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L.A.B.M. LEMAIRE de la Polyclinique 33 Boulevard de

l'Université 44600 Saint Nazaire

Manuel de prélèvements

Ref : IT-M-PREA-001-05 Version : 05

Applicable le : 12-04-2018

Applicable à partir du :

12/04/2018

MANUEL DE PRELEVEMENTS

Version 05

Laboratoire LEMAIRE

25-27, avenue

des Ibis

44500 LA BAULE

Laboratoire LEMAIRE

33, Boulevard de

l’université

44600 Saint Nazaire

Laboratoire des PINS

57, Avenue

Lajarrige

44500 LA BAULE

www.laboratoire-lemaire.fr

L.A.B.M. LEMAIRE de la Polyclinique 33 Boulevard de

l'Université 44600 Saint Nazaire




SOMMAIRE

Objet et domaine d’application 1 Références 2 Présentation du laboratoire 3 Analyses et prélèvements 4 Catalogue des analyses 4 Réception des échantillons 4 Réception à l’accueil 4 Fiche de consentement 6 Renseignements demandés sur la fiche de transmission de prélèvement 7 Renseignements cliniques 7 Réception en technique 9 Vérification de l’identification 9 Vérification de la conformité du prélèvement 10 Critères d’acceptation ou de refus des échantillons reçus 10 Gestion des urgences 13 Liste des analyses pouvant être demandées en urgence 14 Délai de gestion des urgences 14 Protocoles de prélèvements sanguins 15 Déroulement d’un prélèvement sanguin 15 Matériel de prélèvement 16 Conservation du matériel de prélèvement avant utilisation 16 Choix des tubes 16 Ordre de prélèvement des tubes 18 Analyses nécessitant le jeûne 18 Analyses devant respecter un rythme circadien 19 Analyses à prélever au laboratoire (liste non exhaustive) 19 Tests dynamiques 19 Conduite à tenir en cas d’accidents d’exposition au sang (AES) 20 Conduite à tenir en cas de malaise 21 Protocoles de recueils 22 Examens urinaires 22 Examens des selles 24 Examens des crachats / expectorations 25 Protocoles de prélèvements bactériologiques 26 Prélèvements gynécologiques 26 Prélèvements urétraux 27 Prélèvements de peau, phanères, plaies, pus, escarres 28 Prélèvements oculaires 29 Prélèvements ORL 29 Autres prélèvements / Recueils / Tests 30 Test respiratoire à l’urée (HELIKIT®) 30 Cryoglobuline 30 Dépistage de la trisomie 21 31 ACTH 31 Transport des échantillons 31 Modalités de transport 32 Délai d’acheminement 32 Elimination des déchets 33 Transmission des résultats 33 Délai de rendu des résultats 33 Modalités de transmission 34 Prestation de conseil 34 ANNEXE : Catalogue des analyses 35

L.A.B.M. LEMAIRE de la Polyclinique

33 Boulevard de l'Université

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Objet et domaine d’application

La phase pré analytique incluant, entre autre, le prélèvement et le transport des échantillons biologiques est une phase clé pour garantir la fiabilité des résultats d’analyses, ce qui implique une collaboration étroite entre les préleveurs et le laboratoire.

Ce guide s’applique à l’ensemble des prélèvements réalisés au laboratoire, dans les établissements de soins (cliniques, maisons de retraite, cabinets IDE, …), au domicile des patients par les technicien(ne)s, infirmier(e)s libéral(es) ou non, médecins et biologistes. Et a pour but de respecter et d’harmoniser les bonnes pratiques des prélèvements biologiques.

Tout préleveur doit connaitre le manuel de prélèvement.

Ce manuel est également disponible sur le site internet du laboratoire : www.laboratoire-lemaire.fr Avertissement :

Le manuel de prélèvement a été conçu pour répondre à une grande majorité de questions que peuvent se poser les préleveurs mais ne prétend pas être exhaustif. Le laboratoire se tient à disposition de quiconque souhaiterait des informations complémentaires.

La diffusion du manuel est contrôlée par le laboratoire et toute reproduction ou modification, partielle ou complète, est interdite sans accord préalable du laboratoire LEMAIRE.

Modalités de gestion du manuel de prélèvement : • Comité de rédaction : Biologistes, Responsables Qualité. • Responsable Diffusion : Responsables Qualité. • Fréquence de révision : Tous les deux ans ;

Possibilité de mise à jour ponctuelle et/ou information des préleveurs par mailing en cas de besoin.

Les modifications apportées par rapport à la version précédente sont signifiées par un trait en gras dans la marge gauche.



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Références − Norme NF EN ISO 15189 : Laboratoires de biologie médicale « Exigences concernant la

qualité et la compétence ».

− L’ensemble des documents opposables du COFRAC.

− Arrêté du 26/04/2002 relatif à la bonne exécution des analyses de biologie médicale (GBEA).

− REMIC 2010.

− “Conservation des échantillons biologiques avant et après centrifugation: effet de la nature des tubes, de la température et du délai avant analyse” C.ODDOZE, E.LOMBARD, H.PORTUGAL (septembre 2012).

− Document OMS WHO/DIL/LAB/99.1 Rev.2 « Use of anticoagulants in diagnostic laboratory investigations ».

− « Pré-analytique en biologie médicale : étude et analyse critique de 3 variables clés, nouveau regard sur les critères limites d’acceptation » E.FERRE, O.DAVID, M.LETONDEL, JP.DEHORNE.

− « Préanalytique et accréditation : critères d’acceptation des échantillons en LBM multisites » P.DIALMA, S.PIAULENNE, S.BATY, T.ZEITOUN

− Préconisations du GFHT 2017.

− Le dictionnaire VIDAL.

− La Nomenclature des Actes de Biologie Médicale.

− Référentiel des examens de biologie médicale BIOMNIS-EUROFINS®. www.biomnis.com

− L’ensemble des notices techniques des méthodes utilisées au laboratoire.

− La documentation interne du laboratoire.



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Présentation du laboratoire

Le laboratoire LEMAIRE regroupe 3 sites de biologie médicale dont 2 plateaux techniques.

Le site A : Laboratoire d’analyses de Biologie Médicale

Laboratoire Lemaire 25-27 avenue des Ibis 44500 La Baule

Tel 02 40 60 27 51 – Fax 02 40 60 90 42

Biologiste coresponsable : Dr LEMAIRE Guillaume

HORAIRES D'OUVERTURE : Lundi au vendredi :

7h30-12h00 14h30-19h00

Samedi : 7h30 - 12h00

***

Le site B : Laboratoire d’analyses de Biologie Médicale

Polyclinique de l’Europe 33 boulevard de l’Université 44600 Saint Nazaire

Tel 02 51 16 10 80 – Fax 02 51 16 10 81

Biologiste coresponsable : Dr TASSY Christian

HORAIRES D'OUVERTURE Lundi au vendredi :

7h30–12h00 14h00-19h00

***

Le site C : Laboratoire d’analyses de Biologie Médicale

Laboratoire des Pins 57 avenue Lajarrige 44500 La Baule

Tel 02 40 60 13 61 – Fax 02 40 24 12 99

Biologiste coresponsable : Dr EMARD Erik

HORAIRES D'OUVERTURE Lundi, mardi, jeudi et vendredi :

7h45-12h00 14h30-18h30

La politique qualité tenue par la SELARL LABORATOIRE LEMAIRE, grâce à une implication constante et collégiale des collaborateurs, est reconnue par l’obtention de l’accréditation COFRAC selon la norme NF EN ISO 15189 depuis le 1er Janvier 2015.



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Analyses et Prélèvements

Catalogue des analyses

Les analyses effectuées par le laboratoire sont répertoriées dans le catalogue des analyses en ANNEXE.

Pour toutes autres analyses ne figurant pas sur cette liste, contacter le laboratoire pour connaitre les modalités de prélèvement et de transmission. La majeure partie des analyses sous-traitées est transmise au laboratoire BIOMNIS-EUROFINS® dont le référentiel est disponible sur le site www.biomnis.com.

Réception des échantillons

A partir du moment où le prélèvement est conforme selon la procédure PG-M-PREA-006 « Réception des échantillons » et l’instruction IT-M-PREA-008 « Critères d’acceptation ou de refus des échantillons reçus », le personnel à l’accueil et en technique accepte le prélèvement. Dans le cas contraire, seul le biologiste est responsable de l’acceptation ou du refus d’un échantillon.

Une acceptation par Dérogation par le biologiste doit être exceptionnelle et ponctuelle : elle s’applique aux prélèvements précieux et tient compte du contexte clinico-biologique. Réception à l’accueil :

L’identification des échantillons, la concordance des documents et le délai d’acheminement des échantillons sont vérifiés au moment de la réception à l’accueil par les secrétaires. Toute absence, incomplétude ou erreur constitue un critère de non-conformité qui sera tracé dans le système qualité du laboratoire et peut entrainer la non-réalisation des actes demandés.

Toute analyse doit être associée à une demande : - Prescription médicale VALIDE (l’originale pour pouvoir faire l’envoi à la caisse via le

système SCOR), - Demande faite par le patient via un formulaire de « Fiche de consentement » (page 6).



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Type de documents d’accompagnement

Recommandations / Utilité

Prescription médicale (ordonnance)

Elle doit comporter : • Le nom et prénom du patient, • Le nom, numéro de FINESS, adresse et/ou téléphone et/ou fax

et signature du prescripteur, • La date de la prescription, • Le type d’échantillon primaire et le site anatomique le cas

échéant (urines de 24h, prélèvement genou droit,…) • Les analyses à réaliser.

Une ordonnance est valable 12 mois pour un seul prélèvement sauf dans le cas d’un renouvellement indiqué par le prescripteur.

Dans le cas d’une ordonnance renouvelable, la validité de celle-ci sera vérifiée.

Demande d’analyse par oral (DE-M-PREA-006)

Un formulaire de consentement doit être rempli, daté et signé par le patient (page 6). Le nom d’un médecin à contacter doit être impérativement renseigné, pour les cas où des résultats seraient préoccupants.

Cette demande implique un règlement de la part du patient sans remboursement par tout organisme payeur.

Carte vitale, attestation Sécurité Sociale, carte de Mutuelle

Pour toute prise en charge, il est nécessaire de présenter la carte vitale ou l’attestation en cours de validité ainsi que la carte de mutuelle valide.

Consentement génétique

Pour les analyses à caractère génétique (Trisomie 21, groupage HLA, mutations, caryotype, etc.) un consentement éclairé du patient et du prescripteur, et une attestation de consultation signée par le prescripteur sont obligatoires. Pour obtenir ces documents contacter le laboratoire.

Bilan d’assurance (DE-M-PREA-006)

Pour les bilans d’assurance : un formulaire de consentement doit être rempli et signé par le patient (page 6).

Demande d’analyse hors nomenclature (DE-M-PREA-006)

Pour les analyses hors nomenclature: un formulaire de consentement doit être rempli et signé par le patient (page 6).

La réalisation de ces analyses implique un règlement de la part du patient sans remboursement par tout organisme payeur.

Fiche de transmission de prélèvement (pour les prélèvements à domicile)

Elle est fournie dans les boites de prélèvement. Elle doit être entièrement complétée par le préleveur (page 7) et accompagner les échantillons lors du dépôt au laboratoire.



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Renseignements demandés sur la fiche de transmission de prélèvement

• L’identification du préleveur : nom et qualité (Infirmier(e), Technicien(ne), Médecin ou Biologiste),

• La date et l’heure de prélèvement,

• L’identification complète du patient avec au minimum : le nom de naissance, le prénom, le sexe et la date de naissance. Le nom usuel, l’adresse et le numéro de téléphone permettent de compléter l’identification et doivent être renseignés dès que possible.

Cas des Groupes sanguins et Agglutinines (RAI), il faut au minimum : Le nom d’usage, le nom de naissance, le prénom, la date de naissance et le sexe du patient (joindre la photocopie de la carte d’identité : seul document de référence).

• Le moyen de transmission des résultats : � pour les prélèvements à domicile, un résultat récupéré au laboratoire se fera sur présentation

d’une pièce d’identité (carte vitale, carte d’identité,…), � pour les résultats envoyés par la poste, il faut compter au minimum un délai de 3 à 4 jours

ouvrés (délais postaux !), � pour une transmission par internet : ne pas oublier de fournir le numéro de téléphone

portable afin de pouvoir obtenir l’identifiant pas sms. Et pour rappel le mot de passe correspond à la date de naissance en inversé (AAAAMMJJ).

Dans le cas contraire, les résultats seront conservés au laboratoire.

• Les renseignements cliniques relatifs aux analyses prescrites.

• Indiquer les éventuels problèmes rencontrés lors du prélèvement (= aide à la validation biologique).

Les renseignements cliniques

• Au laboratoire, recueillir les renseignements cliniques ainsi que les éventuels problèmes rencontrés lors du prélèvement et les noter sur la fiche individuelle « patient ».

• A domicile, noter les renseignements cliniques sur la fiche de transmission ou l’ordonnance.

• Pour les recueils effectués par les patients, les fiches de recueil (IT-M-PREA-004 « Préconisations pour le patient ») dûment complétées doivent accompagner le recueil lors du dépôt.

Tableau des analyses nécessitant des renseignements cliniques :

Examens Renseignements utiles

Agglutinines

Injection anti-D ? quand ? date de la dernière RAI négative ? Joindre une photocopie de la carte de groupe sanguin (à scanner dans le dossier « patient »). Transfusion ? Quand ?

Bactério-Virologie

Traitement antibiotique en cours ? si oui, lequel ? Contrôle après traitement ? nom du traitement et date d’arrêt? Voyage ? où ? Contexte clinique. (Cf. IT-M-PREA-004 « Préconisations pour le patient »)



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Examens Renseignements utiles

BHCG et dosages hormonaux

Date des dernières règles ? Suivi post AMP ? Saignement ? Urgence ? douleurs ?

Bilan thyroïdien Traitement ? antécédents chirurgicaux ?

BNP, Troponine Contexte clinique : début des troubles. Urgence ?

Coproculture et/ou Parasitologie des selles

Voyage ? Contexte clinique. Au laboratoire : formulaire de demande de renseignements pour examen de selles à renseigner (DE-M-PREA-004).

Coqueluche Durée de la toux ? Vaccination ?

Ddimères Contexte clinique (suspicion de thrombose). Traitement en cours ? Urgence ?

Dosage de médicaments (Digoxine, Dépakine, Lithium,…)

Nom et heure de dernière prise du médicament.

EBV Contexte clinique (ganglions, fièvre ?), contact avec une personne malade ?

HBA1C Contexte clinique, suivi thérapeutique Hémocultures Fièvre ? Contexte clinique et antibiothérapie.

Hémostase Traitement ? Contexte clinique (saignement, bilan pré ou postopératoire, insuffisance hépatique, hématome ?...).

Hépatites Vaccination ? Voyage ? Contexte clinique.

Marqueurs tumoraux Traitement, suivi ou dépistage ?

NFS Pathologie connue ? Chimio ? (si oui : facteurs stimulants des Globules Blancs ?) Fièvre ? Urgence ?

Paludisme

Lieu et date du séjour à l’étranger Fièvre ? Prophylaxie ? Au laboratoire : formulaire de demande de renseignements pour la recherche du paludisme (DE-M-PREA-020).

Plaquettes Préciser si traitement par héparine ou si contrôle sur tube citraté

Protéine C – Protéine S Thrombose, fausses couches, bilan préopératoire ? Traitement Contexte familial

Recherche de mutation Attestation de consultation et consentement éclairé Renseignements cliniques Trisomie 21

Toxoplasmose, CMV Grossesse ? Contexte clinique (ganglions ?) Antécédents ?

Rubéole Grossesse ? Contexte clinique Vaccination ? Antécédents ?

Vitamine D Suivi de traitement ou recherche de carence ?



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Réception en technique Vérification de l’identification

Avant le prélèvement, le préleveur doit s’assurer de l’identité du patient en lui faisant décliner son identité complète :

� nom d’usage, nom de naissance, prénom et date de naissance. Comparer, ces informations + le sexe avec celles indiquées sur la demande d’examen.

Cas des Groupes sanguins et/ou Agglutinines, bilan d’assurances, de préfecture ou de médecine du travail :

� Vérifier l’identité du patient sur une pièce d’identité officielle (carte d’identité ou passeport) et joindre la photocopie.

Après le prélèvement, en salle de prélèvement ou au chevet du patient, identifier les échantillons de manière lisible avec les données suivantes :

Différents cas Identification

Prélèvement sanguin standard

� nom d’usage et prénom du patient. � le reste des informations doit être inscrit sur le document

d’accompagnement.

Prélèvement de Groupe sanguin et/ou Agglutinines (RAI)

� nom d’usage, nom de naissance, prénom, date de naissance et sexe doivent être obligatoirement inscrits sur le/ les échantillon(s).

� pour les prélèvements faits en dehors du laboratoire : ces informations devront être inscrites manuellement sur le/les échantillon(s). Ne pas utiliser d’étiquette.

� chaque détermination doit être faite sur 2 prélèvements distincts. Pour les prélèvements faits à domicile, prélever le patient sur 2 jours distants (1ère puis 2ème détermination).

� le reste des informations doit être inscrit sur le document d’accompagnement.

Prélèvement bactériologique

� renseigner le site de prélèvement quand cela est pertinent.

Recueil effectué par le patient

� nom d’usage et prénom � lors du dépôt, cette identification sera complétée par le

personnel du laboratoire lors de l’étiquetage.

• Pour les prélèvements en dehors du laboratoire : des étiquettes autocollantes fournies par le laboratoire peuvent être utilisées.

• Au laboratoire : des étiquettes autocollantes avec codes barre sont utilisées.

ATTENTION L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement constitue un critère de non-conformité, est enregistrée comme telle dans le système qualité du laboratoire et peut entraîner la non-exécution des actes.



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Vérification de la conformité du prélèvement Le technicien vérifie également : � La concordance entre les analyses prescrites et les analyses enregistrées, � Tout risque HSE (Hygiène Sécurité Environnement) concernant les échantillons, � le respect des conditions pré analytiques (délai, conservation, jeûne, …), � la conformité de l’échantillon : concordance analyse demandée / échantillon, nombre

d’échantillons correct, échantillon à volume suffisant, caillot, hémolyse, … Critères d’acceptation ou de refus des échantillons reçus

4.6.1 Concernant l’ORDONNANCE

Problèmes rencontrés Décisions Responsable Actions

Absence de prescription

ACCEPTATION sous réserve

d’obtention des informations.

Secrétaire

Au laboratoire : faire remplir au patient le document DE-M-PREA-006« Fiche de consentement »

A domicile : demander au préleveur la liste des analyses à réaliser.

Si la demande vient du patient : obtenir le nom de son médecin, l’informer de la non prise en charge des examens et tracer l’appel dans le dossier.

Absence d’indentification

« patient » ou identification équivoque

ACCEPTATION si identification sur la fiche de transmission ou confirmation par le

patient

Secrétaire Demander confirmation au patient ou préleveur qu’il s’agit bien de la bonne ordonnance.

Prescription incomplète ou illisible (manque

identification médecin, signature, date)


d’obtention de l’information

Secrétaire Demander l’information au prescripteur ou patient.

Absence de renseignements

cliniques.


d’obtention des informations si elles

sont importantes pour l’interprétation des

résultats

Biologiste Demander au prescripteur les renseignements cliniques indispensables à l’interprétation des résultats.



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4.6.1 Concernant l’ORDONNANCE


Absence de formulaire de consentement,

attestation de consultation.


d’obtention des documents

indispensables

Secrétaire Demander au prescripteur les documents nécessaires à la réalisation de l’examen.

Analyse prescrite Hors Nomenclature (HN)

ACCEPTATION après information et

accord du patient Secrétaire

Au laboratoire : faire remplir au patient le document DE-M-PREA-006« Fiche de consentement »

A domicile : obtenir l’accord oral du patient et tracer l’appel dans le dossier.

4.6.2 Concernant la FICHE DE TRANSMISSION DES PRÉLÈVEMENTS

(Pour les prélèvements réalisés par les IDE externes)


Absente ou incomplète ACCEPTATION sous réserve

d’obtention des informations ou si les

informations sont disponibles sur un

autre support

Secrétaire

Obtenir obligatoirement auprès du préleveur et/ou patient la date et l’heure de prélèvement et les nom et prénom du préleveur.

Absence d’identification « patient » ou

incomplète ou illisible.

Vérifier l’ordonnance et les échantillons

Vérifier auprès du préleveur la correspondance du prélèvement et de la fiche de transmission.

Absence de renseignements

cliniques


d’obtention des informations si elles

sont importantes pour l’interprétation des

résultats

Biologiste

Demander au prescripteur et/ou préleveur les renseignements cliniques indispensables à l’interprétation des résultats.



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4.6.3 Concernant les conditions DE RECUEIL, de CONSERVATION, de DÉLAI d’ACHEMINEMENT


Conditions particulières non respectées

(jeûne, heure de prélèvement, régime

particulier, préconisations)

REFUS

ACCEPTATION par dérogation

par le Biologiste

Secrétaire

Technicien

Biologiste

Au laboratoire : demander au patient de revenir pour réaliser son prélèvement dans les conditions adéquates.

A domicile : Prévenir le biologiste qui valide le délai du nouveau prélèvement en concertation avec le prescripteur.

Prévenir l’IDE ou le patient pour l’informer de la non-conformité et de la nécessité de second prélèvement.

Noter le code NCSUP à la place de l’examen pour tracer les analyses que l’on ne peut réaliser.

Modalités de transport et conservation pré

analytique non respectées (durée, température, triple

emballage)

4.6.4 Concernant les ÉCHANTILLONS


Absence totale d’identification

« patient » ou totalement illisible.

REFUS

ACCEPTATION par dérogation

par le Biologiste pour les prélèvements

précieux

Secrétaire

Biologiste

Prévenir le biologiste qui valide le délai du nouveau prélèvement en concertation avec le prescripteur. Prévenir l’IDE ou le patient pour l’informer de la non-conformité et de la nécessité de second prélèvement. Noter le code NCSUP à la place de l’examen pour tracer les analyses que l’on ne peut réaliser.

Identification incomplète

(cf. IT-M-PREA-001 « Manuel de

prélèvement »)

ATTENTION les exigences ne sont pas les mêmes s’il s’agit d’une demande de

groupe sanguin ou RAI

Discordance entre l’échantillon et la fiche

de transmission/ ordonnance



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4.6.4 Concernant les ÉCHANTILLONS


Echantillon(s) manquant(s) ou

cassé(s)

REFUS

Secrétaire

Technicien Biologiste

Prévenir le biologiste qui valide le délai du nouveau prélèvement en concertation avec le prescripteur. Prévenir l’IDE ou le patient pour l’informer de la non-conformité et de la nécessité de second prélèvement. Noter le code NCSUP à la place de l’examen pour tracer les analyses que l’on ne peut réaliser.

Discordance entre le type d’échantillon

prélevé et l’analyse à réaliser

Contenants périmés, coagulés (EDTA,

citrate), mal remplis (citrate 80%minimum), quantité insuffisante...

Interférences analytiques (hémolyse, lactescence, sérum ictérique ...) Se référer au document IT-M-PREA-015 « Récapitulatif des interférences impliquant un refus de l’échantillon »

REFUS ACCEPTATION par dérogation en fonction du risque d'interférence avec la réalisation des analyses.

Technicien

Biologiste

Gestion des urgences

Le laboratoire a défini 2 types d’urgences : - l’urgence médicale : toute analyse dont le résultat est pathologique et qui introduit ou laisse

supposer un risque si une action médicale n’est pas entreprise immédiatement. Elle est détectée par le technicien au moment de la validation analytique, qui en informera le biologiste. Le Biologiste est responsable de la transmission des résultats pour une prise en charge rapide du patient.

- L’urgence « prescripteur » : analyse dont le résultat est demandé par le prescripteur, dans un délai inférieur au délai de rendu fixé par le laboratoire. L’urgence doit être notifiée sur la prescription.



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Liste des analyses pouvant être demandées en urgence

Biologie générale et spécialisée

ACIDE URIQUE BILIRUBINE TOTALE GLUCOSE POTASSIUM

ALAT (TGP) BNP HAPTOGLOBINE PROCALCITONINE

ALBUMINE CALCIUM LDH PROTIDES

AMYLASE CHLORE LIPASE SODIUM

ASAT (TGO) CPK LITHIUM TRIGLYCERIDES

BHCG CREATININE MAGNESIUM TROPONINE I

BICARBONATES CRP PHOSPATASE

ALCALINE UREE

BILIBURINE CONJUGUEE

GGT PHOSPHORE

Hématocytologie

NUMERATION FORMULE SANGUINE

Hémostase

DDIMERES FIBRINOGENE INR/TP TCA / TCK / ROSNER

Immuno-Hématologie

AGGLUTINE IRREGULIERE GROUPES SANGUINS

Sérologie Infectieuse

HEPATITE B

Ag Hbs, Ac Hbs, Ac Hbc

HEPATITE C

Ac HCV HIV PALUDISME

Toute autre demande devra être préalablement validée par le biologiste de garde. Délais de gestion des urgences

Le préleveur est responsable de l’acheminement des échantillons dans les plus brefs délais.

Toute urgence doit être signalée au Biologiste pour une gestion correcte de celle-ci.

Le laboratoire s’engage à transmettre les résultats d’une analyse urgente dans les 4h qui suivent la réception de l’échantillon au laboratoire.



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Protocoles de prélèvements sanguins Déroulement d’un prélèvement sanguin

� Recueillir et/ou vérifier les informations administratives, physiopathologiques et thérapeutiques et les noter sur le dossier patient.

� Choisir les tubes à prélever suivant la prescription et selon l’instruction « Choix des tubes » (IT-

M-PREA-005) page 16. Pour toute analyse non mentionnée dans l’instruction, contacter le laboratoire pour connaitre le/les tube(s) à prélever.

� Se laver les mains à l’eau et au savon ou à la solution hydro alcoolique.

� Préparer le matériel de ponction : introduire l’aiguille ou l’ailette dans le corps de pompe.

� Choisir le site de ponction : pli du coude, avant-bras, dos de la main ou pied.

� Poser le garrot au-dessus du site de ponction, maintenir le bras du patient incliné vers le bas.

� Désinfecter le site de ponction.

� Effectuer la ponction veineuse en tendant la peau pour immobiliser la veine.

� D’une main maintenir le corps de pompe + aiguille sur le site de ponction et de l’autre introduire le tube dans le corps de pompe.

� Réaliser le prélèvement des tubes selon l’ordre recommandé : Tube de purge (pour système à ailettes), Bleu, Rouge/Jaune, Vert, Violet, Gris puis Noir. Pour les analyses ne figurant pas dans l’instruction page 16, contacter le laboratoire.

� Après percussion du premier tube, desserrer le garrot. Le tube se remplit, attendre la fin du remplissage pour retirer le tube et l’homogénéiser. Puis percuter le tube suivant.

� Après le remplissage du dernier tube, retirer le garrot, puis l’aiguille et placer un coton pour comprimer le site de ponction.

� Identifier les tubes.

� Renseigner l’identité du préleveur, la date et l’heure de prélèvement sur la fiche patient : fiche individuelle au laboratoire (si différents des informations enregistrées dans le SIL), sur la fiche de transmission ou la prescription pour les prélèvements en dehors du laboratoire.

Recommandations :

� Ports des gants recommandés. � S’assurer que l’aiguille soit bien vissée dans le corps de pompe. � En cas de dispositif à ailettes, utiliser un tube de purge en 1er. � Relâcher le garrot dès le remplissage du 1er tube pour limiter le phénomène d’hémolyse. � Bien maintenir les tubes dans le corps de pompe pendant le remplissage. � Remplir les tubes jusqu’au trait de jauge, veiller au bon remplissage des tubes. � Ne pas transvaser le contenu d’un tube dans un autre. � Homogénéiser les tubes dès leur sortie du corps de pompe.



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Matériel de prélèvement

Conservation du matériel de prélèvement AVANT UTILISATION

• À l’abri des rayons du soleil entre 4Durée de vie : jusqu’à la date de péremption

• Tous les écouvillons et flacons stériles,température ambiante jusqu’à la date de péremption

Il revient au préleveur de gérer la péremption du matériel qu’il utilise. Choix des tubes

Le choix des tubes se fait en phase prédu prélèvement.

Le préleveur sélectionne le nombre de tube et la nature de l’anticoagulant à utiliser en fonction des analyses prescrites.

Attention de bien respecter l’ordre des tubes lors du prélèvement(De haut en bas dans le tableau suivant)

Solution hydroAntiseptique

Seringue

Aiguilles sous vide


Ref : IT

Applicable le : 12


À l’abri des rayons du soleil entre 4-25°C

e de péremption.

et flacons stériles, dans leur milieu de transportjusqu’à la date de péremption.

Il revient au préleveur de gérer la péremption du matériel qu’il utilise.

se fait en phase pré-analytique, sous la responsabilité du préleveur,

Le préleveur sélectionne le nombre de tube et la nature de l’anticoagulant à utiliser en fonction des

n respecter l’ordre des tubes lors du prélèvement ! haut en bas dans le tableau suivant)

Hémoculture

Tubes sous vide

Solution hydro-

alcoolique

Gants

Garrot

hypodermique

Corps de pompe

Ailettes



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dans leur milieu de transport, sont conservés à

du préleveur, au moment

Le préleveur sélectionne le nombre de tube et la nature de l’anticoagulant à utiliser en fonction des

Hémoculture

Cotons

Aiguille

hypodermique



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Les recommandations pour les choix des tubes pour les analyses réalisées au laboratoire sont décrites dans le tableau suivant :

• Pour toute autre analyse se référer au Référentiel BIOMNIS-EUROFINS®.

• Dans le tableau, chaque ligne correspond à un groupe d’examen pouvant être réalisé sur un seul tube. Il est fortement recommandé de prélever un tube par groupe d’examen. Ex : BNP+GROUPE+NFS= 3 tubes Violets.

TUBES

NATURE ANALYSES

BLEU

Sang Total,

Plasma

Citraté

• Ddimères (URGENT).

• Fibrinogène, INR, TP, TCA, TCK.

Attention: Le tube doit impérativement être rempli jusqu’au trait (minimum

80%).

SEC

Sérum

• ACE, AFP, BHCG, CA 15-3, CA 19-9, CA 125, Hépatites A, B et C, HIV.

• Cortisol, Digoxine, Ferritine, Folates, FSH, LH, œstradiol, Progestérone,

Prolactine, PSA, PSA libre, Rubéole, T3L, T4L, Testostérone, Toxoplasmose,

TSH, Vitamine B12.

• EBV (MNI), Vitamine D.

• Electrophorèse des protéines (2 tubes : dosage des protéines + elp).

• Haptoglobine, LDH, Lithium, PCT, TRF.

• Syphilis (BW).

VERT

Sang Total,

Plasma

Hépariné

• Acide Urique, ALAT, Albumine, Amylase, ASAT, Bilirubine totale et conjuguée,

Ca, Cholestérol, HDL, Cl, CPK, Créatinine, CRP, Fer, GGT, Lipase, Mg, PAL,

Phosphore, K, Protides (sans électrophorèse), CO2, Na, Triglycérides, Urée.

• PTH.

• Troponine (URGENT).

VIOLET

Sang Total,

Plasma EDTA

• BNP (URGENT sauf suivi de traitement).

• Groupe sanguin (1 tube par détermination), Agglutinines.

• HBA1C.

• NFS, Plaquettes, Réticulocytes, VGM.

• Paludisme (URGENCE +++).

GRIS

Plasma

fluoré • Glycémie.

NOIR

Sang Total • VS (se fait également sur tube EDTA).



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Ordre de prélèvement des tubes

� � �

Tube de purgeailettes.

Tube citrate lents).

Tube activateur de coagula

Tube héparine de lithium

Tube EDTA K3

Tube fluorure de sodium / oxalate de potassium

Tube citrate de sodium 4NC

Analyse nécessitant le jeûne

Recommandation : 12h entre le dernier repas et la prise de sang.

• Glycémie. • Exploration de l’anomalie lipidique

Cholestérol, Triglycérides, HDL, Apo lipoprotéine.

• Cross laps (CTX). • Electrophorèse des protéines

En cas d’urgence, le jeûne ne saudonc en fonction.


Ref : IT

Applicable le : 12

Ordre de prélèvement des tubes

� � �

Tube de purge sans additif. A prélever en premier si utilisati

itrate de sodium 9NC, à remplissage complet

Tube activateur de coagulation (6 retournements lents).

Tube héparine de lithium et PST II (8-10 retournements lents)

Tube EDTA K3 (8-10 retournements lents).

Tube fluorure de sodium / oxalate de potassium (8-10 retournements lents)

Tube citrate de sodium 4NC (8-10 retournements lents).

Analyse nécessitant le jeûne

: 12h entre le dernier repas et la prise de sang.

• Cryoglobuline. Exploration de l’anomalie lipidique : Cholestérol, Triglycérides, HDL, Apo

• Fer • Transferrine • Acide urique. • Folates

• Prolactine

ne ne saurait constituer un obstacle à un examen. L’interprétation se fera



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. A prélever en premier si utilisation du dispositif à

remplissage complet (3-4 retournements

10 retournements lents).

10 retournements lents).

.

rait constituer un obstacle à un examen. L’interprétation se fera



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Analyses devant respecter un rythme circadien

• Cortisol / ACTH : à 8h (sauf mention du prescripteur). • CTX : avant 10h. • Prolactine : entre 8h et 10h, après un repos de 15/20min. • Aldolase : après un temps au repos de 30 min. • Digoxine : 6 à 8h après la prise de médicament. • Fer : le matin. • Glycémie postprandiale : 1h30 à 2h après le début du repas.

Analyses à prélever au laboratoire (liste non exhaustive)

• ACTH • CRYOGLOBULINES

Tests dynamiques

Test O’sullivan Hyperglycémie provoquée ou diabète gestationnel

Hyperglycémie provoquée 3heures

Sujet à jeun Prélèvement à T0

Ingestion de 50 ou 100g de glucose

Prélèvements à T1h


Ingestion de 75g de glucose Prélèvements à T1h et T2h (à adapter selon la prescription)


Ingestion de 75g de glucose Prélèvements à T1h, T2h et

T3h (à adapter selon la prescription)

Tests avec injections Le laboratoire ne réalise pas de prélèvements sanguins avec injection (expl : test au Synacthene). Les patients nécessitant ce type d’examen sont redirigés vers le laboratoire de l’hôpital.



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Conduite à tenir en cas d’accidents d’exposition au sang (AES)

Cf. IT-M-HSE-001 « Conduite à tenir en cas d’accident ».

Un AES est défini comme un accident avec exposition à du sang ou à tout autre produit biologique susceptible de contenir un agent pathogène quel qu’il soit (bactérie, virus, parasite, agent non conventionnel). Cela concerne les blessures percutanées et les contacts avec les muqueuses et les peaux lésées.

Incident ou Accident Conduite à tenir

OEIL

Rincer abondement à l’eau ou au sérum physiologique pendant au moins 5mn.

Retirer, si c’est le cas, les lentilles de contact. Consulter un ophtalmologue.

MUQUEUSES Rinçage immédiat et prolongé à l’eau ou au sérum physiologique pendant

au moins 5mn. Désinfecter avec un antiseptique de type DAKIN®.

PEAU

Ne pas faire saigner la blessure. Nettoyer immédiatement la plaie à l’eau courante et au savon. Rincer à l’eau et sécher. Désinfecter par contact ou immersion pendant au moins 5min avec un

antiseptique de type DAKIN®, Bétadine dermique jaune, eau de javel à 12 chl. diluée au 1/10° ou alcool à 70°.

En cas de piqûre, de coupure ou de contact sur une peau lésée :

Dans l’Heure : Contacter les urgences. • Demander le statut sérologique du patient source ou réaliser, avec son accord, un bilan

sérologique. • Réaliser un bilan sérologique de la personne ayant subi l’AES pour établir son statut sérologique

au moment de l’accident. • Contacter immédiatement le médecin référent afin qu’il évalue le risque infectieux :

− à la polyclinique de l’Europe (service anesthésie) pour le personnel du laboratoire. − au service des urgences de l’hôpital pour le personnel « autre ».

Dans les 48 Heures • Déclaration d’accident du travail par l’employeur en respectant l’anonymat du patient source. • Faire établir impérativement le certificat médical initial par un médecin afin d’obtenir la prise

charge au titre d’un accident de travail.



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Conduite à tenir en cas de malaise

Cf. IT-M-HSE-001 « Conduite à tenir en cas d’accident ».

� Retirer l’aiguille si le prélèvement n’est pas terminé et comprimer l’endroit de la ponction.

� Allonger la personne tête à plat, surélever les jambes, dégager le cou, desserrer les vêtements (pantalon, jupe, ceinture,…).

� Parler à la personne et la rassurer.

� Prévenir le biologiste si-besoin.

� Si la conscience et la coloration de la peau redeviennent normales, relever la personne progressivement jusqu’à la position assise et lui proposer une boisson (sucrée).

� Ne laisser sortir la personne que si elle a retrouvé une conscience, une respiration et une coloration normale.

� Si le malaise persiste et selon la gravité des symptômes : • Prévenir une personne de l’entourage. • Prévenir le biologiste. • Prévenir le médecin traitant. • Prévenir le SAMU (15). • Prévenir les pompiers (18).

Pour prévenir d’un nouveau malaise : conseiller la position allongée lors d’un prochain prélèvement.



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Protocoles de recueils

Pour les recueils faits à domicile, merci de compléter la feuille de renseignements IT-M-PREA-004 « Préconisations pour le patient » qui vous a été transmise et/ou la fiche de transmission de prélèvement. Examens urinaires

ECBU (Examen CytoBactériologique des Urines)

Pour un dépistage d’infection urinaire, le laboratoire recommande de faire ce recueil avant toute prise d’antibiotique. Sinon merci de nous signaler le traitement en cours.

Pour un contrôle après traitement, le laboratoire recommande de faire le recueil après 5 jours d’arrêt

du traitement.

Recueil des urines dans un flacon stérile disponible au laboratoire, en pharmacie ou chez votre médecin. Tout autre contenant non stérile sera refusé.

� Se laver soigneusement les mains.

� Nettoyer soigneusement la zone urinaire à l’aide d’un antiseptique de type DAKIN®, à l’aide de savon doux ou avec une lingette antiseptique, d’avant en arrière.

� Se laver de nouveau les mains.

� Ouvrir le flacon en faisant attention à ne pas toucher l'intérieur du flacon avec les doigts.

� Uriner le 1er jet dans les WC afin d'éliminer les cellules de la peau et les germes de la flore vaginale ou urétrale.

� A partir du 2ème jet, recueillir les urines dans le flacon. Et le fermer soigneusement.

� Identifier le flacon : nom d’usage et prénom.

Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire, • Pour les flacons sans conservateur : − Conservation du recueil 2h maximum à température ambiante. − Conservation du recueil 12h maximum au réfrigérateur. • Pour les flacons avec conservateur : − Conservation du recueil 48h maximum à température ambiante.

Pour un ECBU chez de très jeunes enfants, le recueil se fait de préférence à domicile, dans une poche collectrice (ou Urinocol), disponible en pharmacie (Cf. IT-M-PREA-004 « Préconisation pour le patient »).



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Compte d’Addis / HLM

Recueil des urines dans un flacon spécifique disponible au laboratoire.

� Le matin, 3 heures avant le lever habituel : vider la totalité de la vessie dans les toilettes.

� Boire un grand verre d’eau.

� Noter la date et l’heure de début sur l’étiquette du flacon fourni par le laboratoire.

� Se recoucher et rester allongé au repos pendant 3 heures.

� A la fin des 3h (le plus exactement possible): recueillir la totalité des urines dans le flacon fourni. Dans l’intervalle des 3h toutes les urines doivent être récupérées dans le flacon et conservées à température ambiante.

� Noter l’heure de fin sur l’étiquette du flacon.


Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : conservation du recueil 12h à température ambiante.

Urines de 24h

Recueil des urines dans un flacon spécifique disponible au laboratoire.

� Au lever : vider la totalité de la vessie dans les toilettes

� Noter la date et l’heure de début sur la fiche de préconisation fournie par le laboratoire.

� Pendant 24h, recueillir la totalité des urines dans le flacon (jusqu’au lendemain même heure que celle indiquée sur le flacon comme heure de début). Il faut donc recueillir les urines du lever à J+1.

� Pendant la durée du recueil, conserver le flacon dans un endroit frais (réfrigérateur).


Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : conservation du recueil 12h au frais (réfrigérateur).

Nb : Si le premier flacon est plein, utiliser une bouteille d’eau minérale propre. Recherche de drogues

Le recueil des urines pour une recherche d’opiacés (drogues) doit se faire obligatoirement au laboratoire afin d’éviter toute tentative de fraude (expl : recueil d’une autre personne). De même, il est recommandé de vérifier la carte d’identité du patient lors de la création de son dossier.

L’urine doit être recueillie dans un récipient sec et propre (pot ECBU). Il est préférable de collecter les 1ères urines du matin. Le recueil doit être remis au personnel à l’accueil qui l’identifiera (étiquette avec nom, prénom, date de naissance).



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Examens des selles

Coproculture / parasitologie des selles

Recueil à effectuer de préférence lors des épisodes diarrhéiques et à distance de tout traitement (charbon, suppositoires, etc.).

Recueil des selles dans un flacon spécifique disponible au laboratoire ou en pharmacie. � Recueillir des selles fraiches dans le flacon destiné au recueil.

� Noter la date et l’heure du recueil sur le flacon.



Remplir la fiche de renseignements (DE-M-PREA-004) en y indiquant : Toutes notions de voyages, vie en crèche pour les enfants, diarrhées, nausées, vomissements…

Pour les bébés ou jeunes enfants, les selles peuvent être recueillies dans la couche et transférées dans le flacon à l’aide d’une spatule (disponible au laboratoire). Recherche de sang dans les selles

Cet examen ne nécessite pas de régime alimentaire particulier. Eviter cependant de le réaliser durant les périodes menstruelles ou en présence d’une crise hémorroïdaire.

Recueil des selles dans un flacon spécifique disponible au laboratoire ou en pharmacie. � De manière générale les selles sont recueillies sur 3 jours consécutifs (J1, J2 et J3). Sauf si

précisé sur l’ordonnance.

� J1 : recueillir des selles fraiches dans un flacon destiné au recueil des selles.



� Recommencer le protocole pour J2 puis J3.

Nb : Si la recherche se fait sur 3 jours, les échantillons doivent être apportés au fur et à mesure au laboratoire et non tous ensemble le 3ème jour. Coprologie fonctionnelle (fécalogramme)

C’est un examen qui est envoyé chez BIOMNIS-EUROFINS®.

Pour cet examen, il faut recueillir la totalité des selles de 24, 48 ou 72 heures dans des conteneurs hermétiques (fournis par BIOMNIS-EUROFINS®) fournis sur demande par le laboratoire (si examen sur plusieurs jours : un seul envoi).




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Scotch test

Ce test est à effectuer au lever avant la toilette et les premières selles.

Pour ce test, il faut un morceau de scotch translucide d’environ 4cm (surtout pas de scotch opaque) ainsi qu’une lame et son étui (disponibles au laboratoire). � Appliquer le coté adhésif du morceau de scotch sur les plis de la marge anale et le maintenir en

appuyant quelques secondes.

� Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support.

� Identifier la lame en écrivant au crayon à papier vos : nom d’usage et prénom sur la partie opaque de la lame.

� Replacer la lame dans l’étui.

Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : conservation du recueil 12h à température ambiante.

Examens des crachats / expectorations (ECBC)

Recueil dans un flacon stérile disponible au laboratoire ou en pharmacie. Tout autre contenant non stérile sera refusé.

Le recueil est à effectuer à jeun, le matin, au réveil, après un effort de toux profonde car le but est de recueillir une sécrétion pulmonaire purulente et non de la salive.

Ne pas commencer de traitement avant le recueil, dans le cas contraire (précision du prescripteur), merci de le signaler. � Procéder à un rinçage de la bouche à l'eau claire (sans dentifrice ni antiseptique) afin d'éliminer

une partie de la flore buccale.

� Les crachats sont recueillis dans un flacon stérile.

� Identification du flacon : nom d’usage et prénom.

Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : conservation du recueil 2h à température ambiante. Pour les recueils ne figurants pas ci-dessus : merci de contacter le laboratoire.



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Protocoles de prélèvements bactériologiques

Pour les prélèvements bactériologiques, le port de gants est OBLIGATOIRE.

Prélèvements gynécologiques

Vérifier :

• Que la patiente n’a pas réalisée de toilette intime, ni appliqué de traitement local (crème, gels, savons,…) et l’absence de tout rapport sexuel dans les 24h précédant le prélèvement.

• Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car la flore est modifiée (sauf avis contraire du prescripteur).

• Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (>15jours pour les Chlamydiae et >5jours pour les germes banaux).

Prélèvement vaginal simple (PV) � Mettre un speculum plastique à usage unique de façon à voir le col de l’utérus (sauf pour les

femmes enceintes). � Prélever les parois vaginales et/ou l’endocervical :

− Au laboratoire : 2 écouvillons secs. − En dehors du laboratoire : 1 écouvillon sec et 1 écouvillon avec milieu de transport.

En cas de suspicion de Gonocoques Prélèvement en supplément : − Au laboratoire : 1 écouvillon sec. − En dehors du laboratoire : 1 écouvillon avec milieu de transport spécifique APTIMA dans le

cas d’une analyse par PCR (milieu disponible au laboratoire). Prélèvement vaginal avec recherche de Mycoplasme Prélever un écouvillon supplémentaire (sec ou avec milieu de transport). Prélèvement vaginal avec recherche de Chlamydiae Le prélèvement se fait au niveau de l’endocol. Prélever un écouvillon supplémentaire : avec milieu de transport spécifique APTIMA dans le cas d’une analyse par PCR (écouvillon avec tige DACRON, pas de tige en bois et milieu disponible au laboratoire). Pour cette recherche, les 1ères urines du matin peuvent être aussi utilisées. Prélèvement vaginal avec recherche d’Herpes Le prélèvement se fait au niveau des lésions vésiculaires herpétiques. Prélever un écouvillon supplémentaire : avec milieu de transport spécifique M4RT (milieu disponible au laboratoire). Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : conservation des écouvillons dans leur milieu de transport et des recueils urinaires 2h à température ambiante pour les écouvillons sans gel et 8h à température ambiante pour les écouvillons avec gel.



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Prélèvements urétraux

Vérifier : • Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement. • Il est nécessaire de faire le prélèvement à distance de toute prise d’anti-infectieux.

Prélèvement urétral simple (PU)

Prélever l’écoulement urétral à l’aide de 2 écouvillons : 1 écouvillon fin à placer dans un milieu de transport et1 écouvillon sec. Prélèvement urétral avec recherche de Mycoplasme

Prélever un écouvillon sec supplémentaire. Prélèvement urétral avec recherche de Chlamydiae

Prélever un écouvillon supplémentaire : avec milieu de transport spécifique APTIMA (écouvillon avec tige DACRON, pas de tige en bois et milieu disponible au laboratoire). Pour cette recherche, les 1ères urines du matin peuvent être aussi utilisées. Prélèvement urétral avec recherche d’Herpes

Prélever un écouvillon supplémentaire : avec milieu de transport spécifique M4RT (milieu disponible au laboratoire). Le prélèvement se fait au niveau des lésions vésiculaires herpétiques. Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire :

− Conservation des écouvillons dans leur milieu de transport et des recueils urinaires 2h à température ambiante.



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Prélèvements de peau, phanères, plaies, pus, escarres

Il est recommandé de ne pas appliquer d’antiseptique, crème ou pommade antibiotique sur les lésions avant le prélèvement. Peau

Repérer la zone lésée. A l'aide d'une curette de Brocq, prélever les squames en périphérie de la lésion, les déposer dans une boite de Pétri (matériel disponible au laboratoire). Cheveux, poils

Repérer la zone lésée. Prélever les poils et cheveux à l'aide d'une pince à épiler (racines nécessaires) en zone proximale (à la limite de la peau saine et de la peau malade). Déposer l'ensemble dans une boite de Pétri (matériel disponible au laboratoire). Ongles

A l'aide d'un coupe ongle, prélever l'ongle jusqu’à atteindre la partie la plus proximale, à la limite de l'ongle sain et de l'ongle malade, puis racler l’ongle à l'aide d'une curette de Brocq pour en détacher des fragments. Déposer l'ensemble dans une boite de Pétri (matériel disponible au laboratoire). Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire :

− Conservation des échantillons 12h à température ambiante. Plaies, pus, escarres

� Prélever deux écouvillons avec milieu de transport pour la culture et l’examen direct. Identifier sur chaque écouvillon le site de prélèvement (ex : jambe gauche). En cas de besoin pour avoir accès à la plaie gratter ou percer à l’aide d’un Vaccinostyle.

� Prélever un échantillon de plaie ou ponctionner un échantillon de pus et le déposer dans un

flacon stérile. Identifier le site de prélèvement sur le flacon stérile.

Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : − Conservation des écouvillons sans milieu de transport 2h à température ambiante. − Conservation des écouvillons avec milieu de transport 12h à température ambiante. − Conservation des échantillons dans flacon stérile 2h à température ambiante.

Curette de Brocq

Vaccinostyle



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Prélèvements oculaires

Conjonctivite

Le prélèvement bactériologique doit être réalisé avant toute antibiothérapie et il est recommandé de ne pas utiliser de collyre dans les 72h avant le prélèvement.

Le prélèvement est réalisé à l’aide d’un écouvillon: recueil des sécrétions et du pus conjonctival prélevé dans l’angle interne de l’œil. Identifier le site de prélèvement sur chaque échantillon (droit ou gauche).

Pour la recherche de Chlamydiae : après lavage de l’œil avec du sérum physiologique stérile, à l’aide d’un écouvillon avec milieu de transport APTIMA (disponible au laboratoire), réaliser un grattage conjonctival par 4 allers/retours (paupière inférieure et paupière supérieure après retournement). Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire :

− Conservation des écouvillons 12h à température ambiante.

Recherche de Demodex

Arracher des cils à la pince à épiler. Déposer les cils dans une boîte de Pétri.

Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire : − Conservation des cils 4h à température ambiante.

Prélèvements ORL (nez, gorge, langue, oreille,…)

Le prélèvement est à réaliser avant toute antibiothérapie. Gorge

En s'aidant d'un abaisse-langue, prélever 2 écouvillons sur le fond de la gorge et les amygdales. − Au laboratoire : 2 écouvillons secs. − En dehors du laboratoire : 2 écouvillons avec milieu de transport. Bouche, langue

Faire ouvrir la bouche, rouler 1 écouvillon sur la langue et/ou sur l’intérieur des joues, gencives, palais…en fonction de la prescription. Prélever un deuxième écouvillon. Oreilles

Prélever l’écoulement au niveau du conduit auditif externe ou sur le site précisé par le prescripteur avec 1 écouvillon fin. Identifier le site de prélèvement (droite ou gauche) sur l’écouvillon. Les prélèvements de pus de paracentèse sont réalisés par les médecins ORL.

Demodex au microscope



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Nez

Prélever 1 écouvillon par narine introduit de façon presque perpendiculaire à la face du visage, identifier le site de prélèvement sur les écouvillons.

Pour la recherche de Coqueluche par PCR : un kit de prélèvement spécifique est disponible au laboratoire avec sa notice. Jusqu’à la prise en charge par le laboratoire :

− Conservation des écouvillons dans leur milieu de transport 12h à température ambiante. Pour les prélèvements ne figurants pas ci-dessus : merci de contacter le laboratoire.

Autres Prélèvements / Recueils / Tests Test respiratoire à l’urée (HELIKIT®)

Kit HELIKIT® à acheter en pharmacie.

Le patient doit avoir arrêté les antibiotiques depuis au moins 4 semaines, les anti-sécrétoires depuis au moins 3 semaines et les pansements gastriques et anti-acides depuis 24h. Le patient doit être strictement à jeun sans avoir bu ni fumé.

Se référer à la notice présente dans le kit pour la réalisation du test.

Cryoglobuline

Les Cryoglobulines sont définies par la présence dans le sang d’immunoglobulines (Ig) possédant la caractéristique de précipiter à froid et de se redissoudre après réchauffement.

Le prélèvement doit être réalisé au laboratoire du fait des conditions de température strictes à respecter :

- Mettre 2 tubes secs à 37°C pendant 10 mn. - Effectuer le prélèvement dans ces tubes. - Mettre les tubes immédiatement à 37°C pendant 2h jusqu’à coagulation complète. - Centrifuger à 2100 tr/mn pendant 15 mn à 37°C. - Conserver le sérum réfrigéré.



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Dépistage de la Trisomie 21

Ce test, bien qu’il ne possède pas de particularité au niveau de la prise de sang proprement dite, doit respecter des modalités strictes au niveau pré-analytique :

- Le prélèvement doit être centrifugé le plus rapidement possible, dans un délai de 4 heures. - Le sérum (minimum 3mL) doit être conservé impérativement réfrigéré à 4°C.

Conformément à l'arrêté du 23 juin 2009 (JO du 3 juillet 2009), joindre impérativement: - la prescription médicale. - la fiche de renseignements cliniques. (BIOMNIS-EUROFINS®) - le compte rendu échographique. - l'attestation de consultation et le consentement de la patiente signés par la patiente et le

prescripteur. ACTH

Le prélèvement doit être réalisé au laboratoire du fait des conditions de température strictes à respecter :

- Mettre 1 tube EDTA au réfrigérateur, - Effectuer le prélèvement dans ce tube, - Centrifuger à 2100 tr/mn pendant 10 mn à 4°C le plus rapidement possible, - Conserver le plasma congelé.

Transport des échantillons

Le transport des échantillons est sous la responsabilité du préleveur et/ou du coursier jusqu’à l’arrivée au laboratoire.

Les échantillons du laboratoire sont classés par l’ADR (Accord européen relatif au transport international des marchandises Dangereuses par la Route) en Matière Infectieuse catégorie B, leur transport répond donc à des critères spécifiques :

• Le triple emballage est obligatoire,

• Un récipient primaire étanche contenant l’échantillon,

• Un récipient secondaire étanche, résistant aux chocs, avec un matériel absorbant en quantité suffisante,

• Le tout placé et calé dans un emballage tertiaire fermé, résistant et isotherme,

• Marquage « UN3373 » et « Matière biologique catégorie B ».

Définition de Matière infectieuse de catégorie B : Matière susceptible de contenir des agents pathogènes (échantillon primaire de diagnostic).



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Le laboratoire met à disposition des préleveurs des boîtes de prélèvement HEMOBOX, HEMOBOX II, HEMOBOX 4 ou HEMOBOX 5 conformes à l’ADR contenant :

• Des tubes de prélèvement.

• Aiguille et corps de pompe à usage unique.

• 1 fiche de transmission de prélèvement. Pour tout autre tube (supplémentaire ou spécifique) contacter le laboratoire.

Modalités de transport

� Pour chaque patient, placer les tubes dans une boîte rigide, étanche et individuelle.

� Séparer les documents relatifs au prélèvement des échantillons et les joindre au prélèvement.

� Durant le transport, dans une sacoche spécifique, les prélèvements doivent être conservés, de préférence, en position verticale.

La température recommandée pour le transport des échantillons est de :

- Température ambiante : 20°C +/- 5°C,

- Température réfrigérée : 5°C +/- 3°C.

Ramassage des prélèvements par le laboratoire : Selon la tournée, lorsque le coursier récupère les prélèvements, il les place dans une sacoche de transport avec surveillance des températures via des capteurs de température.

Les tubes de prélèvement s’altèrent sous l’effet du froid ou de la chaleur : merci de ne pas stocker les boîtes de prélèvements dans vos véhicules.

Délai d’acheminement

Le délai d’acheminement au laboratoire : − des échantillons sanguins est de 8h maximum après le prélèvement sauf pour les cas

particuliers renseignés dans le catalogue des analyses en ANNEXE. − des autres échantillons est de 24h maximum après le prélèvement sauf pour les cas

particuliers renseignés dans le catalogue des analyses en ANNEXE.

Pour les analyses bactériologiques se référer au protocole de recueil correspondant.

En cas d’urgence ou si l’échantillon nécessite un prétraitement particulier (congélation immédiate, centrifugation rapide,…) le préleveur doit prendre ses dispositions pour apporter les échantillons au laboratoire la plus rapidement possible (les apporter aussitôt au laboratoire ou contacter le laboratoire pour un passage du coursier).

Certaines analyses nécessitant un traitement particulier ne peuvent être prélevées qu’au laboratoire, ces analyses sont signalées dans le catalogue des analyses. Exemple : ACTH, cryoglobuline,…



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Elimination des déchets

La gestion et l’élimination des déchets de soins (contaminés et piquants) sont sous la responsabilité du préleveur et doivent être assurées conformément à la règlementation en vigueur. Sécuriser l’élimination des déchets consiste dès la production des déchets à effectuer un tri selon la réglementation afin d’assurer la sécurité et le respect du personnel.

• Les déchets assimilés aux ordures ménagères : papiers, emballages, cotons non souillés, sont à éliminer dans les poubelles de ville en respectant le tri.

• Les déchets à caractère confidentiel : papiers, étiquettes comportant des informations confidentielles, sont à éliminer dans les poubelles de ville après destruction.

• Les déchets d’activité de soin à risque infectieux (DASRI) ne doivent jamais être mélangés et jetés avec les ordures ménagères : � Les déchets souillés piquants, tranchants doivent être recueillis dans des collecteurs à

aiguilles (norme NF). Les aiguilles ne doivent jamais être re-capuchonnées, ni laissées dans les mallettes ou boites de prélèvements.

� Les déchets souillés mous doivent être recueillis dans des sacs plastiques avec ou sans carton de couleur jaune (norme NF) avec un marquage « risque biologique ».

Le stockage et l’enlèvement des DASRI sont également réglementés.

Collecteurs pour objets coupants, piquants ou

tranchants. Sacs pour DASRI non coupants, non

piquants, non tranchants.

Transmission des résultats

Délai de rendu des résultats

Rendu des résultats (disponibles au laboratoire) indiqué dans le tableau en ANNEXE : � 4h : pour toute analyse urgente. � J0 : Résultat rendu le soir même à partir de 17h30. � J+1 : Résultat rendu le lendemain (jour ouvrable) à partir de 17h30. � J+2 : Résultat rendu 48h après le prélèvement (jour ouvrable), à partir de 17h30. � Pour les prélèvements bactériologiques, le délai de rendu des résultats sera précisé par le

laboratoire en fonction de la nature du prélèvement.



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Modalités de transmission

Transmission des résultats au prescripteur Les comptes-rendus d’analyses lui sont systématiquement transmis (sauf demande contraire) : soit par courrier postal, soit par service coursier du laboratoire, soit par fax, soit par voie électronique cryptée, soit par l’intermédiaire du patient. Transmission des résultats au patient Les comptes rendus d’analyses peuvent : - lui être remis personnellement ou à un tiers sous pli cacheté au laboratoire sur présentation de la fiche de retrait des résultats, de la carte vitale ou de la carte d’identité du patient (pour les prélèvements à l’extérieur). - lui être envoyés par courrier postal (délai 3 à 4 jours ouvrés). - lui être transmis par l’intermédiaire d’un serveur sécurisé (www.mesanalyses.fr : ID envoyé par sms et mot de passe = date de naissance en inversée : AAAAMMJJ). Certains résultats d’analyses peuvent être communiqués par téléphone (cf. procédure PG-M-POST-001 « Diffusion des résultats »).

La transmission des résultats d’analyses à destination des patients mineurs, à destination des compagnies d’assurances ou de la Médecine du travail, est soumise à une réglementation précise, respectée par le laboratoire.

Prestation de conseil

Toute prescription fait l’objet d’une revue administrative et technique, et médicale le cas échéant (PG-M-POST-003 « validation biologique» et PG-M-CSEIL-001 « Prestation de conseil »).

Le biologiste peut être amené, en accord avec le prescripteur, à modifier la prescription.

Tout compte-rendu de résultats fait l’objet d’une interprétation médicale par le biologiste.

Les biologistes interviennent spontanément auprès du prescripteur pour fournir une interprétation des résultats lorsqu’une prescription complémentaire s’avère utile et/ou nécessaire.

Les biologistes sont disponibles sur demande du patient, pour apporter un commentaire ou une interprétation des résultats d’analyse.



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ANNEXE : Catalogue des analyses

Sources bibliographiques : w : Document OMS « WHO/DIL/LAB/99 rev.2olp : « Conservation des échantillons biologiquesdu délai avant analyse » C.ODDOZE, E.LOMBARD, H.PORTUGAL (septembre 2012)gfht : « stabilité des paramètres d’hémostase générale et délai de réalisation des analyses2017 du GFHT. fdld : « pré-analytique en biologie médicaleregard sur les critères limites d’acceptationJP.DEHORNE. dpbz : « Préanalytique et accréditationP.DIALMA, S.PIAULENNE, S.BATY, T.ZEITOUN

Délai de réalisation : le délai de réalisation est donné à titre indicatif et est susceptible d’être modifié exceptionnellement.

Stabilité avant traitement : délai d’acheminement au laboratoire, avant centrifugation ou toute autre manipulation de l’échantillon (expl

Stabilité avant analyse : délai entre le traitement de l’échantillon et l’analyse

n dcg° auto : nombre de décongélation(s) autorisé.

ACE w Nature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 1j à 15Stabilité avant analyse : 1j à 15Rajout possible après traitement : 180j (Préconisations préleveurs :

ACETONE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 3h à 2-8°C Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs : échantillons à traiter le plus rapidement possible

ACIDE URIQUE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun


Ref : IT

Applicable le : 12

Catalogue des analyses

WHO/DIL/LAB/99 rev.2 », Conservation des échantillons biologiques : effet de la nature des tubes, de la température

» C.ODDOZE, E.LOMBARD, H.PORTUGAL (septembre 2012)stabilité des paramètres d’hémostase générale et délai de réalisation des analyses

analytique en biologie médicale : étude et analyse critique de 3 variables clés, nouveau regard sur les critères limites d’acceptation » E.FERRE, O.DAVID, M.LETONDEL,

Préanalytique et accréditation : critères d’acceptation des échantillons en LBM multisites, S.BATY, T.ZEITOUN

le délai de réalisation est donné à titre indicatif et est susceptible d’être

: délai d’acheminement au laboratoire, avant centrifugation ou toute autre nipulation de l’échantillon (expl : acidification des urines),

délai entre le traitement de l’échantillon et l’analyse.

: nombre de décongélation(s) autorisé.

Tubes préconisés :

Autres tubes tolérés

à 15-25°C Délai de réalisationà 15-25°C 7j à 2-8°C 180j

180j (-20°C)

Tubes préconisés : FLACON STERILE


Délai de réalisation

échantillons à traiter le plus rapidement possible


Autres tubes

h à 15-25°C Délai de réalisation

à 15-25°C 48h à 2-8°C 30j à 8h (15-25°C)



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: effet de la nature des tubes, de la température et » C.ODDOZE, E.LOMBARD, H.PORTUGAL (septembre 2012),

stabilité des paramètres d’hémostase générale et délai de réalisation des analyses » rev. Mai

lyse critique de 3 variables clés, nouveau » E.FERRE, O.DAVID, M.LETONDEL,

: critères d’acceptation des échantillons en LBM multisites »

le délai de réalisation est donné à titre indicatif et est susceptible d’être

: délai d’acheminement au laboratoire, avant centrifugation ou toute autre

sang Autres tubes tolérés :

Délai de réalisation : J+1 180j à -20°C

urines échantillon Autres tubes tolérés :

Délai de réalisation : J0


Délai de réalisation : J0 30j à -20°C (1 dcg° auto)



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ACIDE URIQUE w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : ne pas réfrigérerStabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (Préconisations préleveurs : ne pas réfrigérer

ACIDE URIQUE w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : ne pas réfrigérerStabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (Préconisations préleveurs : ne pas réfrigérer

ALAT / PT / TGP olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse ALBUMINE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs :

ALBUMINE / PROTEINURIE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (Préconisations préleveurs :

ALBUMINE / PROTEINURIE Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12



e pas réfrigérer Délai de réalisation après ajout de NAOH pH > 8 (15-25°C) après ajout de NAOH pH > 8

pas réfrigérer

Tubes préconisés : FLACON POUR URINES DE 24h


e pas réfrigérer Délai de réalisation (après la fin du recueil) après ajout de NAOH pH > 8 (15-25°C) après ajout de NAOH pH > 8

e pas réfrigérer



8h à 15-25°C Délai de réalisation8h à 15-25°C 48h à 2-8°C 30j à

8h (15-25°C) attention à l’hémolyse




8h (15-25°C)

ALBUMINE / PROTEINURIE w Tubes préconisés : FLACON STERILE


Délai de réalisation (15-25°C)

ALBUMINE / PROTEINURIE w Tubes préconisés : FLACON POUR URINES DE 24h


Délai de réalisation (après la fin du recueil) (15-25°C)



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urines de 24h Autres tubes tolérés :












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AFP w Nature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 1j à 15Stabilité avant analyse : 1j à 15Rajout possible après traitement : 90j (-Préconisations préleveurs :

AMYLASE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse

AMYLASE w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : AMYLASE w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

ASAT / OT / TGO olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie

βHCG w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 1j à 15Stabilité avant analyse : 1j à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : date des dernières règles


Ref : IT

Applicable le : 12



à 15-25°C Délai de réalisationà 15-25°C 7j à 2-8°C 90j à

-20°C)










Délai de réalisation (après la fin du recueil) (15-25°C)




8h (15-25°C) attention à l’hémolyse et à la lipémie



à 15-25°C Délai de réalisationà 15-25°C 7j à 2-8°C 365

365j (-20°C) date des dernières règles ? urgence ?



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Délai de réalisation : J+1 90j à -20°C (1 dcg° auto)










éalisation : J+1 365j à -20°C (1 dcg° auto)



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BILIRUBINE CONJUGUEE / DIRECTENature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 6h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie

BILIRUBINE TOTALE dpbz Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 6h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémoly

BNP w Nature de l’échantillon : PLASMA EDTA Stabilité avant traitement : 7h à 15Stabilité avant analyse : 5j à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse, suivi de traitement

BW / TPHA + VDRL / SYPHILISNature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : attention à

CA 15-3 w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 90j (-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie

CA 19-9 w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 7j à 15Stabilité avant analyse : 7j à 15Rajout possible après traitement : 90j (-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie


Ref : IT

Applicable le : 12

/ DIRECTE dpbz Tubes préconisés :


à 15-25°C Délai de réalisation

8h à 15-25°C 48h à 2-8°C 30j à 8h (15-25°C)

attention à l’hémolyse et à la lipémie


Autres tubes tolér


8h à 15-25°C 48h à 2-8°C 30j à 8h (15-25°C)




7h à 15-25°C Délai de réalisation5j à 15-25°C 5j à 2-8°C 5j à

24h (15-25°C) attention à l’hémolyse, suivi de traitement ?, urgence ?

BW / TPHA + VDRL / SYPHILIS Tubes préconisés :


8h à 15-25°C Délai de réalisation8h à 15-25°C 48h à 2-8°C 1an à

365j (-20°C) attention à l’hémolyse, renseignements cliniques ?



8h à 15-25°C Délai de réalisation8h à 15-25°C 7j à 2-8°C 90j à

-20°C) attention à l’hémolyse et à la lipémie



7j à 15-25°C Délai de réalisation7j à 15-25°C 30j à 2-8°C 90j à




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Délai de réalisation : J0 5j à -20°C


Délai de réalisation : J+1 1an à -20°C







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CA 125 w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 2j à 15Stabilité avant analyse : 3j à 15Rajout possible après traitement : 90j (-Préconisations préleveurs :

CALCIUM olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie

CALCIUM w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : ne pas réfrigérerStabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : ne pas réfrigérer

CALCIUM w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : ne pas réfrigérerStabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : ne pas réfrigérer

CANNABIS Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Centrifuger avant analyse si présence de

précipitésStabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : à réaliser au laboratoire + carte d’identité à vérifier

CHLORE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie


Ref : IT

Applicable le : 12



2j à 15-25°C Délai de réalisa3j à 15-25°C 5j à 2-8°C 90j à

-20°C)




8h (15-25°C) attention à la lipémie



ne pas réfrigérer Délai de réa après ajout de HCL pH < 2

24h (15-25°C) après ajout de HCL pH < 2 ne pas réfrigérer



ne pas réfrigérer Délai de réalisation (après la fin du recueil) après ajout de HCL pH < 2

24h (15-25°C) après ajout de HCL pH < 2 ne pas réfrigérer



Centrifuger avant analyse si présence de précipités


24h à 15-25°C 48h à 2-8°C >48h à 24h (15-25°C)

à réaliser au laboratoire + carte d’identité à vérifier







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Délai de réalisation : J+1

>48h à -20°C





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CHLORE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

CHLORE Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

CHOLESTEROL HDL olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun, attention à l’ictère

CHOLESTEROL TOTAL olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun, attention à l’ictère

CLOSTRIDIUM DIFFICILE / CYTOTOXINE A et B Nature de l’échantillon : ECHANTILLON DE SELLES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : ≤ 12h Rajout possible après traitement : 24h (2Préconisations préleveurs :

COPROCULTURE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON DE SELLES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 2Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12






Délai de réa (après la fin du recueil)

24h (15-25°C)




8h (15-25°C) à jeun, attention à l’ictère




8h (15-25°C) à jeun, attention à l’ictère

CLOSTRIDIUM DIFFICILE / CYTOTOXINE A et B Tubes préconisés : FLACON COPROCULTURE


Délai de réalisation 12h à 15-25°C 24h à 2-8°C 24h (2-8°C)

Tubes préconisés : FLACON COPROCULTURE


Délai de réalisation12h à 2-8°C



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selles Autres tubes tolérés :






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CORTISOL olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : prélèvement à 8h le matinprélèvement.

COTININE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES

Stabilité avant traitement : Centrifuger avant analyse si pprécipités

Stabilité avant analyse : Rajout possible après traitement : 24h (2Préconisations préleveurs :

CPK olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun, attention à l’hémolyse

CREATININE / CLAIRANCE CALCULEE Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie et à l’ictère

CREATININE w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (Préconisations préleveurs :

CREATININE / CLAIRANCE CLCR Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : si CLCR demandée = prélever un échantillon pour le dosage d’une créatinine sanguine


Ref : IT

Applicable le : 12




-8°C) prélèvement à 8h le matin (sauf indication du prescripteur), noter l’heure de



Centrifuger avant analyse si présence de précipités


48h à 2-8°C >48H à (2-8°C)




8h (15-25°C) à jeun, attention à l’hémolyse

/ CLAIRANCE CALCULEE -MDRD olp Tubes préconisés :



8h (15-25°C) attention à la lipémie et à l’ictère




24h (15-25°C)

/ CLAIRANCE CLCR w Tubes préconisés : FLACON POUR URINES DE 24h


Délai de réalis (après la fin du recueil)

24h (15-25°C) si CLCR demandée = prélever un échantillon pour le dosage d’une créatinine sanguine



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du prescripteur), noter l’heure de



>48H à -20°C









si CLCR demandée = prélever un échantillon pour le dosage d’une créatinine sanguine



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CRP olp

Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie et à l’ictère

CYTOBACTERIOLOGIE EXPECTORATION / CRACHATNature de l’échantillon : CRACHAT Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 2h à 15Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs : à jeun

CYTOLOGIE URINAIRE / CULOTNature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 2h à 15Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :

D-DIMERES gfht Nature de l’échantillon : PLASMA CITRATE Stabilité avant traitement : 24h à 15

Stabilité avant analyse : 24h à 15

Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : volume minimum = 80%, examen

DEMODEX Nature de l’échantillon : CIL Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 4h à 15Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :

DENSITE URINAIRE Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12




8h (15-25°C) attention à la lipémie et à l’ictère

CYTOBACTERIOLOGIE EXPECTORATION / CRACHAT Tubes préconisés : FLACON STERILE


Délai de réalisationà 15-25°C

CYTOLOGIE URINAIRE / CULOT Tubes préconisés : FLACON STERILE


Délai de réalisationà 15-25°C 12h à 2-8°C



24h à 15-25°C Délai de réalisation

24h à 15-25°C 3j à 2-8°C aliquot

180j à aliquot

12h (15-25°C) volume minimum = 80%, examen URGENT, renseignements cliniques

Tubes préconisés : BOITE DE PETRI






24h (15-25°C)



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crachat Autres tubes tolérés :





Délai de réalisation : J0 180j à -20°C aliquot (2 dcg° auto)

, renseignements cliniques ?

oculaire Autres tubes tolérés :






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DIGOXINE w Nature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 1j à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : prélèvement juste avant ou 6 à 8h après la prise du médicament, noter la date et l’heure du prélèvement, de la prise du médicament et du début du traitement

EBV Nature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques, ganglions

ECBU Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement :

Stabilité avant analyse : 2h à 15(sans conservateur)

Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs : recueil à faire avant traitement ou 5jrs après l’arrêt du traitement

ELECTROPHORESE DES PROTEINESNature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 24h à 15


Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : à jeun, si possible prendre 2 tubes secs (un pour le dosage des protéines + un pour l’électrophorèse), attention à l’hémolyse

ESTRADIOL w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA


Ref : IT

Applicable le : 12




-8°C) prélèvement juste avant ou 6 à 8h après la prise du médicament, noter la date et

lèvement, de la prise du médicament et du début du traitement




365j (-20°C) renseignements cliniques, ganglions ? fièvre ?




(sans conservateur) 12h à 2-8°C (sans conservateur)

48h à 15(avec conservateur)

recueil à faire avant traitement ou 5jrs après l’arrêt du traitement

ELECTROPHORESE DES PROTEINES w Tubes préconisés :



24h à 15-25°C 7j à 2-8°C 21j à après le prélèvement

-8°C) si possible prendre 2 tubes secs (un pour le dosage des protéines + un pour

hémolyse




-8°C) date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA ?



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de réalisation : J+1 30j à -20°C

prélèvement juste avant ou 6 à 8h après la prise du médicament, noter la date et




Délai de réalisation : J+2 48h à 15-25°C (avec conservateur)

recueil à faire avant traitement ou 5jrs après l’arrêt du traitement


Délai de réalisation : J+1 21j à -20°C si congelé ≤ 8h après le prélèvement

si possible prendre 2 tubes secs (un pour le dosage des protéines + un pour





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FER olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun le matinsur la prescription), attention à l’hémolyse

FERRITINE w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 7j à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse

FIBRINOGENE gfht Nature de l’échantillon : PLASMA CITRATE Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : volume minimum = 80%

FOLATES SERIQUES /ACIDE FOLIQUE / VIT B9Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : a jeun, attention à l’hémolyse

FSH olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 3j à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA

GGT / GAMMA GT olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse


Ref : IT

Applicable le : 12




8h (15-25°C) le matin, examen hors nomenclature sauf dans certains cas (devant être notifiés

sur la prescription), attention à l’hémolyse




-8°C) attention à l’hémolyse



24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 24h à 2-8°C 730

12h (15-25°C) volume minimum = 80%

FOLATES SERIQUES /ACIDE FOLIQUE / VIT B9 olp Tubes préconisés :



-8°C) tention à l’hémolyse et à lipémie











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sang es tubes tolérés :


certains cas (devant être notifiés




Délai de réalisation : J0 730j à -20°C aliquot

sang s tubes tolérés :

Délai de réalisation : J+1 56j à -20°C (1dcg° auto)







44600 Saint Nazaire

GLUCOSE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM

Stabilité avant traitement : 24h à 15


Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : à jeun, attention à la lipémie

GLUCOSE POST-PRANDIALNature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 24h à 15


Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : 1h30 à 2h après le début du repas, attention à la lipémie

GLUCOSE /SUCRE w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 2h à 15Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :

GLUCOSE w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement :

Stabilité avant analyse : 2h à 15(après la fin du recueil)

Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :

GROUPE SANGUIN Nature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : Fournir la photocopie de la carte d’identité2 déterminations nécessaires pour valider une carte de groupe sanguin,Identification des tubes OBLIGATOIRELe groupe sanguin est pris en charge par la sécurité sociale seulement dans un contexte pré transfusionnel (opération, grossesse).


Ref : IT

Applicable le : 12



24h à 15-25°C

<2h à 15-25°C Délai de réalisation

24h à 15-25°C

4h à 15-25°C

24h à 2-8°C 6h à 2-8°C

24h (15-25°C) à jeun, attention à la lipémie

IAL olp Tubes préconisés :


24h à 15-25°C

<2h à 15-25°C Délai de réalisation

24h à 15-25°C

4h à 15-25°C

24h à 2-8°C 6h à 2-8°C

24h (15-25°C) 1h30 à 2h après le début du repas, attention à la lipémie



Délai de réalisationà 15-25°C 2h à 2-8°C 2j à

Tubes préconisés : FLACON POUR URINE DE 24h



(après la fin du recueil) 2h à 2-8°C (après la fin du recueil)

2j à (après la fin du recueil)



24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 48h à 2-8°C

24h (15-25°C)

Fournir la photocopie de la carte d’identité 2 déterminations nécessaires pour valider une carte de groupe sanguin, Identification des tubes OBLIGATOIRE : nom de naissance, prénom, nom usuel, date de naissance et sexe,

en charge par la sécurité sociale seulement dans un contexte pré transfusionnel



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Délai de réalisation : J0 2j à -20°C (après la fin du recueil)



: nom de naissance, prénom, nom usuel, date de naissance et sexe, en charge par la sécurité sociale seulement dans un contexte pré transfusionnel



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HAPTOGLOBINE olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse

HBA1C / HEMOGLOBINE GLYQUEENature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 3j à 15Rajout possible après traitement : 3j (15Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HEMOCULTURE Nature de l’échantillon : SANG TOTAL

Stabilité avant traitement : ne jamais réfrigérer ou congelerStabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : prélever le flacon aérobie en premier puis le flacon anaérobie, noter l’heure de prélèvement. Ne pas couvrir le code barres du flacon.Renseignements cliniques.

HEPATITE A – Ac anti HAV totauxNature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HEPATITE B – Ac anti HBC totauxNature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 7j à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques


Ref : IT

Applicable le : 12




8h (15-25°C) ntion à l’hémolyse

GLYQUEE olp Tubes préconisés :


Délai de réalisation3j à 15-25°C 3j à 2-8°C

3j (15-25C°) renseignements cliniques

Tubes préconisés : FLACONS SPECIFIQUES POUR HEMOCULTURE (aérobie / anaérobie)

Autres tubes toléExceptionnellement en cas d’absence de flacon, des tubes EDTA peuvent être prélevés

ne jamais réfrigérer ou congeler Délai de réalisation24h à 15-25°C

24h (15-25°C) prélever le flacon aérobie en premier puis le flacon anaérobie, noter l’heure de

prélèvement. Ne pas couvrir le code barres du flacon.

Ac anti HAV totaux Tubes préconisés :



365j (-20°C) renseignements cliniques

Ac anti HBC totaux w Tubes préconisés :






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sang Autres tubes tolérés : Exceptionnellement en cas d’absence de flacon, des tubes EDTA peuvent être prélevés Délai de réalisation : J+2 ou J+3

prélever le flacon aérobie en premier puis le flacon anaérobie, noter l’heure de







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HEPTITE B – Ac anti HBS w

Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 7j à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HEPATITE B – Ag HBS Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HEPATITE C – Ac anti HCV w

Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 7j à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HIV (VIH1+VIH2) Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24 à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

HLM / COMPTE D’ADDIS Nature de l’échantillon : URINES SUR 3H Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : préciser les heures de début et de fin du recueil

INR / TP (taux de prothrombine) Nature de l’échantillon : PLASMA CITRATE Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 12h (Préconisations préleveurs : volume minimum = 80%oraux


Ref : IT

Applicable le : 12




à 15-25°C 28j à 2-8°C 365j à 365j (-20°C)

renseignements cliniques





w Tubes préconisés :



j à 15-25°C 28j à 2-8°C 365j à 365j (-20°C)

renseignements cliniques



24h à 15-25°C Délai de réalisation24 à 15-25°C 8j à 2-8°C 365j à


Tubes préconisés : FLACON POUR HLM


Délai de réalisat12h à 15-25°C (après la fin du recueil)

12h (15-25°C) préciser les heures de début et de fin du recueil

(taux de prothrombine) gfht Tubes préconisés :


24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C

12h (15-25°C) volume minimum = 80%, traitement AVK ou nouveaux anticoagulants circulants



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urines sur 3h Autres tubes tolérés :




ou nouveaux anticoagulants circulants



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LDH olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 2h à 15Stabilité avant analyse : 24h à Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipé

LH olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA

LIPASE olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l

LITHIUM w Nature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 4h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 1Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : posologie, date et heure de la dernière prise du traitement

MAGNESIUM olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 6h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie

MAGNESIUM w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : 2h à 15Stabilité avant analyse : 3j à 15

de HCLRajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12




15-25°C 24h à 2-8°C 30j à 8h (15-25°C)












à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 7j à 2-8°C 30j à

12h (15-25°C) posologie, date et heure de la dernière prise du traitement




8h à 15-25°C 24h à 2-8°C 30j à 8h (15-25°C)




à 15-25°C Délai de réalisation3j à 15-25°C après ajout de HCL pH<2

3j à 2-8°C après ajout de HCL pH<2

365j à de HCL pH<2

12h (15-25°C)



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Délai de réalisation : J0 365j à -20°C après ajout de HCL pH<2



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MAGNESIUM w urines de 24h Nature de l’échantillon : URINES DE 24h


Autres tubes tolérés :

Stabilité avant traitement : 2h à 15-25°C Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 3j à 15-25°C (après la fin du

recueil) après ajout de HCL pH<2

3j à 2-8°C (après la fin du


365j à -20°C (après la fin du


Rajout possible après traitement : 12h (15-25°C) Préconisations préleveurs :

MICROALBUMINE urines échantillon Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES



Stabilité avant traitement : Centrifuger avant analyse si présence de précipités


Stabilité avant analyse : 72h à 2-8°C Rajout possible après traitement : 24h (2-8°C) Préconisations préleveurs : recueil à conserver au frais

MICROALBUMINE urines de 24h Nature de l’échantillon : URINES DE 24h



Stabilité avant traitement : Centrifuger avant analyse si présence de précipités


Stabilité avant analyse : 72h à 2-8°C (après la fin du recueil) Rajout possible après traitement : 24h (2-8°C) Préconisations préleveurs : recueil à conserver au frais

MYCOLOGIE divers Nature de l’échantillon : ECOUVILLONS, LIQUIDES DIVERS ou BOITE DE PETRI

Tubes préconisés : ECOUVILLONS, FLACONS STERILES ou BOITE DE PETRI


Stabilité avant traitement : Délai de réalisation : J+2 à 30 Stabilité avant analyse : Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs : prélèvement à faire 15j après un traitement local ou 2 mois après un traitement systémique.

NF – NFS – NUMERATION FORMULE SANGUINE sang Nature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA



Stabilité avant traitement : Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 12h à 15-25°C 24h à 2-8°C Rajout possible après traitement : 12h (15-25°C) Préconisations préleveurs : urgence ? surveillance hémopathie ?



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PALUDISME Nature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h (15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : URGENT, à prélever de préférence au laboratoireRenseignements cliniques : séjour ?, date et lieu, traitement

PHOSPHATASE ALCALINE Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à l

PARASITOLOGIE DES SELLESNature de l’échantillon : ECHANTILLON DE SELLES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 2Rajout possible après traitement : Préconisations préleveurs :

PARATHORMONE – PTH olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 24h à 15

6hStabilité avant analyse : 24h à 15

6hRajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et la lipémie

PHOSPHORE fdld Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 6h à 15


Rajout possible après traitement : 6h (15Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12



Délai de réalisation12h (15-25°C) 12h (15-25°C)

, à prélever de préférence au laboratoire. ?, date et lieu, traitement ?

olp





PARASITOLOGIE DES SELLES Tubes préconisés : FLACON COPROCULTURE





24h à 15-25°C


24h à 15-25°C

6h à 15-25°C 3j à 2-8°C 30j à

-8°C) attention à l’hémolyse et la lipémie




à 15-25°C 6h à 2-8°C

24h à 2-8°C 30j à

(15-25°C)



Page 50 sur 58









30j à -20°C (3 dcg° auto)






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PHOSPHORE urines échantillon Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES



Stabilité avant traitement : 2h à 15-25°C Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 2j à 15-25°C après ajout

de HCL pH<3

Rajout possible après traitement : 12h (15-25°C) Préconisations préleveurs :

PHOSPHORE urines de 24h Nature de l’échantillon : URINES DE 24h



Stabilité avant traitement : 2h à 15-25°C (après la fin du recueil) Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 2j à 15-25°C (après la fin du recueil) après ajout de HCL pH<3 Rajout possible après traitement : 12h (15-25°C) Préconisations préleveurs : conserver le flacon au frais pendant toute la durée du recueil

PLAQUETTES olp sang Nature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA



Stabilité avant traitement : Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C 24h à 2-8°C Rajout possible après traitement : 24h (15-25°C) Préconisations préleveurs : traitement ? héparine HBPM ?

POTASSIUM – K+ fdld sang Nature de l’échantillon : PLASMA



Stabilité avant traitement : 6h à 15-25°C Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 6h à 15-25°C 6h à 2-8°C 30j à -20°C (1 dcg° auto)

Rajout possible après traitement : 6h (15-25°C) Préconisations préleveurs : attention à l’HEMOLYSE et à la lipémie

POTASSIUM – K+ w urines échantillon Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES



Stabilité avant traitement : Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15-25°C) Préconisations préleveurs :

POTASSIUM – K+ w urines de 24h Nature de l’échantillon : URINES DE 24h



Stabilité avant traitement : Délai de réalisation : J0 Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C (après la fin du recueil) Rajout possible après traitement : 24h (15-25°C) Préconisations préleveurs : conserver le flacon au frais pendant toute la durée du recueil



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PRELEVEMENT OCULAIRENature de l’échantillon : DIVERS Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : prélèvement avant toute antibiothérapie l

PRELEVEMENT ORL Nature de l’échantillon : DIVERS Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

PRELEVEMENT URETRAL Nature de l’échantillon : DIVERS Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 2h à 15Rajout possible après traitement : 2h (15Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

PRELEVEMENT VAGINAL Nature de l’échantillon : DIVERS Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 2h à 15Rajout possible après traitement : 2h (15Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

PROCALCITONINE w Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15

Stabilité avant analyse : 24h à 15Echantillon stable centrifugé

Rajout possible après traitement : 4h (15Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

PROGESTERONE Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : date des dernières règles, renseignements cliniques, PMAAttention à l’hémolyse et à la lipémie


Ref : IT

Applicable le : 12

CULAIRE Tubes préconisés : ECOUVILLON



12h (15-25°C) prélèvement avant toute antibiothérapie locale ou générale.

Tubes préconisés : ECOUVILLON



12h (15-25°C) renseignements cliniques







Délai de réalisationà 15-25°C écouvillons sans gel 8h à 15-25°C écouvillons avec gel





à 15-25°C Echantillon stable 4h une fois centrifugé

6j à 2-8°C 30j à








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divers Autres tubes tolérés :







Délai de réalisation : J+3 25°C écouvillons avec gel


de réalisation : J+1






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PROLACTINE olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : Prélèvement à jeun avant 10h le matin et après un temps en position au repos de 15min, Date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA

PROTIDES – PROTEINES TOTALESNature de l’échantillon : PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à Avec électrophorèse : voir l’encadré correspondant

PSA – ANTIGENE SPECIFIQUE PROSTATIQUE TOTALNature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : diagnostic ou suivi

PSAL – ANTIGENE SPECIFIQUE PROSTATIQUE LIBRENature de l’échantillon : SERUM Stabilité avant traitement : 3h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : diagnostic ou suivi

RAI – RECHERCHE D’AGGLUTININES IRREGULIERESNature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs : Identification des tubes OBLIGATOIREEn cas de transfusion <4mois : renseigner la datePour les femmes enceinte rhésus négatifFournir une copie de la carte de groupe sanguin


Ref : IT

Applicable le : 12



24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 3j à 2-8°C

-8°C)

Prélèvement à jeun avant 10h le matin et après un temps en position au repos de 15min, Date des dernières règles, renseignements cliniques, PMA ?

PROTEINES TOTALES (hors électrophorèse) olp Tubes préconisés :




: voir l’encadré correspondant – prélèvement sur tube sec/gel

ANTIGENE SPECIFIQUE PROSTATIQUE TOTAL w Tubes préconisés :



365j (-20°C) ic ou suivi ? traitement ?

ANTIGENE SPECIFIQUE PROSTATIQUE LIBRE w Tubes préconisés :


à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 30j à 2-8°C 365j à

365j (-20°C) attention au délai pré traitement diagnostic ou suivi ? traitement ?

RECHERCHE D’AGGLUTININES IRREGULIERES Tubes préconisés :


24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C 72h à 2-8°C

24h (15-25°C)

Identification des tubes OBLIGATOIRE : nom de naissance, prénom, nom usuel, date de naissance et sexe,: renseigner la date, date de la dernière RAI négative.

rhésus négatif : renseigner si injection anti-D et la date de l’injection.Fournir une copie de la carte de groupe sanguin



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Prélèvement à jeun avant 10h le matin et après un temps en position au repos de 15min,









: nom de naissance, prénom, nom usuel, date de naissance et sexe,

D et la date de l’injection.



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RESERVE ALCALINE – BICARBONATES Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 4h à 15Rajout possible après traitement : 4h (15Préconisations préleveurs : attention à l

RETICULOCYTES w Nature de l’échantillon : SANG TOTAL EDTA Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

RUBEOLE IgG Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : renseignements cliniques

SANG – RECHERCHE DANS LES SELLESNature de l’échantillon : ECHANTILLON DE SELLES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 2Rajout possible après traitement : 12h (2Préconisations préleveurs : à conserver au fraisRecherche sur 3 échantillons différents sur 3 jours consécutifs

SANG – RECHERCHE DANS LES URINESNature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 4h à 15Rajout possible après traitement : 4h (15Préconisations préleveurs :

SODIUM olp Nature de l’échantillon : PLASMA / SERUM Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie


Ref : IT

Applicable le : 12

BICARBONATES – CO2 olp




à 15-25°C 6h à 2-8°C 14j à 4h (15-25°C)

attention à la lipémie



Délai de réalisation 15-25°C 24h à 2-8°C

24h (15-25°C)




365j (-20°C) renseignements cliniques, date des dernières règles, vaccination

RECHERCHE DANS LES SELLES Tubes préconisés : FLACON COPROCULTURE



12h (2-8°C) à conserver au frais

Recherche sur 3 échantillons différents sur 3 jours consécutifs

RECHERCHE DANS LES URINES Tubes préconisés : FLACON STERILE



4h (15-25°C)







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, vaccination ?









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SODIUM w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

SODIUM w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

T3L – T3 LIBRE – TRIIODOTHYRONINE LIBRENature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : traitement ?

T4L – T4 LIBRE – THYROXINE LIBRENature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : traitement ?

TCA – TEMPS DE CEPHALINE ACTIVEENature de l’échantillon : PLASMA CITRATE Stabilité avant traitement : 6h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 6h (15Préconisations préleveurs : volume minimum = 80%, contexte

TESTOSTERONE olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12




24h (15-25°C)



Délai de réalisation (après la fin du recueil)

24h (15-25°C)

TRIIODOTHYRONINE LIBRE olp




-8°C) ?

THYROXINE LIBRE olp Tubes préconisés :



-8°C) ?

TEMPS DE CEPHALINE ACTIVEE gfht Tubes préconisés :


à 15-25°C Délai de réalisation8h à 15-25°C si centrifugation dans les 2h sinon 6h à 15-25°C

(15-25°C) volume minimum = 80%, contexte clinique ?




-8°C)



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Délai de réalisation : J0 25°C





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TOXOPLASMOSE DEPISTAGE IgG + IgMNature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 365j (Préconisations préleveurs : Hors grossesse : renseignements cliniquesGrossesse : date des dernières règles, 1

TP – TAUX DE PROTHROMBINENature de l’échantillon : PLASMA CITRATE Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs : volume minimum = 80%, traitement AVK ou nouveaux anticoagulants circulants oraux

TRANSFERRINE olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun

TRIGLYCERIDES olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : à jeun, attention à l’hémolyse et à l’ictère

TROPONINE I w Nature de l’échantillon : PLASMA Stabilité avant traitement : 3h à 15Stabilité avant analyse : 3h à 15Rajout possible après traitement : 3h (15Préconisations préleveurs : URGENT, à prélever de préférence au laboratoire. Renseignements cliniques.

TSH – THYREOSTIMULLINENature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : traitement ?


Ref : IT

Applicable le : 12

TOXOPLASMOSE DEPISTAGE IgG + IgM w Tubes préconisés :



365j (-20°C)

: renseignements cliniques : date des dernières règles, 1er dosage ?

TAUX DE PROTHROMBINE gfht Tubes préconisés :


24h à 15-25°C Délai de réalisation24h à 15-25°C

12h (15-25°C) volume minimum = 80%, traitement AVK ou nouveaux anticoagulants circulants




8h (15-25°C)




8h (15-25°C) à jeun, attention à l’hémolyse et à l’ictère



à 15-25°C Délai de réalisationà 15-25°C 3j à 2-8°C 28j à

3h (15-25°C) , à prélever de préférence au laboratoire. Renseignements cliniques.

THYREOSTIMULLINE olp Tubes préconisés :



-8°C) ? attention à l’hémolyse et à la lipémie



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sang bes tolérés :




volume minimum = 80%, traitement AVK ou nouveaux anticoagulants circulants







, à prélever de préférence au laboratoire. Renseignements cliniques.





44600 Saint Nazaire

UREE olp Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 8h (15Préconisations préleveurs : attention à la lipémie

UREE w Nature de l’échantillon : ECHANTILLON D’URINES Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

UREE w Nature de l’échantillon : URINES DE 24h Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 24h à 15-25°C Rajout possible après traitement : 24h (15Préconisations préleveurs :

VITAMINE B12 – COBALAMINENature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 8h à 15Stabilité avant analyse : 8h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse e

VITAMINE D – VITAMINE 25OHD3 Nature de l’échantillon : SERUM / PLASMA Stabilité avant traitement : 24h à 15Stabilité avant analyse : 24h à 15Rajout possible après traitement : 3j (2-Préconisations préleveurs : attention à l’hémolyse et à la lipémie

VS Nature de l’échantillon : SANG TOTAL Stabilité avant traitement : Stabilité avant analyse : 12h à 15Rajout possible après traitement : 12h (15Préconisations préleveurs :


Ref : IT

Applicable le : 12








24h (15-25°C)



Délai de réalisation (après la fin du recueil)

24h (15-25°C)

COBALAMINE olp Tubes préconisés :

Autres tubes toléré


-8°C) attention à l’hémolyse et à lipémie

VITAMINE 25OHD3 olp Tubes préconisés :







12h à 15-25°C 12h (15-25°C)



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élai de réalisation : J0 30j à -20°C (1 dcg° auto)













44600 Saint Nazaire




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Le laboratoire LEMAIRE possède un site internet sur lequel vous pouvez trouver le manuel de

prélèvement ainsi que des informations utiles : www.laboratoire-lemaire.fr

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