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UNIVERSIDAD INTERNACIONAL DE LAS AMERICAS

Carrera: Licenciatura en Farmacia Curso: Microbiología Médica 1er. Cuatrimestre 2015. Código: F-080 Créditos: 4 Horas Totales de teoría al Cuatrimestre: 45 Horas Totales de Laboratorio al Cuatrimestre: 45 Profesor del curso: Dr. José Fabio Fernández Alemán, e-mail: [email protected]

1. DESCRIPCION DEL CURSO

En este curso se discuten los conceptos básicos de la microbiología, que incluyen algunos elementos de inmunología. Se estudian los diversos tipos de virus, hongos y bacterias, principalmente los responsables de las patologías y contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo. Se pretende que el estudiante al final de curso haya adquirido los siguientes conocimientos: Conceptos básicos. Aspectos biológicos de los microorganismos. Inmunología. Cocos patógenos. Bacilos. Vibrios y Campylobacterias. Micología médica. Contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo. 2. OBJETIVOS DEL CURSO

2.1 OBJETIVO GENERAL: Conocer los aspectos fundamentales de la Microbiología. 2.2 OBJETIVOS ESPECIFICOS:

1. Adquirir habilidad en la identificación de los microorganismos propios de la contaminación por bacterias, hongos y virus.

2. Familiarizarse con los métodos, materiales y equipo usado en la Microbiología.

3. Aprender las formas básicas de diferenciar diferentes microorganismos.

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4. Reconocer las contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales

como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.

5. Conocer los fundamentos de las diferentes pruebas de esterilidad, pirógenos, endotoxinas bacterianas.

3. CONTENIDOS:

3.1 CONTENIDOS DE TEORÍA

Tema 1. Introducción a la Microbiología.

- Definición.

- Desarrollo histórico sobre la causa de las enfermedades infecciosas

- Conceptos básicos de epidemiología.

- El Síndrome Febril Infeccioso.

Tema 2. Aspectos biológicos de los microorganismos.

- Estructura física y química.

- Genética bacteriana y procesos de mutación.

- Fases de la reproducción viral.

- Factores de virulencia.

Tema 3. Inmunología.

- Antígenos y anticuerpos.

- Reacción antígeno – anticuerpo.

- Tipos de inmunidad.

- Reacciones de hipersensibilidad

- Cascada del complemento.

Tema 4. Cocos patógenos.

- Gram Positivos: estafilococos, neumococos y estreptococos.

- Gram Negativos: meningococos y gonococos.

Tema 5. Bacilos entéricos Gram Negativos.

- Proteus, Klebsiella, Pseudomonas aeruginosa.

- Shigella, Salmonella, Yersinia, Vibrio.

- Escherichia coli O157:H7 y O104:H4 y el Síndrome Urémico Hemolítico.

- Endotoxinas: colerágeno y shiga I / II (Verotoxinas)

Tema 6. Zoonosis y antroponosis. Campylobacter.

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Tema 7. Haemophilus, Bordetella, Brucella, Francisella.

Tema 8. Bacilos Gram Positivos:

- Grupo Clostridium.

- Grupo Bacillus.

Tema 9. Corynebacterium, Mycoplasma.

Tema 10. Mycobacterium: bacilo de Koch y bacilo de Hansen. Normas vigentes de tuberculosis y

lepra (puntos concretos). Espiroquetas: Treponema, Leptospira.

Tema 11. Enfermedades rickettsiales, chlamydias.

- Grupo Arbovirus.

- Picornaviridae.

- Orthomixoviridae.

- Virus oncogénicos.

- Herpes como oportunistas.

- Epidemiología del VIH/SIDA

Tema 12. Micología médica.

- Propiedades generales de los hongos.

- Micosis superficiales.

- Micosis profundas.

- Micosis generalizadas.

- Micosis oportunistas.

Tema 13. Microbiología de alimentos especiales:

- Leche, agua, carnes.

- Potabilidad, pasteurización y proceso UHT.

Tema 14. Control de microorganismos.

- Curva de crecimiento y muerte bacteriana. - Agentes físicos y químicos para el control de poblaciones de microorganismos.

- Esterilización, desinfección y antisepsia. Fármacos bacteriostáticos y bactericidas.

3.2 CONTENIDO DE LABORATORIO

BACTERIOLOGÍA:

1- Observación de muestras de orina. Criterios físicos, químicos y microbiológicos que definen ITU

y medidas a seguir ante fallo terapéutico o en pacientes con condiciones especiales.

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3- Observación directa de muestras de heces: flora normal.

4- Determinación de la carga fecal en manos y alimentos.

5- Detección de Helicobacter pylori en heces.

6- Prueba de Sangre Oculta en heces.

7- Técnica especial para urocultivos.

6- Observación macroscópica de colonias de microorganismos y tinción de Gram.

7- Características del Agar Sangre, MacConkey y Manitol Sal. Repique de cultivos.

8- Diferenciación entre cocos y bacilos, Gram Positivos y Gram Negativos, efectuando la tinción de

Gram y observando láminas ya teñidas.

9- Elementos para la Prueba de sensibilidad a antibióticos, cómo se efectúa, función del Agar

Müller-Hinton.

SEROLOGÍA, HEMATOLOGÍA, INMUNOLOGÍA E INMUNOHEMATOLOGÍA:

1- Toma de muestra de sangre venosa periférica.

2- Análisis de algunas pruebas de escrutinio como Sub-β hCG, VDRL, Anti-HIV I/II, HBsAg, HCV,

Dengue IgM / IgG mediante inmunocromatografía (ICT), en contraste con el inmunoensayo por

competencia para determinar Tóxicos en orina.

3- Grupo sanguíneo eritrocitario e inverso. Coombs directo e indirecto.

4- Diferencial de Schilling (F. Roja y F. Blanca) en adultos.

5- Detección de anemia y cálculo de índices hematimétricos con muestras que contengan

hipocromía y anisocitosis.

HONGOS:

1-Aislamiento de hongos del suelo y el ambiente.

2-Cultivo de uñas por hongos.

3- Observación macroscópica de colonias de hongos filamentosos, levaduriformes, hialinos y

fuliginosos.

4- Uso del KOH y el Azul de Lactofenol en el montaje de hongos para observar estructuras

micóticas a nivel microscópico.

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4. CRONOGRAMA DE TEORÍA

SEMANA CONTENIDO DE TEORÍA EXPERIENCIAS DE APRENDIZAJE

1 05/01/2016

Tema 1. Quiz 1. Clase magistral interactiva, determinación de bases mediantes preguntas diagnósticas. Discusiones grupales de casos. Aplicación de problemas sobre medidas de frecuencia de la enfermedad, desarrollo de problemas epidemiológicos, variedad de tasas, su cálculo e interpretación.

2 12/01/2016

Tema 2. Quiz 2. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, discusión de entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes.

3 19/01/2016

Tema 3. Quiz 3. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, discusión de entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes.

4 26/01/2016

Temas 4 y 5. Quiz 4. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, discusión de entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes. Juego de roles, panel o debate.

5 02/02/2016

I EXAMEN PARCIAL DE TEORÍA

No hay clase de teoría. Se aplica el I examen escrito.

6 09/02/2016

Temas 6, 7 y 8. Quiz 5. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Inicia la presentación de investigaciones clínicas tanto en teoría como en laboratorio. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la

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pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes. Panel o debate. Pedir un caso corto a los estudiantes acerca de los tres temas principales de la siguiente lección para desarrollar un panel.

7 16/02/2015

Temas 8, 9 y 10. Quiz 6. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Presentación de investigaciones. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes. Juego panel y discusión de casos aportados por los estudiantes.

8 16/02/2016

Tema 11, Parte 1: Rickettsias y chlamydias. Quiz 7.

Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Explicación de los puntos más importantes, tanto para para farmacia de las Normas de TB y Hansen vigentes en el territorio nacional y aclaración de dudas. Elaboración de mapa conceptual. Desarrollo de mentefacto.

9 23/02/2016

Tema 11, Parte 2: Virología. Quiz 8.

Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes.

10 01/03/2016

II EXAMEN PARCIAL DE TEORÍA. En este examen se evaluará el artículo científico en inglés (véase bibliografía).

No hay clase de teoría. Se aplica el II examen.

11 08/03/2016

Tema 12 (I Parte) Quiz 9. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Presentaciones de investigaciones. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, discusión de entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes. Juego de roles, panel o debate con los casos

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proyectados y la farmacología vista.

12 15/03/2016

Tema 12 (II Parte) Quiz 10. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Presentaciones de investigaciones. Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, discusión de entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas relevantes. Juego de roles, panel o debate con los casos proyectados y la farmacología vista.

13 22/03/2016

Tema 13. Quiz 11. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados. Presentaciones de investigaciones.

14 29/03/2016

Tema 14. No hay Quiz. Aclaración de dudas para el examen final.

Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos relacionados.

15 05/04/2016

EXAMEN FINAL DE TEORÍA Se aplica el examen final acumulativo.

CRONOGRAMA DE LABORATORIO

SEMANA CONTENIDO DE LA CLASE EXPERIENCIA DE APRENDIZAJE

SEMANA 2 PRÁCTICA 1

11/01/2016

QUIZ 1

INCÓGNITA 1

1-Observación de muestras de orina. 2-Reporte de la orina normal y con infección aguda o crónica de tracto urinario.

Observación de muestras de orina normales y con ITU. Interpretación de un reporte de orina. Selección de antibióticos para una ITU. Interpretación de un antibiograma. Discusión de casos interactiva. Revisión de la bitácora y explicación de confección de un reporte de la práctica de hoy.


18/01/2016

QUIZ 2

INCÓGNITA 2

1-Técnica de dilución para conteo de colonias. 2-Determinación de carga fecal en manos y alimentos.

Se conformarán grupos de 3 estudiantes, a uno de los cuales se les determinará la carga fecal en manos. El grupo aportará un alimento preparado manualmente con más de 4 horas de haber sido preparado. A este alimento se le determinará el recuento total y los coliformes totales en dicho alimento, siempre aplicando el método de diluciones. Revisión de bitácora y entrega de reporte de la práctica anterior.

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25/01/2016

QUIZ 3

INCÓGNITA 3

1-Observación de muestras de heces. 2-Reporte de muestra de heces. 3-Pruebas presuntivas para Helicobacter pylori y Sangre oculta en heces (comparación del Guayaco tradicional y de la ICT por sangre oculta.

Interpretación del reporte de examen de heces. Discusión interactiva de casos clínicos relacionados con patologías diversas de tracto digestivo. Discusión del fundamento y la interpretación de pruebas presuntivas para Sangre Oculta y Helicobacter pylori. Revisión de la bitácora y entrega de reporte de la bitácora anterior.


01/02/2016

QUIZ 4

INCÓGNITA 4

1-Urocultivo por el método URYN SYSTEM Plus

Demostrar destreza manual y saber interpretar los resultados de una orina con signos de ITU por un sistema comercial de respuesta rápida. Revisión de la bitácora de hoy y entrega del reporte de la semana pasada.


08/02/2016

QUIZ 5

INCÓGNITA 5

1-Montaje de muestra en Agar Sangre, Agar MacConkey y Agar Manitol Sal.

Demostrar destrezas manuales para efectuar un buen rayado y obtener un cultivo puro. La práctica se dividirá en 3 partes, el rayado, la tinción de Gram, la interpretación del cuadro que puede causar el microorganismo cultivado y la Prueba de Sensibilidad a Antibióticos. Se revisará que la bitácora contenga cada una de las partes en las que se divide la práctica y el reporte debe ser comparativo: Deben consignar un reporte donde se comparen las ventajas y desventajas vistas con el método rápido y el método tradicional usando los agares básicos para una ITU. Discusión grupal interactiva, debate con casos traídos por el profesor. Revisión de la bitácora.

SEMANA 7

15/02/2015

PRIMER BLOQUE DE EXPOSITORES DE LA INVESTIGACIÓN SOBRE MICROBIOLOGÍA

APLICADA A LA FARMACOLOGÍA

Todo el grupo se presenta para escuchar y aclarar dudas sobre los temas.

El profesor concluye los puntos importantes de cada proyecto.


22/02/2016

QUIZ 6

INCÓGNITA 6

1- Observación macroscópica de colonias de microorganismos y tinción de Gram para clasificarlas microscópicamente. 2- Diferenciación entre cocos, cocobacilos y bacilos, Gram Positivos y Gram Negativos. 3-Visualización microscópica de bacterias procedentes de enlatados y su clasificación al Gram.

Discusión interactiva de la preparación de las tinciones de Gram respectivas. Discusión interactiva de casos. Adquirir destreza manual en el repique de colonias para trasladarlas y trabajarlas de forma pura. Revisión de la bitácora y del reporte comparativo que unifica y desarrolla las ventajas y las desventajas de la metodología empleada en la semana 5 versus la semana 6.

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Cada grupo investigará los tratamientos que más se venden contra una determinada micosis para ser discutido la clase siguiente. La asignación la hará el profesor.


29/02/2016

QUIZ 7 INCÓGNITA 7

1-Aislamiento de hongos filamentosos queratinofílicos del suelo y esporas del ambiente. 2-Tinción de hongos con Azul de Lactofenol y montaje en KOH 10% de aislamientos aportados por el profesor.

Discusión interactiva de casos de micosis humanas, superficiales, subcutáneas o profundas. Manifestaciones de las micosis y discusión de los tratamientos más comunes en el mercado que cada grupo de trabajo investigó. Revisión de la bitácora.


07/03/2015

QUIZ 8

INCÓGNITA 8

1- Toma de muestra de sangre venosa periférica. 2- Análisis de algunas pruebas de escrutinio como Sub-β hCG, VDRL, Anti-HIV I/II, HBsAg, HCV. 3- Pasaje de los hongos a Agar Sabouraud y Mycosel. Cultivo de uñas.

Exposición del profesor acerca de los fundamentos de las pruebas serológicas. Discusión interactiva de casos. Técnica de la pregunta. Aprendizaje basado en problemas, realización de mapa conceptual y algoritmo diagnósticos para VIH 1 / 2, Sífilis, y Perfil de Hepatitis. Pasaje de los hongos a los agares Sabouraud y Mycosel. Revisión de la bitácora y entrega del reporte de la semana pasada.


14/03/2015

QUIZ 9 INCÓGNITA 9

1-Entender otras técnicas como la de Dengue y Tóxicos en orina. 2- Grupo sanguíneo eritrocitario e inverso. 3-Coombs directo e indirecto.

Exposición del profesor, análisis y discusión en grupos. Discusión, análisis enfocados en la resolución de casos de inmunohematología y varios casos de Banco de Sangre. Técnica de la pregunta y análisis basado en problemas para que cada grupo pueda discutir y dar una solución efectiva a los problemas. Establecer similitudes entre el control de hemoconcentrados y productos farmacológicos.

SEMANA 12

21/03/2015

SEGUNDO BLOQUE DE EXPOSITORES DE LA INVESTIGACIÓN SOBRE

MICROBIOLOGÍA APLICADA A LA FARMACOLOGÍA




21/03/2015

QUIZ 10

INCÓGNITA 10

1- Detección de anemia y cálculo de índices hematimétricos. 2- Preparación de láminas con colonias fungosas en KOH y Azul de Lactofenol.

Explicación de anormalidades de la serie roja y que afectan más a la población en nuestro país. Discusión interactiva de casos. Debate o panel.


28/03/2016

1-Diferencial de Schilling (F. Roja y F. Blanca) en adultos. 2-Tinción de Wright. 2-Cómputo de leucocitos: Basófilos,

Estudio individual y discusión interactiva de

problemas. Tareas individuales, investigación

individual y aporte de los grupos a la

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QUIZ 11

INCÓGNITA 11

eosinófilos, neutrófilos, linfocitos, monocitos. 3-Cómputo de plaquetas.

discusión de los casos que puedan surgir

entre las láminas que aporta el profesor.

SEMANA 14

04/04/2016

TERCER BLOQUE DE EXPOSITORES DE LA

INVESTIGACIÓN SOBRE MICROBIOLOGÍA

APLICADA A LA FARMACOLOGÍA



5. METODOLOGÍAS DIDÁCTICAS * Presentación del curso, análisis de contenidos y discusión de las estrategias para lograr las acciones didácticas. * Clases magistrales 3 horas, Laboratorio 3 horas. * Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. * Exámenes escritos teóricos, método de casos, aprendizaje basado en problemas (ABP), proyectos, técnica de debate, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la información, seminarios, entrevistas, conformación de mapas conceptuales. * Investigaciones sobre los temas asignados, expuestos por los alumnos que han de ser asignados el primer día de clases principalmente con relación a Contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo. * Trabajos en subgrupos de máximo 3 personas, donde el análisis, trabajo en grupo, facilitarán el proceso reflexivo de aprendizaje y estimularán la tolerancia y ética que debe caracterizar a nuestros profesionales. 6. RECURSOS DIDÁCTICOS Pizarras acrílicas, marcadores para pizarra y borradores, vídeo-beam, muestra biológicas, técnicas estándares para trabajar bacterias y hongos (Agar Sangre, Agar McConkey, Agar Manitol Sal, Agar Sabouraud, Agar Mycosel), Casettes de ICT para pruebas serológicas presuntivas, material de laboratorio para hacer diversas tinciones (Gram, Wright, Lactofenol), incubadora a 37ºC.

7. EVALUACIÓN:

Para poder pasar un curso es requisito que se gane el laboratorio. Si se pierde el laboratorio

queda reprobado el curso. La rúbrica de evaluación es la siguiente:

TEORÍA

EXAMENES CORTOS SEMANALES 15%

PRIMER EXAMEN PARCIAL 25%

SEGUNDO EXAMEN PARCIAL 25%

EXAMEN FINAL 35%

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LABORATORIO

Trabajo en el laboratorio 5%

Quices de la práctica de la semana 20%

Incógnitas 20%

Investigación 20%

Bitácora de trabajo en el laboratorio 10%

Reportes de cada práctica de laboratorio 25%

7.1 Guía para la Elaboración y Presentación de la Investigación del Curso de LABORATORIO:

El trabajo de investigación para el curso de laboratorio tendrá como eje central el “Reconocer las contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.” Este trabajo es de campo y conlleva también parte de investigación bibliográfica, pero la parte experimental y las destrezas en este rubro de la investigación es crucial. El procedimiento se explicará durante la presentación del programa. Los ejes transversales del estudio serán: las técnicas de limpieza de superficie, los diferentes agentes para el control de microorganismos, la higiene del ambiente que nos rodea, la higiene personal, la transmisión de agentes patógenos productores de infecciones piogénicas y otras enfermedades. El trabajo escrito lleva las siguientes partes, pauta reglamentaria de las publicaciones científicas: a) Primera página o portada: Incluye el nombre de la universidad, el nombre del curso, el título de

la investigación, los nombres de los integrantes del grupo, el número de cuatrimestre, la fecha de

presentación.

b) Resumen: El resumen será una versión hecha por los estudiantes constituyendo 4 párrafos de

máximo 300 palabras que indiquen abreviadamente lo más relevante de la introducción (¿qué se

hizo?), materiales y métodos (¿cómo se hizo?), resultados (¿qué se encontró?) y la discusión (¿qué

importancia tiene lo encontrado?). Cada párrafo deberá referirse a las 4 secciones anteriores. No

se colocan abreviaturas ni referencias bibliográficas. Tampoco se hace explícita la conclusión,

obligando al lector a interesarse por consultar todo el documento.

c) Palabras claves: Son los descriptores o términos que mejor describen el tema investigado en

general, pueden ser palabras aisladas, como un nombre científico, o términos compuestos por

varias palabras, como: Shigella dysenteriae, Enfermedad de Lobo, Lupus, Linfogranuloma Venéreo,

Leucemia linfocítica aguda, Síndrome de fatiga crónica, etc. Se deberán colocar entre cinco y diez

términos no incluidos en el título y que identifiquen el tema de investigación.

d) Introducción: la idea central en la introducción es contestar a la pregunta ¿qué se pretendió

hacer? Es el marco teórico donde se colocan conocimientos actualizados sobre el eje central o los

transversales, o sobre el tema en general, para lo cual el grupo deberá consultar bibliografía

relacionada con coliformes totales, control de microorganismos, agentes desinfectantes, medios

de cultivo, etc., y redactar, de lo general a lo específico, una visión del contexto en que se

encuentra el tema, enmarcando el problema estudiado, indicando los elementos conocidos y las

posibles incógnitas que rodearon el caso, todo siempre con las respectivas citas bibliográficas.

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e) Materiales y métodos: Hay que recordar que en esta parte se describen detalles de las acciones

que hayamos realizado, lo cual depende de si el trabajo es meramente bibliográfico o es una serie

de experimentos dirigidos a obtener uno o varios resultados. Debe describirse en detalle todo el

protocolo seguido por los miembros del grupo, resumen, indicaciones o referencias y toda la

información relevante para que la descripción de la respuesta a la pregunta ¿cómo se hizo? sea lo

más detallada posible.

f) Resultados: Los datos presentados deben ser claros y concisos. La sección de resultados puede

ilustrarse con figuras relevantes, cuya presencia aclare o brinde información importante. Otro tipo

de figuras son los gráficos; actualmente, muchos de los programas de computadoras personales

permiten confeccionar gráficos con mucha facilidad, lo que desencadena la repetición de

información, que en una presentación oral resulta cansado, y en un trabajo escrito inadmisible. La

repetición de información solo oscurece el mensaje; por lo tanto, se debe elegir cuál es la forma

que mejor ilustra los datos que estamos describiendo. De lo anterior se deduce que los datos

presentados deben ser claros y concisos, analizarse, procesarse y exponerse de la forma más

directa, evitando repeticiones innecesarias, como lo sería un cuadro y un gráfico basado en los

datos de ese mismo cuadro, caso en el cual debe decidir cuál de las dos cosas es más

representativa o llamaría más la atención del lector.

f) Discusión: En esta parte los estudiantes pueden dar un poco de rienda suelta a su vena literaria,

pues en esta sección se analizan las implicaciones de su trabajo en función del impacto que pueda

tener el tema investigado en el conocimiento previamente establecido; por ello pueden recurrir a

compararlo con otros estudios parecidos, para señalar similitudes o diferencias, siempre

refiriéndose a los datos expuestos en la sección de resultados, pero no se trata de una

recapitulación de los resultados, sino que se refiere a la interpretación de éstos e indicando su

significado, y si las hubo, las limitaciones que presentó el grupo de autores de las referencias

consultado. La farmacología utilizada también se discute en este apartado. Se podrán colocar

cuadros y figuras. Recuerde que la información de los cuadros ilustra y enriquece la discusión de

los resultados, pero no los sustituye; así que cada uno de los cuadros que emplee debe ser citado y

su información comentada en el texto. Al igual que los cuadros, las figuras deben ser

autoexplicativas: o sea, deben tener un título y una leyenda que aparece al pie de la figura donde

se explica el significado de esa figura.

g) Conclusión: En esta sección, el grupo analizará la importancia de la exposición del tema elegido,

a la luz de los nuevos conocimientos y demandas de ciencia moderna. En esta parte la justificación

de por qué se hizo el trabajo, y dicha exposición puede exponerse involucrando al grupo en

general con situaciones que “saltan a la luz” y que identifiquen como parte del problema, aquí

hablamos de tasas de mortalidad, morbilidad, prevalencia en comunidades como la nuestra, la

necesidad de hacer un cambio en técnicas consideradas tradicionales, ampliar los horizontes de un

determinado tema relevante detectado durante la realización del trabajo de campo o algo

importante hallado en la bibliografía, nuevas o mejores metodologías de trabajo, nuevos agentes

desinfectantes, aspectos del trabajo que podrían dar origen a un nuevo estudio a futuro y que por

el tiempo o enfoque que se dio en este no fue posible abordar, y enmarcar lo más importante del

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estudio dentro de las políticas de salud o los lineamientos del campo de la salud en el que nos

desenvolvamos.

h) Referencias: La bibliografía debe ser enumerada en el orden en que es citada en el texto, y

escrita en esta sección usando el formato APA.

Se hará una distribución de presentación oral de las investigaciones en la semana 7, la semana 12

y la 14, como se indicó en el cronograma de laboratorio. El día de la presentación también el grupo

entrega el trabajo escrito como se detalló anteriormente. Para exponer el trabajo a la clase, cada

grupo tendrá 20 minutos y 5 más para preguntas y comentarios. Podrán usar como recurso el

video-beam con una presentación en Power Point que no exceda 10 diapositivas.

8. BIBLIOGRAFÍA BÁSICA

Jawetz, E. (2011). Microbiología Médica. México: Editorial Manual Moderno. 25ava. Edición.

Cheng, A. Fegusson, JK. Michael R, Robson, J. Gilbert, G. Alistair, MG. Roberts, S. Karman, TM. Riley, T. (2011) Australasian Society for Infectius Diseases guidelines for the diagnosis and treatment of Clostridium difficile infection. Clinical guidelines. Issue 194: 353-358. BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA Koneman, E. Allen, SD. Dowell V.R. Janda WM, Sommers, H y Winn, WC. (2008) Diagnóstico

Microbiológico: Texto y Atlas a color. Editorial médica panamericana. 3era. Edición. Material audiovisual, publicaciones, casos, textos y lecturas de la OMS, OPS, Ministerio de Salud,

Ponencias, trabajos cortos de Congresos de Microbiología Clínica y Patología, que estarán

disponibles en la página web del curso completamente adaptados al programa teórico y práctico.

9. ORIENTACIONES GENERALES

1) Los lunes se imparte el laboratorio de 6 a 9 pm y los martes se imparte la teoría del curso de 6 a

9 pm. Para ambos días el estudiante debe ingresar a la página web que el profesor indicará el

primer día del curso, ya que deberá estudiar con antelación de 2 días la materia que aparece en

dicha página y presentarse a clases con la temática preparada.

2) Las reposiciones de los exámenes parciales deben realizarse a más tardar una semana después

de haberse aplicado el examen ordinario y solo estarán autorizadas por motivo de fuerza mayor,

fallecimiento de familiar, problemas laborales, accidentes o enfermedad, todos con su debida

justificación escrita.

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3) El examen final no podrá ser realizado por aquellos estudiantes que no han cancelado la letra

de cambio con la universidad, los cuales saldrán con un señalamiento en la lista que les será

entregada por Registro.

4) Los exámenes extraordinarios se realizarán siempre y cuando el estudiante haya ganado el

Laboratorio, pero en la nota final de teoría haya sacado entre 60 y 69, y se realizará en la semana

17.

5) Los estudiantes que presenten 3 o más ausencias injustificadas a teoría pierden el curso, y 3

llegadas tardías equivaldrán a una ausencia. La llegada tardía corresponde a llegar 15 minutos

después de la hora de entrada. Los estudiantes sólo podrán faltar al 25% total de las clases

programadas en el cuatrimestre.

7) A los laboratorios solo se puede faltar una vez y de forma justificada.

8) Durante la clase los celulares deben permanecer apagados, por lo cual es indispensable llevar a

teoría y laboratorio una calculadora sencilla, puede ser científica.

9) Es indispensable usar gabacha blanca en el laboratorio. Es obligatorio el uniforme tanto en las

clases como en el laboratorio.

10) No se cambian las fechas de examen.

11) Los reclamos sobre los exámenes y quices se tienen que hacer por escrito en las 72 horas

siguientes de la entrega de los resultados.

Los abajo firmantes dan fe de que el primer día de clases fue leído y discutido el presente

programa de contenidos:

No. Nombres y Apellidos

1.

2.

3.

4.

5.

6.

7.

8.

9.

10.

11.

12.

13.

14.

15

15.

16.

17.

18.

19.

20.

21.

22.

23.

24.

25.

26.

27.

28.

29.

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