fÁrmacos de abuso
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FÁRMACOS DE ABUSO
CLASIFICACIÓN DE LOS FÁRMACOS DE ABUSO
La siguiente clasificación de los fármacos de abusoelaborada por el Consejo Nacional en Problemas deFarmacodependencia, en términos generales, conciliaaspectos farmacológicos, jurídicos, psiquiátricos ysociales:
1. Estupefacientes
a) Opio y derivados
-Naturales: morfina, codeína, tebaína.
-Semisintéticos: heroína, dehidrocodona,dihidromorfina.
-Sintéticos: meperidina, pentazocina, difenoxilato,difenoxina, metadona.
2. Drogas psicotrópicas.
(Subclasificación propuesta por la OMS)
a) Sedantes y ansiolíticos
- Meprobamato y sus derivados.
- Benzodiacepinas.
- Barbitúricos.
- Otros hipnóticos: hidrato de cloral, metacualona, etanol.
b) Psicoestimulantes
- Anfetaminas.
- Pipradol.
- Cafeína.
c) Psicodislépticos (Alucinógenos).
- Acido lisérgico (amida y dietilamida)
- Mescalina (peyote)
- Psilocibina (hongos)
- Tetrahidrocannabinol
IDENTIFICACIÓN DE CANNABIS
El código sanitario de los Estados Unidos
Mexicanos considera estupefacientes (art. 292)
y prohíbe (art. 293)…
METODOLOGÍA PARA LA IDENTIFICACIÓN DE
CANNABIS
Características botánicas.
El criterio actual de identificación
Técnica histoquímica
Objetivo: identificar la cannabis mediante la
observación al microscopio de las pequeñas características
botánicas después de que las estructuras (glándulas) que
contienen THC han sido teñidas. A la vez, se pone de
manifiesto la presencia de cannabinoides a través de una
reacción química con desarrollo de color que se efectúa in situ.
Material y reactivos
Portaobjetos
Cubreobjetos
Microscopio
Soln. de hidrato de cloral en propilenglicol (500mg/ml) en
agua (5:2)
Soln. de sal B de azul rápido al 2% en etanol
Procedimiento
Depositar una pequeña muestra en un portaobjetos ycubrirla con la solución de hidrato de cloral.
Calentar el portaobjetos hasta que se produzca ebullicióndel hidrato de cloral.
Dejar enfriar y cubrir nuevamente con hidrato de cloral.
Calentar nuevamente y dejar enfriar.
Cubrir la preparación con la solución de azul rápido.
Colocar un cubreobjetos y observar al microscopio conobjetivo seco débil (10x).
Nota: si el color desarrollado es muy intenso y dificultala observación, la fase líquida se absorbe con papelfiltro de las orillas del cubreobjetos y se reemplaza poragua destilada. Nunca se debe usar un solvente.
Interpretación
Criterio de positividad: Observación de
tricomas cortos con cistolitos basales o
fragmentos de tricomas, acompañados de
tricomas glandulares; colorea de rojo las
estructuras (glándulas) que contienen
tetrahidrocannabinol (THC).
Reacciones con desarrollo de color.
En la actualidad se acepta que ninguna reacción de este
tipo es totalmente específica; sin embargo existen dos de
ellas que resultan lo suficientemente confiables como para
ser empleadas en forma rutinaria:
1) Reacción de Duquenois.
2) Reacción con la sal B del azul rápido.
1) Reacción de Duquenois (modificación de Levine)
Resulta lo suficientemente selectiva, si la extracción se efectúadentro de los dos o tres minutos posteriores a la aparición decolor, para ser utilizada como técnica de “screening” o deconfirmación después de un examen microscópico positivo.
Objetivo: poner de manifiesto mediante el desarrollo de un color, lapresencia de cannabinoides.
Material y reactivos
Tubo de ensaye
Ácido clorhídrico concentrado
Cloroformo
Reactivo de Duquenois: Etanol al 95% 20 ml
Vainillina 0.4 g
Acetaldehído 5 gotas
Procedimiento
Colocar una pequeña porción de la muestra en un tubo de
ensaye. (Puede realizarse una extracción previa de la muestra
con éter de petróleo, el cual se permite que se evapore antes de
llevar a cabo el siguiente paso).
Adicionar 1 ml del reactivo de Duquenois y agitar.
Después de un minuto, adicionar 1 ml de HCl concentrado.
Dos o tres minutos después de que aparezca el color, adicionar 1
ml de cloroformo.
Criterio de positividad: producción de un color violeta al adicionar
HCl; la coloración debe ser extraída por el cloroformo agregado,
el cual se localiza en el fondo del tubo.
Observaciones Muestras de baja potencia, adulteradas con otros vegetales
o combinadas, como en el caso de las confituras, puedendar resultados negativos. Los extractos y el hashish debenprobarse con esta técnica solamente después de habersido diluidos, de otra manera dan lugar a resultados dedifícil interpretación.
Muestras que produzcan resultados positivos con elreactivo de Duquenois- Levine, pero en las que no sepuedan identificar las características botánicas, deberánser sometidas a un estudio mediante cromatografía encapa delgada.
La nuez moscada, la grosella, el pachuli y algunos tipos de café pueden dar lugar a resultados positivos falsos.
El examen al microscopio o mediante cromatografía en capa delgada resuelven el problema, ya que los resultados son diferentes a los producidos por la cannabis.
2) Reacción con la sal B del azul rápido (Sal de Azul sólido B (FBB) )
Las ventajas que esta reacción presenta son:
Alta sensibilidad, por lo que resulta útil para materiales de bajapotencia o mezclados.
Fácil y simple realización e interpretación, no necesita más queextracción con etanol y la adición de 20 mg del reactivo enpolvo.
No requiere medidas especiales de conservación.
Puede emplearse sobre las manos, para detectar la presenciade resina en ellas, así como para el examen de contenedoresde papel, metal, vidrio o plástico, para efectuar una reacciónhistoquímica sobre el material vegetal en estudio y destacar lostricomas glandulares que contienen tetrahidrocannabinol, ypara la visualización de manchas sobre placas decromatografía en capa delgada.
Objetivo: determinar la presencia de
cannabinoides mediante una reacción
colorida, con el objeto de identificar
preparaciones de Cannabis sativa.
Material y reactivos
Tubos de ensaye
Sal B del azul rápido
Etanol
Procedimiento Colocar una pequeña cantidad de la muestra en un tubo de ensaye.
Adicionar 1 mL de etanol.
Agitar durante un minuto.
Agregar 20 mg de la sal B del azul rápido.
Agitar.
Criterio de positividad: Desarrollo de un color rojo brillante, pocos segundos después de agregar el reactivo en polvo.
Para detectar la presencia de resina de cannabis en lasmanos de sujetos que han fumado o manipulado elvegetal
Aplicar el polvo del reactivo sobre la zona sospechosa.
Adicionar unas gotas de etanol.
Una coloración roja demuestra que es positiva laprueba.
Observaciones
La nuez moscada, el lúpulo y la damiana danresultados falsos positivos. Es una reacción deorientación muy útil para el “screening” de muestraspor su alta sensibilidad. Como medio para laidentificación de cannabis debe siempre iracompañado de resultados positivos obtenidos por otratécnica: observación de las características botánicas ocromatografía en capa delgada.
Cromatografía en capa delgada
Objetivo: separar los componentes de una preparación para establecer laposible presencia de las tres principales sustancias (cannabinoides)que individualizan a la Cannabis sativa L.: cannabidiol,tetrahidrocannabinol y cannabinol.
Material y reactivos
Cámaras de vidrio para cromatografía en capa delgada
Placas para cromatografía (placas de vidrio o plástico con silica gel G, 250 micras)
Papel filtro
Tubos capilares de vidrio
Equipo para aspersión
Testigo: extracto de cannabis en cloroformo o éter de petróleo.
Sol. Acuosa de la sal B del azul rápido al 1%
Cloroformo
Éter de petróleo
Dietil éter
Benceno
Hexano
Procedimiento
Extraer la muestra problema con cloroformo o éter de
petróleo.
Filtrar y evaporar a sequedad.
Reconstituir con unas gotas del solvente empleado para la
extracción.
Aplicar con el tubo capilar sobre la placa para
cromatografía con una separación mínima de 1.5 cm entre
muestras y los bordes de la placa. La aplicación se hará 1.5
cm por arriba del borde inferior.
Nota: siempre incluir el testigo en cada placa.
Las cámaras se preparan con cualquiera de los siguientes
sistemas de solventes:
Hexano/ éter dietílico (80:20)
Benceno/ cloroformo (30:70)
Éter de petróleo/ éter dietílico (90:10)
Recubrir el interior de la cámara con papel filtro y taparla,
dejarla saturar durante una hora.
Introducir la placa y permitir un corrimiento de 15cm (1hora
aprox.)
Sacar la placa y dejarla secar.
Revelar con la solución de la sal B aspergida.
Criterio de positividad: presencia de manchas,
en los corrimientos de las muestras
problemas, con Rf y coloración semejantes a
los de las muestras testigo.
El cannabidiol adquiere un color naranja.
El tetrahidrocannabinol adquiere un color
rojo.
El cannabinol adquiere un color violeta.
Los Rf de los diferentes cannabinoles,
obtenidos en las condiciones descritas son:
Sensibilidad 0.05g
Sistema CBN (violeta) THC (rojo) CBD (naranja)
Hexano/dietil éter 0.46 0.49 0.51
Benceno/clorofor
mo
0.53 0.57 0.60
Éter de
petróleo/dietil éter
0.24 0.38 0.44
Acido Cannabigerólico Naranja
Acido Tetrahidrocannabivarínico Rojo
Acido Tetrahidrocannabinólico Rojo
Tetrahidrocannabivarina Rojo
Tetrahidrocannabinol Rojo
Cannabicromeno Violeta
Cannabigerol Naranja
Cannabivarina Violeta
Cannabinol Violeta
Cannabiciclol Rojo
Cannabidiol Naranja
TÓXICOS COMUNES.
.
Identificación de Cianuro.
Reacción del azul de Prusia: a una pequeña porción de la muestra problema se le prueba su reacción al papel tornasol (papel pH), si no es alcalina, se le agrega unos cuantos cristales de sulfato ferroso (FeSO4), se adiciona posteriormente un exceso de ácido sulfúrico diluido y unas cuantas gotas de solución de cloruro férrico. Si la cantidad es mayor a ésta se producirá un precipitado de color azul inmediatamente después de unos minutos de reposo. Por lo tanto la prueba es positiva para el cianuro.
Una persona al ingerir cianuro, primeramente produce lesionescáusticas (si lo ingiere por la boca) en la boca y éstas lleganhasta el estómago, llevándose a cabo la siguiente reacción:
KCN + HCl HCN + KCl
El cianuro de potasio se absorbe por lasvellosidades del intestino por el fenómeno deósmosis (paso de agua a través de una membranasemipermeable) dicho cianuro se combina con lametahemoglobina y por la presión osmótica sedesprende CO2 y se absorbe CO2 produciéndose laoxihemoglobina que se distribuye en todo elorganismo produciéndose en las mitocondrias unaintoxicación y por lo tanto se impide la absorción deO2 y así es como se produce una anoxia. Por loconsiguiente, esta se caracteriza por unacoloración rosa o lila que aparece en la cara o enlas partes más claras del cuerpo de la personaenvenenada.
INHIBIDORES DE CADENA RESPIRATORIA,
INHIBIDORES DE
FOSFORILACIÓN OXIDATIVA Y DESACOPLADORES
MALONATO
ANTIMICINA A H2S, CO
BARBITÚRICOS DIMERCAPROL CN
Identificación de Arsénico
Reacción de Gutzeit: basada en la reacción delhidrógeno arsenical sobre el nitrato de plata ensolución concentrada, en un tubo de ensaye secoloca 1g de granalla de zinc, 4mL de ácidoclorhídrico diluido (1:1) y 1 o 2mL de la soluciónsospechosa, se tapa el tubo con el tapón dealgodón para retener el vapor del agua, que puedeser arrastrado al realizarse la reacción; luego secalienta ligeramente y si el arsénico se encuentrapresente, se forma la arsina que con el nitrato deplata, si se añade un poco de agua destilada, lacoloración amarilla se convierte en coloraciónnegra por la formación de plata metálica.
Identificación de Estricnina.
Reacción de Marchand-Otto: a una porción
de la muestra problema se le adiciona 1mL
de ácido sulfúrico (H2SO4) concentrado; ya
disuelta la muestra se le agrega un
fragmento de dicromato de potasio. Se
produce un color azul intenso que varía
inmediatamente a violeta oscuro y después
a rojo púrpura cereza y finalmente
anaranjado o amarillo.
Identificación de Barbitúricos.
A)Reacción de Dille Kopany
Solución 1: 100g de acetato de cobalto sedisuelve con metanol y luego se agregan0.2mL de ácido acético y se afora conmetanol a 500mL.
Solución 2: Mezclar 5mL de isopropalina con95mL de metanol.
Colocar la muestra problema en un tubo deensaye, agregar 2mL de la solución de acetatode cobalto, agitar y añadir 1mL de la solución2 y agitar nuevamente. Da una coloración rojaviolácea lo cual indica la presencia de ácidobarbitúrico o alguno de sus derivados.
B) Reacción de Zwiker.- A una pequeña
porción de la muestra pulverizada, se le
agrega en un tubo de ensaye 1 ml de
solución de acetato de cobalto al 0.2 % en
metanol. Se agita hasta disolución completa
y se añade 1 ml en metanol. Se produce una
coloración azul violeta si el barbitúrico esta
presente.
Identificación de Cocaína.
Reacciones por técnicas
microcristalográficas: en una lámina
portaobjetos poner una gota de la sustancia
problema disuelta y luego agregar una gota
de ácido pícrico (solución saturada),
formándose picrato de cocaína.
Si la sustancia problema es cocaína en la
reacción se forman cristales de picrato de
cocaína que se observan en el microscopio.
(Amarillos triangulares).
Identificación de Alcaloides.
A)Reacción de Marquiz: el reactivo seprepara en el momento en que se va autilizar, mezclando 5mL de formaldehído al40% con 95 ml de H2SO4 concentrado. Auna pequeña cantidad de la muestrapulverizada, se le agrega en un tubo deensaye 1 ml del reactivo teniendoprecaución. El color desarrollado indica elalcaloide que la muestra contiene.
COLOR ALCALOIDE
Amarillo débil Atropina
Azul violeta Codeína
Rojo púrpura Morfina
Rojizo Opio
Verde amarillento Emetina
B) Reacción de Wagner
El reactivo es una solución de yoduro de potasio (KI), se
prepara disolviendo 10g de KI y 5g de yodo pulverizado en
agua destilada cuanta sea necesaria y completando a
1000 ml. A una pequeña porción de la muestra que se
disuelve a 1 ml de solvente adecuado, se le agregan unas
gotas del reactivo. El color del precipitado que se obtiene,
varía de acuerdo con el alcaloide y va del café claro, al rojo
marrón oscuro, como los precipitados son solubles en
alcohol se evita su empleo.
Identificación de tóxicos metálicos.
A la muestra que se agrega HCl y KClO4 con elobjeto de destruir la materia orgánica pormedio del cloro que se produce; en caso de nocontener materia orgánica, se omite el paso.
Posteriormente se le agrega H2SO4 diluido yse filtra, el residuo del filtro puede estarconstituido por PbSO4, BaSO4 y AgCl, que seinvestigan en el filtrado, previo tratamientopara identificación de tóxicos comunes.
Eliminar el exceso de KClO4 y HCl, seinvestigan los siguientes tóxicosmetálicos: Hg, Bi,Cu,Cd,Ar,Sn,Sby Zn, siguiendo la clásica separaciónde la marcha analítica cualitativa.