50-63: 3333 (3) 4مجله بوم شناسی آبزیان

05

بوم شناسی آبزیان مجله

Journal homepage: http://jae.hormozgan.ac.ir

اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب ریزجلبک

Dunaliella bardawil به عنوان کاندید منبع تولید سوخت زیستی

2، سلیم شریفیان1آبادی شاه عباس زاد حسن، 1 طلب روزی محمد، 1 فریمان عطاران گیلان

چابهار چابهار، دریانوردی و دریایی علوم دانشگاه دریایی، علوم دانشکده دریا، زیست گروه 1 چابهار چابهار، دریانوردی و دریایی علوم دانشگاه دریایی، علوم دانشکده شیلات، گروه 2

مقاله: نوع

پژوهشی چکیده

وها دانه رنگ غیراشباع، چرب اشباع و اسیدهای سرشار از منبعی عنوان هب سلولی تک هایجلبک

چرب اسید ترکیب و میزاناند. گرفته قرار محققان توجه مورد بسیار اخیراً غذایی، و دارویی های متابولیت

و نور شوری، تغییرات مانند محیطی عوامل و تولیدی توده زیست مقدار ها به ریز جلبک توسط تولیدشده

Dunaliella bardawil سبز جلبک ریز مطالعه این در. دارد بستگی مغذی مواد به دسترسی میزان

573 و 07 ،53) مختلف های شوری تحت و Conway کشت محیط در چابهار خلیج از شده جداسازی

ساعت 52 نوری دوره و گراد سانتی درجه 23±2 دمای در تیمارها کلیه. شد داده کشت( لیتر بر گرم

و چربی تولید رشد، میزان بر مختلف شورهای اثر. شدند هوادهی پمپ با تاریکی ساعت 52 و روشنایی

که داد نشان واریانس آنالیز نتایج. گرفت قرار بررسی مورد جلبکی توده زیست چرب اسید پروفیل

355ترتیبشد که به حاصل ppt 07شوری یدشده در هر لیتر درتولچربی و توده یستز میزان بیشترین

به D. bardawilجلبک توده است. بیشترین و کمترین درصد چربی زیست گرم در لیترمیلی 272و

در سلولی تراکم کاهش دلیل به. گردید درصد مشاهده 53و 3/22 با مقادیر 53و 573ترتیب در شوری

نشان تحقیق این نتایج .کاهش یافت mg/L 23یدشده در واحد لیتر به توللیتر چربی بر گرم 573 شوری

05-33چابهار دارای درجه غیر اشباعی بین سواحل ازشده ی ساز خالص D. bardawil گونه که داد

.دارد زیستی سوخت تولید جهت زیادی پتانسیل

مقاله: تاریخچه

53/72/35دریافت:

27/70/35اصلاح:

22/70/35پذیرش:

: کلمات کلیدی

چرب اسید

توده زیست

زیستی سوخت

چابهار

هـمقدم

یک همچنین ودارند یژناکسیدکننده تولپایه زنجیره غذایی و عنوان بهمحیطی زیادی یستزاهمیت تجاری و ها جلبک یزر

. ترکیب چربی (Lee et al., 2014) هستند و کاروتنوئیدها آستروئیدها چرب، اسیدهای مانند ارزش با ترکیبات از طبیعی منبع

ایهکشنددر ایجاد ها آنشناسی به دلیل نقش گیرد، در اقیانوس یمی قرار بررس موردبرای مقاصد مختلفی ها جلبک یزر

موردیت برای تولید سوخت زیستی نها درو پروری به دلیل تغذیه آبزیان در مراحل لاروی و نشانگر زیستی، در آبزی سمی

سوخت پایدار ذا وغ تولیدی جهان ها دولتی نگرانترین ل حاضر مهم. در حا(Gordillo et al., 1998) دنگیر ی قرار میبررس

یدوارکننده برای برآورده کردن این نیازها به امحلی ی فتوسنتز کننده، راهها جلبکهای اتوتروف مانند یکروارگانیسمم. است

ی ها سوختی جایگزین شدن ها توانای یسرولگلمانند اسیدهای چرب و آسیل ها جلبکرسند. محتوای هیدروکربنی یمنظر

، به دلیل 5307دهه ی فسیلی از ها سوختتلاش برای پیدا کردن جایگزینی برای .(Talebi et al., 2013a) فسیلی را دارند

:نویسنده مسئول، پست الکترونیک Gilan.attaran@gmail.com

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

05

ی فسیلی رو به افزایش استها سوختاز حاصلی اتمسفر ا گلخانهی فسیلی و بالا رفتن گازهای ها سوختافزایش قیمت

(Halim et al., 2012; Juneja et al., 2013) اما ؛ ی پرچرب گیاهی برای این منظور استفاده شدها دانه. ابتدا منابع حیوانی و

های زراعی و آب شیرین مانع از گسترش استفاده از این نوع ینزمافزایش روزافزون نیاز غذایی جوامع انسانی، محدودیت

ریز یزان بالای چربی م . در مقابل(Li et al., 2008b; Mohan and Devi, 2014; Song et al., 2013) شود یمسوخت زیستی

یزرتر یینپاویسکوزیته و چگالی ،انرژی بالاتر ،های حاصل خیز برای پرورش ینزمبه ها آندریایی و عدم نیاز های جلبک

Gouveia, 2011; Rawat) کند یممعرفی ی منابع زمینی جهت تولید سوخت زیستیجا بهی تر مناسببه گزینه را ها جلبک

et al., 2013).

رشد و لحاظ از تر مناسبها قادرند با شرایط مختلف محیطی سازگار شوند. بنابراین امکان یافتن شرایط محیطی ریز جلبک

که امکان چنین تغییری در سایر منابع سوخت زیستی مانند یدرحالست. ی بیشتر اجلبک یزری مختلف ها گونهتولید چربی در

یر بر میزان رشد و تولید چربی تأث. تغییر شرایط محیطی علاوه بر (Halim et al., 2012)گردان وجود ندارد سویا، کلزا و آفتاب

ترکیب چربی .(5532یائی و همکاران ک; Azachi et al., 2002) رگذار باشدثانیز ها جلبک یزرتواند بر کیفیت لیپید می

. (Nuzzo et al., 2013) ها تا حد زیادی به عوامل ژنتیکی و محیطی بستگی داردجلبک

ها از خانوادهای کنند که برخی از آنکربنه تولید می 22الی 52یراشباع غها ترکیبی از اسیدهای چرب اشباع و ریز جلبک

یر بسیاری بر کیفیت سوخت زیستی تأث ها جلبکترکیب اسیدهای چرب ریز (. Mata et al., 2010) باشندمی 2و امگا 5امگا

یراشباع بستگی داردغشده دارد و تا حد زیادی به نسبت اسیدهای چرب اشباع به یدتول

(Mata et al., 2010; Nascimento et al., 2013; Radakovits et al., 2010) فیت سنجش کی منظور به. پارامترهایی که

)کیائی از: چگالی، ویسکوزیته، عدد ستان، نقطه ابری شدن، نقطه ریزش و ارزش حرارتی اند عبارت استفاده می شوند بیودیزل

(.5532و همکاران،

های دیگری برای ارزیابی بیودیزل وجود دارد اما عدد ستان شاخص اصلی سنجش کیفیت بیودیزل است. ینکه شاخصا وجود با

رود. با افزایش یر اشتعال به کار میتأخیری زمان گ اندازهمانند عدد اکتان در بنزین را دارد. عدد ستان برای این عدد مفهومی

های چرب اشباع در . با افزایش درصد اسید(Knothe, 2005) کندعدد ستان زمان اشتعال سوخت زیستی کاهش پیدا می

کند. بر اساس کاهش پیدا می( Degree Unsaturation) یراشباعیغکرده و درجه یداپبیودیزل میزان عدد ستان نیز افزایش

باید باشد 550یراشباعی غو حداکثر درجه 35 ( حداقل عدد ستان در بیودیزلUNE-EN (14214 استاندارد

(Ramos et al., 2009).

Dunaliella bardawil ی از رده سلول تکیک جلبک سبزChlorophyceae و راستهChlamydomonadales بدون دیواره ،

مولار( به رشد خود ادامه دهد 3/3تا 3/7های مختلف )تواند در شوریکه می استو شوری پسند سلولی، متحرک

(Chen et al., 2009; Hounslow, 2010; Vo and Tran, 2014) .D. bardawil با تولید و حذف گلیسرول و تنظیم غلظت

.(Talebi et al., 2013 b; Thompson, 1994) های بالا به رشد خود ادامه دهد یشورقادر است در سلولی درونهای یون

است شده انجامها در سراسر جهان های اخیر مطالعات زیادی جهت شناسایی ترکیب اسیدهای چرب ریز جلبک در سال

(Khotimchenko and Yakovleva, 2005; Kumari et al., 2013; Viron et al., 2000)یران نیز مطالعاتی بر روی . در ا

(. 5535عطاران فریمان، Talebi et al., 2013a ;ها در شرایط معمولی صورت گرفته است ) ترکیب اسیدهای چرب ریز جلبک

را به عنوان Synechococcus، شرایط بهینه رشد و ترکیب اسید چرب سیانو باکتری 5532کیائی و همکاران در سال

های مختلف نیتروژن محیط کشت مورد و غلظت pHل بالا جهت تولید بایودیزل در مقادیر متفاوت میکروارگانیسمی با پتانسی

های مختلف ها در تنش شوری وجود مطالعات اندکی بر روی تغییرات ترکیب اسید چرب ریز جلبک ین ا بابررسی قرار دادند.

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

3333زمستان ، 3، شماره 4بوم شناسی آبزیان دوره مجله دانشگاه هرمزگان

05

یدهای چرب در گونه بومی اسبالا بردن تولید چربی و منظور بههدف از مطالعه حاضر یافتن شوری مناسب انجام گرفته است.

. استاز دریای عمان جداشده

ها مواد و روش

سبز از جلبک یزرهای دور چابهار تهیه گردید. این از مرکز تحقیقات شیلات و آب D. bardawil جلبک یزری خالص نمونه

سازی شده است و در بانک ژن با کد خالصهای اطراف ساحل لیپار در نزدیکی شهر چابهار با شوری بالا حوضچه

CHPD2 D. bardawil ،(.5535ثبت گردیده است )عطاران فریمان

شده و به آب دریا اضافه شد و یهته نمک طبیعی دریا 573 و ppt 07است. جهت تهیه شوری ppt 53آب دریا دارای شوری

ندن از اگذرپس از 53، 07و ppt 573های ریا با شوریگیری گردید. آب داندازه mt-110 توسط شوری سنج چشمی مدل

گراد استریل گردید. پس از سرد شدن آب دریای استریل شده و رسیدن درجه سانتی 527دقیقه در دمای 53فیلتر، به مدت

لیتری منتقل شد.میلی 237های آن به دمای اتاق، به ارلن

( استفاده گردید. شرایط فایکولب با روشنایی Walne, 1970) Conwayاز محیط کشت D. bardawilبرای کشت

LUX55555 ساعت( تنظیم گردید. 52:52ی تاریکی روشنایی ) گراد دوره یسانتدرجه 23، دمای

بررسی میزان رشد

ها برداری شد. تراکم سلول های فعال از ظروف کشت نمونه ساعت از ریز جلبک 20در فواصل زمانی ،ارزیابی میزان رشد برای

با Neubauer (Marienfeld GMBH and Co. Germany)و لام Nikon ECLIPSE 50iبا استفاده از میکروسکوپ نوری مدل

2ها بار تکرار شدند. برای جلوگیری از حرکت سلول 5ها کلیه آزمون .متر شمارش شد میلی 5/7محفظه شمارش به عمق

محاسبه گردید.زیر وسیله فرمول ها به به نمونه اضافه شد. تعداد سلول% پتاسیم یدید( 57% ید و 3درصد محلول لوگول )

ها در یک لیتر شده = تعداد سلول های شمارش تعداد سلول× 572

توده تولیدشده گیری زیست اندازهبا وزن مشخص آزمایش نمونه برداشته و داخل لوله ml53 شده در انتهای دوره کشت، توده تولید گیری زیستمنظور اندازه به

(W1انتقال ) دقیقه با سرعت 53یافته و به مدتrpm 2777های سانتریفیوژ شدند. آب فوقانی جداسازی شده و ریز جلبک

ساعت 22بار با آب مقطر شستشو داده شدند. سپس به مدت دوگراد درجه سانتی -27 انجماد در دمای از نشین شده قبل ته

قرار داده شدند تا گراد درجه سانتی -57در دمای JAL TEBساخت شرکت JFD 2L مدل Freeze dryerدرون دستگاه

های آزمایش دوباره وزن شدند ، لولهها جلبک یزرطور کامل آب خود را از دست بدهند. بعد از خشک شدن کامل ها بهپلیت

(W2کلیه آزمایش ،).ها سه بار تکرار شد

بررسی میزان تولید چربی

روز تیمارها سانتریفیوژ شده و توسط 52استفاده گردید. بعد از (Bligh and Dyer, 1959)راج چربی از روش منظور استخ به

جلبک را برداشته و شده خشکگرم نمونه میلی 577 .گراد خشک گردیدند درجه سانتی -57در دمای Freeze dryerدستگاه

گراد هم زده درجه سانتی 23ساعت در دمای 50کرده و به مدت اضافه 5:2لیتر محلول متانول/ کلروفرم با نسبت میلی 5

، لایه کلروفرمی جدا و به درون لولهگردیدهسانتریفیوژ rpm 2777دقیقه با سرعت 5 به مدت شد. سوسپانسیون حاصل

درجه 07ساعت درون آون با دمای 2های آزمایش به مدت آزمایش توزین شده انتقال داده شد. در مرحله آخر لوله

توده های آزمایش دوباره توزین شدند. سپس درصد چربی زیستتا کلروفرم تبخیر شود. لوله گراد قرار داده شدند سانتی

.(Nigam et al., 2011) محاسبه گردید

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

05

بررسی پروفیل اسید چرب

ابتدا .(Talebi et al., 2013a) استرفیکاسیون مستقیم جهت بررسی ترکیب اسید چرب ریز جلبک استفاده گردید روش ترانس

µl555 درجه 03ساعت در دمای 2اضافه شد و به مدت توده خشک جلبک گرم زیستمیلی 0به محلول بافر استخراج

به محلول فوق µl555 ،n-hexzane و NaCl %3/7آب حاوی µl555ترتیب سپس به انکوبه گردید. rpm 277و گراد سانتی

rpm 3777گراد با سرعت درجه سانتی 27دقیقه در دمای 5ها به مدت د. سپس نمونهآرامی مخلوط گردی اضافه و به

یز آنال( جداسازی و استفاده شد. GCسانتریفیوژ شدند. لایه فوقانی هگزان برای آنالیز توسط دستگاه کروماتوگرافی گازی )

نستوبا FIDساز مجهز به آشکار Shimadzu-2014 مدل GCاسید چرب توسط دستگاه

-70 BPX (25m mm I.D. 0.22 و ضخامت µm 0.25) یان جر شدتحاوی گاز حامل نیتروژن باml/min 5/5 .از انجام گرفت

عنوان استاندارد جهت شناسایی استرهای آمریکا به Accu Standard ساخت شرکت( FAMQ-005)چرب یداساستاندارد

متیله شده استفاده شد.

آماری تجزیه و تحلیل

(Version21)با نرم افزار و ترکیب اسید چرب کل چربی گیری میزان رشد،های حاصل از اندازهتحلیل آماری داده تجزیه و

SPSS .جهت بررسی تأثیر استفاده شد. آزمون کولموگروف اسمیرننف جهت بررسی نرمال بودن داده ها از انجام پذیرفت

آزمون و (One-Way ANOVA) از آنالیز واریانس یک طرفهچرب د تغییرات شوری بر میزان رشد، چربی کل و ترکیب اسی

.گردیداستفاده EXCEL(2013)از نرم افزار جهت ترسیم نمودارها دانکن و

جـنتای

ی میزان رشدبررس

های ( فراوانی سلول5شکل ) مشاهده شدند.ppt 573و کمترین تعداد شوری ppt 07 بیشترین تعداد سلول در شوری

D. bardawil روز بود و پس از روز 2داد که فاز تأخیری رشد نتایج همچنین نشان دهد.را در سه شوری متفاوت نشان می

گرم 07 یشور های متفاوت در در شوری ها جلبک یزرصورت لگاریتمی رشد کردند. بالاترین میزان رشد ها به چهارم جلبک

در لیتر مشاهده شد.

ی در تیمارهای مختلف شور D. bardawil های تغییرات تعداد سلول .5شکل

ها رشد کند شده و در از رسیدن به اوج رشد به دلیل کاهش مواد مغذی و بالا رفتن تراکم سلول و عدم نفوذ نور در آن بعد

را شده لیدتوده تو میزان زیست 2شکل شود. همچنینشیب نمودار منفی می به دلیل اتمام مواد مغذی دهمنهایت بعد از روز

دهد. نتایج حاصل از بررسی میزان رشد روزانه نشان می چهاردهمدر انتهای روز mg/Lدر تیمارهای مختلف برحسب

D. bardawil در مقابل .دهداز خود نشان می نسبت به تیمارهای دیگر رشد چشمگیری 07جلبک در شوری نشان داد که،

(.2) شکل( P>0.05) شتنداداری دند و نتایج با یکدیگر اختلاف معنیدارای وزن خشک یکسانی بو 53و ppt551شوری

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

3333زمستان ، 3، شماره 4بوم شناسی آبزیان دوره مجله دانشگاه هرمزگان

05

های مختلف یشوریدشده در تول کل توده یستزمیزان . 2شکل

بررسی میزان تولید چربی

دهد. با افزایش های مختلف نشان می را در شوری D. bardawilمیزان چربی کل در واحد حجم و وزن خشک 5جدول

و کمترین میزان چربی در %2/22با میزان ppt 573کل افزایش یافت و بیشترین درصد چربی در شوری شوری میزان چربی

نظر درصد چربی از 53و ppt 573 شوری ینب های مختلف،و در بین شوری % درصد مشاهده شد53 با میزان 53شوری

کدام از تیمارها درصد بود که با هیچ ppt 07 ،3/22میزان چربی در شوری (.P≤0.05)داشت داری وجود اختلاف معنی

(.P>0.05) نداشتداری اختلاف معنی

کشت دوره یانتها در D. bardawil جلبک کل یچرب زانیم بر یشور مختلف های غلظت یرتأث .5جدول

(Duncanaدارند )داری با یکدیگر شده است، تیمارهایی که دارای حروف مشترک نیستند؛ اختلاف معنی % انجام3ها در سطح مقایسه میانگین

بیشترین درصد چربی در واحد جرم ppt 573نشان داده شده است برخلاف اینکه در شوری 5طور که در جدول همان

یافته و بسیار کاهش ppt 573توده کم در شوری اما کارایی تولید چربی در واحد حجم به دلیل تولید زیست شده مشاهده

توده بالا بهترین کمیت را به دلیل تولید زیست 07د چربی شوری نظر کارایی تولی . ازترین مقدار را به خود اختصاص دادکم

نشان داد.

ی پروفیل اسید چرببررس

شناسایی شدند که نوع و میزان D. bardawilاسیدهای چرب نوع اسید چرب متفاوت در بررسی ترکیب 52در این تحقیق

اسیدهای چرب : اند از عبارت شده مشاهده شباع عمدهاشباع و غیرا اسیدهای چرب .است آورده شده 2جدول تغییرات آن در

( و اسیدهای C18:0(، استریک اسید )C16:0) یداس(، پالمتیک C14:0) یداسمرستیک (،C12:0) دکانوئیک اسیددو اشباع:

یدسا(، لینولنیک C18:2n-6(، لینولئیک اسید )C18:1(، اوکتادکنئویک اسید )C16:1چرب غیراشباع: پالمیتولئیک اسید )

تیمار میزان چربی جلبک

وزن خشک درصد در گرم در یک گرم وزن خشک میلی گرم در لیتر میلی

ppt 53 یشور a02/7±3/02 a23±537 a53

ppt 07 یشور b2±272 a, b55±227 a, b22

ppt 573 یشور a3/7±3/23 b2±222 b2/22

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

00

(C18:3n-6 ،)ایکوزونئویک اسید (C20:1)ایکوزوساترئونیک اسید ، (C20:5)دوکوزانئویک اسید ، (C22:1) و دوکوزاتترانئویک

دهد.ها در سه شوری مختلف نشان میمیزان اسیدهای چرب اشباع و غیر اشباع و نسبت بین آن 5جدول (.C22:4) یداس

فمختل یها یشور در چرب یدهایاس بیترک .2جدول

اعی چرب به تفکیک اشباع و غیر اشبهامیزان اسید .5جدول

ppt 573 ppt 07 ppt 53

SFAکل میزان 75/25 22/33 23/37

USFAمیزان کل 30/32 25/27 33/23

MUFAکل میزان 55/50 0/0 20/0

PUFAمیزان کل 02/50 30/52 02/27

SFA / USFAنسبت 02/7 20/5 72/5

(DU)درجه غیراشباعی 02/33 32/02 2/37

میزان ppt 07 یشوراشباع در شرایط مختلف در این پژوهش متفاوت بود. فقط در میزان اسیدهای چرب اشباع و غیر

(. در کل تیمارها میزان اسیدهای چرب با پیوند 5شکل بود )ها بیشتر اسیدهای چرب اشباع به غیراشباع نسبت به سایر شوری

های چرب اشباع و غیراشباع را در میزان اسید 5شکل گانه نسبت به اسیدهای چرب با پیوند تک گانه، بیشتر بود. چند

دهد.های مختلف نشان می شوری

ppt 573 ppt 07 ppt53 شوری

اسید چرب

50/7±52/5 20/7±55/5 72/7±50/5 Dodecanoic acid (C12:0)

30/7±22/3 70/7±30/3 20/7±02/7 Tetradecanoic acid

(C14:0)

22/7±22/5 22/7±03/7 25/7±22/5 pentadecanoic acid (C15)

00/7±02/55 22/5±00/23 25/7±25/22 Hexadecanoic acid

(C16:0)

22/7±52/5 22/7±25/2 53/7±52/2 Palmitoleic acid (C16:1)

22/7±53/0 20/5±30/53 55/7±50/53 Octadecanoic acid (C18:0)

70/5±07/5 72/5±72/3 23/7±0/5 Octadecenoic acid (C18:1)

02/2±00/2 53/5±23/57 22/7±20/52 Linoleic acid (C18:2)

23/7±32/5 72/7±32/7 75/7±35/7 Linolenic Acid (C18:3)

- 00/5±20/50 22/7±2/25 Stearidonic acid (C18:4n)

55/7±75/5 50/7±02/5 73/7±5/7 Eicosanoic acid (C20:0)

5/7±05/5 73/7±33/7 00/7±30/5 Eicosenoic acid (C20:1)

- 55/7±52/5 70/7±30/5 Eicosatrienoic acid(C20:4)

22/7±02/5 50/7±53/2 52/7±50/5 Ecisoapentanoicacid(C20:5)

- - 55/7 Docosanoic acid (C22:1)

72/7±23/2 72/7±22/7 75/7±55/7 docosatetraenoicacid(C22:4)

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

3333زمستان ، 3، شماره 4بوم شناسی آبزیان دوره مجله دانشگاه هرمزگان

05

های مختلف تغییرات درصد اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع در شوری. 5شکل

بحث

های اخیر به شود زیرا عاری از هر نوع ترکیب آروماتیک و سولفوری است. در سالاز بایودیزل به عنوان یک سوخت پاک یاد می

ها در سراسر جهان ن آوردن هزینه تولید بایودیزل مطالعات زیادی در زمینه استخراج سوخت زیستی از ریزجلبکمنظور پایی

-توده بیشتر و رشد سریعهای پرچرب خشکی، دارای بازده فتوسنتزی و تولید زیستدر مقایسه با دانهآنها انجام گرفته است.

-ها باعث افزایش کیفیت بایودیزل میدر چربی ریز جلبک MUFAع و تری هستند. همچنین درصد بالای اسیدهای چرب اشبا

.(Atadashi et al., 2012) گردد

شده قرار دارد شده و درصد وزنی چربی تولید توده تولید تدو عامل میزان زیس ها تحت تأثیر تولید سوخت زیستی از ریز جلبک

(Liang et al., 2009 .)ها وجود دارد. توده و چربی توسط ریز جلبک های مختلفی برای افزایش تولید زیست روش

(Chen et al., 2011)هن و ها را در شرایط استرس مانند شرایط کمبود نیتروژن، افزایش آ . برای این منظور ریز جلبک

دهند افزایش شوری آب قرار میو (Mixotroph) صورت میکسوتروف اکسیدکربن محیط کشت، کشت ریز جلبک به دی

(Liang et al., 2009; Venkata Mohan and Devi, 2014; Wan et al., 2013).

با دما و دوره نوری ثابت های مختلف در شوری D. bardawilدر این مطالعه میزان رشد، چربی کل و ترکیبات اسید چرب

به میزان (M/L NaCl 2/5گرم بر لیتر ) 07شده در شوری توده تولید گرفت. بیشترین زیستی قرار بررس مورد

mg/L 572± 355 داد با این شوری نشان ها تفاوت محسوسیشده در سایر شوری توده تولید مشاهده شد. زیست(P≥0.05)

بود گرم در لیتر 53ها در شوری از تعداد سلول گرم در لیتر بسیار کمتر 573ر شوری ها داگرچه تعداد سلول (.2شکل )

تر شدن توان به بزرگشده مشاهده نشد. دلیل این امر را می توده تولید وجود این اختلاف در مقدار زیست ینا با (،5شکل )

با در نظر گرفتن این مطلب به نظر (García et al., 2007داد )در پاسخ به افزایش شوری نسبت Dunaliellaهای سلول

برای سنجش میزان رشد است. تریها، معیار مناسبتوده تولیدی نسبت به تعداد سلول میزان زیست رسد یم

ها را نماینده مناسبی آنهمین امر کنند و های بالا را تحمل می هایی هستند که شوریارگانیسم Dunaliellaهای خانواده گونه

. (Azachi et al., 2002; Takagi et al., 2006; Xu and Beardall, 1997) می سازدها ررسی تأثیر شوری بر جلبکجهت ب

ترین . مناسب(Borowitzka and Siva, 2007)های مختلف نرخ رشد متفاوتی دارند در شوری Dunaliellaهای مختلف گونه

ترین مناسب 2755و همکاران در سال Talebiمتفاوت است. ، در مطالعات مختلف Dunaliellaغلظت شوری برای رشد

. نتایج مطالعه حاضر با (Talebi et al., 2013b)( گزارش کردند ppt 30)را یک مول بر لیتر D. salinaشوری جهت رشد

بک ( بالاترین میزان رشد این جل2777و همکاران ) Heidariوجود این . بااستهمسو 2755در سال Talebiگزارش

و همکاران Nikookar گزارش کرد. همچنین (ppt 573-532) مول بر لیتر 2/2و 0/5جداسازی شده از دریاچه ارومیه را

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

05

ppt) جداسازی شده از دریاچه مهارلو در شوری یک و دو مول بر لیتر D. salina( نشان دادند که بالاترین میزان رشد 2772)

محیط کشت بستگی داشته باشد. دلیل دیگر این اختلاف pHواند به میزان نور و ت ( است. دلیل این تفاوت می552و 3/30

های بالا طی زمان طولانی باشد.ای به شوریهای دریاچهتواند به دلیل سازگار شدن استرینمی

ان چربی به ترتیب دارای بیشترین رشد و میز 52و psu 22 در شوری Nannochloropsis salinaکه دهد یممطالعات نشان

. همچنین (Bartley et al., 2013)کند کاهش پیدا می شدت بهتر میزان رشد و چربی های بالاتر و پایین و در شوری است

Takagi ( در مطالعات خود بیان کردند که با افزایش شوری آب از 2772و همکاران )M 3/7 بهM 3/5 (ppt 23 277به ،)

گرم بر لیتر 573گرم بر لیتر 53کند. در مطالعه حاضر نیز با افزایش شوری از ا میافزایش پید D. salina میزان چربی کل

نشان داد که با ( 5300)و همکاران Al-Hasan هاییاما بررس (. 5جدول ) یدرسدرصد 2/22درصد به 53میزان چربی کل از

. در مطالعات دیگر نیز درصد وزنی چربی دکنمی یداکاهش پ D. salinaکل یزان چربیدرصد م 27به 3/2از یش شوریافزا

,.Abd El-Baky et al., 2004; Schwenk et al., 2013; Takagi et alشده است ) درصد گزارش 20تا 0کل این جلبک بین

2006; Talebi et al., 2013a)تواند به دلیل روش استخراج ). وجود تفاوت در مقدار چربی کل ریز جلبک میLee et al.,

و تأثیر تفاوت شرایط محیطی؛ مانند شدت نور، (Salim et al., 2013)، زمان برداشت ریز جلبک جهت استخراج چربی (2010

(Takagi et al., 2006; Li et al., 2008a) . باشد ی، میزان مواد مغذی و شوریمیزان هواده

ر را به خود اختصاص داد ر سه شوری بیشترین مقدادر ه (C16:0)اسید پالمتیک ،شده های شناساییدر بین انواع اسید چربی

از اسیدهای چرب اشباع، (C16:0)بر میزان اسید پالمتیک ،دهد که با افزایش شورینشان می 2همچنین جدول (.2)جدول

عمده (؛ و با افزایش شوری قسمت 2های غیراشباع افزوده شد )جدول چربی از (C18:3) و لینولنیک اسید (C18:2) لینولئیک

Abdدهند ) اشباع تشکیل می C16غیراشباع و C18 چرب هایشده در اعضای این خانواده را اسید اسیدهای چرب شناسایی

El-Baky et al., 2004; Lee et al., 2014; Takagi et al., 2006) که همسو با نتایج مطالعه حاضر است. در مقابلVanitha و

بیان کرد که میزان اسیدهای چرب D. salinaو D. bardawilب اسید چرب دو واریته ی ترکی ( در مقایسه2770)همکاران

C22 وC18:2 .به ترتیب در واریته بارداویل و سالینا دارای بیشترین مقدار بودند

بات بیشتر از سایر ترکی (C18:4) و استریدونیک اسید (C18:2)کربنه نیز میزان لینولئیک اسید 50از میان اسیدهای چرب

مطابقت دارد 2755و همکاران در سال Talebi( که با نتایج مطالعه 2)جدول کربنه شناسایی شده بود 50

(Talebi et al., 2013a) . ترکیب اسیدهای چرب این گونه با سایر گونه های این جنس در داخل و خارج از 2در جدول شماره

ایران مورد مقایسه قرار گرفته است.

دیگر ترکیب اسیدهای چرب بر کیفیت عبارت ها یا به دهنده چربی تشکیل غیراشباع بودن اسیدهای چربمیزان اشباع یا

آمده از منابع مختلف چربی تأثیر بسزایی دارد دست سوخت زیستی به

(Rasoul-Amini et al., 2011; Redel-Macías et al., 2012; Talebi et al., 2013a)باع در چربی اش . هر چقدر اسیدهای چرب

طورکلی سرعت تخریب چربی کندتر و به شودو پایداری حرارتی بیشتر می کل افزایش پیدا کند، چربی کندتر اکسید شده

(. Bowen, 2010) کندهای غیراشباع نقطه انجماد کاهش پیدا میدر مقابل با افزایش چربی .(Lin and Lin, 2012)شود می

Schenk بین 3/2/5شود که نسبت بیان کردند که بهترین کیفیت بیودیزل هنگامی حاصل می 2770و همکاران در سال

C16:1/ C18:1/ C14:0 وجود داشته باشد. در این مطالعه شوریppt 573 5/5/2/2نزدیکترین اعداد را به این نسبت با میزان

.Dید. در مطالعه حاضر ریز جلبک مشاهده گرد 5/57/3/0با مقدار ppt 53نشان داد. بیشترین اختلاف نیز در شوری

bardawil در سه شوری مختلف کشت داده شد. نتایج نشان داد که با افزایش شوری ازppt 53 بهppt 07 میزانSFA افزایش

53اما همچنان نسبت به شوری ؛از میزان اسیدهای چرب اشباع کاسته شد ppt 573کند با وجود اینکه در شوری پیدا می

مهم در هایکربنه از اسید چرب 50و 52، 52(. اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع 5بیشتر است )شکل SFAمیزان

ها . در این مطالعه نیز مقدار این اسید چرب( Rasoul-Amini et al., 2011; Tang et al., 2011) باشندهای زیستی می سوخت

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

3333زمستان ، 3، شماره 4بوم شناسی آبزیان دوره مجله دانشگاه هرمزگان

05

و Tang(، 5535شد که با نتایج حاصل از مطالعات عطاران )تر مشاهده نسبت به سایر ترکیبات چربی شناسایی شده فراون

کربنه در ترکیب اسید چرب 50-52مطابقت دارد. میزان بالای ترکیبات (5307و همکاران ) Tornabene (،2755همکاران )

D. bardawil طول د.تواند دلیل دیگری بر مناسب بودن چربی حاصل از این جلبک به عنوان منبع سوخت زیستی باشمی

بیودیزل برای تولید جلبک چربی خصوصیات مهم ساخته شده تری گلیسرید با چربی کل نسبت و، درجه غیراشباع، زنجیره

(.(Borowitzka, 1992 را تحت تاثیر قرار دهد بیودیزل کیفیت است و ممکن است

های غیراشباع ( بیشتر از سایر چربی50:2( و استرادینوئیک اسید )50:2در بین اسیدهای چرب غیر اشباع نیز لینولیک اسید )

(.2گیری شد ) جدول اندازه

های مختلف های موجود در ترکیب اسید چرب در گزارشتفاوت .2جدول

AbdEl-Baky et منبع

al., 2004

Al-Hasan

et al., 1987 Talebi et al., 2013a* Talebi et al., 2013a*

Rasoul-Amini et al.,

2014*

اضرمطالعه ح

D. salina a D. salina a D. salina

(Persian Gulf)

D. salina

(Shariati) D. salina D. bardawiala

C8:0 25/7-50/7 NR NR NR NR NR

C12:0 55/7-50/7 NR NR NR 5/2 50/5-55/5 C14:0 50/2-52/55 5/2- 2/3 NR NR 5/25 02/7- 30/3 C15:0 NR NR NR NR NR 22/5-03/7 C16:0 22/23-25/5 2/53-5/27 3/5±53/3 3/5±2/52 5/55 2/22-0/55 C16:1 30/2 2/2- 0/5 5/7 ±0/7 2/7±23/2 NR 52/2-25/2 C18:0 NR 0/5-0/5 2/5± 20/2 2/7±3/5 5/5 3/53-5/0 C18:1 55/7- 0/3 Trace 0/7 ±35/22 5/2±20/25 NR 0/5-72/3 C18:2 5/7- 0/3 0/0- 3 3/7 ± 02/5 2/7±20/2 NR 0/2- 20/52 C18:4 0/52-22/25 3/23- 2/50 2/2± 55/22 3/5±52/27 NR 3/7-32/5 C20:0 35/7-25/5 Trace 5/7±22/5 5/7±2/5 6/4 2/25-0/50 C20:4 0/2-50/2 Trace NR NR NR 30/5-3/7 C20:5 NR Trace NR NR NR 53/2-02/5 C22:0 25/2 Trace NR NR 5/0 NR

C22:4 55/2 Trace NR NR NR 23/2-55/5

گزارش نشده NR : ،اندازه گیری شده در شوری های متفاوت :a ، مطالعات انجام شده در ایران *

ترکیبات بالایسازی شده از خلیج چابهار به دلیل تولید زیست توده بالا، میزان خالص D. bardawilریزجلبک به طور کلی،

SFAو با داشتن چربی کل، (Oren, 2005) دم نیاز به زمین های زراعی و آب شیرینشیمیایی تجاری مانند انواع لیپیدها و ع

( پتانسیل زیادی برای تولید سوخت زیستی در سراسر کشور دارد. در 02/27الی 3/52) PUFA( درصد و 22/33الی 75/25)

و هوای گرم که احتمال اکسیداسیون سوخت زیستی بیشتر است، باید درصد اسیدهای چرب مناطق جنوبی کشور با آب

توان از اسیدهای چرب غیراشباع متیله تیله شده در سوخت زیستی بالاتر باشد. در مقابل در مناطق سردسیر ایران میاشباع م

تری دارند. مطابق نتایج این تحقیق ریز جلبکعنوان سوخت زیستی استفاده کرد، زیرا نقطه انجماد پایین شده به

D. bardawil دهد. این د اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع خود را تغییر میهای با غلظت شوری متفاوت، درصدر محیط

عنوان منبع سوخت زیستی استفاده کرد. شود تا مطابق با شرایط اقلیمی مناطق از چربی این ریز جلبک به ویژگی موجب می

و قدردانی تشکر

رکار خانم عباسی و باقری و همچنین ویژه س از همکاری صمیمانه مسئولین آزمایشگاه کنترل کیفیت منطقه آزاد چابهار به

شود.گزاری میمسئولین محترم آزمایشگاه علوم دریایی و دریانوردی چابهار سپاس

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

05

عـمناب

ده در آبزی پروری، ها به عنوان غذای زن شناسایی جلبک های میکروسکوپی بومی دریای عمان و ارزیابی آن .5535 عطاران فریمان، گ.

ص. 525 .سسه تحقیقات شیلات ایرانش نهایی مؤگزار

بررسی شرایط بهینه به منظور استفاده از سیانوباکتری. 5532م. م.، خاوری نژاد، ر.، دزفولیان،، ، مظاهری اسدیسلطانی، ن. ،کیائی، ا.

Synechococcus sp. ISC106 27-35 ، صفحات2سال چهارم، شماره مجله بوم شناسی آبزیان، .به عنوان کاندید تولید بیودیزل.

Abd El-Baky, H.H., El Baz, F.K., El-Baroty, G.S. 2004. Production of lipids rich in omega 3 Fatty

Acids from the halotolerant alga Dunaliella salina. Biotechonology. 3(1): 102-108.

Al-Hasan, R.H., Ghannoum, M.A., Sallal, A.K., Abu-Elteen, K.H., Radwan, S.S. 1987. Correlative

changes of growth, pigmentation and lipid composition of Dunaliella salina in response to

halostress. Journal of General Microbiology. 133(9): 2607-2616.

Atadashi, I.M., Aroua, M.K., Abdul Aziz, A.R., Sulaiman, N.M.N. 2012. Production of biodiesel

using high free fatty acid feedstocks. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 16(5): 3275-

3285. Azachi, M., Sadka, A., Fisher, M., Goldshlag, P., Gokhman, I., Zamir, A. 2002. Salt Induction of Fatty

Acid Elongase and Membrane Lipid Modifications in the Extreme Halotolerant Alga Dunaliella

salina. Plant Physiology. 129(3): 1320-1329.

Bartley, M.L., Boeing, W.J., Corcoran, A.A., Holguin, F.O., Schaub, T. 2013. Effects of Salinity on

Growth and Lipid Accumulation of biofuel microalga Nannochloropsis salina and invading

organisms. Biomass and Bioenergy. 54(0): 83-88 .

Bligh, E.G., Dyer, W.J. 1959. A rapid method of total lipid extraction and production. Canadian

Journal of Biochemistry and Physiology. 37(8): 911-917.

Borowitzka, M.A. 1992. Algal biotechnology products and processes matching science and

economics. Journal of Applied Phycology. 4: 267–79.

Borowitzka, M., Siva, C. 2007. The taxonomy of the genus Dunaliella (Chlorophyta, Dunaliellales)

with emphasis on the marine and halophilic species. Journal of Applied Phycology. 19(5): 567-

590.

Bowen, D. 2010. Effect of Fatty Acid Structure on Biodiesel.

http://biodieselisgood.org/chemistry/effect-of-fatty-acid-structure-on-biodiesel/.

Chen, H., Jiang, J.G., Wu, G.H. 2009. Effects of Salinity Changes on the Growth of Dunaliella salina

and Its Isozyme Activities of Glycerol-3-phosphate Dehydrogenase. Agriculture and food

chemistry. 57: 6178-6182.

Chen, M., Tang, H., Ma, H., Holland, T.C., Ng, K.Y.S., Salley, S.O. 2011. Effect of nutrients on

growth and lipid accumulation in the green algae Dunaliella tertiolecta. Bioresource Technology.

102(2): 1649-1655.

García, F., Freile-Pelegrín, Y., Robledo, D. 2007. Physiological characterization of Dunaliella sp.

(Chlorophyta, Volvocales) from Yucatan, Mexico. Bioresource Technology. 98(7): 1359-1365.

Gordillo, F. J. L., Goutx, M., Figueroa, F.L., Niell, F.X. 1998. Effects of light intensity, CO2 and

nitrogen supply on lipid class composition of Dunaliella viridis. Applied Phycology. 10: 135–144.

Gouveia, L. 2011. Microalgae as a Feedstock for Biofuels. First edition. Springer. 68 p.

Halim, R., Danquah, M.K., Webley, P.A. 2012. Extraction of oil from microalgae for biodiesel

production: A review. Biotechnology Advances. 30(3): 709-732.

Heidari, R., Riahi, H., Saadatmand, S. 2000. Effect of salt and irradiance stress on photosynthetic

pigments and proteins in Dunaliella salina Teodoresco. Journal of Sciences Islamic Republic Of

Iran. 11(2): 73-77.

Hounslow, E. 2010. Optimum salinity conditions for producing lipids from Dunaliella salina for

biofuels production. Mini-project report. Energy Futures University of Sheffield. 1-8.

Juneja, A., Ceballos, R.M., Murthy, A.G.S. 2013. Effects of environmental factors and nutrient

availability on the biochemical composition of algae for biofuels production: A Review Energies.

6: 4607-4638.

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

3333زمستان ، 3، شماره 4بوم شناسی آبزیان دوره مجله دانشگاه هرمزگان

55

Khotimchenko, S.V., Yakovleva, I.M. 2005. Lipid composition of the red alga Tichocarpus crinitus

exposed to different levels of photon irradiance. Phytochemistry. 66(1): 73-79.

Knothe, G. 2005. Dependence of biodiesel fuel properties on the structure of fatty acid alkyl esters.

Fuel Processing Technology. 86(10): 1059-1070.

Kumari, P., Bijo, A.J., Mantri, V.A., Reddy, C.R.K., Jha, B. 2013. Fatty acid profiling of tropical

marine macroalgae: An analysis from chemotaxonomic and nutritional perspectives.

Phytochemistry. 86(0): 44-56.

Lee, J.Y., Yoo, C., Jun, S.Y., Ahn, C.Y., Oh, H.M. 2010. Comparison of several methods for effective

lipid extraction from microalgae. Bioresource Technology. 101(1, Supplement): 75-77. Lee, S.Y., Kim, S.H., Hyun, S.H., Suh, H.W., Hong, S.J., Cho, B.K., Choi, H.K. 2014. Fatty acids and

global metabolites profiling of Dunaliella tertiolecta by shifting culture conditions to nitrate

deficiency and high light at different growth phases. Process Biochemistry. 49(6): 996-1004.

Li, Y., Horsman, M., Wang, B., Wu, N., Lan, C. 2008a. Effects of nitrogen sources on cell growth

and lipid accumulation of green alga Neochloris oleoabundans. Applied Microbiology and

Biotechnology. 81(4): 629-636.

Li, Y., Horsman, M., Wu, N., Lan, C.Q., Dubois-Calero, N. 2008b. Biofuels from microalgae.

Biotechnolgy Progress. 24: 815-820.

Liang, Y., Sarkany, N., Cui, Y. 2009. Biomass and lipid productivities of Chlorella vulgaris under

autotrophic, heterotrophic and mixotrophic growth conditions. Biotechnology Letters. 31(7):

1043-1049.

Lin, C.Y., Lin, Y.W. 2012. Fuel characteristics of biodiesel produced from a high-acid oil from

soybean soapstock by supercritical-methanol transesterification. Energies. 5(7): 2370-2380.

Mata, T.M., Martins, A.A., Caetano, N.S. 2010. Microalgae for biodiesel production and other

applications: A review. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 14(1): 217-232.

Mohan, S.V., Devi, M.P. 2014. Salinity stress induced lipid synthesis to harness biodiesel during dual

mode cultivation of mixotrophic microalgae. Bioresource Technology. 165: 288-294.

Nascimento, I., Marques, S., Cabanelas, I., Pereira, S., Druzian, J., de Souza, C., Nascimento, M.

2013. Screening microalgae strains for biodiesel production: Lipid productivity and estimation of

fuel quality based on fatty acids profiles as selective criteria. Bioenergy Research. 6(1); 1-13.

Nigam, S., Rai, M.P., Sharma, R. 2011. Effect of nitrogen on growth and lipid content of Chlorella

pyrenoidosa. American Journal of Biochemistry and Biotechnology. 7: 124-129.

Nikookar, K., Moradshahi, A., Kharati, M. 2004. Influence of salinity on the growth, pigmentation and

ascorbate peroxidase activity of Dunaliella Salina isolated from Maharlu Salt Lake in Shiraz.

Iranian Journal of Science and Technology. 28: 117-125.

Nuzzo, G., Gallo, C., Ippolito, G., Cutignano, A., Sardo, A., Fontana, A. 2013. Composition and

Quantitation of Microalgal Lipids by ERETIC 1H NMR Method. Marine Drugs. 11(10): 3742-

3753.

Oren, A. 2005. A hundred years of Dunaliella research: 1905–2005. Aquatic Biosystems. 1(2): 1-14.

Radakovits, R., Jinkerson, R.E., Darzins, A., Posewitz, M.C. 2010. Genetic engineering of algae for

enhanced biofuel production. Eukaryotic Cell. 9(4): 486-501.

Rasoul-Amini, S., Montazeri-Najafabady, N., Mobasher, M.A., Hoseini-Alhashemi, S., Ghasemi, Y.

2011. Chlorella sp. A new strain with highly saturated fatty acids for biodiesel production in

bubble-column photobioreactor. Applied Energy. 88(10): 3354-3356.

Rasoul-Amini, S., Mousavi, P., Montazeri-Najafabady, N., Mobasher, M.A., Mousavi, S.B., Vosough,

F., Ghasemi, Y. 2014. Biodiesel properties of native strain of Dunaliella Salina. International

Journal of Renewable Energy Research. 4(1): 39-41.

Ramos, M.J., Fernández, C.M., Casas, A., Rodríguez, L., Pérez, Á. 2009. Influence of fatty acid

composition of raw materials on biodiesel properties. Bioresource Technology. 100(1): 261-268.

Rawat, I., Kumar, R.R., Mutanda, T., Bux, F. 2013. Biodiesel from microalgae: A critical evaluation

from laboratory to large scale production. Applied Energy. 103: 444–467.

Redel-Macías, M.D., Pinzi, S., Ruz, M.F., Cubero-Atienza, A.J., Dorado, M.P. 2012. Biodiesel from

saturated and monounsaturated fatty acid methyl esters and their influence over noise and air

pollution. Fuel. 97(0): 751-756.

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021

...اثر تنش شوری بر رشد و چربی کل و پروفیل اسیدهای چرب اران همک و طلب روزی

55

Salim, S., Shi, Z., Vermuë, M.H., Wijffels, R.H. 2013. Effect of growth phase on harvesting

characteristics, autoflocculation and lipid content of Ettlia texensis for microalgal biodiesel

production. Bioresource Technology. 138(0): 214-221.

Schenk, P., Thomas-Hall, S., Stephens, E., Marx, U., Mussgnug, J., Posten, C., Hankamer, B. 2008.

Second generation biofuels: High-Efficiency microalgae for biodiesel production. BioEnergy

Research. 1(1): 20-43.

Schwenk, D., Seppälä, J., Spilling, K., Virkki, A., Tamminen, T., Oksman-Caldentey, K.M., Rischer,

H. 2013. Lipid content in 19 brackish and marine microalgae: influence of growth phase, salinity

and temperature. Aquatic Ecology. 47(4): 415-424.

Song, M., Pei, H., Hu, W., Ma, G. 2013. Evaluation of the potential of 10 microalgal strains for

biodiesel production. Bioresource Technology. 141: 245-251.

Tang, H., Abunasser, N., Garcia, M.E.D., Chen, M., Simon Ng, K.Y., Salley, S.O. 2011. Potential of

microalgae oil from Dunaliella tertiolecta as a feedstock for biodiesel. Applied Energy. 88(10):

3324-3330.

Takagi, M., Karseno, Yoshida, T. 2006. Effect of salt concentration on intracellular accumulation of

lipidsand triacylglycerides in marine microalgae Dunaliella cells. Bioscience and Bioeneginering.

3: 223-226.

Talebi, A.F., Mohtashami, S.K., Tabatabaei, M., Tohidfar, M., Bagheri, A., Zeinalabedini, M.,

Bakhtiari, S. 2013a. Fatty acids profiling: A selective criterion for screening microalgae strains for

biodiesel production. Algal Research. 2(3): 258-267.

Talebi, A.F., Tabatabaei, M., Mohtashami, S.K., Tohhifar, M., Moradi, F. 2013b. Comparative salt

stress study on intracellular ion concentration in marine and salt-adapted freshwater strains of

microalgae. Notulae Scientia Biologicae. 5: 309-315.

Thompson, G.A. 1994. Mechanisms of osmoregulation in the green alga Dunaliella salina.

Experimintal Zoology. 268: 127-132.

Tornabene, T.G., Holzer, G., Peterson, S.L. 1980. Lipid profile of the halophilic alga, Dunaliella

salina. Biochemical and Biophysical Research Communications. 96(3): 1349-1356.

Vanitha, A., Narayan, M.S., Murthy, K.N.C., Ravishankar, G.A. 2007. Comparative study of lipid

composition of two halotolerant alga, Dunaliella bardawil and Dunaliella salina. International

Journal of Food Sciences and Nutrition. 58(5): 373-382.

Venkata Mohan, S., Devi, M.P. 2014. Salinity stress induced lipid synthesis to harness biodiesel

during dual mode cultivation of mixotrophic microalgae. Bioresource Technology. 165(0): 288-

294.

Viron, C., Saunois, A., André, P., Perly, B., Lafosse, M. 2000. Isolation and identification of

unsaturated fatty acid methyl esters from marine micro-algae. Analytica Chimica Acta. 409(1–2):

257-266.

Vo, T., Tran, D. 2014. Effects of salinity and light on growth of Dunaliella Isolates. Journal of

Applied and Environmental Microbiology. 2(5): 208-211 .

Walne, P. 1970. Studies on the food value of nineteen genera of algae to juvenile bivalves of the

genera Ostrea, Crassostrea, Mercenaria, and Mytilis. Fish Invest. 26: 1-62.

Wan, C., Bai, F.W., Zhao, X.Q. 2013. Effects of nitrogen concentration and media replacement on cell

growth and lipid production of oleaginous marine microalga Nannochloropsis oceanica DUT01.

Biochemical Engineering Journal. 78(0): 32-38.

Xu, X.Q., Beardall, J. 1997. Effect of salinity on fatty acid composition of a green microalga from an

antarctic hypersaline lake. Phytochemistry. 45(4): 655-658.

Dow

nloa

ded

from

jae.

horm

ozga

n.ac

.ir a

t 7:5

0 +

0330

on

Thu

rsda

y O

ctob

er 7

th 2

021