fenologia de sementes.pdf
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ÁREA AGROPECUARIA Y DE
RECURSOS NATURALES RENOVABLES
CARRERA DE INGENIERÍA FORESTAL
“FENOLOGÍA Y GERMINACIÓN DE ESPECIES
NATIVAS DEL BOSQUE ANDINO EN LA
COMUNA COLLANA-CATACOCHA, PROVINCIA
DE LOJA”
AUTORES:
Alexandra Cecilia Condoy Macas Clemencia Margarita Herrera Herrera
DIRECTOR:
Nikolay Aguirre Mendoza Ph. D.
LOJA – ECUADOR 2011
TESIS DE GRADO PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA FORESTAL.
UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA
ii
FENOLOGÍA Y GERMINACION DE ESPECIES NATIVAS DEL BOSQUE
ANDINO EN LA COMUNA COLLANA-CATACOCHA, PROVINCIA DE
LOJA
TESIS DE GRADO
Presentada al Tribunal Calificador como requisito parcial para la obtención del
título de:
INGENIERA FORESTAL
EN LA:
CARRERA DE INGENIERÍA FORESTAL
ÁREA AGROPECUARIA DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES
UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA
APROBADA:
Ing. Jorge García L, Mg. Sc. ………………………………..
PRESIDENTE
Ing. Luis Sinche F, Mg. Sc. ………………………………..
VOCAL
Ing. Hugo Sáenz F, Mg. Sc ………………………………..
VOCAL
iii
Ing. Nikolay Aguirre Mendoza, Ph.D.
CERTIFICA:
En calidad de Director de la tesis titulada “FENOLOGÍA Y GERMINACIÓN DE
ESPECIES NATIVAS DEL BOSQUE ANDINO EN LA COMUNA COLLANA-
CATACOCHA, PROVINCIA DE LOJA”; de autoría de las señoras egresadas de
la Carrera de Ingeniería Forestal Alexandra Cecilia Condoy Macas y
Clemencia Margarita Herrera Herrera, ha sido dirigida, revisada y aprobada en
su integridad; por lo que autorizo su presentación y publicación.
Loja, enero del 2011
Atentamente,
Ing. Nikolay Aguirre Mendoza. Ph.D.
DIRECTOR DE TESIS
iv
Ing. Jorge García L, Mg. Sc.
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL CALIFICADOR DE LA TESIS “FENOLOGÍA Y
GERMINACIÓN DE ESPECIES NATIVAS DEL BOSQUE ANDINO EN LA
COMUNA COLLANA-CATACOCHA, PROVINCIA DE LOJA”
CERTIFICA:
Que en calidad de Presidente del Tribunal de Calificación de la Tesis titulada
“FENOLOGÍA Y GERMINACIÓN DE ESPECIES NATIVAS DEL BOSQUE
ANDINO EN LA COMUNA COLLANA-CATACOCHA, PROVINCIA DE LOJA”,
de autoría de las señoras egresadas de la Carrera de Ingeniería Forestal
Alexandra Cecilia Condoy Macas y Clemencia Margarita Herrera Herrera,
ha sido dirigida, revisada e incorporadas todas las sugerencias efectuadas por
el Tribunal Calificador, y luego de su revisión se ha procedido a la respectiva
calificación y aprobación. Por lo tanto autorizo su publicación pública definitiva.
Loja, enero del 2011
Atentamente,
Ing. Jorge García L. Mg. Sc.
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL CALIFICADOR
v
AUTORÍA
LAS OPINIONES PUBLICADAS EN LA PRESENTE
INVESTIGACIÓN SON DE EXCLUSIVA RESPONSABILIDAD
DE LAS AUTORAS
…………………………………… ………………………………………
Alexandra Cecilia Condoy M. Clemencia Margarita Herrera H.
vi
DEDICATORIA
A mis padres por ser pilares
fundamentales en mi vida, ejemplo
de trabajo y constancia, quienes me
han brindado todo el apoyo para
alcanzar mis metas; a Patricio por su
permanente colaboración; a los seres
que más amo Andy Alexander y
Ander Patricio por ser la fuente de
inspiración y motivación de
superación. A todos mis familiares
por facilitarme los medios para la
finalización de este trabajo.
Alexandra
Con mucho amor a mis padres por
haberme orientado, formado y
apoyado de manera incondicional; a
mi esposo Raúl por su apoyo moral;
a mis hijos Christian Gabriel y
Whitney Alejandra por ser ellos
quienes me motivan a seguir
superándome. Con inmensa gratitud
a mis hermanos y de manera
especial a REY (+) compadre-amigo
que desde el cielo me protege, a mis
sobrinos y demás familiares; y,
amigos que en cada momento
estuvieron siempre presentes para
darme fuerzas a seguir adelante y
llegar a su feliz culminación. Por ello
y para ellos mi esfuerzo.
Clemencia
vi
AGRADECIMIENTOS
Las autoras dejamos constancia de un agradecimiento muy especial a:
La Universidad Nacional de Loja, al Área Agropecuaria y de Recursos Naturales
Renovables, a través de la Carrera de Ingeniería Forestal y a sus excelentes
docentes por haber contribuido con los conocimientos teóricos-técnicos para
nuestra formación profesional.
Al Dr. Nikolay Aguirre director de nuestra tesis, a la Coordinación de
Investigaciones del Área Agropecuaria por el apoyo logístico, a la administración
del Laboratorio de Fisiología Vegetal e invernadero de la Universidad Nacional
de Loja.
De igual forma un agradecimiento al personal que labora en el Herbario Reinaldo
Espinosa; a los ingenieros: José Merino, Edmigio Valdivieso, Francisco Guamán,
Luis Sinche, Zhofre Aguirre, Oswaldo Condoy y al técnico Miguel Lalangui; por
el apoyo en el trabajo de campo, comentarios y sugerencias.
En fin, a toda nuestra familia y amigos que de una u otra manera nos apoyaron
de forma desinteresada en el desarrollo y culminación de la presente
investigación.
vii
INDICE GENERAL
CARÁTULA……………………………………………………………….………………i
CERTIFICACIÓN……………………………………………………………….……….iii
AUTORÍA………………………………………………………………………...………iv
DEDICATORIA………………………………………………………………………….vi
AGRADECIMIENTO……………………………………………………………………vii
RESUMEN……………………………………………………………...………………xiv
SUMARY……………………………………………………………………………….xvii
1. INTRODUCCION……………………………………………..………………………1
2. REVISION DE LITERATURA………………………………………......................4
2.1. ASPECTOS SOBRE FENOLOGIA……………………….……....……………..4
2.1.1. Importancia……………………………………...…………………….………….4
2.1.2. Fenómenos que estudia la Fenología en las plantas………………….….…5
2.1.2.1. Defoliación…………………………….……………………………..………....5
2.1.2.2. Brotación……………………………………………………………………....5
2.1.2.3. Floración……………………………………………………………….…….....5
2.1.2.4. Fructificación…………………………………………………………..............5
2.1.3. Acontecimientos Fenológicos y Elementos de tiempo……………………....6
2.1.3.1. Fase……………………………………………………………………..……....6
2.1.3.2. Fechas……………………………………………………………………...…..6
2.1.4. Principales causas de los Fenómenos periódicos de los vegetales……….6
2.1.5. Influencia de algunos factores del clima en las fases fenológicas………...7
2.1.5.1. La temperatura………………………………………………………………....7
2.1.5.2. La precipitación………………………………………………………………...8
2.1.6. La Observación Fenológica……………………………………………………..9
2.2. LAS SEMILLAS…………………………………………………………………...10
2.2.1. Características generales de las semillas forestales……………………….10
2.2.1.1. Tamaño y peso……………………………………………………………….10
2.2.1.2. Forma………………………………………………………………………….11
2.2.1.3. Aspecto externo………………………………………………………..……..11
2.2.1.4. Color……………………………………………………………………….......11
2.2.2. Características generales de los árboles semilleros………………………..11
viii
2.2.3. Recolección de las semillas forestales…………………………………….…11
2.2.3.1. Métodos de recolección…………………………………………………..…11
2.2.3.2. Época de recolección……………………………………………………..…12
2.2.3.3. Equipo utilizado……………………………………………………………....12
2.3. LA GERMINACIÓN……………………………………………………………....13
2.3.1. Condiciones Ambientales Necesarias para la Germinación…………….…13
2.3.1.1. Humedad…………………………………………………………………..….13
2.3.1.2. Temperatura………………………………………………………………..…13
2.3.1.3. Oxígeno…………………………………………………………………….....14
2.3.1.4. Luminosidad………………………………………………………………..…14
2.3.2. Normas Internacionales para el Análisis de Semillas en Laboratorio…….14
2.3.2.1. Pureza……………………………………………………………………....…14
2.3.2.2. Pesaje internacional………………………………………………………....14
2.3.2.3. Vitalidad o viabilidad…………………………………………………………15
2.3.2.4. Contenido de humedad……………………………………………………...15
2.3.2.5. Capacidad germinativa………………………………………………………15
2.4.TRATAMIENTOS GENERALES APLICADOS A LAS SEMILLAS
FORESTALES………………………………………………………………..…..........16
2.4.1. Tratamiento Físico……………………………………………………………...16
2.4.2. Tratamiento Mecánico…………………………………………………….......17
2.4.3. Tratamiento Químico…………………………………………………………...17
2.5. PRODUCCIÓN DE PLANTAS A NIVEL DE VIVERO. ………………………17
2.5.1. Eras de Germinación……………………………………………………….….17
2.5.1.1. Sustrato…………………………………………………………………….....18
2.5.1.2. Métodos de Siembra……………………………………………………..…..18
2.6. DESCRIPCIÓN TAXONÓMICA DE LAS ESPECIES EN ESTUDIO……….19
2.6.1. Bursera graveolens………………………………………………………….....19
2.6.2. Ficus insípida………………………………………………………………..….19
2.6.3. Ficus maroma………………………………………………………………..….20
2.6.4. Lafoencia acuminata……………………………………………………….…..20
2.6.5. Mimosa townsendii…………………………………………………………......21
2.6.6. Persea caerulea………………………………………………………………...21
2.6.7. Senna mollísima…………………………………………………………….….22
2.6.8. Styrax subargentae……………………………………………………………22
ix
3. METODOLOGÍA…………………………………………………………….……...23
3.1. UBICACIÓN DEL ÁREA EN ESTUDIO………………………………..……….23
3.2. DETERMINACIÓN DE LA FENOLOGÍA EN LAS OCHO ESPECIES
PRESENTES EN LAS VERTIENTES DE LA COMUNA COLLANA –
CATACOCHA…………………………………………………………………..………25
3.2.1. Selección y marcación de los árboles semilleros………………………..…25
3.2.2. Registro y evaluación de los datos fenológicos……………………………..25
3.2.3. Determinación de los porcentajes de floración y fructificación de las
especies evaluadas…………………………………………………………….……...26
3.2.4. Elaboración de dendrofenogramas……………………………………….…..26
3.2.5. Calendario fenológico…………………………………………………….……27
3.2.6. Recolección y caracterización de frutos y semillas…………………….…...27
3.2.7. Almacenamiento de la Semilla………………………………………………..27
3.3. DETERMINACIÓN DEL POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD
GERMINATIVA DE LAS SEMILLAS A NIVEL DE LABORATORIO CON BASE A
LAS NORMAS ISTA Y VIVERO……………………………………………...………27
3.3.1. Determinar el Potencial Productivo………………………………….….........28
3.3.2. Evaluación de la Capacidad Germinativa de las Semillas en
Laboratorio……………………………………………………………………………...29
3.3.2.1. Determinación de la calidad física de las semillas según Normas
ISTA……………………………………………………………………………………..29
3.3.3. Evaluación de la capacidad germinativa de las semillas a nivel de
vivero…………………………………………………………………………………....33
3.3.3.1. Adecuación del invernadero……………………………………………..….33
3.3.3.2. Sustrato…………………………………………………………………….….34
3.3.3.3. Tratamientos pre-germinativos y germinación de las semillas……….....34
3.4. DIFUSIÓN DE RESULTADOS…………………………………………….…....37
4.RESULTADOS………………………………………………………………….…...39
4.1. FENOLOGÍA………………………………………………………………..……..39
4.1.1. Fenofases y fendrofenogramas…………………………………………..…..40
4.1.1.1. Bursera graveolens……………………………………………………..……40
4.1.1.2. Ficus insípida……………………………………………………………..…..41
4.1.1.3. Ficus maroma…………………………………………………………..…….41
4.1.1.4. Lafoencia acuminata……………………………………………………...….42
x
4.1.1.5. Mimosa townsendii………………………………………………………...…42
4.1.1.6. Persea caerulea…………………………………………………………..….43
4.1.1.7. Senna mollísima………………………………………………………...……44
4.1.1.8. Styrax subargentae………………………………………………………..…44
4.1.2. Calendario fenológico……………………………………………………….....45
4.2. POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD GERMINATIVA DE LAS
SEMILLAS………………………………………………………………………………46
4.2.1. Potencial productivo de las especies en estudio………………………..…..46
4.2.2. Recolección y caracterización de frutos y semillas……………………..…..47
4.2.2. Capacidad germinativa de las semillas a nivel de Laboratorio con base a
las Normas ISTA……………………………………………………………………….47
4.2.3.1. Calidad física de la semilla……………………………………………….…47
4.2.3.2. Germinación a nivel de laboratorio………………………………….….…..48
4.2.3. Capacidad germinativa de las semillas a nivel de invernadero……….…..57
4.2.3.1. Tratamientos Pre-germinativos…………………………….………….……57
4.2.4.2. Ensayos de germinación a nivel de invernadero……………………..…..57
5. DISCUSIÓN……………………………………………………………………..…..66
5.1. FENOLOGÍA………………………………………………………………..….….66
5.2. POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD GERMINATIVA DE LAS
SEMILLAS……………………………………………………………………………...68
6. CONCLUSIONES…………………………………………………………………..73
7. RECOMENDACIONES………………………………………………………….....74
8. LITERATURA CITADA………………………………………………………….…75
9. APÉNDICES………………………………………………………………………...80
xi
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro 1. Tratamientos pre-germinativos aplicados a las especies en
estudio…………………………………………………………………………………..32
Cuadro 2. Total de individuos florecidos y fructificados en las especies
estudiadas en cada uno de los ocho sitios………………………………………….39
Cuadro 3. Calendario fenológico…………………………….………………………45
Cuadro 4. Potencial productivo por árbol semillero de las especies en estudio por
lugar………………………………………………………………………………… …46
Cuadro 5. Caracterización de frutos y semillas…………………………………….47
Cuadro 6. Calidad física de la semilla según las normas internacionales
(ISTA)………………………………………………………………………………….48
Cuadro 7. Porcentajes de germinación promedios por especie para cada
tratamiento aplicado a nivel de laboratorio…………………………………………49
Cuadro 8. Porcentajes de germinación promedios por especie para cada
tratamiento aplicado a nivel de invernadero………………………………………..57
xii
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Árbol y frutos de Bursera graveolens………………………………..…..19
Figura 2. Árbol y frutos de Ficus insípida…………………………….……………..19
Figura 3. Árbol y frutos de Ficus maroma…………………………………………..20
Figura 4. Árbol y frutos de Lafoencia acuminata………………………………..….20
Figura 5. Árbol y frutos de Mimosa townsendii………………………………..……21
Figura 6. Árbol y frutos de Persea caerulea…………………………………….….21
Figura 7. Árbol y frutos de Senna mollísima………………………………….……22
Figura 8. Árbol y frutos de Styrax subargentae……………………………….……22
Figura 9. Mapa de ubicación del área de estudio………………………….……….24
Figura 10. Peso de semillas de Ficus insípida…………………………………......30
Figura 11. Germinador digital…………………………………………………….…..32
Figura 12. Preparación del sustrato………………………….…………..................34
Figura 13. Desinfección del sustrato………………………………………….…….34
Figura 14. Siembra de semillas de Lafoencia acuminata……………………..…..35
Figura 15. Diseño simple al azar……………………………………………………36
Figura 16. Difusión de resultados a los comuneros…………………………….…37
Figura 17. Difusión de resultados en el invernadero con los estudiantes del
octavo módulo de la Carrera de Ingeniería Forestal………………………………38
Figura 18. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Bursera
graveolens……………………………………………………………………………..40
Figura 19. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Ficus
insípida………………………………………………………………………………....41
Figura 20. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Ficus
maroma………………………………………………………………………………...41
Figura 21. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Lafoencia
acuminata……………………………………………………………………….…….42
Figura 22. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Mimosa
townsendii……………………………………………………………………….…….42
Figura 23. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Persea
caerulea………………………………………………………………………………..43
xiii
Figura 24. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Senna
mollísima………………………………………………………………………………..44
Figura 25. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Styrax
subargentae……………………………………...………………………………….….44
Figura 26. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Bursera graveolens a nivel de laboratorio………………………………………..…49
Figura 27. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Ficus insípida a nivel de laboratorio………………………………………………….50
Figura 28. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Ficus maroma a nivel de laboratorio…………………………………………………51
Figura 29. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Lafoencia acuminata a nivel de laboratorio…………………………………..……..52
Figura 30. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Mimosa townsendii nivel de laboratorio………………………………………….….53
Figura 31. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Persea caerulea a nivel de laboratorio………………………………………………54
Figura 32. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Senna mollísima a nivel de laboratorio………………………………………….…..55
Figura 33. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Styrax subargentae a nivel de laboratorio………………………………………..…56
Figura 34. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Ficus insípida………………………………………...58
Figura 35. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Ficus maroma………………………………………...59
Figura 36. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Lafoencia acuminata………………………………....60
Figura 37. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Mimosa townsendii………………………………...…61
Figura 38. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Persea caerulea…………………………………..….62
Figura 39. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Senna mollísima…………………………………..….63
Figura 40. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado en
invernadero para la especie Styrax subargentae………………………………..…64
xiv
RESUMEN
El presente estudio responde a la necesidad de conocer la germinación de ocho
especies forestales nativas del bosque andino, como especies protectoras de
vertientes. Este trabajo se lo realizo en parte con el apoyo logístico de la
Coordinación de investigaciones del Área Agropecuaria de la Universidad
Nacional de Loja, mediante el proyecto “Fenología y germinación de especies
nativas del Bosque Andino en la comuna Collana-Catacocha, provincia de Loja”;
teniendo como objetivos específicos: a) Determinar la fenología de ocho
especies nativas ya identificadas, presentes en las ocho vertientes comprendidas
entre 1 400 a 2 000 msnm de la Comuna Collana Catacocha; b) Determinar el
potencial productivo y evaluar la capacidad germinativa de las semillas a nivel de
laboratorio con base a las Normas ISTA y vivero; c) Difundir los resultados a los
comuneros de la Comuna Collana-Catacocha.
El estudio se realizo en tres fases: la fase de campo fue llevada a cabo en la
comuna Collana-Catacocha ubicada en el Cantón Paltas, provincia de Loja; la
fase de laboratorio realizada en el Laboratorio de Fisiología Vegetal
perteneciente al Área Agropecuaria y Recursos Naturales Renovables y la fase
de vivero llevada a cabo en el invernadero de la Universidad Nacional de Loja.
La toma de datos fenológicos se los realizo quincenalmente, durante el lapso de
un año calendario, iniciando en el mes de enero del 2009 y finalizando en
diciembre del mismo año, con la finalidad de observar sus fases fenológicas y
relacionándolas a su vez con los factores de precipitación-temperatura. El
estudio se lo realizo con ocho especies nativas: Bursera graveolens, Ficus
insípida, Ficus maroma, Lafoencia acuminata, Mimosa townsendii, Persea
caerulea, Senna mollisima y Styrax subargentae, para lo cual se trabajo con un
numero de setenta individuos. En cada una de las especies evaluadas se
realizaron análisis físicos de las semillas, los que incluyeron: pureza, peso de
semilla y contenido de humedad.
Como resultado se obtuvo que: Bursera graveolens tiene su época de floración
en los meses de Octubre-Marzo y su fructificación de Marzo-Julio. Ficus insípida
xv
presento tres etapas de floración: la primera en los meses de Marzo-Abril, la
segunda en Mayo-Septiembre y la tercera Octubre-Febrero; su periodo de
fructificación lo realizó entre los meses Enero-Marzo, Abril-Junio y Julio-
Diciembre. Ficus maroma presenta dos épocas de floración en Enero-Mayo,
Julio-Noviembre y fructificación en Mayo-Septiembre, Octubre-Febrero.
Lafoencia acuminata presenta su floración entre Octubre-Marzo y fructifica para
Marzo-Agosto. Para Mimosa townsendii estos periodos se presentaron en
Noviembre-Abril (floración) y en Marzo-Septiembre (fructificación). Los periodos
de floración y fructificación para Persea caerulea se presentaron en los meses
de Mayo-Octubre y Agosto-Diciembre respectivamente. Sena mollisima florece
en Diciembre-Abril y fructifica en Abril-Septiembre. Styrax subargentae tiene
su época de floración en los meses de Junio-Septiembre y su fructificación de
Septiembre-Diciembre.
De las especies estudiadas se determinó que: Lafoencia acuminata presentó el
mayor potencial productivo (36590 gr de semilla), Persea caerulea posee el
porcentaje más alto de pureza (94,5 %) y de contenido de humedad (29,1 %); y,
el peso más alto por cada 1000 semillas es Styrax subargentae (555,6 gr).
Las fases de laboratorio e invernadero se realizaron durante un periodo de 1 a 3
meses, a una temperatura de 22 ºC y humedad relativa entre el 65 % y 67 %,
probando tratamientos pre-germinativos: mecánico (corte de testa) y químico
(nitrato de potasio, ácido giberélico y ácido sulfúrico) para evaluar la capacidad
germinativa de la ocho especies, aplicando el diseño simple al azar y para
establecer la existencia de diferencia significativa entre los tratamientos
ensayados en cada una de las especies se aplicó la prueba de Tukey (Ft= 0,01 y
0,05).
A nivel de laboratorio la especie que mayor porcentaje de germinación obtuvo
con todos los tratamientos incluido el testigo fue Ficus insípida (100 %),
mientras que Bursera graveolens no presentó germinación con el testigo y Styrax
subargentae con ácido sulfúrico.
xvi
A nivel de invernadero la especie con mayor porcentaje de germinación fue Ficus
maroma (75,5 %-100 %) con todos los tratamientos, a diferencia de Bursera
graveolens que no presentó germinación alguna.
Dado que los tratamientos aplicados en la germinación de las semillas no
marcan gran diferencia significativa estadísticamente con relación al testigo
(Agua destilada); se recomienda la aplicación del testigo debido a que se puede
obtener buenos resultados: por su forma de uso, por su valor económico que es
relativamente bajo y además es fácil de adquirirlo comparado con los
tratamientos químicos.
xvii
SUMMARY
The present study responds to the necessity of knowing the germination of eight
forest native species of the Andean forest, as species protectors of slopes. This
work is carried out partly with the logistical support of the Coordination of
investigations of the Agricultural Area of the National University of Loja, by means
of the project "Phenology and germination of native species of the Andean Forest
in the commune Collana-Catacocha, province of Loja”; having as specific
objectives: a) to determine the phenology of eight native species identified,
present in the eight slopes understood among 1 400 to 2 000 m s.n.m. of the
Collana-Catacocha Commune; b) to determine the productive potential and to
evaluate the germinative capacity from the seeds to laboratory level with base to
the Norms ISTA and nursery; c) to diffuse the results to the comuneros of the
Collana-Catacocha Commune.
The study was carried out in three phases: the field phase was carried out in the
commune Collana-Catacocha located in the Canton Paltas, province of Loja; the
laboratory phase carried out in the Laboratory of Vegetable Physiology belonging
to the Agricultural Area and Natural Renewable Resources and the nursery
phase carried out in the greenhouse of the National University of Loja.
The taking of phenology data is carried out every fifteen days, during the lapse of
one year calendar, beginning in the month of January of the 2009 and concluding
in December of the same year, with the purpose of observing their phenologys
phases and relating them in turn with the factors of precipitation-temperature. The
study is carried out with eight native species: Bursera graveolens, Ficus insipida,
Ficus maroma, Lafoencia acuminata, Mimosa townsendii, Persea caerulea,
Senna mollisima and Styrax subargentae, which we worked with a number of
seventy individuals. In each one of the evaluated species were carried out
physical analysis of the seeds, those that included: purity, seed weight and
content of humidity.
As a result we obtained that: Bursera graveolens has its floration time in the
months of October-March and its fructification of March-Julio. Ficus insipida
xviii
presents three floration stages: the first one in the months of March-April, the
second in May-September and the third October-February; its period of
fructification was carried out amongst the months of January-March, April-June
and Julio-December. Ficus maroma presents two floration times in January-May,
Julio-November and fructification in May-September, October-February.
Lafoencia acuminata presents its floration among October-March and it fructifies
for March-August. For Mimosa townsendii these periods showed up in
November-April (floration) and in March-September (fructification). The periods of
floration and fructification for Persea caerulea showed up respectively in the
months of May-October and August-December. Senna mollisima flourishes in
December-April and it fructifies in April-September. Styrax subargentae has its
floration time in the months of June-September and its fructification of
September-December.
Of the studied species it was determined that: Lafoencia acuminata presented
the productive (36590 seed gr) biggest potential, Persea caerulea it possesses
the highest percentage in purity (94,5%) and of content of humidity (29,1%); and,
the highest weight for each 1000 seeds is Styrax subargentae (555,6 gr).
The laboratory phases and greenhouse were carried out during one period from
1 to 3 months, to a temperature of 22 ºC and relative humidity between 65% and
67%, proving pre-germinative treatments: mechanic (cut of head) and chemist
(nitrate of potassium, acid giberelic and sulfuric acid) to evaluate the germinative
capacity of the eight species, applying the simple design at random and to
establish the existence of significant difference among the treatments rehearsed
in each one of the species the test of Tukey (Ft = 0,01 and 0,05) was applied.
At laboratory level the species that bigger germination percentage obtained with
all the included treatments, even the witness, was Ficus insipida (100%), while
Bursera graveolens didn't present germination with the witness and Styrax
subargentae with sulfuric acid.
xix
At greenhouse level the species with more germination percentage was (75,5% -
100%) with all the treatments, contrary to Bursera graveolens that didn't present
no germination.
Since the treatments applied in the germination of the seeds don't mark
significant great difference statistically with relationship to the witness (distilled
water); we recommended the application of the witness since we can obtain good
results: for the form of its use, for its economic value that is relatively low and is
also easy to acquire compared with the chemical treatments
1
1. INTRODUCCIÓN
Los recursos naturales en el Sur del Ecuador se ven afectados por las malas
prácticas agropecuarias, que han ocasionado la ampliación de la frontera
agrícola, compactación de suelos, incendios forestales, introducción de especies
exóticas, deforestación hasta las vertientes; factores que han puesto en riesgo a
la biodiversidad, afectando principalmente al recurso agua tanto en calidad como
en cantidad, al ser un elemento vital para el desarrollo de las especies.
En el cantón Paltas de la provincia de Loja, las vertientes de agua constituyen
uno de los ámbitos prioritarios de conservación, ya que de este líquido vital de
consumo humano y riego se abastecen los centros poblados y sus
comunidades que por su baja concentración de especies arbóreas como
arbustivas a lo largo de las cuencas han producido la disminución de caudales
de agua en sus nacientes (Valdivieso, 2007).
El desconocimiento sobre la reproducción de los árboles que están en vertientes,
principalmente sobre las épocas propicias de recolección de semillas y su
germinación son series limitantes para emprender reforestaciones y protección a
las vertientes, en estas áreas donde se ha visto que las especies Ficus insípida,
Ficus maroma, Styrax subargentae, Persea caerulea, Lafoencia acuminata,
Senna mollísima, Mimosa townsendii y Bursera graveolens no tienen
regeneración natural, que garantice el incremento de estos remanentes
boscosos y la protección de estas vertientes de agua. Por tal motivo y para
apoyar a la protección, conservación y manejo de las vertientes se hace
necesario llevar a cabo la presente investigación que aportará con los
conocimientos necesarios acerca de la fenología y germinación de las semillas
de estas especies, permitiendo que se disponga de una información para una
multiplicación masiva y dar el manejo adecuado a las especies que existen en
las vertientes.
Por ende en la Comuna Collana-Catacocha es necesario establecer un estudio
de carácter fenológico y germinativo de semillas, con las ocho especies arbóreas
2
ubicadas en las vertientes con muy poca información sobre su ecología y
propagación, ya que existe una carencia de conocimientos y estudios técnicos
realizados debido a la falta de investigaciones relacionadas con ésta temática, al
mismo tiempo no hay instituciones ni técnicos que trabajen esta problemática
forestal de manejo, conservación y restauración de vertientes.
Existe conocimiento campesino, sobre las ventajas de los árboles que a su
criterio “llaman el agua”, porque son árboles grandes con muchas ramas, tienen
raíces grandes y profundas, producen sombra para que corra y no se evapore el
agua ya que siempre se los encuentra en las vertientes (Valdivieso, 2007).
Desde ésta perspectiva se propone investigar el proceso reproductivo para
futuras repoblaciones en vertientes; para lo cual se creará una base de datos
fenológicos el mismo que nos dará a conocer el tiempo de recolección de frutos
y semillas para posteriormente hacerlas germinar cuyo fin es atraer, sostener y
proteger el recurso agua en esta comuna; evitando que estas especies valiosas
por su utilidad en un futuro se vean amenazadas o en peligro de extinción.
Es muy importante conocer, los requerimientos para la germinación de las
semillas, la facilidad de colecta de las mismas, procesamiento y las condiciones
adecuadas para el almacenamiento de éstas, la tolerancia a las condiciones
ambientales extremas y las relaciones competitivas que pueden ocurrir con otras
especies, entre otros aspectos (Vázquez-Yanes y Batis, 1996). Al alcanzar la
semilla su punto máximo de madurez, se inicia un periodo de letargo producido
por factores internos y externos, que normalmente se interrumpe cuando se
presentan las condiciones adecuadas para la germinación. Sin embargo, en
ocasiones las semillas no germinan o lo hacen lentamente, debido algún grado
de letargo o reposo (estado en el cual una semilla viable es incapaz de activar e
iniciar su proceso de germinación, a pesar de tener condiciones de agua,
temperatura, etc., apropiadas para tal efecto) (Triviño et al., 1990).
Para el desarrollo del presente trabajo de investigación se plantearon los
siguientes objetivos:
3
Objetivo general:
Conocer la fenología y el porcentaje de germinación a nivel de
laboratorio y vivero de las especies: Bursera graveolens, Ficus insípida,
Ficus maroma, Lafoencia acuminata, Mimosa townsendii, Persea
caerulea, Senna mollísima y Styrax subargentae, presentes en las
ocho vertientes comprendidas entre los 1 400 a 2 000 m s.n.m. de la
Comuna Collana-Catacocha.
Objetivos específicos:
Determinar la fenología de las especies Ficus insípida, F. maroma,
Styrax subargentea, Persea caerulea, Lafoencia acuminata, Senna
mollísima, Mimosa townsendii y Bursera graveolens, presentes en las
ocho vertientes comprendidas entre 1 400 a 2 000 m s.n.m. de la
Comuna Collana-Catacocha.
Determinar el potencial productivo y evaluar la capacidad germinativa
de las semillas a nivel de laboratorio con base a las Normas ISTA y
vivero.
Difundir los resultados a los comuneros de la Comuna Collana-
Catacocha.
4
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. ASPECTOS SOBRE FENOLOGÍA
La palabra fenología proviene del griego “Fenos” que significa fenómeno “Logos”
estudio o tratado. En consecuencia es el estudio de los fenómenos periódicos
de la naturaleza en relación a la marcha anual de los elementos meteorológicos.
La fenología es el estudio de los fenómenos periódicos de los seres vivos y sus
relaciones con las condiciones ambientales de luz, temperatura, humedad, etc.
(Torres, 1983).
El término fenología es una forma contractada de fenomenología, rama de la
ecología que estudia las relaciones entre las condiciones ambientales
(temperatura, luz, humedad, etc.) y los fenómenos o acontecimientos periódicos
en la vida vegetal y animal (Castillo y Sentís, 1996).
Es el estudio de los fenómenos biológicos acomodados a cierto ritmo periódico,
como la brotación, la florescencia, la maduración de los frutos, etc. Como es
natural éstos fenómenos se relacionan con el clima de la localidad, en que
ocurren y viceversa (Font Quer, 1953).
2.1.1. Importancia
Los estudios fenológicos de los árboles son importantes no solo por la
comprensión de la dinámica de las comunidades forestales, sino también como
un comunicador de la respuesta de estos organismos a las condiciones edáficas
y climáticas de una zona. Los estudios permiten prever la época de
reproducción de los árboles, su ciclo de crecimiento vegetativo, los periodos
mejores para su propagación ya sea por estacas, injerto y para polinizaciones,
en programas de mejoramiento genético. Además, en otros campos permiten
una mejor comprensión de las cadenas alimenticias de la fauna silvestre.
5
CESA (1992), señala que las observaciones fenológicas ayudan a descubrir los
secretos del ciclo vegetativo de cada especie en distintos sitios altitudinales y
climas.
Por su ubicación geográfica en el Ecuador la vegetación no tiene ciclo de
floración y fructificación tan marcado como en zonas más alejadas de la línea
ecuatorial, sin embargo se puede determinar épocas principales de recolección
de semillas según altitudes, sitios y regiones.
2.1.2. Fenómenos que estudia la Fenología en las plantas
2.1.2.1. Defoliación
Es el desprendimiento natural de las hojas, principalmente de los árboles y
arbustos; debido a cambios bruscos en el ambiente o provocada por plagas e
insectos (Font Quer, 1953).
2.1.2.2. Brotación
Fournier (1976) enuncia que la brotación es un fenómeno en el que se
desarrollan brotes en las yemas terminales de la planta para iniciar la nueva
hoja.
2.1.2.3. Floración
Es el desarrollo de las flores, desde el momento de la antesis de las más
precoces hasta la marchitez de las más tardías, de un individuo vegetal o de una
especie, considerada en una determinada localidad (Font Quer, 1953).
2.1.2.4. Fructificación
6
Fuller (1969), citado por Ríos y Ríos (2000) señala que este fenómeno
comprende la aparición inicial del fruto y su retención hasta la madurez, el fruto
es fértil cuando produce semillas viables.
La fructificación es influida por varios factores externos como: los nutrientes,
podas, injertos aspersiones hormonales, la localidad, la estación, la edad, el
vigor de las plantas y, diferentes factores abióticos y su relación en las diferentes
fases.
2.1.2. Acontecimientos Fenológicos y Elementos de tiempo
2.1.2.1. Fase
Es la aparición, transformación o desaparición rápida de los órganos de la planta
(De La Fina y Ravelo, 1985).
Dado que entre La sucesión de fenómenos meteorológicos y la sucesión de las
fases de las especies vegetales debe existir una exacta coincidencia de
condiciones climáticas, se dice que las plantas en fenología desempeñas un
papel análogo al de los aparatos registradores en meteorología.
2.1.2.2. Fechas
La anotación de una fecha en que se produce una determinada fase, se
denomina fenodata. En fenología se trazan las isofenas, que son líneas que
unen puntos donde un fenómeno de la naturaleza (fase) tiene lugar en la misma
fecha (Maldonado, 1978 citado por Salinas y Cueva, 1982).
2.1.3. Principales causas de los Fenómenos periódicos de los
vegetales.
Se ha determinado que los elementos del clima que más influencia ejercen son
los siguientes:
La variación de la temperatura a través del año.
La variación periódica de la duración del día.
7
El régimen pluviométrico.
Según investigaciones, la temperatura y la duración del día, en estrecha
vinculación, tendrían una acción preponderante (De La Fina y Ravelo, 1985).
2.1.4. Influencia de algunos factores del clima en las fases
fenológicas.
La zona montañosa andina, que tiene entre 100 a 120 Km de ancho y como 700
Km de largo en el Ecuador, recorre el territorio de norte a sur y está formada por
tres importantes conjuntos que son: La cordillera occidental, la fosa interandina y
la cordillera real u oriental. Las dos cordilleras andinas están alineadas en el
territorio de manera paralela, con alturas medias entre 4 000 y 4 500 metros,
mientras la fosa interandina entre 2 200 y 2 800 metros, forma un alargado valle
separado de trecho en trecho por macizos montañosos transversales
denominados nudos. Esta distribución en forma de valles intramontanos ha
logrado una individualidad espacial de cuencas rodeadas de montañas que las
denominamos hoyas. Estas formaciones han permitido una variedad de climas
que van desde los muy húmedos hasta los climas secos; y, desde los macro
térmicos de las selvas a los gélidos de las montañas (Gómez, 1989).
Dada esta situación la vegetación puede sufrir cambios favorables o
desfavorables en su desarrollo, y dentro del clima los factores que tienen más
influencia sobre el aspecto fenológico son la temperatura y la precipitación.
2.1.5.1. La temperatura
La temperatura media anual en un clima templado es algo inferior en el interior
del bosque que en terreno libre. La temperatura aumenta de abajo hacia arriba
en el interior de los bosques en días calurosos y tranquilos, descendiendo en los
días fríos o ventosos; las copas constituyen durante la noche la superficie
irradiante y la vegetación inferior está protegida frente a la irradiación, a pesar
de ello, no aumenta la temperatura ya que normalmente el interior es mucho más
frío que las copas, porque el aire frio desciende en virtud de su mayor peso
específico (Blanquet, 1979).
8
Desde hace mucho tiempo se ha intentado calcular integrales térmicas a partir
de datos de las estaciones meteorológicas y de relacionarlas con
manifestaciones de la vida vegetal como foliación, floración y fructificación,
llegando simplemente a calcular las temperaturas medias por encima de los 6 ºC
que procedían al inicio de un determinado proceso vital, no queda ninguna duda
que la periodicidad de los fenómenos vegetales se debe sobre todo a la
sincronización de las especies vegetales con las oscilaciones de la temperatura
(Boussingault, 1837 citado por Blanquet, 1979).
La temperatura es uno de los factores ecológicos más conocidos, sus
variaciones producen influencias marcadas y determinan el desarrollo y
distribución de las plantas, la acción combinada de la temperatura y la humedad
inciden directamente sobre la forma de crecimiento y sobre el modo de vida
(Agudelo, 1993).
En las regiones vecinas al Ecuador la temperatura es muy constante durante
todo el año, sucediendo lo mismo con la duración del día, que siempre es de
aproximadamente 12 horas. Bajo esas condiciones, si las lluvias son también
uniformes durante el año, las plantas no presentan periodicidad en su desarrollo
y en cualquier época las plantas crecen, florecen y fructifican simultáneamente
(De La Fina y Ravelo, 1985).
2.1.5.2. La precipitación
Las precipitaciones denominadas orográficas tienen lugar principalmente en la
región montañosa y provienen del movimiento vertical de la atmósfera. Este
fenómeno del deslizamiento del aire frío por los fuertes declives del relieve
brinda la ocasión a las masas de aire caliente cargadas de humedad, de
ascender hacia regiones atmosféricas más altas en donde halla núcleos de
condensación. Esto se debe a que la atmósfera se va enfriando conforme se
sube en altura, ya que cada 200 metros que se asciende, baja un grado de
temperatura (Gómez, 1989). El volumen de precipitación con frecuencia es un
indicador general de la distribución estacional de las lluvias. Empíricamente se
9
dice que al haber una precipitación de 2 000 a 2 500 mm en las tierras bajas, la
lluvia está distribuida de forma más o menos uniforme durante el año
(Lamprecht, 1990).
Los procesos anteriormente descritos sufren transformaciones básicas
dependiendo del lugar o condición orográfica, resultando excesos o ausencia de
los requerimientos de agua, razón por la cual, por ejemplo la abundancia de
agua afecta al presupuesto hídrico, que a su vez está relacionado con la
cantidad de biomasa y el tamaño de las hojas (Sierra et al, 1999).
En general las regiones con régimen de precipitación ecuatorial prácticamente
carecen de estaciones anuales y el ritmo fenológico está determinado por el
clima. Cuando la precipitación anual se produce alternamente, se puede
diferenciar entre época seca y lluviosa; cada una de éstas épocas imprime su
ritmo en la vegetación (Lamprecht, 1990).
2.1.6. La Observación Fenológica
La observación de los fenómenos fenológicos de plantas silvestres, se pueden
realizar mediante las siguientes normas:
No debe registrarse la fecha de un fenómeno hasta que no esté bien
confirmada su aparición en muchas plantas.
Debe tomarse buena nota de “fecha y mes” de las siguientes
características:
Floración (primeras flores); los estambres de las flores son bien
visibles.
Brotación (primeras hojas); árboles verdeando unos días después
del brote.
Maduración de frutos (frutos sazonados); color y tamaño
apropiado.
10
Defoliación (caída de la hoja); las ramas van quedando desnudas.
Recolección (cosecha de semillas) (García y García, 1978).
Existen períodos tales como prefoliación y prefloración, que son afectados
grandemente por los cambios de humedad y temperatura (Ochse y Digkman,
1965 citado por Salinas y Cueva, 1992).
2.2. LAS SEMILLAS
Una semilla es el resultado de la fertilización y maduración de un óvulo (ISTA,
1979). Las características morfológicas de las semillas son variables: el tamaño,
la forma y el color son propios de cada especie y difieren aun entre variedades.
Sin embargo, una semilla consta esencialmente de tres partes: embrión, tejidos
de reserva y cubiertas (Hartman y Kester, 1971).
2.2.1. Características generales de las semillas forestales.
La semilla, en los antófitos, está constituida por un embrión en estado latente,
que posee un rudimento radical que dará origen al sistema radicular y un
rudimento de yema que constituye el ápice vegetativo y que nos dará origen al
tallo de la plántula. Además de esto, posee un tejido reservante denominado
endospermo y de tejidos protectores que forman lo que se llama tegumento
seminal externo. La parte más externa de este tegumento seminal se denomina
epispermo (Loaiza, 1979).
Entre las características generales más importantes de las semillas, tenemos, las
siguientes: tamaño y peso, forma, aspecto externo y color.
2.2.1.1. Tamaño y peso
En las semillas forestales se consigue una gran variedad en cuanto al tamaño y
al peso; y así tenemos desde muy pequeñas hasta muy grandes, y desde muy
livianas hasta relativamente pesadas. Estas dos características están muy
11
relacionadas y así generalmente en semillas de un mismo lote y especie, las
más grandes pesan más y viceversa.
2.2.1.2. Forma
Aquí también se presentan formas muy variables y así las hay redondas o
redondeadas, ovaladas, alargadas, reniformes.
2.2.1.3. Aspecto externo
Pueden ser rugosas o lisas, duras o blandas, peludas, estriadas, aladas,
brillantes u opacas.
2.2.1.4. Color
Presentan variedad de colores y tonalidades, pero generalmente son de color
amarillento o pardo o marrón, blancas, etc.
Además de estas características anatómicas y morfológicas de las semillas, es
también necesario conocer algunas cualidades o propiedades de las semillas
forestales, como son: su origen y autenticidad, edad y madurez, peso y
dimensiones, pureza, vitalidad o viabilidad y características germinativas, en las
cuales en conjunto nos van a determinar la calidad de las semillas que tenemos
disponibles para el cultivo de las diferentes especies forestales.
2.2.2. Características generales de los árboles semilleros.
Entre las características más importantes de los árboles semilleros tenemos:
edad del árbol semillero, fecha de fructificación, régimen de fructificación,
producción de frutos y semillas.
2.2.3. Recolección de las semillas forestales
2.2.3.1. Métodos de recolección
12
Generalmente, la recolección de frutos y semillas en árboles y arbustos se
realiza a mano, directamente del árbol o del suelo, o por medio de instrumentos
especiales denominados cortadores, los cuales pueden ser de diferentes tipos y
tamaños.
La recolección en el suelo o en el agua se puede llevar a cabo cuando las
especies producen frutos o semillas pesadas y grandes, las cuales caen debajo
del sitio ocupado por la copa del árbol.
La recolección de frutos o semillas directamente en la copa de los árboles se
utiliza principalmente en aquellas especies que produce frutos dehiscentes y con
semillas pequeñas, livianas o aladas.
El proceso de recolección y método a utilizar, depende principalmente de la
especie, tipo de fruto, cantidad de frutos y semillas a recolectar, tamaño, forma y
altura de los árboles, finalidades de la recolección y personal a disposición.
2.2.3.2. Época de recolección
Es muy importante conocer la época más propicia para la recolección de frutos y
semillas para evitar recoger frutos y semillas no maduros fisiológicamente,
atacados por los agentes biológicos o llegar cuando los frutos dehiscentes han
dispersado sus semillas.
La época de recolección depende principalmente de dos factores: de las
características generales del fruto y semilla, y del estado de madurez de la
semilla.
2.2.3.3. Equipo utilizado
Generalmente se utilizan escaleras de metal o madera, espolines o trepadores,
cortadoras o podadoras, redes, lonas, canastas, ganchos, tijeras, garfios para
ascender y materiales para empaquetar a los frutos y semillas.
13
2.3. LA GERMINACIÓN
La salida del semillón o embrión y su desarrollo hasta la punta donde puede
mantenerse por sí mismo se llama germinación (Troensegaarg, 1975).
Germinación es el proceso mediante el cual la semilla se transforma a planta
(Black, 1992).
2.3.1. Condiciones Ambientales Necesarias para la Germinación.
2.3.1.1. Humedad
La imbibición de agua es el primer paso del proceso de germinación. Los dos
factores que afectan más a la absorción de agua por las semillas son: la
naturaleza de las semillas por su cubierta y la cantidad de agua circundante en
el medio (Hartman y Kester, 1992).
Las células de las semillas que germinan no pueden realizar los procesos vitales
de absorción, metabolismo, transporte de alimentos, asimilación, respiración y
crecimiento sin una abundancia de agua. Cuando el agua ablanda el epispermo,
ésta deja pasar el oxígeno y bióxido de carbono (Troensegaard, 1975).
2.3.1.2. Temperatura
Las semillas de muchas especies germinan bajo grandes variaciones de
temperatura; otras necesitan para una germinación completa temperaturas
dentro de los límites más estrechos. Por lo regular se puede decir que
temperaturas muy bajas y muy altas reducen o inhiben la germinación
(Troensegaard, 1975).
2.3.1.3. Oxígeno
14
Poco después que ha comenzado la fase de hidratación se puede notar que
empieza la actividad respiratoria a causa de que el embrión necesita oxígeno
para obtener energía y alimentos de las reservas del endospermo o de los
cotiledones (Medina, 1977).
2.3.1.4. Luminosidad
Muchas semillas requieren de luz para germinar y, el curso de la germinación en
la luz y en la obscuridad varía de acuerdo con las especies (Medina, 1977).
2.3.2. Normas Internacionales para el Análisis de Semillas en
Laboratorio
2.3.2.1. Pureza
Para determinar la pureza en las semillas, las normas indican tomar desde 1 gr
hasta 500 gr de semillas impuras, dependiendo estos valores del tamaño de las
semillas. Para realizar el ensayo se debe tomar muestras representativas de
igual cantidad y extenderlas sobre la mesa o superficie lisa, donde se diferencien
las semillas de la especie, de otras o de impurezas (Loaiza, 1979).
2.3.2.2. Pesaje internacional
La cantidad y el número de semillas en un kilogramo se determinan mediante el
peso de 1000 granos de semillas puras escogidas como muestra representativa
del lote. Estos 1000 granos se reparten en cuatro lotes similares, los cuales se
pesan individualmente y el promedio determina el peso de los 1000 granos.
También se puede escoger 10 muestras de 100 semillas puras, las cuales son
pesadas separadamente y el promedio nos da el peso en granos de 100
semillas. Basándose en este valor se puede obtener el número de semillas por
kilogramo (Loaiza, 1979).
2.3.2.3. Vitalidad o viabilidad
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La vitalidad o viabilidad generalmente se determina por medio de la prueba de
corte, radiografías al embrión y por medio de ensayos de colorímetros. Estos
ensayos muestran la estructura interna de la semilla, indicando si está llena o
vacía, si está bien desarrollada o no (Loaiza, 1979).
2.3.2.4. Contenido de humedad
Para determinar la humedad se debe tomar como muestra de 1 a 10 gramos
para semillas pequeñas y de 20 gramos si la semilla es grande. Luego se realiza
la trituración y se coloca en una cápsula para ser secadas en una estufa a
temperaturas variables entre 105 y 130ºC en destilación con tolueno, de acuerdo
al contenido de sustancias volátiles. El C.H se calcula mediante el peso de las
semillas al ambiente menos el peso de la semilla al horno, dividido para el peso
de la semilla al horno y por 100. La tolerancia aceptada es de 0,5%; la fórmula
propuesta por Loaiza (1979) para su determinación es la siguiente:
Ph - Ps
CH % = --------------- x 100
Ps
Donde: Ph = peso de semillas húmedas (al ambiente)
Ps = peso de las semillas secas (al horno)
2.3.2.5. Capacidad germinativa
El proceso de germinación se determina por medio de los ensayos de
germinación, los cuales deben hacerse con semillas puras escogidas del ensayo
de pureza y por lo menos deben hacerse con 400 granos como mínimo, los
cuales son subdivididos en cuatro lotes de 100 granos cada uno, separados al
azar.
16
La determinación de la capacidad germinativa que se expresa por el porcentaje
de semillas puras que germinan o con aptitud para germinar en una muestra de
semilla pura, tiene como objetivo evaluar su valor mediante observación directa y
conteo (Borrero, 1980; citado por Jumbo, 1995).
2.4. TRATAMIENTOS GENERALES APLICADOS A LAS SEMILLAS
FORESTALES.
La mayoría de las semillas de las especies forestales germinan sin mucha
dificultad, siempre y cuando los sustratos, el riego y las protecciones sean
adecuados. Su germinación es rápida cuando se utilizan en la época propicia y
presenta las mejores condiciones intrínsecas y extrínsecas.
Los tratamientos son mecanismos que facilitan la separación de las semillas de
los frutos, uniformizar, acelerar y mejorar el proceso germinativo.
2.4.1. Tratamiento Físico.
Este tratamiento tiene como objetivo el de ablandar la testa o envoltura consiste
en tratar a la semilla con agua fría y/o caliente, utilizando materiales como el
papel, aserrín, turba.
Los tratamientos físicos más utilizados son:
Sumergir las semillas en un recipiente con agua natural durante 12, 24,
36, 48 hasta 72 horas, renovándolas una vez al día.
Colocar las semillas en agua caliente o hirviendo y dejarlas hasta que
se enfríen.
En un recipiente con agua hirviendo colocar las semillas durante 10,
15, 30, 45 o más segundos (depende del tipo de semilla) e
inmediatamente retirarlas (Mogrovejo, 2001).
2.4.2. Tratamiento Mecánico.
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Este tratamiento tiene como objetivo eliminar o escarificar el tegumento o testa
dura de la semilla, por medio de máquinas, golpes o lijaduras. En este tipo de
tratamiento se debe tener cuidado de no ocasionar daños al embrión y tejidos
internos (Loaiza, 1992).
2.4.3. Tratamiento Químico.
Debido a su costo y el peligro que representa su manipuleo, es un tratamiento
poco aplicable, sin embargo se pueden utilizar las siguientes sustancias
químicas: ácido oxálico, ácido sulfúrico, ácido acético, sulfato cúprico, sal de
chile, cloro, éter y cloroformo (Muñoz, 1987).
2.5. PRODUCCIÓN DE PLANTAS A NIVEL DE VIVERO
Entre los conocimientos más importantes que se debe tomar en cuenta en la
producción de plantas en vivero son las siguientes: el comportamiento general
de las especies tanto en ambientes naturales como artificiales, su régimen
crecimiento y desarrollo, sus exigencias ecológicas, su reacción natural a la
aplicación de las técnicas de cultivo, experiencias en la aplicación de los
métodos de producción de plantas, especies y técnicas de producción (Loaiza,
1992).
El técnico viverista se basa en los siguientes métodos de producción de plantas:
sexual y asexual.
Sexual: mediante el cual se utiliza la semilla para producir las plantas.
Asexual: no se utiliza la semilla, sino partes vegetativas (raíces, ramas
u hojas) de plantas escogidas.
2.5.1. Eras de Germinación.
Son los sitios donde se produce la germinación de las semillas. Normalmente se
las conoce como germinadores.
18
Los germinadores tienen una altura variable según sea el material con el que
estén construidos, pueden estar a nivel del suelo o a una elevación de
aproximadamente 80 cm. En terrenos pendientes, las eras de germinación son
diseñadas ajustándose a la inclinación del terreno (Trujillo, 1990).
Para el éxito en la producción de plantas en vivero y específicamente en las eras
de germinación, se debe tener presente el sustrato y los métodos de siembra.
2.5.1.1. Sustrato.
El sustrato es el medio físico, donde la semilla encuentra las condiciones
óptimas para germinar y el medio adecuado para el posterior desarrollo de las
plántulas.
El sustrato para los germinadores debe ser lo más suelto posible, es común
utilizar una mezcla de tierra negra con arena en una proporción de 20-30 % para
mejorar la textura; la textura, facilita el desarrollo y profundización de la raíz y
permite una percolación rápida del agua de riego con lo que se evita la aparición
de enfermedades (Trujillo, 1990).
2.5.1.2. Métodos de Siembra.
La siembra de la semilla de especies forestales puede efectuarse en eras de
germinación y envases prefabricados (Loaiza, 1992).
La siembra en eras semilleras puede ser en hoyos, al voleo y en líneas o surcos;
estos métodos se utilizan cuando la semilla es muy pequeña y cuando se
desconoce el porcentaje de germinación de las mismas.
Los envases prefabricados se utilizan cuando se quiere realizar la siembra en
forma directa, éste método es utilizado cuando el porcentaje de germinación de
las semillas es alto, cuando la semilla es manejable (grande) o cuando se quiere
reducir los costos de producción (Mogrovejo, 2001).
19
2.6. DESCRIPCIÓN TAXONÓMICA DE LAS ESPECIES EN ESTUDIO
2.6.1. Bursera graveolens
Nombre común: Palo santo
Nombre científico: Bursera graveolens Triana & Planch
Familia: BURCERACEAE
Rango altitudinal: Desde 900 a 1 500 m s.n.m.
Figura 1. Árbol y frutos de Bursera graveolens
2.6.2. Ficus insípida
Nombre común: Yamiro
Nombre científico: Ficus insípida Will
Familia: MORACEAE
Rango altitudinal: Entre 1 000 y 2 000 m s.n.m.
Figura 2. Árbol y frutos de Ficus insípida
20
2.6.3. Ficus maroma
Nombre común: Yamiro
Nombre científico: Ficus maroma Castell
Familia: MORACEAE
Rango altitudinal: 1 550 m s.n.m.
Figura 3. Árbol y frutos de Ficus maroma
2.6.4. Lafoencia acuminata
Nombre común: Guararo.
Nombre científico: Lafoencia acuminata (Ruiz & Pav).
Familia: LYTHRACEAE
Rango altitudinal: De 1 500 a 1 950 m s.n.m.
Figura 4. Árbol y frutos de Lafoencia acuminata
21
2.6.5. Mimosa townsendii
Nombre común: Sururungo
Nombre científico: Mimosa townsendii Barneby
Familia: LEGUMINOSAE
Rango altitudinal: Entre 2 000 y 2 150 m s.n.m.
Figura 5. Árbol y frutos de Mimosa townsendii
2.6.6. Persea caerulea
Nombre común: Paltón.
Nombre científico: Persea caerulea (Ruiz & Pav).
Familia: LAURACEAE
Rango altitudinal: Especie de dosel de montaña (1 300 – 3 200 m s.n.m.)
Figura 6. Árbol y frutos de Persea caerulea
22
2.6.7. Senna mollísima
Nombre común: Vainillo
Nombre científico: Sena mollisima. (Humb. & Bomp. Ex Wild) H. Irwin &
Barneby varmollisima.
Familia: CAESALPINACEAE
Rango altitudinal: Entre 520 – 680 m s.n.m.
Figura 7. Árbol y frutos de Senna mollísima
2.6.8. Styrax subargentae
Nombre común: Saguilamo.
Nombre científico: Styrax subargentae Sleumer.
Familia: STYRACACEAE.
Rango altitudinal: Entre 1 500 a 1 800 m s.n.m.
Figura 8. Árbol y frutos de Styrax subargentae
23
3. METODOLOGÍA
3.1. UBICACIÓN DEL ÁREA EN ESTUDIO
La presente investigación se desarrolló en dos fases:
La fase de fenología se realizó en ocho lugares de la comuna Collana-
Catacocha: San Vicente, El Tingue, Ningomine, La Cocha, Finca del señor
Maldonado, Purón, Sauce y El Carmelo (ver figura 9) y (ver anexo 1); entre las
siguientes coordenadas geográficas: 03º49’13” a 04º11’5” Latitud Sur y
79º30’52” a 79º59’72” Longitud Oeste. A una altitud de 1400 a 2000 m s.n.m.,
con una temperatura media de 17,3 ºC en la parte alta y de 20 ºC en la parte
baja. La precipitación media anual de 40,55 mm.
La fase de análisis de las semillas y germinación se realizó en el laboratorio del
Área Agropecuaria de Recursos Naturales Renovables de la Universidad
Nacional de Loja y a nivel de invernadero en el vivero forestal de la misma que
se encuentra localizado al sur de la ciudad de Loja, vía Malacatos; ubicado entre
las siguientes coordenadas geográficas: 04° 02’ 47’’ a 04° 02’ 32’’ Latitud Sur y
79° 12’ 40’’ a 79° 12’ 59’ Longitud’ Oeste.
24
Figura 9. Mapa de ubicación del área de estudio.
25
3.2. DETERMINACIÓN DE LA FENOLOGÍA EN LAS OCHO ESPECIES
PRESENTES EN LAS VERTIENTES DE LA COMUNA COLLANA -
CATACOCHA.
3.2.1. Selección y marcación de los árboles semilleros.
Se hizo un reconocimiento de los acuíferos comprendidos entre los 1400 a 2000
msnm; en donde fueron seleccionados lo árboles de las especies: Bursera
graveolenss, Ficus insípida, Ficus maroma, Lafoencia acuminata, Mimosa
townsendii, Persea caerulea, Senna mollísima y Styrax subargentae,
identificadas en el estudio de Chamba (2008), de los cuales se escogieron un
número de 5 individuos por especie y en algunos casos donde no existió ésta
cantidad se trabajó con el número existente.
Estos árboles maduros seleccionados tuvieron características fenotípicas y
fueron marcados con cinta de enmarcaje a una altura de 1.30 m y codificados
con una placa metálica.
3.2.2. Registro y evaluación de los datos fenológicos.
Se determinó el período fenológico de los árboles mediante observaciones
quincenales durante un período de 12 meses con la ayuda de binoculares. Las
observaciones se realizaron utilizando los métodos de observación directa.
Las características se evaluaron siguiendo la metodología de Fournier (1976),
mediante una puntuación de 0 a 4 que indica por un lado la ausencia total del
fenómeno y por otro un valor máximo de 76 a 100 % así:
0: ausencia del fenómeno 0%
1: presencia del fenómeno con una magnitud de 1-25 %
2: presencia del fenómeno con una magnitud de 26-50 %
3: presencia del fenómeno con una magnitud de 51-75 %
4: presencia del fenómeno con una magnitud de 76-100 %
26
Los datos obtenidos nos permitieron realizar el análisis del progreso de los
fenómenos de floración y fructificación para establecer la época de recolección
de semillas.
Para determinar la floración en las especies de Ficus insípida y Ficus maroma se
escogieron 8 ramas: 2 secundarias, 2 terciarias, 2 cuaternarias y 2 quintenarias;
de las cuales se cogieron 10 frutos por rama. Se procedió a abrir cada fruto,
dividirlo en cuatro partes y estimar en porcentajes aplicando la escala de
Fournier, se sumaron los cuatro porcentajes estimados y se obtuvo el porcentaje
por fruto. Se sumaron y promediaron el porcentaje de los diez frutos obteniendo
el porcentaje por rama. Sumamos y promediamos los porcentajes por rama y
obtenemos el porcentaje total de floración por árbol.
3.2.3. Determinación de los porcentajes de floración y fructificación
de las especies evaluadas.
Con los valores que se obtuvieron de 0 a 4 en cada árbol seleccionado de las
ocho especies, se procedió a realizar la sumatoria total quincenal de dichos
valores y promediar para el total de árboles evaluados. Los promedios que se
obtuvieron en cada especie fueron transformados a porcentajes de acuerdo a la
escala de Fournier (1976). (Ver apéndices 3 y 4).
3.2.4. Elaboración de dendrofenogramas.
Los datos de precipitación y temperatura fueron tomados de los registros
meteorológicos de la estación del Cantón Paltas, durante un periodo de un año
considerado entre el 10 de Enero del 2009 al 20 de Diciembre del 2009; los
datos de temperatura se promediaron para cada mes.
Con los datos de precipitación y temperatura medias mensuales, más los
porcentajes quincenales de ocurrencia de las fases fenológicas, se elaboraron
dendrofenogramas para las 8 especies en estudio relacionando estos dos
parámetros (Ver apéndices 5 y 6).
27
Los porcentajes de ocurrencia de los fenómenos se representaron en una figura
basada en un eje de coordenadas según Durán (1998) en donde en el eje de las
abscisas (x), se registraron las fechas quincenales de observación. En el eje de
las coordenadas (y), se presentó la escala o porcentaje de ocurrencia de los
fenómenos de floración y fructificación de cada especie y los factores de
precipitación y temperatura medias correspondientes a cada quincena.
3.2.5. Calendario fenológico.
Con los datos obtenidos se elaboró un calendario del período de floración y
fructificación de cada una de las ocho especies en estudio (Ver cuadro 3).
3.2.6. Recolección y caracterización de frutos y semillas
La obtención de frutos se realizó directamente de los árboles semilleros
previamente seleccionados para el estudio, utilizando la podadora aérea.
Posteriormente se procedió a dar el manejo técnico, es decir extraer, limpiar y
secar las semillas en forma manual, quedando listas para ser almacenadas.
3.2.7. Almacenamiento de la Semilla.
Luego de dar el manejo a las semillas; se desinfectaron con vitabax, la
concentración utilizada fue en función al tamaño de las semillas de cada
especie, colocándolas en recipientes de vidrio identificadas con nombre
científico, vulgar y fecha de inicio de almacenamiento de cada especie.
Hasta que se realizaron los ensayos de germinación se efectuó el
almacenamiento en frio, en el laboratorio de Fisiología Vegetal de la U.N.L en un
refrigerador común, con temperatura de 5ºCy una humedad del 80% (Ver figura
11).
3.3. DETERMINACIÓN DEL POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD
GERMINATIVA DE LAS SEMILLAS A NIVEL DE LABORATORIO
CON BASE A LAS NORMAS ISTA Y VIVERO.
28
3.3.1. Determinar el Potencial Productivo.
Se consideraron los árboles que presentaron fructificación durante el período de
estudio. En ellos se evaluaron los siguientes aspectos:
Número promedio de ramas por árbol.
Se observó a simple vista o con ayuda de binoculares el número de ramas
primarias, secundarias, terciarias, cuaternarias y quintenarias fructificadas en
cada árbol.
Número de frutos promedio por rama y por árbol.
Se muestrearon de cada árbol por especie 6 ramas con frutos; dos de la base,
dos de la parte media y dos de la copa. Seguidamente se procedió a contabilizar
el número de frutos contenidos en cada rama y promediar para las 6 ramas
evaluadas. El total de frutos encontrados por rama se multiplicó por el total de
ramas fructificadas y de ésta manera se determinó el número total aproximado
de frutos en cada árbol y por ende el número de frutos por especie.
Número promedio de semillas por fruto.
Se escogieron al azar 20 frutos de cada especie y se procedió a contabilizar el
número de semillas por cada fruto, luego se obtuvo el total de semillas y se lo
promedió para los 20 frutos, obteniéndose como resultado el número promedio
de semillas por fruto.
Obtenidos los valores correspondientes, se procedió a calcular el número total
de frutos por árbol, basándose en las formulas descritas por(Ordóñez, 2001).
NFT= Nfp x Prc x Prt x Trs
Donde:
NFT = Número total de frutos de cada árbol
29
Nfp = Número de frutos promedio en una rama cuaternaria
Prc = Promedio de ramas cuaternarias
Prt = Promedio de ramas terciarias
Trs = Total de ramas secundarias
La cantidad de semilla que puede producir cada árbol, se calculó basándonos en
laextracción de 1000 semillas de un cierto número de frutos de acuerdo a la
especie, las mismas que fueron pesadas y relacionadas con el potencial
productivo de frutos, usando la siguiente fórmula (Ordóñez, 2001).
NTf x Psm
Ps = -------------------
N f m
Donde:
Ps = Producción de semilla del árbol (gr)
NTf = Potencial productivo de la fuente en frutos (Número total de frutos)
Psm = Peso semilla muestra
Nfm = Número de frutos de la muestra
3.3.2. Evaluación de la capacidad germinativa de las semillas en
laboratorio
Se llevó a cabo en el Laboratorio de Fisiología Vegetal de la Universidad
Nacional de Loja.
3.3.2.1. Determinación de la calidad física de las semillas según Normas
ISTA.
a. Pureza
Para determinar la pureza, se tomó una muestra por especie del componente de
todos los árboles, la cantidad de semilla dependió del tamaño y de la
disponibilidad de la misma, variando el peso por especie. Una vez pesadas las
30
muestras en forma individual, se procedió a separar manualmente las semillas
de las impurezas y a pesar cada componente.
El porcentaje de pureza se calculó con la siguiente fórmula:
Peso de semillas puras
P % = --------------------------------------- x 100
Peso total de la muestra
b. Peso de la Semilla
Para determinar el peso de las semillas se utilizó una muestra compuesta de
1000 semillas por individuo y se procedió a pesar en la balanza de precisión (ver
figura 10) cuatro muestras al azar de las 1000 semillas, para lo cual se utilizó el
siguiente formato:
Réplica Nro. 1 2 3 4 Total Media
Peso(gr) X1 X2 X3 X4 Σ X X
Además se calculó el coeficiente de variación que permitió conocer la
homogeneidad de las muestras, considerando que si es inferior a 4 la muestra es
homogénea y no es necesario tomar nuevas muestras (ISTA 2007).
Figura 10. Peso de semillas de Ficus insípida
31
b. Contenido de humedad.
Para hacer este análisis se pesaron en estado natural dos muestras de 10 gr
cada una de las ocho especies. Se colocaron las semillas en caja petri y se
procedió a secar en la estufa a 105 ºC durante 24 horas. Inmediatamente de
retiradas las muestras se realizó un segundo pesaje aplicando la fórmula
siguiente:
Ph - Ps
CH %= …………………. X 100
Ps
Donde:
Ph= peso de las semillas húmedas (al ambiente)
Ps= peso de las semillas secas (al horno).
c. Germinación y Tratamientos Pre-germinativos.
Una vez esterilizadas las cajas petri y papel filtro en la estufa a una temperatura
de 100 ºC y durante 24 horas, se procedió a la siembra de 100 semillas
(mezclando las semillas de los árboles que fructificaron) de cada una de las
especies, sobre 4 réplicas de 25 semillas cada una obtenidas del ensayo de
pureza previamente desinfectadas con vitabax y sometidas a tratamientos pre-
germinativos durante 5 minutos para todas las especies.
Previo a realizar la siembra de las semillas se aplicó tratamientos pre-
germinativos mecánicos y químicos dependiendo de la especie para todos los
ensayos. En el cuadro 1 se detallan los tratamientos utilizados.
32
Cuadro 1. Tratamientos pre-germinativos aplicados a las especies en estudio.
ESPECIE
TRATAMIENTOS PRE-GERMINATIVOS
Mecánicos Químicos
Bursera graveolens Corte de testa Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Ficus insípida Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Ficus maroma Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Lafoencia acuminata Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Mimosa townsendii Corte de testa Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Persea caerulea Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Senna mollísima Corte de testa Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Styrax subargentae Escarificación
rompiendo
Ácidos: giberélico, sulfúrico y nitrato de potasio.
Se adicionaron 5 ml de agua destilada y colocamos las cajas petri en el
germinador digital a una temperatura de 22 ºC y humedad relativa del 65%,
como se observa en la figura 11.
Figura 11. Germinador digital
33
Para el ensayo de germinación en el laboratorio se empleó un Diseño Simple al
Azar para cada especie.
Especificaciones del diseño:
Número de especies: 8
Número de tratamientos: 4
Número de repeticiones: 4
Número total de unidades experimentales para cada especie: 16
To = Testigo (agua destilada)
T1 = Tratamiento 1 (nitrato de potasio)
T2 = Tratamiento 2 (ácido giberélico)
T3 = Tratamiento 3 (ácido sulfúrico)
El seguimiento y evaluación se registró en el siguiente formato (Ver apéndice 10)
3.3.3. Evaluación de la capacidad germinativa de las semillas a
nivel de vivero.
3.3.3.1. Adecuación del Invernadero.
Se utilizó las instalaciones del invernadero del Área Agropecuaria y Recursos
Naturales de la Universidad Nacional de Loja ubicado en la Argelia, en el cual se
llevó a cabo la adecuación de la infraestructura general.
Se adecuó una mesa de madera dentro del invernadero sobre la cual se colocó
las fundas de polietileno de 3 x 5 pulgadas (160) separando las fundas en 4
repeticiones, cada repetición contenía 40 fundas para cada especie y tratamiento
aplicado.
34
3.3.3.2. Sustrato.
Se utilizó un sustrato 2:1:1 (tierra, arena y humus) como se observa en la figura
12. La desinfección se realizó en carretillas eléctricas a una temperatura de
120ºC por 3 horas y a 120 voltios; se dejó enfriar el sustrato durante 6 horas y se
repitió el mismo proceso con el objeto de prevenir enfermedades (ver figura 13).
Figura 12. Preparación del sustrato. Figura 13. Desinfección del sustrato.
3.3.3.3. Tratamientos pre-germinativos y germinación de las semillas.
Las semillas de todas las especies utilizadas fueron obtenidas del ensayo de
pureza, previamente desinfectadas con vitabax y sometidas a los mismos
tratamientos pre-germinativos mecánicos y químicos aplicados en el ensayo de
laboratorio.
a. Siembra
Se sembraron 40 semillas puras por repetición en fundas de polietileno.
35
Figura 14. Siembra de semillas de Lafoencia acuminata
Se aplicó el diseño simple al azar para cada especie.
Especificaciones del diseño:
Número de especies: 8
Número de tratamientos: 4
Número de repeticiones: 4
Número total de unidades experimentales para las especies: 16
b. Esquema de las Unidades Experimentales a nivel de Invernadero
To Sp1
R
40 fundas
T3 Sp1
R
40 fundas
T1 Sp1
R
40 fundas
T2 Sp1
R
40 fundas
36
Figura 15. Diseño simple al azar
R = Repetición con 40 fundas cada una
To = Testigo
T1 = Tratamiento 1 (nitrato de potasio)
T2 = Tratamiento 2 (ácido giberélico)
T3 = Tratamiento 3 (ácido sulfúrico)
c. Cuidados culturales
Se realizaron riegos diarios y deshierbas en forma manual.
d. Toma de datos
La toma de datos se realizó a diario considerando el número de semillas
germinadas por tratamiento y repetición. Con los datos de germinación se
calcularon los porcentajes de germinación para cada tratamiento y se elaboraron
figuras de porcentaje de germinación para los cuatro tratamientos para
establecer el mejor tratamiento.
Los datos de germinación se registraron en la siguiente formato (Ver apéndice
11).
37
3.4. DIFUSIÓN DE RESULTADOS
Con esta investigación se pretendió contribuir a las diferentes instituciones
involucradas en éste ámbito. Se realizó un taller participativo con los
campesinos pertenecientes a la Comuna Collana-Catacocha, beneficiaria del
servicio de agua donde se hizo el estudio, haciendo conocer las 8 especies más
importantes que contribuyen a mantener las vertientes.
También se elaboró una cartilla orientada a los campesinos de la comuna
Collana-Catacocha (esta cartilla se presenta en el anexo 30).
Figura 16. Difusión de resultados a los comuneros
Además se efectuó la exposición de los resultados obtenidos de la germinación
de las semillas a nivel de invernadero, a los estudiantes del Octavo Módulo de la
Carrera de Ingeniería Forestal.
38
Figura 17. Difusión de resultados en el invernadero a los estudiantes del Octavo
Módulo de la Carrera de Ingeniería Forestal
39
4. RESULTADOS
4.1. FENOLOGÍA
Los fenómenos de floración y fructificación se presentaron a lo largo de todo el
año, se encontró que todas las especies florecieron y fructificaron; sin embargo
como se puede observar en el cuadro 2 en Bursera graveolens, Mimosa
Townsendii, Persea caerulea y Styrax Subargentae algunos de sus individuos no
mostraron floración ni fructificación, en el caso de Bursera graveolens los
porcentajes fueron bajos en la presencia de flores y frutos por ser la especie con
mayor número de árboles no florecidos ni fructificados. El sitio con más árboles
florecidos y fructificados fue el Carmelo que supera en individuos al Tingue que
es segundo en número total y que es la razón que explica este comportamiento.
En Persea caerulea se aprecia más individuos florecidos que los fructificados
esto puede ser por la metodología empleada, con observaciones quincenales,
donde no todos los árboles que se vieron en flor fructificaron (Ver apéndice 2).
Cuadro 2. Total de individuos florecidos y fructificados en las especies
estudiadas en cada uno de los ocho sitios.
Especie Árboles (Nro.total) Floreados Fructificados
Bursera graveolens 5 1 1
20% 20%
Ficus insípida 9 9 9
100% 100%
Ficus maroma 6 6 6
100% 100%
Lafoencia acuminata 8 8 8
100% 100%
Mimosa townsendii 9 8 8
88,90% 88,90%
Persea caerulea 11 7 6
63,60% 54,50%
Senna mollísima 5 5 5
100% 100%
Styrax subargentae 17 16 16
94,10% 94,10%
TOTAL 70 60 59
40
En el cuadro 2 se observa que prácticamente todos los árboles que florecen
fructifican. Los porcentajes de floración de las especies es de 85.7 %, pues la
alcanzaron 60 de los 70 árboles y la fructificación de 84,3 % fructificando 59
individuos, estas fenofases fueron mayores a un 63,6% y 54,5 %. Bursera
graveolens presenta el mínimo porcentaje de floración y fructificación (20%).
4.1.1. Fenofases y Dendofenogramas
La floración y fructificación muestran patrones generales muy similares entre
especies, sin embargo al considerar a cada especie por separado estas
presentan su propio patrón fenológico, el tiempo de ocurrencia de las fenofases
de las especies en estudio estuvo determinado por el clima del sector el mismo
que presento precipitaciones en los meses de enero, febrero, marzo, abril y las
temperaturas se mantuvieron constantes.
En las figuras que se presentan a continuación se detalla los porcentajes
promedios de floración y fructificación para las ocho especies y su relación con
las variables de precipitación y temperatura media en la zona de estudio.
4.1.1.1. Bursera graveolens
Figura 18. Dendrofenograma para Bursera graveolens
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
10.0
1.2
009
24.0
1.2
009
08.0
2.2
009
23.0
2.2
009
10.0
3.2
009
25.0
3.2
009
09.0
4.2
009
24.0
4.2
009
09.0
5.2
009
24.0
5.2
009
08.0
6.2
009
23.0
6.2
009
08.0
7.2
009
23.0
7.2
00
9
07.0
8.2
009
22.0
8.2
009
06.0
9.2
009
21.0
9.2
009
06.1
0.2
009
21.1
0.2
009
05.1
1.2
009
20.1
1.2
00
9
05.1
2.2
009
20.1
2.2
009
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
41
La figura 18 indica que ésta especie empieza su período de floración en el mes
de octubre (5 %), alcanzando su intensidad máxima en el mes de enero con un
45 %, con una temperatura de 17,7 ºC y precipitación de 4,2 mm declinando en
el mes de marzo (5 %). Su período de fructificación empieza en el mes de marzo
(10 %), alcanzando su máxima intensidad en el mes de de abril con un 38 % con
una temperatura de 18 ºC y declina en el mes de junio (5 %).
4.1.1.2. Ficus insípida
Figura 19. Dendrofenograma para Ficus insípida.
La figura 19 indica que a ésta especie se la encontró con tres épocas de
floración y fructificación, observándose un alto porcentaje de variación en el
inicio y declinación de éstas fenofases entre individuos, razón por la cual es
posible obtener gran cantidad de semilla en cualquier época del año.
4.1.1.3. Fenología de Ficus maroma
Figura 20. Dendrofenograma para Ficus maroma.
0,010,020,030,040,050,060,070,080,090,0
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación(%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
0,010,020,030,040,050,060,070,080,090,0
10.0
1.2
009
24.0
1.2
009
08.0
2.2
009
23.0
2.2
009
10.0
3.2
00
9
25.0
3.2
009
09.0
4.2
009
24.0
4.2
009
09.0
5.2
009
24.0
5.2
009
08.0
6.2
009
23.0
6.2
009
08.0
7.2
009
23.0
7.2
009
07.0
8.2
009
22.0
8.2
009
06.0
9.2
009
21.0
9.2
009
06.1
0.2
009
21.1
0.2
009
05.1
1.2
009
20.1
1.2
009
05.1
2.2
009
20.1
2.2
009
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
42
La figura 20 indica que existen dos períodos de floración y fructificación durante
el año, la floración abarca de enero a mayo y de julio a noviembre con una
intensidad máxima de 84 % en el mes de marzo; la fructificación ocurre de abril
a agosto y de octubre a febrero con un máximo de 85 % en el mes de junio
4.1.1.4. Lafoencia acuminata
Figura 21. Dendrofenograma para Lafoencia acuminata.
La figura 21 indica que la floración inicia en el mes de octubre (15 %), con una
temperatura que se mantiene constante, observando que alcanza su intensidad
máxima en el mes de diciembre con un 76 %, y declinando en febrero (15 %) en
donde existe la presencia de precipitaciones. El fenómeno de fructificación
alcanza el máximo en el mes de junio con un 78 % y declinó en agosto (20 %)
independientemente de la temperatura y precipitación.
4.1.1.5. Mimosa townsendii.
Figura 22. Dendrofenograma para Mimosa townsendii.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
10.0
1.2
009
24.0
1.2
009
08.0
2.2
009
23.0
2.2
009
10.0
3.2
009
25.0
3.2
009
09.0
4.2
009
24.0
4.2
009
09.0
5.2
009
24.0
5.2
009
08.0
6.2
009
23.0
6.2
009
08.0
7.2
009
23.0
7.2
009
07.0
8.2
009
22.0
8.2
009
06.0
9.2
009
21.0
9.2
009
06.1
0.2
009
21.1
0.2
009
05.1
1.2
009
20.1
1.2
009
05.1
2.2
009
20.1
2.2
009
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
10.0
1.2
00
9
24.0
1.2
00
9
08.0
2.2
00
9
23.0
2.2
00
9
10.0
3.2
00
9
25.0
3.2
00
9
09.0
4.2
00
9
24.0
4.2
00
9
09.0
5.2
00
9
24.0
5.2
00
9
08.0
6.2
00
9
23.0
6.2
00
9
08.0
7.2
00
9
23.0
7.2
00
9
07.0
8.2
00
9
22.0
8.2
00
9
06.0
9.2
00
9
21.0
9.2
00
9
06.1
0.2
00
9
21.1
0.2
00
9
05.1
1.2
00
9
20.1
1.2
00
9
05.1
2.2
00
9
20.1
2.2
00
9
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
43
La figura 22 indica que la floración dio inicio en el mes de noviembre (5 %),
alcanzando la intensidad máxima en el mes de febrero con un 65 % y declinado
en el mes de abril (15 %). El fenómeno de fructificación empezó en el mes de
marzo (4,4 %), su máximo es en el mes de junio con un 64 % y declinó en el
mes de septiembre (3,9 %).
4.1.1.6. Persea caerulea
Figura 23. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Persea caerulea.
La figura 23 indica que la floración dio inicio en el mes de mayo (10 %),
alcanzando la intensidad máxima en el mes de julio con un 65 % y declinado en
el mes de septiembre (10 %). El fenómeno de fructificación empezó en el mes de
agosto (10,2 %), su máximo es en el mes de noviembre con un 82,3 % y
empieza a declinar en el mes de diciembre (48 %).
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
44
4.1.1.7. Fenología de Senna mollísima
Figura 24. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Senna mollísima.
La figura 24 indica que la floración dio inicio en el mes de diciembre (5 %),
alcanzando la intensidad máxima en el mes de febrero con un 71% y declinado
en el mes de abril (10,8 %). El fenómeno de fructificación empezó en el mes de
abril (5,7 %), su máximo es en el mes de julio con un 70,6 % y declinó en el mes
de agosto (19,7 %).
4.1.1.8. Fenología de Styrax subargentae
Figura 25. Dendrofenograma de la floración y fructificación de Styrax
subargentae.
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
10.0
1.2
009
24.0
1.2
009
08.0
2.2
009
23.0
2.2
009
10.0
3.2
009
25.0
3.2
009
09.0
4.2
009
24.0
4.2
009
09.0
5.2
009
24.0
5.2
009
08.0
6.2
009
23.0
6.2
009
08.0
7.2
009
23.0
7.2
009
07.0
8.2
009
22.0
8.2
009
06.0
9.2
009
21.0
9.2
009
06.1
0.2
009
21.1
0.2
009
05.1
1.2
009
20.1
1.2
009
05.1
2.2
009
20.1
2.2
009
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
10.0
1.2
009
24.0
1.2
009
08.0
2.2
009
23.0
2.2
009
10.0
3.2
009
25.0
3.2
009
09.0
4.2
009
24.0
4.2
009
09.0
5.2
009
24.0
5.2
009
08.0
6.2
009
23.0
6.2
009
08.0
7.2
009
23.0
7.2
009
07.0
8.2
009
22.0
8.2
009
06.0
9.2
009
21.0
9.2
009
06.1
0.2
009
21.1
0.2
009
05.1
1.2
009
20.1
1.2
009
05.1
2.2
009
20.1
2.2
009
Pro
med
io (%
)
Floración (%) Fructificación (%)
Temperatura (ºC) Precipitación (mm)
45
La figura 25 indica que la floración dio inicio en el mes de junio (10,5 %),
alcanzando la intensidad máxima en el mes de julio con un 62,2% y declinado
en el mes de septiembre (18 %). El fenómeno de fructificación empezó en el mes
de septiembre (10,8 %), su máximo es en el mes de octubre con un 64 % y
declinó en el mes de diciembre (10 %).
4.1.2. Calendario fenológico
El cuadro 3 indica las fechas de inicio y declinación de floración y fructificación
para cada especie estudiada, en el período de enero a diciembre del 2009.
Cuadro 3. Calendario Fenológico.
Especie Meses E F M A M J J A S O N D
Fase 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2
Bursera
graveolens
Floración
Fructificación
Ficus insípida Floración
Fructificación
Ficus maroma Floración
Fructificación
Lafoencia
acuminata
Floración
Fructificación
Mimosa
townsendii
Floración
Fructificación
Persea caerulea Floración
Fructificación
Senna mollísima Floración
Fructificación
Styraxsubargentae Floración
Fructificación
Floración
Fructificación
Recolección de semilla
46
4.2. POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD GERMINATIVA DE LAS
SEMILLAS.
4.2.1. Potencial productivo de las especies en estudio
En el cuadro 4 se presenta un resumen del potencial productivo y la cantidad de
semilla que puede producir un árbol semillero por cada especie en estudio, lo cual
nos permite tener una idea de la cantidad de semilla con la que se puede contar
para futuros ensayos (Ver Apéndice 7).
Cuadro 4. Potencial productivo por árbol semillero de las especies en
estudio/lugar.
Lugar Especie No. de Nfp Pcr Prt Tsr NFT Sem/
fruto
Pms
(gr)
Nfm
PS
(gr)
árbol
El Tingue Ficus insípida 3 114 10 5 2 11400 236 0,705 4 2009,3
Ningomine Ficus insípida 1 51 7 6 2 4284 298 0,700 4 749,7
Finca Maldonado Ficus maroma 2 212 9 7 9 120299 94 0,125 11 1367,0
San Vicente Ficus maroma 3 231 8 7 2 25872 98 0,120 11 282,2
Finca Maldonado Styrax subargentae 1 88 5 8 6 21000 1 588,400 1000 12356,4
Carmelo Styrax subargentae 4 91 2 2 1 365 1 588,100 1000 214,5
Carmelo Persea caerulea 2 121 3 4 2 2908 1 246,000 1000 715,4
El Tingue Persea caerulea 3 103 2 5 1 1028 1 245,900 1000 252,9
Ningomine Lafoencia acuminata 1 103 3 4 2 2464 568 29,700 2 36590,4
La Cocha Lafoenciaacuminata 1 20 1 2 1 41 568 29,000 2 589,7
El Carmelo Mimosa caduca 1 35 7 4 1 971 6 27,900 167 162,2
Ningomine Mimosa caduca 3 9 1 1 1 9 6 28,200 167 1,4
El Purón Sennamollísima 1 17 8 9 5 6060 85 33,800 12 17069,0
El Sauce Burseragraveolens 3 14 4 5 4 1093 85 33,300 12 3034,0
Donde:
NFT = Número total de frutos de cada árbol
Nfp = Número de frutos promedio en una rama cuaternaria
Pcr = Promedio de ramas cuaternarias
Prt = Promedio de ramas terciarias
Trs = Total de ramas secundarias
NTF = Potencial productivo de la fuente en frutos (Número total de frutos)
Psm = Peso semilla muestra
Nfm = Número de frutos de la muestra
Ps = Producción de semilla del árbol (gr).
47
4.2.2. Recolección y caracterización de frutos y semillas.
En el cuadro 5 se presentan las fechas de recolección de frutos y semillas, sus
características como forma, tamaño y numero de semillas que se pueden
obtener por cada fruto colectado.
Cuadro 5. Caracterización de frutos y semillas para las ocho especies en
estudio.
ESPECIE
FECHA
RECOLECCIÓN
CANTIDA
D RECOLEC
TADA (gr)
SEMILLA/FRUTO
CARACTERIZACIÓN DEL FRUTO
CARACTERIZACIÓN DE LA SEMILLA
Tamaño
(cm)
Forma
Color
Tamaño
(cm)
Form
a
Colo
r
Ficus insípida
septiembre
40
298
2,6 diámetro
Sicono globoso
verde amarillento
0,01 largo
redonda
beige
Ficus maroma
junio
25
91
0.6 diámetro
sicono
marrón
X
redonda
beige
Senna mollísima
julio
526
85
24,4 largo
vaina
Café a negro
0.4
diámetro
ovalada
Verde café
Lafoencia acuminata
junio
300
568
8,0 ancho
Legumbre samaroide
Café amarillento
1,8
largo
alada
amarillo
Styrax subargentae
octubre
10000
1
1,2 diámetro
drupa
verde
0,9
diámetro
drupa
Café claro
Mimosa townsendii
julio
300
6
7.32 largo
vaina
Café
0.6
diámetro
Plana circular
Café oscuro
Bursera graveolens
mayo
350
1
0,83 diámetro
drupa
Verde rojizo
0,5
largo
drupa
Café oscuro
Persea caerulea
noviembre
1000
1
0,8 diámetro
R edonda
negro
0.6
diámetro
redonda
marrón
4.2.3. Capacidad germinativa de las semillas a nivel de Laboratorio
con base a las Normas ISTA.
4.2.3.1. Calidad física de la semilla
En el cuadro 6 se indica la variabilidad de la calidad física de la semilla en cuanto
a pureza, contenido de humedad y peso de 1000 semillas a nivel de laboratorio.
48
Cuadro 6. Calidad física de la semilla según las normas internacionales (ISTA).
Especie Pms (gr) Pureza (%) Contenido de
Humedad (%)
Bursera graveolens 253,130 83,1 9,9
Ficus insípida 0,7 62,3 9,9
Ficus maroma 0,1 10,4 1,6
Lafoencia acuminata 29,3 84,6 26,0
Mimosa caduca 28,3 62,4 9,9
Persea caerulea 246,4 94,5 29,1
Senna mollísima 33,1 94,4 9,7
Styrax subargentae 555,6 78,5 24,4
En el cuadro 6 se presenta un resumen de la calidad física de las semillas para
cada especie y por cada lugar en estudio (Ver Apéndice 8).
4.2.3.2. Germinación a nivel de laboratorio.
Para el ensayo de germinación a nivel de laboratorio se utilizaron las semillas
recolectadas en las ocho vertientes comprendidas entre los 1 400 a 2 000 m
s.n.m. de la Comuna-Collana Catacocha, obteniendo los siguientes resultados.
En el cuadro 7 se indica los porcentajes de germinación obtenidos a nivel de
laboratorio y la desviación estándar para cada tratamiento aplicado a las
especies en estudio
Cuadro 7. Porcentajes de germinación promedios por especie para cada
tratamiento aplicado a nivel de laboratorio.
49
Especie To T1 T2 T3
% % % %
Bursera graveolens 0±0 2±2,3 7±6 3±6
Ficus insípida 100±0 99±2 100±0 100±0
Ficus maroma 13±26 5±10 17±24,5 2±4
Lafoencia acuminata 34±10,1 22±2,3 31±6 24±8
Mimosa townsendii 97±2 97±2 98±2,3 95±10
Persea caerulea 37±6,8 61±11 59±11,9 64±5,7
Senna mollísima 40±6,8 73±9,5 45±11 49±13,6
Styrax subargentae 17±22,7 13±15,1 5±10 0±0
Donde: T₀ = Testigo (agua destilada)
T₁ = Tratamiento uno (nitrato de potasio)
T₂ = Tratamiento dos (ácido giberélico)
T₃ = Tratamiento tres (ácido sulfúrico)
± = Desviación estándar
a. Bursera graveolens
Figura 26. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Bursera graveolens a nivel de laboratorio.
Análisis de varianza para la especie Bursera graveolens.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 18 20 21 22 23 24 25 26
Germ
inació
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
50
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 40,00 13,33
Tratamiento 3 104,00 34,67 1,63** 5,95 3,49
Error 9 192,00 21,33
TOTAL 15 336,00
X= 3 CV= 153,96 %
**= no significativo
En el cuadro 7 y figura 26 muestran los valores de cada tratamiento expresados
en porcentajes de germinación para cada especie, teniendo que: las semillas
tratadas con nitrato de potasio germinaron entre 12 y 26 días con ácido
giberélico entre 21 y 26 días, presentando el mayor porcentaje de germinación
del 7 % con ácido sulfúrico entre 15 y 17 días; con agua destilada la germinación
fue nula. (Ver apéndice11-figura 41)
b. Ficus insípida
Figura 27. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Ficus insípida a nivel de laboratorio.
Análisis de varianza para la especie Ficus insípida.
0
20
40
60
80
100
120
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
Germ
inació
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
51
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 3,00 1,00
Tratamiento 3 3,00 1,00 1,00** 5,95 3,49
Error 9 9,00 1
TOTAL 15 15,00
X=99,75 CV= 1,00%
**= no significativo
Ficus insípida obtuvo del 99 al 100 % de germinación con los cuatro tratamientos
aplicados y se observa que las semillas empezaron a germinar a los 6 días
después de la siembra y terminan a los 12 y 15 días (ver apéndice 11-figura 42).
c. Ficus maroma
Figura 28. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Ficus maroma a nivel de laboratorio.
Análisis de varianza para la especie Ficus maroma.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
52
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 1387,00 462,33
Tratamiento 3 579,00 193,00 0,62 5,95 3,49
Error 9 2793,00 310,33
TOTAL 15 4759,00
X= 9,25 CV= 190,45%
Ficus maroma alcanzó porcentajes de germinación menores al 17 % con los
tratamiento y testigo (ver cuadro 7). En la figura 28 se puede observar que las
semillas empezaron a germinar entre 8 días con nitrato de potasio, 10 con ácido
giberélico, 11 con agua destilada y ácido sulfúrico; y, terminan entre 11 y 13
días con agua destilada, nitrato de potasio y ácido sulfúrico respectivamente.
(Ver apéndice 11-figura 43)
d. Lafoencia acuminata
Figura 29. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Lafoencia acuminata a nivel de laboratorio.
Análisis de varianza para la especie Lafoencia acuminata
0
5
10
15
20
25
30
35
40
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
53
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 267,00 89,00
Tratamiento 3 387,00 129,00 3,29** 5,95 3,49
Error 9 353,00 39,22
TOTAL 15 1007,00
X=27,75 CV= 22,57 %
**= no significativo
El mayor porcentaje de germinación de Lafoencia acuminata fue el obtenido
con el agua destilada en un 34 % y el menor del 22% con el nitrato de potasio.
(Ver apéndice 11-figura 44)
e. Mimosa townsendii
Figura 30. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado
a Mimosa townsendii a nivel de laboratorio.
Análisis de la varianza para la especie de Mimosa townsendii.
0
20
40
60
80
100
120
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
54
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 83,00 27,67
Tratamiento 3 19,00 6,33 0,22 5,95 3,49
Error 9 257,00 28,56
TOTAL 15 359,00
X= 96,75 CV=5,52
Mimosa townsendii alcanza un porcentaje de germinación entre el 95 al 98 %
con los cuatro tratamientos aplicados. (Ver apéndice 11-figura 45)
f. Persea caerulea
Figura 31. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado
a Persea caerulea a nivel de laboratorio.
Análisis de la varianza para la especie de Persea caerulea.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Germ
inació
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
55
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 155,00 51,67
Tratamiento 3 1827,00 609,00 6,28 ** 5,95 3,49
Error 9 873,00 97,00
TOTAL 15 2855,00
X= 55,25 CV= 17,83 %
**= no significativo
Persea caerulea alcanza un porcentaje de germinación entre el 37 al 64 % con
los cuatro tratamientos aplicados. (Ver apéndice 11-figura 46)
g. Senna mollísima
Figura 32. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Senna mollísimaa nivel de laboratorio.
Análisis de la varianza para la especie de Senna mollísima.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
56
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 51,00 17,00
Tratamiento 3 2571,00 857,00 5,67 * 5,95 3,49
Error 9 1361,00 151,22
TOTAL 15 3983,00
X= 51,75
CV=3,76%
*= significativo
El mayor porcentaje de germinación par Senna mollísima fue el obtenido con el
nitrato de potasio en un 73% y el menor del 40% con agua destilada. (Ver
apéndice 11-figura 47)
h. Styrax subargentaea
Figura 33. Curva de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado a
Styrax subargentae a nivel de laboratorio
Análisis de la varianza para la especie de Styrax subargentae.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
0 12 13 14 15
Germ
inc
ión
(%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
57
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 1563,00 521,00
Tratamiento 3 707,00 235,67 2,19** 5,95 3,49
Error 9 969,00 107,67
TOTAL 15 3239,00
X= 8,75 CV= 118,59 %
**= no significativo
Para Styrax subargentae el mayor porcentaje de germinación se obtuvo con
agua destilada con un 17 % y con ácido sulfúrico no se obtuvo germinación. (Ver
apéndice 11-figura 48)
4.2.4. Capacidad germinativa de las semillas a nivel de invernadero.
4.2.4.1. Tratamientos Pre-germinativos.
Se aplicaron los mismos tratamientos mecánicos y químicos utilizados en el
laboratorio, dependiendo de la especie.
4.2.4.2. Ensayos de germinación a nivel de invernadero.
En el cuadro 8 se indica los porcentajes de germinación obtenidos a nivel de
invernadero y la desviación estándar para cada tratamiento aplicado a las
especies en estudio.
Cuadro 8. Porcentajes de germinación promedios por especie para cada
tratamiento aplicado a nivel de invernadero.
58
Especie To T1 T2 T3
% % % %
Bursera graveolens 0±0 0±0 0±0 0±0
Ficus insípida 52,5±22,2 80±28,3 85±17,3 82,5±15
Ficus maroma 77,5±26,3 100±0 77,5±9,6 100±0
Lafoencia acuminata 35±10 27,5±9,6 7,5±5 5±5,8
Mimosa townsendii 87,5±15 90±11,5 100±0 100±0
Persea caerulea 60±21,6 15±17,3 40±8,2 47,5±5
Senna mollísima 30±21,6 25±12,9 27,5±5 35±10
Styrax subargentae 10±8,2 7,5±5 15±12,9 12,5±9,6
Donde: T₀ = Testigo (agua destilada)
T₁ = Tratamiento uno (nitrato de potasio)
T₂ = Tratamiento dos (ácido giberélico)
T₃ = Tratamiento tres (ácido sulfúrico)
± = Desviación estándar
a. Ficus insípida
Figura 34. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado
en invernadero a la especie Ficus insípida.
Análisis de varianza para la especie Ficus insípida.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
0 2729 3133 353742 454749 5153 555759 6163 656769 717577 7981 848688
Germ
ina
ció
n (%
)
Dias después de la siembra
t0 t1 t2 t3
59
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 450,00 150,00
Tratamiento 3 2750,00 916,67 1,65** 5,95 3,49
Error 9 5000,00 555,56
TOTAL 15 8200,00
X= 75,0 CV= 31,43 %
**= no significativo
El porcentaje de germinación para Ficus insípida fue entre 80 a 85 % con nitrato
de potasio, ácido giberélico y ácido sulfúrico; y de 52,5 % con agua destilada.
(Ver apéndice 14-figura 49)
b. Ficus maroma.
Figura 35. Curvas de germinación acumulativa para cada tratamiento aplicado
en invernadero a la especie Ficus maroma.
Análisis de varianza para la especie Ficus maroma
0
20
40
60
80
100
120
0 15 17 19 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44 46 48 50 52 54 56 58 60 63 65 67 69 71
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
60
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 425,00 141,67
Tratamiento 3 2025,00 675,00 3,16** 5,95 3,49
Error 9 1925,00 213,89
TOTAL 15 4375,00
X= 88,75 CV= 16,48 %
**= no significativo
Ficus maroma obtuvo el 100 % de germinación con nitrato de potasio y ácido
sulfúrico; y el 77,5 % con agua destilada y ácido giberélico.(Ver apéndice 14-
figura 50)
c. Lafoencia acuminata.
Figura 36. Curva de germinación para cada tratamiento aplicado a Lafoencia
acuminata, a nivel de invernadero.
Análisis de varianza para la especie Lafoenciaacuminata.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
0 15 16 17 18 19 26 31 33 35 36 38 40 44 48 52 54 57 72 73 84 87
Germ
inació
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
61
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01
0.05
Réplica 3 75,00 25,00
Tratamiento 3 2625,00 875,00 11,67 ** 5,95 3,49
Error 9 675,00 75,00
TOTAL 15 3375,00
X= 18,75 CV= 46,19 %
**= no significativo
Los porcentajes de germinación para Lafoencia acuminata son bajos,
alcanzando un 35 % con agua destilada y 5 % con ácido sulfúrico. (Ver apéndice
14-figura 51)
d. Mimosa townsendii
Figura 37. Curva de germinación para cada tratamiento aplicado a Mimosa
townsendii, a nivel de invernadero.
Análisis de la varianza para la especie de Mimosa townsendii.
0
20
40
60
80
100
120
0 11131517192123252729313335384144465052555760626567707274778082848688
Germ
ina
ció
n %
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
62
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 318,75 106,25
Tratamiento 3 518,75 172,92 2,06** 5,95 3,49
Error 9 756,25 84,03
TOTAL 15 1593,75
X=94,38
CV=9,71%
**= no significativo
Los porcentajes de germinación para Mimosa caduca son altos, comprendidos
entre 87,5 y 100 % con los cuatro tratamientos aplicados. (Ver apéndice 14-
figura 52)
e. Persea caerulea
Figura 38. Curva de germinación para cada tratamiento aplicado a Persea
caerulea, a nivel de invernadero.
Análisis de la varianza para la especie de Persea caerulea.
0
10
20
30
40
50
60
70
0 21 23 25 27 29 31 33 35 37 39 46 53 55 60 67 75 82 86
Germ
inació
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
63
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 268,75 89,58
Tratamiento 3 4318,75 1439,58 5,62 * 5,95 3,49
Error 9 2306,25 256,25
TOTAL 15 6893,75
X= 40,63 CV= 39,40 %
*= significativo
El mayor porcentaje de germinación para Persea caerulea con agua estilada fue
de 60 % y el menor con nitrato de potasio del 15 %. (Ver apéndice 14-figura 53)
f. Senna mollísima
Figura 39. Curva de germinación para cada tratamiento aplicado a Senna
mollísima, a nivel de invernadero.
Análisis de la varianza para la especie de Senna mollísima.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
0 16171819323334353637384142434448505152535455575862656769707284
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
64
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 68,75 22,92
Tratamiento 3 218,75 72,92 0,30** 5,95 3,49
Error 9 2206,25 245,14
TOTAL 15 2493,75
X= 29,38 CV= 53,30 %
**= no significativo
Los porcentajes de germinación para Senna mollísima son bajos, alcanzando la
mayor germinación con ácido sulfúrico con un 35 % y la menor con nitrato de
potasio con un 25 %. (Ver apéndice 14-figura 54)
g. Styrax subargentae
Figura 40. Curva de germinación para cada tratamiento aplicado a Styrax
subargentae, a nivel de invernadero.
Análisis de la varianza para la especie de Styrax subargentae.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
0 36 50 51 52 56 60 61 62 63 65 66 70
Germ
ina
ció
n (%
)
Días después de la siembra
t0 t1 t2 t3
65
Ft
FUENTES DE
VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 425,00 141,67
Tratamiento 3 125,00 41,67 0,60** 5,95 3,49
Error 9 625,00 69,44
TOTAL 15 1175,00
X= 11,25 CV= 74,07 %
**= no significativo
Los porcentajes de germinación para Styrax subargentae son bajos,
comprendidos entre 7,5 y 15 % con los cuatro tratamientos aplicados. (Ver
apéndice 14-figura 55)
66
5. DISCUSION
5.1. FENOLOGÍA
La floración y fructificación muestran patrones generales muy similares entre
especies, sin embargo al considerar a cada especie por separado estas
presentan su propio patrón fenológico, depende de la complejidad de cada
estructura (flor y fruto) a desarrollar, sin embargo se ajustan a la disponibilidad
de humedad del ambiente para la dispersión de sus semillas.
El tiempo de duración de cada fenofase (floración y fructificación) es variable
para cada especie y presentan un patrón de duración y frecuencia regular,
ajustándose a las condiciones ambientales
En Bursera graveolens solamente el árbol tres presentó floración y fructificación;
de los cinco individuos seleccionados, cuyas intensidades máximas fueron (38 y
45 %) en enero y abril con temperaturas de 18ºC y precipitación de 4,2 mm;
difiriendo con los resultados de Joaquín R. Martos et.al. (2009) en un estudio
realizado en Lima-Perú, a una temperatura y precipitación media anual de 23,1
ºC y 8,3 mm; a una altura de 150 a 1500 m snm, en donde la floración ocurre
entre octubre a junio con un máximo de 21,6% en enero, en tanto que la
fructificación abarca de enero a junio con un máximo de 13,3% en enero; ésta
diferencia se debe a que las condiciones climáticas en los sectores de estudio
son diferentes.
Las especies Ficus insípida y Ficus maroma, presentaron tres y dos períodos de
floración y fructificación, alcanzando intensidades máximas entre 79 y 85%,
existiendo variabilidad en el inicio y declinación de las fenofases entre los
individuos seleccionados por lo cual es posible disponer de gran cantidad de
semilla en cualquier época del año; según Trujillo (1990) manifiesta que en la
periocidad de la floración también se presenta variación por ejemplo en los
climas de zona templada los árboles florecen una sola vez, influenciados por las
características de las estaciones. En el trópico, las especies pueden florecer
varias veces al año presentando un fenómeno típico, consistente en una
67
alteración cíclica de floración abundante, floración escasa, muy común en los
árboles forestales. En el estudio de Piedra Malagón Eva María et al, (2006)
sobre el género Ficus específicamente de ocho especies en el Estado de
Morelos-México, se conoce que la floración y fructificación acontece durante todo
el año, pero principalmente la presencia del mayor número de siconos se da
entre los meses de junio a febrero según la especie respectivamente, en Ficus
cotinifolia se observa una mayor abundancia de siconos durante seis meses de
junio a diciembre lo que se aproxima con el tiempo que florecen y fructifican los
Ficus en este estudio, que abarcó un período de ocho meses. Según Joaquín R.
Martos et.al. (2009) en su estudio fenológico; Ficus nymphaeifolia florece durante
el año con un máximo en marzo y la fructificación, entre frutos verdes y maduros
en los meses de septiembre y octubre al igual que Ficus maroma que presenta
su máxima intensidad de flores en el mes de marzo.
La floración y fructificación en las especies Lafoencia acuminata y Senna
mollísima estuvo presente en todos sus individuos, alcanzaron sus puntos
máximos sobre el 70%; Trujillo (1990) manifiesta que los árboles que se
comportan de ésta manera son individuos fisiológicamente maduros donde a
mayor edad mayor abundancia de flores y frutos.
En Persea caerulea cuatro de los individuos no florecieron y cinco no
fructificaron; en Mimosa townsendii y Styrax Subargentae un individuo no
presentó floración ni fructificación (ver apéndice 2 y 3) , una explicación del por
qué no florecen todos individuos según Díaz y Loján (2004) es de que la
floración puede variar sustancialmente de un lugar a otro a veces no todos los
árboles de un rodal se encuentran en el mismo momento del ciclo por lo que
unos pueden florecer con abundancia en un año y otros hacerlo el siguiente.
Además es posible que estos árboles no alcanzan el crecimiento reproductivo o
que necesitan algún cambio fisiológico antes de alcanzar el potencial productivo.
Harold y Hocker (1984) menciona que la competencia a que están sometidas la
mayor parte de los árboles requiere que el crecimiento juvenil temprano se
desarrolle de tal forma que se produzca un incremento vegetativo rápido, más
adelante se acumulan diferentes reservas alimenticias y toman lugar los cambios
fisiológicos que permite que se produzca el crecimiento reproductivo, se puede
68
inferir que los árboles pueden necesitar algún tipo de cambio fisiológico antes de
alcanzar el potencial reproductivo total.
Al relacionar la condiciones del clima con los fenómenos fenológicos para las
especies de Bursera graveolens, Ficus insípida, Ficus maroma, Lafoencia
acuminata, Mimosa townsendii, Senna mollisima la floración se da cuando las
precipitaciones son escasas (enero-abril); y, Styrax Subargentae, Persea
caerulea, en sequía (mayo-diciembre) al respecto Trujillo (1990) menciona que
la humedad abundante o escasa, es importante para un gran número de
fenómenos en las plantas; se ha comprobado que durante las sequías-
simultáneas con los más altos grados de temperatura se estimula la formación
de flores. Por tanto se requieren espacios cortos donde la humedad sea
reducida para favorecer el inicio de la floración. La fructificación se presenta en
época de escasas precipitaciones para las especies Bursera graveolens, Ficus
insípida, Ficus maroma, Lafoencia acuminata, Mimosa townsendii; y, para Styrax
Subargentae, Persea caerulea Senna Mollisima cuando no hay lluvias, Lamprech
(1990) menciona que algunas especies probablemente son estimuladas a
florecer y fructificar por sequías extremas.
Estos resultados concuerdan con los obtenidos por Bullock et al (1990), al
registrar la fenología de 108 especies (1094 árboles) durante 42 meses en una
selva tropical de México, encontraron el máximo de floración durante la época
seca. Ibarra et al (1991), estudiaron la fenología de 273 especies arbóreas en
una selva cálido - húmeda del sureste de México y encontraron que la floración
se correlacionó fuertemente con la época de menor precipitación.
5.2. POTENCIAL PRODUCTIVO Y CAPACIDAD GERMINATIVA DE LAS
SEMILLAS
La cantidad de semilla que puede producir un árbol varía de acuerdo al lugar y
características fenotípicas de cada individuo; Harold y Hocker (1984), indican
que algunos árboles dentro de una localidad tienen la capacidad de producir,
particularmente grandes cantidades de semilla; mientras que otros incluso
cuando tienen el mismo tamaño y crecen sobre la misma localización no son tan
69
productivos; y, que dentro de una localidad los árboles que tienen coronas más
grandes son los que producen mayor cantidad de semillas; como es el caso de
Ficus insípida, maroma y Bursera graveolens en donde se observa que los que
tienen mayor diámetro de copa son los que mayor producción de semilla
presentan (Ver apéndice 1).
La diferencia en la producción de semillas por sitio en el caso de Ficus insípida,
Persea caerulea y Mimosa townsendii se debe a que en estos lugares existe
mayor número de individuos, sin embargo Ficus maroma, Styrax subargentae y
Lafoencia acuminata presenta alta cantidad de semilla existiendo igual número
de individuos. De lo que se puede decir que éstas variaciones del potencial
productivo y calidad de semilla está en función del número de ramas fructificadas
por especie, el número de frutos por rama y el total de frutos que tienen los
individuos dependiendo de la especie, tipo, clase de flor y fruto, de su
persistencia en el árbol y su madurez sumado a esto la influencia de factores
fisiológicos de cada uno de los individuos, los mismos que están relacionados
con agentes internos y externos como: viento, temperatura, luz, precipitación,
sustancias nutritivas, vecindad de otros individuos vegetales y otros agentes
dispersantes que condicionan el desarrollo de su reproducción.
En todas las especies la germinación a nivel de laboratorio con los cuatro
tratamientos inició entre 1 y 21 días después de la siembra, y terminaron entre 7
y 26 días.
Los porcentajes de germinación para Bursera graveolens a nivel de laboratorio
fue bajo, las semillas presentaron infestación por hongos que se originaron en la
semillas y no pudieron eliminarse con la desinfección, sin embargo algunas
semillas infestadas germinaron con nitrato de potasio, ácido sulfúrico y ácido
giberélico en donde el inicio de la germinación se dio en menos días respecto a
los otros tratamientos; en cambio a nivel de invernadero la germinación fue nula
con los cuatro tratamientos, estos porcentajes bajos y nulos de germinación
posiblemente se deban a que la semilla utilizada para este ensayo fueron
sembradas inmediatamente después de ser recolectadas, pues Namoc R José,
2006 en su ensayos de propagación y desarrollo de palo santo sostiene que las
70
semillas de Palo Santo, no están en condiciones de germinar inmediatamente
después de ser cosechadas, más bien necesitan un período de reposo que
puede ser de carácter transitorio aproximadamente hasta los seis meses,
concordando con lo que argumenta Bjerne Ditlevsen (1980) en su análisis de
germinación de semillas, que muchas especies presentan un reposo durante los
seis primeros meses siguientes a la recolección.
Comparando los períodos y porcentajes de germinación de Ficus insípida y Ficus
maroma obtenidos en este estudio con nitrato de potasio, ácido giberélico, ácido
sulfúrico y agua destilada, tanto en la fase de laboratorio (100%) como en
invernadero (85%); difiere sustancialmente con lo reportado en el ensayo de
germinación en laboratorio de semillas de Ficus insípida defecadas por tucanes y
monos araña en la Universidad de Veracruz-México, cuyos autores mencionan
que el tiempo de germinación de semillas obtenidas de excretas de tucanes fue
de 10 días, con una germinación de 4 % y de las heces de mono araña
alcanzaron una germinación del 65 % en 17 días (Domínguez et al., 2005). En
el estudio de Recolección y germinación de semillas de 50 especies arbóreas
nativas de Panamá realizado por Sautuet.al (1999) Ficus insípida presenta 19 %
de germinación e inicia a los 19 días y termina a los 109 días. Estas diferencias
se pueden atribuir a la metodología en algunos casos, pero cabe inferir que
estas se deban principalmente a la variación genética intraespecífica, tanto a
nivel poblacional como individual, característica señalada por Bonner (1998) en
especial en lotes que provienen de poblaciones naturales. Estos datos siguen
mostrando la gran variación que puede existir en la germinación de semillas de
una misma especie arbórea y que en las comparaciones que puedan
establecerse, siempre se deberá considerar ese grado de error que implica la
variación individual de los árboles y las diferentes temporadas de producción de
frutos de éstos.
Los bajos porcentajes de germinación de Lafoencia acuminata y Styrax
subargentae observados en laboratorio e invernadero pueden deberse a las
diferencias en la composición química y/o a la sensibilidad de las semillas a los
daños físicos causados por los ácidos aplicados; o a la presencia de embriones
rudimentarios o fisiológicamente inmaduros, cubiertas mecánicamente
71
resistentes, impermeables y presencia de sustancias inhibidoras (Amen 1968 y
Bonner 1965).
La no germinación de las semillas de Styrax subargentae a nivel de laboratorio
con ácido sulfúrico probablemente obedece a que en ocasiones el ácido
destruye o inhibe la acción de compuestos químicos que protegen a las semillas
contra agentes degradadores mientras ocurre el proceso de germinación. Esta
apreciación se basa en el hecho de que las semillas con este tratamiento a nivel
de laboratorio fueron susceptibles al ataque de hongos desde el tercer día y aún
cuando las semillas infectadas se removieron del germinador. Cabe señalar que
la presencia de hongos fue más acentuada en las semillas que se trataron con
ácido sulfúrico, mientras que las semillas que se sometieron a nitrato de potasio
y ácido giberélico el ataque por hongos fue menos severo. El ataque por hongos
es más contrastante si a estos lotes de semilla se compara con el grupo de
semillas correspondientes al testigo, las cuales estuvieron libres del ataque por
hongos durante los días que duró su observación, aún bajo las mismas
condiciones ambientales y de manejo. En el caso Lafoencia acuminata se pudo
observar que ocurrió algo similar en donde las semillas a nivel de laboratorio
fueron invadidas por hongos a excepción del testigo pudiendo establecer que
éstas semillas son susceptibles a la aplicación de los ácidos, púes se puede
observar que esta especie alcanza los mayores porcentajes de germinación
tanto a nivel de vivero e invernadero con el agua destilada.
La germinación de las semillas de Mimosa townsendii fue muy rápida y
relativamente homogénea, los porcentajes de germinación son bastante altos en
laboratorio e invernadero; dado a su alto grado de viabilidad de las semillas;
Crocker (1938) señala que las semillas de leguminosas, incluyendo al género
Mimosa, se caracterizan por la persistencia de su viabilidad durante largo
tiempo. Senna mollísima por su parte alcanza porcentajes de 25 hasta 73% en
invernadero y laboratorio aproximándose con los estudios de Eva Muller en
donde Stryphnodendronexcelsum (vainillo) alcanza 95% de germinación en
treinta días, Lucía Rodríguez, obtuvo un 100% de germinación con corte de
testa, en 10 días y en imbibición en ácido sulfúrico, la germinación fue de 98 a
100%, entre 8 y 10 días; deduciendo que para éstas especies la germinación
72
está promovida por la escarificación física o química, según los resultados
muestran que la necesidad de tratamientos promotores de la germinación
depende de la especie, de hecho la semilla de Mimosa y Senna presentan una
testa muy dura y el tegumento que la cubre ofrece resistencia a la permeabilidad,
motivo por el cual los tratamientos pre-germinativos mecánicos y químicos como
corte de testa o de inmersión en ácido sulfúrico, nitrato de potasio y ácido
giberélico promueven el rompimiento de esa barrera y permiten que la semilla
pueda imbibirse fácilmente, para su germinación.
Los porcentajes de germinación de Persea caerulea, a nivel de laboratorio e
invernadero fueron hasta del 64% con todos los tratamientos incluido el testigo,
a excepción del tratamiento uno con nitrato de potasio en invernadero que fue
del 15%; resultados que asemejan con el obtenido por Tomalá Rossi, Marcos
(2002) en Persea americana que alcanzan porcentajes superiores al 67%; el
tiempo de germinación en laboratorio fue de 7-9 días y en invernadero de 55-66
días, tiempo que se relaciona con el citado por (Álvarez, 1981) en la especie P.
americana en donde las semillas tardaron en germinar de treinta a sesenta días,
aproximadamente, dependiendo ello de la época de realización del semillero y
de si éste se sitúa bajo cubierto, en invernadero de plástico o al aire libre. En el
cuadro se puede apreciar diferencias en los porcentajes de germinación entre
tratamientos los cuales se puede atribuirse quizá a que las semillas utilizadas
fueron de frutos recogidos del suelo y del árbol; pues Álvarez (1981) menciona
que las semillas deben de provenir de plantas que hayan llegado a su madurez
fisiológica, y los frutos a escoger deben de ser cosechados directamente del
árbol y no los que se encuentren caídos en el suelo debido a que pueden dar
lugar a la existencia de hongos y por consiguiente a la pudrición del fruto.
73
6. CONCLUSIONES
De acuerdo a los resultados obtenidos hemos llegado a las siguientes
conclusiones:
Existe variación en el tiempo de floración y fructificación entre las especies
en estudio, dado que se observan árboles floreados y fructificados tanto en
época seca como en lluviosa, que inclusive son influenciados por los
cambios de temperatura.
La mayoría de las especies en estudio tienen una sola floración y
fructificación por año, salvo Ficus maroma y Ficus insípida que tienen dos y
tres fenofases respectivamente.
El tamaño de la semilla de Ficus maroma en el fruto influyó directamente en
el porcentaje de pureza de la misma, principalmente porque a menor tamaño
de la semilla mayor dificultad de separar las impurezas.
La producción de frutos de los árboles seleccionados en las ocho vertientes
de la comuna Collana-Catacocha es alta (484,2 gr a 18590,1 gr), lo cual nos
permite garantizar una buena recolección de semillas anualmente y contar
con un banco de semillas para efectuar futuras repoblaciones en las
vertientes.
Ficus insípida y Mimosa twounsendii son las especies que alcanzan mayor
capacidad germinativa a nivel de laboratorio e invernadero con los cuatro
tratamientos aplicados y Ficus maroma a nivel de invernadero mientras que
Lafoencia acuminata, Persea caerulea, Styrax subargentae y Bursera
graveolens presentan bajos porcentajes de germinación; dado que en
ambos casos estos porcentajes dependen de la calidad de las semillas.
74
7. RECOMENDACIONES
Después de haber concluido con la presente investigación recomendamos que:
Para realizar la cosecha de los frutos se debe considerar la época de
recolección con el estado de madurez de los frutos. Por consiguiente si la
cosecha se realiza en temporadas secas las semillas habrán alcanzado su
madurez fisiológica, caso contrario se retrasa la madurez de los frutos y
semillas e incluso pueden presentar ataques de plagas y enfermedades.
Es necesario realizar un estudio minucioso con respecto a la madurez
fisiológica y tiempo de recolección de las semillas para conocer su
comportamiento a nivel de laboratorio e invernadero; así en el caso de
Ficus insípida es aconsejable cosechar los frutos directamente del árbol en
estado medio (pintón) para obtener un mejor resultado en la germinación,
dado que sus frutos son muy apetecidos por aves, murciélagos y plagas.
Dado que los tratamientos aplicados en la germinación de las semillas,
estadísticamente no marcan gran diferencia significativa con relación al
testigo (Agua destilada); se recomienda la aplicación del testigo debido a
que se puede obtener buenos resultados: por su forma de uso, por su valor
económico que es relativamente bajo y además es fácil de adquirirlo
comparado con los tratamientos químicos.
Que entidades gubernamentales consideren a estas especies que son
importantes para sostener las vertientes que benefician a los habitantes de
la comuna Collana-Catacocha al ejecutar proyectos de desarrollo
comunitario y que trabajen mancomunadamente para mantener y si es
posible aumentar los caudales de agua en estas vertientes.
75
8. LITERATURA CITADA
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80
9. APENDICES
Apéndice 1. Especies forestales seleccionadas para el estudio fenológico.
Lugar Nombre científico No. De árbol
Nombre vulgar
DAP H DC Ubicación geográfica Altura
(cm) (m) (cm) Latitud Longitud m snm
El Tingue
Ficus insípida 1 Yamiro 153,4 23 20,1
Ficus insípida 2 Yamiro 43,6 18,4 14 9547022"S" 648546"W" 1880
Ficus insípida 3 Yamiro 100,9 20,7 21
Ningomine Ficus insípida 1 Yamiro 58,9 20 16 9547782"S" 650469"W" 1950
eEl Carmelo
Ficus insípida 1 Yamiro 47,1 17 19,9
Ficus insípida 2 Yamiro 60,5 23 17,5
Ficus insípida 3 Yamiro 37,2 18 16,3 9559379"S" 641272"W" 1560
Ficus insípida 4 Yamiro 38,8 11 19,9
Ficus insípida 5 Yamiro 68,1 25 23
San Vicente
Ficus maroma 1 Yamiro 95,5 14,5 24
Ficus maroma 2 Yamiro 94,2 17 23 9549313"S" 657427"W" 1400
Ficus maroma 3 Yamiro 112,4 15 18,2
Finca Maldonado
Ficus maroma 1 Yamiro 97,4 25 19,4
Ficus maroma 2 Yamiro 101,9 20 36 040307"S" 793829"W" 1760
Ficus maroma 3 Yamiro 124,1 23 20,3
El Tingue
Styrax subargentae 1 Saguilamo 19,4 13,9 5,5
Styrax subargentae 2 Saguilamo 22 13,6 9,5
Styrax subargentae 3 Saguilamo 24,5 13,4 7,5 9547022"S" 648546"W" 1880
Styrax subargentae 4 Saguilamo 28,3 14,6 7,7
Styrax subargentae 5 Saguilamo 27,1 12 9
Finca Sr. Maldonado
Styrax subargentae 1 Saguilamo 23,9 7 3
Styrax subargentae 2 Saguilamo 15,6 9 4
Styrax subargentae * 3 Saguilamo 17,2 5 2 040307"S" 793829"W" 1760
81
Apéndice 1…….Continuación
Finca Sr.
Maldonado
Styrax subargentae 4 Saguilamo 15 9 8
Styrax subargentae 5 Saguilamo 28 12 14
El Purón Styrax subargentae 1 Saguilamo 72,3 12 16 9553750"S" 649000"W" 1400
Styrax subargentae 2 Saguilamo 38,5 7,6 8,4
El Carmelo
Styrax subargentae 1 Saguilamo 50,3 14 11,3
Styrax subargentae 2 Saguilamo 27,1 12 10,3
Styrax subargentae 3 Saguilamo 53,2 15 13,2 9559379"S" 641272"W" 1560
Styrax subargentae 4 Saguilamo 42,3 13,8 8,5
Styrax subargentae 5 Saguilamo 27,1 14,2 16,5
El Tingue
Persea caerulea 1 Palton 55,1 14,7 13,8
Persea caerulea 2 Palton 47,1 15,4 11,8
Persea caerulea 3 Palton 36,6 17 9,3 9547022"S" 648546"W" 1880
Persea caerulea 4 Palton 22 16,9 5,2
Persea caerulea * 5 Palton 35 10 12,5
El Purón Persea caerulea * 1 Palton 8,3 6 3 9553750"S" 649000"W" 1400
Persea caerulea * 2 Palton 19,4 7,8 6,4
El Carmelo
Persea caerulea 1 Palton 23,6 13,9 14,3
Persea caerulea 2 Palton 38,2 12 15,2 9559379"S" 641272"W" 1560
Persea caerulea * 3 Palton 13,4 6,3 5
Persea caerulea * 4 Palton 15,9 7 9
Ningomine
Lafoencia acuminata 1 Guararo 54,1 15,4 17
Lafoencia acuminata 2 Guararo 50,9 12,5 12 9547782"S" 650469"W" 1950
Lafoencia acuminata 3 Guararo 41,1 12 9,7
Lafoencia acuminata 4 Guararo 44,2 13 11,7
La Cocha
Lafoencia acuminata 1 Guararo 27,2 10 7,3
Lafoencia acuminata 2 Guararo 29 9 11,4 9549040"S" 650772"W" 1960
Lafoencia acuminata 3 Guararo 36,3 9,8 9,7
Lafoencia acuminata 4 Guararo 78 10 17,9
Ningomine Mimosa townsendii 1 Sururungo 28,6 9 10
82
Apéndice 1……Continuación
Ningomine
Mimosa townsendii 2 Sururungo 25,5 7 8
Mimosa townsendii 3 Sururungo 20,7 8 12 9547782"S" 650469"W" 1950
Mimosa townsendii 4 Sururungo 15,9 7 9
El Carmelo
Mimosa townsendii 1 Sururungo 19,4 8 7,7
Mimosa townsendii 2 Sururungo 23,7 11 8,1
Mimosa townsendii 3 Sururungo 17,2 9 5,4 9559379"S" 641272"W" 1560
Mimosa townsendii 4 Sururungo 15,3 11 5,3
Mimosa townsendii 5 Sururungo 21,3 13 8,2
El Purón
Senna mollísima 1 Vainillo 23,9 7,7
Senna mollísima 2 Vainillo 32,5 8,5
Senna mollísima 3 Vainillo 18,5 6,5 9553750"S" 649000"W" 1400
Senna mollísima 4 Vainillo 28,7 10,1
Senna mollísima 5 Vainillo 24,9 8,8
El Sauce
Bursera graveolens * 1 Palo santo 42,7 7,9 7,5
Bursera graveolens * 2 Palo santo 15,9 8,2 6,5
Bursera graveolens 3 Palo santo 16,6 8,4 10,3 9554850"S" 649650"W" 1400
Bursera graveolens * 4 Palo santo 14 10 5,6
Bursera graveolens * 5 Palo santo 15,6 8,9 5,5
* árboles no fructificados
84
Apéndice 2. Número y porcentajes de individuos florecidos y fructificados por sitio
Sitio El Tingue Ningomine La Cocha Finca Maldonado El Purón El Sauce El Carmelo San Vicente
Especie Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
dos
Flo
recid
os
Fru
ctifica
do
Bursera graveolens 1 1
20% 20%
Ficus insípida 3 3 1 1 5 5
100% 100% 100% 100% 100% 100%
Ficus maroma 3 3 3 3
100% 100% 100% 100%
Lafoencia acuminata 4 4 4 4
100% 100% 100% 100%
Mimosa townsendii 3 3 5 5
81% 81% 100% 100%
Persea caerulea 5 4 0 0 2 2
100% 80% 0 50% 50%
Senna mollísima 5 5
100% 100%
Styrax subargentae 5 5 4 4 2 2 5 5
100% 100% 80% 80% 100% 100% 100% 100%
TOTAL 13 12 8 8 4 4 7 7 7 7 1 1 17 17 3 3
85
Apéndice 3. Fenómeno de floración registrados por individuo para cada especie
Lugar Especie
Nº de
árbol E F M A M J J A S O N D
El Tingue
Ficus insípida 1 40 0 0 0 0 50 25 0 0 50 75 80 90 80 70 45 0 0 25 25 50 75 100 50
Ficus insípida 2 75 25 0 0 40 25 20 0 0 15 40 75 90 80 60 35 0 0 25 25 50 50 75 75
Ficus insípida 3 50 25 0 0 25 50 25 0 0 15 25 80 75 70 40 35 0 0 5 25 25 50 75 100
Ningomine Ficus insípida 1 25 25 0 0 75 50 20 0 0 25 75 75 90 85 70 40 0 0 25 25 50 100 75 50
El Carmelo
Ficus insípida 1 25 10 0 0 40 75 50 0 0 15 25 25 50 75 50 35 0 0 25 25 50 75 100 50
Ficus insípida 2 25 0 0 0 0 25 25 0 0 50 75 75 75 70 55 30 0 0 25 25 50 75 100 50
Ficus insípida 3 75 25 0 0 40 30 20 0 0 15 20 15 75 70 50 35 0 0 25 25 50 50 75 75
Ficus insípida 4 50 25 0 0 30 50 25 0 0 15 25 75 90 85 55 30 0 0 5 25 25 50 75 100
Ficus insípida 5 40 0 0 0 75 50 15 0 0 25 75 80 75 65 50 30 0 0 10 25 50 100 75 50
SUMATORIA 405 135 0 0 325 405 225 0 0 225 435 580 710 680 500 315 0 0 170 225 400 625 750 600
PROMEDIO 45,0 15,0 0,0 0,0 36,1 45,0 25,0 0,0 0,0 25,0 48,3 64,4 78,9 75,6 55,6 35,0 0,0 0,0 18,9 25,0 44,4 69,4 83,3 66,7
San Vicente
Ficus maroma 1 0 15 45 50 75 80 60 40 25 0 0 0 0 10 45 45 75 90 70 60 25 0 0 0
Ficus maroma 2 0 25 50 75 75 85 75 50 25 0 0 0 0 25 50 45 75 90 40 35 10 0 0 0
Ficus maroma 3 0 25 45 50 75 95 75 50 25 0 0 0 0 30 60 50 30 50 75 50 25 0 0 0
Finca Maldonado
Ficus maroma 1 0 15 45 50 75 80 65 65 25 0 0 0 0 0 0 45 25 50 75 50 25 0 0 0
Ficus maroma 2 0 25 40 50 75 90 75 65 25 0 0 0 0 0 0 45 75 90 70 50 25 0 0 0
Ficus maroma 3 0 20 38 50 75 75 65 20 10 0 0 0 0 0 0 45 75 50 50 25 10 0 0 0
SUMATORIA 0 125 263 325 450 505 415 290 135 0 0 0 0 65 155 275 355 420 380 270 120 0 0 0
PROMEDIO 0 20,8 43,8 54,2 75,0 84,2 69,2 48,3 22,5 0,0 0,0 0,0 0,0 10,8 25,8 45,8 59,2 70,0 63,3 45,0 20,0 0,0 0,0 0,0
El Tingue
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 70 60 25 45 65 45 25 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 50 45 25 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 45 25 15 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 60 25 50 75 50 35 15 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 50 25 15 0 0 0 0 0 0 0
Finca Maldonado
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 35 50 75 50 35 15 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 50 25 10 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 50 76 50 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 50 40 25 0 0 0 0 0 0 0
El Purón Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 35 50 75 30 0 0 0 0 0 0 0 0 0
86
Apéndice 3……Continuación
El Purón Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 95 50 25 0 0 0 0 0 0 0
El Carmelo
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 90 50 25 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 15 50 70 50 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 95 50 25 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 50 70 75 40 25 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 70 70 95 20 15 0 0 0 0 0 0 0
SUMATORIA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 180 345 720 1055 990 561 310 0 0 0 0 0 0 0
PROMEDIO 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 10,6 20,3 42,4 62,1 58,2 33,0 18,2 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
El Tingue
Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 15 35 55 90 100 95 70 50 25 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 15 35 50 90 100 90 50 25 10 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 15 35 55 90 100 90 50 25 10 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 25 60 90 100 90 75 50 25 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 25 50 90 100 90 70 50 15 0 0 0 0 0 0
El Purón Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
El Carmelo Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 45 75 50 100 95 45 25 10 0 0 0 0 0 0
El Carmelo
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 45 75 50 100 90 70 50 15 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
SUMATORIA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 110 245 420 550 700 640 430 275 110 0 0 0 0 0 0
PROMEDIO 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 10,0 22,3 38,2 50,0 63,6 58,2 39,1 25,0 10,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
Ningomine
Lafoencia acuminata 1 55 75 45 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 65
Lafoencia acuminata 2 70 50 25 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 75 80 65
Lafoencia acuminata 3 50 40 25 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 80 80 65
Lafoencia acuminata 4 55 25 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 25 50 75 80 65
La Cocha
Lafoencia acuminata 1 50 35 20 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 45 75 80 80 65
Lafoencia acuminata 2 75 60 45 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 50 75 75 80 65
Lafoencia acuminata 3 50 25 10 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 75 95 75 80 65
Lafoencia acuminata 4 75 50 30 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 70 100 85 80 65
SUMATORIA 480 360 205 120 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 120 265 455 570 610 520
PROMEDIO 60,0 45,0 25,6 15,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 15,0 33,1 56,9 71,3 76,3 65,0
Ningomine Mimosa caduca 1 45 55 60 75 70 45 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Mimosa caduca 2 45 75 80 75 70 45 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
87
Apéndice 3……Continuación
Ningomine Mimosa caduca 3 45 70 80 75 70 45 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Mimosa caduca 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
El Carmelo
Mimosa townsendii 1 30 50 70 80 75 45 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 25 75 50
Mimosa townsendii 2 45 70 85 90 75 45 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 25 30 50
Mimosa townsendii 3 45 50 60 75 65 45 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 15 25 50
Mimosa townsendii 4 45 50 60 65 50 25 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 10 35 50 70
Mimosa townsendii 5 45 75 80 50 50 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 20 30 50
SUMATORIA 345 495 575 585 525 320 135 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 45 120 210 270
PROMEDIO 38,3 55,0 63,9 65,0 58,3 35,6 15,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 5,0 13,3 23,3 30,0
El Purón
Senna mollísima 1 27 47 64 70 80 35 11 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 15
Senna mollísima 2 25 45 64 70 55 40 12 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 15
Senna mollísima 3 26 46 64 75 55 25 11 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 18
Senna mollísima 4 25 45 64 70 50 28 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 16
Senna mollísima 5 25 45 64 70 60 25 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 15
SUMATORIA 128 228 320 355 300 153 54 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 79
PROMEDIO 25,6 45,6 64,0 71,0 60,0 30,6 10,8 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 5,0 15,8
Sauce
Bursera graveolens 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Bursera graveolens 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Bursera graveolens 3 100 100 100 100 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 60 100 100 100 100
Bursera graveolens 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Bursera graveolens 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
SUMATORIA 100 100 100 100 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 60 100 100 100 100
PROMEDIO 20 20 20 20 5 0,0 0.0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 12 20 20 20 20
88
Apéndice 4. Fenómeno de fructificación registrados por individuo para cada especie.
Lugar Especie No. de E F M A M J J A S O N D
El Tingue
Ficus insípida 1 25 50 75 90 40 0 0 25 25 25 0 0 0 25 25 50 80 100 50 50 50 25 0 0
Ficus insípida 2 25 25 25 25 40 0 0 25 100 75 50 0 0 25 75 75 90 75 50 50 25 25 0 0
Ficus insípida 3 25 50 100 75 40 0 0 50 75 100 50 0 0 25 25 75 100 75 75 50 25 25 0 0
Ningomine Ficus insípida 1 25 100 25 0 0 0 0 55 100 50 0 0 0 25 25 50 75 100 50 40 25 0 0 0
El Carmelo
Ficus insípida 1 25 50 95 75 25 0 0 50 100 100 75 0 0 25 25 0 0 25 50 50 75 25 0 0
Ficus insípida 2 25 50 100 76 35 0 0 25 25 25 0 0 0 25 25 50 80 100 50 50 50 25 0 0
Ficus insípida 3 25 25 25 25 50 0 0 50 100 75 50 0 0 25 75 75 90 75 50 50 25 25 0 0
Ficus insípida 4 25 50 100 75 25 0 0 75 75 100 50 0 0 25 25 75 100 75 75 50 25 25 0 0
Ficus insípida 5 25 100 50 0 0 0 0 50 100 50 0 0 0 25 25 50 75 100 50 40 25 0 0 0
SUMATORIA 225 500 595 441 255 0 0 405 700 600 275 0 0 225 325 500 690 725 500 430 325 175 0 0
PROMEDIO 25,0 55,6 66,1 49,0 28,3 0,0 0,0 45,0 77,8 66,7 30,6 0,0 0,0 25,0 36,1 55,6 76,7 80,6 55,6 47,8 36,1 19,4 0,0 0,0
San Vicente
Ficus maroma 1 50 25 10 0 0 0 0 25 45 60 90 75 65 45 25 15 0 0 0 25 45 55 75 50
Ficus maroma 2 50 27 10 0 0 0 0 25 45 70 90 90 75 52 25 15 0 0 0 25 50 70 75 50
Ficus maroma 3 45 25 15 0 0 0 0 35 50 70 75 90 55 30 25 15 0 0 0 25 45 70 85 75
Finca Maldonado
Ficus maroma 1 25 25 0 0 0 0 0 30 50 70 80 90 75 50 25 15 0 0 0 25 45 60 85 65
Ficus maroma 2 50 25 10 0 0 0 0 40 55 65 73 90 70 50 30 15 0 0 0 30 48 62 75 65
Ficus maroma 3 25 25 15 0 0 0 0 0 5 25 50 75 75 50 35 15 0 0 0 25 45 70 25 25
SUMATORIA 245 152 60 0 0 0 0 155 250 360 458 510 415 277 165 90 0 0 0 155 278 387 420 330
PROMEDIO 40,8 25,3 10,0 0,0 0,0 0,0 0,0 25,8 41,7 60,0 76,3 85,0 69,2 46,2 27,5 15,0 0,0 0,0 0,0 25,8 46,3 64,5 70,0 55,0
El Tingue
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 45 20 10 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 50 25 15 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 50 75 50 25 15 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 20 50 75 50 25 15 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 80 60 45 40 25 0
Finca Maldonado
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 60 70 75 0 0 0 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 75 90 80 0 0 0 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 0 0 0 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 0 0 0 0
89
Apéndice 4……Continuación
El Purón Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 0 0 0 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 0 0 0 0
El Carmelo
Styrax subargentae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 60 95 75 60 25 10 0
Styrax subargentae 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 60 90 95 80 45 15 0
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 60 90 90 75 45 15 0
Styrax subargentae 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 75 90 85 80 45 25 0
Styrax subargentae 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30 75 95 80 60 45 25 0
SUMATORIA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 185 590 950 1090 595 340 170 0
PROMEDIO 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 10,9 34,7 55,9 64,1 35,0 20,0 10,0 0,0
El Tingue Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 90 100 90 90 80
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 75 100 100 90 90 70
Persea caerulea 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 60 100 100 90 90 50
Persea caerulea 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 25 50 60 97 100 90 90 50
Persea caerulea 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
El Purón Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
El Carmelo
Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 60 65 80 75 100 100 100 90 85
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 52 53 80 80 100 100 100 90 80
Persea caerulea 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Persea caerulea 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
SUMATORIA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 112 218 360 425 587 600 560 540 415
PROMEDIO 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 10,2 19,8 32,7 38,6 53,4 54,5 50,9 49,1 37,7
Ningomine
Lafoencia acuminata 1 0 0 0 0 0 10 20 45 60 70 80 90 50 45 20 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 2 0 0 0 0 0 10 20 50 60 70 80 75 80 55 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 3 0 0 0 0 0 10 25 50 60 70 75 50 45 80 20 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 4 0 0 0 0 0 10 20 45 60 70 80 85 40 20 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0
La Cocha
Lafoencia acuminata 1 0 0 0 0 0 10 25 50 60 70 75 80 48 25 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 2 0 0 0 0 0 10 20 50 60 70 80 75 82 50 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 3 0 0 0 0 0 10 23 45 60 70 75 80 95 50 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Lafoencia acuminata 4 0 0 0 0 0 10 25 50 60 70 80 65 80 50 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0
SUMATORIA 0 0 0 0 0 80 178 385 480 560 625 600 520 375 160 0 0 0 0 0 0 0 0 0
PROMEDIO 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 10,0 22,3 48,1 60,0 70,0 78,1 75,0 65,0 46,9 20,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
90
Apéndice 5. Datos meteorológicos de precipitación del cantón Paltas.
INAMHI - INSTITUTO NACIONAL DE METEOROLOGÍA E HIDROLOGÍA
SECRETARÍA NACIONAL DEL AGUA DEMARCACIÓN HIDROGRÁFICA PUYANGO-CATAMAYO
Series de Precipitación diaria (mm)
ESTACIÓN: M515 CATACOCHA
CODIGO AÑO MES V01 V02 V03 V04 V05 V06 V07 V08 V09 V10 V11 V12 V13 V14 V15 V16 V17 V18 V19 V20 V21 V22 V23 V24 V25 V26 V27 V28 V29 V30 V31
M515 2009 1 0,0 0,0 0,0 2,2 2,4 4,6 10,2 0,0 0,0 4,2 7,9 24,0 14,0 19,7 36,5 16,1 27,4 3,6 0,0 0,0 20,8 12,1 10,6 44,9 7,6 0,0 0,0 0,0 5,5 10,4 5,9
M515 2009 2 0,0 4,6 7,9 0,0 0,0 6,5 0,0 0,0 18,2 3,1 0,0 0,0 20,1 47,7 14,7 3,0 40,1 32,6 0,0 0,0 29,9 26,9 16,4 11,2 3,8 8,2 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 3 0,0 3,6 4,9 0,0 0,0 0,0 0,0 2,6 11,1 2,2 0,0 25,6 14,6 30,8 0,0 0,0 0,0 3,6 28,8 10,6 0,0 57,1 2,0 0,0 3,8 11,0 0,0 0,0 165,4 14,6 0,0
M515 2009 4 2,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 24,9 0,0 0,0 0,0 44,0 5,2 0,9 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 16,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 9,8 0,0 0,0
M515 2009 5 0,0 33,4 4,6 39,7 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 5,4 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 1,6 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 6 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 7 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M516 2009 8 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 9 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 10 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 1,2 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 11 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 1,4 2,6 7,2 0,0 0,0 0,0 0,0
M515 2009 12 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 7,8 4,2 6,7 0,0 0,0 10,8 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 9,2 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
91
Apéndice 6. Resumen Térmico del cantón Paltas
Estación Altitud E F M A M J J A S O N D Anual Media
Cariamanga 1960 17,7 17,6 17,9 18,1 18,1 17,9 17,9 18,2 18,0 18,1 18,0 17,9 215,4 17,9
Catacocha 1840 17,7 17,8 18,1 18,0 18,0 17,8 18,0 18,4 18,8 18,7 18,7 18,4 218,4 18,2
Yamana 1000 22,5 22,4 22,7 23,0 23,0 22,7 22,7 23,1 22,9 23,0 22,9 22,7 273,6 22,8
Macandamine 1000 22,5 22,4 22,7 23,0 23,0 22,7 22,7 23,1 22,9 23,0 22,9 22,7 273,6 22,8
Playas 940 23,0 22,9 23,3 23,5 23,5 23,3 23,3 23,7 23,4 23,5 23,4 23,3 280,0 23,3
La Merced 1000 22,5 22,4 22,7 23,0 23,0 22,7 22,7 23,1 22,9 23,0 22,9 22,7 273,6 22,8
El Naranjo 1000 22,5 22,4 22,7 23,0 23,0 22,7 22,7 23,1 22,9 23,0 22,9 22,7 273,6 22,8
San Vicente 1320 20,4 20,3 20,7 21,0 21,0 20,7 20,7 21,0 20,8 20,9 20,8 20,7 900,0 20,7
Ningomine 1950 17,0 16,9 17,2 17,4 17,4 17,2 17,2 17,4 17,3 17,3 17,3 17,2 206,7 17,2
Tingue 1880 17,3 17,2 17,5 17,7 17,7 17,5 17,5 17,7 17,6 17,6 17,6 17,5 210,4 17,5
L a Cocha 1960 17,0 16,9 17,2 17,4 17,4 17,2 17,2 17,4 17,3 17,4 17,3 17,2 207,0 17,2
Purón 1400 19,9 19,8 20,2 20,5 20,5 20,2 20,2 20,5 20,3 20,4 20,3 20,2 242,9 20,2
Carmelo 1560 19,1 19,0 19,3 19,6 19,5 19,3 19,3 19,6 19,4 19,5 19,4 19,3 232,2 19,3
Punto 1520 19,2 19,2 19,5 19,8 19,7 19,5 19,5 19,8 19,6 19,7 19,6 19,5 234,6 19,5
Sauce 1400 19,9 19,8 20,2 20,5 20,5 20,2 20,2 20,5 20,3 20,4 20,3 20,2 242,9 20,2
Ecuación Regional: Y = 28,05 + (- 0,0056) X
92
Apéndice 7. Potencial productivo por árbol semillero de las especies en estudio
Lugar Especie
Nr. Árbol Nfp Pcr Prt Tsr NFT
Sem/ fruto
Pms Nfm PS
(gr) (gr)
El Tingue
Ficus insípida 1 133 8 4 2 8512 298 0,701 4 1491,7
Ficus insípida 2 70 5 3 5 5250 298 0,690 4 905,6
Ficus insípida 3 114 10 5 2 11400 298 0,705 4 2009,3
Ningomine Ficus insípida 1 51 7 6 2 4284 298 0,700 4 749,7
El Carmelo
Ficus insípida 1 129 3 5 4 7750 298 0,702 4 1360,1
Ficus insípida 2 83 7 4 2 4620 298 0,672 4 776,2
Ficus insípida 3 156 3 6 3 8415 298 0,699 4 1470,5
Ficus insípida 4 150 5 3 2 4495 298 0,681 4 765,3
Ficus insípida 5 177 3 4 5 10590 298 0,692 4 1832,1
San Vicente
Ficus maroma 1 246 9 8 3 53064 91 0,123 11 593,4
Ficus maroma 2 189 7 6 2 15862 100 0,123 11 177,4
Ficus maroma 3 231 8 7 2 25872 98 0,120 11 282,2
Finca Maldonado
Ficus maroma 1 255 3 8 8 48864 95 0,118 11 524,2
Ficus maroma 2 212 9 7 9 120299 94 0,125 11 1367,0
Ficus maroma 3 215 9 8 4 61872 91 0,124 11 697,5
El Tingue
Styrax subargentae 1 90 4 7 5 12623 1 590,300 1000 7451,6
Styrax subargentae 2 94 6 6 4 13512 1 588,200 1000 7947,8
Styrax subargentae 3 96 7 5 4 13370 1 591,000 1000 7901,7
Styrax subargentae 4 98 5 7 5 17179 1 590,600 1000 10146,0
Styrax subargentae 5 87 4 7 6 14616 1 590,300 1000 8627,8
Finca Maldonado
Styrax subargentae 1 88 5 8 6 21000 1 588,400 1000 12356,4
Styrax subargentae 2 95 3 5 5 7138 1 599,800 1000 4281,1
Styrax subargentae 3 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
Styrax subargentae 4 98 5 6 5 14750 1 587,900 1000 8671,5
Styrax subargentae 5 94 5 7 6 19810 1 589,000 1000 11668,1
El Purón Styrax subargentae 1 63 5 3 2 1880 1 590,200 1000 1109,6
Styrax subargentae 2 62 2 3 2 740 1 590,000 1000 436,6
El Carmelo
Styrax subargentae 1 70 7 2 1 973 1 591,000 1000 575,0
Styrax subargentae 2 93 2 1 2 371 1 589,200 1000 218,4
Styrax subargentae 3 81 5 4 1 1613 1 589,900 1000 951,7
Styrax subargentae 4 91 2 2 1 365 1 588,100 1000 214,5
Styrax subargentae 5 89 2 1 2 354 1 590,700 1000 209,1
El Tingue
Persea caerulea 1 120 1 3 4 1442 1 246,300 1000 355,2
Persea caerulea 2 117 2 2 3 1404 1 246,400 1000 345,9
Persea caerulea 3 103 2 5 1 1028 1 245,900 1000 252,9
Persea caerulea 4 98 4 2 2 1560 1 247,300 1000 385,8
Persea caerulea 5 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
El Purón Persea caerulea 1 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
Persea caerulea 2 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
El Carmelo
Persea caerulea 1 113 5 1 3 1690 1 246,200 1000 416,1
Persea caerulea 2 121 3 4 2 2908 1 246,000 1000 715,4
Persea caerulea 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0,0
Persea caerulea 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0,0
93
Apéndice …...Continuación
Ningomine
Lafoencia acuminata 1 103 3 4 2 2464 568 29,700 2 36590,4
Lafoencia acuminata 2 96 1 2 3 578 568 29,500 2 8525,5
Lafoencia acuminata 3 101 2 2 1 404 568 29,300 2 5918,6
Lafoencia acuminata 4 105 2 1 1 210 568 29,200 2 3066,0
La Cocha
Lafoencia acuminata 1 20 1 2 1 41 568 29,000 2 589,7
Lafoencia acuminata 2 19 4 2 1 149 568 29,600 2 2210,1
Lafoencia acuminata 3 28 3 2 1 166 568 28,900 2 2398,7
Lafoencia acuminata 4 36 1 4 2 289 568 29,100 2 4209,8
Ningomine
Mimosa caduca 1 9 2 2 1 37 6 28,000 167 6,1
Mimosa caduca 2 11 2 2 1 45 6 28,000 167 7,6
Mimosa caduca 3 9 1 1 1 9 6 28,200 167 1,4
Mimosa caduca 4 0 0 0 1 0 0 0,000 0 0,0
El Carmelo
Mimosa caduca 1 35 7 4 1 971 6 27,900 167 162,2
Mimosa caduca 2 27 2 1 1 53 6 28,600 167 9,1
Mimosa caduca 3 30 1 2 2 119 6 28,200 167 20,0
Mimosa caduca 4 19 1 2 2 75 5 28,800 167 12,9
Mimosa caduca 5 23 2 3 1 136 6 29,000 167 23,6
El Purón
Senna mollísima 1 17 8 9 5 6060 85 33,800 12 17069,0
Senna mollísima 2 23 6 6 5 4080 85 33,900 12 11526,0
Senna mollísima 3 14 4 5 4 1093 85 33,300 12 3034,0
Senna mollísima 4 22 3 6 6 2376 85 32,700 12 6474,6
Senna mollísima 5 22 4 5 6 2620 85 32,000 12 6986,7
El Sauce
Bursera graveolens 1 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
Bursera graveolens 2 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
Bursera graveolens 3 173 3 4 2 4152 1 253,130 1000 1051,0
Bursera graveolens 4 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
Bursera graveolens 5 0 0 0 0 0 0 0,000 0 0,0
94
Apéndice 8. Calidad física de las semillas por lugar/especie, según las Normas ISTA
Lugar Especie No- de árbol
Pms (gr) Pureza (%) Contenido de Humedad %
El Tingue
Ficus insípida 1 0,701 62,6 10
Ficus insípida 2 0,69 62,8 9,9
Ficus insípida 3 0,705 61,3 9,5
TOTAL 2,096 186,7 29,4
PROMEDIO 0,7 62,2 9,8
DESVEST 0,0 0,8 0,3
Ningomine Ficus insípida 1 0,7 61,9 9,7
TOTAL 0,7 61,9 9,7
PROMEDIO 0,7 61,9 9,7
DESVEST 0 0 0
El Carmelo
Ficus insípida 1 0,702 62,1 10,1
Ficus insípida 2 0,672 62,5 9,8
Ficus insípida 3 0,699 62,6 10,3
Ficus insípida 4 0,681 62,7 10
Ficus insípida 5 0,692 62,4 9,5
TOTAL 3,446 312,3 49,7
PROMEDIO 0,7 62,5 9,9
DESVEST 0,4 39,3 6,2
San Vicente
Ficus maroma 1 0,123 19,4 10
Ficus maroma 2 0,123 19,1 9,5
Ficus maroma 3 0,12 19,8 9,9
TOTAL 0,366 58,3 29,4
PROMEDIO 0,1 19,4 9,8
DESVEST 0,0 0,4 0,3
Finca Maldonado
Ficus maroma 1 0,118 18,9 9,6
Ficus maroma 2 0,125 19 9,6
Ficus maroma 3 0,124 19,5 9,6
TOTAL 0,367 57,4 28,8
PROMEDIO 0,1 19,1 9,6
DESVEST 0,0 0,3 0,0
El Tingue
Styrax subargentae 1 590,3 83,4 26
Styrax subargentae 2 588,2 83,9 25,8
Styrax subargentae 3 591 83,2 25,6
Styrax subargentae 4 590,6 84 25,9
Styrax subargentae 5 590,3 83 26
TOTAL 2950,4 417,5 129,3
PROMEDIO 590,1 83,5 25,9
DESVEST 1,1 0,4 0,2
Finca Maldonado
Styrax subargentae 1 588,4 83,4 26
Styrax subargentae 2 599,8 83,3 26
Styrax subargentae 4 587,9 83,5 25,9
Styrax subargentae 5 589 83,7 25,8
TOTAL 2365,1 333,9 103,7
PROMEDIO 473 66,8 20,7
DESVEST 5,7 0,2 0,1
El Purón Styrax subargentae 1 590,2 83 25,7
Styrax subargentae 2 590 83,4 25,9
TOTAL 1180,2 166,4 51,6
PROMEDIO 590,1 83,2 25,8
DESVEST 0,1 0,3 0,1
95
Apéndice 8……Continuación
El Carmelo
Styrax subargentae 1 591 83,2 26
Styrax subargentae 2 589,2 83 26
Styrax subargentae 3 589,9 83,4 25,9
Styrax subargentae 4 588,1 83,4 25,8
Styrax subargentae 5 590,7 83,1 26
TOTAL 2948,9 416,1 129,7
PROMEDIO 589,8 83,2 25,9
DESVEST 1,2 0,2 0,1
El Tingue
Persea caerulea 1 246,3 94,5 29
Persea caerulea 2 246,4 94,2 29
Persea caerulea 3 245,9 94,5 29,4
Persea caerulea 4 247,3 94,9 29,1
TOTAL 985,9 378,1 116,5
PROMEDIO 246,475 94,525 29,125
DESVEST 0,6 0,3 0,2
El Carmelo
Persea caerulea 1 246,2 94,1 29
Persea caerulea 2 246 94,6 29
TOTAL 492,2 188,7 58
PROMEDIO 246,1 94,4 29
DESVEST 0,1 0,4 0,0
Ningomine
Lafoencia acuminata 1 29,7 84,4 26
Lafoencia acuminata 2 29,5 84,6 26,3
Lafoencia acuminata 3 29,3 84,9 26,1
Lafoencia acuminata 4 29,2 84,7 26
TOTAL 117,7 338,6 104,4
PROMEDIO 29,4 84,7 26,1
DESVEST 0,2 0,2 0,1
La Cocha
Lafoencia acuminata 1 29 84,4 25,9
Lafoencia acuminata 2 29,6 84,8 25,7
Lafoencia acuminata 3 28,9 84,5 25,8
Lafoencia acuminata 4 29,1 84,4 26
TOTAL 116,6 338,1 103,4
PROMEDIO 29,2 84,5 25,9
DESVEST 0,3 0,2 0,1
Ningomine
Mimosa townsendii 1 28 62,1 10
Mimosa townsendii 2 28 62,1 10,4
Mimosa townsendii 3 28,2 62,4 10,1
TOTAL 84,2 186,6 30,5
PROMEDIO 28,1 62,2 10,2
DESVEST 0,1 0,2 0,2
El Carmelo
Mimosa townsendii 1 27,9 62,8 10
Mimosa townsendii 2 28,6 62,9 9,9
Mimosa townsendii 3 28,2 62,4 9,9
Mimosa townsendii 4 28,8 62,3 9,7
Mimosa townsendii 5 29 62,4 9,5
TOTAL 142,5 312,8 49
PROMEDIO 28,5 62,6 9,8
DESVEST 0,4 0,3 0,2
96
Apéndice 8……Continuación
El Purón
Senna mollísima 1 33,8 94,5 10
Senna mollísima 2 33,9 94,5 9,9
Senna mollísima 3 33,3 94,6 9,5
Senna mollísima 4 32,7 94,3 9,6
Senna mollísima 5 32 94 9,5
TOTAL 165,7 471,9 48,5
PROMEDIO 33,1 94,4 9,7
DESVEST 0,8 0,2 0,2
El Sauce Bursera graveolens 3 253,13 83,1 9,9
TOTAL 253,13 83,1 9,9
PROMEDIO 253,13 83,1 9,9
DESVEST 0 0 0
97
Apéndice 9. Formato para la evaluación diaria de germinación de las ocho especies a nivel de laboratorio.
Fecha
Espec
ie
Tratamien
to Réplica
Semillas
germinada
s (%)
Tiempo
acumulad
o (horas)
Semillas
no
germinada
s (%)
Semillas
contaminada
s (%)
1 2 3 4
Total
98
Apéndice 10. Porcentajes de germinación por repetición a nivel de laboratorio.
Especie Repeticiones Promedio Germina-
I II III IV ción %
To Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0
Ficus insípida 100 100 100 100 100,0 100,0
Ficus maroma 0 52 0 0 13,0 13,0
Lafoencia acuminata 32 48 32 24 34,0 34,0
Mimosa townsendii 96 96 100 96 97,0 97,0
Persea caerulea 36 44 40 28 37,0 37,0
Senna mollísima 40 32 36 52 40,0 40,0
Styrax subargentae 48 20 0 0 17,0 17,0
T1
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0
Ficus insípida 100 100 100 100 100 100
Ficus maroma 52 16 0 0 17 17
Lafoencia acuminata 40 28 28 28 31 31
Mimosa townsendii 100 96 96 100 98 98
Persea caerulea 56 76 56 52 60 60
Senna mollísima 32 40 52 56 45 45
Styrax subargentae 20 0 0 0 5 5
T2
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0
Ficus insípida 100 100 100 100 100 100
Ficus maroma 8 0 0 0 2 2
Lafoencia acuminata 28 28 28 12 24 24
Mimosa townsendii 100 100 100 80 95 95
Persea caerulea 72 64 60 60 64 64
Senna mollísima 68 48 44 36 49 49
Styrax subargentae 0 0 0 0 0 0
T3
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0
Ficus insípida 100 100 100 96 99 99
Ficus maroma 20 0 0 0 5 5
Lafoencia acuminata 24 20 24 20 22 22
Mimosa townsendii 100 96 96 96 97 97
Persea caerulea 48 56 68 72 61 61
Senna mollísima 60 80 80 72 73 73
Styrax subargentae 28 24 0 0 0 0
To testigo (agua destilada)
T1 Tratamiento uno (nitrato de potasio) T2 Tratamiento dos (ácido giberélico)
T3 Tratamiento tres (ácido sulfúrico)
99
Apéndice 11. Fotografías de germinación de las especies a nivel de Laboratorio
Figura 41. Semillas de Bursera graveolens
Figura 42. Semillas y Germinación de Ficus insípida
Figura 43. Semillas y Germinación de Ficus maroma
100
Figura 44. Semillas y Germinación de Lafoencia acuminata
Figura 45. Semillas y Germinación de Mimosa townsendii
Figura 46. Semillas y Germinación de Persea caerulea
101
Figura 47. Semillas y Germinación de Senna mollísima
Figura 48. Semillas y Germinación de Styrax subargentae
102
Apéndice 12. Formato para la evaluación diaria de germinación de las ocho especies a nivel de invernadero.
Fecha
Espec
ie
Tratamien
to Réplica
Semillas
germinada
s (%)
Tiempo
acumulad
o (horas)
Semillas
no
germinada
s (%)
Semillas
contaminada
s (%)
1 2 3 4
Total
103
Apéndice 13. Porcentajes de germinación por repetición a nivel de invernadero.
Especie Repeticiones
Promedio Germina-
I II III IV ciòn %
To
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0,0
Ficus insípida 60 80 40 30 52,5 32,8
Ficus maroma 60 100 100 50 77,5 48,4
Lafoencia acuminata 50 30 30 30 35 21,9
Mimosa townsendii 100 100 70 80 87,5 54,7
Persea caerulea 60 70 80 30 60 37,5
Senna mollísima 60 20 10 30 30 18,8
Styrax subargentae 20 10 10 0 10 6,3
T1
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0,0
Ficus insípida 100 80 40 100 80 50,0
Ficus maroma 100 100 100 100 100 62,5
Lafoencia acuminata 20 20 40 30 27,5 17,2
Mimosa townsendii 100 80 80 100 90 56,3
Persea caerulea 0 10 10 40 15 9,4
Senna mollísima 20 40 30 10 25 15,6
Styrax subargentae 10 10 0 10 7,5 4,7
T2
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0
Ficus insípida 70 70 100 100 85 53,1
Ficus maroma 70 80 70 90 77,5 48,4
Lafoencia acuminata 10 10 0 10 7,5 4,7
Mimosa townsendii 100 100 100 100 100 62,5
Persea caerulea 40 30 50 40 40 25,0
Senna mollísima 30 20 30 30 27,5 17,2
Styrax subargentae 30 20 10 0 15 9,4
T3
Bursera graveolens 0 0 0 0 0 0,0
Ficus insípida 60 90 90 90 82,5 51,6
Ficus maroma 100 100 100 100 100 62,5
Lafoencia acuminata 10 10 0 0 5 3,1
Mimosa townsendii 100 100 100 100 100 100,0
Persea caerulea 50 40 50 50 47,5 47,5
Senna mollísima 20 40 40 40 35 35,0
Styrax subargentae 10 20 0 20 12,5 12,5
T₀= Testigo (agua destilada)
T₁= Tratamiento uno (nitrato de potasio) T₂= Tratamiento dos (ácido giberélico) T₃= Tratamiento tres (ácido sulfúrico)
104
Apéndice 14. Fotografías de germinación de las especies a nivel de Invernadero
Foto 49. Germinación de Ficus insípida
Foto 50. Germinación de Ficus maroma Foto 51. Germinación de Lafoencia acuminata
Foto 52. Germinación de Mimosa townsendii Foto 53. Germinación de Persea caerulea
105
Foto 54. Germinación de Senna mollísima Foto 55. Germinación de Styraxsubargentae
104
Apéndice 15. Diseño experimental para la especie de Bursera graveolens a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 0 0 0 0 0 0 Nitrato de potasio 4 4 0 0 8 2 Ácido giberélico 4 4 4 16 28 7 Ácido sulfúrico 12 0 0 0 12 3 SUMATORIA 20 8 4 16 48 12 MEDIA 5 2 1 4 3
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 40,00 13,33
Tratamiento 3 104,00 34,67 1,63 5,95 3,49
Error 9 192,00 21,33 TOTAL 15 336,00 X= 3 CV= 153,96 %
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
105
Apéndice 16. Diseño experimental para la especie de Ficus insípida a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 100 100 100 100 400 100 Nitrato de potasio 100 100 100 96 396 99 Ácido giberélico 100 100 100 100 400 100 Ácido sulfúrico 100 100 100 100 400 100 SUMATORIA 400 400 400 396 1596 399 MEDIA 100 100 100 99 99,75
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 3,00 1,00
Tratamiento 3 3,00 1,00 1,00 5,95 3,49
Error 9 9,00 1 TOTAL 15 15,00 X= 99,75 CV= 1,00 %
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
106
Apéndice 17. Diseño experimental para la especie de Ficus maroma a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 0 52 0 0 52 13 Nitrato de potasio 20 0 0 0 20 5 Ácido giberélico 52 16 0 0 68 17 Ácido sulfúrico 8 0 0 0 8 2 SUMATORIA 80 68 0 0 148 37 MEDIA 20 17 0 0 9,25
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 1387,00 462,33
Tratamiento 3 579,00 193,00 0,62 5,95 3,49
Error 9 2793,00 310,33 TOTAL 15 4759,00 X= 9,25 CV= 190,45%
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
107
Apéndice 18. Diseño experimental para la especie de Lafoencia acuminata a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 32 48 32 24 136 34 Nitrato de potasio 24 20 24 20 88 22 Ácido giberélico 40 28 28 28 124 31 Ácido sulfúrico 28 28 28 12 96 24 SUMATORIA 124 124 112 84 444 111 MEDIA 31 31 28 21 27,75
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 267,00 89,00
Tratamiento 3 387,00 129,00 3,29 5,95 3,49
Error 9 353,00 39,22 TOTAL 15 1007,00 X=27,75 CV= 22,57 %
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
108
Apéndice 19. Diseño experimental para la especie de Mimosa towsendii a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA Agua destilada 96 96 100 96 388 97 Nitrato de potasio 100 96 96 96 388 97 Ácido giberélico 100 96 96 100 392 98 Ácido sulfúrico 100 100 100 80 380 95 SUMATORIA 396 388 392 372 1548 387 MEDIA 99 97 98 93 96,75
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 83,00 27,67
Tratamiento 3 19,00 6,33 0,22 5,95 3,49
Error 9 257,00 28,56 TOTAL 15 359,00 X= 96,75 CV= 5,52 %
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
107
Apéndice 20. Diseño experimental para la especie de Persea caerulea a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
PRUEBA DE TUKEY Agua destilada 36 44 40 28 148 37
Nitrato de potasio 48 56 68 72 244 61
TRATAMIENTOS MEDIA NS
Ácido giberélico 56 76 56 48 236 59
Ácido sulfúrico 64 A
Ácido sulfúrico 72 64 60 60 256 64
Nitrato de potasio 61 A
SUMATORIA 212 240 224 208 884 221
Ácido giberélico 59 A
TOTAL 53 60 56 52 55,25
Agua destilada 57 B
NS= Nivel de Significancia
Análisis de varianza
A= alto B= bajo
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 155,00 51,67
Tratamiento 3 1827,00 609,00 6,278 ** 5,95 3,49
Error 9 873,00 97,00 TOTAL 15 2855,00 X= 55,25 CV= 17,83 %
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección **= no significativo
108
Apéndice 21. Diseño experimental para la especie de Senna mollísima a nivel de laboratorio.
PRUEBA DE TUKEY
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
TRATAMIENTOS MEDIA NS
Agua destilada 40 32 36 52 160 40
Nitrato de potasio 73 A
Nitrato de potasio 60 80 80 72 292 73
Ácido sulfúrico 49 AB
Ácido giberélico 32 40 52 56 180 45
Ácido giberélico 45 B
Ácido sulfúrico 68 48 44 36 196 49
Agua destilada 40 B
SUMATORIA 200 200 212 216 828 207
AB= Punto intermedio entre
MEDIA 50 50 53 54 51,75
A y B
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 51,00 17,00
Tratamiento 3 2571,00 857,00 5,67 * 5,95 3,49
Error 9 1361,00 151,22
TOTAL 15 3983,00 X= 51,75 CV= 23,76%
De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección * = significativo
109
Apéndice 22. Diseño experimental para la especie de Styrax subargentae a nivel de laboratorio.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 48 20 0 0 68 17 Nitrato de potasio 28 24 0 0 52 13 Ácido giberélico 20 0 0 0 20 5 Ácido sulfúrico 0 0 0 0 0 0 SUMATORIA 96 44 0 0 140 35 MEDIA 24 11 0 0 8,75
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 1563,00 521,00
Tratamiento 3 707,00 235,67 2,19 5,95 3,49
Error 9 969,00 107,67 TOTAL 15 3239,00 X= 8,75 CV= 118,59 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
110
Apéndice 23. Diseño experimental para la especie de Ficus insípida a nivel de invernadero.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 60,0 80 40,0 30 210 52,5
Nitrato de potasio 100,0 80 40,0 100 320 80,0
Ácido giberélico 70,0 70 100,0 100 340 85,0
Ácido sulfúrico 60,0 90 90,0 90 330 82,5
SUMATORIA 290,0 320 270,0 320 1200 300,0
MEDIA 72,5 80 67,5 80 75,0
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 450,00 150,00
Tratamiento 3 2750,00 916,67 1,65 5,95 3,49
Error 9 5000,00 555,56
TOTAL 15 8200,00
X= 75,0 CV= 31,43 % De donde:
GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
111
Apéndice 24. Diseño experimental para la especie de Ficus maroma a nivel de invernadero.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 60 100 100 50 310 77,5
Nitrato de potasio 100 100 100 100 400 100
Ácido giberélico 70 80 70 90 310 77,5
Ácido sulfúrico 100 100 100 100 400 100
SUMATORIA 330 380 370 340 1420 355
MEDIA 82,5 95 92,5 85 88,75
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 425,00 141,67
Tratamiento 3 2025,00 675,00 3,16 5,95 3,49
Error 9 1925,00 213,89
TOTAL 15 4375,00
X= 88,75 CV= 16,48 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
111
Apéndice 25. Diseño experimental para la especie de Lafoencia acuminata a nivel de invernadero. PRUEBA DE TUKEY
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
TRATAMIENTOS MEDIA NS
Agua destilada 50 30 30 30 140 35
Agua destilada 35,0 A
Nitrato de potasio 20 20 40 30 110 27,5
Nitrato de potasio 27,5 A
Ácido giberélico 10 10 0 10 30 7,5
Ácido giberélico 7,5 B
Ácido sulfúrico 10 10 0 0 20 5
Ácido sulfúrico 5,0 B
SUMATORIA 90 70 70 70 300 75
NS= Nivel de Significancia
MEDIA 22,5 17,5 17,5 17,5 18,75
A= alto B= bajo
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05 Réplica 3 75,00 25,00 Tratamiento 3 2625,00 875,00 11,67 ** 5,95 3,49 Error 9 675,00 75,00 TOTAL 15 3375,00 X= 18,75 CV= 46,19 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección **= no significativo
112
Apéndice 26. Diseño experimental para la especie de Mimosa townsendii a nivel de invernadero.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA Agua destilada 100 100 70,0 80 350 87,50 Nitrato de potasio 100 80 80,0 100 360 90,00 Ácido giberélico 100 100 100,0 100 400 100,00 Ácido sulfúrico 100 100 100,0 100 400 100,00 SUMATORIA 400 380 350,0 380 1510 377,50 MEDIA 100 95 87,5 95 94,38
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05 Réplica 3 318,75 106,25 Tratamiento 3 518,75 172,92 2,06 5,95 3,49 Error 9 756,25 84,03 TOTAL 15 1593,75 X= 94,38 CV= 9,71 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
113
Apéndice 27. Diseño experimental para la especie de Persea caerulea a nivel de invernadero PRUEBA DE TUKEY
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
TRATAMIENTOS MEDIA
Agua destilada 36 44 40 28 148 37
Ácido sulfúrico 64
Nitrato de potasio 48 56 68 72 244 61
Nitrato de potasio 61
Ácido giberélico 56 76 56 48 236 59
Ácido giberélico 59
Ácido sulfúrico 72 64 60 60 256 64
Agua destilada 57
SUMATORIA 212 240 224 208 884 221
NS= Nivel de Significancia
TOTAL 53 60 56 52 55,25
A= alto B=bajo
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05 Réplica 3 155,00 51,67 Tratamiento 3 1827,00 609,00 6,278 ** 5,95 3,49 Error 9 873,00 97,00 TOTAL 15 2855,00 X= 55,25 CV= 17,83 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección *= significativo
114
Apéndice 28. Diseño experimental para la especie de Senna mollísima a nivel de invernadero.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 60 20 10 30 120 30,00
Nitrato de potasio 20 40 30 10 100 25,00
Ácido giberélico 30 20 30 30 110 27,50
Ácido sulfúrico 20 40 40 40 140 35,00
SUMATORIA 130 120 110 110 470 117,50
MEDIA 32,5 30 27,5 27,5 29,38
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 68,75 22,92
Tratamiento 3 218,75 72,92 0,30 5,95 3,49
Error 9 2206,25 245,14
TOTAL 15 2493,75
X= 29,38 CV= 53,30 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
115
Apéndice 29. Diseño experimental para la especie de Styrax subargentae a nivel de invernadero.
TRATAMIENTOS I II III IV SUMATORIA MEDIA
Agua destilada 20,0 10 10 0,0 40 10,00
Nitrato de potasio 10,0 10 0 10,0 30 7,50
Ácido giberélico 30,0 20 10 0,0 60 15,00
Ácido sulfúrico 10,0 20 0 20,0 50 12,50
SUMATORIA 70,0 60 20 30,0 180 45,00
MEDIA 17,5 15 5 7,5
11,25
Análisis de varianza
Ft
FUENTES DE VARIACIÓN GL SC CM Fc 0.01 0.05
Réplica 3 425,00 141,67
Tratamiento 3 125,00 41,67 0,60 5,95 3,49
Error 9 625,00 69,44
TOTAL 15 1175,00
X= 11,25 CV= 74,07 %
De donde: GL= grados de libertad CM= cuadrados medios Ft= factor tabular
SC= suma de cuadrados Fc= factor de corrección
116
Apéndice 30. Cartilla