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REPORTE EPIDEMIOLÓGICO DEL NEMATODO ENQUISTADOR DE LA PAPA Globodera rostochiensis

1. Generalidades (Notificaciones de primeros reportes) El centro de Origen del nematodo es en las montañas de los Andes en Sudamérica, de donde fueron introducidos a Europa en tubérculos de papa, posiblemente a mediados del siglo XIX. (EPPO, 2010)

2. Estatus fitosanitario en México y regulación fitosanitaria El nematodo dorado de la papa es considerado como plaga A2 por la EPPO (OEPP, 1981). Para la APPPC, NAPO, CPPC y IAPSC es una plaga de importancia cuarentenaria. En México, G. rostochiensis se encuentra en la hoja de requisito en la NOM-041-FITO-2002, no permite niveles de tolerancia para el material propagativo. De igual forma la Norma Oficial Mexicana NOM-040-FITO-2002, establece las zonas bajo control.

3. Biología y ecología Taxonomía Dominio: Eucarionta

Reino: Metazoa

Philum: Nematoda

Familia: Heteroderidae

Género: Globodera

(CABI, 2007)

Morfología Huevo Los huevos de G. rostochiensis se encuentran retenidos dentro del cuerpo del quiste, la superficie del huevo es suave y no presenta micro vellosidades, el huevo tiene unas dimensiones aproximadas de 101-104 micras de longitud; 46-48 micras de ancho y 2.1-2.5 de radio (CABI, 2007).

Figura 1. Estados juveniles y huevecillos de G. rostochiensis. Créditos: Ulrich Zunke.

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Hembras Las hembras emergen de la corteza de la raíz alrededor de un mes a seis semanas después de la invasión del segundo estado juvenil. Inicialmente son de color blanco puro, adquiriendo en la maduración un color amarillo dorado. Las hembras maduras son de aproximadamente 50 micras de circunferencia sin su cono. La cutícula de las hembras en ocasiones presenta una capa delgada sub cristalina (CABI, 2007).

La cabeza de la hembra tiene de uno a dos ánulos y en la región del cuello numerosos tubérculos. El esqueleto de la cabeza es hexarradiado y débil. El estilete se divide proporcionalmente en su longitud del cono y el eje. Un importante rasgo de diagnostico es la inclinación retrasada de la prolongación central del estilete. El bulbo medio es largo y circular y está bien desarrollado. Presenta un par de ovarios alargados que a menudo desplazan a las glándulas esofágicas. El poro excretor está bien definido en la base del cuello. La parte posterior de la hembra, al polo opuesto del cuello y de la cabeza, está referido como el orificio bulbar y está contenido dentro de una depresión redondeada. La línea bulbar se localiza en el centro de esta región al costado en cualquiera de los dos lados de la papila, la cual usualmente cubre las áreas traslucidas que cubren la cutícula, de la línea bulbar al borde de la fenestra. El ano es distinto y a menudo se observa en el punto donde la cutícula forma una V estrecha al final (CABI, 2007). Los quistes contienen huevos, y están formados por una cutícula endurecida de la hembra. Quistes nuevos muestran un orificio bulbar intacto; pero quistes viejos particularmente aquellos que han estado en el suelo por varias temporadas, pierden todos los signos de sus genitales y presentan un solo orificio en la cutícula que muestra la posición de la fenestra (CABI, 2007).

Figura 2. Quistes de G. rostochiensis. Créditos: Christopher Hogger.

Machos Los machos tienen un tamaño de 0.89 -1.27mm, es de forma vermiforme con una pequeña cola y sin bursa o ala caudal. Presenta cuatro incisiones a la mitad del cuerpo (tres de ellas terminan en la cola). Alrededor de la cabeza tiene 6-7 ánulos. La cabeza está fuertemente desarrollada y tiene un esqueleto hexarradiado. Los cefálidos se localizan en los ánulos 2-4 y 6-9 respectivamente. El estilete es fuerte y con una prolongación en forma de embudo que le sirve de guía. El bulbo medio está bien desarrollado y presenta un gran aparato valvular. El anillo nervioso se localiza alrededor del esófago entre el bulbo medio y el intestino. El hemizonio se encuentra en los ánulos 2-3, cerca del poro excretor y tiene el tamaño de dos ánulos. Presenta un solo testículo en una cavidad a la mitad del cuerpo. El par de espículas están arqueadas y terminan con una punta simple (CABI, 2007).

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Los juveniles en el segundo estadio juvenil se presenta a partir de la eclosión del huevo, el primer cambio toma lugar dentro del huevo. El macho juvenil, es vermiforme con una cabeza redondeada y al final con una cola estrecha. La cabeza es ligeramente compensado y presenta de 4 a 6 ánulos. El esqueleto de la cabeza está bien desarrollado y tiene forma hexarradiada. Los cefaloides se localizan en el cuerpo a la altura de los ánulos 2-3 y 6-8 respectivamente. El estilete es fuerte, el cono es de cerca del 45% del tamaño total del cuerpo. La prolongación central en forma de embudo. El bulbo medio está bien desarrollado y de forma elíptica teniendo una gran válvula central. El anillo nervioso se rodea el esófago entre la válvula media y el intestino (CABI, 2007) Ciclo biológico El ciclo de vida toma aproximadamente 45 días, tiempo durante el cual los machos mudarán y llegarán a convertirse en vermiformes, viven en la raíz del hospedante y fertilizarán tantas hembras como sea posible antes de que muera (Evans, 1970). La parte posterior de la hembra queda como una protuberancia fuera de la corteza de la raíz lista para aparearse. Las hembras secretan feromonas que atraen a los machos; para la fecundación. (Mugniery et al., 1992). Adultos y juveniles de G. rostochiniensis se pueden diseminar en bulbos, tubérculos, cormos, rizomas, raíces y tallos. Los quistes y los huevos son las etapas más persistentes del ciclo de vida de G.rostochiniensis, cada nuevo quiste contiene cerca de 500 huevos. Los huevos son capaces de sobrevivir dentro de un quiste por largo tiempo (30 años) aunque es posible que muy pocos sean viables. La eclosión se incrementa gracias a estímulos tales como las raíces extensas de los hospederos (Perry y Beane, 1988.). Los estímulos llegan gracias a la permeabilidad de las lipoproteínas del cascarón (Atkinson y Ballantyne, 1977). La temperatura optima de eclosión de G. rostochiniesis es de cerca de 15°C con una alta proporción de adultos en la población de 60-830 días (Evans, 1968). Los juveniles penetran la raíz del hospedante justo entre las puntas de las raíces, y se movilizan hacia arriba hasta que reciben una señal específica, probablemente una señal de tipo química, para comenzar a alimentarse en el sitio conocido. Los machos juveniles de segundo estadio que penetran las células del periciclo de la planta, mientras que las hembras penetran las células procambial (Golinowinski et al., 1997). Pocas horas después de haber elegido el sitio de alimentación el juvenil prueba la célula insertando su estilete dentro de ella, mientras permanece inmóvil, el estilete es retraído y reinsertado dentro de la misma célula (Rice et al., 1986; Robinson et al., 1988).

4. Síntomas El nematodo dorado ataca las raíces de las plantas hospederas, estas muestran síntomas consistentes con pudrición de raíz o alteración vascular. Las partes aéreas de la planta muestran un retraso en el crecimiento, aspecto débil, además débil clorosis y marchitamiento. Los síntomas del nematodo se pueden diferenciar de otros posibles en raíz, por la presencia de quistes en la superficie de la misma. Los quistes parecen de color crema a dorado durante la época de crecimiento y durante la cosecha será de color dorado a negro. Las infecciones en el tubérculo son raras debido a que el nematodo prefiere alimentarse inmediatamente detrás de la punta de raíz o de la prolongación de raíces activas (Utah University, 2010).

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5. Detección y diagnostico Para una detección positiva son necesario los quistes o hembras en muestras de suelo, o quistes en raíces de plantas hospederas. Las hembras maduras y los quistes son visibles a simple vista y se observan como un minúsculo globo dorado en la superficie de la raíz. Diversos métodos son validos para la extracción de juveniles o adultos del suelo y posteriormente será necesaria una exanimación microscópica especial en juveniles, hembras y quistes para una identificación precisa. Las especies pueden ser diferenciadas por características morfológicas y mediciones del segundo estado juvenil y quistes (EPPO, 2010).

6. Hospederos Los principales hospederos se encuentran restringidos a especies de Solanaceas, particularmente en papa, tomate y berenjena. Las plantas enlistadas a continuación son hospederos de G. rostochiensis: Datura tatula, Lycopersicon glandulosum, L. hirsutum, L. mexicanum, L. esculentum peruvianum, L. pyriforme, Physalis philadelphica, Physochlaina orientalis, Salpiglossis sp., S. acaule, S. aethiopicum, S. ajanhuiri, S. alandiae, S. alatum, S. anomalocalyx, S. antipoviczii, S. armatum, S. ascasabii, S. asperum, S. berthaultii, S. blodgettii, S. boergeri, S. brevimucronatum, S. bulbocastanum, S. calcense, S. calcense x S. cardenasii, S. caldasii, S. canasense, S. capsicibaccatum, S. capsicoides, S. carolinense, S. chacoense, S. chaucha, S. chloropetalum, S. citrillifolium, S. coeruleiflorum, S. commersonii, S. curtilobum, S. curtipes, S. demissum, S. demissum x S. tuberosum, S. dulcamara, S. durum, S. elaeagnifolium, S. famatinae, S. garciae, S. gibberulosum, S. giganteum, S. gigantophyllum, S. gilo, S. glaucophyllum, S. goniocalyx, S. gracile, S. heterophyllum, S. heterodoxum, S. hirtum, S. hispidum, S. indicum, S. intrusum, S. jamesii, S. jujuyense, S. juzepczukii, S. kesselbrenneri, S. kurtzianum, S. lanciforme, S. lapazense, S. lechnoviczii, S. leptostygma, S. longipedicellatum, S. luteum, S. macolae, S. macrocarpon, S. maglia, S. mamilliferum, S. marginatum, S. melongena, S. miniatum, S. multidissectum, S. nigrum, S. nitidibaccatum, S. ochroleucum, S. ottonis, S. pampasense, S. parodii, S. penelli, S. phureja, S. pinnatisectum, S. platypterum, S. polyacanthos, S. polyacanthos S. polyadenium, S. prinophyllum, S. quitoense, S. radicans, S. rostratum, S. rybinii S. salamanii, S. saltense, S. sambucinum, S. sanctae-rosae, S. sarrachoides, S. schenkii S. schickii, S. semidemissum, S. simplicifolium, S. sinaicum, S. sinaicum, S. sisymbrifolium, S. sodomaeum, S. soukupii, S. sparsipilum, S. stenotomum, S. stoloniferum, S. subandigenum, S. sucrense, S. tarijense, S. tenuifilamentum, S. toralopanum, S. triflorum, S. tuberosum ssp. andigena, S. tuberosum ssp.

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tuberosum, S. tuberosum 'Aquila', S. tuberosum 'Xenia N', S. utile, S. vallis-mexicae, S. vernei, S. verrucosum, S. villosum, S. violaceimarmoratum, S. wittmackii, S. wittonense, S. xanti, S. yabari and S. zuccagnianum. El nematodo ataca a la planta en los estados de pre-emergencia, plántula y desarrollo vegetativo, las partes de planta que se ven afectadas son las hojas, raíz, órganos vegetativos y la planta entera. (CABI, 2007).

7. Mecanismos de dispersión Este nematodo no cuenta con un mecanismo de dispersión natural, y solo puede moverse a cortas distancias viajando como juveniles atraídos hasta las raíces en el suelo. Se dispersa hacia nuevas áreas como quiste sobre tubérculos de papa, viveros, suelo, bulbos, papas para consumo o procesos (EPPO, 2010).

8. Prevalencia y distribución geográfica de la enfermedad El centro de Origen del nematodo es en las montañas de los Andes en Sudamérica de donde fueron introducidos a Europa en tubérculos de papa, posiblemente a mediados del siglo XIX. De ahí se disperso en los tubérculos de papa, a otras áreas. La distribución actual abarca de las zonas templadas hasta nivel del mar y en los trópicos hasta elevadas altitudes. En estas áreas la distribución se encuentra ligada con producción de papa (EPPO, 2010)

De acuerdo con la EPPO, G. rostochiensis se encuentra distribuido en los siguientes países: Asia: Armenia, India (Kerala, Tamil Nadu), Indonesia (Java), Israel, Japón (Hokkaido, Kyushu) Líbano, Malasia, Omán, Pakistán, Filipinas, Sri Lanka, Tayikistán, Turquía. Europa: Albania, Austria, Bielorusia, Bélgica, Bulgaria, Croacia, Chipre, Republica Checa, Dinamarca, Estonia, Islas Faroe, Finlandia, Francia, Alemania, Grecia (Creta), Hungría, Islandia, Irlanda, Italia, Lativia,, Reino de Leinchestein, Lituania, Luxemburgo, Malta, Holanda, Noruega, Polonia, Portugal (Azores, Madeira), Rumania, Federación Rusa (Rusia Central, Siberia del este, Norte de Rusia, Rusia del Este, Sur de Rusia, Oeste de Siberia), Serbia y Montenegro, Eslovaquia, Eslovenia, España (Islas Canarias y España continental), Suecia, Suiza, Reino Unido (Islas del Canal, Inglaterra y Gales, Irlanda del Norte, Escocia). África: Argelia, Egipto, Libia, Marruecos, Sierra Leona, Sudáfrica, Túnez, Zimbawe. Norteamérica: Canadá (Columbia Británica, New foundland), México, Estados Unidos (Delaware, Maine, Nueva York). América central: Costa Rica, Panamá. América del Sur: Argentina, Bolivia, Brasil, Chile, Colombia, Ecuador, Perú, Venezuela. Oceanía: Australia (Victoria, Australia del Oeste), Nueva Zelanda, Isla de Norfolk.

Figura 5. Prevalencia y distribución mundial del nematodo enquistador de la papa G. rostochiensis. Créditos: CABI, 2007.

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9. Potencial económico, impacto ambiental e implicaciones comerciales El nematodo enquistador de la papa es la plaga más importante en el cultivo de papa en áreas con bajas temperaturas. Este es particularmente el caso cuando, a causa de los patotipos presentes, no se dispone de cultivares resistentes en la plantación. El costo actual del daño causado por G. rostochiensis es difícil de determinar, pero los nematodos enquistadores que causan daños extensos, particularmente en áreas templadas y cuando ocurren los patotipos virulentos y falla cualquier resistencia. La situación empeora con G. pallida, donde los cultivos comerciales con buena resistencia son escasos y con frecuencia presentan otras propiedades indeseables. El daño se relaciona con el número de huevos por unidad de suelo y se refleja en el peso del tubérculo producido. Varias infestaciones con G. rostochiensis y G. pallida pueden resultar en menor rendimiento que la calidad de la semilla plantada originalmente (Oerke et al., 1994). México cuenta con una superficie sembrada de papa (papa y semilla) de 61,069 hectáreas, de las cuales se cosechan 60,241 con una producción de 1, 670,148 toneladas, cuyo valor de producción es de aproximadamente 7, 844,706 miles de pesos (SIAP, 2008) Tabla 1. Principales estados productores de papa (SIAP, 2008)

Ubicación

Sup. Sembrada (Ha)

Sup. Cosechada (Ha)

Producción (Ton)

Rendimiento (Ton/Ha)

PMR ($/Ton)

Valor Producción (Miles de Pesos)

SINALOA 14,014.00 14,013.00 343,992.00 24.55 4,644.67 1,597,730.00

SONORA 11,648.00 11,645.00 386,850.58 33.22 5,547.18 2,145,930.14

CHIHUAHUA 5,257.00 5,103.00 131,482.57 25.77 5,386.56 708,239.07

PUEBLA 4,857.00 4,360.00 94,578.00 21.69 3,346.30 316,486.00

MEXICO 4,554.50 4,544.50 129,441.95 28.48 3,659.06 473,635.43

10. Estrategias para la vigilancia, alerta, monitoreo y detección El nematodo enquistador de la papa, en común con otros nematodos enquistadores no causa síntomas específicos de infestación, inicialmente en los cultivos se muestran parches con pobre crecimiento y estas plantas pueden mostrar clorosis y marchitamiento. Cuando los tubérculos son cosechados, habrá pérdidas en el rendimiento y el tubérculo será de menor tamaño. Para confirmar que los síntomas son causados por el nematodo enquistador y dar una indicación de la densidad de población, se deben tomar muestras simples, de hembras, o se deben observar directamente los quistes en la raíz de plantas hospederas (CABI, 2007). La principal estrategia de vigilancia del nematodo, es mediante recorridos mensuales, en zonas productoras del cultivo de papa, para buscar síntomas sospechosos a los ocasionados por G. rostochiensis auxiliándose de una guía de síntomas donde se muestran los daños característicos ocasionados por el nematodo G. rostochiensis. En los casos donde se presenten síntomas similares ocasionados por el nematodo, se procederá a la toma de muestra de acuerdo a lo mencionado en el protocolo para la toma de muestra de plagas cuarentenarias de la papa y dichas muestras serán enviadas al Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria (CNRF) para su análisis. De esta manera se podrá detectar de manera oportuna la presencia del nematodo G. rostochiensis y efectuar las acciones para el manejo, confinamiento y erradicación de la enfermedad.

11. Control

Control Físico

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Solarización La solarización es un buen método para matar nematodos en climas muy calientes. El suelo se cubre con dos capas de polietileno permitiendo el calentamiento rápido del subsuelo. En Omán, Mani y colaboradores (1993) encontraron que 62 días de solarización reducen a G. rostochiensis en un 95% cuando se compara con la solarización y el Oxamil a 4Kg/ha. En el Estado de Nueva York E.U.A el 97 % de huevos de nematodos fueron inactivados en los 10 cm superiores de suelo (LaMondia y Brodie, 1984.). En estudios realizados por Franco y colaboradores (1993) señalan que la temperatura máxima del suelo deberá aproximarse a 45°C para afectar la supervivencia de G. rostochiensis. La solarización en climas fríos y profundidades superiores a 10 cm son mucho menos efectivos (CABI 2007). Control Cultural Rotación de cultivo La rotación de cultivo es frecuentemente empleada para reducir la densidad poblacional de los nematodos enquistadores de la papa, G. rostochiensis y G. pallida. Los principales hospedantes de estas dos especies se encuentran limitados en plantas de la familia Solanaceaes, donde los principales cultivos comerciales son la papa, tomate y berenjena. Cuando estos cultivos se desarrollan como monocultivos por varias temporadas en suelos infestados, la densidad de nematodos puede incrementarse hasta niveles extremos y los campos dejan de ser económicamente viables. Para reducir la densidad poblacional de los nematodos, se establecen cultivos no hospedantes como la cebada entre los cultivos hospedantes. (Magnusson 1987) registro un 87% de disminución de G. rostochiensis, empleando este tipo de rotación. Whitehead (1995) reporta un buen control de G. rostochiensis desarrollándose en micro parcelas. El ritmo en la disminución anual del nematodo enquistador es variable, dependiendo de los cultivos no hospedantes utilizados, la densidad poblacional inicial, factores relacionados con el suelo y la población bajo estudio. Cuando tarda la reducción en la densidad poblacional por una sola rotación, serán necesarios métodos de control adicionales, como la implementación de cultivos resistentes o nematicidas. (CABI 2007). Cultivo trampa Los cultivos trampa han sido utilizados satisfactoriamente para la reducción de poblaciones de nematodos enquistadores (Halford, et al., 1999). Las papas se desarrollan con el fin de incubar el segundo estado juvenil. Esto da suficiente tiempo de penetrar a la raíz y desarrollarse en adultos jóvenes. Poniendo atención a la temperatura del suelo y fechas de plantación, fertilización y formación de nuevos huevos se puede evitar destruyendo el cultivo unas 6 o 7 semanas después de la plantación. Utilizando este método las poblaciones de G. rostochiensis han sido reducidas por más de 80% (Halford et al., 1999). Si la destrucción de los cultivos se realiza muy tarde, la densidad de nematodos se incrementara. Donde la densidad del nematodo es reducida habrá un beneficio significativo en los rendimientos de los cultivos posteriores de papa. Control químico Nematicidas no-fumigantes Los nematicidas no fumigantes son usados en pequeñas cantidades y no persisten mucho tiempo en el suelo como los nematicidas fumigantes. Organofosforados y oximecarbamatos son nematicidas muy efectivos. Su efecto en los nematodos es paralizar antes de matar a menos que se utilicen dosis muy altas. Los organofosforados ofrecen buen control de G. rostochiensis, pero necesitan ser incorporados al suelo utilizando rotación del cultivo. Este tipo de químicos son mejores situados a la luz, suelos limosos y no son tan efectivos en suelos orgánicos (CABI 2007). Fenamifos, etoprofos e isazofos (CGA 12223) fueron utilizados por Moss et al. (1975) en loams limosas y dio un control parcial de G. rostochiensis y de poblaciones mezcladas de G. rostochiensis y G. pallida. Etoprofos es aun utilizado en programas de manejo integrado. Aldicarb y oxamil ofrecen buenos resultados de control del nematodo enquistador en muchos suelos, incluso suelos turbosos. Es efectivo en camas de siembra antes de la plantación. En general son aplicados como gránulos por ser muy tóxicos y algunas veces son aplicados como tratamientos en fila o bandas estrechas. En algunos casos se debe hacer una segunda aplicación a

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media temporada. Los químicos no fumigantes son más efectivos cuando se usa en forma granular incorporado a 15 cm debajo de la superficie del suelo por maquinas que no dañan la estructura del suelo. Alguno de estos nematicidas no fumigantes, en especial aldicarb y oxamil han demostrado incrementar significativamente el rendimiento del cultivo de papa en campos infestados con Globodera spp. Sin embrago no son completamente efectivos para reducir la densidad del nematodo en el campo (Franco et al. 1993). El remojo de tubérculos de papa por 15 min. En 8000 μg/ml de oxamil previo a la siembra, redujo el número de quistes de G. rostochiensis, que se desarrollan en la raíz de la papa. Sin embargo este tratamiento resulta ser fitotóxico. Cinco aplicaciones foliares de 1.12 kg i.a./ha de oxamil o carbofuran a diez días a partir del 90% de plantas emergidas, redujeron el incremento de las densidades de G. rostochiensis. Aplicaciones al suelo (en la fila de siembra) de aldicarb, carbofuran, fenamifos, etoprofos, y oxamil a 5.6 kg i.a./ha redujo el número de hembras blancas, que se desarrollaron en la raíz de papa. Pero solo aquellos tratamientos que incluyen al aldicarb y oxamil suprimieron el incremento de poblaciones de G. rostochiensis Brodie (1983) En resultados obtenidos por Greco et al., 1984 sugieren que los nematicidas sistémicos (Fenamifos y Aldicarb) prueban ser tan efectivos como la mayoría de los fumigantes (D-D 50% 1,2 dicloropropano, 1,3 dicloropropeno. Di-trapex 80% D-D, 20% metil isotiacinato. Telon II 92%, 1,3 dicloropropeno. EDB 83 1,2 dibrometano.). Sin embargo tienen la ventaja de emplearse en aquellas áreas en que la temperatura y/o humedad del suelo contenidas reducen la efectividad de los fumigantes. De los nematicidas no fumigantes, mencionados anteriormente únicamente el Oxamil se encuentra registrado y autorizado por COFEPRIS para su uso en el cultivo de papa Nematicidas fumigantes El bromuro de metilo es exitoso erradicando al nematodo enquistador de la papa bajo láminas de polietileno. El costo de este tipo de control químico es alto y normalmente usado en condición de invernadero que en campo. El nematicida 1,3-Dicloropropeno es validado mezclado en diversas cantidades con otros compuestos como los C3-chlorinated hidrocarbonos y 1,2-dichloropropano; Telone II consiste de 94% 1,3-D considerando que D-D contiene alrededor de 50%. Otro tipo de fumigantes liberados isotiocianatos (MITC), e.j. dazomet, que es efectivo contra el nematodo enquistador de la papa (Whitehead, 1975). Control Genético Cultivos resistentes Las primeras fuentes de resistencia a G. rostochiensis fueron identificadas a partir del material existente en la Commonwealth Potato Collection (CPC). Entre ellas se mencionan tres clones diploides de S. vernei: CPC 1051, CPC 2443 y CPC 2414; un clon diploide de S. chaucha: CPC 1647 y cinco clones tetraploides de S. tuberosum ssp. andigena: CPC 1595, CPC 1673, CPC 1685, CPC 1690 y CPC 1692. El clon de Solanum. tuberosum ssp. andigena fue ampliamente utilizado como progenitor resistente, pensando que podría ser útil para controlar todas las poblaciones del nematodo quiste de la papa. Sin embargo, en diferentes partes del mundo, se reportaron poblaciones que se multiplicaron fácilmente en líneas de este clon y aparentemente son de muy poca utilidad para las poblaciones latino americanas (Franco et al. 1993). Control Biológico La mayoría de los estudios en los 90´s se han concentrado en agentes de control fúngico Verticillum, Hirsutella, Arthrobotrys y la bacteria Pasteuria. Verticillium chlamydosporium que infecta a hembras jóvenes en agregados, pero es menos efectivo cuando las papas se desarrollan en la presencia de bajas densidades poblacionales del nematodo. Los tres mejores hongos parásitos: Verticillium chlamydosporium, Fusarium oxysporum y Cylindrocarpon destructans, han sido detectados a través del ciclo biológico del nematodo enquistador, pero la mayor actividad variara en diferentes momentos del ciclo (Crump, 1987). Se ha demostrado que F. oxisporum y F. solani se hallan parasitando huevos de G. rostochiensis pero en baja proporción por lo cual es considerado como un invasor secundario del

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nematodo del quiste de la papa y pueden hacer la cutícula del huevo más susceptible a la invasión de otros hongos. (Franco et al., 1993). Con respecto a los enemigos naturales, se encuentran depredadores como Alliphis halleri Hypoaspis aculeifer y los parasitoides Paecilomyces lilacinus en Pakistán Verticillium chlamydosporium atacando huevos. Regulación El control de los nematodos mediante regulación incluye el cumplimiento de cuarentenas para impedir la introducción y diseminación de un determinado nematodo fitoparasito en áreas conocidas como libres de esa especie. Esta medida es efectiva solamente cuando se conoce la naturaleza de ese determinado nematodo y se hacen cumplir las regulaciones. A pesar de fallas y limitaciones la acción reguladora ha reducido La cuarentena es muy necesaria y una forma común de intentar limitar el daño causado por organismos infecciosos como los nematodos (CABI, 2007). En México se cuentan con tres normas fitosanitarias: Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, Por la que se establecen los requisitos fitosanitarios especificaciones para la importación de material vegetal propagativo, NOM-041-FITO-2002 Requisitos y especificaciones fitosanitarias para la producción de material propagativo asexual de papa. Métodos preventivos 1. Debe utilizar semilla libre de la plaga 2. Comprobar que la maquinaria, equipo, herramientas y utensilios se encuentre completamente limpia y libre de restos vegetales 3. Arada profunda al preparar el suelo para exponer los quistes a la luz solar 4. No devolver tierra a los campos ya que puede provocar la infestación de nematodos 5. Mantener suelos limpios de tubérculos 6. Cultivar variedades susceptibles y resistentes de papa, alternativamente, reduciendo así la posibilidad de seleccionar una muy virulenta o patotipo nuevo. 7. Realizar obras de conservación de suelos y aguas 8. Mejorar las condiciones de las bodegas donde se almacena semilla de tal manera que los pisos sean de materiales impermeables 9. Realizar rotación de cultivos con especies diferentes a la familia de las Solanáceas 10. Eliminar plantas enfermas 11. Eliminar malezas hospederas (Solanáceas) 12. Eliminar rastrojos y plantas voluntarias (CABI 2007, Coto 2005)

12. Recomendaciones Divulgacion de la importancia y daños del nematodo dorado de la papa, a los productores de

dicho cultivo, Organismos Auxiliares de Sanidad Vegetal y público en general.

Utilización de semilla certificada, para prevenir la introducción del nematodo

Realizar el control químico con Oxamil, debido a que es el único registrado y autorizado para su utilización en el cultivo de papa.

Capacitar al personal técnico encargados de realizar las inspecciones visuales sobre la biología, síntomas y daños ocasionados por el nematodo dorado de la papa G. rostochiensis.

Realizar inspecciones visuales periódicamente, en busca de síntomas sospechosos ocasionados por el nematodo dorado de la papa

Regular el movimiento de material vegetal de zonas donde se presente el problema del nematodo dorado de la papa, hacia zonas productoras de papa que se encuentren libres del problema

Ante la sospecha de la presencia del nematodo en base a los síntomas que presenta el cultivo. La Dirección General de Sanidad Vegetal a través del Centro Nacional de Referencia

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Fitosanitaria, ha establecido la comunicación pública mediante el servicio telefónico 01 800 987 987 9 para la atención personalizada.

13. Literatura Atkinson H. J. and Ballantyne A. J. 1977. Changes in the oxygen consumption of cysts of G. rostochiensis associated with the hatching of juveniles. Annals of Applied Biology. 87(2):159-166. B. B. Brodie. 1983 Control of Globodera rostochiensis in Relation to Method of Applying Nematodes. J Nematol; 15(4): 491–495(En línea http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2618333/ consultado el 9 dic de 2009).

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