untuk memenuhi sebagian persyaratan sebagai ahli madya analis...

i

IDENTIFIKASI TELUR CACING Hookworm, Toxocara vitulorum DAN Taenia saginata PADA FESES PETERNAK SAPI DAN

FESES SAPI DI PETERNAKAN SAPI DUSUN KARANGNONGKO, BOYOLALI

KARYA TULIS ILMIAH

Untuk memenuhi sebagian persyaratan sebagai

Ahli Madya Analis Kesehatan

Oleh :

Frederica Uliviani Sihombing

33152907J

PROGRAM STUDI D-III ANALIS KESEHATAN

FAKULTAS ILMU KESEHATAN

UNIVERSITAS SETIA BUDI

SURAKARTA

2018

LEMBAR PENGESAHAN

iv

PERSEMBAHAN

Karya Tulis Ilmiah ini saya persembahkan untuk :

1. Tuhan Yesus Kristus atas berkat dan kasih-Nya yang telah memberikan

kepada saya kekuatan dan kelancaran dalam penyelesaian Karya Tulis

Ilmiah

2. Mama dan Bapa yang senantiasa memberikan motivasi berupa semangat

dan doa untuk anaknya ini

3. Kak Zylen, Adik-adikku Castro dan Gerva yang memberikan dukungan

supaya saya cepat wisuda

4. Ryan Rahadi yang telah menemani saya dalam suka dan duka,

mendukung dalam keadaan buruk saya dan membantu saya dari awal

pemilihan judul Karya Tulis Ilmiah ini sampai selesai

5. Keluarga besar yang memberikan arahan dan doa

6. Endah Restiana yang senantiasa memberikan masukan dan membantu

penelitain saya

7. Noxious (Eka, Cepe, Bokir, Gita) yang selalu memberikan semangat dan

untuk Eka terima kasih telah menemani saya ke Perpus UI sampai malam

walaupun besok ada mat-kul

8. Kesya dan Destia yang telah memberikan doa dan semangat

9. Iton dan Cindy yang selalu datang kerumah setiap saya pulang ke Jakarta

dan memberikan masukan-masukan yang kadang tidak membantu

10. Teman-temanku dari Teori 3 dan Praktek JD yang selama 3 tahun ini

berjuang bersama untuk mendapatkan gelar Amd. AK bersama

v

KATA PENGANTAR

Puji Syukur penulis panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Kuasa atas

rahmat dan karunia-Nya penulis dapat menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah yang

berjudul “Identifikasi Telur Cacing Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia

saginata Pada Feses Peternak Sapi dan Feses Sapi di Peternakan Sapi Dusun

Karangnongko, Boyolali”. Karya Tulis Ilmiah ini disusun guna menyelesaikan

program pendidikan Diploma III Analis Kesehatan di Universitas Setia Budi

Surakarta.

Karya Tulis Ilmiah ini disusun berdasarkan tinjauan pustaka dan

pemeriksaan di laboratorium yang sangat berperan dalam menunjang penulisan

Karya Tulis Ilmiah. Penulis sadar bahwa penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini tidak

terlepas dari bimbingan, semangat, serta dukungan dari banyak pihak, baik

bersifat formil maupun materil. Maka pada kesempatan kali ini penulis

mengucapkan terima kasih kepada:

1. Dr. Ir. Djono Tarigan, M.BA selaku Rektor Universitas Setia Budi Surakarta

2. Prof. dr. Marsetyawan HNE Soesatyo, M.Sc., PH. D selaku Dekan Fakultas

Ilmu Kesehatan Universitas Setia Budi Surakarta

3. Dra. Nur Hidayati, M.Pd selaku Kaprodi Diploma III Analis Kesehatan

Universitas Setia Budi Surakarta yang senantiasa memberikan

pengarahan tentang Karya Tulis Ilmiah

4. Tri Mulyowati, SKM., M.Sc selaku pembimbing yang telah selalu sabar

dalam membimbing dan memberikan saran yang bersifat membangun

dalam penyusunan Karya Tulis Ilmiah

vi

5. Para Laboran di Laboratorium 8 yang telah bersedia membantu dalam

penelitian yang dilakukan penulis

6. Dosen dan seluruh staff di Program Studi Diploma III Analis Kesehatan

Universitas Setia Budi Surakarta yang telah membantu penulis

menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah ini

7. Kedua orang tua (S. Sihombing dan S. Silalahi) yang selalu memberi

motivasi dan nasihat mendidik guna menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah

8. Teman-teman yang selalu memberikan semangat

9. Semua pihak yang terlibat dalam penyelesaian Karya Tulis Ilmiah ini, yang

tidak dapat penulis sebutkan satu per satu.

Dalam penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini penulis telah menyusun sebaik-

baiknya, tetapi penulis menyadari bahwa masih banyak kekurangan dalam

penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini, untuk itu penulis mengharapkan kritik dan saran

yang bersifat membangun. Penulis berharap Karya Tulis Ilmiah ini dapat

bermanfaat bagi pembaca, serta memberi pengetahuan bagi perkembangan ilmu

pengetahuan dan penelitian-penelitian selanjutnya.

Surakarta, Mei 2018

Penulis

vii

DAFTAR ISI

LEMBAR PERSETUJUAN ................................................................................... ii

LEMBAR PENGESAHAN .................................................................................... iii

PERSEMBAHAN .................................................................................................iv

KATA PENGANTAR ............................................................................................ v

DAFTAR ISI ........................................................................................................ vii

DAFTAR GAMBAR ..............................................................................................ix

DAFTAR LAMPIRAN ........................................................................................... x

INTISARI .............................................................................................................xi

BAB I PENDAHULUAN........................................................................................ 1

1.1 Latar Belakang ....................................................................................... 1

1.2 Rumusan Masalah ................................................................................. 3

1.3 Tujuan Penelitian ................................................................................... 4

1.4 Manfaat Penelitian ................................................................................. 4

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ............................................................................... 6

2.1 Nematoda Intestinal ............................................................................... 6

2.2 Hookworm .............................................................................................. 6 2.2.1 Klasifikasi ...................................................................................... 7 2.2.2 Distribusi Geografis ....................................................................... 7 2.2.3 Morfologi ....................................................................................... 8 2.2.4 Siklus Hidup .................................................................................. 9 2.2.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 10 2.2.6 Gejala Klinis ................................................................................ 10 2.2.7 Cara Infeksi ................................................................................. 11 2.2.8 Diagnosis .................................................................................... 11 2.2.9 Pengobatan ................................................................................. 12 2.2.10 Pencegahan .............................................................................. 13

2.3 Toxocara vitulorum .............................................................................. 13 2.3.1 Klasifikasi .................................................................................... 13 2.3.2 Distribusi Geografis ..................................................................... 14 2.3.3 Morfologi ..................................................................................... 14 2.3.4 Siklus Hidup ................................................................................ 14 2.3.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 15 2.3.6 Gejala Klinis ................................................................................ 16 2.3.7 Diagnosis .................................................................................... 16 2.3.8 Pengobatan ................................................................................. 16

2.4 Cestoda ............................................................................................... 17

2.5 Taenia saginata ................................................................................... 17 2.5.1 Klasifikasi .................................................................................... 18

viii

2.5.2 Distribusi Geografis ..................................................................... 18 2.5.3 Morfologi ..................................................................................... 18 2.5.4 Siklus Hidup ................................................................................ 19 2.5.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 20 2.5.6 Gejala Klinis ................................................................................ 20 2.5.7 Cara Infeksi ................................................................................. 21 2.5.8 Diagnosis .................................................................................... 21 2.5.9 Pengobatan ................................................................................. 21 2.5.10 Pencegahan .............................................................................. 22

2.6 Ternak Sapi ......................................................................................... 22

BAB III METODE PENELITIAN .......................................................................... 25

3.1 Tempat dan Waktu Penelitian .............................................................. 25

3.2 Alat dan Bahan Penelitian .................................................................... 25

3.3 Teknik Penelitian .................................................................................. 25

3.4 Populasi dan Sampel ........................................................................... 25 3.4.1 Populasi ...................................................................................... 25 3.4.2 Sampel ........................................................................................ 26

3.5 Metode Penelitian ................................................................................ 26

3.6 Prosedur Kerja ..................................................................................... 26 3.6.1 Pemeriksaan Makroskopis .......................................................... 26 3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopis............................................................ 27 3.6.3 Interpretasi Hasil ......................................................................... 29

3.7 Analisis Data ........................................................................................ 30 3.7.1 Prosentase Infeksi ....................................................................... 30

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN .................................................................. 31

4.1 Hasil Penelitian .................................................................................... 31

4.2 Perhitungan ......................................................................................... 32 4.2.1 Prosentase Peternak sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi . 32 4.2.2 Prosentase Feses Sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi ...... 33

4.3 Pembahasan ........................................................................................ 34

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN................................................................... 38

5.1 Kesimpulan .......................................................................................... 38

5.2 Saran ................................................................................................... 38 5.2.1 Bagi Peternak .............................................................................. 38 5.2.2 Bagi Masyarakat ......................................................................... 39 5.2.3 Bagi Mahasiswa .......................................................................... 39

DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... P-1

LAMPIRAN ....................................................................................................... L-1

ix

DAFTAR GAMBAR

Gambar 1. Telur Hookworm..................................................................................1

Gambar 2. Siklus Hidup Hookworm.....................................................................10

Gambar 3. Telur Toxocara vitulorum...................................................................14

Gambar 4. Telur Taenia saginata........................................................................19

Gambar 5. Siklus Hidup Taenia saginata............................................................19

x

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran 1. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Peternak Sapi.........L-1

Lampiran 2. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Sapi........................L-2

Lampiran 3. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Peternak Sapi..........L-5

Lampiran 4. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Sapi.........................L-5

Lampiran 5. Peternakan Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali......................L-7

Lampiran 6. Preparat Sampel............................................................................L-8

Lampiran 7. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses Sapi..................................L-8

xi

INTISARI

Sihombing, Frederica, U. 2018. Identifikasi Telur Cacing Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia saginata Pada Feses Peternak Sapi dan Feses Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali. “Karya Tulis Ilmiah”, D-III Analis Kesehatan, Fakultas Ilmu Kesehatan, Universitas Setia Budi Surakarta.

Sapi bermanfaat untuk menghasilkan susu. Kondisi sapi penghasil susu harus sehat dan tidak terinfeksi cacing parasit. Infeksi cacing parasit yang dapat menyerang sapi dari kelas Nematoda dan Cestoda. Kerugian bila hewan ternak terinfeksi cacing usus parasit yaitu pertumbuhan sapi muda terhambat, berat badan sapi menurun, penurunan kualitas daging, penurunan produksi susu pada sapi perah, dan beresiko jika menularkan penyakit pada manusia.

Tujuan penelitian adalah untuk mengetahui adanya telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata pada feses sapi dan peternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali. Pengambilan sampel menggunakan teknik random sampling. Penelitian dilakukan di laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi Surakarta metode langsung yaitu menggunakan lugol 2% dan diamati secara mikroskopis.

Hasil penelitian prosentase positif pada feses sapi adalah Hookworm sebesar 8%, Toxocara vitulorum 4% dan Taenia saginata 0%, sedangkan pada feses peternak tidak ditemukan infeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.

Kata kunci: Telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata, Sapi.

1

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Sapi merupakan salah satu komoditi dalam bidang peternakan yang

memiliki produk aktif berupa susu. Tingginya kesadaran masyarakat akan

pentingnya protein yang terkandung didalam susu menjadikan susu sebagai

produk hasil peternakan yang sangat diminati. Menurut data Kementerian

Pertanian Republik Indonesia (2017), jumlah populasi sapi di Indonesia saat

ini mecapai 14,6 juta ekor atau masih memenuhi sekitar 67% kebutuhan sapi

di Indonesia. Bedasarkan data Badan Pusat Statistik Nasional atau BPSN

(2016), menyatakan bahwa dari 34 provinsi di Indonesia terdapat sebaran

populasi ternak seperti sapi potong dan sapi perah, populasi terbanyak berada

di Provinsi Jawa Timur.

Ternak sapi memiliki manfaat yang beragam, dimana seekor atau

sekelompok sapi dapat memenuhi kebutuhan protein hewani, tenaga sapi

dapat dimanfaatkan untuk menarik gerobak, penghasil susu, dan kotoran sapi

dapat dimanfaatkan sebagai pupuk (Sudarmono dan Sugeng, 2008). Jenis

sapi beraneka ragam yaitu sapi bali, sapi brahman, sapi friesian holstein, sapi

aberden angus, sapi potong hasil persilangan, sapi simmental, sapi limousin

(Harianto dan Rahmat, 2017).

Sistem usaha peternakan di Indonesia ada beberapa macam

diantaranya mempunyai tujuan untuk produksi sapi potong, pembibitan, dan

sapi perah. Pemeliharan sapi dapat dilakukan secara tradisional dan modern.

Peternakan tradisional mengedepankan pola pemeliharaan induk-anak untuk

2

menghasilkan bakalan/ pedet (calf cow operation), sedangkan pada

peternakan modern biasanya menerapkan konsep Low External Input

Sustainable Agriculture. Peternakan yang dipelihara secara tradisional

maupun modern tidak dapat lepas dari berbagai hambatan termasuk penyakit

akibat cacing parasit berupa nematoda dan cestoda. Infeksi oleh parasit usus

selain mengakibatkan gangguan kesehatan pada manusia juga dapat

merugikan bagi ekonomi peternakan. Kerugian bila hewan ternak terinfeksi

cacing usus parasit yaitu pertumbuhan sapi muda terhambat, berat badan sapi

menurun, penurunan kualitas daging yang dihasilkan oleh hewan ternak,

penurunan produksi susu pada sapi perah, dan beresiko jika menularkan

penyakit pada manusia. Menurut hasil penelitian Siregar (2013), menyatakan

bahwa kasus kecacingan menyebabkan keterlambatan pertumbuhan berat

per hari sebanyak 15% pada sapi perah dan 40% untuk sapi potong.

Menurut data World Health Organization (WHO) tahun 2016, terdapat

lebih dari 1,5 miliyar orang atau sekitar 24% penduduk di dunia terinfeksi Soil

Transmitted Helminth dan yang terinfeksi taeniasis sebanyak 2,8 miliyar

orang. Infeksi yang disebabkan oleh cacing usus masih menjadi sumber

masalah dalam kesehatan masyarakat di Indonesia karena prevalensi masih

tinggi yaitu ± 45-65%, bahkan di wilayah tertentu dengan kondisi sanitasi

lingkungan yang buruk, kelembaban dan panas yang tinggi prevalensi infeksi

dapat mencapai 80% (Sumolang dkk, 2014).

Penelitian yang dilakukan oleh Erwin et al (2010) pada 96 sampel

feses sapi, ditemukan telur cacing dari dua kelompok cacing parasit yaitu

kelas trematoda dan kelas nematoda. Pada jenis sapi Bali di organ hati dan

3

diafragma pernah ditemukan telur cacing jenis Taenia saginata (Dharmawan

et al, 2009).

Kabupaten Boyolali terkenal sebagai tempat penghasil susu terbesar

di Jawa Tengah. Susu yang dihasilkan harus dari sapi dengan kondisi sehat,

tidak stress dan tidak terinfeksi cacing parasit. Parasit yang dapat meyerang

sapi antara lain kelas Nematoda, Cestoda dan Trematoda. Jenis Nematoda

ada berbagai macam spesies antara lain Hookworm atau cacing tambang dan

Toxocara vitulorum, sedangkan dari kelas Cestoda adalah spesies Taenia

saginata (Safar, 2009).

Dusun Karangnongko merupakan salah satu daerah di Boyolali yang

menghasilkan produk susu. Kondisi kandang sapi yang berdekatan dengan

rumah peternak sapi serta sanitasi peternakan yang masih buruk menjadi

pertimbangan untuk melakukan penelitian sebagai upaya pencegahan infeksi

penyakit akibat cacing sebelum terjadi infeksi. Cara untuk mengetahui adanya

telur cacing adalah dengan identifikasi telur cacing dalam feses, hal ini

dilakukan untuk mendeteksi dini adanya infeksi cacing parasit terutama

parasit pencernaan dengan cara yang cepat, mudah dan efektif (Nezar, 2014).

1.2 Rumusan masalah

a. Apakah ternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali ada yang terinfeksi

telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata?

b. Apakah peternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali ada yang

terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia

saginata?

4

c. Berapa prosentase sapi di peternakan sapi Dusun Karangnongko,

Boyolali yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia

saginata?

d. Berapa prosentase peternak sapi di peternakan sapi Dusun

Karangnongko yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan

Taenia saginata?

1.3 Tujuan penelitian

a. Untuk mengetahui apakah ada ternak sapi di Dusun Karangnongko,

Boyolali yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan

Taenia saginata

b. Untuk mengetahui apakah ada peternak sapi di Dusun Karangnongko,

Boyolali yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan

Taenia saginata

c. Untuk mengetahui prosentase sapi di Dusun Karangnongko yang

terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.

d. Untuk mengetahui prosentase peternak sapi di Dusun Karangnongko

yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.

1.4 Manfaat penelitian

a. Bagi Mahasiswa

Memberikan pengetahuan tentang prosentase infeksi cacing

Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata terhadap sapi dan

peternak sapi.

b. Bagi Masyarakat

5

Memberikan pemahaman kepada masyarakat khususnya peternak

sapi agar dapat melakukan tindakan pencegahan terhadap bahaya infeksi

cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata

c. Bagi Institusi

Sebagai referensi penelitian selanjutnya, sumber bacaan dan

sumber informasi bagi mahasiswa.

6

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Nematoda Intestinal

Nematoda mempunyai jumlah spesies terbanyak di antara cacing-

cacing yang hidup sebagai parasit. Cacing tersebut berbeda-beda dalam

habitat, daur hidup dan hubungan hospes parasit (host parasite relationship)

(Staf Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).

Nematoda intestinal adalah nematoda yang berhabitat di saluran

pencernaan manusia dan hewan. Sebagian besar dari nematoda ini adalah

hospes ini adalah penyebab masalah kesehatan masyarakat di Indonesia.

Diantara nematoda intestinal ini terdapat beberapa spesies yang tergolong

“Soil Transmitted Helminth”, yaitu nematoda yang dalam siklus hidupnya

untuk mencapai stadium infektif, memerlukan tanah dengan kondisi tanah

yang lembab dengan suhu optimum 25-30ºC. Nematoda golongan Soil

Transmitted Helminth adalah Hookworm dan Toxocara vitulorum (Safar,

2009).

2.2 Hookworm

Cacing tambang (Hookworm) merupakan Soil Transmitted Helminth

yang penularan dan siklus hidupnya melalui media tanah. Penularan cacing

tambang pada manusia dapat terjadi karena menelan telur atau larva cacing

ke dalam tubuh melalui pori-pori kulit. Infeksi cacing Hookworm tersebar luas

di Indonesia terutama di daerah beriklim tropis. Infeksi cacing tambang masih

menjadi masalah kesehatan khususnya bagi anak-anak karena dapat

7

menyebabkan gangguan pertumbuhan dan menyebabkan penurunan

kemampuan kognitif (Hariani, 2015).

Cacing tambang yang dapat menginfeksi manusia adalah

Ancylostoma duodenale dan Necator americanus. Sedangkan cacing

tambang yang menginfeksi hewan adalah Ancylostoma caninum,

Ancylostoma braziliense, dan Ancylostoma ceylanicum, ketiga jenis parasit ini

menginfeksi hewan kucing dan anjing (Safar, 2009).

2.2.1 Klasifikasi

Kingdom : Animalia

Filum : Nematoda

Kelas : Secernentea

Ordo : Strongiloidae

Familia : Ancylostomatidae

Genus : Necator / Ancylostoma

Species : Ancylostoma duodenale

Necator americanus

Ancylostoma brazilliense

Ancylostoma ceylanicum

Ancylostoma caninum (Wikipedia, 2013)

2.2.2 Distribusi Geografis

Penyebaran cacing Hookworm di seluruh daerah dengan

keadaan yang sesuai, misalnya di daerah pertambangan dan

perkebunan. Prevalensi di Indonesia masih tinggi, terutama di daerah

pedesaan sekitar 40% (Staf Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).

8

2.2.3 Morfologi

Telur cacing Hookworm memiliki ukuran ± 40-60µ, berbentuk

lonjong dengan dinding tipis dan jernih. Ovum dari telur yang baru

dikeluarkan tidak memiliki segmen. Telur Hookworm hidup di tanah

dengan suhu optimum 23ºC - 33ºC, ovum akan berkembang menjadi

2,4, dan 8 blastomer, pada suhu 0ºC telur Hookworm dapat hidup

dalam waktu 7 hari dan dapat bertahan hidup beberapa hari pada suhu

45ºC, sedangkan pada suhu optimum dalam waktu 24-48 jam akan

menetas dan keluar larva rhabditiform yang makan dari bahan sisa

organik yang ada disekitarnya. Larva akan menjadi lebih panjang dan

kurus dengan mulut tertutup dan runcing dalam waktu 3-5 hari, larva

ini disebut filariform yang infektif dan dapat hidup ditanah dengan suhu

optimum dalam waktu 2 minggu. Larva ini akan mati bila kemarau,

terkena panas langsung, atau banjir. Larva filariform dapat menembus

kulit manusia menuju kapiler darah, lalu masuk ke jantung kanan dan

masuk ke paru-paru. Larva yang berada di dalam paru-paru akan

masuk ke dalam bronkus, lalu masuk ke trakea, kemudian ke dalam

laring dan berakhir di dalam usus halus. Larva di dalam usus halus

akan berubah menjadi dewasa (Safar, 2010).

Gambar 1. Telur Hookworm (CDC, 2017a)

9

2.2.4 Siklus Hidup

Daur hidup cacing tambang hanya membutuhkan 1 hospes

definitif yaitu manusia. Hospes definitif adalah tempat parasit hidup

dan berkembang serta bereproduksi secara seksual. Tidak ada hewan

yang bertindak sebagai hewan reservoir, yaitu hewan yang

mengandung parasit dan merupakan sumber infeksi bagi manusia.

Telur cacing tambang yang sudah keluar dari usus penderita akan

jatuh ditanah dalam waktu 2 hari, akan tumbuh menjadi larva

rhabditiform yang tidak infektif karena larva ini dapat hidup bebas di

tanah. Larva rhabditiform akan berganti kulit dalam waktu 1 minggu

dan akan berkembang mejadi larva filariform yang infektif yang tidak

dapat mencari makan dengan bebas di tanah. Larva filariform harus

mencari hospes definitif untuk dapat bertahan hidup, hospes definitif

yaitu manusia. Larva filariform akan menginfeksi kulit manusia,

menembus pembuluh darah dan limfe, selanjutnya masuk ke dalam

darah dan mengikuti aliran darah menuju jantung dan ke paru-paru

(Soedarto, 2016).

Larva yang berada di dalam paru-paru akan menembus dinding

pembuluh darah masuk ke dinding alveolus, kemudian rongga

alveolus, dan naik ke trakea melalui bronchiolus dan bronkus menuju

ke faring, kemudian dari faring akan masuk ke esofagus. Larva pada

esofagus akan menuju ke usus halus dan akan tumbuh menjadi cacing

dewasa (Kementerian Kesehatan RI, 2012).

10

Gambar 2. Siklus Hidup Hookworm (CDC, 2017b)

2.2.5 Hospes dan Habitat

Hospes dari cacing tambang adalah manusia dan habitat

cacing ini di usus halus manusia. Cacing tambang juga dapat hidup

ditanah pada suhu 23ºC - 33ºC (suhu optimum) selama 24-48 jam.

Pada suhu 0ºC telur Hookworm dapat hidup dalam waktu 7 hari dan

dapat bertahan hidup beberapa hari pada suhu 45ºC (Safar, 2010).

2.2.6 Gejala Klinik

Gejala klinis yang dapat ditimbulkan oleh infeksi cacing

tambang adalah sebagai berikut:

a. Stadium larva

Bila banyak larva filariform yang menembus kulit, maka

dapat terjadi perubahan kulit yang disebut ground itch. Perubahan

pada paru biasanya ringan.

b. Stadium dewasa

Gejala tergantung pada spesies dan jumlah cacing dan

keadaan gizi penderita (Fe dan Protein).

11

Cacing tambang dapat menyebabkan anemia. Necator

americanus menyebabkan kehilangan darah sebanyak 0,05 – 0,1 cc

sehari, sedangkan Ancylostoma duodenale 0,08 – 0,34 cc. Biasanya

terjadi anemia mikrositik hipokrom. Selain anemia, infeksi cacing

tambang juga dapat terjadi eosinofilia. Gejala pada usus dimulai ketika

larva mencapai usus kecil. Cacing tambang akan menempel pada

mukosa usus dan dapat menyebabkan perdarahan. Penderita dengan

infeksi ringan akan mengalami sedikit atau tanpa gejala, tetapi penderita

yang terinfeksi berat sering merasakan tidak nyaman pada epigastrium

dan akan mereda bila diberi pengobatan obat cacing. Anak-anak yang

terinfeksi berat sering mengalami pembesaran perut. Infeksi berat dapat

ditandai dengan kadar hemoglobin darah bisa turun sampai 1 g/100ml.

Infeksi besar dapat menyebabkan kelelahan, koma, dan kematian

terutama pada bayi. Infeksi berat yang bersifat kronis dapat

menyebabkan kurang gizi, hypoproteinemia, dan anemia yang

mengakibatkan keterlambatan pertumbuhan (Wijaya, 2015).

2.2.7 Cara infeksi

Infeksi cacing tambang dapat terjadi bila larva filariform

menembus kulit. Infeksi juga dapat terjadi bila secara tidak sengaja

menelan larva filariform maupun bentuk telur cacing Hookworm (Staf

Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).

2.2.8 Diagnosis

Kelainan patologis yang ditimbulkan oleh telur, larva, maupun

cacing tambang dewasa menyebabkan berbagai keluhan dan gejala klinis

12

yang tidak khas. Keluhan penderita dan gambaran klinis infeksi cacing

tambang dapat berupa:

a. Anemia mikrositik hipokrom, leukopenia dengan limfositosis relatif

dengan jumlah leukosit kurang dari 4.000/ ml, dan gambaran umum

kekurangan darah (pucat, perut membesar yang tidak wajar, rambut

kering dan mudah rontok)

b. Ground itch (gatal kulit ditempat masuknya larva filariform)

c. Gejala bronchitis akibat adanya larva di dalam paru yang

menimbulkan batuk-batuk yang kadang disertai darah.

Pada pemeriksaan darah, penderita infeksi cacing tambang

menunjukkan gambaran: hemoglobin yang menurun sampai kurang dari

11,5 g/dl pada penderita perempuan dan kurang dari 13,5 pada penderita

laki-laki. Gambaran pemeriksaan darah juga menunjukkan MCHC (Mean

Corpuscular Hemoglobin Concentration) kurang dari 31-36 g/dl. Sediaan

apus darah tepi menunjukkan jumlah eosinofil yang meningkat

(eosinofilia) yang dapat mencapai 30% dan anisositosis atau poikilositosis

(Soedarto, 2016).

2.2.9 Pengobatan

Obat Anthelminthic (obat yang membersihkan tubuh dari cacing

parasit), seperti Albendazol dan Mebendazol dengan dosis 20 mg/KgBB

diminum sebagai dosis tunggal selama 2 hari berturut-turut atau 10

mg/KgBB diminum sebagai dosis tunggal selama 3 hari berturut-turut.

Suplemen zat besi juga diperlukan jika penderita menderita anemia

(Badan POM RI, 2015).

13

2.2.10 Pencegahan

Pencegahan infeksi cacing tambang dapat dilakukan dengan

tidak membuang tinja di sembarang tempat, membiasakan diri

menggunakan alas kaki bila keluar rumah, dan tidak menumpuk sayuran

dekat dengan tinja manusia (Safar, 2010).

2.3 Toxocara vitulorum

Toxocara dapat menyebabkan penyakit yang biasa dikenal dengan

istilah toxocariasis. Toxocariasis pada hewan biasanya disebabkan oleh

infeksi cacing Toxocara cati pada kucing, Toxocara canis pada anjing, dan

Toxocara vitulorum pada sapi atau kerbau. Penyakit parasit yang menyerang

sapi dan bersifat zoonosis salah satunya disebabkan oleh infeksi cacing

Toxocara vitulorum. Cacing ini menyerang sapi di semua umur, dapat menular

melalui kontak makanan maupun melalui plasenta induk yang menulari fetus

sapi dalam kandungan (Agustina dkk, 2013).

2.3.1 Klasifikasi

Kingdom : Animalia

Filum : Nemathelminthes

Kelas : Nematoda

Sub Kelas : Secernentea

Famili : Ascarididae

Genus : Toxocara

Spesies : Toxocara vitulorum (Kania, 2012)

14


Toxocara tersebar secara kosmopolit, dan juga ditemukan

dibeberapa daerah di Indonesia. Tahun 2008 prevalensi cacing

Toxocara vitulorum pada pedet di kabupaten Pasuruan cukup tinggi,

yaitu 21,33% (Susanto, 2008).

2.3.3 Morfologi

Telur cacing Toxocara vitulorum memiliki warna kekuning-

kuningan. Bentuknya agak bulat dan memiliki dinding yang tebal.

Dinding tersebut menjadi pertahanan telur cacing agar dapat

bertahan hidup lama pada lingkungan sampai termakan oleh inang

(Yudha, 2014).

Gambar 3. Telur Toxocara vitulorum (CDC, 2017c)

2.3.4 Siklus Hidup

Toxocara vitulorum banyak ditemukan pada kandang-

kandang hewan ternak yang terdapat banyak kotoran hewan ternak.

Daur hidup Toxocara vitulorum dapat melalui kolostrum. Seekor

cacing betina mampu bertelur sebanyak 200.000 telur/ hari. Telur

dibebaskan bersama tinja dan sangat tahan terhadap udara panas,

dingin, dan kekeringan (Duri, 2015).

15

Toxocara vitulorum memiliki siklus hidup langsung (Direct Life

Circle), artinya tidak memiliki hospes perantara. Telur yang

dikeluarkan oleh cacing betina akan berkembang biak dalam waktu

7-15 hari dengan suhu 27ºC - 30ºC (suhu optimum). Telur ini infektif

dan dapat bertahan hidup selama berbulan-bulan bahkan bertahun-

tahun, namun sangat peka terhadap sinar matahari. Ternak akan

terinfeksi setelah menelan embryonated eggs. Larva akan keluar dari

telur di dalam lambung, dan akan penetrasi ke dalam dinding

lambung dan migrasi ke dalam pembuluh darah menuju liver, paru,

trakea, mulut, esophagus, dan kembali ke usus halus. Usus halus

adalah tempat berkembang biak dan produksi telur. Larva bermigrasi

ke jaringan lain, berupa kelenjar mamae dan plasenta, cacing ini akan

berpindah ke anak sapi atau ke fetus. Lama prepatent periode atau

pertama infeksi sampai menghasilkan telur adalah 3-4 minggu di

tubuh anak sapi. Lamanya migrasi larva pada sapi dewasa

tergantung pada lama periode dorman di dalam jaringan (Polyoga,

2015).


Toxocara vitulorum ditemukan pada sapi atau kerbau.

Toxocara vitulorum dapat hidup di dalam tubuh manusia sebagai

erratic parasite dan dapat menimbulkan penyakit yang disebut viseral

larva migrans. Habitat dari Toxocara vitulorum adalah usus halus

(Safar, 2010).

16

2.3.6 Gejala Klinik

Infeksi Toxocara vitulorum pada sapi lebih banyak ditemukan

pada anak sapi daripada yang dewasa. Tanda-tanda klinis

toxocariasis pada hewan sangat bervariasi dan tergantung dari umur

hewan. Gejala yang dapat ditimbulkan pada manusia antara lain tidak

mau makan, sakit di daerah perut, diare, dehidrasi, penurunan berat

badan, dan tinja berbau khas. Pneumonia akan terlihat pada anak

sapi yang terinfeksi Toxocara karena adanya migrasi larva ke paru-

paru. Pada anak sapi akan terjadi diare dan menurunnya berat badan

akibat tidak mau makan. Infeksi Toxocara yang menyerang anak sapi

dapat digolongkan menjadi 3 tingkatan yaitu, infeksi ringan dengan

5.000 epg, infeksi sedang 5.000 – 10.000 epg, dan infeksi berat berat

lebih dari 10.000 epg (Duri, 2015).

2.3.7 Diagnosis

Infeksi paten Toxocara pada sapi dapat di diagnosa secara

tentatif mulai dari tanda-tanda klinis yang terlihat dan umur dari

hewan. Pneumonia dan ditemukannya telur cacing Toxocara dalam

feses dapat membantu menegakkan diagnosis dan harus dikuatkan

dengan melihat sejarah penyakit hewan ternak tersebut.

2.3.8 Pengobatan

Pengobatan yang dapat diberikan kepada penderita

toxocariasis yaitu menggunakan antihelmin dengan spectrum luas,

seperti Benzimidazoles, Levamisole, dan lain-lain. Antihelmin

memiliki efek sampik bila digunakan untuk larva migrant, sehingga

17

untuk penanggulangan larva harus dilakukan penggulangan obat

cacing (Polyoga, 2015).

2.4 Cestoda

Cestoda berasal dari bahasa Yunani, Cestos = ikat pinggang. Cestoda

adalah salah satu kelas dari filum Platyhelminthes yang merupakan salah satu

kelompok parasit pada hewan dan manusia. Parasit ini dapat menimbulkan

kerugian secara ekonomi terutama pada penurunan kualitas hasil perikanan

dapat dapat merugikan kesehatan manusia. Semua cestoda adalah

endoparasit, cacing dewasa berada di dalam usus vertebrata dan larva dalam

jaringan hospes perantara (Irianto, 2009).

2.5 Taenia saginata

Taenia saginata adalah parasit dalam usus manusia. Taenia saginata

dapat menyebabkan taeniasis atau infeksi cacing pita sapi. Penyebaran

cacing Taenia saginata bersifat kosmpolitan terutama di daerah-daerah yang

berpenduduk gemar mengkonsumsi daging sapi mentah atau setengah

matang (Irianto, 2009).

Taenia saginata merupakan cestoda yang siklus hidupnya

membutuhkan lebih dari satu inang (dua) dan telur di produksi dalam jumlah

banyak. Sapi memakan makanan yang terkontaminasi larva usia 10-12

minggu. Cacing dewasa berbentuk skoleks dan menyerang usus, diikuti

cacing muda dan proglotid (Tantri dkk, 2013).

2.5.1 Klasifikasi

Kingdom : Animalia

18

Filum : Platyhelminthes

Kelas : Cestoda

Famili : Taenidae

Genus : Taenia

Spesies : Taenia saginata (Atmojo, 2016)


Secara umum, Taenia saginata ditemukan di Amerika Selatan,

Eropa Barat dan Timur, Amerika Serikat, Afrika Timur dan Barat.

Kasus taeniasis terdapat di beberapa daerah endemis di Indonesia

seperti di Sumatera Utara (Pulau Samosir), Lampung, Jakarta,

Kalimantan Barat, Sulawesi Utara, Sulawesi Tenggara, Bali, Nusa

Tenggara Timur, dan Irian Jaya, yang penduduknya mempunyai

kebiasaan mengkonsumsi daging sapi yang dimasak kurang

sempurna (Pusarawati dkk, 2009).

2.5.3 Morfologi

Telur Taenia saginata berbentuk bulat dengan diameter 30-

40 µm x 20-30 µm, memiliki kulit tebal yang nampak sebagai dua

garis halus dan kulit bergaris radier. Telur berisi embrio hexacant atau

onkosfer yaitu suatu masa bulat, bergranula, dan diliputi membran

halus, di bagian dalam nampak 3 pasang kait berbentuk mirip seperti

lanset yang membias. Warna kulit telur lebih gelap dibanding warna

isi telur, hal ini menyebabkan bentuk telur Taenia saginata

menyerupai bentuk roda (Prasetyo, 2013).

19

Gambar 4 : Telur Taenia saginata (Prianto dkk, 2008)

2.5.4 Siklus Hidup

Manusia merupakan hospes definitif dari Taenia saginata,

sedangkaan sapi bertindak sebagai hospes perantara. Infeksi pada

manusia terjadi jika makan daging sapi yang masih mentah atau

dimasak kurang sempurna sehingga cysticercus bovis yang terdapat

di dalam daging masih infektif. Siklus hidup dimulai dari manusia

yang terinfeksi mengeluarkan tinja yang mengandung telur cacing di

tanah atau tidak pada tempatnya. Telur cacing tersebut termakan

sapi. Cysticersus bovis terbentuk di orang/ jaringan sapi, lalu

termakan bersama daging sapi oleh manusia. Cysticersus kemudian

akan berkembang menjadi cacing dewasa di dalam usus manusia

(Soedarto, 2016).

Gambar 5 : Siklus hidup Taenia saginata (CDC, 2017d)

20


Hospes perantara dari Taenia saginata adalah sapi,

sedangkan hospes definitif adalah manusia. Habitat dari cacing

dewasa Taenia saginata berada di lumen usus halus dengan skoleks

yang menempel pada mukosa usus halus manusia (Pusarawati dkk,

2013).

2.5.6 Gejala Klinik

Infeksi yang disebabkan oleh Taenia saginata tidak

menimbulkan gejala yang nyata. Penderita akan merasa terganggu

apabila proglotid gravid yang berotot dan bergerak aktif migrasi

keluar dari anus. Segmen gravid yang keluar dari anus secara satu

per satu masih dapat bergerak dan sering di temukan pada celana

dalam penderita atau diatas tempat tidur, dapat menimbulkan rasa

tidak nyaman sehingga penderita mual dan bahkan muntah. Akibat

dari segmen gravid yang keluar dari anus dapat menyebabkan rasa

terganggu atau risih di sekitar anus (perianal), dan ada perasaan

buang air besar yang tidak diinginkan. Gejala ini dapat terjadi sekitar

enam kali dalam satu hari (Irianto, 2009).

Cacing dewasa Taenia saginata menyebabkan keluhan

dispesia seperti mual, muntah, diare, nyeri epigastrium, disertai

pusing dan gugup. Gejala menjadi lebih berat apabila cacing dewasa

Taenia saginata menimbulkan obstruksi usus yang mengakibatkan

penderita mengalami ileus atau apabila segmen gravid masuk ke

apendiks. Pemeriksaan darah, penderita taeniasis ditemukan

peningkatan pada jumlah eosinofil 6-15% (Prasetyo, 2013).

21

2.5.7 Cara Infeksi

Penyebaran terjadi melalui padang rumput yang tercemar

kotoran manusia dan mengandung telur atau proglotid gravid yang

terlepas dari rangkaiannya. Rumput terkontaminasi melalui pupuk

dari tinja manusia atau melalui air limpahan yang telah

terkontaminasi. Telur cacing Taenia saginata pada padang rumput

dapat bertahan hidup selama 8 minggu atau lebih. Ternak sapi akan

terinfeksi bila memakan rumput tersebut dan infeksi pada manusia

terjadi secara pre-oral, makan daging sapi yang mentah atau

dimasak kurang sempurna yang mengandung larva Taenia saginata

(cysticercus bovis) (Irianto, 2009).

2.5.8 Diagnosis

Diagniosis dapat ditegakkan dengan deteksi telur atau

segmen pada feses. Telur Taenia saginata dengan Taenia solium

tidak bisa dibedakan. Telur terdiri dari lapisan vitelin luar yang

merupakan selaput yang membranous. Lapisan dalam yang

merupakan suatu embriofor dengan gambaran garis-garis radier. Di

dalam telur terdapat hexacant embrio atau onkosfer yang mempunyai

6 kait (Zaman, 2014).

2.5.9 Pengobatan

Obat yang dapat digunakan untuk taeniasis pada hewan

adalah Mebendazol, Prazikuantel, Albendazol, Epsiprantel, Febentel,

Febendazole. Pengobatan taeniasis pada manusia, pemberian obat

cacing:

a. Mebendazol

22

Diberikan dengan dosis 2 x 200 mg/ hari, selama 4 hari berturut-

turut

b. Prazikuantel

Merupakan drug of choice untuk Taenia saginata, diberikan

dengan dosis tunggal 100 mg/ Kg BB

c. Albendazol

Diberikan terhadap penderita dewasa dengan dosis 400 mg/

hari, diberikan selama 3 hari berturut-turut (Estuningsih, 2009).

Penggunaan obat tradisional seperti biji labu merah atau biji

pinang masih digunaan. Pengobatan dinyatakan berhasil apabila

setelah pengobatan penderita buang air besar, dalam feses

penderita ditemukan skolex Taenia saginata (Prasetyo, 2013).

2.5.10 Pencegahan

Untuk mencegah taeniasis pada manusia, dapat dilakukan

dengan menghindari memakan daging sapi yang kurang matang.

Daging sapi yang terkontaminasi harus dimasak terlebih dahulu

dengan suhu diatas 56ºC. Selain itu, dengan membekukan daging

terlebih dahulu dapat mengurangi resiko penularan penyakit

(Estuningsih, 2009).

2.6 Ternak sapi

Sapi merupakan salah satu ternak penghasil daging di Indonesia.

Indonesia merupakan tempat yang bagus untuk memelihara sapi, pasalnya

suhu, curah hujan, sinar matahari, ketesediaan air, kelembaban, serta kondisi

lahan yang ada di sebagian besar wilayah di Indonesia sangat mendukung

untuk dijadikan lokasi penggemukan sapi (Harianto dan Rahmat, 2017).

23

Pemeliharan ternak sapi dapat dikelompokkan menjadi 2 cara, yaitu

pemeliharan yang baik dan pemeliharan yang kurang baik. Ciri-ciri sebagai

berikut :

a. Pemeliharan yang baik

1. Suhu lingkungan untuk pertumbuhan dan perkembangan sapi

berkisar 17-27ºC

2. Curah hujan memiliki hubungan dengan ketersediaan air bagi ternak

sapi. Lokasi peternakan mempunyai curah hujan 800 – 1.500 mm/

tahun

3. Penggunaan kandang. Kandang yang paling baik digunakan adalah

kandang individu, sebab jenis kandang individu dapat membuat

pertumbuhan sapi lebih pesat karena ruang gerak yang terbatas

membuat pakan yang seharusnya digunakan untuk energi dialihkan

menjadi daging dan lemak.

4. Lantai kandang sebaiknya disemen dengan kualitas yang baik dan

tahan lama sehingga tidak sering dilakukan perbaikan alas kandang

dan tidak menggangu jadwal pemeliharaan

5. Kebersihan kandang selalu di perhatikan. Membersihkan kandang

sebaiknya dilakukan minimal 1x1 hari

6. Pemberian vitamin dan obat-obatan guna menjaga kebugaran tubuh

sapi. Obat cacing dan vitamin B 12 merupakan obat-obatan dan

vitamin yang umumnya selalu disediakan oleh peternak sapi

(Harianto dan Rahmat, 2017).

b. Pemeliharaan yang kurang baik

24

1. Pembuatan kandang di daerah tropis seperti Indonesia

menggunakan kandang dengan sistem terbuka. Artinya, dinding

kandang dibuat tidak penuh, bahkan ada yang tidak menggunakan

dinding sama sekali.

2. Kebersihan kandang yang tidak diperhatikan

3. Pemberian pakan sapi yang tidak mengandung kebutuhan gizi sapi

(Harianto dan Rahmat, 2017)

25

BAB III

METODE PENELITIAN

3.1. Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi

Surakarta, pada tanggal 15 Januari 2018 – 20 Januari 2018.

3.2. Alat dan Bahan Penelitian

a. Alat

1. Pot sampel

2. Mikroskop

3. Obyek glass

4. Masker

5. Handscoon

6. Lidi

b. Bahan :

1. Sampel feses

2. Larutan lugol 2%

3.3. Teknik Penelitian

Penelitian ini termasuk penelitian observasional dengan pendekatan cross

sectional.

3.4. Populasi dan Sampel

3.4.1 Populasi

Peternak sapi dan sapi di peternakan sapi Dusun Karangnongko.

26

3.4.2 Sampel

25 feses sapi dan 5 feses peternak sapi.

3.5. Metode Penelitian

Metode penelitian yang digunakan adalah pemeriksaan secara langsung,

dibagi menjadi 2 tahap yaitu pemeriksaan makroskopis dan mikroskopis.

3.6. Prosedur Kerja

3.6.1 Pemeriksaan Makroskopis

a. Tujuan : untuk pemeriksaan dini sebagai bentuk gambaran

feses yang dapat dilihat dengan mata langsung

atau tanpa menggunakan alat bantu penglihatan.

b. Cara kerja

1. Membuka pot sampel yang berisi feses

2. Mengamati :

a) Warna

1) Normal : kuning kecoklatan

2) Hijau : dipengaruhi oleh makanan yang banyak

mengandung sayur-sayuran

3) Abu-abu : tidak adanya urobilin dalam saluran

makanan, dan dapat terjadi jika makanan

mengandung lemak yang tidak dicerna

karena defisiensi enzim pancreas

4) Merah muda : terjadi karena perdarahan yang segar

dibagian distal

5) Coklat : terjadi karena perdarahan proximal atau

dengan makanan coklat atau kopi

27

6) Hitam : terjadi karena carbo medicinalis, obat-

obatan yang mengandung Fe dan melena

b) Bau

Bau normal tinja disebabkan oleh indol, skatol dan

asam butirat. Bau busuk terjadi bila di dalam usus terjadi

karena protein yang tidak dicerna dan dirombak oleh

kuman-kuman.

c) Konsistensi

Konsistensi agak lunak dan dengan mempunyai

bentuk. Konsistensi tinja yang sangat lunak dan cair

biasanya terjadi pada diare, sedangkan tinja dengan

konsistensi padat terjadi pada konstipasi.

d) Lendir

Adanya lendir mengindikasikan adanya radang

dinding usus. Jika lendir hanya pada bagian luar tinja

maka lokalisasi iritasi pada usus besar, jika bercampur

dengan tinja mungkin pada usus halus.

e) Darah

Bila terdapat darah pada tinja, perhatikan apakah

darah tersebur segar (merah muda), coklat atau hitam

dan apakah bercampur atau hanya dibagian luar tinja.

3. Mencatat hasil analisis

3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopis

a. Tujuan : untuk mengidentifikasi ada atau tidaknya protozoa

dan telur cacing pada sampel yang dianalisis.

28

b. Cara kerja :

1. Meneteskan 1 tetes Lugol 2% diatas obyeck glass

2. Mengambil sampel feses seujung sudip atau ± 2mg,

meletakkan diatas obyeck glass

3. Menghomogenkan feses dengan larutan lugol 2%

menggunakan lidi

4. Menutup sedian dengan deck glass atau kaca penutup

5. Memeriksa sediaan dibawah mikroskop dengan lensa

obyektif dengan perbesaran 100 atau 400.

6. Mengamati :

a) Sel epitel

Sel epitel berasal dari dinding usus bagian distal dan

dapat ditemukan dalam keadaan normal. Sel epitel yang

berasal dari bagian yang lebih proximal, sel-sel itu

sebagian atau seluruhnya rusak.

b) Makrofag

Bentuk makrofag dalam preparat lebih menyerupai

amoeba, perbedaannya ialah sel makrofag tidak dapat

bergerak

c) Leukosit

Leukosit dapat terlihat jelas bila tinja dicampur

dengan beberapa tetes asam asetat 10%.

d) Eritrosit

Eritrosit hanya dapat dilhat jika lesi mempunyai

lokalisasi dalam kolon, rectum, atau anus. Jika ditemukan

29

eritrosit dalam tinja maka tinja tersebut abnormal. Adanya

eritrosit dapat dilihat dari pemeriksaan makroskopis yaitu

ditemukannya darah dalam tinja.

e) Kristal – kristal

Pada umumnya, adanya kristal tidak mempunyai

arti klinis. Dalm tinja normal terdapat kristal seperti

triplefosfat, calcium oxalate, dan asam lemak. Pada

kelainan dapat dijumpai kristal Charcot-Leyden, dan

kristal hematoidin.

f) Sel ragi

g) Telur cacing

Telur cacing yang dapat dijumpai adalah

Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata

(Gandasoebrata, 2008).

3.6.3 Interpretasi hasil :

(+) Positif : Ditemukan telur Hookworm, Toxocara vitulorum,

dan Taenia saginata pada sediaan

(-) Negatif :Tidak ditemukan telur Hookworm, Toxocara

vitulorum, dan Taenia saginata pada sediaan

(Irianto, 2009)

3.7. Analisis Data

3.7.1 Prosentase Infeksi

Perhitungan prosentase infeksi bedasarkan Kemenkes 2012 sebagai

berikut :

30

a. Prosentase peternak sapi yang terkontaminasi telur cacing, yaitu

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%

b. Prosentase peternakan yang tidak terkontaminasi telur cacing,

yaitu:

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%

c. Prosentase sapi yang terkontaminasi telur cacing, yaitu :

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖


d. Prosentase sapi yang tidak terkontaminasi telur cacing, yaitu :

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖


31

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Hasil Penelitian

Penelitian dilakukan dengan mengambil sampel feses sapi sebanyak

25 sampel dan sampel feses peternak sapi sebanyak 5 sampel. Sampel feses

diperoleh dari Dusun Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko,

Kecamatan Mojosongo, Kabupaten Boyolali yang merupakan daerah dengan

mayoritas penduduk berprofesi sebagai peternak sapi. Penelitian dilakukan di

Laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi, Jl. Let. Jend. Sutoyo,

Mojosongo, Surakarta pada tanggal 15 Januari 2018 sampai dengan 20

Januari 2018.

Hasil penelitian secara makroskopis pada 5 feses peternak sapi yaitu

warna feses kuning kecoklatan dengan bau khas feses, konsistensi lembek

dan agak keras, tidak ditemukan adanya lendir, darah dan cacing dewasa.

Pemeriksaan makroskopis pada 25 feses sapi yaitu warna feses kehitaman

dengan bau khas feses sapi, konsistensi lembek, serta tidak ditemukan

adanya lendir, darah, dan cacing dewasa pada feses.

Pemeriksaan mikroskopis pada sampel feses sapi ditemukan telur

cacing Hookworm, telur cacing Toxocara vitulorum, dan larva filariform

Hookworm, sedangkan pada feses peternak sapi tidak ditemukan telur cacing

Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia saginata.

32

4.2. Perhitungan

4.2.1. Prosentase Feses Peternak Sapi yang Terinfeksi dan Tidak

Terinfeksi

a. Prosentase sampel feses peternak sapi yang terinfeksi telur


No Telur Cacing Hasil Positif Prosentase

1 Hookworm 0 0%

2 Toxocara vitulorum 0 0%

3 Taenia saginata 0 0%

Jumlah 0 0%

1. Perhitungan sampel feses peternak sapi yang terinfeksi telur


=𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎×100%

= 0

5 × 100%

= 0%

b. Prosentase sampel feses peternak sapi yang tidak terinfeksi telur

cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata:

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎×100%

= 5

5 × 100%

= 100%

4.2.2. Prosentase Feses Ternak Sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi

33

a. Prosentase sampel feses ternak sapi yang terinfeksi telur cacing

Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata

No Telur Cacing Hasil Positif Prosentase

1 Hookworm 2 8%

2 Toxocara vitulorum 1 4%

3 Taenia saginata 0 0%

Jumlah 3 12%

1. Perhitungan sampel feses sapi yang terinfeksi telur cacing

Hookworm:

= 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 ×100%

= 2

25 × 100%

= 8%


Toxocara vitulorum:



= 1

25 × 100

= 4%


Taenia saginata:

34



= 0

25 × 100%

= 0%

b. Prosentase sampel feses ternak sapi yang tidak terinfeksi telur

cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata:

=𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑐𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖

𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 × 100%

= 22

25 × 100%

= 88%

4.3 Pembahasan

Pemeriksaan ini dilakukan dengan metode pemeriksaan langsung.

Metode pemeriksaan langsung dilakukan dengan 2 tahap pemeriksaan yaitu

pemeriksaan makroskopis dan mikroskopis. Pemeriksaan makroskopis

harus dilakukan terlebih dahulu untuk melihat kemungkinan adanya infeksi

cacing pada feses. Pemeriksaan makroskopis dilakukan dengan mengamati

warna, bau, konsistensi, serta ada tidaknya darah, lendir, dan cacing dewasa

yang ada pada feses. Pemeriksaan mikroskopis dilakukan dengan cara

diambil tinja kira-kira 0,2 gram, diletakkan pada Obyek glass. Kemudian

ditambah 1-2 tetes Lugol 2% dan diratakan, lalu ditutup dengan Deck glass

atau kaca penutup dan langsung diperiksa dibawah mikroskop perbesaran

lemah (10 x 10) dan perbesaran sedang (40 x 10) (Gandasoebrata, 2008).

35

Keuntungan penggunaan Lugol 2% adalah dapat membunuh

organisme dan dapat mewarnai unsur-unsur sel seperti inti sel, benda-benda

kromatid, dan vakuola dapat terlihat dengan jelas. Kelemahan dari

penggunaan Lugol 2% adalah tidak dapat melihat pergerakan tropozoit yang

mati. Kelemahan penggunaan Lugol 2% tidak begitu memiliki arti karena

penelitian ini berpusat pada identifikasi telur cacing dan bukan tropozoit

(Naomi, 2015).

Pemeriksaan makroskopis pada 5 feses peternak sapi didapatkan

hasil sebagai berikut: warna kuning kecoklatan dengan bau khas feses.

Konsistensi lembek dan agak keras, serta pada feses tidak terdapat lendir,

darah dan cacing dewasa. Hasil pemeriksaan tersebut dapat disimpulkan

bahwa feses peternak sapi normal dan tidak adanya infeksi telur cacing.

Pemeriksaan makroskopis pada 25 feses sapi didapatkan hasil sebagai

berikut: warna feses kehitaman dan memiliki bau khas feses sapi dengan

konsistensi lembek, tidak ditemukan adanya lendir, darah, dan cacing

dewasa pada feses.

Hasil penelitian pada sampel feses sapi dan peternak sapi di Dusun

Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,

Kabupaten Boyolali menunjukkan bahwa dari 25 sampel feses sapi terdapat

3 sampel yang terinfeksi telur cacing terdiri dari 2 telur cacing Hookworm dan

1 telur cacing Toxocara vitulorum. Pada 5 sampel feses peternak sapi tidak

ditemukan telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.

Telur cacing Hookworm yang ditemukan pada feses sapi memiliki

morfologi telur berukuran ± 70 x 45µ, bulat lonjong, berdinding tipis, kedua

kutub mendatar, didalamnya terdapat beberapa sel. Ditemukan juga telur

36

Toxocara vitulorum pada feses sapi dengan morfologi telur berukuran ± 80

x 70µ, bulat, dinding luar menyerupai renda. Sampel feses sapi juga

ditemukan larva filariform Hookworm dengan morfologi panjang ± 500µ,

ruang mulut tertutup, esofagus menempati ¼ panjang badan bagian anterior

(Prianto dkk, 2008). Infeksi telur cacing Taenia saginata tidak ditemukan

pada feses sapi. Telur Taenia saginata memiliki morfologi berukuran ± 35 x

30µ, berbentuk bulat, berdinding tebal dengan struktur liniar, berisi onkosfer

dan memiliki 6 buah kait-kait (Prianto dkk, 2008). Pemeriksaan mikroskopis

pada sampel feses peternak sapi tidak ditemukan telur cacing Hookworm,

Toxocara vitulorum dan Taenia saginata.

Kasus toxocariasis dimulai dengan termakannya feses yang

mengandung telur cacing oleh sapi. Telur akan menetas di usus halus dan

menjadi larva. Larva akan bermigrasi ke hati, paru-paru, jantung, ginjal,

bahkan plasenta dan masuk ke jaringan amnion (ketuban) serta ke dalam

kelenjar susu sapi dan keluar bersama kolostrum. Kolostrum yang diminum

oleh sapi akan menjadi sumber penularan cacing Toxocara. Larva yang tetap

berada dalam usus akan berkembang menjadi cacing dewasa dan

selanjutnya menghasilkan telur yang bisa keluar bersama feses sapi.

Penularan toxocariasis pada sapi dapat terjadi melalui pakan atau air yang

terkontaminasi oleh telur maupun larva cacing dan melalui kolostrum yang

mengandung larva cacing (Medion, 2013).

Infeksi Hookworm pada feses sapi dapat dipengaruhi oleh lantai

kandang yang sebagian besar masih berupa tanah dan kesukaan sapi

merebahkan badan di tanah saat istirahat di kandang. Kondisi ini sangat

37

memungkinkan terjadinya proses infiltrasi larva cacing tambang pada

binatang ternak sapi (Sumanto, dkk., 2010).

Faktor-faktor yang menyebabkan terinfeksinya sapi-sapi di

peternakan dusun Karangnongko oleh telur cacing Hookworm dan Toxocara

vitulorum serta larva filariform Hookworm adalah defekasi sapi di tanah, alas

kandang yang masih terbuat dari tanah, sanitasi di daerah peternakan yang

masih buruk, dan pemberian pakan pada hewan ternak yang tidak sesuai

dengan gizi yang dibutuhkan (Hariyadi, 2014).

Hubungan antara sapi dengan peternak sapi yaitu kandang sapi yang

berdekatan dengan rumah peternak, sering terjadi kontak antara ternak sapi

dan peternak sapi. Pencegahan yang dapat dilakukan untuk mencegah

terjadinya infeksi kecacingan pada sapi maupun peternak sapi yaitu menjaga

hygiene dan sanitasi, tidak defekasi di sembarang tempat, mencuci tangan

dengan sabun sebelum dan sesudah makan, dan tidak menggunakan tinja

manusia sebagai pupuk (Safar, 2009).

38

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan

a. Ditemukan ternak sapi yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara

vitulorum, tetapi tidak ditemukan telur cacing Taenia saginata di

peternakan sapi Dusun Karangnongko, Boyolali

b. Tidak ditemukan peternak sapi yang terinfeksi telur cacing Hookworm,

Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata di peternakan sapi Dusun

Karangnongko, Boyolali

c. Prosentase feses sapi yang terinfeksi telur Hookworm sebesar 8%,

Toxocara vitulorum sebesar 4%, dan Taenia saginata 0%

d. Prosentase feses peternak sapi yang terinfeksi Hookworm, Toxocara

vitulorum, dan Taenia saginata adalah 0%.

5.2. Saran

5.2.1. Bagi Peternak

c. Peternak disarankan menjaga kebersihan kandang sapi dengan

membersihkan kotoran sapi setiap hari

d. Peternak disarankan memperhatikan kebersihan pribadi seperti

mencuci tangan dengan sabun setelah kontak dengan hewan

ternak

e. Peternak sebaiknya menggunakan APD (Alat Pelindung Diri) saat

kontak dengan sapi

39

5.2.2. Bagi Masyarakat

Pentingnya menjaga kebersihan lingkungan guna mencegah resiko

infeksi akibat telur cacing yang dapat menyebabkan penyakit

5.2.3. Bagi Mahasiswa

Melakukan penelitian lebih lanjut tentang infeksi telur cacing pada

sapi dan peternak sapi untuk meminimalisir infeksi kecacingan yang

dapat menimbulkan penyakit bagi lingkungan sekitar peternakan.

P-1

DAFTAR PUSTAKA

Agustina, K., Dharmayudha., Wirata, I. 2013. “Prevalensi Toxocara vitulorum

Pada Induk dan Anak Sapi Bali di Wilayah Bali Timur”. Buletin Veteriner

Udayana. Vol 5 (1): 1-6

Atmojo, A. 2016. “Parasitologi Teori” (Online), (http://medlab.id/taenia-saginata/,

diakses 14 November 2017) BPSN (Badan Pusat Statistik Nasional). 2016. Statistika Hewan Ternak di

Indonesia Tahun 2016. Jakarta: BPS RI Badan POM RI. 2015. “Obat Kecacingan”, (Online),

(http://pionas.pom.go.id/artikel/obat-kecacingan, diakses 17 April 2018) CDC. 2017a. “Parasites- Hookworm”, (Online),

(http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html, diakses 18 April 2018)

CDC. 2017b. “Parasites- Hookworm”, (Online),

(http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html, diakses18 April 2018)

CDC, 2017c. “Parasites- Toxocara vitulorum”, (Online),

(http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html, diakses18 April 2018)

CDC, 2017d. “Parasites- Toxocara vitulorum”, (Online),

(http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html, diakses18 April 2018)

CDC. 2017e. “Parasites- Taenia”, (Online),

(http://www.cdc.gov/parasites/taeniasis/biology.html, diakses 18 April 2018)

Dharmawan, N. S, Damriyasa, I. M, Kapti, I. N, Sutisna, P, Okamato, M., Ito, A.

2009. “Experimental Infection of Taenia saginata Eggs in Bali Cattle: Ditribution and Density of Cystercercus bovis”. Jurnal Veternier. Vol 10 (4): 84-91

Duri, R. 2015. “Deteksi Toxocara vitulorum Pada Kerbau Perah (Bubalus bubalis)

Di Kabupaten Enrekang”. Skripsi. Makasar: Fakultas Kedokteran, Universitas Hasanuddin

Erwin, N., Kamal, M., Rusdiana, A. 2010. “Identitas Jenis Telur Cacing Parasit

Usus Pada Ternak Sapi (Bos sp) dan Kerbau (Bubalus sp) di Rumah Potong Hewan Palembang. Jurnal biologi FMIPA. Vol D (10): 6-11

http://medlab.id/taenia-saginata/

http://pionas.pom.go.id/artikel/obat-kecacingan

http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html

http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html

http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html

http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html

http://www.cdc.gov/parasites/taeniasis/biology.html

P-2

Estuningsih, S. E. 2009. “Taeniasis dan Sistiserkosis Merupakan Penyakit Zoonosis Prasiter” Watazoa. Vol 19 (2): 84-92

Gandasoebrata, R. 2008. Penuntun Laboratorium Klinik edisi kelima, Dian

Rakyat: Jakarta

Hariani, B. 2015. “Keberadaan Telur dan Larva Cacing Tambang Pada Tanah di

Lingkungan Desa Sepunggur dan Desa Gunung Tinggi Kabupaten Tanah

Bumbu Kalimantan Selatan Tahun 2014”. Jurnal Vektor Penyakit. Vol (9):

15-20

Harianto, B dan Rahmat. 2017. Membuat Sapi Potong Cepat Gemuk. Jakarta: Agro Media Pustaka

Irianto, K. 2009. Parasitologi: Berbagai Penyakit yang Mempengaruhi Kesehatan

Manusia. Bandung: Yrama Widya Kania, U. 2012. “Nematoda usus”, (Online),

(http://parasitipedia.net/index.php?option=com_conten&view=articel&id=2638&hemid=2916, diakses 4 April 2018)

Kementerian Kesehatan RI Direktorat Jendral PP dan PL. 2012. Pedoman

Pengendalian Kecacingan, Jakarta: Kemenkes RI Kementerian Pertanian Republik Indonesia. 2017. “Populasi Sapi Perah Menurut

Provinsi, 2013-2017”. (Online), (http://www.pertanian.go.id/ap_pages/mod/datanak, diakses 14 November 2017)

Medion. 2013. “Cacingan pada Sapi Jangan Dianggap Enteng”. (Online),

(http://info.medion.co.id, diakses 16 April 2018) Naomi, B. 2015. ”Manfaat Eosin, NaCl dan Lugol”, (Online),

(https://www.scribd.com/doc/286192973/Manfaat-Eosin-NaCl-Dan-Lugol, diakses 19 April 2018)

Nezar, M. 2014. “Jenis Cacing Pada Feses Sapi di TPA Bantar Gebang dan KTT

Sidomulyo Desa Nongkosawit Semarang”. Skripsi. Semarang: Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Negeri Semarang

Polyoga, H. 2015. “Toxocara vitulorum”, (Online), (http://www.dokter-

hewan.net/2015/09/toxocara-vitulorum.html?m=1, diakses 17 April 2018) Prasetyo, R. H. 2013. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Parasit Usus. Jakarta:

Sagung Seto

Prianto, J., Tjahaya. P. U, Darwanto. 2008. Atlas Parasitologi Kedokteran. Jakarta: Gramedia Pustaka Utama

Pusarawati, S., Ideham, B., Kusmaratisnawati., Tantular, I. S., Basuki, S. 2013.

Atlas Parasitologi Kedokteran. Jakarta: EGC

http://parasitipedia.net/index.php?option=com_conten&view=articel&id=2638&hemid=2916

http://parasitipedia.net/index.php?option=com_conten&view=articel&id=2638&hemid=2916

http://www.pertanian.go.id/ap_pages/mod/datanak

http://info.medion.co.id/

https://www.scribd.com/doc/286192973/Manfaat-Eosin-NaCl-Dan-Lugol

https://www.scribd.com/doc/286192973/Manfaat-Eosin-NaCl-Dan-Lugol

http://www.dokter-hewan.net/2015/09/toxocara-vitulorum.html?m=1

http://www.dokter-hewan.net/2015/09/toxocara-vitulorum.html?m=1

P-3

Safar, R. 2009. Parasitologi Kedokteran. Bandung: Yrama Widya Safar, R. 2010. Parasitologi Kedokteran. Bandung: Yrama Widya Santi, W. P. 2008. “Respons Penggemukan Sapi PO dan Persilangannya

sebagai Hasil IB terhadap Pemberian Jerami Padi Fermentasi dan Konsentrat di Kabupaten Blora”. Skripsi. Bogor: Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor

Siregar. 2013. Tampilan reproduksi kambing lokal hasil induksi superovulasi

dengan ekstrak pituitary. Jurnal Veteriner. 14 (1): 75-79 Soedarto. 2016. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Edisi Kedua. Jakarta:

Sagung Seto Staf Pengajar Parasitologi FKUI. 2008. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Edisi

Keempat. Jakarta: Balai Penerbit Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia

Sudarmono dan Sugeng. 2008. Sapi potong dan Pemeliharaan, Perbaikan

Produksi, Prospek Bisnis, Analisis Penggemukan. Semarang: Niaga Swadaya.

Sumanto, D., Alhamidy. F., Anggriani. H., 2010. “Uji Paparan Telur Cacing Tambang pada Tanah Halaman Rumah dan Kotoran Binatang Piaraan Rumah Tangga”. (Online), (http://researchgate.net/publication/314282645_UJI_PAPARAN_TELUR_CACING_TAMBANG_PADA_TANAH_HALAMAN_RUMAH_DAN_KOTORAN_BINATANG_PIARAAN_RUMAH_TANGGA, diakses 16 April 2018).

Sumolang, P., Hayani, A., Junus. W., Samarang. 2014. “Prevalensi Kecacingan

usus di Kota Palu, Sulawesi Tenggara”. Jurnal Epidemiologi dan Penyakit Bersumber Binatang, 5(2): 75-80

Susanto, A. 2008. “Prevalensi Infeksi Cacing Toxocara vitulorum pada Anak Sapi

Perah dan Anak Sapi Potong di Kabupaten Pasuruan”. Tesis. Surabaya:

Universitas Airlangga

Tantri, N., Setyawati. T. R., Khotimah, S. 2013. “Prevalensi dan Intensitas Telur Cacing Parasit Pada Feses Sapi (Bos Sp) Rumah Potong Hewan (RPH) Kota Pontianak Kalimantan Barat”. Jurnal Protobiont, 2 (2): 102-106

Wijaya, N. 2015. “Beberapa Faktor Risiko Kejadian Infeksi Cacing Tambang

Pada Petani Pembibitan Albasia”. Tesis. Semarang: Program Magister

Epidemiologi Pascasarjana, Universitas Diponegoro

http://researchgate.net/publication/314282645_UJI_PAPARAN_TELUR_CACING_TAMBANG_PADA_TANAH_HALAMAN_RUMAH_DAN_KOTORAN_BINATANG_PIARAAN_RUMAH_TANGGA



P-4

WHO, 2016. “Soil Transmitted Helminth Infection”, (Online), (http://www.who.int/medicentere/factsheets/fs366/en/ , diakses 12 November 2017)

Wikipedia. 2015. “Cacing Tambang”, (Online),

(http://id.m.wikipedia.org/wiki/cacing_tambang, diakses 17 April 2018)

Yudha, S. 2014. Identifikasi dan Program Pengendalian Toxocara vitulorum pada

Ternak Ruminansia Besar. Skripsi. Bogor: Fakultas Kedokteran Hewan,

Institut Pertanian Bogor

Zaman, V. 2014. Atlas Parasitologi Kedokteran : Atlas Protozoa, dan Arthropoda

Penting, Sebagian Besar Berwarna. Terjemahan oleh: Anwar, C., Musral, Y. Jakarta: Hipokrates.

http://www.who.int/medicentere/factsheets/fs366/en/

http://id.m.wikipedia.org/wiki/cacing_tambang

LAMPIRAN

L-1

LAMPIRAN

Lampiran 1. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Peternak Sapi di Dusun


Kabupaten Boyolali

NO Sampel Pemeriksaan Makroskopis Feses

Warna Bau Konsistensi Lendir Darah Parasit

1 Sampel no. 1 Kuning

kecoklatan

Khas

Feses

Agak Keras Tidak

Ada

Lendir

Tidak

Ada

Darah

Tidak Ada Parasit


Kecoklatan

Khas

Feses

Lembek Tidak

Ada

Lendir

Tidak

Ada

Darah

Tidak Ada Parasit

3 Sampel no.3 Kuning

Kecoklatan

Khas

Feses

Agak Keras Tidak

Ada

Lendir

Tidak

Ada

Darah

Tidak Ada Parasit


Kecoklatan

Khas

Feses

Agak Keras Tidak

Ada

Lendir

Tidak

Ada

Darah

Tidak Ada Parasit


Kecoklatan

Khas

Feses

Lembek Tidak

Ada

Lendir

Tidak

Ada

Darah

Tidak Ada Parasit

L-2

Lampiran 2. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Sapi di Dusun


Kabupaten Boyolali

NO Sampel Pemeriksaan Makroskopis Feses

Warna Bau Konsistensi Lendir Darah Parasit

1 Sampel

no. 1

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

2 Sampel

no. 2

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

3 Sampel

no. 3

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

4 Sampel

no. 4

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

5 Sampel

no. 5

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

6 Sampel

no. 6

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

L-3

7 Sampel

no. 7

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

8 Sampel

no. 8

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

9 Sampel

no. 9

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

10 Sampel

no. 10

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

11 Sampel

no. 11

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

12 Sampel

no. 12

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

13 Sampel

no. 13

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

14 Sampel

no. 14

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

L-4

15 Sampel

no. 15

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

16 Sampel

no. 16

Kehitaman

Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

17 Sampel

no. 17

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

18 Sampel

no. 18

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

19 Sampel

no. 19

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

20 Sampel

no. 20

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

21 Sampel

no. 21

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

22 Sampel

no. 22

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

L-5

23 Sampel

no. 23

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

24 Sampel

no. 24

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

25 Sampel

no. 25

Kehitaman Khas

feses

Lembek Tidak

ada

lendir

Tidak

ada

darah

Tidak ada

parasit

Lampiran 3. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis pada Feses Peternak Sapi di Dusun


Kabupaten Boyolali

NO Sampel Hasil Pemeriksaan Keterangan

1 Sampel no. 1 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing





Lampiran 4. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Sapi di Dusun


Kabupaten Boyolali

L-6

NO Sampel Hasil

Pemeriksaan

Keterangan







7 Sampel no. 7 Positif (+) Ditemukan telur cacing Hookworm








15 Sampel no. 15 Positif (+) Ditemukan larva Filariform

Hookworm


17 Sampel no. 17 Positif (+) Ditemukan telur cacing Toxocara




21 Sampel no. 21 Positif (+) Ditemukan telur cacing Hookworm

L-7





Lampiran 5. Peternakan Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali

Lampiran 6. Preparat Sampel

L-8

Lampiran 7. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses Sapi

Telur Cacing Hookworm (Sampel no. 7) Perbesaran 400

L-9

Larva Filariform Hookworm (Sampel no. 15) Perbesaran 100

Telur Cacing Toxocara vitulorum (Sampel no. 17) Perbesaran 400

L-10

Telur Cacing Hookworm (Sampel no. 21) Perbesaran 400

untuk memenuhi sebagian persyaratan sebagai ahli madya analis...

Documents