LAPORAN PRATIKUM AGENT PENYAKIT

PEMERIKSAAN SPUTUM

Di susun oleh :

Nama : Aulia Rakhman

NIM : N 201 12 018

Kelompok : 1

PROGRAM STUDI ILMU KESEHATAN MASYARAKAT

FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN

UNIVERSITAS TADULAKO

2013

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Bakteri yang memiliki ciri-ciri berantai karbon (C) yang panjangnya 8 - 95

dan memiliki dinding sel yang tebal yang terdiri dari lapisan lilin dan asam lemak

mikolat, lipid yang ada bisa mencapai 60% dari berat dinding sel disebut bakteri

tahan asam (BTA). Bakteri ini ada 41 spesies yang telah diakui oleh ICSB

(International Committee on Systematic Bacteriology) yang sebagaian besar sudah

saprofit dan sebagaian kecil lainnya patogen untuk manusia diantaranya

Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium leper ae dan lain-lainnya yang dapat

menyebabkan infeksi kronik. Golongan saprofit dikenal juga dengan nama atipik.

Bakteri ini membutuhkan bahan tambahan makanan seperti darah egg yolk,

serum dan sel yang tebal yang terdiri dari asam lemak mivolet untuk

pertumbuhannya. Mycobacterium tuberculose merupakan bakteri gram positif (+),

batang sedikit bengkok, panjang atau pendek, tidak berspora, tidak berkapsul,

pertumbuhan sangat lambat 2 - 8 minggu, suhu optimal 37 - 38oC.

Mycobacterium tahan terhadap asam dan alkali dibanding dengan kuman lain

sehingga apabila bahan spesimen mengandung kuman lain dapat dibunuh dengan

mudah sehingga spesimen menjadi lebih murni.

Tuberculosis merupakan penyakit sistemik yang dapat mengenai hampir

semua organ tubuh yaitu organ pernafasan ataupun diluar organ pernafasan.

Kuman tuberculosis dapat hidup lama tanpa aktivitas dalam tubuh (dormant)

sampai pada saatnya dapat aktif kembali. Beberapa Negara maju melaporkan

penurunan angka kejadian tuberculosis disertai peningkatan presentase kejadian

tuberculosis. Berdasarkan uraian diatas maka yang melatarbelakangi praktek ini

adalah untuk memeriksa Mycobakterium Tuberculosis pada sputum penderita

Tuberkulosis dan juga pentingnya pemeriksaan sputum khusus bagi mahasiswa

kesehatan masyarakat yaitu mencegah dan mengetahui penyebaran penyakit TBC

yang disebabkan oleh Mycobacterium Tuberculosis.

1.2 Tujuan

Adapun tujuan dilaksanakan percobaan ini adalah :

1. Untuk mengetahui teknik perwarnaan Bakteri Tahan Asam (BTA)

2. Untuk mengamati Mycobacterium (jika ada) dan mengetahui tingkat infeksi

dari sputum.

2.3 Manfaat

Adapun manfaat sehingga dilaksanakan percobaan ini yang dihubungkan

dengan kesehatan yaitu untuk mengetahui Mycobacterium dari sputum agar dapat

memelihara dan mempertahankan tubuh dan mencegah terjadinya penyakit TBC

yang disebabkan Mycobacterium Tuberculosis.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

Mikroorganisme terdapat di mana-mana. Interaksinya dengan sesama

mikroorganisme ataupun organisme lain dapat berlangsung dengan cara yang aman

dan menguntungkan maupun merugikan (Pratiwi,2008).

Mikroorganisme di dunia ini ada yang menguntungkan dan ada juga yang

merugikan. Mikroorganisme yang menguntungkan dapat kita manfaatkan untuk

kepentingan kesejahteraan hidup manusia. Akan tetapi, banyak juga mikroorganisme

yang tidak menguntungkan kita yaitu dengan menyebabkan terjadinya penyakit pada

tubuh manusia. Salah satu mikroorganisme yang dapat menyebabkan atau menginfeksi

manusia adalam Mycobacterium tuberculosis. Bakteri ini dapat mengakibatkan

penyakit tuberculosis pada manusia. Tuberculosis merupakan salah satu penyakit yang

mematikan dan berbahaya di dunia (Dwidjoseputro, 1989).

Mycobacterium tuberculosis berbentuk batang langsing, lurus atau berbentuk

filament. Bakteri ini bersifat aerobik, tidak membentuk spora, non motil, tahan asam,

dan merupakan bakteri gram positif. Namun, sekali mycobacteria diberi warna oleh

pewarnaan gram, maka warna tersebut tidak dapat dihilangkan dengan asam. Oleh

karena itu, maka mycobacteria disebut sebagai Basil Tahan Asam atau BTA.

Beberapa mikroorganisme lain yang juga memiliki sifat tahan asam, yaitu spesies

Nocardia, Rhodococcus, Legionella micdadei, dan protozoa Isospora dan

Cryptosporidium. Pada dinding sel mycobacteria, lemak berhubungan dengan

arabinogalaktan dan peptidoglikan di bawahnya. Struktur ini menurunkan

permeabilitas dinding sel, sehingga mengurangi efektivitas dari antibiotik.

Lipoarabinomannan adalah suatu molekul lain dalam dinding sel mycobacteria,

berperan dalam interaksi antara inang dan patogen, menjadikan M. tuberculosis dapat

bertahan hidup di dalam makrofaga (Thomas, 1999).

Mikobakteria dapat tumbuh lebih cepat pada pH 6 dan 8 dengan pH optimum

sekitar 6.5 - 6.8 untuk tipe pathogen. Bakteri ini mempunyai susunan dinding yang

melindungi bakteri jika hidup di luar inangnya. Dinding sel mikobakteria menyebabkan

penundaan hipersensitivitas dan beberapa diantaranya resisten terhadap infeksi. Sel

mikrobakteria dapat menunda reaksi hipersensitifitas pada hewan yang sebelumnya

sensitif. Sel mikobakteria terdiri dari tiga lapisan penting yaitu lipid, protein, dan

polisakarida (Mudihardi, 2005).

Percobaan tentang transmisi penyakit TBC pertama kali dilakukan oleh

Klencke pada tahun 1843. Klencke memproduksi TBC di dalam tubuh kelinci dengan

inokulasi jaringan TBC secara intravena. Infeksi oleh kuman TBC juga dibuktikan

oleh Villemin pada tahun 1865 dengan cara memproduksi penyakit ini pada kelinci

dengan inokulasi jaringan TBC tipe human dan bovine. Dia yang pertama kali

mendemonstrasikan perbedaan resistensi kelinci terhadap organisme tipe human dan

bovine. Villemin menyimpulkan bahwa TBC adalah penyakit spesifik, TBC

disebabkan oleh agen inocilable, penyakit ini dapat menular dari manusia ke kelinci,

TBC adalah penyakit yang mematikan. Robert Koch merupakan penemu

Mycobacterium tuberculosis pada tanggal 24 Maret 1882, sehingga untuk mengenang

jasanya bakteri tersebut diberi nama baksil Koch. Bahkan, penyakit TBC pada

paru-paru kadang disebut sebagai Koch Pulmonum (KP). Bakteri ini berbentuk batang

dan bersifat tahan asam sehingga dikenal juga sebagai Batang Tahan Asam (BTA)

(Pelczar dan Chan, 1988).

Tuberkulosis (TBC) yang disebabkan oleh Mycobacterium tuberculosis yang

menyerang paru dan juga memberikan efek terhadap susunan saraf pusat, sistem

limfatik, sistem sirkulasi, sistem urogenital, tulang, tulang sendi, dan kulit. Penyakit ini

diketahui dapat menyerang semua bangsa burung, mamalia, primata, termasuk

manusia. Selain Mycobacterium tuberculosis (tipe human), dikenal juga spesies

Mycobacterium bovis, dan Mycobacterium avium. Mycobacterium bovis dan

Mycobacterium avium jarang terjadi pada orangutan. Hanya terdapat sekitar 10%

laporan kasus TBC pada primata yang disebabkan oleh Mycobacterium bovis. TBC

tipe Human yang paling banyak ditemukan pada primata dan manusia (Sari 2004).

Bakteri tahan asam merupakan bakteri yang kandungan lemaknya sangat tebal

sehingga tidak bisa diwarnai dengan reaksi pewarnaan biasa, tetapi harus dengan

pewarnaan tahan asam. Kelompok bakteri ini disebut bakteri tahan asam (BTA)

karena dapat mempertahankan zat warna pertama sewaktu dicuci dengan larutan

pemucat. Golongan bakteri ini biasanya bersifat patogen pada manusia contohnya

adalah Mycobacterium tuberculosis. Bakteri Mycobacterium tuberculosis dapat

diisolasi dari sputum penderita TBC. Reaksi hasil pewarnaannya jika positif terdapat

bakteri TBC berwarna merah. Selain menyerang manusia juga menyerang hewan

seperti marmut, dan kera. Penularannya dapat melalui udara yang masuk ke saluran

pernafasan (Pelczar dan Chan, 1988).

Bakteri tahan asam adalah bakteri yang mempertahankan zat warna

karbol-fuchsin (fuchsin basayang dilarutkan dalam suatu campuran

phenol-alkohol-air) meskipun dicuci dengan asam klorida dalam alkohol. Bakteri

tahan asam (BTA) merupakan bakteri yang memiliki ciri-ciri yaitu berantai karbon (C)

yang panjangnya 8 - 95 dan memiliki dinding sel yang tebal yang terdiri dari lapisan

lilin dan asam lemak mikolat, lipid yang ada bisa mencapai 60% dari berat dinding sel.

Bakteri yang termasuk BTA antara lain Mycobacterium tuberculose, Mycobacterium

bovis, Mycobacterium leprae, Nocandia meningitidis, dan Nocandia gonorrhoeae.

Mycobacterium tuberculose adalah bakteri patogen yang dapat menyebabkan penyakit

tuberculose, dan bersifat tahan asam sehingga digolongkan sebagai bakteri tahan asam

(BTA). Penularan Mycobacterium tuberculose terjadi melalui jalan pernafasan

(Syahrurachman, 1994).

Pewarnaan Ziehl Neelson atau pewarnaan tahan asam memilahkan kelompok

Mycobacterium dan Nocandia dengan bakteri lainnya. Kelompok bakteri ini disebut

bakteri tahan asam karena dapat mempertahankan zat warna pertama (carbol fuchsin)

sewaktu dicuci dengan larutan pemucat (alkohol asam). Larutan asam terlihat

berwarna merah, sebaliknya pada bakteri yang tidak tahan asam karena larutan

pemucat (alkohol asam) akan melakukan reaksi dengan carbol fuchsin dengan cepat,

sehingga sel bakteri tidak berwarna (Lay, 1994).

Tujuan pemberian carbol fuchsin 0,3% adalah untuk mewarnai seluruh sel

bakteri. Tujuan pemberian alkohol asam 3% adalah meluruhkan warna dari carbol

fuchsin, tetapi pada golongan BTA tidak terpengaruh pemberian alkohol asam 0,3%

karena memiliki lapisan lipid yang sangat tebal sehingga alkohol sukar menembus

dinding sel bakteri tersebut dan warna merah akibat pemberian carbol fuchsin tidak

hilang. Tujuan pemberian methylen blue adalah memberi warna background (Pelczar

dan Chan, 1986).

Mewarnai bakteri yang tahan terhadap asam digunakan cara pewarnaan Ziehl

Neelson. Pewarnaan Ziehl Neelson terdapat beberapa perlakuan dan zat kimia yang

diberikan. Fiksasi bertujuan untuk mematikan bakteri tetapi tidak mengubah struktur

sel bakteri. Perlakuan pencucian dengan menggunakan aquades mengalir bertujuan

untuk menutup kembali lemaknya (Pelczar dan Chan, 1986).

Mycobacterium tuberculosis merupakan kuman tahan asam penyebab

kematian hamper 3 juta manusia, dan terdapat 8-12 juta kasus baru setiap tahunnya

(Reviglione et al.,1995).

Penyakit yang berlangsung secara menahun (kronik) tersebut oleh World

Health Organization (WHO) diperkirakan telah menyerang sepertiga penduduk dunia,

dan mempunyai potensi berkembang ke arah penyakit reaktif (Dolin, 1994).

Bakteri tahan asam dapat diamati dengan teknik pewarnaan Ziehl Neelson,

Kinyoun Gabber, dan Fluorochrom. Pengambilan sputum (sekret paru-paru atau

ludah) untuk analisis tuberculosis dapat dilakukan setiap saat dikenal ada 3 jenis

sputum:

a. Sputum pagi : sputum yang dikeluarkan oleh penderita pada saat bangun

pagi.

b. Spot sputum : yang dikeluarkan pada saat itu.

c. Collection sputum : sputum yang keluar dan ditampung selama 24 jam

(Kurniawati, 2005).

Sputum adalah cairan yang diproduksi dalam alveoli dan bronkioli. Sputum

yang memenuhi syarat pemeriksaan harus betul-betul dari trakea dan bronki bukan

berupa air ludah. Sputum dapat dibedakan dengan ludah antara lain : ludah biasa akan

membentuk gelembung-gelembung jernih di bagian atas permukaan cairan,sedang

pada sputum hal ini jarang terjadi. Secara mikroskopis ludah akan menunjukan

gambaran sel-sel gepeng sedang pada sputum hal ini tidak ditemukan . (Widman,

1994)

Sputum paling baik untuk pemeriksaan adalah sputum pagi hari, karena

sputum pagi paling banyak mengandung kuman. Sputum pagi di kumpulkan sebelum

menggosok gigi, tetapi sudah berkumur dengan air untuk membersihkan sisa

makanan dalam mulut yang tertinggal (B. sandjaja, 1992).

Induksi dahak merupakan salah satu cara alternatif yang sederhana, aman,

tidak invasif, dan lebih dapat diterima oleh penderita anak guna memperoleh spesimen

dahak yang layak untuk pemeriksaan bakteriologis pada penderita-penderita yang sulit

mengeluarkan dahak secara spontan (Fireman, 2003).

Induksi dahak dapat dilakukan dengan cara nebulisasi aerosol air suling yang

dihangatkan atau larutan salin isotonik (0,9%) atau hipertonik. Beberapa penelitian

mendapatkan hasil positif yang tinggi dari pemeriksaan dahak induksi yaitu berkisar

antara 70 90%, dan sebanding dengan hasil pemeriksaan yang menggunakan

bronkoskopi (Garay, 2004).

Hasil kultur yang negatif dari spesimen yang mengandung kuman M.

tuberculosis dapat disebabkan oleh beberapa hal. Pada penderita yang mendapat

terapi OAT, kuman M. tuberculosis dapat kehilangan kemampuan untuk tumbuh pada

media kultur atau kuman telah mati. Beberapa penelitian melaporkan bahwa penderita

yang telah mendapat terapi OAT dengan regimen yang mengandung rifampicin,

seringkali hasil kultur menjadi negatif setelah pengobatan 3 minggu tetapi

pemeriksaan hapusan dahak masih positif, ini berarti basil tuberkulosis telah mati

(Toman, 2004).

Hasil kultur yang negatif juga dapat disebabkan oleh kurang tepatnya

penanganan sampel dahak dan atau prosedur pembuatan kultur. Penanganan sampel

dahak kurang tepat bila sampel dahak terpapar dengan sinar matahari atau temperatur

yang tinggi, disimpan terlalu lama, mengering, atau terkontaminasi. Prosedur

dekontaminasi yang berlebihan sebelum dilakukan inokulasi, pemanasan yang

berlebihan selama sentrifugasi, media kultur yang tidak adekuat, dan kurangnya masa

inkubasi merupakan beberapa keadaan yang dapat menyebabkan hasil kultur negatif

(Toman, 2004).

BAB III

METODOLOGI

2

3

3.1 Waktu dan tempat

Adapun waktu dan tempat dilaksanakan percobaan ini yaitu :

Hari/Tanggal : Sabtu, 13 April 2013.

Waktu : 10.00 WITA selesai.

Tempat : Laboratorium Terpadu FKIK UNTAD.

3.2 Alat dan Bahan

Adapun alat dan bahan yang digunakan pada percobaan ini yaitu :

3.2.1 Alat

1. Mikroskop

2. Pipet tetes

3. Kaca objek

4. Bunsen

5. Hand sprayer

6. Batang penyangga

7. Wadah

8. Stopwatch

8..22 Bahan 1. Sputum

2. Alkoholasam 3%

3. Karbolfuchsin 0,3%

4. Aquadest steril

5. Methylen blue

6. Korek api

7. Lidi

8. Masker

9. Handskun

10. Tissue

11. Lap halus

12. Spritus

13. Penjepit tabung

14. Spidol

15. Alkokhol 70%

(Antiseptik)

15.3 Prosedur Kerja

Adapun prosedur kerja pada saat melakukan percobaan ini adalah:

1. Memfiksasi preparat secara langsung, yaitu dengan membersihkan kotoran

dengan alkohol pada objek glass lalu meletakkan sputum di atasnya dengan lidi

setipis mungkin kemudian melakukan pengeringan, setelah kering kemudian

memfiksasi di atas api Bunsen.

2. Menetesi karbolfuchsin 0,3% pada objek glass yang telah kering dan

memanaskan selama 5 menit tetapi tidak sampai mendidih.

3. Mencuci dengan aquades mengalir dan mengeringkan objek glass.

4. Menetesi dengan alkohol asam 3% lalu mencuci dengan aquades mengalir dan

mengeringkan.

5. Menetesi dengan methylen blue, mendiamkan selama 20-30 detik kemudian

mencuci dengan menggunakan aquades mengalir, mengeringkan dan

mengamati dibawah mikroskop.

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

1.

2.

3.

4.

4.1. Hasil Pengamatan

Adapun hasil Pengamatan yang diperoleh pada saat melakukan percobaan ini

yaitu :

N

O

Kelompok Gambar KET

Sampel Literatur

1 I Negatif

2 II Positif

3 III Positif

4 IV Negatif

5 V Positif

6 VI Posiitif

4.2 Pembahasan

Bakteri tahan asam (BTA) merupakan bakteri yang memiliki ciri-ciri yaitu

berantai karbon (C) yang panjangnya 8 - 95 dan memiliki dinding sel yang tebal

yang terdiri dari lapisan lilin dan asam lemak mikolat, lipid yang ada bisa mencapai

60% dari berat dinding sel. Bakteri yang termasuk BTA antara lain

Mycobacterium tuberculose, Mycobacterium bovis, Mycobacterium lepr ae,

Nocandia meningitidis, dan Nocandia gonorrhoeae. Mycobacterium tuberculose

adalah bakteri patogen yang dapat menyebabkan penyakit tuberculose, dan

bersifat tahan asam sehingga digolongkan sebagai bakteri tahan asam (BTA).

Penularan Mycobacterium tuberculose terjadi melalui jalan pernafasan.

Percobaan kali ini menggunakan sputum (dahak), tujuan dari percobaan ini

ialah untuk mengetahui teknik pewarnaan Bakteri Tahan Asam (BTA) dan untuk

mengamati Mycobacterium tuberculosis serta mengetahui tingkat infeksi dari

sputum. Sputum adalah cairan yang diproduksi dalam alveoli dan bronkioli.

Sputum yang memenuhi syarat pemeriksaan harus betul-betul dari trakea dan

bronki bukan berupa air ludah.

Pada percobaan yang telah dilakukan, untuk pemeriksaan sputum, dengan

memfiksasi preparat secara langsung, yaitu dengan membersihkan kotoran dengan

alkohol pada objek glass lalu meletakkan sputum di atasnya dengan lidi setipis

mungkin kemudian melakukan pengeringan. Memfiksasi berfungsi untuk

mematikan bakteri tetapi tidak mengubah struktur sel bakteri dan fungsi alkohol

yaitu mensterilkan kaca objek dari mikroorganisme sebelum di letakkan sputum.

Setelah kering kemudian memfiksasi di atas api Bunsen. Menetesi karbolfuchsin

0,3% pada objek glass yang telah kering dan memanaskan selama 5 menit tetapi

tidak sampai mendidih, karena bila sampai mendidih bakterinya akan terbuka

dinding selnya atau lisis. Karbolfuchsin berfungsi untuk mewarnai seluruh bakteri.

Mencuci dengan aquades mengalir dan mengeringkan objek glass. Fungsi aquadest

yaitu untuk merapatkan lemak atau lapisan lilin yang terbuka agar tertutup

kembali. Menetesi dengan alkohol asam 3% lalu mencuci dengan aquades

mengalir dan mengeringkan. Alkohol asam berfungsi sebagai larutan yang dapat

meluruhkan warna dari semua bakteri terkecuali mycobakteria. Menetesi dengan

methylen blue, mendiamkan selama 20-30 detik kemudian mencuci dengan

menggunakan aquades mengalir, mengeringkan dan mengamati dibawah

mikroskop. Fungsi methylen blue pada pratikum kali ini hanya untuk larutan yang

memberikan background atau warna biru pada pewarnaan BTA.

Berdasarkan hasil pengamatan, maka sampel yang diperoleh adalah pada

kelompok 1 negatif adanya Mycobacterium tuberculosis pada sampel sputum.

Didapatkan hasil negatif karena pada saat pembersihan menggunakan aquadest,

semua bakteri hilang oleh aquadest. Dan dibandingkan pada literatur terdapat

bintik-bintik berwarna biru sehingga orang tersebut tidak mengidap penyakit TBC.

Sampel kelompok 2 positif adanya Mycobacterium tuberculosis pada

sampel sputum. Hasilnya positif karena pada saat pencucian karbolfuchsin 0,3%

dengan alkohol asam 3 % bakteri tetap ada, karena bakteri Mycobacterium

tuberculose adalah bakteri tahan asam. Dan dibandingkan pada literatur terdapat

basil berwarna merah sehingga orang tersebut mengidap penyakit TBC.

Sanpel kelompok 3 positif adanya Mycobacterium tuberculosis pada

sampel sputum. Didapatkan hasil positif karena setelah dicuci dengan alkohol

asam bakterinya tetap ada, karena bakteri Mycobacterium tuberculose adalah

bakteri tahan asam. Dan dibandingkan pada literatur terdapat basil berwarna

merah sehingga orang tersebut mengidap penyakit TBC.

Sampel kelompok 4 negatif adanya Mycobacterium tuberculosis pada

sampel sputum. Hasilnya negatif karena bakterinya terbawa oleh aquadest pada

saat pencucian, dan yang terlihat pada mikroskop hanya warna background atau

warna biru. Dan dibandingkan pada literatur terdapat bintik-bintik berwarna biru

sehingga orang tersebut tidak mengidap penyakit TBC.

Sampel kelompok 5 positif adanya Mycobacterium tuberculosis pada

sampel sputum, hasilnya positif karena setelah karbolfuchsin dicuci dengan alcohol

asam bakterinya tidak hilang, karena alkohol asam hanya menghilangkan warna

pada bakteri atau hanya mengluruhkan karbolfuchsin. Dan dibandingkan pada

literatur terdapat basil berwarna merah sehingga orang tersebut mengidap

penyakit TBC.

Sampel kelompok 6 positif adanya Mycobacterium tuberculosis pada

sampel sputum. Hasilnya positif karena bakteri Mycobacterium tuberculose tetap

ada karena meskipun dicuci dengan alkohol asam bakteri tetap ada, karena bakteri

Mycobacterium tuberculose adalah bakteri tahan asam. Dan dibandingkan pada

literatur terdapat basil berwarna merah, sehingga orang tersebut mengidap

penyakit TBC.

Percobaan yang dilakukan menunjukkan hasil pada sampel 1 dan 4 hanya

terdapat warna biru yang menunjukkan tidak adanya bakteri, sedangkan pada

sampel 2, 3, 5 dan 6 terdapat beberapa bentuk bakteri yang ditandai warna merah

yang tidak hilang ketika dicuci dengan alkohol asam. Hal ini sesuai dengan

literatur yaitu sesuai pewarnaan Ziehl-Neelsen akan menampakkan bakteri tahan

asam yang berwarna merah dengan latar berwarna biru. Bakteri tahan asam akan

mempertahankan warna pertama yang diberikan. Hasil yang didapat adalah

terdapatnya bakteri tahan asam.

Cara pencegahan penyakit TBC yaitu konsumsi makanan bergizi, dengan

asupan makanan bergizi, daya tahan tubuh akan meningkat. Produksi leukosit pun

tidak akan mengalami gangguan, hingga siap melawan bakteri TBC yang

kemungkinan terhirup. Bisa juga dangan Vaksinasi, dengan vaksinasi BCG yang

benar dan di usia yang tepat, sel-sel darah putih menjadi cukup matang dan

memiliki kemampuan melawan bakteri TBC.

BAB V

PENUTUP5

6

6.1 Kesimpulan

Adapun kesimpulan yang dapat diambil dari percobaan ini adalah:

1. Pewarnaan BTA dapat dilakukan dengan cara pewarna Ziehl-Neelson yaitu

dengan menggunakan larutan karbolfuchsin 0,3%, alkohol asam 3% , dan

methylen blue.

2. Hasil yang diperoleh saat pratikum yaitu sampel 2, 3, 5 dan 6 positif

Mycobacterium tuberculosis sedangkan sampel 1 dan 4 negatif

Mycobacterium tuberculosis. Dengan demikian sputum yang diuji

merupakan sputum orang yang terkena TBC.

2.2 Saran

Adapun saran yang diberikan oleh penulis adalah sebaiknya dalam

melakukan percobaan, di perlukan ketelitian agar tidak terjadi kesalahan, serta ada

baiknya alat dan bahan yang akan digunakan lebih dilengkapi, sehingga menunjang

proses kerja pada saat melakukan praktek.

DAFTAR PUSTAKA

B. sandjaja. 1992. Analisis Mikroba di Laboratorium. PT Raja Grafindo Persada,Jakarta.

Dolin, J.P., 1994. Global Tuberculosis Incidence and Mortality During 1990-2000. Bulletin of World Health Organization. 72(2): 213-220

Dwidjoseputro. 1989. Dasar-dasar Mikrobiologi. Djambatan, Malang.

Fireman E (2003). Induced sputum as a diagnostic tactic in pulmonary diseases. IMAJ;5:524-7.

Garay SM (2004). Pulmonary tuberculosis. In: Rom WN, Garay SM eds. Tuberculosis, 2nd ed. Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia:345-94. (http://www.fabcats.org/info-veterinary.htmt). diakses pada tanggal 14 april

2013 pukul 16.00

Kurniawati, et al., 2005. Perbandingan Tan Thiam Hok, Ziehl Neelsen, dan fluorokrom sebagai Metode Pewarnaan Basil Tahan Asam untukPemeriksaan Mikroskopis Sputum. Makara Kesehatan. Vol 9, June 2005 : 29-33. (http://qi206 .wordpress.Com/2008/10/17/mikroba/pewarnaan). Diakses pada tanggal 14 april 2013 pukul 15.50

Lay, B. W. (1994). Analisis Mikroba di Laboratorium. Jakarta: PT. Raga Grafindo Persada.

Mudihardi. 2005. Analisis Praktikum Mikrobiologi Umum untuk Perguruan Tinggi. UGM Press, Yogyakarta.

Pelczar, M. J., E. C. S. Chan. 1988. Dasar-Dasar Mikrobiologi Jilid 2. UI Press,Jakarta.

Pelczar, M. J. And E. C. S. Chan. 1986. Elements of Mycrobiology. New York : Mc grow-Hill Book Company.

Pratiwi. 2008. Mikrobiologi dan Parasitologi untuk Akademi Keperawatan dan Sekolah Tenaga Kesehatan Yang Sederajat. Citra Aditya Bakti, Bandung.

Reviglione, M. C., Snider Jr., D. E. and Kochi, A., 1995. Global Epidemiology og Tuberculosis: Morbidity and Mortality of a Worldwide Epidemixc.

(http://www.who.int/gtb/publication/index.html). diakses tanggal 20 Juli 2011

pukul 18.00.

Sari, Y.S. 2004. Penyakit Infeksius yang menular Melalui Udara pada Orangutan(Pongo pygmaeus). Karya Tulis. FKH-IPB. Bogor.

Syahrurachman. 1994. Pedoman Praktikum Mikrobiologi Umum Untuk Perguruan Tinggi. Yogyakarta: Departemen Mikrobiologi Fakultas Pertanian UGM.

Thomas, Dormandy. 1999. The White Death: A History of Tuberculosis. (http://qi206

.wordpress.Com/2008/10/17/mikroba/pewarnaan). Diakses pada tanggal 25 oktober 2012 pukul 22.00

Toman K. 2004. Tomans Tuberculosis Case detection, treatment, and monitoring questions and answers World Health Organization.(http://www.uic.edu/pharmacy/courses/pmpr342/kanyok/t.htm). diakses pada tanggal 2 april 2003 pukul 13.00

Widman, 1994. Mikrobiologi Pangan. PT. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

LEMBAR ASISTENSI

Nama : Aulia Rakhman

NIM : N 201 12 018

Kelompok : 1 (Satu)

Kelas : B

Asisten: Ahmad Tarmisi

No

.

Hari/tanggal Koreksi paraf