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EXPLICACIÓN DE TRABAJOS PRÁCTICOS
COLORACIONES
Microbiología General
Carrera: Lic. en Biología Molecular
2012
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DIFERENCIA ENTRE CÉLULA PROCARIOTA Y CÉLULA EUCARIOTA
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Morfología bacteriana
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Agrupaciones de cocos según el plano de división
estreptococos
sarcinas
estafilococos
diplococos
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Diferentes morfologías en bacterias bacilares
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Espirilo: espiral rígida
Espiroqueta: flexible, enrollada como sacacorcho
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Observación de microorganismos
Microscopio óptico
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OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS
La observación de los microorganismos se puede realizar:
Examen en fresco (vivos sin teñir)
Técnicas de coloración (teñidos con colorantes)
Ventajas que presentan los microorganismos coloreados:
Proporciona el contraste suficiente entre la célula y el medio que la rodea, permitiendo diferenciar varios tipos morfológicos.
Permite el estudio de estructuras propias de la célula.
Se pueden obtener mayores amplificaciones con el empleo del objetivo de inmersión del microscopio.
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COLORANTES
- Son compuestos orgánicos y cada tipo de colorante suele tener afinidad por determinadas estructuras celulares.
- Muchos de los colorantes usados en microbiología están cargados positivamente (catiónicos) y se combinan con compuestos celulares cargados negativamente, como ácidos nucleicos y polisacáridos ácidos.
- Colorantes catiónicos: azul de metileno, cristal violeta, zafranina.
- Son sales que en medio acuoso:
CLAM CL- + AM+
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Coloraciones
Las coloraciones se pueden clasificar en:
► Examen en fresco
► Coloración simple
► Coloraciones diferenciales: Coloración de Gram Coloración de Ziehl-Neelsen
► Coloraciones especiales: Técnica de Moeller Técnica de Wirtz-Conklin Impregnación argéntica de flagelos Técnica de Burri Impregnación argéntica de Fontana Tribondeau
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1.Preparación del frotis
2.Secado
3.Fijación Métodos físicos: calor
Métodos químicos:
alcohol metílico o etílico
4. Enfriado
5. Coloración (simple o compuesta)
6. Lavado
7. Secado
8. Observación al microscopio con objetivo de inmersión 100 x
Cultivos bacterianos: 18 - 24 h
Fijación: preserva las estructuras y las hace más visibles
Calor: coagula las proteínas y las adhiere sobre el portaobjetos, deforma levemente pero no altera la afinidad
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MORDIENTEMORDIENTE
Sustancia química que unida a los colorantes forma una laca que se adhiere fuertemente a la estructura
Se utiliza para estructuras muy difíciles de teñir.
Se puede agregar antes o después de la adición del colorante con el que formará la laca
Ejemplos: lugol coloración de Gram ácido tánico impregnación argéntica
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COLORACIÓN SIMPLE
1.- Hacer el frotis
2.- Secar la preparación en la parte alta del mechero
3.- Fijar tomando el preparado desde un extremo, pasándolo
3 veces por la llama del mechero.
4.- Una vez frío, colorear con un solo colorante.
5.- Lavar, secar y observar.
Permite visualizar forma, tamaño y disposición de los microorganismos
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Estructura del peptidoglicanoEstructura del peptidoglicano
Esquema de la pared
Unidad repetitiva
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Gram negativas
Gram positivas
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PARED CELULAR DE BACTERIAS
GRAM POSITIVAS GRAM NEGATIVAS
Ácidos teicoico: polímeros de fosfato de ribitol o fosfatos de glicerol
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Esquema de pared celular
Gram (+)Gram (-)
Membrana externa
Capa lipoproteica
Peptidoglicano
Membrana citoplasmática
Ácidos teicoicos
Ác. Teicoicos entrelazados con el peptidoglicano
Membrana citoplamática
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ETAPAS EN LA TINCIÓN DE GRAM____________________________________________________
PASOS METODO GRAM (+) GRAM (-)
Colorante Cristal violeta violeta violeta
Mordiente Lugol violeta violeta
Decoloración Alcohol 95% violeta se decolora
o alcohol-acet.
Contraste Fuscina o violeta rojo
zafranina
____________________________________________________
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Coloración de Gram
Alcohol disuelve los lípidos de la pared bacteriana deshidratación del peptidoglicano
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Levaduras
¿Cómo se observan las bacterias y esporas según la coloración de Gram?
Esporas: Bacillus subtilis
Gram (+) Gram (-)
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Pared de bacterias ácido alcohol resistentes (BAAR)
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COLORACION DE ZIEHL-NEELSEN (BAAR)
Hacer el frotis-Secarlo-Fijarlo
Cubrir con Fucsina Ziehl concentrada, calentar con hisopo encendido hasta emisión de vapores durante 10 min. El fenol y el calor facilitan la penetración del colorante
Decolorar con alcohol-ácido
Lavar-cubrir con Azul de metileno
Lavar-Secar
Observar
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Cápsula bacteriana
Composición químicaComposición química
-PolisacáridosPolisacáridos
-ProteínasProteínas
Cápsula: estructura rígidaCapa mucosa: se deforma con facilidad y no excluye partículas
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ETAPAS EN LA COLORACIÓN DE CAPSULA (TECNICA DE BURRI)
1.- Preparar extendido (colocar en el extremo de un portaobjeto una gota de tinta china comercial)
2.- Emulsionar sobre esa gota una suspensión de gérmenes cápsulados
3.- Con otro portaobjeto, efectuar un extendido fino. Secar y fijar a la llama.
4.-Cubrir con solución de cristal violeta 2 min.
5.- Lavar cuidadosamente con agua corriente. Secar y observar.
CAPSULAS: REFRINGENTES SOBRE FONDO OSCURO Y EL CUERPO BACTERIANO TEÑIDO DE VIOLETA.
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DIFERENTES ASPECTOS DE LA CAPSULA BACTERIANA
Klebsiella pneuminiae Bacillus antrhacis Streptococcus
pneumoniae
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ESPORAS Y ENDOSPORAS ESPORAS Y ENDOSPORAS BACTERIANASBACTERIANAS
ENDOSPORAS:ENDOSPORAS:
No es un método de multiplicación bacteriana sino una forma de reposo latente dentro del ciclo vital.
Permanecen latentes por largos periodos de tiempo.
La formación de la endospora se da por la falta de los nutrientes esenciales
No se presenta en la etapa exponencial del crecimiento bacteriano
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ESPORAS Y ENDOSPORAS ESPORAS Y ENDOSPORAS BACTERIANASBACTERIANAS
Órganos refringentes, esféricos u ovales, constituyen la forma de resistencia bacteriana ante deficiencia nutricional, radiación, calor, ácidos, altas temperaturas, etc.Son muy impermeables a los colorantes
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ESPORAS Y ENDOSPORAS ESPORAS Y ENDOSPORAS BACTERIANASBACTERIANAS
TIPOS DE ENDOSPORAS:TIPOS DE ENDOSPORAS:
A. CentralC. SubterminalD. Terminal
TIEMPO DE VIDA DE UNA ESPORA:TIEMPO DE VIDA DE UNA ESPORA: Indefinido, hasta que las condiciones del medio sean
favorables (Clostridium aceticum --- 30 años)
COLORACION PARA ENDOSPORA: Moeller – Wirtz Conklin
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ETAPAS EN LA COLORACIÓN DE ESPORAS (TECNICA DE MOELLER)
1.- Frotis. Secar
2.- Fijar con alcohol absoluto, escurrir el alcohol y arder el resto.
3.- Lavar. Tratar con ác. Crómico 5 min. Lavar.
4.- Cubrir con fuscina fenicada de Ziehl. Calentar 10 min.
5.- Decolorar con ác. Sulfúrico 5%. Descartar reactivo. Completar con alcohol.
6.- Lavar. Colorear con azul de metileno dil. 1 min.
7.- Lavar. Secar y observar.
ESPORAS: ROJAS OTRAS ESTRUCTURAS: AZULES.
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COLORACIÓN DE ESPORAS
Tinción de Wirtz Conklin
Tinción de Moeller
![Page 33: coloraciones 2012](https://reader033.vdocuments.mx/reader033/viewer/2022050906/5540210c550346786d8b4a0a/html5/thumbnails/33.jpg)
Estructura de un flagelo bacteriano
![Page 34: coloraciones 2012](https://reader033.vdocuments.mx/reader033/viewer/2022050906/5540210c550346786d8b4a0a/html5/thumbnails/34.jpg)
Diferentes disposiciones de flagelos bacterianos
Monotrica Monotrica
Lofotrica Lofotrica
AnfitricaAnfitrica
Peritrica Peritrica
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IMPREGNACIÓN ARGENTICA PARA FLAGELOS
MORDIENTE: ácido tánico
REACTIVO PRECIPITANTE: Ag2O
LAVAR: agua destilada
FLAGELOS SE VEN DE COLOR MARRÓN CLARO
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Impregnación argéntica de Fontana Tribondeau: espiroquetas y espirilos
MORDIENTE: ácido tánico
REACTIVO PRECIPITANTE: Ag2O
LAVAR: agua destilada
ESPIROQUETAS Y ESPIRILOS SE VEN DE COLOR MARRÓN OSCURO SOBRE FONDO PARDO CLARO.