insectos en girasol

Insectos en Girasol: Polinizadores, Fitófagos y Entomófagos 1

INSECTOS en GIRASOL

Polinizadores Fitófagos y Entomófagos

Daniela Vitti1

César Salto2

Maria Ana Sosa1

y Silvia Luiselli2

1EEA Reconquista del INTA 2 EEA Rafaela del INTA

Insectos en Girasol: Polinizadores, Fitófagos y Entomófagos2


Indice

1. Introducción .........................................................................

2. Beneficios por insectos polinizadores en girasol ..............2.1 Polinización en girasol ...................................................2.2 Trabajos en el exterior ...................................................2.3 Trabajos en Argentina ...................................................

3. Polen y néctar del girasol como fuente de alimentaciónpara los insectos benéficos. ................................................

4. Insectos polinizadores, fitófagos, niveles de dañoy enemigos naturales............................................................4.1 Listado de insectos y entomopatógenos .....................4.2 Descripción de insectos y entomopatógenos ..............

5. Principales plagas en las distintas etapas del cultivo .......

6. Consideraciones finales .......................................................

7. Bibliografía ...........................................................................

8. Anexo: Productos registrados en SENASA para controlde insectos perjudiciales, con detalles de toxicidad ypeligrosidad para abejas ......................................................

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1. Introducción

El cultivo de girasol se realiza en Argentina desde mediados delsiglo XIX, a partir de semillas traídas por inmigrantes de EuropaOriental. En principio el consumo era familiar y de las pequeñascomunidades del interior, por ello la superficie sembrada y cose-chada se mantuvo en cantidades relativamente pequeñas. En ladécada del 30 se generalizó la producción, haciéndose extensi-va, lo que llevó a la Argentina desde entonces a los primeroslugares en el mundo como país productor de esta oleaginosa. Lasuperficie dedicada al cultivo registró fuertes oscilaciones, debi-do a diversos factores como competencia con otros,específicamente soja en los últimos años, variaciones climáticas,oportunidades de rotaciones, posibles precios de venta.Si se consideran los últimos años, desde el ciclo 1997-1998 hastael ciclo 1999-2000 la superficie sembrada se mantuvo por arribade las 3.500.000 hectáreas, con una producción que llegó en elciclo 1999-2000 a las 7.125.000 tn (Cuadro 1). Con el inicio delpresente siglo, la superficie sembrada decreció para estabilizarseen aproximadamente dos millones de hectáreas, lo que se revir-tió en las últimas campañas agrícolas, llegando en 2007-2008 a2.660.000 ha. La producción en general siguió esta tendencia, enel ciclo 2006-2007 se cosecharon unas 3.630.000 tn, estimándosepara el último ciclo una producción de más de 4.000.000 tn. En elGráfico 1 se observan las tendencias descriptas.

Cuadro 1. Superficie sembrada con girasol en Argentina (miles de ha),producción (miles de tn) y rendimiento (kg/ha) en los últimos diez años(Fuente SAGPyA)

97/98 98/99 99/00 00/01 01/02 02/03 03/04 04/05 05/06 06/07 07/08Superficiesembrada 3511 4243 3587 1976 2050 2378 1848 1966 2258 2446 2660

Producción 5599 7125 6069 3179 3843 3714 3160 3662 3797 3630 4510

Rendimiento 1680 1752 1740 1670 1903 1598 1720 1904 1731 1502 1710


Gráfico 1. Superficie, producción y rendimiento de girasol en Argentinaen los últimos 10 años

1903 1904

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Superficie sembrada(miles de ha)

Producción (miles de tn)

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La importancia del cultivo, que se desarrolla en diferentes regio-nes agroecológicas desde Chaco - Formosa hasta el sur de Bue-nos Aires y La Pampa, se debe a su uso como fuente de aceitecomestible. La relación mutualista de los insectos polinizadorescon el cultivo, que se produce durante el estado de floración,contribuye a aumentar los rendimientos a la vez que aporta elpolen y néctar para la alimentación de los insectos. De allí suimportancia para la apicultura comercial, ya que es notoria lapresencia de Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae) en cultivosflorecidos de girasol en las diferentes regiones productivas delpaís.La presencia de insectos fitófagos puede producir daños de im-portancia en el cultivo, llegándose en algunos casos a la necesi-dad de recurrir a medidas de control basadas en el empleo deactivos químicos. De acuerdo al insecto que ataque, éstos pue-den ser aplicados desde la siembra hasta la etapa final del culti-vo, abarcando la plena floración. Es en dicha etapa cuando sepresentan conflictos si se aplican insecticidas, ya que si bien esnecesario controlar los insectos para que no causen daño econó-


mico, por otro lado se pueden reducir drásticamente las pobla-ciones de polinizadores, cuya muerte causaría mermas de rendi-miento en los cultivos y perjuicios a las explotaciones apícolascomerciales. A ello se agregan daños colaterales a la entomofaunaen general, por los efectos en cascada que acarrea, como faltade polinización en otras especies vegetales, reducción en la pre-sencia de insectos benéficos, etc. Algunos insecticidas autoriza-dos por SENASA para su aplicación en girasol pueden resultarmuy tóxicos para las abejas (Anexo, Cuadro 2).El uso indiscriminado o inadecuado de agroquímicos puede dis-minuir las poblaciones de polinizadores naturales. En flores degirasol se han encontrando cantidades muy pequeñas de activosaplicados como curasemilla, sin conocimiento del posible efectosobre los polinizadores. Por este motivo, en 1999, el Ministeriode Agricultura de Francia suspendió temporalmente la autori-zación para el uso del insecticida imidacloprid, basado en «prin-cipios precautorios», hasta tanto se aclaren fehacientemente lascausas de la declinación en las poblaciones de abejas (Bonmatinet al., 2005 ; Maus et al., 2003; Rortais et al., 2005; Schmuck et al.,2001). Otro de los factores que está provocando pérdida depolinizadores es la falta o desaparición de los refugios naturalesdonde puedan anidar estos individuos, tales como vegetaciónherbácea en bordes de cultivos, árboles nativos, etc. (Ghazoul,2005; Greenleaf and Kremen, 2006).En este trabajo se presenta información referida a la problemá-tica de los insectos en el cultivo de girasol, aspectos relaciona-dos con su identificación y biología en condiciones de campo. Sedetallan los fitófagos que pueden llegar a reducir el rendimien-to, con referencias a los tipos de daño y sus formas de control,incluyendo el control natural por otros organismos, y por otrolado se presentan los polinizadores, con información sobre suimportancia para el cultivo.El objetivo general es brindar información validada que permitaa los productores, profesionales, asesores, apicultores y todosaquéllos que tengan relación con el girasol, tomar las medidasadecuadas en presencia de insectos para reducir el margen de


error y contribuir a la mejora de la rentabilidad del cultivo yfinalmente a la conservación de los agroecosistemas.

2. Beneficios por insectos polinizadores en girasol

2.1 Polinización en girasolSi se considera a la polinización desde el punto de vista de laproducción de alimentos, las especies vegetales que aportan granparte del sustento alimenticio en el mundo no dependen depolinizadores para la producción de semillas. Tal es el caso deltrigo, arroz, maíz o sorgo, por lo que una declinación en la efec-tividad de este tipo de insectos no amenazaría la provisión decalorías. Sin embargo, cultivos como girasol y colza, frutales yproductos hortícolas en general dependen fuertemente de lospolinizadores. La provisión de vitamina C y de otros nutrientesesenciales para la vida humana, provistos por cítricos y otras fru-tas frescas se encuadra en este contexto, a lo que se debe agre-gar la producción de semillas de híbridos y variedades de dife-rentes especies que se fertilizan solamente en presencia de in-sectos (National Research Council of the National Academies,2007).<span lang=ES-VE style=’font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language:ES-VE’>La polinización es la trans-ferencia de polen de las anteras de una flor a su estigma o al deotra flor, como consecuencia se produce la fertilización consis-tente en la unión de los gametos masculino y femenino, lo quelleva finalmente a la producción del grano. En el caso del girasol,al igual que en otras especies vegetales, la polinización dependecasi exclusivamente de la actividad de diversas especies de insec-tos, entre los que se destacan los pertenecientes a los OrdenesHymenoptera, Diptera y Coleoptera.La especie cultivada de girasol, Helianthus annus L. posee uncapítulo con unas 700 a 3000 flores en los híbridos desarrolladospara la producción de aceite. Las flores externas son liguladas,amarillas, llamativas y estériles. Las flores internas pasan prime-


ro por el desarrollo masculino y posteriormente por el desarro-llo femenino. La auto-compatibilidad de la planta es variable,dependiendo en muchos casos de los genomas involucrados enla producción del híbrido o la variedad. A pesar de ésto, los in-sectos incrementan la producción de semillas al trasladar polendesde las flores en estado de desarrollo masculino a las que seencuentran es estado de desarrollo femenino en un mismo capí-tulo o entre diferentes plantas.La mayor parte de la producción comercial de girasol se efectúaen base a híbridos, que requieren polinización cruzada entre lí-neas que producen polen y líneas sin polen. Ello se realiza enbase a la intensa actividad de la entomofauna polinizadora, don-de se destaca la abeja melífera. Estas son las principales trans-portadoras de polen, aunque deben agregarse también otrasespecies como Bombus spp.; Megachile spp.; Melissodes spp., etc,que pueden ser eficientes polinizadoras. En la actualidad la abe-ja melífera es utilizada en forma masiva debido a su fácil manejoy transporte, representando el 85% de la entomofaunapolinizadora de girasol (De Grandi Hoffman and Watkins, 2000;Basualdo, 2001).

2.2 Trabajos en el exteriorEstudios llevados a cabo durante dos años en North Dakota con-firmaron que más del 50% de los polinizadores colectados engirasol, en distintos horarios, estuvo representado por la abejamelífera. En otras regiones de Estados Unidos, los porcentajesoscilaron entre un 83 y 99 para la misma especie (Sosa, 1988.)Numerosos estudios documentan el incremento en la produc-ción de semillas como resultado de la actividad de los insectospolinizadores, lo cual es muy variable de acuerdo a diversosparámetros que deben considerarse. En USA, cuando confina-ron abejas para producir autopolinización en los capítulos, seobservó hasta un 35% de incremento de rendimiento, que au-mentó hasta un 63% cuando se permitió la polinización cruzadaentre plantas. Las variaciones en los valores se debieron a la ro-tación de cultivos y a la proximidad con áreas naturales, que


permitían la presencia en el ambiente de la entomofaunapolinizadora (National Research Council of the NationalAcademies, 2007). En Australia, trabajando con híbridos bajoriego, se obtuvo una diferencia de 11% de rendimiento y 20%de mayor producción de semillas en favor de los cultivos conlibre acceso de organismos polinizadores (Langridge andGoodman, 1981). Los mismos autores establecieron que una abejapor capítulo durante la antesis es suficiente para obtener rendi-mientos significativamente superioresEn un proyecto destinado a proteger la entomofaunapolinizadora que se realizó en Kenya, se tomaron mediciones dediferentes cultivos en condiciones de trabajo muy variables, cuan-tificándose entre un 25 y 99% de incremento de rendimiento.Además, con el libre acceso de los polinizadores, se detectó unmejoramiento en la calidad de semilla ya que el contenido deaceite se incrementó en un 21%. En estos estudios los cultivosestaban próximos a zonas protegidas o bordes con vegetación,como fuente natural de este tipo de insectos (Kasina, 2007).En Europa se realizaron numerosos trabajos tratando de confir-mar los conocimientos ya adquiridos. En Italia se trabajó, en for-ma separada y en conjunto, con A. mellifera y polinizadores queno sean del mismo género, para cuantificar el efecto de su acti-vidad en híbridos de girasol. No se observó competencia entrelas especies estudiadas y se complementaron para obtener me-jores rendimientos en los distintos híbridos estudiados (De GrandiHoffman and Watkins, 2000).

2.3 Trabajos en ArgentinaEn nuestro país se han realizado numerosos trabajos referidos alcomportamiento de las abejas en relación al cultivo de girasol.Los mismos han mostrado las variaciones que se presentan cuandose consideran las características genéticas del cultivo, la morfo-logía del sistema floral y los distintos ecotipos de abejas en rela-ción a la mayor o menor atracción que ejercen las plantas sobrelos insectos. Dichas variaciones en las plantas no llegan a limitarla actividad polínica de numerosos tipos de insectos, y tratando


de demostrar su importancia es que se realizaron numerosos tra-bajos cuyo resultado confirma, sin dudas, que el rendimientofinal del cultivo de girasol depende, en gran medida, de la pre-sencia de estos insectos.A fines de los 70 se compararon parcelas con jaulas, flores aisla-das individualmente y parcelas con polinización libre, llegándo-se a las siguientes conclusiones: un 66% de incremento en la pro-ducción de granos, un 54% más de granos logrados y 5,8% másde aceite cuando se incluyeron abejas como agentes de polini-zación (Lorenzatti de Diez, 1979).En estudios que se realizaron en la Provincia de Buenos Aires, enlos ciclos estivales 1981-82 y 1982-83 en lotes comerciales contres colmenas por hectárea, más la actividad de polinizadoresnaturales del Género Megachile y las Sub-familias Xilocopinae yBombinae, se cuantificaron incrementos de 45 a 90% de semillasformadas y los rendimientos, promediando siete cultivares, pa-saron de 2.247 a 3.939 kg/ha (Iglesias, 1984).En 1984 se realizó un trabajo sobre producción de semilla híbridade girasol con tratamientos próximos a colmenas de abejas y ale-jados a 400 m aproximadamente, lográndose en los primeros unpromedio de 2.325 kg/ha mientras que en los alejados el prome-dio fue de 1.874 kg/ha. El porcentaje de vaneo fue de 20,6 y 31,7%para ambos casos, respectivamente (Lorenzatti de Diez, 1984).En trabajos realizados a mediados de los ’80 (Ryan y Brugnoni,1986), con una densidad de media a dos colmenas por hectárea,se demostró un incremento del 20 al 40% de rendimiento, mejorcalidad del grano con aumento del contenido de aceite y mayorenergía y poder germinativo de las semillas. De los mismos tra-bajos surgieron recomendaciones de manejo, entre las que sedestacan:

Hacer recuento de abejas al mediodía en un cultivo en flo-ración, si hay menos de 25 abejas por cada 100 capítulos, la po-blación es escasa, por lo que habría que adicionar abejas.

Dependiendo del desarrollo y estado sanitario del cultivo sepropone colocar media a dos colmenas por hectárea, este núme-


ro se considera suficiente para lograr una buena polinización.Las colmenas deben incorporarse cuando el 5% del cultivo

está en floración para evitar el acostumbramiento a flores deotros cultivos o plantas de crecimiento natural.

En un estudio donde se analizan varios aspectos relacionadoscon la polinización en girasol, se considera a A. mellifera comouna especie poco efectiva si se la compara con otras abejas sil-vestres, probablemente porque estas últimas coevolucionaroncon el cultivo haciéndolas más eficientes (Woodward y Zorzin,1986). De todas maneras, la abeja melífera es la única alternativaque puede ser manejada para mejorar los rendimientos, sobretodo en la producción de semillas de híbridos. En el mismo tra-bajo se realizan recomendaciones generales sobre manejo decolmenas en relación al cultivo y prevenciones frente al uso deinsecticidas. Los resultados positivos de varios estudios mostra-ron el incremento de semilla lograda(54,7%), de rendimiento(66,0%), de contenido de aceite (5,8%) y de energía y podergerminativo (12,5%).Hacia finales de la década del 80, investigaciones realizadas se-ñalaron que la autoincompatibilidad es subsanada por lo agen-tes polinizadores, que aportan polen extraño a la propiainflorescencia y se señala a ésto como uno de los factores clavesen el mejoramiento de los rendimientos de la oleaginosa (Ama-ro, 1987). En relación con este tema, se realizó un estudio a prin-cipios de siglo donde se corrobora que los insectos fueron deci-sivos para que los tres híbridos estudiados alcanzaran un altonivel de fertilización de flores, más del 90%, destacándose eneste caso las abejas nativas frente a A. mellifera (Medan et al.,2003). En otro trabajo realizado en 2004, con exclusión perma-nente, diurna y nocturna de polinizadores, los capítulos excluídosdel servicio de los insectos produjeron menos granos y los que seformaron, tuvieron menos aceite. Al año siguiente se estudia-ron distintas alternativas tendientes a establecer el efecto de laautopolinización, comparando con la llegada de polen de otra


planta, no registrándose diferencias estadísticamente significa-tivas entre tratamientos manipulativos y de polinización libre.Como conclusión se sugiere que el rendimiento está limitado máspor la cantidad que por la calidad de polen que llega a cada flor,fenómeno ligado a la efectividad de los organismos que inter-vienen en el traslado de polen y a las condiciones climáticas(Chamer et al., 2004 y Chamer et al., 2005).En lo referente al conjunto de los polinizadores en girasol, en unrelevamiento realizado en 2007 en diferentes regiones girasolerasdel país, se encontraron 73 especies de insectos diurnos distri-buidos en siete Ordenes, siendo los más abundantes los pertene-cientes a Hymenotera y destacándose por su abundancia la abe-ja melífera. Respecto a los visitantes nocturnos, se determinaronaproximadamente 80 especies de cuatro Ordenes, destacándoselos lepidópteros de la Familia Noctuidae, pero debido a que losestigmas no se encuentran receptivos en este período, la activi-dad de dichos insectos sería extractiva y no mutualística (Torre-ta, 2007).

3. Polen y néctar del girasol como fuente de alimenta-ción para los insectos benéficos

La dieta óptima para los insectos benéficos en general debe in-cluir no sólo sus presas preferidas, sino también debe comple-tarse en base a polen y néctar de flores que contribuyen de ma-nera variable en su desarrollo. Por ejemplo, Hippodamiaconvergens (vaquita o coccinélido depredador) puede subsistiren base a polen y néctar que le proveen diversas especies deflores, lo que permite la acumulación de lípidos, aunque no lareproducción. Otros coccinélidos pueden llegar a reproducirsealimentándose solamente de polen y néctar, aunque las larvasson de menor tamaño y menos competitivas (Beltrame y Salto,2000; Lopez et al, 2003; Pickett and Bugg, 1998; Altieri, 1992 yAltieri, 1994).


Las flores ofrecen una importante fuente de alimentación paralos parasitoides. La mayoría de las hembras de las grandes Fami-lias de parasitoides como Braconidae, Ichneumonidae yTachinidae deben alimentarse de polen y néctar para depositarhuevos viables, incrementándose en muchos casos la longevi-dad y la fecundidad de diferentes especies de parasitoides si tie-nen fuentes de alimentación completas y accesibles (Hoffmanand Frodsham, 1993).En este contexto debe también considerarse el beneficio socialque brinda la floración del girasol, al permitir la alimentaciónde los insectos benéficos, reduciendo así el uso de insecticidasno solamente en el mismo cultivo, sino en otros al permitir elincremento de la entomofauna benéfica en los agroecosistemas.

4. Insectos polinizadores, fitófagos, niveles de dañoy enemigos naturales

Se describen los insectos que se presentan en girasol con mayorfrecuencia y abundancia en las diferentes regiones agroecológicasdonde se desarrolla el cultivo. Por la dinámica de los ambientes,se pueden encontrar otros insectos que en algunos casos habráque establecer la función que cumplen en las cadenas tróficas,conociendo así la categoría a la que pertenecen. Para evaluar lapresencia de insectos se requiere un mínimo de esfuerzo, mani-festado en muestreos representativos de lo que está ocurriendoen el lote, para lo que se aplicarán los sistemas de monitoreo ade-cuados para cada caso y de acuerdo las características de las espe-cies involucradas.El listado de insectos y su descripción respectiva se tomó de tra-bajos inéditos de los autores y de Aragón (2002); Alvarado et al.(1980); Iannone y Leiva (1994); Margueritis y Rizzo (1965); Quin-tana y Abot (1987); Saini (2004); Salto (1979a); Salto (1979 b);Salto (1980) y Hoffman y Frodsham (1993).


4.1 Listado de insectos y entomopatógenos4.1.1 Polinizadores

Abeja melífera: Apis mellifera L. (Hymenoptera: Apidae)Abejas megachilidos: Megachile sp. (Hymenoptera:Megachilidae)Abejas eucerinos: Melissodes sp. y Melissophila sp.(Hymenoptera: Apidae)Abejorros: Bombus sp. (Hymenoptera: Bombidae)Abeja carpintera: Xylocopa sp. (Hymenoptera:Antophoridae)Moscas polinizadoras: Palpada sp. y Eristalinus sp. (Diptera:Syrphidae)

4.1.2 Fitófagosa. Suelo

Gusanos cortadores: Oruga cortadora áspera Agrotismalefida (Guenée); oruga cortadora parda Porosagrotisgypaetina (Guenée); gusano grasiento Agrotis ipsilon(Hufnagel) y gusano variado Peridroma saucia (Hubner)(Coleoptera: Noctuidae)Gusanos blancos: Bicho torito o bicho candado Diloboderusabderus (Sturm.), Escarabjo negro Discynetus sp. y Escarabajo rubio Cyclocephala sp. (Coleoptera: Scarabaeidae)Escarabajo escrito o larva aterciopelada Chauliognathusscriptus Germ. (Coleoptera: Cantharidae)Gata peluda Mallacocephala deserticota Berg. (Lepidoptera:Arctiidae)Barrenador del girasol Nomophila noctuella (Dennis &Schiffermüller) (Lepidoptera: Pyralidae)Gusanos alambre Conoderus sp. (Coleoptera: Elateridae)Tenebriónido del girasol Blapstinus punctulatus Sol.(Coleoptera: Tenebrionidae)Gorgojos del girasol: Listroderes argentinensis Hustache yL. costirostris obliquus Klug. (Coleoptera: Tenebrionidae)Hormigas: Atta sp. y Acromyrmex sp. (Hymenoptera:Formicidae)


Astilo moteado o siete de oro (Astylus atromaculatus)Blanch (Coleoptera: Melyridae)

b. Parte aéreaMinador de la hoja de girasol Liriomyza spencerella Valla-dares (Diptera: Agromyzidae)Trips Caliothrips phaseoli Hood. (Thysanoptera: Thripidae)Arañuela roja Tetranychus urticae Koch. (Acarina:Tetranychidae)Oruga medidora Rachiplusia nu (Guenée). (Lepidoptera:Noctuidae)Gata peluda norteamericana Spilosoma virginica (F.)(Lepidoptera: Arctiidae)Oruga militar tardía Spodoptera frugiperda (J.E. Smith)(Lepidoptera: Noctuidae)Oruga del yuyo colorado Spodoptera latifascia (Lepidotera:NoctuidaeOruga espinosa Actinote pellenea Hubner. (Lepidoptera:Acraeidae)Chinche verde Nezara viridula (L.) (Hemiptera:Pentatomidae)Chinche alquiche chico Edessa meditabunda (F.) (Hemiptera:Pentatomidae)Chinche de los cuernitos, chinche marrón o chinche barrigaverde Dichelops furcatus (F.) (Hemiptera: Pentatomidae)Mosquita del tallo del girasol Melanogromyza cunctanoidesBlanch. (Diptera: Agromyzidae)Mosquita del capítulo del girasol Melanogromyzaminimoides Spencer (Diptera: Agromyzidae)Oruga del capítulo del girasol o polilla del girasolHomoeosoma heinrichi Pastr. (Lepidoptera: Pyralidae)Vaquitas de San Antonio Diabrotica speciosa (Germar) yDiabrotica significata Gahan (Coleoptera: Chrysomelidae)Vaquitas de las flores: Colaspis sp y Maecolaspis sp.(Coleoptera: Chrysomelidae)Chinche diminuta: Nysius sp. (Hemiptera: Lygaeidae)


4.1.3 Entomófagosa. Parasitoides

avispita Trichogramma sp. (Hymenoptera,Trichogrammatidae)avispitas Trissolcus sp. y Telenomus sp. (Hymenoptera:Scelionidae)avispita Cotesia (Apanteles) bourquini Blanchard(Hymenoptera, Braconidae)avispita Casinaria plusiae (Blanch.) (Hymenoptera:Ichneumonidae)avispita Copidosoma floridanum (Ashmead) (Hymenoptera:Encyrtidae)avispita Litomastix sp. (Ashmead) (Hymenoptera, Encyrtidae)avispa Ophion sp. (Hymenoptera: Ichneumonidae)avispita Euplectrus sp. (Hymenoptera: Eulophidae)mosca tachinida Vorya ayerzai (Brethes) (Diptera:Tachinidae)mosca Trichopoda giacomelli (Blanch.) (Diptera: Tachinidae)

b. EntomopatógenosHongos: Entomophtora sp. y Nomuraea rileyiBacterias y VirusNematodos Sternematidae.

c. DepredadoresArañas, (Arthropoda: Araneae)Crisopa Chrysoperla externa (Hagen) (Neuroptera:Chrysopidae)Sírfidos (Diptera, Sirfidae)Chinche pirata Orius insidiosus (Say) (Hemiptera:Anthocoridae)Chinche ojuda Geocoris sp. (Hemipetera: Geocoridae)Chinche Nabis sp. (Hemiptera: Nabidae)Chinche Podisus nigrispinus (Dall.) (Hemiptera:Pentatomidae)Vaquita de San José Cycloneda sanguínea (L.) (Coleoptera:Coccinellidae)


Vaquita u overo grande Coleomegilla quadrifasciata(Schonh) (Coleoptera: Coccinellidae)Vaquita u overo mediano Eriopis connexa (Germ.)(Coleoptera: Coccinellidae)vaquita u overo chico Hyperaspis festiva (Coleoptera:Coccinellidae)Vaquita Hippodamia convergens (Guér) (Coleoptera:Coccinellidae)Vaquita Coccinella ancoralis (Germar) (Coleoptera:Coccinellidae)Vaquita multicoloreada asiática Harmonia axyridis (Pallas)(Coleoptera, Coccinelllidae)Carábido Calosoma argentinense Csiki (Coleoptera:Carabidae)Galerita collaris Dejean y Lebia concinna Dejean(Coleoptera: Carabidae)

4. 2 Descripción de insectos y entomopatógenos

4.2.1 Polinizadores

a. HymenopteraAbeja melífera (Apis mellifera)La abeja doméstica es el principal polinizador efectivo del gira-sol. Tiene una vida social altamente desarrollada y las obrerastienen las estructuras colectoras de polen en sus patas traseras.Los nidos que naturalmente eran construidos sobre huecos enlos troncos de los árboles o cavidades entre las piedras, fueronreemplazados por colmenas artificiales obligándolas a la produc-ción de miel y cera en cantidades superiores a sus necesidades,gracias al conocimiento de su bioecología. Una de las principalesactividades de las abejas obreras es colectar polen y néctar, comorecurso alimenticio para alimentar a las larvas, los cuales pro-veen proteínas y carbohidratos. Las abejas melíferas visitan flo-res de una gran variedad de especies vegetales.


Megaquílidos (Megachile spp.)Son especies de hábitos solitarios. El género tiene más de 1500especies y son buenos polinizadores de numerosas especies ve-getales, entre ellos el girasol. Una posible ventaja que estas es-pecies de abejas nativas tienen sobre las abejas domésticas es lamenor duración de sus visitas a un mismo capítulo, con lo cual,cada individuo tiende a visitar más capítulos por unidad de tiem-po, lo que genera mayor flujo polínico. Los pelos de la zona ven-tral del abdomen están adaptados para transportar el polen des-de las flores hasta sus nidos.

Eucerinos (Melissodes sp. y Melissoptila spp.)Los eucerinos son una tribu de abejas solitarias y mantienen aun grupo reducido de crías. Los machos tienen antenas muy lar-gas, a veces alcanzando la zona trasera de su tórax, no así lashembras. Estas tienen pelos plumosos o ramificados en su parposterior de patas con los cuales colectan el polen. Al igual quelos megaquílidos, las visitas a los capítulos son cortas, lo que haceque visiten muchos capítulos generando mayor flujo polínicoentre plantas del cultivo.

Abejorros (Bombus spp.)Son abejas grandes, zumbadoras, de aspecto muy robusto, concoloración totalmente negra o negra con fajas de pelos amari-llos con abundante pilosidad en todo su cuerpo. Tienen los órga-nos colectores en sus patas traseras, al igual que la abeja domés-tica. La mayoría de los abejorros hacen nidos en el suelo, en cavi-dades existentes, o bien directamente debajo de la hojarasca.También, al igual que las abejas melíferas son un grupo socialcon diferenciación de tamaño y función dentro de la colmena.

Abeja carpintera (Xylocopa spp.).Son abejas grandes y robustas, semejantes a los «Bombus», perotienen el dorso del abdomen sin pelos y no tiene una estructuraespecializada para transportar el polen en las patas posteriores,sino que tienen muchos pelos ramificados. Son de coloración azul-


negra brillante, pueden llegar a alcanzar los 3 cm y están dentrode las abejas más grandes. Construyen nidos en la madera y ha-cen galerías donde depositan polen y colocan sus huevos.

b. DipteraMoscas polinizadoras de las flores: Sírfidos(Palpada spp. y Eristalinus sp.)Los sírfidos son una familia de moscas de for-mas y tamaños muy variables. Hay especiesde tamaño pequeño, con cuerpo alargado yfrágil, otros de tamaño mediano de colora-ción semejante a las abejas. e incluso hay es-pecies del tamaño de los abejorros. Un grupo

importante dentro de los visitantes florales del girasol son lasespecies del género Palpada y otros afines como Eristalinus yEristalis, en estas especies predominan colores pardos, anaranja-dos o amarillos, casi siempre con bandas bien marcadas sobre elabdomen. Se diferencian de las abejas además de poseer sólodos pares de alas, por las antenas que son muy cortas y por queno «pican». Estos individuos si bien no colectan polen para suscrías, tienen gran cantidad de pelos y transportan polen en sucuerpo.

4.2.2 Fitófagos

El cultivo de girasol está expuesto a la acción de distintos gruposde organismos que pueden tornarse perjudiciales. Se consideranorganismos fitófagos a todos aquéllos que se alimentan de ve-getales, siendo éstos tomados como plagas cuando su densidadpoblacional es tal que llegan a ocasionar importantes pérdidaseconómicas en los cultivos. En girasol, desde la siembra hastaplena floración pueden presentarse distintos tipos de insectosque deben ser considerados por el posible daño al cultivo.

a. SueloGusanos cortadoresSon varias las especies que atacan el girasol (oruga cortadora


áspera, Agrotis malefida), oruga cortadora parda (Porosagrotisgypaetina), gusano grasiento (Agrotis ipsilon) y gusano variado(Peridroma saucia). Las larvas de estas especies, son de colorgris, marrón o pardo, sin pelos. Tienen hábitos nocturnos y du-rante el día permanecen enterradas y enroscadas. Se alimentande raíces, partes subterráneas del tallo y plántulas. Se caracteri-zan por ser muy voraces al comer el cuello de las plantas, provo-cando el corte y caída de las mismas. En ataques intensos se ob-servan manchones con plantas marchitas o cortadas. Condicio-nes ambientales desfavorables (lluvias excesivas) pueden dismi-nuir la población de estos insectos por favorecer la acción de losentomopatógenos. Un alto grado de infestación de malezas an-tes de la siembra, como así también la soja o praderas como an-tecesores son considerados condiciones predisponentes a un ata-que de cortadoras. Dada la rapidez con que se extiende el dañoen el cultivo, es muy importante efectuar observaciones perió-dicas, cada tres o cuatro días, para detectar los primeros orga-nismos presentes y el avance de la plaga.Umbrales de daño: Previo a la siembra se sugiere efectuar medi-das de control con una infestación de una larva por cada 3 a 5m2. Posterior a la siembra, si se detecta entre un 3 a 5% de plan-tas cortadas y la presencia de dos larvas por 100 plantas.

Gusanos blancosBicho torito o bicho candado (Diloboderusabderus); escarabajo negro (Discynetus sp),escarabajo rubio (Cyclocephala sp.) y otros dela familia Scarabeidae. Las larvas son de colorblanco y cabeza marrón rojiza casi tan anchacomo el torax. El cuerpo es curvado con as-

pecto a una letra C y presentan tres pares de patas de igual colorque la cabeza. Se alimentan de raíces de plantas jóvenes, cau-sando detenimiento en el crecimiento, síntomas de deficiencianutritiva y la muerte de plántulas. Previo a la siembra del culti-vo, se deben realizar muestreos de suelo y tratamiento de semi-lla si se detectasen 6 a 8 gusanos por m2 .


Bicho torito (Diloboderus abderus)Es el más importante de este grupo, la hembra y el macho adultomiden aproximadamente 23 mm de largo por 12 mm de ancho.La primera es pardo oscura y el segundo negro mate y con doscuernos frontales. A medida que se suceden los años bajo agri-cultura, la especie disminuye por emigración de adultos haciasuelos más propicios para su oviposición. Los daños son más gra-ves y evidentes durante las primeras etapas de desarrollo delcultivo, durante la preemergencia consumen semillas. Al emer-ger la planta destruyen toda la parte subterránea, principalmentelas raíces, lo que provoca marchites y muerte de plántulas, másadelante consumen exclusivamente raíces, pero la planta adquie-re un desarrollo tal, que le permite tolerar el daño de estos in-sectos.Umbral de daño para el bicho torito: Más de cuatro larvas porm2 (determinado en maíz).

Escarabajo negro (Discynetus sp)El adulto es un coleóptero, de tamaño mediano, mide entre 10 y13 mm de largo, y de coloración oscura, negro con reflejos cas-taño oscuros. Aparecen en gran número durante la primaveraentre los campos cultivados con cereales y durante 30 días sealimentan de los tallos que cortan de la región del cuello de lasplantas jóvenes. La hembra, durante la primavera, desova en lasgrietas del suelo, colocando alrededor de 100 huevos. Estoseclosionan dando larvas escarabeiformes que se internan en ga-lerías de 5 hasta 10 cm de profundidad y se alimentan de tierrade la cual asimilan el humus o sustancias vegetales muertas. Losadultos se desplazan superficialmente bajo el suelo y se alimen-tan de las plántulas presionando las mandíbulas a la altura delcuello, confiriéndole un aspecto «deshilachado». En años secosla incidencia de esta plaga puede ser importante. A los adultosse los debe buscar removiendo superficialmente el suelo en losalrededores de las plantas dañadas. En la mayoría de los casos,alrededor de las plantas dañadas, que se marchitan, pueden ob-servarse montículos de tierra removida.


Escarabajo rubio (Cyclocephala sp.)Es una de las especies más dañinas para la agricultura, pues inva-de campos con trigo, maíz, cebada y se alimenta también de raí-ces de lino, alfalfa, girasol; en las huertas destruye cultivos delechuga, zanahoria, etc. El efecto del daño producido en los cam-pos cultivados se manifiesta por manchones debido a un mar-chitamiento y muerte de las plántulas, ocasionado por lesionesen las raíces debido a la acción cortante de las mandíbulas. Estoproduce una disminución en el rendimiento de las cosechas o lapérdida de las mismas, cuando la densidad de población de laslarvas sobrepasa el nivel de tolerancia. El macho adulto mideunos 13 a 14 mm de largo y la hembra alcanza alrededor de 16mm; toda la superficie dorsal es completamente lisa, desprovistade cerdas y de color castaño claro. La cabeza, negruzca. Tienenuna sola generación anual.

Escarabajo escrito o larva aterciopelada (Chauliognathus scriptus)La larva, estado que causa daño, es de 15 a 20 mm de largo,presenta aspecto aterciopelado con forma aplanada y cabezarojiza. Se desplaza con rapidez y movimientos ondulatorios. Sela observa en los primeros centímetros del suelo o bien sobre lasuperficie. El ataque comienza cuando aún la plántula no haemergido sobre la superficie del suelo. El daño se caracterizapor el roído de la porción superior del tallo en forma longitudinaly habitualmente comprende desde pequeñas porciones a granparte de los cotiledones. Si la planta comienza a ser atacada yluego es abandonada por la larva, la cicatrización de los tejidosprovoca un retorcimiento inicial que luego desaparece con eldesarrollo posterior del vegetal. Sin embargo la mayoría de lasplantas atacadas mueren.

Gata peluda (Mallacocephala deserticota)Son isocas peludas, de color gris oscuro, en cada segmento de sucuerpo tienen varias áreas circulares, de las que salen varios pe-los, caminan rápidamente. Desde la emergencia a la primera se-mana del cultivo pueden consumir totalmente los cotiledones y


las primeras hojas, incluyendo nervaduras, dejando profundasescotaduras. Los ataques son esporádicos, pero intensos.

Barrenador del girasol (Nomophilla noctuella)La larva es de color marrón claro conmanchitas circulares más oscuras, de las cua-les salen un pelo, alcanzan un tamaño no ma-yor a 2 cm, son muy activas, se alimenta ca-vando galerías en el interior del tallo, a niveldel suelo, lo que provoca la caída y marchitesde la planta, quedando ésta a veces unida sólopor la epidermis, (a diferencia de otros corta-dores, no realiza un corte neto del tallo). Nose conocen umbrales de daño. Una medida

preventiva (de tipo control cultural) es el barbecho limpio, y evi-tar campos infectados de malezas. Antes de la emergencia delcultivo, recorrer el lote hasta los 30 días, y contar el número deplantas sanas y dañadas en 10 metros lineales, como así tambiénel número de larvas, para estimar su densidad.

Gusanos alambre (Conoderus spp.)El coleóptero en estado adulto mide de 15 a 17 mm de largo,tiene la particularidad de saltar cuando cae sobre el dorso. Sonde colores oscuros con cuerpo alargado y aguzado. La larva esdenominada «gusano alambre» porque es coriácea y alargada,con anillos espaciados y cabeza pequeña, miden de 15 a 35 mmde largo, su cuerpo está aplanado dorsoventralmente. El cuerpoestá recubierto por un tejido liso y duro, nítidamentesegmentado. Las larvas son de hábitos nocturnos y durante eldía se ocultan por debajo de la superficie del suelo. Dañan lasplántulas sobre o por debajo del nivel del suelo, en donde puedehallárselas removiendo los primeros centímetros. Se ha verifica-do la presencia de altas densidades de larvas en campos con va-rios años de labores agrícolas continuas. No obstante, susinfestaciones suelen ser esporádicas y en general sin mayor im-portancia.


Tenebriónido del girasol (Blapstinuspunctulatus)Tanto larvas como adultos causan daño enplantas jóvenes, comiendo porciones de laplanta a nivel del cuello o al ras del suelo. Tam-bién roen los cotiledones por la noche y du-

rante el día se entierran en el suelo. El adulto es un cascarudopequeño de aproximadamente 5 mm de largo por 2 mm de an-cho, negro o castaño oscuro, con el primer par de alas estriado.Cuando se ve sorprendido se deja caer, ocultándose rápidamen-te. Tiene gran habilidad para ocultarse en los primeros centíme-tros de suelo o bajo los residuos de plantas.Umbral de daño: Se recomienda el monitoreo del lote para de-tectar su presencia, y la realización de tratamientos de post-emergencia si se determinase un 3 a 5% de plantas dañadas.

Gorgojos del girasol (Listroderesargentinensis y L. costirostris obliquus )Los adultos de los gorgojos se alimentan dela parte aérea de la planta, causandoescotaduras en los cotiledones. También roena nivel del cuello la planta provocando la caí-da o corte de la misma, o un estrechamiento

parecido al mal de tallito. Este insecto causa mayores problemasa la salida de inviernos secos. Los adultos nacen en agosto o sep-tiembre, coincidiendo con la siembra y emergencia del cultivo.Se alimentan principalmente sobre el follaje de algunas plantas,algunas veces sobre raíces y el tallo. Son gorgojos de 8 mm delargo por 3 o 4 mm de ancho. Tienen el cuerpo de lados paralelosy se destacan por una prosboscis («pico») larga y fuerte. Su colorvaría entre pardo oscura bastante uniforme y pardo más claroen la que se diferencia más fácilmente un dibujo en forma de«V» blanquecino conformado por dos líneas oblicuas convergen-tes situada en la parte posterior de las alas. Las hembras ponensus huevos en el suelo o en los pecíolos de las hojas. Las larvas deesta especie se alimentan externamente sobre todas las partes


de las plantas, arriba o abajo de la superficie. Tienen hábitosnocturnos, permanecen durante el día protegidos en el suelo yen los restos vegetales, se confunden con pequeños cascotes delsuelo y además cuando se los molesta se «hacen los muertos».Estos insectos tienen una generación anual.Umbral de daño: 4 ó 5 gorgojos por planta. Se sugiere elmonitoreo del lote para la detección temprana de esta plaga.

Hormigas (Atta sp. y Acromyrmex sp.)Desde la emergencia de la plántula, las hormigas cortadoraspueden provocar importantes daños al cultivo. Dañan parcial-mente o cortan las plántulas a nivel del cuello lo que provoca sumuerte. Los ataques son en manchones. En plantas grandes eldaño se observa en las hojas, brácteas y flores pero no afecta sudesarrollo.

Astilo moteado o siete de oro (Astylus atromaculatus)Este coleóptero es un cascarudo amarillo con manchas negrasde 1 cm o menos de longitud. La larva es de color marrón oscuromuy pilosa, de aproximadamente 1 cm y con dos pequeñas pro-yecciones terminales. En este estado se alimenta de semillas desoja o girasol, y es considerado como una plaga, ocasionando im-portantes daños, hasta actuando como cortador en las etapas tem-pranas del cultivo. En estado adulto utiliza los capítulos para ali-mentarse así como también como sitio de apareamiento. Su acti-vidad como polinizadores probablemente de poca importancia.

b. Parte aéreaMinador de la hoja de girasol (Lyriomyza spencerella)El adulto es una mosca muy pequeña, que coloca sus huevos enlas hojas del girasol, de los cuales nacen larvas subcilíndricas yblanquecinas. En este estado es cuando realizan el daño. Las lar-vas mientras se van desplazando van «minando» en el tejido dela hoja, y formando líneas contorneadas a veces paralelas a lasnervaduras. La larva al empupar queda protegida en el interiorde la cámara que se ha formado mientras minaban la hoja. En


ataques severos pueden provocar marchites foliar, perdiendovigor la planta.

Trips (Caliothrips phaseoli)Se ha observado la presencia de esta especieen las hojas o brotes tiernos de las plantas. Eladulto es de color negro con dos bandas blan-cas transversales en la zona anterior y poste-rior de sus alas, son muy móviles y saltarines.Las larvas son amarillas. El daño lo hacen alraspar el tejido de las hojas absorbiendo eljugo vegetal, provocando zonas cloróticas conla típica coloración «plateada».

Arañuela roja (Tetranychus urticae)Se presenta en el cultivo con mayor incidencia en años secos ycon altas temperaturas. Estas arañuelas son muy pequeñas, me-nores a 1 mm, poseen cuatro pares de patas y su coloración varíadesde amarillo, verde y rojo. Producen «telarañas» muy finas,para su protección, que se observan en las hojas. El daño lo ha-cen al alimentarse de los jugos de las hojas confiriéndole un as-pecto amarillento a las mismas. No se conoce umbrales de daño.

Oruga medidora (Rachiplusia nu)Los adultos tienen el primer par de alas decolor castaño oscuro, poseen bandas sinuosasde color claro y oscuro y como característicadistintiva, tienen una mancha plateada en eltercio inferior del ala. La mariposa coloca unnúmero variable de huevos (entre 300 y 500

en varias hojas), fácilmente distinguibles por su formahemisférica, de color blanco cremoso en el envés de las hojas. Lalarva es de color verde y en el dorso presenta finas franjaslongitudinales verdes y blancas, alcanza los 35 mm, al final de 5estadios y empupa sobre las hojas tejiendo un capullo sedoso. Lalarva se ubica preferentemente en los sectores medio e inferio-


res de la planta (60-70%) y las restantes en el sector superior. Nomanifiestan hábitos gregarios en los primeros estadios, situaciónque favorece el control químico. Los primeros focos se localizanen el centro del cultivo y los daños se identifican porque respetalas nervaduras de las hojas. Tienen una capacidad de ingesta acampo de 40-60 cm2 de la lámina foliar.Umbral de daño: 8 a 10 larvas mayores de 1,5 cm por planta o un20% de defoliación, teniendo en cuenta que el periodo crítico esdesde botón floral (R1) a llenado de grano (R6).Se debe tener en cuenta que en girasoles fertilizados seincrementa el área foliar y se puede aceptar un mayor númerode larvas (10 a 15/planta).En caso de registrar un 20 ó 30% de larvas parasitadas, esperar3 ó 4 días y volver a hacer otro recuento y cuantificar si la pobla-ción sube o baja. Se considera larva parasitada a aquella conparásitos externos visibles y cambio de color y forma.

Gata peluda norteamericana (Spilosoma virginica)La oruga en sus primeros estadios es de color blanco o amarillopara luego tener una coloración amarilla castaño o rojiza y cu-brirse de numerosas setas (pelos) no urticantes, alcanzando amedir 40 y 50 mm. Los pelos son una barrera importante al con-tacto de los insecticidas. Sus ataques se localizan preferente-mente en las hojas superiores, y en infestaciones severas dañalas brácteas de los capítulos. Habitualmente ataca en el períodode floración, después que la oruga medidora (R. nu). Es frecuen-te observar en cultivos tardíos, registrándose sus ataques a finesde febrero y marzo. Se caracteriza por no respetar las nervadu-ras de las hojas. Presenta poco control biológico y un consumocinco veces mayor que la isoca medidora a lo largo de su desa-rrollo larval. Las mariposas colocan huevos esferoides, amarillos,ordenados en grupos en la cara inferior de las hojas.Umbral de daño: dos orugas por planta y 20% de defoliación enbotón floral e inicio de floración. Los niveles de daño económicoson inferiores a los de la «oruga medidora» y además, se reco-mienda iniciar los controles con orugas menores a 1,5 cm de lar-


go, ni bien hayan abandonado su hábito gregario, debido a suelevada capacidad de ingesta.

Oruga militar tardía (Spodoptera frugiperda)Esta oruga es también conocida como «gusa-no cogollero». Es de color muy variable ma-rrón a verdoso con líneas longitudinales ama-rillentas y verde oscura a los costados. Alcan-zan un tamaño de 35 mm y luego se entie-rran para empupar en el suelo. Emergen los

adultos a los 10 ó 12 días, las mariposas son de hábitos noctur-nos. Las hembras ponen masas de huevos (50 a 100 huevos en elenvés de las hojas). Su actividad es diurna y nocturna, se alimen-ta de hojas, brotes y tallos tiernos. Debe su nombre «oruga mili-tar» a su característica de avanzar en frentes o manchones. Ade-más del girasol, ataca cultivos estivales, tales como sorgo, maíz,soja, alfalfa, algodón, etc.Umbrales de daño: No se conocen. Se recomienda evitar unadefoliación mayor al 20% tanto en estado vegetativo como enreproductivo.

Oruga del yuyo colorado (Spodopteralatifascia)Las larvas presentan una coloración gris os-curo a negro aterciopelado con manchitas decolores muy marcadas en el dorso, y una del-gada línea anaranjada que la recorre

longitudinalmente. Si bien se la conoce como la oruga del yuyocolorado, no es este su huésped favorito, prefiriendo diversasespecies hortícolas, ornamentales, oleaginosas e industriales. Eldaño es provocado al alimentarse de las hojas del girasol.

Oruga espinosa (Actinote pellenea)La oruga es de color amarillento al principio, luego rosado oscu-ro. La larva totalmente desarrollada mide 28-31 mm. El cuerpoestá cubierto de cerdas con espinas de color amarillento, rojizo


o negro. La oruga comienza a alimentarse de las hojas respetan-do únicamente las nervaduras cuando el ataque es intenso. Tie-nen hábitos gregarios, el número de huevos por hembra es nu-meroso, en pocos días las hojas de las plantas atacadas quedanreducidas a un esqueleto. La pupa es de color blanco y se locali-za colgada de la planta huésped. El adulto es una mariposa de 41a 62 mm de envergadura alar, de colores llamativos, ocre-ana-ranjada con nervaduras negras, bien visibles; las cuatro alas sontranslúcidas y posee los ángulos alares redondeados.

Chinche verde (Nezara viridula)El adulto mide unos 15 mm de longitud, presen-ta coloración verde o verde con manchas casta-ñas en la cabeza y en la parte anterior delprotorax. La hembra coloca huevos ordenadosen forma de panal, en grupos de 60-80 en el en-

vés de las hojas, éstos son de color cremoso, evolucionando arojizos cuando están próximos a eclosionar. Las ninfas reciénnacidas tienen hábitos gregarios. En un comienzo son rojizaspasando luego a negro con manchas blancas, y finalmente ver-de en estado adulto. Estos y las ninfas de tamaño mayor a 0,5cm son las que causan el daño, que puede localizarse sobre ta-llos, sobre inflorescencias (botones florales y capítulos) y se haobservado que succiona frutos desde el comienzo de llenadohasta bien avanzada la madurez. El período crítico del posibledaño ocurre en prefloración. La plaga se localiza generalmenteen la parte superior del tallo y base del capítulo. Si el ataqueocurre en botón floral se observa la deformación y la desecaciónrápida del mismo, sin posibilidad de producir grano, en otroscasos puede inducir al desarrollo de yemas axilares próximas alcapítulo, dando lugar a la formación de una o más cabezas pe-queñas y sin valor. El capítulo cuando toma consistencia corchosaes muy preferido por la polilla del girasol (Homeosoma heinrichi).Los daños descriptos ocurren con densidades de dos chinchespor capítulo. Se ha observado el fenómeno de retención foliarcuando se presentan densidades mayores, más de seis chinches


por metro, desde fines de floración. Cuando los ataques se ini-cian en una etapa temprana del período reproductivo (botónfloral e inicio de floración) el cultivo ofrece una mayor suscepti-bilidad al ataque con disminuciones del rinde del orden del 10%por cada chinche/capítulo, afectando principalmente el númerode semillas llenas por capítulo. Si los ataques se producen desdefin de floración, los rendimientos caen sólo un 4% por cada chin-che/capítulo. Los ataques ocurridos a partir del período de llena-do del grano, causan el deterioro de los mismos.Umbral de daño: dos chinches por capítulo desde botón floral ycuatro chinches por capítulo desde fin de floración.

Chinche alquiche chico (Edessa meditabunda)Esta chinche es algo más pequeña que la chinche verde y mideaproximadamente 12 mm. La hembra adulta coloca sus huevosesféricos en dos hileras en el envés de las hojas, las ninfas sonachatadas dorso-ventralmente y van cambiando de color a me-dida que se desarrollan pasando por tonalidades amarillas a ver-dosas. En sus últimos estadios pueden ser reconocidas por pre-sentar en el borde de su cuerpo una delgada línea oscura irregu-lar. El adulto es verde y presenta alas de color castaño. Los da-ños son similares a los de la chinche verde, los años de sequíafavorecen su aparición.

Chinche de los cuernitos, chinche marrón ochinche barriga verde (Dichelops furcatus)El adulto mide aproximadamente unos 10 mm,de color marrón en el dorso y verdeventralmente. Se caracteriza por tener en la re-gión anterior de su cabeza dos proyecciones di-rigidas hacia delante, y al costado de su cuerpo,

del protorax salen dos proyecciones laterales a modo de espi-nas. Es la menos perjudicial de este complejo. Depositan huevosde color blanco o amarillento, en grupos ordenados en las hojas.


Mosquita del tallo del girasol(Melanogromyza cunctanoides)La hembra adulta es una mosca negrasubverdosa, con reflejos amarillentos metáli-cos de 2 a 2,5 mm de largo. Las larvas blancaso amarillentas penetran en los primeros 6-7cm del tallo, si se encuentran 2 ó 3 puedenocasionar su putrefacción o caída. La

mosquita hembra adulta, encastra sus huevos en el tallo en unaespecie de celda y a partir de allí la larva forma galerías paraempupar en la celda inicial desde donde emerge para iniciar unanueva generación. El daño está relacionado con el parénquimaque destruyen y la intoxicación de los tejidos adyacentes a lasgalerías que contienen excrementos de las larvas. Las galeríascontribuyen a quebrar los tallos con los vientos comunes e im-pedir o dificultar la circulación de savia. En la última etapa delcultivo dañan los capítulos, pero el daño inicial es el de mayorimportancia. Cuando las larvas atacan la base del capítulo oca-sionan la podredumbre del tejido esponjoso y provocan el des-grane.

Mosquita del capítulo del girasol(Melanogromyza minimoides)Los adultos son pequeñasmosquitas, de aproximadamenteunos 2 mm, de coloración generalnegra con reflejos metálicos verdo-sos, los balancines son de color ne-gro. La hembra tiene el aparatoovipositor muy alargado. Lasmosquitas comienzan a ser vistassobre los capítulos apenas abrenlas brácteas del botón floral, las

hembras depositan sus huevos entre los primordios de las florestubulares. Las larvas después de emerger perforan la parte infe-


rior de las flores o granos en formación para alimentarse de laparte interna de los mismos. También hay daño como consecuen-cia del desplazamiento de las larvas a través de las flores. En loscapítulos se observa un secado prematuro de las anteras y de lasflores tubulares, que al ser retiradas queda descubierto el granovano. Los daños se pueden confundir con fallas en la poliniza-ción, pero si se efectúa un corte transversal del capítulo se ob-servan larvas y/o pupas en los ovarios y granos en desarrollo. Nose conocen umbrales. Las siembras más tardías son las que regis-tran mayores daños.

Oruga del capítulo del girasol o polilla del girasol (Homoeosomaheinrichi)El insecto adulto es una polilla gris-canela, de 15 a 20 mm deenvergadura alar. Aparecen en floración las hembrasoviponiendo entre o dentro de las flores fértiles. Las larvas al-canzan 25 mm de largo, son de color amarillo verdoso en la par-te ventral; en el dorso tienen cinco líneas marroneslongitudinales. Las larvas en sus primeros estadios se alimentande órganos florales, polen y bracteas, para luego descender, ca-vando galerías en el interior del receptáculo y roer o perforar elinterior de los aquenios. Empupa dentro y entre las semillas. Losdaños se inician en el borde y avanzan hacia el centro del capítu-lo. La inflorescencia toma un aspecto característico por la red dehilos de seda que la larva utiliza para protegerse. Las condicio-nes que predisponen al ataque son las siembras tardías (para lazona norte y centro del área girasolera), donde se han registra-do datos de pérdidas desde 50 hasta 100%. El control cultural sebasa en hacer siembras tempranas y utilizar híbridos resistentes.La plaga concentra el 75% de la oviposición en los primeros 6días a partir del inicio de la floración; por eso los híbridos debenser de floración corta y homogénea y eso determina, además,una mayor efectividad de los insecticidas. Dado su hábitoalimentario son de muy difícil control químico.


Vaquita de San Antonio (Diabrotica speciosay D. significata)Las larvas son de color blanco, amarillentas,con extremos oscuros. Totalmente desarro-lladas miden 9 mm. Tienen hábitos subterrá-neos. Se alimentan de raíces y tallitos de lasplántulas.Los adultos son cascarudos, de 6 mm de lar-

go y de color verde brillante, con tres manchas amarillentas encada élitro (alas). La cabeza también es amarillenta. Los adultosprovocan daños visibles atacando el cultivo en cualquier estadode desarrollo, alimentándose sobre todo de las hojas, haciendoperforaciones en los cotiledones, hojas nuevas, como así tam-bién de las bracteas y flores liguladas. No se conocen umbralesde daño.

Vaquitas de las flores (Colaspis sp yMaecolaspis sp.)Estas vaquitas son mucho menos frecuen-tes y abundantes que la anterior, se alimen-ta preferentemente de los pétalos de lasflores, aunque también se las ha observa-do sobre el follaje. Es de color marrón me-

talizado la primera y verde metalizado brillante la segunda.

Chinche diminuta Nysius sp.Los adultos presentan coloración general negra, grisáceo-negruzca, tienen ojos grandes, globosos y negros, y antenas con4 segmentos. Este hemíptero afecta las plántulas de soja. Losdaños son muy graves sobre todo en los primeros estados delcultivo y desde la emergencia misma de la soja, ocasionandomuerte de plántulas y con frecuencia en gran cantidad. Pero esmuy frecuente verla en los capítulos de girasol.Umbrales de daño determinados para el cultivo de girasol, en


Australia indican: En botón floral: 10 chinches y 20 chinches encapítulo.

4.2.3 Entomófagos

Se denomina entomófagos a los organismos que se alimentande insectos. También pueden ser llamados enemigos naturalesde las plagas, dado que naturalmente cumplen la función de re-ducir las poblaciones de fitófagos, disminuyendo sus posibilida-des de desarrollarse y eventualmente de producir daño econó-mico. Por tal motivo, se recomienda revisar los lotes de girasolcon el objetivo de verificar la presencia o no de enemigos natu-rales en sus distintas especies y estadios, así llegar a conclusionesaproximadas sobre la posible evolución de los insectos no desea-dos. Se puede agrupar a los enemigos naturales en las siguientescategorías: parasitoides, patógenos y depredadores:

Los parasitoides son organismos que desarrollan alguna etapa desu ciclo de vida a expensas de otro individuo, alimentándose delmismo hasta causarles la muerte. Se diferencia de un organismoparásito por causar la muerte a su hospedador. Los parasitoidesde insectos plagas pertenecen casi exclusivamente a los órdenesHymenoptera (avispas) y Diptera (moscas). Los patógenos sonmicroorganismos (virus, hongos, bacterias y nemátodos) que sealimentan, desarrollan y reproducen dentro o sobre de otro orga-nismo causándole una enfermedad o la muerte. Los depredadoresson organismos que cazan, matan y consumen su presa. Durantesu ciclo de vida consumen más de una presa produciéndoles a to-das la muerte, siendo menos específicos que los anteriores. Losdepredadores son insectos masticadores en su mayoría, aunquetambién hay con aparatos bucales suctores, registrándose repre-sentantes de muchos órdenes: arácnidos (arañas), Neuroptera(crisopas), Hemiptera (chinches depredadoras), Diptera (sírfidos)y Coleoptera (vaquitas y carábidos).


a. ParasitoidesHymenopteraTrichogrammaTodas las especies son parasitoides de huevos de insectos, parti-cularmente de lepidópteros. Los adultos son pequeñas avispasde menos de 0,5 mm de largo, de cuerpo compacto y coloresgeneralmente amarillo y negro, con ojos rojos y antenas cortas.La hembra deposita sus huevos en huevos del huésped, dondese desarrollan las larvas que posteriormente se transforman enadultos. El huevo parasitado se torna negro cuando se comple-ta el desarrollo. Se produce comercialmente para ser liberadopara control biológico.

Trissolcus sp. y Telenomus sp.Son pequeñas avispitas de unos pocos milímetros de longitud.Ambas oófagas parasitoides de huevos de chinches. Son muyabundantes y frecuentes en las regiones girasoleras.

Cotesia bourquiniAvispa que parasita a los gusanos cortadoresprincipalmente, entre otros lepidópteros. Estaespecie coloca sus huevos sobre larvas delepidópteros, al eclosionar las larvas comien-zan a alimentarse del interior del lepidóptero

huésped, sin llegar a matarlo completamente, luego la larvaempupa en un capullo blanco sobre el huésped. La avispita es unpequeño parasitoide de no más de 2 mm de longitud.

Casinaria plusiaePertenece al complejo de parasitoides que atacan larvas delepidópteros, en especial a las del Género Rachiplusia. El capullo,blanquecino con manchas oscuras, es externo a la larva que lesirvió de huesped.

Copidosoma floridanum y Litomastix spLas hembras de estas avispas depositan huevos poliembriónicos


en larvas de lepidópteros. Cada huevo se subdivide, dando lugara la emergencia de cientos de adultos. Las larvas de isocamedidora parasitadas por estas especies toman una forma de«S» previo a la formación de la pupa. Son parasitoides muy efec-tivos en el control de plagas de lepidóteros.

Ophion sp.Parasita a la oruga militar tardía o gusanocogollero (S. frugiperda), como así también alos gusanos cortadores. Es una avispa colorcastaño claro rojizo, patas y antenas largas,alas membranosas grandes y delicadas. Lahembra deposita su huevo en larvas huéspe-

des, de las cuales se desarrolla la cría hasta empupar haciendoun capullo marrón fuera del individuo huésped, causándole sumuerte.

Euplectrus sp.Parasitoides de la oruga medidora y del gusano cogollero, entreotros noctuidos. La característica de este grupo de avispitas esque las hembras depositan sus huevos en una larva huésped, és-tos se desarrollan y forman una gran colonia de larvas. Cuandocompletan su desarrollo a expensas de la larva, tejen un capulloquedando por debajo de los restos de la larva huésped.

DípteraVorya ayerzaiLa hembra adulta deposita un huevo sobre el huésped, cuandonace la larva penetra y se desarrolla en el interior de la larva dellepidóptero, donde crece y empupa, terminando con la vida delhuésped.

Trichopoda giacomelliEs de tamaño semejante a la mosca domestica, o algo mayor, secaracteriza por tener flecos o pelos en las patas traseras. Parasitaa los adultos y ninfas de últimos estadios de la chinche verde


especialmente, como así también a otros individuos de la familiade chinches pentatómides. Los huevos blancos que deposita lahembra son visibles sin la necesidad de emplear aumentos. Laslarvas se desarrollan y alimentan del interior del insecto.

b. EntomopatógenosLos insectos, al igual que otros seres vivos, pueden ser infecta-dos por microorganismos. Bajo ciertas condiciones ambientales,como mucha humedad y altas poblaciones de insectos, estosmicroorganismos pueden causar epizootias que reducendrásticamente la entomofauna. Algunos de estos patógenos seproducen comercialmente y son aplicados en los cultivos en lu-gar de los insecticidas convencionales.Los hongos más frecuentes que juegan un rol importante en laregulación de algunas plagas del girasol son Entomophtora sp.,que ataca larvas de oruga medidora, y Nomuraea rileyi, muy fre-cuente en las orugas medidoras y en otras desfoliadoras. En elcaso de N. rileyi las larvas muertas se tornan blancas y toman unaspecto rígido y quebradizo, permaneciendo adheridas a las plan-tas por sus falsas patas abdominales. Luego de esta fase, el hon-go llega a su etapa reproductiva donde disemina los esporos. Enesta etapa la larva se cubre de un polvo verdoso y comienza adesintegrarse.Entre las bacterias que causan epizootias, se destaca Bacillusthuringiensis por estar formulada comercialmete para controlselectivo de larvas de Lepidóptera y de otros Ordenes, comoDiptera y Coleóptera. Las larvas afectadas se vuelven inactivas,dejan de comer y regurgitan jugo gástrico oscuro, posteriormen-te se vuelven flácidas y mueren a los pocos días.Los virus pueden estar presentes en las poblaciones de insectosen forma permanente y cuando se dan las condiciones, producirepizootias. Producen diferentes sintomatologías, aunque las másfrecuentes se caracterizan por que las larvas trepan a las partessuperiores de las plantas y cuelgan muertas de las hojas superio-res, con el cuerpo seco o apergaminado de color castaño oscuro.


Entre los nemátodos que parasitan a los insectos, se destacanpor su importancia las Familias Heterorhabditidae ySteinernematidae, siendo ésta última un importante reguladornatural de los gusanos del suelo. Estos entomopatógenos, man-tienen relaciones simbióticas con bacterias, que les proveen apor-tes nutricionales y produce antibióticos y bacteriocinas impi-diendo la entrada de organismos oportunistas en el cadáver delinsecto. Los insectos de los órdenes Lepidoptera y Coleopterason los más susceptibles a sus ataques.

c. DepredadoresArañasTodas las arañas son depredadoras, y durante su ciclo de vidacapturan y consumen muchas presas, brindando un importanteservicio de regulación natural de plagas agrícolas.

CrisopasLas larvas de crisopas son voraces depredadoras (a diferencia delos adultos que se alimentan de polen). Consumen trips, pulgones,ácaros, huevos de lepidópteros, etc. Las hembras adultas depo-sitan huevos pedicelados muy característicos. La larva desarro-llada llega a un cm y es de coloración beige-verdosa con man-chas marrones, tienen dos mandíbulas tubulares muy fuertes enforma de pinza de las cuales se alimenta succionando la presacapturada. El adulto tiene ojos prominentes y antenas largas, esverde con alas reticuladas y transparentes, de mayor tamaño queel resto de su cuerpo.

SírfidosLos adultos son moscas de colores vivos o metalizados, de vue-lo rápido, permanecen detenidas en el aire. Las hembras colo-can huevos en colonias iniciales de pulgones, de los que luegose alimentan las larvas que también son activas predadoras deotros insectos. Empupan sobre el follaje, las pupas tienen unaforma semejante a una semilla de uva y permanecen pegadas alas hojas.


Chinche pirata (Orius insidiosus)Son insectos pequeños, de 2-3 mm aproxima-dos de longitud. Presentan el tegumento os-curo y las membranas de los hemiélitros (alas)son blanco-amarillentos. Se alimentan de trips,pulgones y huevos de lepidópteros. Las nin-

fas son de coloración marrón rojiza.

Chinche ojuda (Geocoris sp)Es de coloración negra, con hemiélitros trans-parentes, mide 4 mm aproximadamente, tie-ne ojos muy prominentes, de ahí su nombre.Se alimenta principalmente de pulgones, tripsy de otros pequeños insectos.

Chinche nabis (Nabis sp)Es de color marrón claro, alargada de aproxi-madamente 8 mm, con patas y antenas largasy delicadas. Se alimentan de huevos y peque-ñas larvas de lepidópteros, trips y pulgones.

Chinche podisus (Podisus nigrispinus)Es de coloración castaño oscura a rojiza la hem-bra y el macho de color marrón grisaceo-ver-doso, sus huevos son de coloración oscura ylas ninfas rojizas o castañas. Se alimentan prin-cipalmente de larvas de noctuidos (especial-

mente huevos de oruga medidora del girasol y de oruga de lasleguminosas), también pueden predar larvas de la oruga de laalfalfa, ninfas de la chinche de la alfalfa (Piezodorus guildinii) yde la chinche verde (N. viridula).


VaquitasSon numerosos los coccinélidos o vaqui-tas que habitan los cultivos ejerciendocontrol natural en poblaciones plagas,tanto en estado de larvas como adultos.Se alimentan preferentemente depulgones y también de huevos y larvasde primeros estadíos de lepidópteros, co-

chinillas, ácaros y otros pequeños insectos perjudiciales. Los adul-tos presentan una coloración muy vistosa. Las larvas son de co-loración negra con manchas rojas o naranjas, su cuerpo es alar-gado, deprimido dorsoventralmente y con prominentes patasque permiten su desplazamiento. Sus huevos son ovalados, decoloración amarilla o anaranjados, colocados en grupos. Las es-pecies más abundantes son:

Vaquita de San José (Cycloneda sanguínea)Su cuerpo es redondeado, convexo y brillan-te, con cabeza y pronoto negro con bordesblancos y dos manchas blancas en cada lado.Sus alas son de color rojo o naranja intenso.

Vaquita u overo grande (Coleomegillaquadrifasciata)Es de coloración negra con manchitas rojas,que en el pronoto dejan una «H» negra. Sucuerpo oval está netamente separado delpronoto.

Vaquita u overo mediano (Eriopis connexa)Es una de los más abundante en losagroecosistemas pampeanos, de color negrocon manchitas rojas y blancas. Cuerpo alar-gado y separado del pronoto.


Vaquita u overo chico (Hyperaspis festiva)Es de tamaño muy pequeño, no más de 3 mmy presenta coloración negra con cuatromanchitas triangulares rojas en sus élitros.

Vaquita (Hippodamia convergens)Su cabeza es negra al igual que el pronoto,que presenta bordes claros a su alrededor ydos manchitas blancas, su cuerpo es oval, decolor naranja intenso con puntos negros.

Vaquita (Coccinella ancoralis)Su cuerpo es redondeado, negro con dos lí-neas color naranja que forman dos arcos enlos bordes internos de los élitros. Tiene ta-maño inferior a las otras especies.

Vaquita multicoloreada asiática (Harmonia axyridis)Tanto adultos como larvas son de mayor tamaño que las vaqui-tas autóctonas; las larvas tienen una coloración negro - azuladacon manchas naranjas y pequeñas púas dorsales. Los adultos pre-sentan una variedad de coloraciones que incluyen desde formasamarillas sin puntos, hasta formas negras con manchas amari-llentas, el pronoto es amarillo con cinco manchas negras encon-tradas que forman una «M» característica.

CarábidosLos representantes más conocidos son las «juanitas» o «catangas»(Calosoma argentinense). Son de color negro brillante con refle-jos metálicos, de 2 y 3 cm de longitud. Son muy activos, caminan


muy rápido en busca de presas y son voraces depredadores conmandíbulas grandes. Otros carábidos comunes son Galeritacollaris y Lebia concinna, esta última suele ser confundida conuna «vaquita» debido a su coloración negra y roja con pintitasblancas, pero son de cuerpo más pequeño y alargado que lasvaquitas y de prominentes mandíbulas típicas de un carábido.G.collaris es de color negro con el pronoto colorado. Ambosmucho más pequeños en tamaño que la especie anterior.


Gusano blanco: PREVIO a la siembra y durante la etapa inicial del cultivo, realizar un

muestreo del suelo, analizando el complejo de “gusano blanco” que pueden causar importantes

daños. Se recomienda realizar tratamiento a la semilla si se detectan 6 y 8 larvas/m.

Orugas cortadoras: PREVIO a la siembra, monitorear el lote y observar malezas cortadas en

el barbecho. Efectuar tratamiento del suelo con una infestación de 1 larva/3-5 m2. POSTERIOR

a la siembra, recorrer el lote desde la emergencia cada 3 o 4 días. Iniciar medidas de control si

se detectan un 3 a 5 % de plantas cortadas y la presencia de 2 larvas cada 100 plantas.

Gorgojo del girasol: PREVIO a la siembra, realizar muestreos de suelo para detectar la

presencia de larvas, tomando medidas preventivas mediante tratamiento de suelo, en la linea

de siembra o de semilla. POSTERIOR a la siembra, cuando se detectan un 3 a 5 % de plantas

dañadas o la presencia de 4 o 5 gorgojos adultos por planta.

Tenebriónido del girasol: Recorrer el lote para detectar su presencia y realizar tratamientos

de post-emergencia cuando se determine un 3 a 5 % de plantas dañadas.

Orugas desfoliadoras: Desde el desarrollo vegetativo del cultivo en adelante recorrer el lote y

controlar cuando se registren 8 a 10 larvas por planta o un 20 % de desfoliación. Tener en

cuenta que en girasoles fertilizados se incrementa el área foliar, y por lo tanto se puede aceptar

mayornumero de larvas (10 a 15)

Mosquita del capitulo: Cuando se retrasa la fecha de siembre del girasol, esta plaga tiene

mayor incidencia. No se conoce umbral del daño, y como medidas se sugiere el monitoreo del

adulto desde botón floral en adelante. En caso de tener altas poblaciones se realizan

aplicaciones florales.

Chiches: Se recomienda monitorear el lote desde el botón floral a inicio de la floración y

registrar el numero de chinches por botón floral y capitulo. Se recomienda control si hay 2

chinches/capitulo, ya partir de fin de floración 4 chinches/capitulo.

Polinizadores: Se debe contemplar que el momento donde desarrollan su actividad los

polinizadores coinciden con una etapa del cultivo que puede requerir de aplicaciones deagroquímicas para el control de plagas insectibles. Es en este periodo, donde se debe tener en

cuenta, el tipo de insecticida (selectividad) las recomendaciones de aplicación, su formulación,

como así también el momento de oportuno para la aplicación teniendo presente los horarios de

mayor polinización (10.00 a 14.00 h.)

CICLO DEL CULTIVO DEL GIRASOL PRINCIPALES PLAGAS Y LOS POLINIZADORES

Gus.blanco

Orugas desfoliadoras

Mosquita del capituloChinches

Polinizadores

O. CortadoraTenobrionidosGorgojo de girasol

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Siembra

Emergencia

Inicioetapareproductiva Floración plana

Madurezfisiológica

Cosecha


6. Consideraciones finales

La expansión de los monocultivos en el ámbito mundial a expen-sas de la vegetación natural ha reducido drásticamente labiodiversidad en regiones templadas y está ocurriendo en nive-les alarmantes en las regiones tropicales. Esta crisis de labiodiversidad está unida a la degradación de los servicios queprestan los ecosistemas, entre los que se encuentra la poliniza-ción mediante insectos especializados para tal fin. Como com-plemento de la polinización natural se presenta la apicultura queagrega al servicio prestado a las plantas, la producción comer-cial de miel.Las regiones más desarrolladas del mundo están viendo en for-ma alarmante una declinación en el número de colmenas en pro-ducción, con evaluaciones de posibles causas que no indicanfehacientemente las razones por las que se produce tal fenóme-no. En USA, donde se estima que el servicio de los polinizadoresinvolucra más de 130 cultivos con un valor de 15 billones de dó-lares aproximadamente, se calcula que las colmenas comercialesde abeja europea han disminuido en un 40% en los últimos años(de un máximo de más de 4 millones de colmenas a 2,41 millonesen la actualidad), siendo las supuestas causas: 1) la presencia denuevos patógenos o variantes de los ya establecidos; 2) el ata-que de nuevos parásitos; 3) situaciones de tensión nutricional oambiental y 4) uso excesivo de pesticidas. El Departamento deAgricultura (USDA) ha desarrollado un plan de acción para afron-tar el problema, conocido como «Desorden del colapso de lascolonias» (Colony collapse disorder o CCD) (Kaplan, 2007).En Europa también se observó una disminución en las poblacio-nes de abejas, destacándose en este sentido lo que está ocurrien-do en España, Alemania y particularmente Francia, donde se rea-lizaron estudios tratando de relacionar el problema con el usode pesticidas en semillas de girasol, lo que no pudo ser confirma-do. Diversos trabajos adjudicaron la declinación de las colmenasa varios factores: infestación por Varroa, enfermedadesbacterianas o por otros patógenos, condiciones climáticas ad-


versas, incompatibilidades fisiológicas y genéticas, prácticas demanejo inadecuadas y uso excesivo de insecticidas (Maus, 2003).En Argentina, el número de colmenas se incrementó ligeramen-te en los últimos años, lo que fue acompañado por más produc-ción, con las variaciones lógicas derivadas de las condicionesclimáticas de cada zona. La producción nacional está expuesta ala problemática detallada para los países desarrollados, particu-larmente el avance de los monocultivos y el uso excesivo de in-secticidas. Ejemplos de ello se observan en zonas donde la sojaestá presente, con empleo de herbicidas que reducendrásticamente la diversidad vegetal, lo que conlleva problemasevidentes para la producción apícola comercial, o el uso de in-secticidas para control de isocas medidoras del girasol, próximoo al inicio de la floración, sin respetar los niveles de daño, con losconsiguientes perjuicios para el cultivo, la producción apícola yel ambiente en general.Se debe considerar el uso de insecticidas selectivos, el respetopor las recomendaciones de aplicación (evitando los horarios demayor actividad de los polinizadores), como así también la for-mulación de los productos (un producto puede ser selectivo, peroal estar formulado en polvo, puede ser trasladado a la colmenadurante la polinización). Finalmente, de ser necesario usar in-secticidas, emplear los activos registrados en SENASA para apli-cación en girasol, detallados en el Anexo. Además, a los costosde control deberán añadirse los equivalentes al rendimientopotencial no logrado por muerte de los polinizadores cuandolos tratamientos coincidan con el período de floración.En la medida en que se manejen dichos factores en forma ade-cuada, se podrán superar y así mantener las tendencias actualesen producción, exportación y en definitiva ingresos económi-cos, que es lo que finalmente se debe tener en cuenta, tantopara la miel como para el girasol.


7. Bibliografía

----- Altieri, M.A. 1992. El rol ecológico de la biodiversidad enagroecosistemas. CLADES (Centro Latino Americano de Desarrollo Sus-tentable) Santiago, Chile. 4: 2 - 18.

----- Altieri, M.A. 1994. Biodiversity and Pest Management inAgroecosystems. Haywort Press. New York. 185 p.

----- Amaro, M.A. 1987. Influencia del porcentaje de cuajado sobre losdistintos componentes del rendimiento del girasol (Helianthus annuusL.) V Reunión Técnica Nacional de Girasol. Bahía Blanca, 2 – 4/09/87.Trabajos Presentados: 237 – 244.

----- Aragón, J. 2002. Manejo de insectos y otros organismos perjudi-ciales. En: Díaz Zorita, M. y G. Duarte. Manual Práctico para el Cultivo deGirasol. Capítulo VII. INTA - ASAGIR. p. 127.

- Alvarado, L.; J. Basail; J. Bonel; J. Brasesco; A. Codromaz de Rojas;A. Conde; A. Coscia y E. Dagoberto. 1980. El cultivo del maíz. ColecciónPrincipales Cultivos de la Argentina. SAGPYA - INTA . . . . . pp. 88-102.

----- Basualdo, M. 2001. Comportamiento de forrajeo de abejas melíferas(Apis mellifera L.) en lotes de producción de semilla híbrida de girasol(Helianthus annuus L.) en ecotipos de abejas de clima templado ysubtropical de Argentina. Tesis Doctoral. Universidad Nacional Centrode la Provincia de Buenos Aires. 145 p.

- - - - - Beltrame R. y C. Salto. 2000. Ammi majus y Foeniculum vulgarecomo hospedantes de áfidos y sus enemigos naturales. Revista de laFacultad de Agronomía, Universidad Nac. Buenos Aires, 20 (3):395-400.

----- Bonmatin, J.M.; P.A. Marchand; R. Charvet; I. Moineau; E. R.Bengsch and M.E. Colin. 2005. Quantification of imidacloprid uptake inmaize crops. J. Agric. Food Chem. 53: 5336 – 5341.

----- CASAFE. 2005. Guía de Productos Fitosanitarios para la RepúblicaArgentina. Cámara de Sanidad Agropecuaria y Fertilizantes. 12° Edición.Buenos Aires. 2080 p.

----- CASAFE. 2007. Guía de Productos Fitosanitarios para la RepúblicaArgentina. Cámara de Sanidad Agropecuaria y Fertilizantes. 13° Edición.Buenos Aires. 2252 p.

----- Chamer, A.M.; M. Devoto; J.P. Torretta; D. Medan; A.I. Mantese;N.H. Montaldo y N. Bartononi. 2004. Polinización del girasol: efecto so-bre el rendimiento. II Reunión Binacional de Ecología, Mendoza, Argen-tina, Noviembre 2004.

----- Chamer, A.M.; A.I. Mantese; D. Medan y N.J. Bartoloni. 2005. Ren-


dimiento máximo de girasol ¿Es mejor el polen propio o el ajeno? XXXJornadas Argentinas de Botánica, Rosario, 6/11/05. Resúmenes: 33.

----- De Grandi Hoffman, G. and J.C. Watkins. 2000. The foraging activityof honey bees Apis mellifera and non-Apis bees on hybrid sunflowers(Helianthus annuus) and its influence on cross-pollination and seed set.J. Apic. Res. 39 (1 – 2): 37 – 45.

----- Ghazoul, J. 2005. Buzziness as usual? Questioning the globalpollination crisis. Trends in Ecology and Evolution 20 (7): 367 –373.

----- Greenleaf, S. and Kremen, C. 2006. Wild bees enhance honey bees’pollination of hybrid sunflower. Proceeding National Academy ofSciences of America 103 (37): 13890 – 13895.

----- Hoffman M. P. and A. C. Frodsham. 1993. Natural enemies ofvegetable insect pests. Cornell Cooperative Extension Media Services,Ithaca, New York, USA, 63 pp.

----- Iannone, N. y P. Leiva. 1994. Manejo de plagas animales del gira-sol en la región pampeana argentina. INTA EEA Pergamino. 93 p.

----- Iglesias, S.W. 1984. Himenópteros polinizadores y su efecto encontenido de aceite y rendimiento en girasol (Helianthus annuus L.).INTA EEA Manfredi. Oleico 26: 11 – 13.

----- Kaplan, K. 2007. USDA announces colony collapse disorder researchaction plan. USDA News & Events. On line: http://www.ars.usda.gov/pr/2007/070713.htm

----- Kasina, J. M. 2007. Species richness of bees visiting crop flowers inthe farmlands surrounding Kakamega forest, Kenia. InternationalConference for Tropical Ecology, Bonn, Germany, 21 –25/02/07. On line:http://www.zef.de/module/register/staff_detail.php?pk=429

----- Langridge, D. F. and R.D. Goodman. 1981. Honeybee pollinationof sunflower cultivars Hysun 30 and Sunfola. Austr. J. Exp. Agric. An.Husb. 21 (111): 435 – 438.

----- Lopez, O., C. Salto y S. Luiselli. 2003. Foenicullum vulgare Millercomo hospedera de pulgones y sus enemigos naturales en otoño. Revis-ta FAVE Ciencias Agrarias 2 (1):19-29

----- Lorenzatti de Diez, S. 1979. Estrudios de polinización de girasol(Helianthus annuus) con abejas meliferas (Apis mellifera) comparando laaislación individual de capítulos frente a la de parcelas con jaula. INTAEEA Manfredi. Oleico 7: 9 –14.

----- Lorenzatti de Diez, S. 1984. Observaciones sobre polinización porabejas en un lote de producción de semilla híbrida de girasol. INTA EEAManfredi. Oleico 27: 19 – 20.


----- Manetti, P.; J. C. Ves Losada y E. Teppaz. 2007. Manejo de plagasanimales: estado actual y novedades. 4° Congreso Argentino de GirasolASAGIR. Buenos Aires, 29 – 30/05/07. Trabajos Presentados: 169-176.

----- Margueritis A. y H. Rizzo. 1965. Lepidópteros de Interés Agrícola.Orugas, Isocas y Otras Larvas que Dañan a los Cultivos. Edit. Sudamerica-na. Buenos Aires. 197 p.

----- Maus, C.; G. Curé and R. Schmuck. 2003. Safety of imidaclopridseed dressings to honey bees: a comprehensive overview and compilationof the current state of knowledge. Bulletin of Insectology 56 (1): 51 – 57.

----- Medan, D.; M. Chamer; M. Devoto; N. Montaldo; A. Mantese; N.Bartoloni, A. Roig Alsina y S. Leguizamón. 2003. ¿Necesitanpolinizadores los girasoles argentinos?. II Congreso Argentino de Gira-sol. Resúmenes: p/s/n.

----- National Research Council of the National Academies. 2007. Sta-tus of pollinators in North America. National Academies Press. Was-hington DC, pp. 104 – 109.

----- Pickett C. and R. Bugg. 1998. Enhancing biological control. Habitatmanagement to promote natural enemies of agricultural pests. Universityof California, Berkeley, USA. 422 p.

----- Quintana F. y A. Abot. 1987. Lista comentada de los organismosanimales que atacan al cultivo de girasol en la República Argentina.INTA EEA Balcarce - Universidad Nac. Mar del Plata. 52 p.

----- Rortais, A.; G. Arnold; M.P. Halm and F. Touffet Briens. 2005. Modesof honeybees exposure to systemic insecticides: estimated amounts ofcontaminated pollen and nectar consumed by different categories ofbees. Apidologie 36: 71 – 83.

----- Ryan, G.S. y L.F. Brugnoni (Coord.). 1986. El cultivo del girasol.INTA Serie Agricultura. Oleaginosas N° 4802. 40 p.

----- Saini, E.D. 2004. Insectos y ácaros perjudiciales al cultivo del gira-sol y sus enemigos naturales. INTA Instituto de Microbiología y ZoologíaAgrícola, Public. N° 8. Buenos aires. 68 p.

----- Salto, C. 1979 a. Control biológico de la isoca medidora del gira-sol (Rachiplusia nu G.). INTA EEA Manfredi. Oleico 7: 21 – 22.

----- Salto, C. 1979 b. Isoca medidora del girasol (Rachiplusia nu G.), biolo-gía e ingesta diaria en condiciones naturales. INTA EEA Balcarce. ReuniónAnual de Actualización Técnica en Girasol. Balcarce, agosto 1979. 9 p.

----- Salto, C. 1980. Ensayos para control de isoca medidora (Rachiplusianu G.) en girasol con distintos pesticidas. INTA Chacra Experimental deBarrow. Public.Técnica 17. 9 p.


----- Schmuck, R.; R. Schöning; A. Stork and O. Schramel. 2001. Riskposed to honeybees (Apis mellifera L., Hymenoptera) by an imidaclopridseed dressing of sunflowers. Pest Man. Sc. 57 (3): 225 – 238.

----- Sosa, M.A. 1988. Hymenoptera pollinators on sunflower in NorthDakota. M.S.Thesis. Norht Dakota State University. School of Agricultureand Applied Science. 68 pp.

----- Torreta, J.P. 2007. Entomofauna relacionada con la polinizacióndel girasol (Helianthus annuus L.) en Argentina. Tesis Doctoral. Univ.Nac. Buenos Aires. Fac.Agronomía. 103 p.

----- Woodward, A. y H. Zorzín. 1986. Experiencias en polinización degirasoles (Helianthus annuus L) con abejas melíferas (Apis mellifera L).INTA EEA Manfredi. Oleico 35: 33 – 39.

8. Anexo

Productos registrados en SENASA para control de insectos per-judiciales, con detalles de toxicidad y peligrosidad para abejas

En el Cuadro 2 se presentan los productos registrados para eluso en el cultivo de girasol, detallando la Dosis Letal Media (DL50), la clasificación toxicológica, la peligrosidad para abejas y losinsectos para los cuales fueron registrados. La información fueelaborada a partir de las Guías de Productos Fitosanitarios(CASAFE, 2005 y CASAFE, 2007).


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(1)

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sado

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toxic

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aguda

delfo

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conejo

s,expre

sado

en

mg/k

g.

(3)

DL

50

ora

laguda

para

rata

sen

suspensió

nacuosa.

(4)

No

hay

form

ula

cio

nes

com

erc

iale

sre

gis

tradas

en

Arg

entina.

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insectos en girasol

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