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Revisión Médica Pequeñas Especies / Revista Electrónica No. 5 Dermatología / Dermatitis por Malassezia en Perro

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REVISTA ELECTRÓNICA No. 5

DERMATOLGÍA

Dermatitis por Malassezia en el Perro

MVZ, Esp, M en C. Luis Ramón Nolasco Espinosa Clínica Veterinaria Servicio Médico Quirúrgico Especializadowww.veterinariasmqe.comPortal Virtual de Actualización Veterinariawww.pavet.com.mxInstituto Técnico Industrial No. 248Col. Sto. Tomás / C.P. 11340México DFT. (52) 55- 5342 1735 / (52) 55- 5396 4315

Descripción del Género Malassezia

El género Malassezia comprende 7 especies de levaduras que se han dividido en lípido-dependientes y no-lípido-dependientes.

Las levaduras lípido-dependientes requieren de la presencia de ácidos grasos de cadena larga en el medio de cultivo para poder crecer. Dentro de estas especies se encuentran Malassezia furfur, M. sympodialis, M. globosa, M. obtusa, M. restrica, M. slooffiae. Estas levaduras han sido aisladas de la piel normal del humano.

Las levaduras no-lípido-dependientes no requieren de ácidos grasos en los medios de cultivo para poder crecer. Actualmente M. pachydermatis es la única especie incluida en este grupo. A pesar de que M. pachydermatis es una especie no-lípido-dependiente, se ha observado que la adición de lípidos en el medio de cultivo, favorece su crecimiento por lo que es considerada como lipofílica.

Malassezia pachydermatis

Malassezia pachydermatis es una levadura pequeña de forma elipsoidal o de pequeño óvalo. La pared celular es muy gruesa y multiestratificada, sus

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componentes principales son azúcares (70%), proteínas (10%), lípidos (15-29%) y pequeñas cantidades de nitrógeno y azufre. Se reproduce de manera asexual por gemación unipolar de base amplia dando lugar a una imagen típica semejante a la de una huella de zapato o de un cacahuate. En el medio de cultivo Sabouraud-agar-dextrosa crece dando lugar a una colonia redondeada, convexa y amarillenta.

Bajo condiciones normales, el estrato córneo de la piel y el conducto auditivo del perro presentan pequeñas cantidades de Malassezia. Algunas proteínas de su pared celular como son las proteínas sensibles a la tripsina y las glicoproteínas, permiten su adherencia a los corneocitos.

En perros sanos es frecuente observar Malassezia en el canal auditivo, los labios, cuello, axilas, espacios interdigitales, las ingles, la región perineal, sacos anales, recto y vagina. No obstante, su frecuencia varía dependiendo del área muestreada.

En un estudio que realizamo en perros sanos, encontramos que el 75% de los perros muestreados presentaron Malassezia en la región labial; 65% en los espacios interdigitales; 54% en el conducto auditivo externo y 52% en la región perineal.

Mecanismos que Controlan las Poblaciones de Malassezia en la Piel

Existen mecanismos no específicos (fagocitosis por neutrófilos) y específicos (inmunidad celular) que controlan las poblaciones de Malassezia en la piel.

En el caso de los mecanismos específicos, las células de Langerhans presentan los antígenos de Malassezia a los linfocitos T. La activación de los linfocitos T provoca que éstos se multipliquen y produzcan linfocinas que estimulan la fagocitosis por los macrófagos y la multiplicación de las células basales de la epidermis. Ésto da como resultado la destrucción de las levaduras o su eliminación mecánica por descamación.

Patogénesis de la Dermatitis por Malassezia

En perros, la dermatitis por Malassezia tiene lugar cuando existe un sobrecrecimiento de levaduras o cuando se desarrolla una reacción de hipersensibilidad a éstas.

Varias alteraciones en el microclima cutáneo o en los mecanismos de defensa del hospedador, pueden promover el sobrecrecimiento de M. pachydermatis. Entre los factores cutáneos que favorecen la multiplicación de Malassezia se encuentran: el exceso o las modificaciones en la producción de grasa, exceso de humedad, pérdida de continuidad de la piel y la presencia de pliegues cutáneos Una vez que el sobrecrecimiento de Malassezia se ha establecido, las


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levaduras producen varias sustancias (proteasas, lipasas, lipo-oxigenasas, fosfatasas, fosfohidro-lasas, glucosidasas, galactosidasas y ureasa) que provocan proteolisis, lipólisis, altera-ciones en el pH, liberación de eicosanoides y activación del complemento, lo que contribuye con la patogénesis, la inflamación y el prurito que se presenta en la dermatitis por Malassezia.

Se cree que M. pachydermatis mantiene una relación simbiótica con S. intermedius, ya que estos microorganismos producen factores de crecimiento benéficos para ambos. Se ha visto que el 40% de los perros con dermatitis por Malassezia presentan también un pioderma concurrente.

Por otro lado, los antígenos de M. pachydermatis pueden ocasionar un estado de hipersensibilidad tipo I. Algunos estudios revelan que los niveles de IgG antígeno específicos son significativamente mayores en perros con dermatitis por Malassezia que los encontrados en perros sanos.

Además, se ha informado que el 30% de los perros con dermatitis seborreíca y el 100% de los perros atópicos con dermatitis por Malassezia, presentan reacciones positivas a M. pachydermatis en pruebas intradérmicas, mientras que en los perros no seborreícos y atópicos sin Malassezia, estas reacciones no se observan.

Causas

El 80% de los pacientes con dermatitis por Malassezia presentan una dermatosis concurrente.

En perros las causas primarias que predisponen a la presentación de dermatitis por Malassezia son: los procesos alérgicos (atopia), desórdenes de la queratinización (seborrea oleosa idiopática), la presencia de ectoparásitos (Demodex), las endocrinopatías (hipotiroidismo) y pioderma.

Manifestaciones Clínicas

La dermatitis por Malassezia es frecuente en perros. No existe predisposición por edad ni por sexo. A pesar de que puede afectar a cualquier raza algunas son más proclives a padecerla,entre éstas se encuentran West Highland White Terrier, Basset Hound, Dachshund, Shih-Tzu, Maltés, Cocker Saniel, Springer Spaniel, Poodle, Chihuahuai, Jack Russel Terrier, Setter Inglés, Pastor Alemán, Collie, Shetland y Shar-Pei.

En perros la dermatitis por Malassezia se observa principalmente en oídos, labios, espacios interdigitales, región ventral del cuello, región medial de muslos, axilas, región perineal y áreas de pliegues cutáneos.

El signo principal de infección por Malassezia es el prurito constante que puede ser de moderado a intenso. Al comienzo, el proceso puede cursar con


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eritema localizado en un área del cuerpo o generalizado. En casos crónicos puede existir alopecia, aspecto grasoso del pelo y la piel, descamación, liquenificación e hiperpigmentación cutánea. Cuando el problema es generalizado, los pacientes desprenden un olor desagradable.

Algunos perros tienen una presentación parecida a la dermatitis por contacto con un patrón de distribución perfectamente demarcado en las regiones ventrales de tórax y abdomen, mientras que otros pueden presentar una dermatitis pápulocostrosa.

Figura 1.- Eritema y alopecia en el espacio interdigital en un paciente con dermatitis por Malassezia.


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Figura 2.- Melanotriquia perioral en un paciente con dermatitis por Malassezia.

Figura 3.- Eritema, alopecia y liquenificación de la región axilar en un paciente con dermatitis por Malassezia.


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Figura 4.- Eritema, alopecia, liquenificación e hiperpigmentación de la región ventral del abdomen en un paciente con dermatitis por Malassezia.

Figura 5.- Eritema, alopecia y dermatitis papular en región cubital.

Diagnóstico

Los signos clínicos como prurito, eritema, la seborrea oleosa y el mal olor deben hacer sospechar de una dermatitis por Malassezia.


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En los estudios citológicos se pueden observar levaduras ovaladas o en forma de huella de zapato, y debido a la relación simbiótica que existe entre Malassezia y S. intermedius es frecuente encontrar infecciones mixtas.

Figura 6.- Malassezia pachydermatis. Levaduras en forma oval y la típica apariencia de suela de zapato.

Figura 7.- Malassezia pachydermatis en cantidad abundante.


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Figura 8.- Malassezia y cocos.

El número mínimo de levaduras que confirman la dermatitis por Malassezia no se conoce. Algunos autores consideran que debe haber un número elevado de levaduras para que exista la enfermedad mientrás que otros consideran que la sola presencia de unas cuantas es diagnóstica.

Podemos concluir que a pesar de que es verdad que mientras más alto sea el número de levaduras presentes, más alta la probabilidad de que tengan un rol patogénico en la dermatitis, un número pequeño de levaduras también puede causar consecuencias clínicas importantes.

La única forma de confirmar si Malassezia se ha convertido en un patógeno es a través de un ensayo terapéutico con Ketoconazol, Itraconazol o Fluoconazol por 2 semanas. Durante este período el paciente no debe recibir medicamentos glucocorticoides ya que éstos pueden confundir la interpretación de los resultados.

Si Malassezia es responsable de la dermatitis, el prurito disminuye en forma importante en la primera semana del ensayo y las lesiones cutáneas empiezan a resolverse en el transcurso de la segunda semana.

El cultivo micológico no representa ninguna ventaja sobre la citología por lo que no se recomienda como prueba diagnóstica.


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Tratamiento

El tratamiento para la dermatitis por Malassezia debe ser tópico y sistémico por un período de 1 a 2 meses, lo ideal es continuar con el tratamiento por 7 a 10 días después de la presentación de la cura clínica.

El tratamiento tópico consiste en baños con champúes que contengan Clorhexidina al 2.0-4.0% o Miconazol al 2%. Durante las primeras 2 semanas de tratamiento se recomienda realizar los baños de 2 a 3 veces por semana, posteriormente una vez por semana hasta la resolución del problema.

El fármaco que utilizamos con mayor frecuencia es el Ketoconazol con una dosis de 10 mg/kg cada 24 horas. Algunos autores han sugerido que el Ketoconazol a dosis de 5 mg/kg cada 24 horas también es efectivo.

El Itraconazol a dosis de 5 a 20 mg/kg cada 24 horas es efectivo. Existen reportes de que el Itraconazol a dosis de 5 mg/kg una vez al día, administrado dos días consecutivos por semana, tiene la misma eficacia que la administración diaria.

Otros fármacos que pueden ser utilizados son: Fluconazol a dosis de 2.5 a 5 mg/kg cada 24 horas y Terbinafina a 30 mg/kg cada 24 horas.

El uso de los glucocorticoides esta contraindicado, aún cuando exista prurito, ya que existe la posibilidad de ocasionar recaídas severas del cuadro clínico del paciente.

Referencia Bibliográfica

1.- De Buen de Agüero Nuria, Guzmán Becerril Mónica, Ordoñez Galindo Carlos Alberto , Chávez Gris Gilberto, Atlas de Dermatología en Perros y Gatos. Editorial Intermédica, Bayer, 2008.2.- Laboratorios Virbac México S.A. de C.V., Manual Clínico de Dermatología Canina, Tomo I 3.- Laboratorios Virbac México S.A. de C.V., Manual Clínico de Dermatología Canina, Tomo II4.- Laboratorios Virbac México S.A. de C.V., Manual Clínico de Dermatología Canina, Tomo III5.- Pérez Tort Gabriela, Sigal Escalada Gabriela, Demodicosis en Caninos y Felinos. Editorial Intermédica. Virbac Salud Animal. 2006.6.- Lowell Ackerman, DVM, Pet Skin and Haircoat Problems, Veterinary Learning Systems Co. Inc., 1993.7.- Scott Danny W. DVM, Miller William H VMD, Griffin Craig E. DVM, Dermatología en Pequeños Animales, Editorial Intermédica, Bayer, 2002.8.- Moriello KA. Treatment of dermatodhytosis in dogs and cats: review of published Studies Vet Dermatol. 2004.9.- Marsella R. Managing dogs with cronic atopic dermatitis. Compend Cont Educ Pract Vet. 2001.


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LUIS RAMÓN NOLASCO ESPINOSA MVZ, ESP, M EN [email protected]@yahoo.com(52) (55) 53 42 17 35

El Dr. Nolasco es egresado de la Facultad de Estudios Superiores Cuatitlán (FES-Cuautitlán). Realizó Internado, Residencia y Especialidad en Medicina y Cirugía en Perros y Gatos en el Hospital Veterinario de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Nacional Autónoma de México (FMVZ-UNAM). Efectúo estudios de Maestría en el área de Inmunología en la FMVZ-UNAM. Asimismo, ha realizado Estancias de Entrenamiento en Medicina Interna, Imagenología y Dermatología en Texas A&M University, Oklahoma State University y en el Cabinet de Dermatologie Vétérinaire en Burdeos, Francia.

Ha escrito varios artículos en el área de Dermatología y Endocrinología en revistas científicas y de difusión, y ha impartido cursos y seminarios en Dermatología y Endocrinología a nivel Nacional e Internacional. Desde 1991 a la fecha se ha desempeñado como docente en la FMVZ-UNAM, impartiendo cursos a nivel Licenciatura, Especialidad y Maestría.

Es creador del Portal Virtual de Actualización Veterinaria (PAVET) donde imparte el Diplomado en Línea de Dermatología en Perros y Gatos. www.pavet.com.mx

Cuenta con una Clínica Veterinaria de Referencia Dermatológica en la Ciudad de México, donde ofrece servicios de apoyo diagnóstico a médicos veterinarios como video-otoscopía, pruebas de alergia y soluciones de hiposensibilización para pacientes alérgicos. www.veterinariasmqe.com

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Revisión Médica Pequeñas Especies / Revista Electrónica No. 5 Dermatología / Vómitos, Hipoglucemia y Eritrocitosis Persistentes en un

Perro / Informe de un Caso

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LABORATORIO CLÍNICO

Vómitos, Hipoglucemia y Eritrocitosis Persistentes en un Perro Informe de un Caso

Ruiz RJAPráctica privada / Diagnóstico Veterinario Alhambra / MéxicoAcadémico del Depto. de Patología, Área Patología Clínica FMVZ-UNAM Coen AJPráctica Privada / Diagnóstico Veterinario Alhambra / MéxicoDiagnóstico Albéitar S.A. / Costa RicaMorales RGAPráctica Privada / Centro Veterinario Parque San Andrés / México

Resumen

Se reciben muestras para realizar estudios de hemograma y bioquímica de un perro con historia de vómitos, eritrocitosis e hipoglucemia. En ese primer estudio se confirman los hallazgos anteriores referidos de las pruebas rápidas realizadas; sin embargo, el estudio bioquímico no se puede completar por una marcada interferencia analítica causada por una hemólisis de 3+, la cual impide la determinación de electrolitos, entre otros analitos. Durante 10 días la eritrocitosis y la hipoglucemia se mantienen y en este período se realizan distintas pruebas complementarias (ultrasonido, aspirado de médula ósea y gasometría) sin que éstas den información importante para realizar el diagnóstico. El décimo primer día se realiza nuevamente un estudio bioquímico completo donde, sin interferencias analíticas, se determinan electrolitos y demás analitos, encontrándose alteraciones que en conjunto son muy sugerentes de hipoadrenocorticismo (hipoglucemia, hiperazotemia prerrenal, hipercalcemia, hipercaliemia, hiponatremia y relación Na:K de 13.68). Se instaura tratamiento con terapia de líquidos y esteroides por vía parenteral; 48 horas después de iniciar este tratamiento la



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eritrocitosis y la hipoglucemia, así como la mayoría de las demás alteraciones, ya no están presentes. La paciente se ha mantenido estable desde el establecimiento del tratamiento para manejar el hipoadrenocorticismo.

Palabras Clave: hipoadrenocorticismo, enfermedad de Addison, hipercaliemia, relación Na:K, hipoglucemia

Caso Clínico

Se reciben muestras de sangre para realizar un hemograma y una bioquímica completa. Las muestras son de un perro doméstico, Beagle, hembra castrada de 6 años (Figura 1); con anamnésis de depresión, vómitos, membranas mucosas hiperémicas (Figura 2), deshidratación subclínica, dolor en abdomen craneal y con valores de pruebas sanguíneas rápidas como son: hematocrito de 0.75 L/L y glucemia de 1.88 mmol/L.

Figura 1.- “Daika” paciente con diagnóstico de hipoadrenocorticismo (síndrome de adisson).



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Figura 2.- Imagen en donde se muestran las membranas mucosas hiperémicas en la paciente mencionada.

Estudios de Laboratorio



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Tabla 1



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Tabla 2



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Poco tiempo después de colectadas las muestras, la paciente se hospitaliza y presenta una evacuación pastosa con melena y sangre semidigerida, además de presentar también hematemésis. Debido a lo anterior y a los resultados obtenidos de las pruebas sanguíneas rápidas y de laboratorio, se implementa tratamiento con terapia de líquidos por vía parenteral con sol.de NaCl 0.9% con glucosa al 5% (ajustándose la terapia según el porcentaje de deshidratación estimado de la paciente), y con la administración de Metronidazol, Ampicilina, Omeprazol y Sucralfato.

Una vez hospitalizada presenta una parcial respuesta al tratamiento, manteniéndose la eritrocitosis en hematocritos posteriores realizados como control intrahospitalario y en un hemograma realizado dos días después de instaurado el tratamiento, en el que también se encuentra una hipoproteinemia (48g/L) asociada a pérdidas y hemodilución. Por esta razón, se sospecha de una eritrocitosis absoluta y se solicita un aspirado y evaluación de médula ósea (figura 3), así como una gasometría, las cuales se programan para realizarse el quinto día de hospitalización. En el aspirado de médula ósea no se encuentra ninguna alteración observándose una relación granulocítica:eritrocítica de 0.93 con una adecuada secuencia de maduración en ambas líneas celulares (Figura 4).

En el hemograma realizado para complementar la evaluación de médula ósea, se mantiene la presencia de la eritrocitosis (0.59 L/L) y la hipoproteinemia (54 g/L). En la gasometría, más allá de una ligera acidosis metabólica (HCO3 en 15 mmol/L), tampoco se presentan alteraciones que permitan avanzar en el diagnóstico. Cabe destacar que el cartucho utilizado para realizar la gasometría (i STAT CG4+®) no cuenta con posibilidad de evaluar electrolitos (Na+,K+ y Cl) ni glucosa. Al concluir las pruebas anteriores, se le realiza una sangría retirándose una unidad de sangre (450 mL aproximadamente). Entre el sexto y el décimo día de hospitalización la paciente se mantiene estable, ligeramente deprimida y con presencia de vómitos y melenas eventuales.

Continúa el tratamiento, la determinación periódica intrahospitalaria del hematocrito (manteniéndose éste en un rango entre 0.60 y 0.62 L/L) y de la glucemia (persiste la hipoglucemia en un rango cercano a los 2 mmol/L) y se realizan también otras pruebas complementarias (ultrasonido cardiaco y abdominal) sin avanzar en el diagnóstico. El décimo día se cambia la terapia de líquidos de solución 1x1, a terapia de mantenimiento pero la paciente se mantiene deprimida, con mucosas hiperémicas y presenta un episodio de vómito y melena. Llama la atención la frecuencia y cantidad de orina producida, considerada como excesiva, sin que se determine cuantitativamente la cantidad de la misma. El décimo primer día se mantienen el tratamiento y las alteraciones mencionadas; se colectan muestras de sangre para realizar determinaciones intrahospitalarias de hematocrito (0.66 L/L) así como de glucemia (2.44 mmol/L) y para enviar al laboratorio clínico, solicitándose también un perfil bioquímico completo de control:



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Figura 3.- Realización del aspirado de médula ósea en el fémur del miembro pélvico derecho.

Figura 4.- Citología del aspirado de médula ósea en donde no se observa ninguna alteración aparente.



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Tabla 3



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Una vez obtenidos y comunicados estos resultados se cambia la terapia de líquidos nuevamente de NaCl al 0.9% a terapia de mantenimiento + 7% de deshidratación y se administra también un bolo de Hemisuccinato de Hidrocortisona a dosis de 6 mg/kg. Después de esta primera administración de Hemisuccinato de Hidrocortisona se administran bolos del medicamento a dosis de 1mg/kg cada 6 horas. A las 24 horas de iniciar el tratamiento anterior, la paciente muestra una mejoría y tanto el hematocrito (0.55 L/L) como la glucemia (4.48 mmol/L) se encuentran ya dentro de los rangos de referencia. A las 48 horas del tratamiento con NaCl e Hidrocortisona se reciben muestras en el laboratorio para realizar hemograma y perfil bioquímico completo. En estos estudios las únicas alteraciones relevantes encontradas son una neutrofilia madura por efecto de esteroides en el hemograma y en el estudio bioquímico una hipoproteinemia por hipoalbuminemia, relacionada a la hemodilución y a pérdidas con disminución de valor en la relación A/G por la inflamación crónica y la acidosis metabólica hiperclorémica ligera.

La paciente se ha mantenido estable con ligeras variaciones en sus estudios de control realizados desde el momento del diagnóstico y de la implementación del tratamiento, al que poco después se agregó la administración de Fluodrocortisona y posteriormente de Pivalato de Desoxicorticosterona.

Discusión

El diagnóstico de hipoadrenocorticismo se basa en la mayoría de las ocasiones en el hallazgo de alteraciones electrolíticas (hipercaliemia, hiponatremia e hipocloremia), y en la presencia de signos clínicos relacionados con estas alteraciones, en la relación Na:K y, en los casos en que éstas estén disponibles en pruebas dignósticas específicas como la determinación de cortisol después de la estimulación con ACTH.1,2,3,4

En el caso aquí presentado, la importancia de contar con la determinación de los electrolitos y en particular con los del Na, el K, y su relación, para realizar el diagnóstico de esta enfermedad queda de manifiesto. Dentro de esta relación, el primer punto de corte sugerente de la presencia de esta enfermedad es un valor por debajo de 27.1,2,3,4 Un valor por debajo de 20 será mucho más específico que el anterior1 y un valor de la relación Na:K de 15 o menor es mencionado por algunos autores como el punto de corte aún más específico2. Hay que tomar en cuenta que además existen diferentes entidades patológicas que podrán generar una disminución en la relación Na:K (por ej .uroabdomen,2,3,4 insuficiencia renal,1,2,3,4 enfermedades gastrointestinales severas,1,2,3,4 Trichuriasis,2,3 gestación1,2 y tratamiento con inhibidores de la ECA1 entre las más comunes) y es por esta razón que habrá que descartar la presencia de éstas siempre que encontremos dicha relación disminuida; tomando en cuenta que mientras más disminuida se encuentre dicha relación, tendremos mayor confianza en sugerir al



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hipoadrenocorticismo como el principal diagnóstico diferencial. Otras alteraciones en el estudio bioquímico como lo son hipoglucemia, hiperazotemia prerrenal, hipercalcemia y acidosis metabólica, también presentes en este caso, serán un indicativo más para sugerir la existencia de esta enfermedad.1,3,4 En el hemograma es común no encontrar alteraciones;1

sin embargo, las alteraciones que se suelen relacionar con casos de hipoadrenocorticismo son anemia, linfocitosis y eosinofilia.1,3,4

En el presente caso, llama la atención la eritrocitosis relativa persistente qué, aunque no se menciona frecuentemente en la literatura como un hallazgo esperado en casos de hipoadrenocorticismo, en experiencia de los autores no es en el único caso de un paciente con signos y alteraciones de laboratorio compatibles con hipoadrenocorticismo en el que se presenta la eritrocitosis, por lo que habrá que tomar en cuenta esta posibilidad. El urianálisis no es de utilidad para el diagnóstico de hipoadrenocorticismo ní para distinguir entre éste e insuficiencia renal.1 Muchas veces la confirmación del diagnóstico se da por una adecuada respuesta al tratamiento para hipoadrenocorticismo; si bien lo anterior no es lo más adecuado, en nuestro medio no se cuenta comúnmente con la posibilidad de realizar las pruebas de laboratorio validadas para el diagnóstico. Los pacientes con esta enfermedad una vez diagnosticados y tratados médicamente deben evaluarse periódicamente, determinando los electrolitos en un principio cada semana durante el primer mes, después cada mes y una vez estabilizados los pacientes cada 3 meses.1,2

Conclusiones

Si bien la determinación de electrolitos y la relación Na:K son un apoyo importante para el diagnóstico y seguimiento de los pacientes con hipoadrenocorticismo, será importante en el futuro contar en nuestro medio con las pruebas de laboratorio específicas para su diagnóstico, siendo éstas, en primer lugar la determinación de cortisol después de la estimulación con ACTH y en un segundo plano, la determinación de aldosterona. Lo anterior dependerá de algunos factores como la disponibilidad en el mercado de ciertos fármacos (ej. ACTH), de la validación de las pruebas diagnósticas por parte de los laboratorios, y también de la demanda para la realización de estas pruebas que los clínicos hagan a los mismos laboratorios.

Referencias Bibliográficas

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Revisión Médica Pequeñas Especies / Revista Electrónica No. 2 Animales Exóticos / Biología y Mantenimiento en Cautiverio de Tarantulas

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ANIMALES EXÓTICOS

Biología y Mantenimiento en Cautiverio de Tarántulas

MVZ Ricardo Itzcóatl Maldonado ReséndizDra. Dulce María Brousset Hernández-JáureguiDepartamento de EtologíaFauna Silvestre y Animales de LaboratorioFacultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Ciudad Universitaria, UNAM. Tels: (52) 55-5622-5941 y 42Hospital Veterinario de Especialidades Bruselas, S.C.Bruselas #79, Colonia Del Carmen, Delegación Coyoacán, Distrito Federal, CP 04100,Tels: (52) 55-5659-4278 y (52) 55-5659-1043MVZ Iru Ricardo Montaño PérezTarántulas MX. Unidad de Manejo y Aprovechamiento de Fauna Silvestre Especializada en la Conservación, Exhibición y Divulgación sobre Tarántulas, Serpientes y Varanos

Introducción

Diversas son las sensaciones que experimenta mucha gente al escuchar algo sobre tarántulas, sin embargo, gran parte de las mismas se asocian a la falta de conocimiento sobre la naturaleza de estos animales.

Las tarántulas controlan poblaciones de otras especies que pueden ser dañinas para el hombre y, sin embargo, éste las mata e invade su hábitat por creerlas malas.


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Su mundo es diferente al del resto de los animales que comúnmente conocemos, pero su adaptación al medio que les rodea y sus mecanismos de sobrevivencia, las han colocado como uno de los depredadores más eficaces del mundo animal.

México cuenta con una gran riqueza y diversidad de tarántulas, lo cual nos obliga a aprender más sobre ellas. Por otra parte, en algunos países principalmente europeos, donde se conoce de la bondad de mantener a las tarántulas como animales de compañía han provocado la existencia del tráfico ilegal de ejemplares nacionales, situación que ha llevado a varias especies a estar catalogadas como amenazadas de extinción, inclusive varias de ellas, están dentro de la Convención Sobre el Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestres (CITES) y en algunos de los países de origen también se encuentran clasificadas en alguna de las categorías de especies en riesgo de extinción.

Desafortunadamente en nuestro país se adquieren tarántulas sin el más mínimo conocimiento sobre sus cuidados y necesidades básicas, así mismo, cuando algún ejemplar presenta problemas de salud o algún comportamiento que parezca “raro” al dueño, acuden al Médico Veterinario de Pequeñas Especies, quien rara vez se encuentra capacitado para brindar una correcta orientación y diagnóstico del ejemplar afectado. (Figura 1)

Figura 1.- Cada vez son más comunes las tarántulas mantenidas como animales de compañía y por lo tanto también es más común encontrarlas en la consulta veterinaria diaria

Taxonomía

Existen algunos problemas para la utilización de la palabra invertebrado, de inicio, el grupo no existe de manera taxonómica, sin embargo, continúa usándose debido a que, aunque es inexacto, es útil.


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Los invertebrados se definen mejor por exclusión de los vertebrados. Una solución para el dilema de su definición, es el hecho de que son animales sin huesos ni columna vertebral. Esta definición los confina al mundo animal, pero los excluye de los vertebrados.

Los invertebrados que se mantienen con mayor frecuencia en cautiverio corresponden al Phylum Arthropoda (que abarca al gran grupo de especies con patas articuladas, cuerpo segmentado y un esqueleto externo duro); sin embargo, algunas de las colecciones de invertebrados incluyen también representantes acuáticos y marinos.

El Phylum Arthropoda, es el más numeroso, ya que se conocen alrededor de un millón de especies. Se les encuentra en la mayor diversidad de hábitats y han desarrollado todo un universo de estrategias como ciclos de vida. Este Phylum se divide a su vez en 6 ó 7 diferentes clases.

La Clase Arachnida incluye alrededor de 70,000 especies diferentes, entre las que se encuentran las arañas (que representan más del 80% del grupo), alacranes, ácaros y garrapatas.

La mayoría de los arácnidos son terrestres y carnívoros. Su cuerpo consta de dos segmentos y algunos grupos poseen herramientas especializadas (como la producción de veneno) para capturar a sus presas. En algunas especies de arañas y escorpiones, el veneno puede ser tóxico para los humanos. Otras especies de arácnidos, como lo son las garrapatas y los ácaros, han evolucionado para vivir como parásitos de otras especies de vertebrados.

La Clase Arachnida comprende 11 grupos: (Figura 2)• Acari• Amblypygi • Araneae• Opiniones • Palpigrada• Ricinulei • Pseudoescorpiones• Schizomida • Scorpiones• Solifugae • Uropygi


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Figura 2.- Clasificación taxonómica y ejemplificación de la Clase Arachnida.

La clasificación taxonómica del grupo de las tarántulas se describe de la siguiente manera:Phylum: ArthropodaSubphylum: ChelicerataClase: ArachnidaÓrden: AraneaeInfraórden: Mygalomorphae

En América se denomina tarántulas a las Mygalomorphas; mientras que en Europa éste término se reserva para la especie Lycosa tarentula, la cual pertenece al subórden Araneomorphae. El nombre que se le da a una especie varía mucho entre la literatura científica, la popular y los utilizados por la industria de los animales de compañía; por lo cual es crucial la identificación de la especie y el nombre científico de la misma.


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Existen en todo el orbe alrededor de 800 especies de tarántulas y se cree que apenas se ha descrito la mitad del número total que existe. Se encuentran en todo tipo de hábitat, desde desiertos hasta selvas tropicales, el único Continente que tan sólo cuenta con 4 especies de tarántulas es Europa. Por otra parte, México, ocupa el segundo lugar en cuanto a la diversidad con aproximadamente 65 especies, encóntrandose solo después de Brasil que tiene un mayor número.

Anatomía y Fisiología

El cuerpo se divide en dos grandes segmentos, el anterior llamado prosoma y el posterior, conocido como opistosoma. (Figura 3) En el prosoma se articulan los cuatro pares de patas, los pedipalpos y los quelíceros o colmillos, en la parte dorsal están los ocho ojos agrupados en una pequeña protuberancia. (Figura 4)

En el opistosoma se pueden ver los espiráculos en la región ventral, las hileras dirigidas hacia la parte caudal e internamente la mayoría de los órganos y sistemas que le dan funcionamiento vital a la tarántula.

Figura 3.- Anatomía externa de una tarántula.


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Figura 4.- La flecha muestra la agrupación de los ojos en la superficie anterior del prosoma.

Exoesqueleto

Las tarántulas poseen una especie de armadura llamada exoesqueleto, que les da soporte, fuerza y consistencia. Éste está compuesto de quitina, esclerotina (le brinda dureza) y una capa cerosa que evita la pérdida de la humedad. (Figura 5)


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Figura 5.- Las tarántulas poseen un exoesqueleto que les brinda protección.

Este exoesqueleto tiene una elasticidad limitada para el crecimiento por lo que cada cierto tiempo tiene que cambiarlo, entre más joven es el individuo, más cambios de exoesqueleto hará, este proceso es conocido como muda o ecdisis. Una tarántula muda en promedio 2 veces al año y es un proceso que requiere de una humedad ambiental alta.

El cambio de la cutícula ocurre a una velocidad variable, desde dos veces al año hasta cada dos años. Se reemplaza con una cutícula nueva suave que permite el crecimiento del individuo hasta que se endurece. Durante el periodo de muda y el endurecimiento de la cutícula, el ejemplar es muy vulnerable por lo que no debe ser manejado. El proceso de la muda es más fácil y rápido en los animales más jóvenes.

El primer signo de que la ecdisis se acerca es el cambio de color de la tarántula por uno más oscuro, después el animal deja de comer, busca un lugar protegido, puede fabricar una gran cantidad de seda y deja de moverse.


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Durante este periodo, se secreta la nueva cutícula por debajo de la antigua y también se reabsorbe parte de la antigua cutícula.

La ecdisis es inducida por una hormona, la ecdisona. El proceso comienza por una pequeña hendidura cerca del esternón y los movimientos de la tarántula van ampliando la apertura de la cutícula en el opistosoma. Los siguientes movimientos le permiten liberar los miembros.

La ecdisis se facilita por la presencia de un fluido entre la nueva y la vieja cutícula y este líquido se reabsorbe justo antes de que se forme la primera hendidura, lo que permite que ese espacio se llene de aire. Cuando la tarántula termina de mudar permanece en reposo para permitir que la nueva cutícula se amplíe lo más posible; mientras que continúa flexionando y extendiendo los miembros para mantener viables las articulaciones durante el proceso de endurecimiento de la cutícula.

La ecdisis puede tardar de una a varias horas y no es necesario intervenir para “ayudar” a la tarántula, ya que cualquier movimiento brusco le puede causar lesiones o provocar la muerte del animal.

Los machos no vuelven a mudar una vez que alcanzan la madurez sexual; mientras que las hembras si pueden seguir haciéndolo y crecer a lo largo de toda su vida.

Sistema Locomotor

Tienen más de 30 músculos en cada pata, la mayoría de ellos, unidos al exoesqueleto, otros músculos ayudan a la contracción de la bomba estomacal y al movimiento de los quelíceros. Su sistema de locomoción es hidráulico, se basa en la presión de la hemolinfa, de ahí que en general el movimiento sea lento, puede realizar desplazamientos rápidos, pero por períodos cortos.

Sistema Circulatorio

En lugar de sangre, poseen un fluido azul grisáceo, de textura viscosa llamado hemolinfa, el color se debe a que en vez de hierro, posee cobre como molécula esencial (hemocianina). La hemocianina transporta una cantidad muy baja de oxígeno, por lo que las tarántulas se encuentran inactivas la mayor parte del tiempo.

La cantidad de hemolinfa presente en el interior de la tarántula, es de aproximadamente un 20% de su peso corporal, ésto se debe a que el


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movimiento de sus patas funciona a base de presión hidraúlica y por lo tanto, depende de la cantidad de hemolinfa.

El corazón se encuentra en la parte superior del opistosoma (Figura 6), es largo y tubular, tiene 4 pares de aberturas llamadas ostias que actúan como válvulas. Está cubierto por el pericardio que ayuda a circular la hemolinfa hacia los filtros pulmonares para liberar el bióxido de carbono y recoger el oxígeno que transporta luego al resto del cuerpo.

Figura 6.- Esquematización del sistema circulatorio de una tarántula.

Sistema Nervioso

El cerebro de una tarántula está compuesto por 2 ganglios: el supraesofágico que recibe información de los nervios ópticos y sensoriales y, el subesofágico que rige las funciones motoras, las autónomas y los reflejos.

A cada uno de los 8 ojos simples (llamados ocelos) se conectan los nervios ópticos, aunque hay que mencionar que la visión de las tarántulas es prácticamente nula y solo son capaces de diferenciar entre el día y la noche.

Aparato Digestivo


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El veneno de las tarántulas es una mezcla de enzimas que tienen como propósito iniciar y facilitar la digestión del alimento. Las enzimas son inyectadas en el interior de las presas con un par de colmillos (Figura 7) y prácticamente deshacen todo lo que encuentran.

Figura 7.- Colmillos de una tarántula.

Una vez inyectado el veneno, la tarántula inicia un proceso de masticación con la base de los quelíceros y la base de los pedipalpos. Al mismo tiempo libera fluidos de las glándulas palpales, que diluyen a la presa y la convierten en un “licuado” que posteriormente filtra en la boca y la faringe. La boca de la tarántula se compone de un labium (labio inferior) y un labrum (labio superior). Desde la boca se extiende horizontalmente la faringe y ésta se conecta con un músculo llamado bomba estomacal, el cual a su vez se conecta al estómago verdadero. (Figura 8)

La excreción se efectúa por las glándulas coxales y los túbulos de Malpigi. El ano se abre en la parte posterior del cuerpo.


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Figura 8.- Esquematización del aparato digestivo y el sistema venenoso de una tarántula.

Aparato Respiratorio

El intercambio de gases se lleva a cabo por 4 filtros o espiráculos respiratorios. Estos filtros se encuentran en la parte ventral del opistosoma. (Figura 9) Cada filtro consta de varias cámaras en las que ingresa la hemolinfa proveniente del cuerpo para realizar el intercambio de bióxido de carbono por oxígeno y de ahí ésta va directo al corazón para ser llevada nuevamente al resto del cuerpo.


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Figura 9.- Filtros pulmonares o espiráculos, en este ejemplar se distinguen los anteriores debido al tono de color claro de la zona.

Aparato Reproductor

Las tarántulas tienen dimorfismo sexual hasta que llegan a la madurez entre el 4º y 5º año de vida. Los machos desarrollan una estructura llamada espolón tibial (Figura 10) presente en el primer par de patas, así como el desarrollo de émbolos palpales que servirán para inocular el semen en la hembra. El exoesqueleto o muda también nos puede ayudar a diferenciar entre machos y hembras, en la muda de ésta última, se puede apreciar en el piso del abdomen una pequeña pestaña que corresponde a la espermateca, en los machos, el piso del abdomen es plano.

La espermateca es el lugar donde la hembra conserva el esperma mientras decide el momento preciso para procrear.

Figura 10.- Espolón tibial que desarrollan los machos al llegar a la madurez sexual.

Percepción Sensorial

Las tarántulas en los pedipalpos y en los segmentos finales de las patas tienen órganos tarsales que contienen quimiorreceptores, que les permiten detectar agua y alimento. También el pelo que está presente en la porción distal de los miembros le proporciona información al sentido del gusto. (Figura11)


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Figura 11.- Las porciones distales de los miembros están cubiertas de pelos que brindan información del sentido del gusto.

Todo el cuerpo de la tarántula está cubierto de pelos táctiles (Figura 12) que reaccionan al movimiento de manera independiente. Los tricobotrias son pelos finos que emergen de una membrana en puntos específicos en la cutícula y se localizan en ciertos segmentos de las patas. Éstos se pueden mover en cualquier dirección y están inervados por algunas terminaciones nerviosas, de manera que pueden detectar la dirección del movimiento y percibir el más pequeño desplazamiento del aire a su alrededor.

Sobre la cutícula existen también sensores que perciben cambios en la tensión cuando la tarántula se mueve, o por efecto de las vibraciones del medio ambiente y la gravedad. Se ha sugerido que presentan también termoreceptores, pero éstos no han sido identificados anatómicamente.

Figura 12.- Todo el cuerpo de la tarántula se encuentra cubierto por pelos táctiles.

Seda

La seda o telaraña de la tarántula no sirve para atrapar o retener presas, sin embargo, funciona como los rayos infrarrojos capaces de detectar hasta el más


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mínimo movimiento, además de transmitir a la tarántula información como dirección, peso, distancia y hasta tipo de presa o las señales que algún macho envíe como intento de cortejo.

La seda se origina en las hileras (Figura 13) que tienen la apariencia de pequeños aguijones, en la base de éstas e internamente, se encuentran las glándulas de la seda, la sustancia que desarrolla cada glándula es específica para la misma, dando como resultado hasta 5 ó 6 tipos de seda distinta de acuerdo a lo que la tarántula necesite: hilo guía, seda territorial, para constituír el ovisaco, etc. En el interior de la tarántula la seda es líquida y una vez que ha hecho contacto con el medio ambiente, se solidifica.

Figura 13.- Posición de las hileras por las cuales es excretada la seda.Pelos Urticantes

El mejor sistema de defensa que poseen las tarántulas del Nuevo Mundo consiste en un “parche” de pelos modificados a los que se les denomina pelos urticantes, estos pelos se encuentran en el dorso del opistosoma de las tarántulas y son fácilmente distinguibles ya que presentan otra tonalidad. (Figura 14) El tamaño y posición del parche varía en cada género y especie de tarántula.

Existen de manera general, 6 tipos de pelos urticantes, útiles para la descripción taxonómica. Estos pelos tienen forma de diminutos arpones con múltiples puntas, las que por acción mecánica penetran en la piel causando gran irritación.


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Figura 14.- Localización del parche de pelos urticantes en la región dorsal del opistosoma, nótese el área de alopecia asociada al mismo.

Comportamiento

Las tarántulas son animales solitarios, excepto al momento de la cópula. Son muy territoriales y pueden ser caníbales de otros individuos. Todas las tarántulas son de hábitos nocturnos y se alimentan en ese horario. Los machos maduros se vuelven más agresivos durante la época reproductiva.

a).- Conducta reproductiva de los machos:Aproximadamente dos semanas después de la última muda, el macho fabricará una seda o telaraña para el semen, que consiste en una capa fina que cuelga cerca del piso. Recostado sobre su espalda, el macho se coloca entre la seda y el piso y en esta posición deposita una gota de semen; posteriormente se mueve para quedar sobre la seda, manipula el semen con sus pedipalpos y lo colecta en su cymbium. A este proceso se le denomina inducción espermática y puede tardar hasta tres horas. Después de este proceso el macho destruye la seda. que produjo para el semen

Durante la noche el macho saldrá en busca de una hembra. Los pelos quimiotácticos de sus patas detectarán las feromonas características de las hembras de su especie y cuando encuentra una, él golpea suavemente alrededor de la entrada de su madriguera para que la hembra emerja.

Ésta se parará sobre sus patas traseras, de manera que sus colmillos queden expuestos y el macho pueda colocarlos por detrás del apéndice tibial que desarrolló en su primer par de patas. El macho se coloca por debajo de la


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hembra y deposita el esperma en el poro genital de ella. El semen puede ser guardado en la espermateca de la hembra hasta que sea necesario para la fertilización de los huevos, entre 6 meses y un año dependiendo de la especie.

La cópula generalmente tarda alrededor de un minuto y al terminar el macho se aleja rápidamente.

b).- Conducta reproductiva de la hembra:Se requieren condiciones óptimas para que exista la reproducción exitosa en cautiverio: un macho con semen fresco en sus pedipalpos y una hembra bien alimentada y que haya mudado recientemente. Si la hembra es sobrealimentada, ella mudará muy pronto después de la monta y perderá el semen almacenado en la espermateca, junto con el exoesqueleto eliminado.

Poco tiempo después de la monta, la hembra fabricará una pequeña seda, depositará los huevos en ella y colocará el semen sobre ellos. Entonces fabricará una segunda seda, para cubrir los huevos y las unirá para formar un capullo o saco ovígero y durante un período promedio de 50 días, se desarrollan las tarántulas que brotarán del saco y tendrán una apariencia casi transparente. Dependiendo de la especie, el saco ovígero puede ser escondido dentro de la madriguera o la tarántula puede llevarlo con ella, en cualquiera de las dos situaciones la hembra cuida celosamente el saco, cuando nacen las crías, éstas permanecen al lado de la hembra unos 15 días, iniciando posteriormente una migración de la que aún se conoce muy poco. Si alguna cría queda cerca de la madre, puede ser confundida por la misma con un alimento.

El número de huevos por saco ovígero y el número de sacos producidos por temporada reproductiva depende de la especie de que se trate.

Si el saco ovígero se infecta (generalmente debido al exceso de humedad en el ambiente) o la tarántula es estresada o molestada, ésta puede comerse el saco ovígero. Las hembras no comen durante el período en el que cuidan al saco.

Tamaño y Esperanza de Vida

“Legspan” es el término utilizado internacionalmente para referirse a la medida o el tamaño de una tarántula, se toma de la punta de la pata delantera al extremo de la pata trasera del lado contrario cuando la tarántula se encuentra en posición de reposo. (Figura 15)

Las hembras tienen un promedio de vida de 25 años, mientras que los machos sólo llegan a vivir aproximadamente de 4 a 6 años. El año de madurez sexual en el macho es por regla general, su último año de vida.


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Figura 15.- “Legspan” o longitud de una tarántula.

Mantenimiento en Cautiverio

Terrario

Las tarántulas son animales solitarios y con comportamiento caníbalístico por lo que es importante recordar que se debe mantener solo un ejemplar por terrario.

Es útil conocer los hábitos de las tarántulas que de manera general se clasifican en 3 tipos:

• ARBORÍCOLAS. Especies que viven en la corteza o en la copa de los árboles, tienden a fabricar mucha seda y son sumamente ágiles. Géneros de éste tipo son: Avicularia y Poecilotheria. (Figura 16)

• TERRESTRES AMERICANAS. Ejemplares que aprovechan cualquier oquedad en el ambiente o excavan una madriguera y que solo “marcan” su territorio tejiendo seda alrededor de la entrada a la misma. Géneros como Brachypelma (Figura 17), Grammostola y Theraphosa pertenecen a esta clasificación.

• TERRESTRES AFRICANAS Y ASIÁTICAS. Por lo general excavan sus propias madrigueras, tejen tal cantidad de seda que en ocasiones es imposible distinguir a la tarántula a través de la seda. Ejemplo de éstas tarántulas son los géneros: Haplopelma, Pterinochilus y Citharischius.


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Figura 16.- Ejemplar del género Poecilotheria sp.

Figura 17.- Ejemplar de Brachypelma klaasi.

No se ha definido aún el espacio mínimo ideal para la tarántulas, pero en base a sus características de comportamiento, necesidades básicas y el tamaño del ejemplar se recomienda el uso del siguiente cuadro:


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Tabla 1.- Requerimientos mínimos de espacio de acuerdo a los hábitos de cada tarántula.

El sustrato que se debe utilizar para cualquier tarántula es el Peat Moss (Figura 18) mezclado con fibra de coco, mismo que debe mantenerse en buenas condiciones de humedad, en el caso de las especies arborícolas, se les debe proporcionar un tronco, artificial de preferencia en el terrario, para evitar la presencia de hongos.


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Figura 18.- Albergue de tarántula con sustrato a base de Peat Moss.

Un bebedero con agua limpia (Figura 19), algún objeto que sirva de madriguera (una pequeña caja, nido, etc) y con una tapa a prueba de fugas (debe cerrar perfectamente).

El terrario debe colocarse en un lugar donde no le de la luz directa del sol, que estén lejos de aparatos tales como radio, televisión, etc., ya que las vibraciones causan estrés en las tarántulas. La limpieza del terrario consiste en retirar los sobrantes de alimento que son fácilmente identificables, ya que tienen la apariencia de un chicle masticado. No se debe mover o cambiar el sustrato, ya que la seda producida por la tarántula posee propiedades antibióticas y antisépticas que le brindan una barrera contra ataques de diversos microorganismos.

Figura 19.- Contrario a lo que muchas personas piensan, las tarántulas necesitan y deben de tener un contenedor con agua limpia para poder beber.

Temperatura y Humedad

El rango de temperatura en la que se debe mantener a las tarántulas va de los 24 a los 28°C, ésto se puede lograr colocando una placa térmica bajo el terrario o pegado a una de las paredes del mismo. No es recomendable el uso de focos, ya que algunas tarántulas tienden a trepar corriendo el riesgo de quemarse.

Por otra parte, la humedad se proporciona rociando el terrario con agua tibia, se recomienda dejar seca la mitad del terrario y la otra mitad humedecerla completamente, de esta manera, la tarántula utilizará la zona del terrario que más le convenga. El rociado del terrario debe hacerse al menos una vez por semana, teniendo cuidado de no rociar directamente al ejemplar.


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El terrario debe contar con una buena ventilación ya que los hongos son el principal enemigo de las tarántulas mantenidas en cautiverio.

Alimentación

Las tarántulas son depredadoras, no carroñeras, por lo tanto, no se debe alimentar a los ejemplares con pedazos de carne como tradicionalmente se ha realizado (hígado o corazón de pollo por ejemplo).

Se alimentan principalmente de insectos con la posibilidad de poder incluir en su dieta pequeños roedores (Figura 20), reptiles, otras tarántulas e incluso aves. Con estas consideraciones y basados en lo que comercialmente se puede adquirir, la alimentación de las tarántulas en cautiverio se basa en 3 tipos de comida: grillos, cucarachas (Figura 21) y ratones (de cualquier edad).

Figura 20.- Tarántula alimentándose de un ratón.

Figura 21.- Tarántula alimentándose de una cucaracha de Madagascar.


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Entre más pequeño sea el alimento, más continua debe ser la alimentación, por ejemplo, si se ofrecen grillos (2 ó 3) hacerlo cada semana, si se ofrece un ratón lactante o juvenil, la próxima alimentación se realizará hasta las 3 semanas posteriores. Las presas se deben ofrecer vivas y se recomienda que si después de 24 hrs. la tarántula no se ha alimentado, hay que retirar a las presas proporcionadas.

Ésto se debe a que en ocasiones, la presa se convierte en depredador y puede lesionar a la tarántula, e incluso matarla, situación común cuando la tarántula está por mudar, deja de alimentarse y se vuelve susceptible a los ataques por la debilidad que le produce el esfuerzo del proceso de ecdisis. Tampoco es recomendable la alimentación con Tenebrios o Zoophobas a menos que se esté al pendiente que la tarántula agarre en el momento a la presa, el motivo de ésto es porque estos gusanos se entierran y quedan ocultos a nuestra vista con la posibilidad de permanecer ahí y cuando la tarántula llegue a la época de muda, emerja por debajo de ella y la mate.

Manejo y Temperamento de las Tarántulas

Las tarántulas son animales que se encuentran ubicados dentro de su pequeño mundo en el tope de la cadena alimenticia, son pocos sus enemigos naturales, además de que cuentan con mecanismos eficaces para su defensa. Estos mecanismos son:

a. Pelos Urticantes. Que se encuentran en la parte dorsal del opistosoma (abdomen) de las especies del Nuevo Mundo, estos pelos son modificaciones del resto de pelos que cubren a la tarántula, su forma es lo que los hace tan irritantes para piel y mucosas, de esta manera cuando la tarántula se siente agredida, apunta el opistosoma hacia lo que considere como enemigo y frotará con su último par de patas esta zona de pelos urticantes, los cuáles se desprenden con facilidad y con ayuda del aire, se desplazarán hasta dar en el objetivo. El resultado es una intensa comezón que durará solo algunos minutos (dependiendo de la sensibilidad de cada persona), pero en algunas personas puede mantenerse el prurito intenso hasta por 14 días y hasta desarrollar una dermatitis papular con edema.b. Velocidad. Característica principal de las especies arborícolas y de todas las especies africanas y asiáticas, sus movimientos a simple vista parecen ser lentos y hasta torpes, pero cuando se trata de defenderse, su velocidad es increíble, en segundos podemos perderlas de vista, pues además, tienen también la capacidad de adherirse a casi todo tipo de superficies. Esta característica se agudiza si hacemos movimientos bruscos a su alrededor o si nuestra respiración es directa sobre ellas.c. Agresividad. En este grupo entran todas las especies asiáticas y africanas, sin descartar algunos ejemplares americanos. Estos animales muerden de manera incansable.

Las tarántulas son animales que se pueden clasificar de acuerdo a su temperamento en 3 grandes grupos con las siguientes características:


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a. Dóciles. La gran mayoría de los ejemplares americanos son de este tipo, se les puede manejar con cierta facilidad sin ser agredidos ya sea por mordida o por los pelos urticantes. Una tarántula dócil se queda inmóvil al tocarla y no reacciona a esta acción. (Figura 22)b. Nerviosas. Son ejemplares principalmente del género Brachypelma, mexicanas la gran mayoría de ellas, aunque todas las especies americanas tienen la posibilidad de defenderse por medio de los pelos urticantes, la mayoría de ellas no los utiliza, pero las que sí, lo hacen constantemente, en cuanto se abre el terrario se ve la disposición que tienen para lanzar los pelos, aquí el problema a evitar es el contacto de estos pelos con la piel y principalmente con las mucosas como las de los ojos y/o de la nariz.c. Agresivas. Clasificación típica para los ejemplares de origen africano y asiático, que se caracterizan por ser muy rápidas y dispuestas a morder a la primera oportunidad. En cuanto se abre el terrario corren o se colocan en posición defensiva, mostrando los colmillos.

Figura 22.- Ejemplar de tarántula de temperamento dócil.

Mitos sobre las Tarántulas

1. “Para tenerlas como mascotas es recomendable quitarle los colmillos”. Los colmillos son el instrumento con el que las tarántulas matan a sus presas para poder alimentarse, sí se los quitamos, podrá vivir por algunos meses, pero terminarán por morir.2. “Saltan”. A diferencia de otros arácnidos que sí lo pueden hacer, las tarántulas no poseen las estructuras que les permitirían realizar esta acción, son muy rápidas, sobre todo para atacar, defenderse o escapar, pero no saltan.3. “Beben de un Algodón con agua”. Efectivamente las tarántulas necesitan agua, pues en cautiverio sufren principalmente de deshidratación por la humedad que no les podemos brindar adecuadamente, pero basta proporcionarles un bebedero con agua limpia y un terrario mantenido con buena humedad.4. “Son mortales”. Efectivamente, pero para sus presas, que en su mayoría son insectos y pequeños reptiles o mamíferos, en el humano el veneno no es mortal, la toxicidad dependerá más de la sensibilidad de cada individuo, la bibliografía suele comparar el efecto de la mordedura de una tarántula con el piquete de una abeja, aunque existe una gran diferencia, una sola abeja es capaz de matar a una persona si la misma es sensible a su veneno, mientras que en el mundo, ninguna muerte ha sido reportada por la mordida de tarántula. Que algunas especies son más agresivas que otras, es cierto, las especies de origen asiático y africano están predispuestas a morder a la menor provocación, mientras que las especies americanas son más tranquilas.


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