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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ
INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS
DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS
PROGRAMA DE BIOLOGÍA
MANUAL DE PRÁCTICAS
MORFOFISIOLOGÍA DE CORDADOS
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MANUAL DE PRÁCTICAS DE MORFOFISIOLOGIA DE CORDADOS
COMPILADORES:
Principal: Abraham Aquino Carreño
Revisado por: Ana Gatica Colima
Ciudad Juárez, Chihuahua
Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
2009
p. 142
Complemento práctico del curso Morfofisiología de Cordados del Programa de Biología
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M. en C. S.P. Abraham Aquino Carreño
Coordinador de la Academia de Biología
D. Ph. Antonio de la Mora Covarrubias
Coordinador del Programa de Biología
Dr. Alejandro Martínez Martínez
Jefe del Departamento de Ciencias Químico-Biológicas
M.C. Hugo Staines Orozco
Director del Instituto de Ciencias Biomédicas
Comité editorial
M. en C. S. P. Abraham Aquino Carreño
M. en C. Ana Gatica Colima
M. en C. Guillermo Bojórquez Rangel
Dra. Helvia Rosa Pelayo Benavides
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INDICE
PRESENTACIÓN ................................................................................................ 2
PRÁCTICA 1. DESARROLLO EMBRIONARIO .................................................. 3
PRÁCTICA 2. TÉCNICA HISTOLÓGICA ............................................................ 9
PRÁCTICA 3. SISTEMA TEGUMENTARIO (Peces) ........................................ 21
PRÁCTICA 4. SISTEMA TEGUMENTARIO (Anfibios) ..................................... 27
PRÁCTICA 5. SISTEMA TEGUMENTARIO (Reptiles) ..................................... 33
PRÁCTICA 6. SISTEMA TEGUMENTARIO (Aves) .......................................... 39
PRÁCTICA 7. SISTEMA TEGUMENTARIO (Mamíferos) ................................. 45
PRÁCTICA 8. SISTEMA MUSCULAR (Músculo estriado) ................................ 52
PRÁCTICA 9. SISTEMA MUSCULAR (Músculo liso) ....................................... 58
PRÁCTICA 10. CONTRACCION MUSCULAR ................................................. 62
PRÁCTICA 11. ESQUELETICO (Peces Óseos y Cartilaginosos) ..................... 68
PRÁCTICA 12. ESQUELETICO (Cráneo de anfibios) ...................................... 75
PRÁCTICA 13. ESQUELETICO (Cráneo de reptiles) ....................................... 81
PRÁCTICA 14. ESQUELETICO (Cráneo de aves) ........................................... 89
PRÁCTICA 15. ESQUELETICO (Mamíferos) ................................................... 95
PRÁCTICA 16. COLUMNA VERTEBRAL ....................................................... 102
PRÁCTICA 17. TÉCNICAS DE REGISTRO GRÁFICO .................................. 110
PRÁCTICA 18. ACTIVIDAD DEL MIOCARDIO .............................................. 118
PRÁCTICA 19. CORAZON DE LA RANA ....................................................... 127
PRÁCTICA 20. CICLO CARDIACO EN TORTUGA ........................................ 133
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PRESENTACIÓN
La materia de Morfofisiología de Cordados (MFC) es una asignatura obligatoria
de la carrera de Biología de la Universidad Autónoma de Cd. Juárez (UACJ).
Esta materia involucra tanto aspectos teóricos como prácticos, por lo cual el
Manual de Prácticas de Morfofisiología de Cordados, surge como una respuesta
a la necesidad de reforzar los aspectos vistos en clase, con metodologías
prácticas de laboratorio aplicables a cada uno de los aspectos del contenido
temático del propio curso, presentados de una manera fácil y accesible para el
estudiante de Biología.
El Manual de Prácticas de Morfofisiología de Cordados, no pretende ser un texto
exhaustivo sobre los temas aquí tratados, sino una contribución a la formación
profesional de los alumnos, como una herramienta didáctica y de consulta para
algunos de los muchos y muy diversos aspectos de la anatomía y fisiología
animal.
Para lograr lo anterior, y dado que la materia es una asignatura integradora de
conocimientos, es deseable que el estudiante cuente con bases de Zoología
General, Embriología, Anatomía e Histología principalmente, así como observar
una actitud analítica de observación crítica y sobre todo participativa.
Este trabajo no hubiera sido posible sin el apoyo decidido del Departamento de
Ciencias Básicas del Instituto de Ciencias Biomédicas (ICB). Fue fundamental el
apoyo recibido por parte de la coordinación de la carrera de Biología, así como
de los comentarios y sugerencias de los maestros de la academia de Biología.
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PRÁCTICA 1. DESARROLLO EMBRIONARIO
Introducción
En general los organismos del reino animal son multicelulares, sus células
forman tejidos y estos a su vez forman órganos especializados para una función
o conjunto de funciones determinadas en un arreglo coordinado por sistemas y
aparatos. Son heterótrofos, son diploides, se pueden reproducir sexual y
asexualmente pero en sus ciclos de vida siempre incluyen un periodo de
desarrollo embrionario. La característica fundamental de los organismos
vivientes es su metabolismo especializado.
El desarrollo embrionario conlleva un conjunto de movimientos de partes del
embrión joven (movimientos morfogenéticos) y tiene como finalidad el esbozar
los órganos del embrión. De manera que al final hay un embrión con tres capas
de células perfectamente diferenciadas. Se desplazan los blastómeros. Dan
órganos ectodérmicos (de la superficie), mesodérmicos (porción intermedia) y
endodérmicos (en el interior). Todos estos procesos incluyen las siguientes
características:
La reordenación de las células por movimientos morfogenéticos.
Aumenta el ritmo de división celular.
Poco o nulo crecimiento (las células se segmentan pero no crecen mucho).
Se modifica el metabolismo, aumentando la oxidación. Aumenta la actividad de los núcleos para controlar los procesos que se dan
en las células embrionarias.
Comienza la síntesis de nuevas proteínas.
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Objetivos
1. El alumno conocerá las principales capas embrionarias de los cordados.
2. Identificará los principales tipos de tejidos en etapa embrionaria de los
animales.
3. Reconocerá los reagrupamientos celulares en estadios tempranos.
Materiales
1. Laminillas de cortes de diferentes tejidos embrionarios de Cordados
2. Laminillas de ovocitos en etapas de desarrollo temprano
3. Microscopio óptico (aceite de inmersión)4. Microscopio estereoscópico
Procedimiento
a) Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
b) Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor
aumento.
c) Realice un dibujo de cada una de ellas utilizando diferentes aumentos y
anotando las estructuras observadas.
d) Determine el aumento y justifique
Bibliografía
Torrey, T. W. 1983. Morfogénesis de los Vertebrados. 3ª ed. Limusa. México,
México.
Weichert, Ch. K. Y W. Presch. 1981. Elementos de anatomía de los
cordados. McGraw-Hill. México.Ziswiler , V. 1978. Zoología especial. Vertebrados. Tomo I. Amniotas.
Omega. Barcelona.
Ziswiler , V. 1978. Zoología especial. Vertebrados. Tomo II. Amniotas.
Omega. Barcelona.
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Resultados
Esquematice lo observado en el microscopio (en objetivos de 40x y 100x)
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Cuestionario
1.- Describa los diferentes Subphyllum de Cordados y anote sus características.
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2.- Defina los siguientes términos: Neurulación, Segmentación espiral,
Segmentación radial, Diploide, Partenogénesis y Metazoario.
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3.- Defina los conceptos de animales protostomados y deuterostomados y de
ejemplos de cada uno de ellos.
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4.- Define los siguientes términos: Ontogenia y Filogenia. Una vez definidos,
¿consideras que la Ontogenia es una repetición de la Filogenia y por qué?
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 2. TÉCNICA HISTOLÓGICA
Introducción
Los tejidos animales adquieren su forma inicial cuando la blástula, originada a
partir del óvulo fecundado, se diferencia en tres capas germinales: ectodermo,
mesodermo y endodermo. A medida que las células se van diferenciando
(histogénesis), determinados grupos de células dan lugar a unidades más
especializadas para formar órganos que se componen, en general, de varios
tejidos formados por células con la misma función.
Se pueden distinguir cuatro tipos básicos de tejidos:
1. Tejido Epitelial
2. Tejido Conjuntivo
3. Tejido Muscular
4. Tejido Nervioso
Preparación de tejidos para análisis histológicos
Fijación: es el tratamiento del tejido con sustancias químicas que retarden las
alteraciones tisulares subsecuentes a la muerte conservando su configuración
normal. Los más utilizados son la formalina amortiguada y el fijador de Bouin.
Deshidratación y aclaramiento: Debido a que una gran parte del tejido está
constituido por agua es necesario su remoción, para lo cual se utilizan cambios
graduales y paulatinos de alcohol etílico, iniciando con una concentración de
70% hasta llegar al 100% (deshidratación). A continuación el tejido se trata con
un solvente miscible en parafina fundida, los mas utilizados son el xileno,tolueno, benceno y cloroformo. A esta fase se le conoce también como
aclaramiento. Por último el tejido es impregnado en dos baños de parafina
fundida.
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Inclusión, corte y montaje: La inclusión consiste en colocar el tejido en un medio
rígido que permita obtener secciones delgadas (3 – 10 micras) para lo cual se
coloca en el molde de inclusión se rellena con parafina, se enfría y se desmolda.
Lo anterior para obtención de cortes con el microtomo rotatorio. Recordar que el
grosor del corte dependerá del tipo de tejido como de la finalidad del mismo y el
tipo de estructuras celulares que se desee observar.
Una vez realizados los cortes, estos son pasados al baño de flotación a
temperatura constante (45 – 50 ºC) para ser colocados en las laminillas.
(Recordar colocar grenetina en el baño de flotación para que el tejido se adhiera
al portaobjeto).
Coloraciones
Es de todos conocido que las imágenes que dan las preparaciones coloreadas
son más fáciles de interpretar que las imágenes con preparaciones incoloras. Es
por lo anterior que la técnica histológica de coloración tiene una gran importancia
para el estudio morfológico de células y tejidos.
Es conveniente recalcar la importancia de las observaciones en estado fresco y
sin tinción; tampoco olvidamos la facilidad con que se llegan a observar y
diferenciar muchas estructuras, por medio de colorantes, así como se puedepresentar el peligro de interpretar erróneamente los cortes.
Las coloraciones no son lo más importante en la Histología y que el papel del
histólogo no consiste en ser un buen teñidor, sino más bien en saber observar y
obtener de sus observaciones una correcta interpretación.
Objetivos
1. Aprender y poner en práctica los procedimientos básicos de la técnica
histológica para preparación de laminillas permanentes.
2. Aprender las técnicas básicas de tinción de tejidos.
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Procedimiento
1.- DISECCION DE ORGANISMOS (roedores y peces de agua dulce)
(Charola de disección, estuche de disección con navajas nuevas de bisturí,
cloroformo para anestesiar en caso de usar roedores).
2.- FIJACION Vasos o frascos con tapa-rosca donde quepan los cassettes
portatejidos con capacidad de 500 ml.
3.- PREPARACION DE FIJADORES
Formol neutro amortiguado o Formalina Buffer
(Recipiente de 1 litro)
Formol Q.P.------------------------------------------------100 cc
Agua destilada--------------------------------------------900 cc
Fosfato de Sodio Monobásico---------------------------4 g
(Cristal NaH2PO4.H2O)
Fosfato de Sodio Bibásico------------------------------6.5 g
(Cristal Na2HPO4)
Solución Bouin
(Calcular para recipiente de 1 litro)
Solución saturada de Ácido Pícrico al 10%----------75cc
Formol Q.P.---------------------------------------------------25cc
Ácido acético glacial---------------------------------------- 5cc
4.- DESHIDRATACION
Utilización del Histoquinette digital
Instrucciones para su programación
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RUTINA PARA MOLUSCOS Y PECES
Jarra 1 ------------------------------- Alcohol Etílico al 70% (volumen aprox. 4 cm
antes de llenarse)
Jarra 2 -------------------------------- Alcohol Etílico al 96% (volumen aprox. “)
Jarra 3 -------------------------------- Alcohol Etílico al 96% (volumen aprox. “)
Jarra 4 -------------------------------- Alcohol Etílico al 100% (volumen aprox. “)
Jarra 5 -------------------------------- Alcohol Etílico al 100% (volumen aprox. “)
Jarra 6 -------------------------------- Alcohol Etílico-Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 7 -------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 8 -------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 9 -------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 10 ------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 11 ------------------------------- Parafina-Benceno (volumen aprox. “)
Jarra 12 ------------------------------- Parafina (volumen aprox. “)
*La jarras tienen que tener el volumen dicho, (de no ser así no funciona elaparato).
RUTINA PARA TÉCNICA DESHIDRATACIÓN HUMANOS
Si la muestra ha sido fijada durante 48 horas, pasar directo al alcohol del 50%.
1.- Alcohol del 50%-------------------------------1 hora
2.- Alcohol del 70%-------------------------------1 hora
3.- Alcohol del 80%-------------------------------1 hora
4.- Alcohol del 96%-------------------------------1 hora
5.- Alcohol del 96%-------------------------------1 hora
6.- Alcohol absoluto-------------------------------1 hora
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7.- Alcohol absoluto-------------------------------1 hora
8.- Acetona ------------------------------- 5 min.
9.- Acetona xileno --------------------------------5 min.
10.- Xileno -------------------------------- 5 min.
11.- Parafina xileno ------------------------------ de 15 a 30 min.
12.- Parafina -------------------------------- de 1 a 1.30 hrs.
TÉCNICA DE DESHIDRATACIÓN
1.- Lave con agua de la llave durante 1 a 12 horas.
2.- Alcohol del 70%---------------------------- 1 hora3.- Alcohol del 70%---------------------------- 1 hora
4.- Alcohol del 96%--------------------------- 2 horas
5.- Alcohol del 96%---------------------------- 2 horas
6.- Alcohol del l00%--------------------------- 2 horas
7.- Alcohol del l00%--------------------------- 2 horas
8.- Alcohol Xileno ----------------------------- 15 min.
9.- Xileno ----------------------------- 15 min.
10.- Parafina xileno---------------------------- 15 min.
11.- Parafina I ----------------------------- 2 horas
12.- Inclusión en parafina
NOTA: Los tiempos de deshidratación pueden variar. El histólogo conoce estas
variaciones que tienen que ver desde con qué tipo de organismo y órgano se
trabaja, el tamaño de la pieza, tipo de fijador utilizado, duración en el fijador,
hasta las marcas y concentraciones de los reactivos.
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5.- INCLUSION
Utilización del incluidor de parafina
2 -4 Kg de Parafina para procesamiento histológico
10 Moldes para bloques de parafina
6.- OBTENCION DE CORTES CON MICROTOMO
Utilización del microtomo
Bloques previamente incluidos en el paso anterior
Baño de flotación
Placa térmica para portaobjetos
Termómetro de 100 grados ºC
3 litros de agua destilada
5-10 gramos de gelatina grado reactivo
Un par de agujas de disección
Un pincel grueso y uno fino
50 Portaobjetos con extremo esmerilado
300 ml de Alcohol etílico al 30%
2-3 goteros
Rejilla metálica para colocar portaobjetos (capacidad 30 piezas)
Estufa incubadora calibrada a 65 grados ºC
7.-DESPARAFINACION E HIDRATACION
Termoplato cuadrado
3 cajas de vidrio para coloración (donde cabe la rejilla de 30 piezas)
Asa metálica para la rejilla
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1 litro de Xileno sin usar
300 ml de Alcohol etílico al 100% (*)
300 ml de Alcohol etílico al 96% (*)
300 ml de Alcohol etílico al 7 0% (*)
300 ml de Alcohol etílico al 10% (*)
300 ml de agua destilada
* Se requiere una caja para coloración o un recipiente con tapa de forma
cuadrada tipo toperware para sándwich.
8.- TINCIÓN CITOLÓGICA H-E
1.-Agua destilada -----------------------------------------
2.-Hematoxilina -----------------------------------------
3.-Alcohol ácido -----------------------------------------
4.-Agua corriente ----------------------------------------
5.-Agua amoniacal ----------------------------------------
6.-Agua destilada ----------------------------------------
7.-Alcohol etílico 96% -----------------------------------
8.-Eosina --------------------------------------
9.-Alcohol etilico 96% ----------------------------------
10.-Alcohol absoluto 96% --------------------------
11.- Alcohol absoluto 100% -------------------------
12.- Alcohol absoluto 100% -----------------------
13.- Alcohol absoluto-xileno-----------------------------
14.- Xileno --------------------------------------
15.- Xileno --------------------------------------
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* Si se quiere montar, limpiar muy bien y cubrir con resina.
Núcleos ------------------------------------------------------------ azules
Citoplasma -------------------------------------------------------- rosa ó naranja
PREPARACION DE REACTIVOS
HEMATOXILINA DE HARRIS
Hematoxilina cristalizada -------------------------------------- 1.0 gr.
Alcohol etílico absoluto ----------------------------------------- 10.0 ml.
Alumbre de Aluminio y potasio ------------------------------- 20 gr.
Oxido rojo de mercurio ----------------------------------------- 0.5 gr.
Agua destilada --------------------------------------------------- 200 ml.
*Calcular para 500 ml
Se disuelve la hematoxilina en el alcohol y el alumbre en el agua caliente; se
mezclan ambas soluciones. Se lleva la mezcla a ebullición y se agrega
rápidamente el óxido mercúrico. Cuando la mezcla toma color rojo púrpura se
retira del fuego y se enfría. Filtre antes de usar varias veces.
PREPARACION DE LA EOSINA
Solución acuosa al 1% de Eosina y/o
Solución alcohólica de Eosina y
Agregue una pizca de Orange G.
MONTAJE PERMANENTE DE CORTES
Se puede usar bálsamo de canadá previamente preparado o bien resina
sintética (cytoseal 60), la cual es de secado rápido y transparente ya que tiene el
mismo índice refracción del cristal del portaobjeto.
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Cubreobjetos grandes 22 X 40 mm.
Un rollo de papel secante
Un par de agujas de disección
Nota: Es conveniente realizar el proceso de montaje de preparaciones
permanentes en la campana de extracción para evitar cualquier contaminación
de la muestra.
Bibliografía
Junqueira L. C., y Carneiro J., Histología Básica, 3ª. Edición, Salvat Editores,
Barcelona, España, 1984.
Hildebrand, M. - Analysis of Vertebrate Structure. Ed. Wiley. Ed. Limusa.
Kardong, K. V. - Vertebrados. Anatomía Comparada, Función, Evolución. Ed.
McGraw-Hill.Interamericana.
Olivia Tapia Vázquez, Elías Torres Balcázar, Eva A. Inda Presichi, Juan Manuel
Álvarez Favela y Juan Manuel López Villalobos. Manual para el Curso Teórico
Práctico de Histología. Facultad de Ciencias, Universidad Autónoma de baja
California. Enero de 2002.
Rebeca Vásquez Yeomans y notas de Histología del Laboratorio de Biología y
Patología de Organismos Acuáticos de CICESE. Enero de 1998.
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Resultados
Anote sus observaciones del análisis microscópico por tipo de tejido.
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Cuestionario
1.- Anota y describe en qué consiste la técnica de coloración Tricómica de
Masson
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2.- Describe en qué consisten y para que se usan las técnicas argénticas de
coloración.
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3. Investiga cuales son los tiempos de deshidratación de tejidos nervioso y ,
en mamíferos.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 3. SISTEMA TEGUMENTARIO (Peces)
Introducción
El tegumento (o piel) es un órgano compuesto. La epidermis se encuentra en la
superficie, por debajo de ella la dermis y entre ambas se sitúa la membrana
basal; (lamina basal y lamina reticular). La epidermis deriva del ectodermo y
genera la lámina basal. La dermis se desarrolla a partir del mesodermo y el
mesénquima y produce la lámina reticular. Entre el tegumento y la musculatura
profunda del cuerpo hay una región subcutánea transitoria formada por un tejido
conjuntivo muy laxo y por tejido adiposo. El tegumento es uno de los órganos
mayores del organismo, alcanza cerca del 15% del peso del cuerpo humano.
Juntas, epidermis y dermis forman una de las estructuras más variadas que se
encuentran en los vertebrados.
La dermis de muchos vertebrados produce directamente placas de hueso
mediante osificación intra membranosa. Debido a su fuente embrionaria y a la
posición inicial dentro de la dermis, estos huesos se denominan huesos
dérmicos. Son notables en los peces ostracodermos, pero aparecen
secundariamente incluso en grupos derivados, como algunas especies de
mamíferos.
El componente más conspicuo de la dermis es el tejido conjuntivo fibrosos
compuesto principalmente por fibras de colágeno. Estas pueden estar
entretejidas en diversos estratos denominados capas. La dermis del anfioxo, un
protocordado, muestra una distribución del colágeno especialmente ordenada
dentro de cada capa. A su vez, las capas tiene una disposición laminar con una
orientación muy regular pero alterna.
La epidermis de muchos vertebrados produce moco para humedecer la
superficie de la piel. En los peces, el moco parece proporcionar cierta protección
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contra las infecciones bacterianas y ayuda a asegurar el flujo laminar de agua a
lo largo de la superficie del cuerpo.
Objetivos
1.- El alumno conocerá los principales componentes de la piel de los peces.
2.- Identificará los derivados dérmicos de los peces.
3.- Identificará los diferentes tipos de escamas en los peces óseos y
cartilaginosos.
Materiales
1.- Ejemplares en fresco de peces óseos y cartilaginosos
2.- Laminillas de cortes de piel de peces
3.- Laminillas de tipos de escamas de peces
4.- Microscopio óptico y estereoscópico
5.- Bálsamo de Canadá, citospray (fijador en aerosol)
6.- Aceite de inmersión
Procedimiento
1.- Realice la toma de muestras de escamas de los peces proporcionados
2.- Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
3.- Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor
aumento.
4.- Realice un dibujo de cada una de ellas. Determine el aumento y justifique.
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Bibliografía
Grassé, P. P. & Devillers, Ch.. - Zoología. Tomos III y IV. Ed. Toray-Masson.
Hickman, C.P., Roberts, L.S. y Larson, A. 2002. Zoología. Principios generales.
Ed. Interamericana McGraw-Hill.
Hildebrand, M. - Analysis of Vertebrate Structure. Ed. Wiley. Ed. Limusa.
Kardong, K. V. - Vertebrados. Anatomía Comparada, Función, Evolución. Ed.
McGraw-Hill.Interamericana.
Resultados
Esquematice lo observado, anote las estructuras y justifique sus anotaciones(objetivos de 40x y 100x):
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Cuestionario
1.- Describa cuatro de las principales funciones de la piel en los peces marinos y
de agua dulce.
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2.- Defina los siguientes términos: a) Membrana basal, b) Cromatóforo,
c) Melanina, d) Queratinocito, e) Célula glandular.
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3.- Describa en qué consiste la línea lateral de los peces y en que estrato de la
piel se encuentra.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 4. SISTEMA TEGUMENTARIO (Anfibios)
Introducción
Al invadir el medio terrestre los cordados se enfrentaron al problema de la
desecación o pérdida de humedad. En los anfibios, el moco probablemente
cumple funciones de protección contra la desecación e impide que la piel se
seque durante la estancia del animal en tierra.
La piel que cubre el cuerpo de los vertebrados terrestres forma con frecuencia
una capa queratinizada o cornificada, el estrato corneo. Por divisiones mitóticasse forman nuevas células epidérmicas, principalmente en el estrato basal
profundo. Estas nuevas células epidérmicas empujan a las menos profundas
hacia la superficie, donde, de manera ordenada, tienden a la autodestrucción. Al
morir, acumulan diversos productos proteicos y con ellos forman queratina en un
proceso denominado queratinización. Así, la queratina es una clase de proteína
producida durante la queratinización, y en las células epidérmicas específicas
que participan son queratinocitos. El estrato corneo superficial resultante es una
capa muerta que sirve para reducir la perdida de agua a través de la piel en
medios terrestres secos.
Para evitar daños mecánicos en las zonas del cuerpo donde el roce es
frecuente, como las palmas de las manos o las palmas de los pies, el estrato
cornificado puede formar una gruesa capa protectora o callo. El estrato corneo
puede diferenciarse en pelos, pezuñas o vainas de cuerno u otras estructuras
cornificadas especializadas.
Objetivos
1. El alumno conocerá los principales componentes de la piel de los
Anfibios.
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2. Identificará los derivados epidérmicos y dérmicos de la piel de los
Anfibios.
3. Identificará los melanocitos epidérmicos y glándulas de veneno en la piel
de Anfibios.
Materiales
1. Material fresco de piel de salamandra o de rana
2. Laminillas de cortes de piel de anfibios
3. Microscopio óptico y estereoscópico
Procedimiento
Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayoraumento.
Identifique las capas de la piel realizando un corte transversal
Observe las células pigmentadas de la epidérmis
Realice un dibujo de cada una de ellas. Determine el aumento y justifique.
Bibliografía
Kardong, K. V. - Vertebrados. Anatomía Comparada, Función, Evolución. Ed.
McGraw-Hill.Interamericana.
Pough, F. H.; Janis, C. H. & Heiser, J. B. - Vertebrate Life. Ed. Prentice-Hall.
Romer, A. & Parsons, T. - Anatomía Comparada. Ed. Interamericana.
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Resultados
Esquematice lo observado (en objetivo 40x y 200x):
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Cuestionario
1.- Describa las principales características celulares de la piel de anfibios.
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2.- Defina los siguientes términos:
a) Glándula de veneno
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________________________________________________________________
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b) Cromatóforo
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b) Melanóforo
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c) Células de Leydig
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3.- Describa en qué consiste el proceso de metamorfosis en Anfibios.
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4. Anote y describa al menos dos derivados epidérmicos y dos dérmicos de la
piel de anfibios.
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5.- Realice una tabla comparativa de los derivados epidérmicos en las subclases
de Anfibios.
Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 5. SISTEMA TEGUMENTARIO (Reptiles)
Introducción
Por lo general la escama de los reptiles carece de hueso de soporte o de
cualquier otra contribución estructural significativa de la dermis. En su lugar, la
escama es un repliegue de la superficie epidérmica. La unión entre escamas
epidérmicas adyacentes es una bisagra flexible. Si la escama epidérmica es
grande y en forma de lámina, se la denomina escudo. Además, las escamas
epidérmicas pueden modificarse en crestas, espinas o salientes que semejan
cuernos.
Los huesos que soportan la epidermis se denominan osteodermos, placas de
hueso dérmico localizadas bajo las escamas epidérmicas. Se encuentran
osteodermos en los cocodrilos, algunos lagartos y ciertos reptiles extinguidos.
Algunos huesos de caparazón de la tortuga probablemente sean osteodermos
modificados.
La dermis de la piel de los reptiles está compuesta por tejido conjuntivo fibroso.
La epidermis generalmente presenta tres regiones delimitadas: estrato basal,
granulosos y corneo.
En unión con otros sistemas, el tegumento contribuye a la regulación osmótica, a
la circulación y al movimiento alternativo de los gases e iones.
La piel acumula el calor necesario, o irradia el exceso, y aloja a los órganos
sensoriales. Tiene plumas para la locomoción, pelos para el aislamiento y
cuernos para la defensa. Los pigmentos de la piel bloquean la dañina luz solar y
exhiben colores brillantes durante el cortejo.
Objetivos
1. El alumno identificará los principales tipos de escamas de la piel de los
reptiles
2. Identificará los componentes derivados epidérmicos de los reptiles
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Resultados
Realice sus dibujos de las partes de los tipos de escamas
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Esquematice lo observado, justifique anotando los nombres de las estructuras
(en objetivos 40x y 100x):
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Cuestionario
1.- Describa las principales funciones de la piel de reptiles.
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2.- Defina los siguientes términos:
a) Estrato intermedio
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b) Glándula odorífera en Quelonios
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________________________________________________________________
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c) Osteodermos
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d) Glándula sebácea en reptiles ________________________________________________________________
________________________________________________________________
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3.- Describa en qué consiste el proceso de queratinización en la piel de reptiles
________________________________________________________________
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 6. SISTEMA TEGUMENTARIO (Aves)
Introducción
La dermis de la piel de las aves, especialmente cerca de los folículos plumosos,
esta ricamente provista de vasos sanguíneos, terminaciones nerviosas
sensoriales y músculos lisos. Durante la época de cría, la dermis del pecho de
algunas aves se vuelve muy vascularizada, formando un «terreno» incubador en
el que la sangre caliente puede estar en estrecha asociación con los huevos
incubados.
La piel de las aves tiene pocas glándulas. La glándula uropigial, localizada en la
base de la cola secreta un producto lipoprotéico que las aves recogen con los
laterales del pico y luego untan en sus plumas. La otra glándula es la glándula
de la sal, que se localiza en la cabeza de algunas aves y está bien desarrollada
en las aves marinas. La glándula de la sal excreta el exceso de sal obtenido
cuando estas aves ingieren alimento marino y agua de mar.
Las plumas distinguen a las aves de otros vertebrados. Pueden ser
estructuralmente complejas y mostrar formas variadas. Son derivados de la piel,
sin elementos vasculares ni nerviosos, principalmente de la epidermis y del
sistema queratinizado. Están situadas en la superficie del cuerpo a lo largo de
tramos diferentes denominados pterilas.
Embriológicamente se desarrollan a partir de folículos plumosos, invaginaciones
de la epidermis que se introducen en la dermis adyacente. La raíz del folículo
plumoso en asociación con la cavidad de la pulpa dérmica, comienza a formar la
pluma. Esta crece hacia fuera dentro de un estuche o cubierta. En el interior del
estuche el eje central se divide en dos partes: un raquis distal, que lleva barbas
con conexiones que se enganchan denominadas bárbulas y un cálamo proximal
que se fija al cuerpo.
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Las plumas de vuelo de las alas, remiges o remeras, se caracterizan por tener
un raquis largo y una prominente bandera o vexilo. Aunque estas plumas poseen
alguna utilidad como aislantes, su función primaria es la locomoción. La mayoría
de las plumas reciben estímulos sensoriales y llevan colores para la exhibición o
el cortejo. En la epidermis hay cromatóforos y sus pigmentos son transportados
a las plumas para darle color, Así mismo la refracción de la luz en las barbas y
bárbulas de la pluma. También crea ciertos tipos de colores iridiscentes.
Objetivos
1. El alumno identificará los principales tipos de plumas de la piel de las aves
2. Identificará los componentes de las plumas y sus derivados epidérmicos
Materiales
1. Material fresco de piel de aves
2. Plumas de diferentes partes del cuerpo de una ave
3. Laminillas permanentes de plumas
4. Microscopio óptico y estereoscópico
Procedimiento
1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayoraumento.
3. Realice una preparación permanente de una filopluma y un plumón
4. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes de las plumas
Determine el aumento y justifique.
Bibliografía
Kardong, K. V. - Vertebrados. Anatomía Comparada, Función, Evolución. Ed.
McGraw-Hill.Interamericana.
Pough, F. H.; Janis, C. H. & Heiser, J. B. - Vertebrate Life. Ed. Prentice-Hall.
Romer, A. & Parsons, T. - Anatomía Comparada. Ed. Interamericana.
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Resultados
Esquematice lo observado (en objetivos 40x y 100x):
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Cuestionario
1.- Describa en qué consiste el proceso de formación de las plumas de las aves
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2.- Investigue como se explica el origen de las plumas de las aves a partir de
escamas de reptiles ancestrales
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3.- Realice una tabla comparativa de las funciones de los tipos de plumas
presentes en las aves de presa.
TIPO DE PLUMA FUNCION
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 7. SISTEMA TEGUMENTARIO (Mamíferos)
Introducción
La epidermis de los mamíferos puede estar localmente especializada como
pelos, uñas, o glándulas. Las células queratinizadas superficiales son
continuamente exfoliadas y sustituidas por células que proceden básicamente de
la capa más profunda de la epidermis, el estrato basal. Las células basales se
dividen mitóticamente, y de las células resultantes unas quedan para mantener
la población de células troncales y otras son empujadas hacia la superficie.
Los queratinocitos constituyen el principal tipo celular de la epidermis. Se
reconocen otros tipos, aunque sus funciones son menos conocidas. Las células
de Langerhans son células estrelladas que se encuentran dispersas solo en la
parte superior del estrato espinoso. En la actualidad existen evidencias que
sugieren que tienen un importante papel en las acciones de intervención celular
del sistema inmunitario. Las células de Merkel, originadas en las crestas
neurales y asociadas con los nervios sensoriales cercanos, se cree que
responden a la estimulación táctil (mecanoreceptores).
Además de estos tipos celulares, otro tipo celular destacado y que
secundariamente se asocia a la epidermis es el cromatóforo. Los cromatóforos
provienen de células de la cresta neural embrionaria y la mayoría puede
encontrarse en cualquier parte del cuerpo.
La dermis de los mamíferos es una capa doble. La más externa, o capa papilar,
emite salientes digitales en la epidermis superior, denominados papilas
dérmicas. La capa reticular, más profunda, incluye tejido conjuntivo fibroso
irregularmente distribuido y que fija la dermis a la fascia subyacente. Vasos
sanguíneos, nervios y músculo liso ocupan la dermis pero no alcanzan la
epidermis.
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El origen filogenético del pelo permanece especulativo. Una de las teorías
supone que el pelo se origino inicialmente como una superficie de aislamiento
reteniendo el calor del cuerpo en los mamíferos primitivos endotermos. Una
teoría alternativa es la que propone que el pelo evolucionó primero como
diminutas varillas que se extendían entre las ranuras de las escamas, y que
sirvieron como mecanismos táctiles.
Objetivos
1. El alumno conocerá los principales componentes de la piel de mamíferos
2. Identificará los derivados epidérmicos y dérmicos de la piel de mamíferos
Materiales
1. Material fresco de piel de mamíferos2. Laminillas de pelos de diferentes mamíferos
3. Microscopio óptico y estereoscopio
Procedimiento
1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor
aumento.
3. Realice un dibujo de cada una de ellas.4. Identifique las partes.
5. Determine el aumento y justifique.
Bibliografía
Eckert R., Randall, D. & Augustine G. 1994. adaptaciones, 3ª. Ed.,
Interamericana-McGraw-Hills, México. 683 pp.
Romer, A.S., y T. S.Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.Interamericana, México.
Hildebrand, M. 1982. Anatomía y embriología de los vertebrados. Limusa,
México. Limusa México.
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Resultados
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Cuestionario
1.- Anote y describa cuatro de las principales funciones de la piel de mamíferos.
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2.- Defina los siguientes términos:
a) Glándulas céreas
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________________________________________________________________
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b) Glándulas del Meibomio
________________________________________________________________
________________________________________________________________
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________________________________________________________________
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________________________________________________________________
c) Glándulas sudoríparas
________________________________________________________________
________________________________________________________________
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________________________________________________________________
________________________________________________________________
d) Glándulas sebáceas.
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3.- Describa en qué consiste el proceso de formación de garras y uñas.
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4.- Mencione la diferencia entre cuernos y astas.
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Esquematice y justifique anotando las estructuras observadas en objetivos 40x y
100x):
Resultados
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PRÁCTICA 8. SISTEMA MUSCULAR (Músculo estriado)
Introducción
Visto con un microscopio, el músculo esquelético parece tener bandas
transversales o estriaciones que resultan de su estructura fundamental. El M.E.
también está bajo control voluntario y generalmente se encuentra asociado con
huesos y cartílagos. Sus células son multinucleadas, con muchos núcleos
distribuidos por su citoplasma. Las células individuales generalmente son
menores de 5 cm. de largo, unidad por los extremos para formar fibras
compuestas más largas. Internamente, cada célula muscular esquelética está
formada por un paquete de unidades alargadas llamadas miofibrillas.
Cada miofibrilla está formada por sarcómeros, que a su vez están formados por
miofilamentos de dos clases: filamentos finos y gruesos. Al microscopio
electrónico, los filamentos finos y gruesos aparecen altamente ordenados y su
diseño se repite en cada sarcómero, dando estos un modelo diferenciado a
bandas. Las miofibrilas se alinean ordenadamente, el efecto total da un patrón
totalmente estriado, visible incluso con el microscopio lumínico.
Los músculos esqueléticos suministran la fuerza que mueve el esqueleto. La
parte carnosa de un músculo es el vientre (gaster), y los extremos que se unen
al esqueleto u órganos adyacentes forman las inserciones. El músculo bíceps
braquial, del brazo, está compuesto de células musculares empaquetadas, como
todos los músculos esqueléticos. Cada célula muscular esta ligeramente
envuelta por una capa de tejido conjuntivo, el endomisio.
Los grupos de células musculares están envueltas en un perimisio. El músculo
completo está rodeado por una capa externa de tejido conjuntivo, el epimisio. Un
fascículo se refiere a un paquete de células musculares definido por su perimisio
particular.
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Objetivos
1. Identificar las estructuras más importantes del músculo esquelético
2. Diferenciar los componentes del sistema muscular
3. Reconocer las características celulares del músculo esquelético.Materiales
1. Microscopio óptico
2. Disección de tejido muscular estriado
3. Estuche de disección
4. Laminillas histológicas
Procedimiento
1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor
aumento.
3. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes. Determine el
aumento y justifique.
Bibliografía
Silverstein A., y V. B. Silverstein. 1972. The Muscular SystemHow livingcreatures move. Prentice Hall.
Weichert, Ch. K. Y W. Presch. 1981. Elementos de anatomía de los
cordados. McGraw-Hill. México.
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Resultados
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Esquematice y justifique lo observado (en objetivos 40x y 100x):
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Cuestionario
1.- Describe el origen embrionario del tejido muscular en cordados
________________________________________________________________
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________________________________________________________________
2.- Define los siguientes términos:
a) Sarcómero ________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
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b) Miofibrilla
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c) Bandas Z
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3.- Describe en qué consiste el proceso de contracción muscular.
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4.- Describe en qué consiste el proceso de tetanía
________________________________________________________________
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 9. SISTEMA MUSCULAR (Músculo liso)
Introducción
Como su nombre lo indica, “liso”, este músculo carece de estriaciones, se
relaciona casi completamente con las funciones viscerales: tracto digestivo,
vasos sanguíneos, pulmones, de manera que también es un tipo de músculo
visceral.
La actividad del músculo liso esta fuera del control voluntario. De forma
característica las contracciones son lentas y sostenidas comparadas con las
contracciones rápidas del músculo esquelético. Por consiguiente, el músculo liso
es adecuado para esfínteres, donde la fatiga podría significar una inoportuna
pérdida de control. Cada célula muscular lisa es mononucleada, corta yfusiforme. Todas tienen un tamaño aproximado
Las células del músculo liso están unidas unas a otras mediante uniones
especializadas para formar capas. Estas capas están enrolladas alrededor de
los órganos sobre los que ejercen un control mecánico. El mecanismo molecular
de contracción no es también conocido como el del músculo estriado, pero
generalmente se acepta que está basado en un mecanismo de deslizamiento de
los filamentos.
Objetivos
1. Identificar las estructuras más importantes del músculo liso.
2. Diferenciar los componentes del músculo liso
Materiales
1. Microscopio
2. Laminillas histológicas
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Procedimiento
1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado
2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor
aumento.3. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes. Determine el
aumento y justifique.
Bibliografía
Romer, A.S., y T. S.Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.
Interamericana, México.
Silverstein A., y V. B. Silverstein. 1972. The Muscular SystemHow living
creatures move. Prentice Hall.
Weichert, Ch. K. Y W. Presch. 1981. Elementos de anatomía de los
cordados. McGraw-Hill. México.
Resultados
Esquematice y justifique lo observado (en objetivos 40x y 100x):
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Cuestionario
1.- Describe el origen embrionario del músculo liso de cordados
________________________________________________________________
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2.- Describe en donde se ubican los principales sitios donde se ubica el músculo
liso de los cordados
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3.- Realiza un esquema de las células del músculo liso.
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Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 10. CONTRACCION MUSCULAR
Introducción
Un músculo esta relajado o en un estado de reposo, cuando no recibe
estimulación nerviosa. El músculo de un órgano en estado de reposo es blando,
y las fibras de colágeno que rodean al músculo mantienen su forma durante esta
fase. El músculo no genera fuerza y si se le aplica una fuerza tensora, se alarga
la resistencia a la fuerza tensora procede de las fibras de colágeno. Cuando los
nervios estimulan a un músculo a su nivel umbral, produce una contracción y
genera una fuerza tensora que constituye el estado activo de un músculo. El
hueso al que el músculo se fija y la masa que debe mover, representan una
resistencia externa denominada carga. En todo caso, un músculo que realmente
se acorta por concentración depende del equilibrio relativo entre la fuerza
tensora de contracción y la carga que tiene que mover.
Las contracciones musculares son activas y producen fuerza, pero no pueden
estirarse para separar sus lugares de fijación. La química subyacente de la
contracción muscular se basa en filamentos deslizantes de proteínas musculares
que se deslizan entre sí para acorta el músculo. En el músculo esquelético, la
contracción implica la existencia de puentes transversales químicos que se
forman y vuelven a formar entre los filamentos gruesos y finos para que estos
filamentos se deslicen entre sí, el efecto de su deslizamiento es para acortar el
sarcómero del cual forman parte.
El sarcolema (membrana celular) se invagina dentro de la célula muscular a
intervalos regulares y en asociación con el retículo sarcoplasmático. El extremo
de la neurona inervante, conocido como la palca motora, inicia las ondaseléctricas de despolarización del sarcolema. El sarcolema amplia el estimulo de
propagación a todas partes de célula muscular. Dentro de la fibra muscular, esta
onda eléctrica de despolarización estimula los eventos químicos locales, lo que
produce el deslizamiento de los filamentos musculares.
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Debido a que la contracción tiene lugar simultáneamente a través de todos los
sarcómeros, el resultado total es que los sarcómeros de la cadena se acortan
juntos, lo que encoge la fibra muscular que a su vez genera una fuerza tensora.
Objetivos1. Identificar los mecanismos de la contracción muscular.
2. Relacionar las características morfológicas y fisiológicas propias de la
contracción muscular.
Materiales
1. Microscopio óptico
2. Disección de tejido muscular estriado de ratón
3. Solución ringer (fisiológica)4. Estuche de disección
5. Laminillas histológicas
Procedimiento
1. Es deseable que el organismo (mamífero, reptil o anfibio) se sacrifique por
descerebración
2. Realizar disección del músculo gastrocnemio
3. Medir longitud inicial (antes del estimulo) y longitud final (despué