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MANUAL DE PRÁCTICAS
FISIOLOGÍA HUMANA Y
APLICADA
Lamb1923
Autores:
Dr. Renán Lázaro Liébano Segura
Dr. Héctor Emilio Orellana Arauco
2013
INTRODUCCIÒN
El propósito fundamental de la asignatura de Fisiología Humana y Aplicada
es proporcionar los fundamentos de los fenómenos fisiológicos que ocurren en
el ser vivo, permitiendo la comprensión de los trastornos fundamentales en los
estudios clínicos posteriores.
La enseñanza teórica debe complementarse con prácticas adecuadas,
indispensables para la buena comprensión del conocimiento fisiológico. Los
trabajos prácticos tienen como finalidad el análisis y estudios de los temas
propuestos, lo que persigue una óptima formación profesional y educación
científica.
La investigación fisiológica moderna es una ciencia de mucho progreso
razón por la cual día a día encontramos en la literatura explicaciones cada vez
mas detalladas, a nivel molecular , de los fenómenos fisiológicos que conocemos,
esto nos obliga a que las revisiones de las prácticas y del manual de prácticas
de fisiología sean constantes.
El objeto de las prácticas es que los alumnos comprueben los principios
básicos de la fisiología, aprendan técnicas útiles, se familiaricen con el material
fisiológico y conozcan la metodología de un experimento científico estimulando
de esta manera su curiosidad científica y por ende su espíritu de investigación.
Los experimentos proporcionan datos cuantitativos que han de registrarse
y analizarse con cuidado para llegar a conclusiones que se darán en forma
breve y cuyo informe será entregado al finalizar la práctica.
Las distintas prácticas que comprende el presente Manual de Prácticas de
Fisiología. Están diseñadas para que el alumno las realice personalmente de
manera organizada y le conducirá a descubrir hechos, valorarlos e
interpretarlos.
Al comienzo de cada práctica se plantea una breve explicación teórica,
describiendo los aspectos más importantes en los que se basan las
observaciones que se van a realizar, a manera de resumen o repaso de los
fundamentos científicos del tema, objeto de la respectiva práctica que el
estudiante deberá ampliar con la lectura de los textos recomendados en la
asignatura.
Las prácticas seleccionadas son las más representativas para enseñar el
funcionamiento de los diferentes sistemas del cuerpo humano y aquellas que
tienen o pueden tener explicación clínica.
Contiene las prácticas de Fisiología seleccionadas, adaptadas y modificadas
de aquellas que a través de los años se vienen realizando en las históricas
secciones de Fisiología de las Facultades de Medicina y Odontología de la
UNMSM y UNFV y otras como UPCH, que son agregadas como resultado de la
experiencia y esfuerzo de los Profesores de Fisiología.
Por lo tanto hemos creído conveniente que con el aporte de sus
conocimientos y esfuerzo de todos los profesores que integran la asignatura de
Fisiología Humana y Aplicada hacer de los estudiantes entes receptivos,
responsables y estudiosos para de esta manera engrandecer y prestigiar a
través de ésta escuela a nuestra Universidad.
Considerando además que vivimos un nuevo proceso de reforma curricular
que enfatiza el concepto de aprender frente al de enseñar, al igual que las
Escuelas Europeas Universitarias, y ello es determinante en la formación del
futuro Odontólogo.
Los autores
ÍNDICE
CAPÍTULO I : FISIOLOGÍA DEL SISTEMA NERVIOSO
- Excitabilidad independiente de nervio y músculo
- Bloqueo de la placa mioneural
- Inhibición de la vía inhibitoria recurrente
Los Fenómenos Reflejos:
- Sumación Espacial y Sumación Temporal
- Reflejo Miotàtico (Osteotendinosos), Reflejos Pupilares: A la luz
(Fotomotor y Consensual), y de Acomodación o de Convergencia.
- Pares craneales
CAPÍTULO II : FISIOLOGÍA DE LA SANGRE Y DEL SISTEMA INMUNOLÓGICO
- Grupo Sanguíneo y Factor Rh
- La Hemostasia: Tiempo de Sangría y Coagulación
- velocidad de Eritrosedimentación Globular
- Fragilidad osmótica
CAPÍTULO III : FISIOLOGÍA DEL SISTEMA CARDIOVASCULAR
- Corazón in situ: Efecto de agentes físicos y químicos sobre la
fibra miocárdica
- Presión Arterial Indirecta en el hombre en reposo y en actividad
- Electrocardiograma en reposo y en actividad
- La ley de Starling
CAPÍTULO IV : FISIOLOGÍA DEL SISTEMA RESPIRATORIO
- Determinación del Gasto Metabólico a través de la producción de
CO2 en reposo y en actividad
- Saturación de oxígeno
CAPÍTULO V : FISIOLOGÍA RENAL
- Concentración y Dilución Urinaria
- Determinantes de hidrogeniones urinarios
CAPÍTULO VI : FISIOLOGÍA DEL SISTEMA DIGESTIVO
- Determinación del pH salival e influencia de la dieta en su variación - Amilasa salival. Digestión de los carbohidratos: Almidón - Ptialina
- Motilidad Gástrointestinal
CAPÍTULO VII: FISIOLOGÍA DE LAS GLÁNDULAS ENDOCRINAS
- Diabetes Experimental
- Prueba de tolerancia a la glucosa
CAPÍTULO VIII: FISIOLOGÍA DEL SISTEMA REPRODUCTIVO
- Prueba del embarazo en placa
- Acción de la Hormona Gonadotròpica Coriònica (HGC)
Test de Galli Mainini
FISIOLOGÍA
DEL
SISTEMA NERVIOSO
EXCITABILIDAD INDEPENDIENTE DE NERVIO Y MÚSCULO
EXCITABILIDAD INDEPENDIENTE DE NERVIO Y MÚSCULO
Las células musculares como las neurona, pueden ser excitadas química, eléctrica y
mecánicamente, produciendo un potencial de acción que se transmite a lo largo de la
membrana celular. Ellas contienen proteínas contráctiles y, a diferencia de las
neuronas, las células musculares poseen un mecanismo contráctil que es activado por el
potencial de acción.
Las fibras del músculo esquelético están inervados por fibras nerviosas mielinizadas
grandes que se originan en las motoneuronas grandes de las astas anteriores de la
mèdula espinal. Cada terminación nerviosa forma una unión, denominada unión
neuromuscular, con la fibra muscular cerca de su punto medio.
En la terminación axónica hay muchas mitocondrias que proporcionan trifosfato de
adenosina (ATP), la fuente de energía que se utiliza para la síntesis del transmisor
excitador acetilcolina. La acetilcolina a sy vez, excita a la membrana de la fibra
muscular. La acetilcolina se sintetiza en el citoplasma de la terminación, pero se
absorbe rápidamente hacia el interior de muchas pequeñas vesículas sinápticas.
En el espacio sináptico hay grandes cantidades de la enzima acetilcolinesterasa, que
destruye la acetilcolina algunos milisegundos después de la hayan liberado las vesículas
sinápticas.
Secuencia de eventos en la contracción y relajación del músculo esquelético:
Etapas de la contracción:
1. Aumento de la actividad de la neurona motora.
2. Liberación del transmisor (acetilcolina) a la placa neuromuscular.
3. Unión de la acetilcolina a los receptores específicos.
4. Aumento en la permeabilidad de la membrana de la placa Terminal para Na y K.
5. Generación del potencial de la placa Terminal.
6. Generación del potencial de acción en las fibras musculares.
7. Diseminación interna de la despolarización a través de los túmulos T.
8. Liberación del Ca+2 de los sacos laterales del retículo sarcoplasmático y
difusión a filamentos delgados y gruesos.
9. Unión del Ca+2 a la troponina C, en sitios descubiertos de unión de Miosina.
10. Formación de enlaces cruzados entre la actino y la miosina y
deslizamiento de los filamentos delgados y gruesos, produciendo
acortamiento.
Etapas en la relajación:
1. Bombeo de Ca+2 de regreso al retículo sarcoplasmático.
2. Liberación del Ca+2 proveniente de troponina.
3. Suspensión de la interacción entre a<tina y miosina.
MATERIALES
- Equipo de disección con estilete punta cortante
- Tablero de 30x30 cm. y chinches
- Campos descartables
- Estimulador eléctrico
- Guantes descartables
PROCEDIMIENTO:
1. Con un estilete destruya la porción encefálica dejando intacta sólo la
médula, a esto se le llama preparación espinal o sapo espinal ya que la
única parte funcional del sistema nervioso central del sapo es la médula
espinal.
2. Disecar y exponer el nervio ciático en la cara posterior de ambos muslos
teniendo cuidado de no lesionar la pequeña arteria que acompaña al
nervio.
3. En una de las patas separe el nervio de la arteria y haga una vigorosa
ligadura doble alrededor del músculo y la arteria dejando libre al nervio.
4. Con el carrete de estimulación aplique estímulos de poca intensidad a los
nervios ciáticos por separado incrementando su amplitud.
progresivamente hasta obtener la contracción muscular
5. Luego se estimula directamente al músculo gastronemio a través de una
incisión que debe practicar en la piel. Observe que en ambos casos se
observa contracción muscular.
RESULTADO
Efecto observado
Músculo
estimulado
Nervio estimulado
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. ¿Qué es la Miastenia grave?
2. Tipos de receptores de acetilcolina. Desarrolle
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
BLOQUEO DE LA PLACA MIONEURAL
INHIBICIÓN DE LA VÍA INHIBITORIA RECURRENTE
A. BLOQUEO DE LA PLACA MIONEURAL
El Distensil (Succinilcolina) es un agente despolarizante, su acción inicial es
despolarizar la membrana abriendo canales del mismo modo que la Acetilcolina. pero
como persiste en la unión neuro muscular, la despolarización dura más. Esto produce un
breve período de excitación que puede manifestarse por fasciculación muscular
transitoria. Esta fase es seguida del bloqueo de la transmisión neuromuscular y
parálisis flácida. En el hombre se observa la secuencia de excitación repetida
(fasciculaciones) seguida de bloqueo de la transmisión y parálisis neuromuscular.
MATERIALES
- Un sapo
- Un carrete de estimulación.
- Jeringas descartables
- Pinzas y tijera de disección (Un estilete unta cortante) e hilo
- Distensil (Succinilcolina) 01 fco.
PROCEDIMIENTO
1. Con un estilete destruya la porción encefálica dejando intacta sólo la medula, a
esto se le llama preparación espinal o sapo espinal ya que la única parte
funcional del sistema nervioso central del sapo es la médula espinal.
2. Disecar y exponer el nervio ciático en la cara posterior de ambos muslos
teniendo cuidado de no lesionar la pequeña arteria que acompaña al nervio.
3. En una de las patas separe el nervio de la arteria y haga una vigorosa ligadura
doble alrededor del músculo y la arteria dejando libre al nervio.
4. Con el carrete de estimulación aplique estímulos de poca intensidad a los nervios
ciáticos por separado incrementando su amplitud progresivamente hasta
obtener la contracción muscular
5. Luego se estimula directamente al músculo gastronemio a través de una incisión
que debe practicar en la piel. Observe que en ambos casos se observa
contracción muscular.
6. Inyecte Distensil 1cm3 en el saco dorsal linfático del sapo.
7. Luego de unos minutos estimule ambos nervios ciáticos con el carrete de
estimulación. Observé la respuesta.
RESULTADO
Miembro inferior Respuesta a la succinilcolina
Arteria ligada
Arteria no ligada
CONCLUSIONES
ESQUEMA
B. INHIBICIÓN DE LA VÍA INHIBITORIA RECURRENTE
La Vía inhibitoria recurrente es un mecanismo de feedback negativo que mejora la
resolución espacial de la acción neuronal. Esta vía provee un mecanismo que asegura que
el músculo no se contraiga por mucho tiempo.
La motoneurona A tiene su axón que esta saliendo de la sustancia gris a nivel de la
médula espinal, pero antes de que salga, una rama se desprende de un lado. Esta rama
se desprende a partir del primer nódulo de Ranvier, permanece dentro de la materia
gris ventral, y pasa medialmente y dorsalmente. Es llamada la rama “recurrente”
porque regresa en la materia gris. Esta colateral recurrente forma sinapsis con
interneuronas que se encuentran en la región ventromedial del hasta anterior. Estas
interneuronas son conocidas como las células de RENSHAW. Sus axones se proyectan
hacia las motoneuronas (Tanto a aquella donde se dio la primera sinapsis desde él
hasta dorsal, representada como la motoneurona A, y a sus vecinas, representadas por
la motoneurona B) y terminan en sinapsis inhibitorias. Esta vía media entonces una
inhibición de feedback. El neurotransmisor involucrado en esta sinapsis inhibitoria es la
Glicina.
La Estricnina bloquea la sinapsis inhibitoria de las células de RENSHAW sobre las
motoneuronas actuando como antagonista competitivo selectivo que bloquea los
efectos inhibitorios de la glicina en todos los receptores de ésta.
La Estricnina sustancia Neuroestimuladora, Neuroexitador trae como consecuencia
el aumento de los impulsos nerviosos sucesivos. Estas contracciones se asemejan a las
contracciones del tétanos, epilepsia o eclampsia severa. Hay una contracción sostenida
entre los músculos extensores y flexores, se origina espasmo muscular y puede causar
la muerte por el ahogo inducido por espasmo faríngeo.
MATERIALES
- Un sapo
- Sulfato de estricnina 1/1000 y jeringa descartable.
- Un estilete
PROCEDIMIENTO
1. Inyecte en el saco linfático dorsal de un sapo sin descerebrar 1 ml sulfato de
Estricnina al 1/1000 con una jeringa descartable (encima de articulación).
2. Observe las reacciones que experimenta el animal.
RESULTADO
Reacciones a la administración de Sulfato de Estricnina
1.
2.
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Fármacos que potencian o bloquean la transmisión en la unión neuromuscular
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
LOS FENÓMENOS REFLEJOS:
SUMACIÓN ESPACIAL Y SUMACIÓN TEMPORAL
LOS FENÓMENOS REFLEJOS
Las acciones reflejas son respuestas adaptativas mediadas por el sistema nervioso,
cuya finalidad básica es salvaguardar la integridad del individuo y preservar la especie,
teniendo como base estructural el arco reflejo. Los movimientos reflejos se realizan
de modo involuntario, como resultado de un estímulo específico y su respuesta es
estereotipada, cada especie posee un patrimonio reflejo.
A. SUMACIÓN ESPACIAL Y SUMACIÓN TEMPORAL
Se denomina sumación espacial al fenómeno por el cual se produce una sumación
simultánea de los potenciales postsinápticos mediante la activación o descarga de
muchas terminales situadas en áreas muy separadas de la membrana. Cuando el
potencial de acción postsináptico excitador sea lo bastante grande, se alcanzará el
umbral de descarga (o activación) y aparecerá espontáneamente un potencial de acción
en el segmento inicial del axón.
Los potenciales postsinápticos sucesivos causados por descargas de una sola
terminal presináptica, si se producen con la rapidez suficiente, pueden sumarse de la
misma manera que pueden sumarse los potenciales postsinápticos procedentes de
terminales muy esparcidas por la superficie de la neurona. Este fenómeno de sumación
se conoce como sumación temporal.
MATERIALES
- Una preparación espinal del sapo.
- H2S04 a concentración de 0.1, 0.3, 0.5 y 1 %
- Un carrete de estimulación ( Carrete de RUNCKFORF).
- Un frasco con suero.
PROCEDIMIENTO
A.1. SUMACIÓN TEMPORAL
1. Coloque al animal espinal en un soporte.
2. Introduzca la punta del dedo largo de una pata en las soluciones de concentración
creciente de ácido sulfúrico; 0.1, 0.3, 0.5 y 1 %, lavándola con suero fisiológico la
superficie de contacto entre cada una de ellas.
3. Observe la respuesta refleja con cada una de las concentraciones.
4. Debe tomarse la precaución de que el área de piel que se sumerge en las diferentes
concentraciones sea siempre la misma.
RESULTADO
Intensidad reacción H2SO4 0.1% H2SO4 0.3% H2SO4 0.5% H2SO4 1%
+
++
+++
+
CONCLUSIONES
ESQUEMA
A.2. SUMACIÓN ESPACIAL
1. Introduzca la punta del dedo de la otra pata en las soluciones de ácido.
2. Introduzca sucesivamente la pata varias veces, poniendo en contacto con el ácido
mayor área de piel cada vez, lavando siempre con suero fisiológico después de cada
intento.
3. Observe la respuesta.
RESULTADO
Intensidad de la Reacción Contacto
con
Un dedo
Contacto
con
Un pie
Contacto
con
Mitad
pierna
Contacto
con
Toda
pierna
+
++
+++
CONCLUSIONES
ESQUEMA.
PROTOCOLO
1. Defina Sinapsis. Tipos de sinapsis
2. Explique neurotransmisores y neuromoduladores en el Sistema Nervioso.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
REFLEJO MIOTÀTICO O DE ESTIRAMIENTO, REFLEJOS PUPILARES: A
LA LUZ (FOTOMOTOR Y CONSENSUAL), Y DE ACOMODACIÓN O DE
CONVERGENCIA.
LOS FENÓMENOS REFLEJOS
El estudio de los reflejos resulta interesante en razón de exteriorizar, en
algunas instancias la primera manifestación de una lesión a nivel del sistema
nervioso.
Se trata de una acción involuntaria originada por estimulo mecánico sobre
un estímulo de recepción, que vehiculiza el estimulo hacia un centro y luego, por
otras vías, transmite la respuesta a grupos celulares, músculos, órganos, etc.
A. REFLEJO MIOTÀTICO O DE ESTIRAMIENTO
Siempre que un músculo se estira, la excitación de los husos musculares
produce una contracción refleja de las grandes fibras musculares esqueléticas
que los rodean.
Clínicamente, uno de los métodos utilizados para determinar la sensibilidad
de los reflejos de estiramiento es provocar el reflejo rotuliano. Se puede
obtener reflejos semejantes de casi cualquier músculo del cuerpo pèrcutiendo
el tendón correspondiente.
MATERIALES
- 1 Martillo de reflejos y 1 camilla
PROCEDIMENTO
A.1 REFLEJO ROTULIANO
1. La persona a explorar debe estar relajada sentada sobre el borde del banco
cómodamente con las piernas cruzadas.
3. Por palpación, localizar el tendón rotuliano y percutirlo (golpe con el martillo
de reflejos).
4. Observar cual es la respuesta.
A.2 REFLEJO AQUILIANO
1. La persona a explorar debe estar relajada sobre la camilla en posición de
Cùbito Ventral.
1. Levantar con la mano no diestra la pierna en el tercio medio.
2. Percutir con el martillo de reflejos sobre el tendón de Aquiles.
3. Observar cual es la respuesta.
RESULTADOS/CONCLUSIONES
ESQUEMA
B. REFLEJOS PUPILARES
El estudio de los reflejos pupilares, constituye uno de los pilares del
examen neurológico. En forma rutinaria se estudiarán los siguientes reflejos: A
la luz (fotomotor y consensual) y de acomodación o de convergencia.
MATERIALES
- 1 linterna y 1 camilla
PROCEDIMIENTO
B.1 REFLEJO FOTOMOTOR
1. Emplear una linterna. La persona a explorar debe estar con los ojos
Abiertos.
2. El explorador debe colocarse frente a él. Debe estar algo lateralizado
Con la luz de la linterna al frente del mismo.
3. Indicar a la persona que mire a lo lejos, tapando con las manos ambos
ojos, y retirando luego de un instante, una mano descubriendo un ojo.
Luego, tapando Nuevamente éste, retirar la otra mano, dejando al
Descubierto el otro ojo.
4. Cada vez que se retira la mano, se observa si la pupila se contrae o no. Es
necesario buscar la reacción a la luz en cada ojo y con un ojo libre y el
otro cubierto. B.2 REFLEJO CONSENSUAL
1. Colocar una mano en la línea media de la cara del sujeto a explorar. Apoyar el
borde cubital de la misma sobre la frente y la nariz del sujeto a explorar,
impidiendo de ésta manera que al iluminar la pupila de un lado, la luz llegue al
ojo opuesto.
2. Iluminar bruscamente el ojo con una linterna, observar la respuesta del otro.
B.3 REFLEJO DE ACOMODACIÒN
1. Invitar al sujeto a dirigir su mirada a un punto lejano y luego a un punto cercano
situado a 10 cm. de distancia del ojo.
2. Observar lo que ocurre con los globos oculares y las pupilas.
RESULTADOS/CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Reflejos posturales y locomotores. Desarrolle
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
DE LA
SANGRE
Y DEL
SISTEMA INMUNOLÓGICO
GRUPO SANGUÍNEO: SISTEMA ABO Y SISTEMA RH
GRUPO SANGUÍNEO
En la membrana celular de los hematíes se encuentra una gran cantidad de
antígenos cuyos tipos están genéticamente determinados en todos los individuos.
Siendo los más importantes el sistema ABO y el sistema Rh.
Las reacciones de incompatibilidad se producen cuando por alguna razón se
transfunde a una persona sangre de un grupo sanguíneo no compatible, estas
comprenden una serie de reacciones que puede llegar en su grado más severo a la
muerte del paciente. Como sucede por lo general cuando el grupo incompatible es del
sistema ABO, esta reacción es iniciada por la unión Antígeno –Anticuerpo.
La determinación del grupo sanguíneo del receptor y del donante, de modo que se
correspondan, es lo que se conoce como tipificación de la sangre. Si ante la mezcla de
los eritrocitos con un determinado tipo de anticuerpo estos se aglomeran o “aglutinan”
se concluye que se ha producido una reacción Antìgeno-Anticuerpo.
El Sistema ABO se basa en 2 Antígenos (A y B) que contiene la membrana de los
hematíes, los cuales permiten clasificar a los individuos en grupos sanguíneos (A, B, AB
y O). En el plasma encontramos Anticuerpos (Aglutininas): Anti A y Anti B, que no
reaccionan con el tipo de Antígeno que posee el hematíe del propio individuo. Todas las
personas heredan 2 genes, una de cada padre.
Segùn el Sistema Rh existe en los eritrocitos, un antígeno potente: Antígeno D o
factor Rh. Cuando está presente éste factor el sujeto es Rh+, y si está ausente es Rh-.
No existen Anticuerpos Anti Rh naturales, todos son adquiridos mediante
transfusiones, embarazos (mecanismos de sensibilización al factor Rh).
MATERIALES
- Alcohol y algodòn
- Lancetas de punción descartable
- Set de grupo Sanguíneo
- Láminas portaobjetos
PROCEDIMIENTO:
5. Colocar en una lámina portaobjetos tres gotas de sangre capilar (obtenida por
punción de la yema del dedo) a un cm. de distancia entre ellas y agregue una gota de
anticuerpo (aglutinina) Anti-A a la primera gota de sangre; Anti-B a la segunda gota
y Anti-D a la tercera gota, luego mézclelos con un mondadientes observe si hay
aglutinación (Reacción antígeno - anticuerpo), su presencia nos indicará la
presencia del antígeno y por lo tanto el grupo y Rh del paciente.
RESULTADO
Sistema ABO Sistema Rh
Muestra 1
Muestra 2
Muestra 3
Muestra 4
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. ¿Què es la enfermedad hemolítica del recién nacido?
2. Reacciones de transfusión sanguínea. Desarrolle.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
LA HEMOSTASIA: TIEMPO DE SANGRÍA Y COAGULACIÓN
VELOCIDAD DE SEDIMENTACION GLOBULAR
LA HEMOSTASIA:
En la hemostasia participan vasos sanguíneos, células sanguíneas y proteínas
plasmáticas.
Se han dividido para su mejor estudio en 4 etapas.
1. Fase Vascular: vasoconstricción.
2. Fase Plaquetaria: formación del trombo blanco.
3. Fase de la coagulación: Formación de un coagulo de fibrina y plaquetas
4. fase de fibrinolisis.
A. TIEMPO DE SANGRÍA (MÉTODO DE DUKE):
El estudio del tiempo de sangría mide la duración de la hemorragia después de la
hemorragia causada por la lesión vascular Standard en la piel. La detención del
sangrado depende de la contractibilidad de la pared de los vasos sanguíneos y del
número y capacidad funcional de las plaquetas. La práctica de la prueba no se
recomienda si se sabe que un paciente tiene recuentos plaquetarios menor de 7500
células/mm3.
Un tiempo de sangrado normal indica una retracción normal de los capilares (1ra
fase de la hemostasia) y la existencia de un número suficiente de plaquetas con
actividad normal (2da fase de la hemostasia)
MATERIALES
- Lancetas de punciòn
- Alcohol y algodón
- Papel de filtro
PROCEDIMIENTO:
1. Frote enérgicamente el lóbulo de la oreja con una torunda de algodón.
2. Realice con una lanceta descartable estéril una punción de 3mm de profundidad en
el borde inferior del lóbulo de la oreja. Se pone en marcha el cronómetro. El corte
debe ser bastante profundo, y no debe abarcar venas visibles, ni lesiones cutáneas.
3. Cada 30” se seca cuidadosamente la sangre que mana de la herida con un trozo de
papel de filtro, cuidando de no tocar la herida.
4. Anotar el tiempo en que se detiene el sangrado.
Valores Normales : 1 – 5 minutos.
RESULTADO
Tiempo de sangría : .......... min.
CONCLUSIONES
ESQUEMA
B. TIEMPO DE COAGULACIÓN (MÉTODO DE LEE Y WHITE):
Consiste en medir el tiempo que tarda la sangre en coagularse “in Vitro”. Nos da un
indicio aproximado de la eficacia global del mecanismo intrínseco de la coagulación. Es
una prueba poco sensible, ya que ligeras deficiencias de ciertos factores no son
detectados por esta prueba. Se encuentra muy alargado en la hemofilia clásica y en la
deficiencia del factor IX.
MATERIALES
- Jeringa descartable
- 4 tubos de ensayo de 10 x 1 cm.
- Gradilla
- Incubadora
PROCEDIMIENTO:
1. Extraiga 5 cc de sangre venosa con una jeringa descartable (sin anticoagulante)
utilizando una aguja gruesa (número 18). La punción venosa debe ser perfecta, pues
la contaminación con linfa y la lesión de los tejidos que libera el Factor tisular
altera los resultados.
2. En cuanto la sangre ingresa en la jeringa ponga en marcha él cronometro, pues en
este momento se inicia la coagulación sanguínea.
3. Coloque 1ml de sangre en cada uno de los cuatro tubos de ensayo
4. Coloque los tubos en un baño María de 37ºC.
5. Después tres minutos inclínelos con cuidado uno por uno para observar el cambio de
estado físico: de líquido a sólido.
6. Repita el paso anterior cada 30” y anote el tiempo transcurrido para que el cambio
se produzca.
7. Calcule el tiempo promedio de los cuatro tubos.
Valores Normales: 4 - 10 minutos.
RESULTADO
Tiempo de Coagulación (En tubo):
Tubo Nº1: .............. Tubo Nº2: ............
Tubo Nº3: .............. Tubo Nº4: ............
Tiempo Promedio: ..............
CONCUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO 1. ¿Qué es la Enfermedad de Von Willebrand y cuál es el factor de la coagulación que se encuentra alterado?
2. ¿Qué es la Hemofilia, cuáles son los tipos de Hemofilia y qué factores de la coagulación que se encuentran alterados en cada tipo?
3. ¿Cuáles son las manifestaciones clínicas (signos y síntomas) frecuentes en la Hemofilia?
4. Cuando está aumentado el tiempo de sangría y de coagulación.
- Tiempo de sangría:
- Tiempo de coagulación:
5. ¿En qué enfermedades o circunstancias el Tiempo de Coagulación se encuentra por
encima del valor normal?
C. VELOCIDAD DE SEDIMENTACION GLOBULAR (VSG) La velocidad con la que sedimentan los elementos formes de la sangre, en una
muestra anticoagulada, depende de la tendencia que tienen los eritrocitos para
aglutinarse y formar grumos o “rouleaux” y esta depende del equilibrio entre las dos
fuerzas opuestas: las fuerzas de atracción (fuerza de Van der Waals) y las fuerzas de
repulsión (Potencial Z).
Hay una serie de factores que pueden modificar el valor de estas fuerzas, siendo el
más importante el fibrinógeno (proteína de fase aguda) que tiene la propiedad de
disminuir el potencial Z; las globulinas, cuando están aumentadas también disminuyen el
potencial Z, pero las albúminas no lo alteran.
MATERIALES
- Una jeringa descartable
- Un tubo de Wintrobe
- Citrato
- Pipeta Pasteur.
- Gradilla
- Cinta adhesiva
PROCEDIMIENTO:
1. Obtener 5ml de sangre venosa con una jeringa y colóquela en un frasco con oxalato
agitándolo.
2. Llene un tubo de Wintrobe hasta la marca de 100 con una pipeta Pasteur.
3. Mantener el tubo en posición perfectamente vertical fijándolo con cinta adhesiva a
una gradilla durante una hora a temperatura ambiente.
4. Después de transcurrida, leer la distancia a la cual han sedimentado los elementos
formes.
Valores Normales (Método Wintrobe):
Para las mujeres : 0 - 15 mm/h
Para los hombres : 0 - 5 mm/h
RESULTADO
Velocidad de sedimentación Globular : ..............mm/hr
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Cuando está aumentado el tiempo de sedimentación globular (VSG).
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
DEL
SISTEMA CARDIOVASCULAR
CORAZÓN IN SITU: EFECTO DE AGENTES FÍSICOS Y QUÍMICOS
SOBRE LA FIBRA MIOCÁRDICA
CORAZÓN IN SITU: EFECTO DE AGENTES FÍSICOS Y QUÍMICOS SOBRE LA
FIBRA MIOCÁRDICA
El músculo cardiaco es semejante al músculo esquelético en que la energía mecánica
libera en el pasaje del estado de reposo al estado contráctil depende de la longitud de
la fibra muscular. Con el incremento de la longitud de la fibra, esta energía de
contracción aumenta hasta una cierta longitud de fibra, pero con un mayor
alargamiento de energía de la contracción disminuye de modo que no se podría
satisfacer las necesidades nutricionales de los tejidos lo que se conoce como
insuficiencia cardiaca en la que hay marcada dilatación del corazón.
- La tensión pasiva en el músculo previa a su contracción se denomina precarga y en el
corazón, es el volumen diastólico final y esta determinado por el retorno venoso.
- La poscarga es la presión aòrtica para el ventrículo izquierdo y determina la
presión total desarrollada durante la sístole.
El músculo cardiaco puede ser estimulado químicamente, eléctricamente,
mecánicamente. Funcionalmente es sincitial y puede contraerse rítmicamente en
ausencia de inervaciòn, debido a células marcapaso que descargan espontáneamente.
Funcionalmente, el corazón puede concebirse como dos bombas. El lado derecho
bombea sangre a los pulmones, para tomar oxigeno, y el lado izquierdo bombea la
sangre oxigenada a los vasos sanguíneos que la llevan al resto del cuerpo.
La elevación de la temperatura, hace que aumente mucho la frecuencia cardiaca, a
veces el doble de lo normal. Su descenso produce una reducción de esta frecuencia,
que llega a caer a valores de unos pocos latidos por minuto.
La efectìsima bomba del corazón está estrictamente controlada por el
simpático y parasimpático (nervios vagos), que inervan abundantemente al corazón. La
cantidad de sangre bombeada por el corazón en cada minuto, el gasto cardiaco, puede
incrementarse más del 100% por estimulación simpática. Por el contrario, también
puede descender casi hasta 0 o próximo a 0 por estimulación del vago (estimulación
parasimpático)
MATERIALES
- Un Sapo.
- Equipo de disección con lanceta punta cortante.
- Tabla de operación y chinches
- Preparación de Ringer: En un litro de agua destilada agregar 6.5 grs. cloruro de
sodio, 0.1 grs. cloruro de potasio, 0.2 grs. cloruro de calcio y 0.5 grs. bicarbonato
de sodio. Se debe guardar en refrigeración.
- Tubos de prueba, agua helada y agua caliente.
- Adrenalina y Acetilcolina.
- Jeringa de 3 cc. y guantes descartables.
PROCEDIMIENTO
1. Se utiliza el corazón de un sapo espinal (el SNC es destruido con un estilete).
2. Fije al animal en decúbito dorsal sobre la tabla de operación.
3. Haga una incisión longitudinal de la piel en la línea media desde la parte alta del
abdomen hasta un 1 cm. de la arcada de la mandíbula y otra incisión transversal de
la altura de los miembros anteriores.
4. Rechace los colgajos y seccione longitudinalmente al esternón. Para abordar con
facilidad el corazón extirpe los trozos de la pared torácica y los músculos
esternotiroideos. El corazón aparece recubierto por el pericardio. Incídalo.
5. Reconozca los distintos compartimentos y vasos aferentes o eferentes del corazón
tanto por la cara dorsal (colocar verticalmente la tablilla estando la cabeza del
sapo hacia abajo), como por la cara ventral.
6. Mantenga el corazón húmedo dejando caer gotas de solución Ringer.
7. Anotar la frecuencia basal en un minuto.
8. Tocar el seno venoso con un tubo de ensayo conteniendo agua helada.
9. Anotar la nueva frecuencia cardiaca.
10. Hidratar el corazón con solución Ringer.
11. Repetir la experiencia con un tubo conteniendo agua caliente.
12. Anotar la frecuencia cardiaca y volver a hidratar el corazón.
13. Instilar sobre el corazón del sapo, en forma sucesiva, unas gotas de adrenalina y
luego acetilcolina.
14. En cada caso anterior anotar la frecuencia cardiaca pre y post administración de
los fármacos.
15. Extraer el corazón del sapo y observar su automatismo cardiaco.
RESULTADOS
Basal Agua
helada
Agua
caliente
Adrenalina Acetilcolina
Frecuencia
cardiaca/min.
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. ¿Qué son los ruidos anormales o soplos? Desarrolle.
2. Factores que afectan la frecuencia cardiaca:
- La FC se incrementa por:
- La FC se enlentece debido a:
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
PRESIÓN ARTERIAL INDIRECTA EN EL HOMBRE
PRESIÓN ARTERIAL INDIRECTA EN EL HOMBRE
La presión arterial que constituye uno de los llamados signos vitales, es un
indicador importante del estado de salud de una persona, motivo por el cual su
correcta medición es parte de todo examen físico completo. Se pude definir a la
presión arterial como la fuerza que ejerce la sangre sobre una unidad de área de la
pared vascular, esta presión generalmente se expresa en milímetros de mercurio
(mmHg).
El valor máximo de la onda de presión con que viaja la sangre se denomina presión
arterial sistólica y el valor mínimo de esta onda es la presión arterial diastólica; a la
diferencia entre ambas se le conoce como la presión del pulso. Existen diversos
factores que afectan los valores de la presión arterial, la presión sistólica es afectada
principalmente por el volumen de eyección y la velocidad de eyección; mientras que la
presión diastólica se ve afectada básicamente por la resistencia vascular sistémica y la
duración de la diástole.
Desde un punto de vista hemodinámico, podemos expresar la presión arterial con la
siguiente fórmula:
PA = GC x RVS GC: Gasto Cardiaco
RVS: Resistencia Vascular Sistémica
Donde el GC es directamente proporcional al volumen de eyección (VE) y a la
frecuencia cardiaca (FC):
GC = VE x FC
La medición de la presión arterial se realiza, entre otras razones para los estudios
poblacionales de hipertensión, teniendo implicaciones actualmente en la evaluación del
riesgo cardiovascular a largo plazo. Una presión arterial muy baja, o shock clínico, es
una emergencia médica y la presión arterial elevada, es decir hipertensión arterial es
un factor de riesgo principal para las enfermedades cardiovasculares,
cerebrovasculares, renovasculares y otras enfermedades vasculares prematuras. Por lo
tanto, es imperativo que el diagnóstico de la hipertensión se base en mediciones
exactas, representativas y reproducibles
El standard para la medición de la presión arterial es la medición intraarterial
directa con un catéter, pero en la práctica médica, comúnmente se emplea el método
indirecto. Con esta técnica se determina la presión requerida para colapsar la arteria
en el brazo o pierna mediante el uso de un esfingomanómetro (con un manguito para
hacer presión, un estetoscopio y un manómetro). El manguito se infla hasta un nivel
mayor que la presión arterial (indicado por la obliteración del pulso). A medida que el
manguito se desinfla gradualmente, se señala la presión donde aparecen los sonidos
producidos por las ondas de pulso arterial (sonidos de Korotkoff) y la presión en donde
desaparecen nuevamente con la normalización del flujo a través de la arteria. La
PRESION SISTOLICA es la indicada por la aparición del primer sonido de Korotkoff
(FASE I), mientras que la PRESION DIASTOLICA es la indicada por el quinto sonido
(FASE V), correspondiente a la desaparición de los sonidos de Korotkoff,
respectivamente.
A medida que se reduce la presión durante la deflación del manguito de oclusión,
los sonidos de Korotkoff cambian en calidad e intensidad las cinco fases de este
cambio se caracterizan como sigue:
FASE I : Primera aparición de los sonidos claros, repetitivos en golpes. Esto
coincide aproximadamente con la reaparición de un pulso palpable
FASE II: Los sonidos son más tenues y prolongados.
FASE III: Los sonidos nuevamente se hacen más fuertes.
FASE IV: Los sonidos se atenúan, están menos diferenciados y son más suaves.
FASE V : Los sonidos desaparecen completamente.
CLASIFICACION DE LA PRESION ARTERIAL
PARA >DE 18 AÑOS DE EDAD
CATEGORIA SISTOLICA DIASTOLICA
OPTIMA < 120 < 80
NORMAL < 130 < 85
NORMAL ALTA 130 – 139 85 - 89
HIPERTENSION
ESTADIO 1 140 – 159 90 - 99
ESTADIO 2 160 – 179 100 - 109
ESTADIO 3 180 N 110
*en mmHg
MATERIALES
- Esfingomanòmetro
- Estetoscopio
- Cronómetro
PROCEDIMIENTO:
1. Determinación de la presión arterial.
- Sentar al sujeto en un ambiente quieto, calmado con su brazo desnudo,
descansando sobre una mesa de modo que el punto medio del brazo esté a nivel del
corazón.
- Este sujeto no debe haber fumado o tamado café en la media hora previa. Se lo
deja en reposo por 5 min.
- Escoger el tamaño adecuado del manguito para el tamaño del brazo (el manguito
debe cubrir al menos el 80% de la circunferencia del brazo).
- Colocar el manguito a 3 cm. por encima de la flexura del codo, ni muy suelto ni muy
apretado.
- Registra la presión arterial sistólica en el primer ruido de Korotkoff y presión
arterial diastòlica en el quinto ruido de Korotkoff.
2. Influencia de la posición
- Determinar la presión arterial con el brazo levantado verticalmente y con el brazo
relajado libremente.
- Determinar la presión arterial con el sujeto en decúbito dorsal y en la posición de
pie.
3. Influencia de la hipotermia
- Determinar la presión arterial en el sujeto que està en reposo y con la mano
opuesta sumergida en agua helada hasta la muñeca por unos 30 a 60 seg.
.
4. Influencia del ejercicio físico
- Determinar la presión arterial del sujeto inmediatamente después de haber corrido
unos 5 min. o 30 flexiones en 1 min.
- Compare con la de reposo.
- Determinar la presión arterial en un sujeto que haya hiperventilado por algunos min.
RESULTADOS
Reposo Brazo
levantado
Brazo
relajado
Decúbito
dorsal
De pie Hipotermia
Ejercicio
físico
Presión
arterial
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO 1. ¿Qué es la hipotensión ortostática o postural y cuál es la variación de presión arterial que define a la misma?
2. Señale cuáles son las manifestaciones clínicas (signos y síntomas) de la hipotensión arterial. 3.- ¿Cómo se define a la hipertensión arterial (HTA) y a partir de qué valores se considera hipertensión arterial? 4.- ¿Qué es la crisis hipertensiva? 5.- Explique la diferencia entre urgencia y emergencia hipertensiva.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
DEL
SISTEMA RESPIRATORIO
DETERMINACIÓN DEL GASTO METABÓLICO A TRAVÉS DE LA
PRODUCCIÓN DE CO2 EN REPOSO Y EN ACTIVIDAD
DETERMINACION DEL GASTO METABÒLICO A TRAVÈS DE LA
PRODUCCIÒN DE CO2 EN REPOSO Y EN ACTIVIDAD.
La función principal del aparato respiratorio es proporcionar oxigeno a la sangre
arterial y eliminar anhídrido carbónico de la sangre venosa mixta contenida en la
arteria pulmonar (intercambio gaseoso). El objetivo final de la respiración es
conservar, las concentraciones adecuadas de O2, CO2 e H en los líquidos del
organismo.
La actividad metabólica del organismo, es decir, el consumo de O2 cambia
constantemente y en ciertas circunstancias de forma externa. Durante el esfuerzo
físico el consumo de O2 y la producción de CO2 pueden llegar hacer 10 veces a sus
valores basales.
En el ser humano, es necesario que exista un sistema de transporte de O2 que
permita el aporte continuo de energía (O2) necesaria para perpetuar la actividad
metabólica. La actividad metabólica celular se puede medir por métodos indirectos a
través del consumo de 02 o de la producción de CO2, que proporcionan datos
confiables sobre la tasa metabólica en reposo y en actividad.
MATERIALES
- Agua destilada y Erlenmeyer
- Fenoltaleìna y NaOH 0.4%
- Sorbetes y goteros
- Gradillas y tubos de prueba
PROCEDIMIENTO 1:
1. Colocar 100 ml. de agua destilada en un Erlenmeyer y agregar 6 gotas de
Fenoltaleìna.
2. Añadir con un gotero NaOH al 0.4% gota a gota hasta que la solución obtenga un
color rosa permanente. Colocar un sorbete en la solución.
3. Un alumno debe inspirar por la nariz y expirar por la boca, a través del sorbete
durante un minuto. Tener cuidado de no succionar la solución ya que el NaOH es
cáustico. Otro alumno debe tomar la frecuencia respiratoria.
4. Agregar con otro gotero el NaOH al 0.4 % gota a gota, realizando movimiento de
mezcla luego de cada gota, hasta que la solución permanezca rosada por un minuto.
Dicha coloración indica presencia de CO2, por lo tanto, más gotas de NaOH al 0.4%
indican mayor cantidad de C02.
PROCEDIMIENTO 2:
1. Lavar el frasco Erlenmeyer y preparar otras pruebas. Realizar la misma
preparación descrita en el paso 1 y 2 del procedimiento anterior.
2. El mismo alumno debe ahora trotar durante un minuto. Luego, realizar el
paso 3 del procedimiento anterior. Así mismo, otro alumno obtendrá la
nueva frecuencia respiratoria del alumno sometido a la prueba.
3. Agregar la soluciòn NaOH al 0.4% gota a gota realizando movimientos de
Mezcla luego de cada gota hasta que la soluciòn permanezca rosada por 1 min.
5. Comparar la tasa respiratoria en reposo y la respiración después del ejercicio.
RESULTADO
NaOH 0.4%
Control
Frecuencia
Respiratoria/min.
NaOH 0.4%
Post. espiración
En reposo
En actividad
Diferencia
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO 1.- Explique qué es una sustancia ácida, sustancia alcalina y sustancia buffer o tampón 2.- Señale cuál es el objetivo de la regulación de la respiración. 3.- Explique las funciones y la localización de los centros respiratorios: a. Área pneumotáxica: b. Área apneústica: c. Área de ritmicidad bulbar:
3.- Explique el control químico de la respiración. 4.- Explique el control nervioso de la respiración.
6. ¿Cómo se determinó la producción de CO2 en la práctica?
3. ¿Porqué cambió el color de la solución a medida que se exhala el aire espirado en la
solución con fenoltaleína?
7. ¿Qué es la fenoltaleína?
5. ¿Cuándo se repitió el experimento después del ejercicio físico, como fue la
producción del CO2?
6. ¿Cómo se explica este hecho?
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
RENAL
CONCENTRACIÓN Y DILUCIÓN URINARIA
En los mamíferos, el riñón es el órgano encargado de mantener la homeostasis
hídrica del organismo. Esta labor se realiza bajo el comando de la Neurohipófisis quien
envía un mensajero hormonal la HORMONA ANTIDIURETICA (HAD). De manera que
podemos hablar de un sistema HAD para la regulación hídrica. Dicho sistema es
activado bajo la influencia de dos estímulos fundamentales: el VOLUMEN y la
OSMOLARIDAD de los líquidos del medio interno. De ahí que la función renal tenga
que ser valorada estudiando los cambios de volumen y de la osmolaridad urinaria los
cuales se modificarán según la acción preponderante o combinada de los estímulos
mencionados.
En el ser humano normal, el estudio de la capacidad renal de emitir orina
concentrada o diluida tiene también la importancia implícita de permitir evaluar el
estado actual del sistema HAD. Por la misma razón en patología clínica ayuda a
investigar una posible ruptura del sistema que ocurre cuando hay alteración a nivel de
la Neurohipófisis y/o a nivel renal. De hecho la gran mayoría de enfermedades renales
comprometen tal función reguladora, que es una de las que primordialmente investiga el
clínico a la cabecera del enfermo.
MATERIALES
- Un litro y medio de agua mineral.
- Un frasco para la recolección de la diuresis.
- Una probeta graduada de 100 ml. de capacidad.
- Un densímetro urinario.
- 6 tubos de ensayo en una gradilla.
PROCEDIMIENTO
1. El sujeto de experimentación debe estar bajo restricción hídrica de 12hrs.
2. Recolectar la orina en un recipiente y determinar el volumen y densidad
3. Colocar 10 ml de orina en un tubo de ensayo para observar sus características,
desechar el excedente.
4. El sujeto de experimentación debe ingerir 20 cc / Kg de peso.
5. Luego de cada 20 minutos el sujeto de experimentación debe recolectar su orina
en un recipiente, medir su volumen y densidad y colocar 10 ml de control.
6. Debe observarse la apariencia y características de cada muestra recolectada.
RESULTADOS
Muestra de
orina
Características Volumen Densidad
(concentración)
Flujo urinario
ml/min.
Control
20 minutos
40 minutos
60 minutos
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Describa las características físicas (volumen, color, densidad, pH) y químicas (concentración de glucosa, úrea, creatinina, proteínas, etc.) de la orina. 2. Investigue sobre el análisis de la osmolaridad plasmática y urinaria. 3. Señale cuáles son las funciones de la Hormona Antidiurética (HAD). 4. Investigue como varía y cuál es la función que desempeña la Hormona Antidiurética (HAD) en los pacientes muy deshidratados y que características tiene la orina en estos pacientes (volumen, densidad, osmolaridad, etc.).
5. Investigue en que patologías o circunstancias el riñón pierde la capacidad de concentración y dilución urinaria.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
DEL
SISTEMA DIGESTIVO
DETERMINACIÓN DEL PH SALIVAL E INFLUENCIA DE LA DIETA EN
SU VARIACIÓN
DETERMINACIÓN DEL PH SALIVAL E INFLUENCIA DE LA DIETA EN SU
VARIACIÒN
La determinación del pH es uno de los procedimientos analistas más importantes y
más utilizados en las ciencias de la estructura y la actividad de las macromoléculas
biológicas y por tanto de la célula y de los organismos.
El principal mecanismo para la desmineralización de los tejidos duros de la cavidad
bucal, es la formación de ácidos por parte de los microorganismos a partir de
diferentes sustancias o alimentos de nuestra dieta. Esto se traduce en una caída del
pH en la superficie dentaria.
Es importante recordar que además de las sustancias ingeridas, también existen
factores individuales que afectan la variación del pH tales como. Cantidad y
composición de la placa dental, flujo salival, capacidad buffer y tiempo de eliminación
del alimento, entre otras. Aquellos productos que causan una caída del pH por debajo
del nivel crítico de 5.5 son acidògenos y potencialmente cariogènicos.
El método del potenciómetro para medir el pH nos va a permitir valorar el potencial
hasta en centésimas y que generalmente se realiza a través de un potenciómetro
digital.
El pH de algunos fluidos: - Saliva : 6.8 a 7.2 - Sangre. 7.35 a 7.45
MATERIALES
- Potenciômetro o pH-metro y Buffer 7.0
- Beacker 100 ml. Viales
- Guantes descartables
- Agua destilada.
- Leche y yogurt
- Jugo de naranja y de limón
- Gaseosa oscura y clara
PROCEDIMIENTO
- Calibrar el potenciómetro con un buffer 7.0
- Determinar el Ph de todas sustancias sugeridas, anotando los valores obtenidos
- Previa determinación del pH de cada sustancia se debe lavar el sensor de
electrodos del potenciómetro y luego secarlo con papel higiénico.
RESULTADOS
Agua
destilada
Saliva
fluida
Leche Jugo
naranja
Yogurt Gaseosa
oscura
Gaseosa
clara
Jugo
Limón
pH
CONCLUSIONES Y COMENTARIOS
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Comente sobre el control de la secreción salival
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
MOTILIDAD GASTROINTESTINAL
ASPECTOS TEÓRICOS
El tracto gastrointestinal tiene una ritmicidad espontánea en sus movimientos. Estos
movimientos, particularmente del estómago, sirven para contener y mezclar el alimento
mientras se produce parte de la digestión de los nutrientes. La función gástrica tiene
un control autonómico proveniente de la función vagal (parasimpática) acoplada a
estímulos hormonales y los reflejos provenientes de la función intrínseca
enterogástrica.
En líneas generales, la actividad parasimpática (colinérgica) estimula la actividad del
estómago incrementando su tono y ritmicidad, mientras que la actividad simpática
(adrenérgica) es inhibitoria y causa relajación.
Objetivo:
Demostrar la ritmicidad y control autonómico (simpática y parasimpática) de los
movimientos gástricos.
MATERIALES
-01 sapo espinal
-Equipo de disección
-Solución de Ringer a 30ºC
-Cánula de vidrio
-Azul de Metileno
-02 ligaduras
-01 jeringa de tuberculina
-01 aguja 27 x ½
-03 jeringas de 2 cc.
-Soporte
-Acetilcolina al 1%
-Cloruro de Adrenalina al 0.1%
-Sulfato de Atropina al 1%
PROCEDIMIENTO
1.- Practicar el procedimiento hasta obtener el sapo espinal
2.- Abrir la cavidad abdominal y observar las contracciones peristálticas espontáneas
a lo largo del tracto estomacal. De no existir, provocarlos con estímulos mecánicos.
3.- Aislar el estómago y extirparlo cortando por encima del cardias y por debajo del
píloro. Luego, vaciar el contenido del estómago y ligar por debajo del píloro.
4.- Inserte la cánula de vidrio a través del cardias y fíjelo mediante una ligadura.
5.- Cargue la jeringa de tuberculina con la solución de Ringer a 30ºC coloreada con
Azul de Metileno e inserte la aguja No. 27 x ½ angulada a 90º para luego inyectar el
preparado introduciendo la aguja entre la cánula de vidrio y la mucosa del cardias,
procurando que la solución coloreada se deposite en el estómago en cantidad suficiente
hasta alcanzar 2cm visibles en la cánula de vidrio.
6.- Fije el preparado en un soporte.
7.- Aplique unas 5 gotas aprox. de cada una de las sustancias sobre la pared del
estómago en el estricto orden que a continuación se detalla, observando los efectos
producidos, anotando los tiempos de aparición y graficando las alteraciones. Tener
cuidado que entre cada sustancia aplicada se debe de lavar la preparación con la
solución de Ringer a 30ºC antes de continuar con la siguiente sustancia.
a. Acetilcolina al 1%
Lavar
b. Cloruro de Adrenalina al 0.1%
Lavar
c. Acetilcolina al 1%
Lavar
d. Sulfato de Atropina al 1%
Lavar
e. Acetilcolina al 1%
Lavar
RESULTADOS
Acetilclina
al 1%
Cloruro de
adrenalina
al 0.1%
Acetilcolina
al 1%
Sulfato
de
atropina
al 1%
Acetilcolina
al 1%
CONCLUSIONES Y COMENTARIOS
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Comente sobre el peristaltismo
2. Comente sobre la regulación de la motilidad gástrica e intestinal
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
FISIOLOGÍA
DE LAS
GLÁNDULAS ENDOCRINAS
Y REPRODUCTOR
DIABETES EXPERIMENTAL
DIABETES EXPERIMENTAL Los estudios experimentales en animales han hecho la mayor contribución a la
compresión de la homeostasis de la glucosa y la génesis de la Diabetes Mellitus. Los
diversos modelos de diabetes experimental han permitido extraer valiosas lecciones, a
partir de la cual se ha dado soporte a varias hipótesis sobre la etiología y patogénesis
de la degeneración de las células beta o la liberación defectuosa de la insulina. Así
usando un modelo experimental apropiado podría ser posible probar y refinar estas
hipótesis, para finalmente guiar el camino a un mejor entendimiento clínico.
El Aloxano (2,4,5,6 Oxipirimidina). Es un agente químico cuya administración
produce necrosis selectiva de las células pancreáticas induciendo diabetes
experimental permanente. Desventaja: Produce además lesión hepática.
La Fluoridzina. Es un fármaco que disminuye el umbral renal de la glucosa, de esta
manera a una concentración de glucosa sanguínea normal se elimina glucosa por la orina.
La fluoridzina produce Diabetes Renal y por ende tiende a originar hiperplasia de las
células pancreáticas aunque este efecto no es muy constante. Con la fluoridzina, el
valor de la concentración de glucosa en sangre disminuirá, por la pérdida de glucosa vía
renal. En esta rata NO se presentan cuerpos ce tónicos.
MATERIALES
- 3 ratas de 200 a 300 g de peso
- Aloxano
- Fluoridzina
- Glucómetro
- Tiras reactivos para dosaje de glucosa y cuerpos ce tónicos.
- Lancetas
- Jaulas metabólicas
PREPARACION DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACION
1. Controlar el peso, glicemia y cuerpos cetónicos en estado basal.
2. Posterior al ayuno de 48 hrs. se realizan nuevamente estos controles.
3. Dos horas antes de la práctica se debe hidratar a los animales, vía oral con la
ayuda de una cánula .
4. La Rata A quedara como control y no se le administrara ningún medicamento.
5. A la Rata B se le administrará intraperitonealmente 48 horas antes de la práctica,
Aloxano en una concentración de 0.1g/ml y a una dosis de 200mg/Kg. de peso.
6. A la Rata C se le administrará intraperitonealmente 2 horas antes de la práctica,
Fluoridzina en una concentración de 0.1g/ml a una dosis de 100 mg/kg. de peso.
PROCEDIMIENTO
1. Colocar los animales en las jaulas metabólicas con los frascos para recolectar la
orina.
2. Observar las características físicas y comportamiento de los animales.
3. Determinar en los tres animales la glucosa en sangre. La muestra se obtiene por
medio de un corte en la cola tratando de exprimir hacia abajo y recolectar una gota
de sangre haciendo caer esta directamente sobre la cinta Haemo-Glucotest,
esperar por un minuto, limpiar y dar lectura a la cinta comparándola con el tubo y
luego hacer la lectura con el glucómetro.
4. Recolectar por separado las muestras de orina de las jaulas metabólicas para el
dosaje de glucosa. Introducir en cada frasco una glucocinta de aproximadamente
5cm empaparla y transcurrido 1 minuto proceder a la lectura.
5. Determinación de cuerpos cetónicos, sumergir la cinta de uri-test en la orina
recolectada, transcurrido 1 minuto proceder a la lectura.
6. Administrar Insulina 1 U.I. por cada 100 g de peso vía Intraperitonealmente.
7. Luego de 1 hora repetir los controles anteriores.
RESULTADOS
Rata
SANGRE
Glucosa Cuerpos
Cetónicos
Basal 1 hora Basal 1 hora
Control
Aloxano
Fluoridzina
Rata
ORINA
Glucosa Cuerpos
Cetónicos
Basal 1 hora Basal 1 hora
Control
Aloxano
Fluoridzina
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Defina: Cetosis, acidosis y coma diabético.
- Cetosis:
- Acidosis:
- Coma diabético:
2. Efecto de la insulina en diferentes tejidos.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA
PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA
Se utiliza como auxiliar del diagnóstico de diabetes mellitus, especialmente cuando no
es posible establecer el diagnóstico sobre la base de los niveles de glucemia en ayunas.
La prueba no resulta confiable en caso de infección grave, ayuno prolongado o luego de
la inyección de insulina.
Uno de los nutrientes importantes del organismo lo constituyen los hidratos de
carbono, que tiene importancia vital en el aporte de energía, siendo la glucosa el
principal carbohidrato. Su concentración sanguínea depende de la hormona insulina, que
es producida en las células beta de los islotes de Langerhans del páncreas, que por vía
endocrina, a través de la sangre regula la concentración de la glucosa. Cuando el
metabolismo de la glucosa se altera pueden producirse dos fenómenos: Hiperglucemia o
hipoglucemia. En este caso nos abocaremos a la hiperglucemia, fenómeno que se
observa en la enfermedad conocida como diabetes mellitus.
MATERIALES
- Glucómetro
- 5 cintas glucotrend
- 5 lancetas de punción
- Alcohol yodado y algodón
- 75 gr. de glucosa anhidra + 300 ml. de agua hervida + zumo de 3 limones
PROCEDIMIENTO
7. La persona a evaluar debe cumplir con las siguientes condiciones previas:
. Ayuno de 10 -16 horas (se puede tomar agua).
. Mínimo 3 días sin medicamentos (anticonceptivos, antidiabéticos,
corticoides, etc.), no fumar, no té, no café, no alcohol.
. No esfuerzos bruscos.
. Dieta rica en carbohidratos por 3 días.
8. Después de un ayuno durante una noche se toma una muestra de sangre y dosar la
glucemia basal.
9. Se administra al paciente una carga de glucosa anhidra de 75 gr. (100 gr. para la
detección de diabetes gestacional, 1.75 mg/kg del peso corporal ideal en niños,
hasta 75 gr.), + 300 ml. De agua hervida + zumo de 3 limones (tomarlo en 5 min.), si
el paciente vomita se invalida el examen.
10. Luego se toman muestras para determinar glucosa plasmática a los 30, 60, 90 y 120
min. (NOTA: Si la glucemia en ayunas ya está elevada por encima de 140 mg/dl por
lo general es innecesaria la prueba de tolerancia a la glucosa).
5. Leer los resultados e interpretarlos.
INTERPRETACIÒN
. DIABETES DE COMIENZO EN LA EDAD ADULTA: Glucemia de >140 en
cualquiera de las determinaciones o de >200 a los 120 min. y con otro intervalo
de tiempo medido.
. DIABETES GESTACIONAL: Por lo menos dos de los siguientes: Cualquier
De terminación de glucemia en ayunas de >105, a los 60 min. >190, a los 120
min. >165, a los 180 min. >145.
RESULTADOS
Basal 30 min. 60 min. 90 min. 120 min.
Glucemia
CONCLUSIONES
ESQUEMA
PROTOCOLO 1. Explique acerca de la función endocrina del páncreas. 2.- Haga un cuadro resumen de las funciones de la Insulina y del Gucagon. 3.- Investigue sobre la prueba de tolerancia a la glucosa y en casos se utiliza.
4.- Grafique la curva de la prueba de tolerancia a la glucosa
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA
ACCIÒN DE LA HORMONA GONADOTRÒPICA CORIÒNICA (HGC). TEST
DE GALLI MAININI
ACCIÒN DE LA HORMONA GONADOTRÒPICA CORIÒNICA (HGC). TEST DE
GALLI MAININI
Se sabe de hormonas que libera la hipófisis anterior que actúan sobre las gónadas,
llamadas gonadotropinas (FSH, LH); en el embarazo, la placenta también forma
gonadotropinas coriònicas (HGC) de acción semejante.
La HGC posee actividad similar a la LH principalmente estimula el testículo y aumenta
la síntesis de testosterona.
La HCG tiene la propiedad para estimular el desprendimiento y expulsión de
espermatozoides (acción sobre células de Sertoli) en batracios machos de los géneros
bufo (sapo) y rana; en esto se funda el método de Galli Mainini para el diagnóstico
biológico del embarazo.
MATERIALES
- Sapo macho de peso mayor de 100 gr.
- Orina sospechosa fresca (de 2-3 meses de embarazo).
- Jeringa de 10 cc. Con aguja Nº 21.
- Láminas porta objeto.
- Pipeta Pasteur y microscopio.
PROCEDIMIENTO
1. Inyectar orina en el saco dorsal linfático del sapo.
2. Luego de 30 min. Extraer la 1º muestra con la pipeta de la cloaca del sapo.
3. Observar al microscopio.
4. Si fuera negativo, repetir la extracción de la muestra, cada 30 min. Hasta las 3
Horas.
11. Cuando se encuentra experimentalmente espermatozoides 3n la muestra, se
informa como prueba positiva.
12. Comprobar o descartar embarazo mediante mediante cintas reactivas para orina,
por ejem. Uri Test.
RESULTADOS
Test de Galli Mainini Cintas reactivas
Embarazo positivo
Embarazo negativo
CONCLUSIUONES
ESQUEMA
PROTOCOLO
1. Concentraciones hormonales en la sangre materna durante el embarazo normal.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXO
ITEMS PUNTOS FIRMA
Demuestra responsabilidad y puntualidad (2).
Cumple con precisión las indicaciones y ordena el material (2).
Trabaja eficientemente en equipo (2).
Esquematiza y obtiene conclusiones acertadas (8).
Responde correctamente el protocolo planteado (6).
NOTA