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DETERMINACIÓN DE COMPUESTOS ACTIVOS DE PIPER AURITUM KUNTH POR CROMATOGRAFIA Y ANÁLISIS FTIR. Objetivo General. Identificación de los compuestos activos presentes en el aceite de P. auritum kunth (hierba santa) mediante el análisis de sus grupos funcionales obtenidos por medio de cromatografía y FTIR, dando énfasis en el contenido de la molécula safrol y realizando una comparación con la literatura. Objetivo específicos. Comprobar que existen compuestos activos presentes en la planta por Cromatografía y análisis FTIR. Identificar la composición química del aceite esencial, identificando los grupos funcionales del safrol por Cromatografía y análisis FTIR. Planteamiento del problema. En la actualidad en la industria se ha desarrollado un amplio interés por los principios activos de diversas plantas. En México gran variedad de plantas silvestres contienen compuestos activos de las cuales se conoce poca información. El presente trabajo buscó obtener información de la

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DETERMINACIÓN DE COMPUESTOS ACTIVOS DE PIPER AURITUM KUNTH POR CROMATOGRAFIA Y ANÁLISIS FTIR.

Objetivo General.

Identificación de los compuestos activos presentes en el aceite de P. auritum

kunth (hierba santa) mediante el análisis de sus grupos funcionales obtenidos por

medio de cromatografía y FTIR, dando énfasis en el contenido de la molécula

safrol y realizando una comparación con la literatura.

Objetivo específicos.

Comprobar que existen compuestos activos presentes en la planta por

Cromatografía y análisis FTIR.

Identificar la composición química del aceite esencial, identificando los

grupos funcionales del safrol por Cromatografía y análisis FTIR.

Planteamiento del problema.

En la actualidad en la industria se ha desarrollado un amplio interés por los

principios activos de diversas plantas. En México gran variedad de plantas

silvestres contienen compuestos activos de las cuales se conoce poca

información. El presente trabajo buscó obtener información de la composición

química de la planta “piper auritum kunth” comúnmente conocida como hierba

santa, utilizada en la cocina mexicana, dando énfasis en el compuesto activo

safrol. Al safrol se le atribuyen propiedades antibacterianas, además, tiene una

alta demanda en la industria de insecticidas y plaguicidas en sentido general.

Justificación.

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Piper auritum kunth (hierba santa) es una planta que posee actividad

antiinflamatoria, antibacteriana, antifúngica y antidermatofítica generada por sus

fenilpropanoides, lignanos, sesquiterpenos y monoterpenos como son; el borneol,

alcanfor, cineol, eugenol, safrol y una amplia variedad de componentes

bencénicos.

Si bien uno de los compuestos activos más destacados de esta planta que se

encuentra en un 93% es el safrol. Su importancia también radica en sus

propiedades antibacterianas, además de tener una alta demanda en la industria

de insecticidas y plaguicidas.

El safrol, es un monoterpeno oxigenado, presente como compuesto mayoritario en

especies tales como, sassafras (70-80%) y Ocotea cymbarum (90%). Forma parte

de la lista de sustancias controladas por las autoridades, debido a su uso como

precursor en la síntesis de drogas de uso ilícito como MDMA y por su efecto

carcinogénico y citotóxico. No obstante, es útil en la hemisíntesis de compuestos

de elevada actividad biológica

*Generar información química de piper auritum kunth, para validar la existencia de

componentes activos, que sirva como instrumento para estudios posteriores de

variabilidad e implementación de tecnología para la explotación adecuada de este

recurso.

.

HIPOTESIS

Determinar que existen los principales componentes químicos del safrol en el

aceite esencial de la hierba santa

MARCO TEORICO

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Los extractos vegetales son compuestos hechos a base de plantas de las cuales

se extraen metabolitos secundarios mediante varias técnicas de extracción como

la maceración, las tisanas e infusión, con la ayuda de solventes como agua,

etanol, metanol, etc. La calidad y concentración de las sustancias activas pueden

llegar a variar de una estación a otra o con la localización de la planta, edad y

madurez del material vegetal con el que se prepara el extracto. La sustancia activa

se encuentra a menudo concentrada en una parte especifica de la planta, aunque

frecuentemente se localiza en hojas, flores y semillas (Gutiérrez, 1988)

Las sustancias que se extraen de las plantas, en general, son moléculas orgánicas

que tienen carbonos en su estructura principal, además de hidrógenos, oxígenos y

a veces nitrógenos, entre otros elementos. En algunas plantas estos elementos se

combinan bajo ciertas condiciones, formando sustancias toxicas.

La extracción de las sustancias activas de especies vegetales se hace

comúnmente con agua, pero con la necesidad de extraer compuestos activos de

fase intermedia, de acuerdo a la polaridad de los compuestos, se utilizan otros

solventes de mayor capacidad de arrastre, como lo es el alcohol o etanol, esto

debido a que las plantas tienen distintas polaridades y se considera que el etanol

es un solvente de extracción media. Ortega y Schuster (2000) menciona que la

conveniencia de utilizar compuestos polares en la extracción (como es el caso de

los extractos vegetales) radica en la disminución de efectos colaterales además de

los costos de producción.

Los aceites esenciales son también desechos del metabolismo de la planta,

comprende las esencias vegetales y resinas. Se presentan en emulsiones que

tienden a formar gotas y son los compuestos que dan perfume a los vegetales.

Los monoterpenoides son compuestos de los aceites vegetales (alfa pineno, 3-

careno, gosipol y cucurbitacina), cuyos efectos se han estudiado en la conducta,

fisiología sensorial, y metabolismo de insectos. Los alcaloides poseen un sabor

amargo, son componentes nitrogenados cuya función en la planta no está bien

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determinada. La química vegetal es compleja y se le clasifica según a la

composición del núcleo, órganos o según su especie vegetal.

PARTE EXPERIMENTAL

Material. Se utilizó extracto de las hojas de P. auritum como materia prima, la cual

fue recolectado de arboles ubicados en la zona sur del estado de Morelos. Como reactivos

se empleó lo siguiente: acetato de etilo (AcEt, Merk CAS: 141-78-6), Hexano (reactivos

Karal CAS:1310-73-2), ácido sulfúrico (Sigma-Aldrich CAS: 7664-93-9), cloruro de

cobalto 97% (Sigma-Aldrich CAS: 7646-79-9). Placas de cromatografía con revelador UV,

columna de vidrio de 50 cm, silica gel 60 para columna (0.2-0.5 mm, Merk CAS: 7631-86-

9). Yodo sublimado (Faga-Lab, CAS: 7553-56-2)

Equipo. El instrumental utilizado fue: Parrilla con agitador magnético, modelo

MS400 Magnetic Stirer, marca Science MED. Lampara UV con longitud de onda dual 254

nm/366 nm  Marca Camag. FT–IR marca PerkinElmer modelo Spectrum Two.

Metodología.

Obtención del extracto. Se recolecto la hoja de P. auritum en la región de

Tlaltizapan, Morelos. Se prepararon extractos uno con agua y otro con etanol. El tiempo de

ebullición con agua fue de 2 h y con alcohol de 15 min.

Cromatografía en papel: La separación de compuestos que absorben en la luz

visible del extracto de P. auritum en agua y en etanol se llevó cabo mediante la técnica de

absorción de papel filtro, la cual consiste en mostrar la separación de compuestos

visibles, logrando visualizar sus distintas tipos de clorofilas. Los extractos analizados

fueron posteriormente concentrados.

Cromatografía de capa fina: Los dos extractos de P. auritum en etanol y agua se

concentraron con él rota vapor, posteriormente se les agregó acetato de etilo esperando una

separación de fases, y se lavó con agua destilada, obteniendo 6 muestras A, B, C, D, E y F,

(ver figura 2), las cuales fueron colocadas sobre una placa de cromatografía con indicador

con diferentes sistemas de elución, Acetato de etilo 100%, 70:30, 10:90 y 50:50 de Acetato

de Etilo/Hexano.

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Figura 2. Muestras obtenidas en los lavados.

Cromatografía en columna: una vez identificados la cantidad de componentes

presentes en cada una de las muestras A, B, C, D, E y F, así como el sistema adecuado para

la elución, se escogió la muestra B que contenía mayor número de componentes y se colocó

dentro de una columna cromatográfica previamente empaquetada. La muestra se dejó eluir

en un sistema de acetato de etilo – hexano 50:50, recolectando las fracciones obtenidas. A

estas fracciones se les volvió a tomar placa para identificar las fracciones idénticas.

Espectroscopia Infrarroja por Transformadas de Fourier (FTIR): las fracciones

idénticas fueron concentradas y analizadas por espectroscopia infrarroja por Transformada

de Fourier.

RESULTADOS

Cromatografía en papel: No se logró observar la separación de las clorofilas en el

extracto que estaba en agua, en cambio el extracto en etanol si se observaron (ver figura 3).

Figura 3. Cromatografía en papel, del extracto en etanol.

A B C D E F

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Cromatografía de capa fina:

Para la preparación de las muestras el proceso se realizó cortando placas de silica gel

de 5x7 cm. Una vez que se llevo a cabo la elución se revelaron con la lámpara UV, y

posteriormente en yodo sublimado, encerrando los componentes que se lograran observar,

por último se aplico solución reveladora de ácido sulfúrico, cloruro de cobalto y agua,

calentando la placa observando los colores de los componentes que están presentes en cada

una de las muestras.

En la tabla 1 se observan las placas que contienen los resultados para la selección de

muestras con las que se lograron trabajar para el análisis de componentes, el sistema de

elución 50% acetato de etilo – 50% hexano fue la seleccionada para trabajar

posteriormente.

Tabla 1. Factores de retención para las muestras en 4 sistemas de elución diferentes.

Sistema de elución Placa Factor de retención

70% acetato de etilo - 30% hexano

A: 0.94 cmB: 0.978 cmC: 0.94 cm

100% acetato de etilo

B: 0.923C:0.076D:0.184

10% acetato de etilo - 90% hexano

B: 0.225cm

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50% acetato de etilo - 50% hexano

B: 0.923

Cromatografía en columna: La muestra B se colocó dentro de una columna

cromatográfica previamente empaquetada con sílica gel y como fase móvil acetato de etilo-

hexano 50:50. Se dejó eluir la muestra recolectando un total de 26 fracciones. A estas

fracciones se les volvió a tomar placa para identificar las fracciones idénticas. Las cuales se

juntaron y se concentraron etiquetándolas de la siguiente manera F2-3, F15-20 y F21-23

(ver figura 4).

Figura 4. Cromatografía en columna de la muestra B.

Espectroscopia Infrarroja por Transformadas de Fourier (FTIR): Las fracciones

obtenidas se analizaron por FTIR, así como las muestras obtenidas que no se separaron en

cromatografía en columna, obteniendo como resultado los siguientes espectros (ver figura

3):

a) b)

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Figura 3. FTIR de Muestras a) A, b) C, c) D y d) E, sin separación por columna.

En la figura 3 para todos los casos se observaron las señales correspondientes a la región alifática de estiramiento y flexión de los 3000-2800 cm-1 y 1450-1200 cm-1, así como en la región de los 3500 – 3300 cm-1 el estiramiento del hidrógeno enlazado al oxígeno para las 4 muestras. Para la figura 3a se observa en los 1700 cm -1 la señal correspondiente a C=O, en 1600 cm-1 C=C y en 1000 cm-1 C-O. Para la figura 3b) se observa en 3700 cm-1 la vibración correspondiente al H-N, en 1650 cm-1 el estiramiento de los hidrógenos enlazados al nitrógeno y en la región de los 1100-900 cm -1 C-O. Para la figura 3c), se observa en 1600 cm-1 una señal que puede corresponder a un C=C o hidrogeno enlazado a nitrógeno. En la región de 1100–900 cm-1 la señal correspondiente a C-O. Y para la figura 3d) se observa la presencia de C=C en los 1600 cm-1.

En la figura 4, se observa la primer fracción (F2-3) de la muestra B separada por cromatografía de columna. En los 3500 cm-1 se observa la señal correspondiente del hidrógeno enlazado a al oxígeno, de los 3000-2800 cm-1 se observa el estiramiento asimétrico y simétrico del CH3 y CH2, en 1750 cm-1 se observa el estiramiento de C=O, el cual puede corresponder al grupo carbonilo del acetato de etilo con el cual fue separada esta fracción.

c) d)

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Figura 4. FTIR de fracción F2-3

En la figura 5, se observa el FTIR de la segunda fracción F15-20, en la cual podemos observar en los 3700 cm-1 una señal que puede corresponder a un carbono – carbono triple enlace o un nitrógeno-carbono triple enlace. En los 3400 cm -1 la señal correspondiente para hidrógeno enlazado al oxígeno. En la región de 3000–2800 cm-1 se observa el estiramiento asimétrico y simétrico del CH3 y CH2. En 1750 cm-1 el estiramiento C=O. de los 1500 -1200 cm-1 las vibraciones correspondientes a la flexión de balanceo del CH3, tijereteo del CH2 y sombrilla del CH3. En la región de 1100–900 cm-1 C-O.

Figura 5. FTIR de fracción F15-20

En la figura 6, se observaron las señales correspondientes a la región alifática de estiramiento y flexión de los 3000-2800 cm-1 y 1450-1200 cm-1. En los 1750 cm-1 se observó la señal correspondiente a C=O y en 1000 cm-1 C-O.

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Figura 6. FTIR de fracción F21-23

CONCLUSIONES

La muestra B debido a su mayor cantidad de componentes revelados por cromatografía

en capa fina fue la seleccionada para su separación en cromatografía en columna. De

acuerdo a los resultados de espectros de las figuras 5 y 6, en estas fracciones se pudiera

encontrar la molecula llamada safrol la cual es reportada que existe en la planta Piper. Las

técnicas cromatografías demuestran que son viables para demostrar que se pueden obtener

buenos resultados. Por medio de estudios realizados previamente se pudo identificar y

comparar ciertos compuestos de P. auritum kunth, la cual en un futuro puede servir para

realizar un estudio más completo acerca de las propiedades y beneficios de esta. Entre los

compuestos a los que se le atribuyen propiedades antibacterianas, componente principal al

safrol. El safrol, además, tiene una alta demanda en la industria de insecticidas y

plaguicidas en sentido general.

Hasta este momento, las variables estudiadas y los resultados obtenidos aportan

información valiosa para continuar con este tema de investigación, se sugiere continuar con

análisis de Resonancia Magnética Nuclear de H1 (RMN) y espectrometría de masas (MS),

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para corroborar las moléculas ya encontradas.

BIBLIOGRAFIA

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