estudio de la incidencia temporal de parasitosis en diferentes grupos taxonómicos de aves rapaces...
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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA METROPOLITANAUNIVERSIDAD AUTÓNOMA METROPOLITANAUNIVERSIDAD AUTÓNOMA METROPOLITANAUNIVERSIDAD AUTÓNOMA METROPOLITANA UNIDAD XOCHIMILCOUNIDAD XOCHIMILCOUNIDAD XOCHIMILCOUNIDAD XOCHIMILCO
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Estudio de la incidencia temporal de parasitosis en diferentes grupos taxonómicos de aves rapaces en cautiverio.
QUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNO
Apolinar Misael Hernández Gómez
MatrículaMatrículaMatrículaMatrícula 208234304208234304208234304208234304
ASESOR: ASESOR: ASESOR: ASESOR:
Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán. DepartamentoDepartamentoDepartamentoDepartamento de producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animal
No Eco. 25416No Eco. 25416No Eco. 25416No Eco. 25416
México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013
Resumen
La parasitosis en aves rapaces presenta diferencias considerables durante los
diferentes periodos estacionarios, este trabajo se enfoca en dos muestreos
realizados durante el periodo de lluvias del 2011 y el periodo de estiaje del 2012,
los resultados obtenidos presentaron diferencias notables de una a otra temporada
caracterizada por un aumento en el numero de ejemplares que presentan algún
tipo de parasito durante el periodo de estiaje. Se muestrearon 19 ejemplares de
diferentes especies de rapaces incluyendo falconiformes y estrigiformes que se
encuentran en cautiverio de ellas se encontraron diferentes tipos de parásitos de
los géneros; Ascardia, Strongyloides, Heterakis y Coccidia de estos parásitos
algunos se encontraron en las dos temporadas como Strongyloides y Heterakis,
otros parásitos como Ascardia y Coccidia solo se encontraron en el periodo de
lluvias. Se resalta la densidad en las parasitosis de cada uno de los ejemplares así
como las especies de aves rapaces que tuvieron una mayor cantidad de parásitos
en durante los dos periodos y cuales son mas propensas a desarrollar parasitosis
en alguna determinada temporada. Además en este trabajo se presenta un
compendio de las enfermedades infecciosas mas comunes en aves rapaces y
diferentes parásitos a los que pueden ser propensas.
Palabras clave: Parasitosis, rapaces, estiaje, lluvias.
INDICE
1. INTRODUCCION 1 2. REVISION DE LITERATURA 3
2.1. Orden: Falconiformes 3 2.1.1. Aquila Chysaetos (águila real) 4 2.1.2. Accipiter coperii (halcón pecho rojo, gavilán de cooper) 5 2.1.3. Parabuteo unicinctus (aguililla rojinegra) 5 2.1.4. Buteo jamaicensis (Aguililla cola roja) 6 2.1.5. Falco sparverius (Halcón cernícalo) 6 2.1.6. Buteogallus urubitinga (aguililla negra) 7
2.2. Orden: Strigiformes 8 2.2.1. Tito alba (Lechuza de campanario) 8 2.2.2. Bubo virginianus (búho virginiano) 9
2.3. Parasitologia 9 2.4. Enfermedades infecciosas comunes en aves rapac es 11
2.4.1. Herpesvirus (Hepatoesplenitis con cuerpos de inclusión) 11 2.4.2. Salmonelosis 11 2.4.3. Candidiasis 12 2.4.4. Colibacilosis septicémica 12
2.5. Parásitos comunes en aves rapaces 13 2.5.1. Protozoos 13 2.5.2. Helmintos 14 2.5.3. Artrópodos 17
3. JUSTIFICACIÓN. 19 4. OBJETIVOS GENERALES 20
4.1. Objetivos particulares 20 5. MATERIALES Y MÉTODOS 21
5.1. Toma de Muestras 21
5.1.1. Recolección parásitos en heces 21
5.1.2. Citologías de piel y plumas 23
5.1.3. Citología traqueales 24
5.1.4. Comparación de la incidencia de parasitosis 25 5.2. Identificación de parásitos 25 5.3. Comparación de la incidencia de parasitosis 25
6. RESULTADOS 26 7. DISCUSION 33 8. CONCLUSIONES 36 8.1. Recomendaciones 37 9. BIBLIOGRAFIA 40
1
1. INTRODUCCIÓN.
Entre los muchos problemas que se dan en la cría de aves en cautiverio destacan
numerosos problemas de sanidad que afectan a las aves, las enfermedades
parasitarias se destacan como uno de los más frecuentes, y los efectos que
producen varían de infecciones subclínicas hasta la muerte (Lyra et al.2002).
Además, estas infecciones interfieren en el comportamiento y en el desempeño
reproductivo de estas aves. Las aves silvestres son hospederos de una gran
variedad de parásitos, pero existen pocos trabajos sobre las especies que atacan
a estos animales en cautiverio. Especies como Capillaria sp, Strongyloides sp,
Ascaridia sp, Heterakis sp, Escherichia coli, Entamoeba histolytica o Balantidium
coli (Figueroa Lyra et al, 2002), así como las especies del genéro Serratospiculum
(Samour y Naldo, 2001) son comúnmente señaladas en estudios parasitológicos
en las aves de presa.
Este trabajo se enfoca en diferenciar la presencia de infestaciones parasitarías en
aves rapaces del aviario Dilajesh en los periodos estaciónales de verano y otoño
que modifican las características climáticas como la precipitación pluvial,
temperatura así como la intensidad lumínica y del cual no se tiene un registro que
indique en que periodo son mas susceptibles las aves rapaces en cautiverio a
estar enfermas o tener infestaciones parasitarias.
Es bien conocido que cualquier factor que disminuya las defensas produce una
alteración de la relación huésped-hospedador que se inclina a favor de parásito lo
que desemboca en enfermedades parasitarias que complican el cuadro general
(Blanco y Höfle, 2010).
2
La importancia de conocer el numero de patologías a las que las aves rapaces se
encuentran sometidas dentro de estos periodos estaciónales radica en la
obtención de información sobre la modificación numérica de casos de detección
clínica durante el periodo de verano y otoño que señalan las variaciones en la
abundancia de organismos parasitarios o el decremento durante estas fechas
permitiéndonos mejorar el manejo de estas aves ya sea para su exhibición,
reproducción y manejo como la cetrería, una de las actividades catalogadas por la
UNESCO como patrimonio cultural de la humanidad, su atractivo social y
económico como lo es en un aviario privado donde el buen estado de los
ejemplares atrae al mercado recreativo, además de la seguridad del manejo de los
ejemplares previniendo de zoonosis a los cuidadores, manejadores y publico que
tenga contacto con estos individuos. La información que se obtenga será
implementada al hábitat de estas especies procurando mejorar las condiciones de
las mismas así como implementar medidas de higiene nuevas o mejorar las
existentes.
3
2. REVISIÓN DE LITERATURA En Aves de Presa (1994) Salgado y colaboradores mencionan que las aves de
presa se dividen en dos grupos de rapaces (Falconiformes y Strigiformes). En
conjunto estas aves juegan un importante papel dentro de la cadena alimenticia; al
ser consumidores secundarios, fungen como controladores de la población
silvestre de consumidores primarios, evitando que se conviertan en plaga y
causen, en algunos de los ecosistemas existentes un desequilibrio ecológico. Las
aves de presa son conformadas por dos grupos estructurados y distribuidos de la
siguiente manera:
2.1. Orden: Falconiformes
Familia: Cathartidae. Incluye a buitres, carroñeros, auras y cóndores; en el mundo
se conocen un toral de 7 especies, de las cuales cuatro viven en México.
Familia: Pandionidae. El único miembro de esta familia es el águila pescadora,
especie distribuida por todo el mundo, y que también puede ser considerada
mexicana.
Familia: Accipitradae. Es la más grande de las familias de este orden, conformado
por un total de 209 especies que incluyen milanos, aguilillas, gavilanes y águilas,
de ésta sólo 39 son registradas en México.
Familia: Falconidae. Las aves pertenecientes a esta familia son conocidas como
halcones verdaderos, también se incluye a los ejemplares de quebrantahuesos.
4
De las especies que tienen un uso común ya sea para la cetrería u ornato
destacan:
2.1.1. Aquila Chysaetos (águila real)
Tamaño: 80 a 87cm
Características: Se distingue por su pico robusto y
ganchudo y por tener plumas en las patas hasta la mitad
del tarso. Los adultos son café oscuro con vientre un poco
claro en la base (fig. 1). La parte posterior del cuello tiene
un tono dorado con matices rojizos (fig. 2). Los individuos
jóvenes tienen el
dorso color café
negruzco y vientre claro. Su cola es blanca con
una banda ancha oscura Terminal.
Hábitat: Vive en climas diversos desde los
desérticos hasta los tropicales. Bosques de confieras, pino encino y matorral
espinoso.
Alimentación en cautiverio : Conejos, roedores, aves; codornices y pollo
(CONABIO, 2011).
Fig.1 Aquila Chysaetos
Fig. 2 Nuca con plumaje dorado de aguila real
5
2.1.2. Accipiter coperii (halcón pecho rojo, gavilán de cooper)
Tamaño: 35-50cm.
Características: Envergadura de 70-90cm. Alas
cortas y cola larga y redondeada. Adultos con
espalda azul grisácea, pecho con barras color
óxido (Fig 3). Los inmaduros son cafés con pecho
rayado, y adquieren el plumaje de adulto al
término del primer año. El plumaje es parecido en
ambos sexos; la hembra de mayor tamaño.
Habitad: Bosques, matorrales, algunas veces áreas abiertas.
Alimentación en cautiverio: Pequeñas aves del tamaño de una paloma coquita
(Floyd, 2008).
2.1.3. Parabuteo unicinctus (aguililla de Harris)
Tamaño: 47-55cm.
Características: Envergadura 1.0 1.2m. Alas
anchas y cola redondeada. Adulto de color
negro con rabadilla blanca y una banda
también blanca en la punta de la cola (Fig 4).
Color rojizo en alas y muslos. El ejemplar
inmaduro tiene las partes inferiores claras y rayadas con hombros rojizos;
adquiere el plumaje del adulto al cumplir el año. Sexos parecidos.
Habitad: Bosques, matorrales semidesiertos.
Alimentación en cautiverio: Roedores, lagartijas y aves pequeñas (Floyd, 2008).
Fig. 4 Parabuteo unicintus
Fig. 3 Accipiter coperii
6
2.1.4. Buteo jamaicensis (Aguililla cola roja)
Tamaño: 47-62cm
Características: Envergadura de 1.2 a 1.4m. Alas
anchas y cola redondeada. Puede tener dos fases de
coloración: la clara con pecho blanco (Fig 5 y 6),
vientre barrido, cabeza y dorso café oscuro; y la
oscura, ambas poseen la cola rojiza. El inmaduro tiene
el pecho blanco y vientre
rallado; adquiere el plumaje
del adulto entre el primero y
segundo año. Sexos parecidos.
Habitad: Áreas abiertas, bosques, montañas y desiertos.
Alimentación en cautiverio: Conejos, roedores y aves
(Floyd, 2008).
2.1.5. Falco sparverius (Halcón cernícalo)
Tamaño: 21-22cm
Características: Envergadura de 50 a 60 cm. Esta ave al igual que todos los
halcones posee cola angosta y alas puntiagudas, que mueven con sorprendente
rapidez. El cernícalo es un pequeño halcón, semejante a una golondrina; con la
espalda y cola rojizas. El macho tiene alas azul grisáceas, y la hembra rojizas.
Ambos sexos tienen un patrón blanco negro muy peculiar en el rostro (fig 7). El
Fig. 5 Buteo jamaicensis
Fig. 6 dorso de Buteo
jamaicensis
7
inmaduro es parecido a la hembra y adquiere la
coloración del adulto después del primer invierno.
Habitad: Áreas abiertas, praderas, desiertos, campos
de cultivo y zonas urbanas.
Alimentación en cautiverio : Insectos y mamíferos
pequeños (Floyd, 2008).
2.1.6. Buteogallus urubitinga (aguililla negra)
Tamaño: 55-67 cm
Caracteristicas: Es una aguililla
de color negro (Fig. 8), con cabeza
grande y en la base de la cara un
tono grisasep, puede identificarse
por las dos bandas blancas que
dividen su cola, la base de las plumas primarias no sobrepasan de la mitad del
tamaño de las de la cola. Los juveniles son de color café, con todo el vientre y
muslos barrados, Ambos sexos son similares el macho es 87% del tamaño de la
hembra.
Habitad: Bosques caducifolios áreas abiertas, desiertos campos de cultivo de
habitad extenso desde el norte de Argentina hasta el norte de México.
Alimentación en cautiverio: Mamíferos pequeños, pollo sin grasa, codorniz.
Fig. 7
Fig. 8 Buteogallus urubitinga
Fig. 7 Falco
sparverius
8
2.2. Orden: Strigiformes
De las familias Tytonidae y Strigidae. podemos encontrar a las lechuzas, búhos y
tecolotes. Están integradas por 131 especies diferentes, de las cuales 11
corresponden a lechuzas y 120 a búhos y tecolotes. En México han sido
registradas sólo 27, de las cuales una es lechuza y los 26 restantes son búhos y
tecolotes (http://www2.ine.gob.mx/publicaciones/libros/50/avespresa.html).
De las especies que tienen un uso común ya sea para la cetrería u ornato
destacan:
2.2.1. Tito alba (Lechuza de campanario)
Tamaño: 40 cm
Características: Fácilmente reconocible por su
coloración blanca en general y por su característico
disco facial, en forma de corazón. Sus ojos son
negros (Fig 9).
Hábitat: Especie que gusta de espacios abiertos
donde cazar. Descansa y cría en casas viejas,
graneros, campanarios de iglesias, ruinas, grietas y
cuevas. Fig. 9 Tito alba
9
Alimentación en cautiverio: Está basada principalmente en micromamíferos,
aunque pueden complementar su dieta con otros mamíferos, ranas, lagartos e
insectos (Alderfer, 2006)
2.2.2. Bubo virginianus (búho virginiano)
Tamaño : 45 cm
Características : Presenta un penacho de
plumas en la parte superior de la cabeza que
semeja orejas. Tiene el iris del ojo amarillo.
El plumaje de color pardo, con manchas
claras de tono café y con rayas negras; la
región de la cara tiene un reborde negro (Fig
10).
Hábitat: Se encuentra tanto en bosques mixtos, de pino encino, como en regiones
áridas; lo único que requieren es una buena zona para resguardarse y
abastecerse de alimento.
Alimentación en cautiverio: Insectos grandes aves pequeñas y roedores
principalmente (Olivera, 2003).
2.3. Parasitologia
Dentro del estudio de la parasitología veterinaria ha sido de gran importancia
conocer las diferentes especies y géneros de parásitos teniendo un papel muy
importante en la salud del hombre y de los animales, se ha definido el parasito
como un organismo de menor tamaño que vive en el interior o expensas de otro
organismo (Georgia, 2011). La mayoría de los animales alberga una o varias
Fig. 10 Bubo Virginianus
10
especies de parásitos, con cientos o miles de especimenes (protozoarios,
helmintos, artrópodos), y debido a la complejidad del hábitat de los parásitos en
uno de sus huéspedes, se usa para el efecto en término (Parasitocenosis) donde
se puede tener en cuenta un hecho significativo, no solamente el huésped mismo
proporciona un ambiente al parásito, sino que interviene el medio ambiente del
huésped, reconociendo dos tipos de ambiente: El huésped como su ambiente
inmediato constituye su microclima y el ambiente externos del huésped como
macroambiente. Es necesario que se considere como un sistema la relación del
parásito con su medio ambiente (Quiroz, 1990).
Entender el origen de los parásitos y sus efectos sobre los animales silvestres, el
hombre y los animales domésticos es en gran parte responsabilidad de la
medicina de la conservación (Saggese, 2007).
Clásicamente, los parásitos has sido considerados como organismos tendientes a
desarrollar un estado de equilibrio con sus huéspedes (Wobeser, 2006). Los
cambios repentinos en las condiciones del huésped o del agente pueden alterar
fácilmente este estado de equilibrio, según Quiroz (1990), uno de los factores que
más influyen en el parásito es la edad del huésped, modo de vida y migración
donde varios parásitos pasan a un nuevo ambiente al llegar al nuevo huésped, los
cambios estaciónales determinan si el ambiente es favorable o no para la
transmisión. Se ha postulado que para causar enfermedad es necesario que se
produzca una alteración en alguno de los elementos de la tríada huésped, agente
infeccioso y ambiente (Trizard, 2000).
11
2.4. Enfermedades comunes en aves rapaces
Enfermedades infecciosas comunes en aves rapaces tomadas de Soler Diego
Tovar (2001).
2.4.1. Herpesvirus (Hepatoesplenitis con cuerpos de inclusión)
Afecta principalmente halcones. La infección por herpesvirus se caracteriza por
hepatitis y esplenitis. El virus se presume se transmite por el consumo de otras
aves como palomas. La infección causa una mortalidad del 100 % y se caracteriza
por cuerpos de inclusión intranucleares encontrados en la histopatología. No
existe un tratamiento efectivo. La prevención se limita a evitar las palomas como
fuente de alimentación o consumir aves de origen conocido, y colonias
muestreadas.
2.4.2. Salmonelosis
La salmonelosis es un término que describe la infección con bacterias de un grupo
con más de 1,500 serotipos del género Salmonella. La infección intestinal puede
producir enteritis, diarrea y muerte. En las aves rapaces se han identificado los
siguientes serotipos: S. typhimurium, S. pullorum, S. haouaria, S. reading y S.
eastbourne.
La salmonelosis en aves silvestres o cautivas puede ser aguda o crónica. Los
signos clínicos son variables; en la enfermedad aguda se presentan apáticas,
excesivos chirridos y ocasionalmente diarrea, resultando en la muerte en uno a
dos días. En aves viejas es más común la septicemia, y pericarditis fibrinosa,
peritonitis y congestión de pulmones, riñones, hígado y bazo.
12
Las fuentes de infección son generalmente desconocidas, pero la contaminación
del hábitat por hospederos y la ingestión de presas enfermas se ha reportado. El
tratamiento incluye antibióticos como la oxitetraciclina, cloranfenicol y sulfas.
2.4.3. Candidiasis .
La enfermedad micótica de mayor significancia clínica para las rapaces es la
infección del tracto gastrointestinal producida por Candida albicans. Se manifiesta
de dos formas: la más frecuente es la presencia de seudomembranas de material
necrótico sobre la mucosa de la lengua y faringe; la otra manifestación es una
infección gastrointestinal profunda sin lesiones visibles en la cavidad oral. Los
signos clínicos incluyen inapetencia, vómito, deshidratación y depresión. La
candidiasis aparece luego de una herida o debilitamiento del epitelio. El
tratamiento más efectivo es el uso de nistatina, aunque se ha demostrado remisión
con el uso de ketoconazol. Además se recomienda administrar levamisole (1 a 2
mg/kg) para inmunoestimular.
2.4.4. Colibacilosis septicémica
E. coli es un habitante entérico normal en la mayoría de las aves. Los organismos
coliformes causan pericarditis purulenta, abscesos hepáticos, granulomas y
aerosaculitis. Los signos clínicos asociados con la septicemia colibacilar varían
considerablemente dependiendo los órganos involucrados. La infección
respiratoria produce disnea y puede progresar a pericarditis, septicemia, o
aerosaculitis crónica. En casos agudos la muerte ocurre en dos a seis días. En
13
casos crónicos la pericarditis, membranas en los sacos aéreos y granulomas
hepáticos son secuelas comunes. También puede causar mortalidad embrionaria.
2.5. Parásitos comunes en aves rapaces
Lista de macro y microparásitos comunes en aves rapaces tomada de Saggese.
(2007) y las características de los organismos parásitos están resumidas del
Manual de Parasitología Veterinaria de Mehlhorn, et al. (1993)
2.5.1. Protozoos
Genero Tricomonas
T. gallinae: Parásito de la mucosa del tracto digestivo superior de las rapaces,
alcanza el tamaño de unas 7-15µm x 5-10µm, y es casi siempre piriforme; son
característicos los cuatro flagelos delanteros libres y un quinto dirigido hacia atrás
con una membrana ondulante.
Vía de infección: Oral; picoteo mutuo entre animales viejos y jóvenes
Periodo de incubación : 1-4 días
Prepatencia: 1-4 días
Patencia: Años a veces toda la vida, debido a la elevada sucesión generacional.
La reinfección es posible en cualquier momento.
Detección: La infección por Trichomonas gallinae es frecuente en rapaces que se
alimentan de palomas, aunque también se puede ver en aquellas que no
consuman columbiformes. Este puede ser un serio problema ya que es
14
inmunosupresor y letal para las aves. Las lesiones que produce se caracterizan
por placas caseificadas amarillentas en la mucosa de la cavidad del pico y la
faringe (a veces también del buche) que impiden la toma de agua y alimentos.
Destacan la anorexia y disnea. Una dosis de 20 mg/kg oral de carnidazole por dos
días es extremadamente efectivo.
2.5.2. Helmintos
Phylum cestodes
Cestodos : son hermafroditas, tienen el cuerpo plano y segmentado, y cuando
parasitan al hombre en su estadio adulto, se ubican en intestino delgado. El
órgano de fijación es el escólex, provisto de estructuras especialmente adaptadas
para esta función, estas pueden ser ventosas y bótrides o ganchos. Del escólex
surge un cuello del que se genera el cuerpo, por brotación, constituido por
segmentos, denominados proglótides. Cada proglótide es una unidad funcional
completa; a medida que se alejan del cuello van madurando, denominándose a los
más distantes proglótides maduros. En ellos el útero ocupa casi su totalidad y se
encuentran repletos de huevos, los que se liberarán al romperse los segmentos.
Especies : Taenia saginata, Taenia solium, Echinococcus granulosus, etc.
Cestodo Cubierta densa los círculos simples
representan el tamaño de los eritrocitos.
Microscopio (40x) (Brooks et al, 2005)
Genero Ascardia (ascáridos)
Fig. 11 Cestodo
15
Ascardia columbae: solo llegan a medir 9 cm (hembra) y máximo 7cm (macho).
Los típicos vermes sacáridos de color blanco amarillento, relativamente gruesos
da hasta 4mm, boca con tres labios) parasitan el intestino delgado.
Vía de infección: Oral, por ingestión de huevos que contienen larvas con el
alimento.
Periodo de incubación : 3-5 días
Prepatencia : unas 5-6 semanas
Síntomas de la enfermedad (ascaridosis) Enferman especialmente animales
jóvenes: diarreas, plumaje erizado; a veces caída de plumas, adelgazamiento;
debilidad; cresta pálida; estreñimiento por ingestación masiva; eventual muerte
después de 8 días.
Detección: detección de huevos por flotación fecal o por el método de
enriquecimiento.
Cubierta densa, lisa, con tres capas, paredes con forma de barril. Longitud 68 µm - 90 µm Ancho 40 µm - 50 µm (Lapage, 1979)
Genero: Serratospiculum
Especies: Serratospiculum guttatum, S. chungi, S. congolensis, S. seurati, S.
turkestanicum, S. kwangsiensis. S. tendo, S. thoracis, S. amaculata
Características nematodo (gusano redondo) del que existen al menos 9 especies,
siendo la más común Serratospiculum seurati.
Fig. 12 Ascardia spp
16
Vía de infección: oral mediante la ingesta de escarabajos infectados.
Serratospiculum seurati izquierda
49.94 ± 0.39 µm
Genero Heterakis
Especies: H. gallinarum, H. isolonche, H. dispar.
Heterakis gallinarum
Características: El macho mide 7-13mm y la hembra mide 10-15mm de largo.
Tienen colas puntiagudas y un bombeo preanal los machos tienen una cola
curvada, las hembras son mas gruesas y con un extremo de cola recta.
Periodo de incubación: de 2 a 4 semanas
Prepatencia: 24-30 días.
Síntomas de la enfermedad: Las infecciones primarias son generalmente
inaparentes. Las infecciones secundarias se caracterizan por la formación de
nódulos en el ciego y la formación de mucosa en el mismo. Las aves tienen una
marcada inflamación abdominal y las ponedoras de huevos reducen la producción
de huevos.
Heterakis spp. Cubierta densa, paredes lisas.
Longitud 7 a 13 µm Ancho 31 µm– 48 µm (modificado de Lapage, 1979)
Fig. 13 Serratospiculum seurati
Fig. 14 Heterakis spp.
17
Genero Strongyloides
Especies: S. stercoralis, S. fuerlleborni, S. westeri, S. venezuelensis, S. ratti, S.
papillosus.
Strongyloides ratti
Características: el nematodo los machos miden alrededor de 50µm y las hembras
alrededor de 30µm los machos tienen una bifurcación en la cola y clásica cola
curvada.
Síntomas de enfermedad: Strongyloides ssp es relativamente común en
animales domésticos y salvajes
Strongyloide Cilindrico. Longitud: 52 a 56 micras Ancho: 36 a 40 micras.
2.5.3. Artrópodos
Ixodidae (garrapatas de cuerpo duro)
Especies : Las fases evolutivas de Ixodes ricinos parasitan especialmente a las
aves jóvenes, de un modo preferente en lugares sin plumillas (rabillo del ojo). El
macho puede alcanzar una longitud de hasta 4mm, las hembras que no han
chupado sangre hasta 5mm, mientras que repletas de sangre llegan a medir los
1.5cm de longitud. No tienen ojos, surco anal delante del ano; los palpos son
largos estrechos.
Vía de infestación: Las fases de desarrollo de la garrapata buscan activamente a
sus hospedadores.
Fig. 15 Strongiloides
18
Síntomas de la infestación: Edema palpebral (se pegan entre si los bordes de
los parpados), adelgazamiento extremo debido a la escasez de alimentos, los
pollos de diversas especies de aves mueren de extrema caquexia.
Diagnostico: Búsqueda de estadios de evolutivos repletos de sangre.
Piojos
Ácaros succionadores de sangre (Dermanyssidae)
Especies:
• Dermanyssus gallinae (acaro rojo de las aves), macho hasta 0.7 mm de
largo, hembra 1.1mm de largo; ectoparásito temporal, estos infestan
principalmente de noche para chupar sangre. La evolución completa (un
estadio de larvario y dos fases de ninfa) dura un promedio de 4-9 días,
esperanza de vida de unos 2-3 meses sin ingerir alimentos una parte de
estos vive hasta medio año.
• Ornithonyssus sylvarium (acaro nórdico) parasita aves viejas y con plumaje
alterado excepto las larvas todos los estadios de estos ácaros de 0.8 mm
de longitud chupan sangre y viven de forma permanente en su hospedador.
La evolución embrionaria completa se realiza en 5-7 días.
Vía de infestación: D. gallinae busca activamente a su hospedador
(preferentemente de noche). O. sylviarum se transmite mediante contacto
corporal.
Síntomas de infestación: En caso de fuerte infestación los animales están
intranquilos, tienen necesidad de dormir durante el día, anemia
Diagnostico: La detección de D. gallinae se realiza en el entorno próximo de las
aves. O. sylviarum se identifica por el plumaje.
19
3. JUSTIFICACIÓN.
La ecología de comunidades de parásitos, un aspecto poco estudiado es si las
comunidades presentan o no una variación temporal en su estructura y
composición de especies debida a cambios en los factores ambientales a lo largo
del año. Los resultados que se han obtenido indican que tienden a presentar
cambios temporales, los cuales se asocian con alteraciones ambientales
propiciadas por el ciclo estacional de secas y lluvias que afectan el proceso de
reclutamiento de las especies de parásitos (Salgado–Maldonado, 1993), o con
incrementos estaciónales en la actividad trófica y reproductiva del hospedero,
influenciados por las fluctuaciones temporales de la temperatura abundancia del
agua. Tal como se describe en diferentes trabajos y especies, la incidencia
estacional de parásitos que se encuentran en otros hospederos, puede ser
diferente, según la época del año, aunque en ocasiones esta incidencia no
muestre patrones homogéneos (Violante-González et al, 2008).
Entre los numerosos problemas de sanidad que afectan a las aves silvestres, las
enfermedades parasitarias se destacan como uno de los más frecuentes, y los
efectos que producen varían de infecciones subclínicas hasta la muerte. Además,
estas infecciones interfieren en el comportamiento y en el desempeño reproductivo
de estas aves. Las aves silvestres son hospederos de una gran variedad de
parásitos, pero existen pocos trabajos sobre las especies que atacan estos
animales en cautiverio, y los que hay se refieren a grupos reducidos de aves
20
4. OBJETIVO GENERAL:
� Determinar la incidencia parasitaria de aves rapaces en cautiverio
(falconiformes e strigiformes) de diferentes géneros taxonómicos en
diferente temporada en relación a la presencia de humedad ambiental.
4.1. OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
� Evaluar la incidencia parasitaria en muestras de heces, tráquea, piel y
plumaje de falconiformes e strigiformes durante y posterior a la temporada
de lluvias.
� Determinar la incidencia de diferentes parásitos según el género
taxonómico
Comparar la incidencia parasitaria durante y posterior a la temporada de lluvias.
21
5. MATERIALES Y MÉTODOS
El muestreo se realizo durante el periodo de lluvias en los meses de Julio-Agosto
del 2011 y posterior a este durante el mes de Mayo del presente año. Las
muestras fueron extraídas de los ejemplares disponibles del “aviario Dilajesh”,
ubicado en Quinta Dilajesh, Lote 11 y 12, Camino a san Nicolas, La Concepción
Jolalpan, Tepetlaoxtoc, Estado de México. Así también de ejemplares mantenidos
en cautiverio con propósitos de cetrería, totalizando 19 ejemplares muestreados
5.1. Toma de Muestras
5.1.1. Recolección parásitos en heces
Se realizo la búsqueda de patógenos parasitarios según los métodos
estandarizados propuestos por Clayton y Walter (1997)
Se colectaron muestras de heces frescas (posterior a la limpieza del recinto) en el
interior de los recintos de las diferentes especies rapaces con la que cuenta el
aviario. De las muestras que se obtengan fueron analizadas para su identificación
en base a los métodos el Manual de parasitología veterinaria de Mehlhorn et al
(1993).
En este análisis se muestrearon el mayor número posible de géneros taxonómicos
presentes en el aviario, y se agruparon según las condiciones de alojamiento en
las que se encontraban, ya que algunos permanecieron de manera individual,
22
pareja y/o parvada. Se escogieron dos periodos de muestreos el primer periodo
(tiempo de lluvias) y el segundo periodo (tiempo seco o sin lluvias).
Las heces frescas se obtuvieron directamente de la cloaca con tubos o hisopos
estériles y en excepcionales, se utilizaron recipientes estériles puestos en el lugar
donde se observaron el mayor número de excretas, posteriormente, estas
muestras se almacenaron en bolsas previamente rotuladas con la identificación
del ave y la fecha de cuando fue obtenida la muestra, trasportadas y analizadas
posteriormente.
Para la identificación de los huevecillos, se realizó la técnica de flotación- FAUST,
en la cual se mezcló 1g de muestra en 10 partes de agua destilada. Se filtró todo a
un tubo de ensayo través de una gasa doblada en cuatro, ésta mezcla se
centrifugó a 2500 rpm por 1 min, se decantó el líquido sobrenadante y se volvió a
completar con agua hasta igualar la medida anterior y se centrifugó nuevamente,
esto se repitió 2 veces más. Por último se decantó nuevamente el líquido
sobrenadante y se reemplazó por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al
33%, se mezcló bien la solución con el sedimento y esto se centrifugó durante 1
minuto a 1500 rpm. Posteriormente se tomaron 3 a 4 gotas de las partículas que
flotan en la superficie del líquido y se colocó en un portaobjetos con 1 a 2 gotas de
lugol y se cubrió, finalmente se examinó al microscopio directamente para
identificar mediante sus estructuras la presencia los huevecillos de diferentes
parásitos.
23
Este método se utiliza solución de Sulfato Zn, cuya densidad específica es de
1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos:
Necator 1.055, Tricocéfalo 1.150, Ascaris fértil 1.110 y facilita que los huevos
livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se
concentren y floten.
Se utilizo un método cualitativo para hacer una estimación del posible grado de
infestación parasitaria mediante los siguientes criterios:
(0) Negativo No se observaron ooquistes.
(+) Escasos Se observaron de 1 a 10 ooquistes por campo.
(++) Abundantes Se observan decenas de ooquistes por campo
(+++) Abundantes Se observan campos saturados con ooquistes
Mediante la observación microscópica con un aumento 40 X
Los organismos a obtener se identificaron mediante una comparación
bibliográfica en manuales de veterinaria, parasitología y microbiología
médica.
5.1.2. Citologías de piel y plumas
Estas muestras se obtuvieron de raspado de lesiones superficiales, se consideró y
anotó el tipo, forma, color y olor de la lesión antes de realizar el raspado. Tomando
en cuenta lo anterior, se procedió a realizar un raspado de la superficie sin haberla
limpiado, con una hoja de bisturí en un ángulo de 90º, después se colocó en varios
24
portaobjetos, previamente preparados con una gota de suero salino estéril, ya en
el porta, se cubrió y con otro porta se presionó suavemente para extenderlo.
En el caso de que la muestra estuviera queratinizada, se transfirió primero a
hidróxido de potasio o lactofenol clorado para que se digiriera la queratina, esto
para poder mejorar la visibilidad. Posteriormente se repitió este mismo
procedimiento pero después de haber limpiado la lesión.
5.1.3. Citología traqueal
La mucosa a elección para este estudio fue la tráquea. Esta muestra se obtuvo
con un hisopo estéril humedecido previamente con solución salina estéril y
frotando sobre la mucosa con presión suave. Dicho hisopo se extendió sobre
varios portaobjetos, se secó al aire y se tiñó.
Para la tinción se sumergió el porta en una solución fijadora por 5 segundos,
transcurrido el tiempo, se eliminó el exceso golpeando ligeramente el canto del
portaobjetos sobre el frasco. Inmediatamente, se volvió a sumergir en el colorante
rápido número 1 y se dejó reposar 5 segundos, se eliminó el excedente y se lavó
con agua común, empleando un chorro leve. Enseguida se sumergió nuevamente
en el colorante rápido número 2 durante el mismo lapso de tiempo e igualmente se
eliminó el excedente, se lavó, se dejó secar y se observó al microscopio, se
impregnó toda la preparación con una capa de aceite de inmersión.
25
5.1.4. Comparación de la incidencia de parasitosis
Se realizaron graficas para contraponer la información obtenida y describir la
presencia de las parásitos, determinadas en diferentes tiempos y especies de
aves.
5.2. Identificación de parásitos
Los organismos que se obtengan se identificaron mediante una
comparación bibliográfica en manuales de veterinaria, parasitología y
microbiología médica.
5.3. Comparación de la incidencia de parasitosis
Por medio del programa Microsoft Excel se hizo una comparación entre el numero
de incidencias parasitarias, el grupo taxonómico con mayor incidencia parasitaria y
la especie mas propensa a presentar una parasitosis durante y posterior al periodo
de lluvias.
26
6. RESULTADOS
Cuadro 1 : Resultados del Análisis Coproparasitoscópico.
* Cantidad de Parásitos por Campo
Del total de los ejemplares muestreados durante el primer periodo, solo 8 no
tuvieron un resultado positivo en cuanto a la presencia de parásitos en las heces,
a comparación del segundo periodo, ya que solamente uno no tuvo la presencia
de ningún parásito. También se demuestra que solo una especie de ave se
mantuvo constante en cuanto a que no existió la presencia de algún tipo de
parásito durante los dos periodos, dicho ejemplar fue Falco sparverius. En el
primer periodo de muestreo los ejemplares que no presentaron parásitos fueron:
Accipiter coperii, Caracara cheriway, Bulbo virginianus, Tito alba y Falco
sparverius, con esto cabe resaltar que las aves de la familia de las Strigiformes no
PRIMER PERIODO DE MUESTREO SEGUNDO PERIODO DE MUESTEO
AVE TO
DIAGNÓSTICO CDPC* DIAGNÓSTICO CDPC*
Accipiter coperii He
Ninguno -- Heterakis
Parabuteo unicinctus He
Strongyloides + Heterakis +
Parabuteo unicinctus He
Strongyloides + Heterakis +
Parabuteo unicinctus He
Strongyloides/ Heterakis ++ / + Heterakis /Strongyloides + / ++
Buteo jamaicensis He
Heterakis ++ Coccidia/ Heterakis + / ++
Buteo jamaicensis He
Heterakis ++ Cestodo/ Heterakis + / ++
Buteo jamaicensis He
Heterakis ++ Heterakis ++
Buteo jamaicensis He
Heterakis + Heterakis ++
Buteo jamaicensis He
Heterakis ++ Heterakis ++
Falco sparverius He
$inguno -- $inguno --
Aquila chrysaetos He
Strongyloides + Strongyloides ++
Aquila chrysaetos He
Strongyloides + Strongyloides +
Aquila chrysaetos He
Strongyloides + Strongyloides +
Caracara cheriway He
Ninguno -- Ascarida +
Bubo virginianus He
Ninguno -- Strongyloides +++
Bubo virginianus He
Ninguno -- Strongyloides +++
Bubo virginianus He
Ninguno -- Strongyloides +++
Tito alba He
Ninguno -- Strongyloides +++
Tito alba He
Ninguno -- Strongyloides +++
27
presentaron parasitosis durante el primer periodo a diferencia del segundo
periodo, donde en los Strigiformes se identificó al parásito Strongyloides en mayor
presencia.
En cuanto a la presencia de ectoparásitos no se encontró ninguna parasitosis
positiva en el primer periodo y solamente un caso positivo en el segundo periodo
en un individuo de la especie Aquila chrysaetos.
Gráfica 1. Tipo de parásitos presentes durante el primer periodo.
Strongyloides
30%
Heterakis
30%
Ninguno
40%
28
Gráfica 2. Tipo de parásitos presentes durante el segundo periodo
rapaces del aviario dilajesh durante el periodo de estiaje
Strongyloides
40%
Heterakis
41%
coccidia
9%
Ascardia
5%
Ninguno
5%
En las Gráficas 1 y 2, se hace referencia del porcentaje que representa cada
parásito, donde los Strongyloides y Heterakis son predominan en ambos periodos.
En el segundo periodo se encontraron otros géneros de parásitos como Ascardia y
ejemplares de Coccidia. La comparación entre el primer y segundo periodo, el
primer periodo, el 60% de los ejemplares presentaron algún tipo de parasitosis
mientras que en el segundo periodo el 95% de los ejemplares presentó una
parasitosis.
Los Gráficos 3 y 4 muestran la densidad de parásitos en las muestras de heces
donde Strongyloides presenta la mayor densidad (+++) durante el segundo
periodo y el caso de Heterakis que su mayor densidad fue de densidad ++
durante el primer periodo.
29
En el Cuadro 7 se ejemplifican los huevecillos encontrados con fotografías y
medidas.
Cuadro 2 Fotografías y medidas de huevecillos encontradas.
FOTOGRAFÍA TIPO DE PARÁSITO
DESCRIPCIÓN
Ascaridia spp.
Cubierta densa, lisa, con tres capas, paredes con forma de barril. Longitud 68 µm - 90 µm Ancho 40 µm - 50 µm
Heterakis spp.
Cubierta densa, paredes lisas. Longitud 7 a 13 µm Ancho 31 µm– 48 µm
Strongyloides
Longitud: 52 a 56 micras Ancho: 36 a 40 micras.
Cestodo
Cubierta densa los círculos simples representan el tamaño de los eritrocitos.
Fotografias:
Ascardia ssp http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/ascaridia.htm
Heterakis spp http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/heterakis.htm
Strongyloides y Cestodo (Apolinar Hernandez 2012)
30
Gráfica 3 Gráfica 4
31
Citologías de piel y plumas
El análisis de cada una de las muestras no indican que exista la presencia de
alguna patología presente en esta colección, la mayor parte de donde se
obtuvieron estas, fue de heridas o abrasiones que reflejan que el animal
constantemente se lesiona por la condición del alojamiento y/o manejo anterior al
de este estudio. La única evidencia de ectoparásitos fue en la especie Aquila
chrysaetos, ya que hubo presencia de piojos en el segundo periodo de toma de
muestras, esto se muestra en el Cuadro 8.
Cuadro 3 . Ectoparásitos encontrados en las aves.
# Muestra AVE PRIMER PERIODO
SEGUNDO PERIODO
1 Accipiter coperii -- --
2 Parabuteo unicinctus -- --
3 Parabuteo unicinctus -- --
4 Parabuteo unicinctus -- --
5 Buteo jamaicensis -- --
6 Buteo jamaicensis -- --
7 Buteo jamaicensis -- --
8 Buteo jamaicensis -- --
9 Buteo jamaicensis -- --
10 Falco sparverius -- --
11 Aquila chrysaetos -- --
12 Aquila chrysaetos -- --
13 Aquila chrysaetos -- --
14 Caracara cheriway -- --
15 Bubo virginianus -- PIOJO 16 Bubo virginianus -- --
17 Bubo virginianus -- --
18 Tito alba -- -- 19 Tito alba -- --
32
Citologías traqueales
En el Cuadro 9 se describen los individuos y el resultado de estas citologías de
tráquea, muestran resultados negativos resaltando que estas se obtuvieron
durante el segundo periodo, lo que hace referencia para que el calendario de
desparasitación se haga antes del periodo de lluvia o primer periodo.
Cuadro 4. Resultados de las citologías de la tráquea.
INDIVIDUO Trichomonas Aquila chysaetos Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Aquila chysaetos Negativo Parabuteo unicintus Negativo Buteo jamaicensis Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo
33
7. DISCUSION
Las altas prevalecías obtenidas fueron las esperadas porque las infecciones
parasitarias según autores (Figueroa, 2002), son más corrientes en los animales
en cautiverio que en los de vida libre, debido a que se mantienen constantemente
en ambientes contaminados, en especial con parásitos monoxenos (Figueroa,
2002) como lo es Heterakis.
Pardo (sin año) encontró que en cuanto a las gallinas la media de parásitos en la
época de lluvias fue de 4.46 y en la época de secas 5.87, contando con una mayor
frecuencia de Heterakis gallinarum en ambas épocas así mismo Zaldivar, et al
(1984) encontraron en época de estiaje a Strongyloides. Esto corresponde con la
presencia de estas especies parasitarias en aves rapaces con una menor
frecuencia en temporada de lluvias y una mayor en época de estiaje.
Mas que un solo un ejemplar de águila real, no se encontraron ectoparásitos en
las aves muestreadas, esto es posiblemente a que al ser aves en cautiverio no
tienen el suficiente contacto con presas infestadas que pudieran transmitir algún
tipo de ectoparásito, así también por el manejo en su alimentación no tiene riesgo
de infestaciones ya que el proceso de limpieza del alimento que consiste en
pescuezo de pollo elimina plumas y suciedad. Este único caso de presencia de
piojo se puede presumir a que recientemente durante los últimos días de la toma
de muestras se comenzó a alimentar a las águilas reales con alimento vivo en
particular conejos que pueden ser foco de hospedadores de piojos (Vázquez et al,
2006).
34
Según COLVEMA en su pagina oficial (2012) La presencia de Ascardia en el un
individuo de Caracara cheriway puede deberse a que es común encontrarla en
especies de aves que se encuentran en el suelo, sus huevecillos pueden ser
controlados por el vapor de agua pero este se encuentra en menor medida en los
encierros durante la temporada de estiaje y en los encierros donde el piso esta
cubierto por graba.
En cuanto a la parasitosis por coccidias en Buteo jamaicensis esta ampliamente
registrada como un clásico caso de parasito heteroxeno ya que este tipo de
parasito es común en mamíferos intermedios que sirven como hospedador
intermedio y provocan un aumento en la probabilidad de depredación por el
hospedador definitivo Los casos de coccidias que se presentaron en ejemplares
de la especie Buteo jamaicensis coinciden probablemente en con estos casos ya
que las instalaciones del aviario no son las optimas no existe una barda a nivel del
suelo que separe totalmente al encierro se utiliza únicamente maya ciclónica que
permite la entrada de roedores que han sido avistados por el personal del aviario
durante los últimos meses de la toma de muestras.
Por otra parte los estudios arrojados del presente trabajo no mostraron la
presencia de Trichomonas, de los sitios muestreados, lo que nos hace pensar que
el tipo de manejo, dieta (no incluye palomas que es la principal portadora de
trichomonas (Acosta et al, 2009)), y alojamiento es más controlado.
Los ejemplares que están en contacto cercano con ejemplares de papagayos
fueron los arrojaron muestras positivas de Isospora, Strongyloides, Heterakis,
Raillietina, y estudios parasitológicos gastrointestinales de aves silvestres en
cautiverio del estado de Penambuco, Brasil señalan que aves como papagayos
35
son portadoras de parásitos como Trichomonas gallinae, Trichostrongylus tenuis,
Ascaridia columbae, A. sprenti, A. dissimiles, Heterakis gallinarum, Capillaria sp,
Eimeria dispersa y Raillietina sp, (Lyra, 2002) pudiendo entonces convertirse en
vectores para la transmisión de estos parásitos en rapaces debido a que muchos
encierros de las rapaces se encuentran a un lado de un encierro con papagayos,
también por la construcción de las instalaciones ya para llegar a un encierro de
algunas rapaces se tiene que pasar forzosamente por algún otro encierro que
albergue a ejemplares de papagayos.
La presencia de microorganismos en aves rapaces, en diferentes recintos,
demuestra la evidente necesidad de aumentar las medidas de bioseguridad, ya
que en el aviario DILAJESH, se encontraron ciertos puntos que según Castañeda
(2010) son condiciones para la presencia de enfermedades, tales como la
presencia de perros, mala higiene y desinfección inadecuada. Los aspectos
relacionados con la ubicación, vínculos y traslado, el control sanitario y
saneamiento ambiental, la alimentación, conservación y suministro de agua deben
de ser revisados periódicamente (Castañeda, 2010).
36
8. CONCLUSIONES
Durante el periodo de estiaje se tuvo el mayor numero de casos positivos de
parasitosis en los ejemplares rapaces con un 95% de ejemplares con algún tipo
de parásitos comparado con el 60% de los ejemplares que presentaron parasitosis
positivas en el periodo de lluvias. De los 2 ordenes muestreados, el estrigiforme
solo presentó incidencia parasitaria durante el periodo de estiaje con Strongyloides
y con la mas alta densidad, el orfen falconiformes presentó al menos una
parasitosis en todas las especies menos el ejemplar de la especie Falco
sparverius que no presento parasitosis en ninguna de las 2 temporadas.
Buteo jamaicensis fue la especie que presento mayor incidencia parasitaria donde
se encontraron los géneros Strongyloides, Heterakis y Coccidia.
Individuos de las especies Buteo jamaicensis y Aquila chrysaetos mantuvieron sus
parasitosis sin cambiar ni los tipos de parásitos ni la densidad parasitaria de los
mismos, Strongyloides se encontraba presente en los ejemplares de Parabuteo
unicintus durante el periodo de lluvias mientras que en el periodo de estiaje no se
encontraba presente y era reemplazado por Heterakis.
Heterakis y Strongyloides presentaron el mismo porcentaje de incidencia
parasitaria con 30% para la temporada de lluvias y el 40% en la temporada de
estiaje y solamente se encontró a Coccidia y Ascardia durante el periodo de
estiaje.
En general los diferentes grupos de parásitos y la presencia de ellos en diferentes
grupos de aves de presa son muy distintos uno de otro, pero si se demostró una
37
mayor abundancia de parásitos gastrointestinales durante el periodo de estiaje
que indica factor de riesgo de enfermedades para las aves de presa durante esta
temporada.
8.1. Recomendaciones
Las operaciones que se realizan de mantenimiento alimentación y limpieza de los
ejemplares y encierro de los mismos deberán ser revisados cuidadosamente ya
que ya que se opera igual para todas las especies aun cuando tienden diferentes
comportamientos y características.
Se resalta la necesidad de modificar las operaciones de alimentación, como caso
particular se recomienda colocar el alimento en un solo lugar y elevado del suelo
preferentemente en tocones o en una percha, así como un cambio periódico y
constante del agua en los encierros. Descongelar el alimento sumergiéndolo en
agua y desinfectándolo con soluciones de plata coloidal estable al 0.08% como las
presentes en productos como BacDyn plus o similares.
Dejar de alimentar a los ejemplares de estrigiformes durante el día ya que estos
solo se alimentaran durante la noche y el alimento pasara menos tiempo a la
intemperie.
Limpiar los encierros con mayor regularidad ya que se observa en ellos restos de
alimentos, plumas heces y agua sucia durante mucho tiempo.
Concentrar a las especies en grupos de encierros de un mismo orden en áreas
especificas sin combinar a otros como psitácidos ya que ambos pueden ser foco
de diferentes enfermedades para uno u ambos ordenes por los distintos alimentos
38
que se manejan para cada una de las especies ya que se observan encierros
donde se encuentran estrigiformes y a un lado se encuentra un encierro que
contiene ejemplares de psitácidos.
Se pueden seguir muchos de los puntos mencionados en la Guía de bioseguridad
para propietarios de aves y aves de corral del departamento de agricultura de los
Estados Unidos que se puede descargar en la pagina:
www.aphis.usda.gov/.../animal.../USDA_BioGuide_SPA_8-2006.pdf
Tomando en cuenta los puntos anteriores, se recomienda:
• Seguir las reglas de bioseguridad mencionadas.
• Seguir un calendario de desparasitación que sea eficiente según el
parásito y su ciclo biológico.
Nematodos:
• Ascaridia.
• Strongyloides
• Heterakis
o Piperazina: 45 a 100 mg/Kg. VO ó 6 a 10 gramos por galón
durante 4 días.
o Fenotiacina: .5 a 1 Gr/Ave.
Cestodos
• Reallietina
o Pirantel: 4.5 mg/Kg. VO. Segunda dosis a los 14 días.
Antiparasitarios de amplio espectro:
• Febantel: 3 mg/ Kg.
39
• Fenbendazol:.10 a 50 mg/Kg. VO. Repetir la dosis de 3 a 10 dias después.
• Mebendazol: 50 a 100 mg/Kg durante 3 dias.
• Levimasol: 5 a 15 ml por galón durante 3 dias. Repetir a los 10 dias.
A menos que se indique lo contrario, el tratamiento se debe de repetir
aproximadamente cada 60 días (Plumb. 2006).
40
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• Fig: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10 y 11 Apolinar Misael Hernández Gómez
• Fig 7 http://sxm.birds.free.fr/Ois/Ph/Falco-sparverius.htm#z
• Fig: 12 y 14 La Guía RVC/FAO para el Diagnóstico Parasitológico
Veterinario:
http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/Common.htm
• Fig 13 Samour J H, Naldo J. Serratospiculiasis in Captive Falcons in the
Middle East: A Review. Source: Journal of Avian Medicine and Surgery.
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• Fig 15:
http://instruction.cvhs.okstate.edu/jcfox/htdocs/disk1/images/img0046.jpg