina y Levofloxacina.

Disco de Vancomicina: Si se tiene una zona de inhibición de 14 mm o menos, se recomienda la medición de la CIM de este antibiótico para descartar una posible “sensibilidad disminuida”

CONSOLIDADO ANUAL DE RESISTENCIA ANTIBIOTICA - Año 2009

Estafilococo aureus: 61 cepas

Antibiótico Total

Sensible Intermedio Resistente

Nº % Nº % Nº %

Vancomicina 51 51 100 0 0 0 0

Cloramfenicol 29 25 86 1 3 3 10

Tetraciclina 21 17 81 2 10 2 10

Cefalotina 39 13 33 1 3 25 64

Cefepime 38 11 29 2 5 25 66

Cefuroxima 54 15 28 1 2 38 70

Claritromicina 15 4 27 0 0 11 73

Oxacilina 8 2 25 0 0 6 75

Amikacina 48 9 19 2 4 37 77

Ceftazidima 41 7 17 0 0 34 83

Cefotaxima 12 2 17 0 0 10 83

Cefadroxil 13 2 15 0 0 11 85

Clindamicina 22 3 14 2 9 17 77

Ciprofloxacino 52 7 13 2 4 43 83

Meropenem 37 1 3 1 3 35 95

EnterobacteriasResistencias Naturales:• Las enterobacterias son resistentes a Penicilina, Oxacilina, Macrólidos,

Clindamicina y Glicopéptidos.• Klebsiella spp es resistente a las Aminopenicilinas.• Citrobacter freundii, Enterobacter cloacae y Enterobacter aerogenes son

resistentes a las Aminopenicilinas, Aminopenicilinas/Inhibidores de betalactamasas, Cefalosporinas de primera generación y Cefuroxima.

• Serratia marcescens es resistente a las Aminopenicilinas, Aminopenicilinas/Inhibidores de betalactamasas, Cefalosporinas de primera generación y Cefoxitina.

• Proteus mirabilis es resistente a Nitrofurantoína.• Proteus vulgaris es resistente a las Aminopenicilinas, Cefalosporinas de primera

generación, Cefuroxima y Nitrofurantoína.• Morganella morganii es resistente a las Aminopenicilinas,

Aminopenicilinas/Inhibidores de betalactamasas, Cefalosporinas de primera generación, Cefuroxima y Nitrofurantoína.

• Providentia stuartii es resistente a las Aminopenicilinas, Aminopenicilinas/Inhibidores de betalactamasas, Cefalosporinas de primera generación, Gentamicina (bajo nivel) y Nitrofurantoína.

Reglas para la interpretación del antibiograma 1Disco de Ampicilina:

a. El resultado es válido para Amoxicilina.Disco de Ampicilina/Sulbactam y Amoxicilina/Ácido Clavulánico:

a. En enterobacterias no existe una disociación de resultados para estos discos por lo que debe utilizarse uno solo de ellos en el antibiograma.

Disco de Cefalotina:a. El resultado es válido para la Cefazolina, Cefadroxilo, Cefradina, Cefalexina, Cefaclor y Loracarbef pero únicamente de las cepas aisladas de infecciones urinarias.b. En el caso de Salmonella spp y Shigella spp las cefalosporinas de primera y segunda generación no son eficaces clínicamente por lo que deben ser reportadas como resistentes a estos antibióticos aún cuando se observe actividad in vitro.

Tomar en cuenta las resistencias naturales de las enterobacterias para el reporte

Reglas para la interpretación del antibiograma 2

Discos de Aminoglucósidos:En el caso de Salmonella spp. y Shigella spp los Aminoglucósidos no son eficaces clínicamente por lo que deben ser reportadas como resistentes a estos antibióticos aún cuando se observe actividad in vitro.

Disco de Tetraciclina:El resultado es válido para la Doxiciclina y Minociclina.

Discos de Cefalosporinas de tercera generación y Aztreonam:a. Para Enterobacter spp., Serratia marcescens, Citrobacter freundii, Proteus vulgaris, Morganella morganii y Providentia stuartii un resultado intermedio o resistente a Cefotaxima, Ceftriaxona, Ceftazidima o Aztreonam obliga a reportar como intermedio o resistente a todo este grupo de antibióticos.b. El disco de Cefixima no debe utilizarse en el antibiograma de Morganella morganii.c. Algunas cepas de enterobacterias, principalmente de Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae, son clínicamente resistentes a las Cefalosporinas de tercera generación y al Aztreonam debido a la producción de “betalactamasas de espectro extendido”. Este tipo de resistencia puede ser difícil de detectar en el antibiograma estándar.

DETECCIÓN DE LAS ENTEROBACTERIAS PRODUCTORAS DE “BETALACTAMASAS DE ESPECTRO EXTENDIDO”

Algunas cepas productoras de estas enzimas pueden presentar halos de inhibición lo suficientemente grandes como para ser clasificadas erróneamente como sensibles a las Cefalosporinas de tercera generación y a Aztreonam.

Como tamizaje se usan los diámetros de los halos de inhibición de la siguiente tabla:

Si al menos uno de estos antibióticos, tienen halos iguales o inferiores a los referidos se deberá realizar un test confirmatorio de la presencia de “betalactamasas de espectro extendido”

Reporte de antibiograma de las enterobacterias productoras de BLEEUna vez detectadas las cepas productoras de estas “betalactamasas de espectro

extendido” deben ser reportadas como resistentes a todas las penicilinas, las cefalosporinas de todas las generaciones (incluyendo los de cuarta generación) y al Aztreonam, cualquiera que sea el diámetro de los discos de estos antibióticos.

BLEE

a, ceftriaxone (30μg)

b, aztreonam (30μg)

c, cefpodoxime (10μg)

d = amoxycillin/clavulanic (20μg/10μg)

Método americano.

Disco combinado:

Ceftazidima – cefatzidima/clavulanico

Método Francés.

Disco por inductancia

11mm11mm

22 mm22 mm

CAZ/CLA – 22 mmCAZ – 11 mm22 –11 = > 5mm = ESBL

• Carbonne and colleagues[3] reported on the incidence rate per 1000 patient-days for Enterobacteriaceae producing extended-spectrum beta lactamase (ESBLE). From 2002 to 2005, the incidence of ESBLE increased significantly from 0.13 to 0.16 per 1000 patient-days. Enterobacter aerogenes was the most frequent ESBLE (36%) in 2002 and Escherichia coli (39%) in 2005. These results demonstrated that the incidence of ESBLE is increasing, and there is particular concern about ESBL E coli, which could be a threat for the community.

• BLEE en antibiogramas

Cefepime

Ceftazidima

CefoxitinaAmp/clavul

BLEE por INDUCTANCIA

FAGOS


E coli: 65 cepas, 4 cepas BLEE+

Antibiótico Total


Nº % Nº % Nº %

Meropenem 25 24 96 0 0 1 4

Nitrofurantoina 38 36 95 2 5 0 0

Amikacina 63 47 75 10 16 6 10

Cefotaxima 26 17 65 0 0 9 35

Cefadroxil 21 13 62 2 10 6 29

Ceftriaxone 31 20 65 0 0 11 35

Ceftazidima 27 17 63 0 10 37

Cefuroxima 52 30 58 0 0 22 42

Cefepime 21 12 57 2 10 7 33

Aztreonam 30 15 50 1 3 14 47


Amox clavulanico 47 10 21 5 11 32 68

Ac nalidixico 16 0 0 1 6 15 94


Enterobacter: 29 cepas

Antibiótico Total


Nº % Nº % Nº %

Meropenem 23 20 87 1 4 2 9

Amikacina 27 16 59 2 7 9 33


Cloramfenicol 10 5 50 1 10 4 40


Aztreonam 23 7 30 1 4 15 65

Cefuroxima 27 6 22 0 0 21 78

Ceftazidima 20 4 20 2 10 14 70

Sulfatrimetoprim 19 2 11 0 17 89

Ceftriaxone 13 1 8 1 8 11 85

Amoxic_clavulanico 17 1 6 0 16 94

Cefalotina 20 1 5 0 19 95

Cefepime 11 0 0 11 100


Klebsiella: 35 cepas, 0 BLEE

Antibiótico Total


Nº % Nº % Nº %

Meropenem 28 26 93 0 0 2 7

Amikacina 33 20 61 4 12 9 27

Cefotaxima 10 4 40 0 0 6 60


Ceftriaxone 12 3 25 0 0 9 75

Cefepime 17 4 24 1 6 12 71Ceftazidima 21 5 24 0 0 16 76


Cefuroxima 28 6 21 2 7 20 71

Aztreonam 27 3 11 2 7 22 81

Cefalotina 19 1 5 1 5 17 89

Amox clavulanico 19 1 5 1 5 17 89

Sumetoprim 16 0 0 1 6 15 94

PSEUDOMONA

Resistencias Naturales• Pseudomonas aeruginosa es resistente a

Penicilina, Ampicilina, Amoxicilina, cefalosporinas de primera y segunda generación, Cefotaxima,

• A total of 105 MBL-producing strains have been identified and characterized since 2000 The most common MBL-producing species were P aeruginosa, with 46 strains from 5 countries and producing 4 different MBLs, followed by K pneumoniae (33 VIM-1-producing strains from 5 countries) and Enterobacter cloacae (19 strains, VIM-1 and IMP-1 producers from 4 countries). MBL-producing strains were usually resistant to most antimicrobials tested. Polymyxin B was very active against P aeruginosa (100% sensitive) and K pneumoniae (94% sensitive), whereas tigecycline was highly active (100% sensitive) against Acinetobacter species, K pneumoniae, and E cloacae

Reglas para la interpretación del antibiograma

Disco de Ceftazidima: Si la cepa tiene susceptibilidad intermedia (I) o resistente (R) a Ceftazidima debe informarse también como intermedia (I) o resistente (R) al Aztreonam aún cuando el resultado del disco indique sensibilidad (resistencia cruzada).

Disco de Aztreonam: Una resistencia aislada del Aztreonam en relación con una sensibilidad conservada para los otros betalactámicos (cefalosporinas y carbapenems) es posible y debe informarse como tal.

Discos de carbapenems: a. Si una resistencia disociada entre Meropenem e Imipenem (sensible a uno y resistente al otro) es detectada deberá verificarse la técnica y repetirse la prueba. Si la resistencia disociada se confirma, la cepa deberá ser enviada al INS.b. Una resistencia aislada a Imipenem y/o Meropenem en relación con una sensibilidad conservada para otros betalactámicos (cefalosporinas, monobactams y combinaciones cefalosporina/inhibidor de betalactamasas) es posible y debe informarse como tal.


Pseudomona: 98 cepas

Antibiótico Total


Nº % Nº % Nº %

Colistina 31 24 77 2 6 5 16

Ceftazidima 88 20 23 2 2 66 75


Amikacina 87 16 18 4 5 67 77

Aztreonam 84 15 18 10 12 59 70

Cefepime 80 14 18 2 3 64 80

Meropenem 83 12 14 1 1 70 84

Piperacilina Tazobactam 26 3 12 2 8 21 81

Cefuroxima 82 1 1 1 1 80 98

Cefalotina 27 0 0 0 0 27 100

Tobramicina 19 0 0 1 5 18 95

Cefotaxima 8 0 0 0 0 8 100

HEJCU

77

70

75

75

84

81

High Rate of Antimicrobial Resistance in Pseudomonas aeruginosa at a Tertiary-Care Teaching Hospital in Southern Brazil – Año 2002

• Penicillins– Ampicillin– Piperacillin

• inhibidores Beta-lactamasa– Ampicillin/sulbactam– Amoxicillin/clavulanate– Ticarcillin/clavulanate– Piperacillin/Tazobactam

• Monobactams– Aztreonam

• Carbapenems– Imipenem– Meropenem– Ertapenem– Doripenem

Antibioticos b-lactámicos

• First Generation cephalosporins– Cefazolin– Cephalothin

• Second Generation oral– Cefuroxime (many others)

• Second Generation cephamycins– Cefoxitin– Cefotetan

• Third generation cephalosporins– Cefotaxime– Ceftriaxone– Ceftazidime

• Fourth generation cephalosporins– Cefepime

Uso de terapia combinada

¿Porqué no usar 2 antibióticos al mismo tiempo?• Antagonismo• Costo• Incremento del reisgo efectos colaterales.• Pueden incrementar la resistencia inducible.• Interacciones ntre drogas de clases diferentes.• A menudo innecesario para alcanzar la eficacia máxima.

¿Qué influencia la elección del antibiótico?

• La actividad del medicamento sobre el microorganismo.• El lugar de la infección.• Modo de administración• Metabolismo y excreción

– Función renal y hepática• Duración del tratamiento/frecuencia de dosis• Toxicidada/costo• Tasas locales de resistencia.

GRACIAS POR SU ATENCION

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