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Fitopatología Area Biodiversidad Vegetal y Microbiana Campo Experimental “Villarino” Casilla de Correo Nº 14 - S2125ZAA Zavalla - Santa Fe – Argentina www.fcagr.unr.edu.ar – [email protected]

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Fitopatología

Area Biodiversidad Vegetal y Microbiana

Campo Experimental “Villarino”

Casilla de Correo Nº 14 - S2125ZAA

Zavalla - Santa Fe – Argentina

www.fcagr.unr.edu.ar – [email protected]

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Estrategias de Manejo sustentable de

Enfermedades

Docente: Profesora Rosanna Pioli

Dra. Or. Ciencias Biológicas. Esc. Grad. Fac. Cs. Bioquímicas y Farmacéuticas, UNR.

Investigador Cat. II (Máx. I) PNI. Ingeniera Agrónoma. Fac. Cs. Agrarias, UNR.

Profesor Adjunto, Cátedra Fitopatología, Carrera Ingeniería Agronómica.

Profesor A / Cargo Botánica Criptogámica, Lic. Recursos Naturales y Biodiversidad

Area Biodiversidad Vegetal y Microbiana: Responsable Titular del Laboratorio BioVyM

2014

JORNADAS DE PROTECCIÓN VEGETAL

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De acuerdo a la Reunión Mundial sobre Alimentación 1996. “La seguridad alimentaria ocurre o existe cuando toda la gente y de manera sostenida en el tiempo tiene acceso a un alimento suficiente, seguro y nutritivo para mantener una vida sana y activa” Propuesta derivada de la presentación del Tema Calidad Sanitaria

Generar estrategias de producción de cultivos y semillas sustentables y en armonía con la vida urbana, rural y la preservación del ambiente.

2014

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PLANTA SANA

es aquella que puede desarrollar sus funciones fisiológicas y expresar su potencial genético

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HONGOS

BACTERIAS

VIRUS

Factores externos Climáticos edáficos Stress hídrico Anegamiento Fitotoxicidad

Factores medio vegetal Stress nutricional Factores fisiológicos

LOS PATÓGENOS

Origen Abiótico

Origen Biótico

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LA OBSERVACIÓN

PRIMER PERCEPCIÓN

ENFERMEDAD Resultante de la Interacción

Genotipo planta – Ambiente - Poblaciones microbianas

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Expresión de la planta

los síntomas

Hartman, Il.U

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Expresión del Patógeno Fúngico

Picnidios

acérvulas peritecios

Peritecios

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PATÓGENO CULTIVO

AMBIENTE FAVORABLE

MANEJO de SUELO y CULTIVO BIÓTICO-ABIÓTICO

ENFERMEDAD

El Sistema planta-patógeno-ambiente

INTERACCIÓN

COMPATIBLE

Espacio Tiempo

Macro Aéreo Edáfico

Micro ambiente vegetal

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LA OBSERVACIÓN PRIMARIA Sn y Sg

DIAGNÓSTICO

ESTUDIOS EPIDEMIOLÓGICOS

CUANTIFICACIÓN

SELECCIÓN de GENOTIPOS

ESTRATEGIAS CONTROL SUSTENTABLES

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Supervivencia y Diseminación Se y Rt Contacto y Penetración Incubación Infección Latencia Invasión y Colonización Reproducción Supervivencia y Diseminación

Cic

lo p

ato

génic

o

Ciclo de las relaciones hospedante-patógeno Ciclo de la enfermedad

DURACIÓN = 6, 15 a 45 días

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HOSPEDANTE – Estados de desarrollo

PERÍODOS

La magnitud de las pérdidas depende de la etapa de desarrollo de cultivo

Foto EMBRAPA

Vegetativo Reproductivo

Nº de granos Peso RIESGO

R5 FL

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CICLOS BIOLÓGICOS

FUENTES Y TIPO DE INÓCULO

BIO

TR

OF

OS

BIO

HE

TE

RO

TR

OF

OS

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RELACIÓN CICLOS - BIOLOGICOS DEL PATÓGENO

- DE ENFERMEDAD

Gral. Fase asexual

Fase sexual

Agrios, 2005

AMBIENTE – combinaciones Tº- Humedad Progreso y Dinámica (nº de ciclos) de la Enfermedad

Penetration

Host recognition

Host plant

signs

symptoms

Fin Incubación

Fin latencia

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EL PATÓGENO y LOS SIGNOS

- a. Macro esclerotos internos, de color negro en tallos y también en vainas.

- b. Esclerotos en contaminación

concomitante con las semillas.

- c. Esclerotos (indicado por flecha)

produciendo apotecios.

a

apotecios

escleroto c

b Berlin D. Nelson

ND Univ

Cristina Palacio

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CICLO BIOLÓGICO de S. sclerotiorum

B

A Sustrato intermedio

colonizado

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Patógenos Hemi Biotrofos

SUPERVIVENCIA

VARIABILIDAD GENÉTICA HOSPEDANTES

INÓCULO PRIMARIO

ETAPA PARASÍTICA sobre el CULTIVO – Fase asexual

RASTROJO

SEMILLAS R. Pioli

R. Pioli

R. Pioli

Tapari APS

ETAPA SAPROFÍTICA – Fase sexual- teleomorfo

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Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas

Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas

Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente

Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas

Manejo y aplicación sustentables de las actuales

**

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Estrategias

Epidemiológicas - Culturales

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ALGUNAS ESTRATEGIAS A SEGUIR

Conocer las fuentes de inóculo

Estimar Inóculo Potencial

Disminuir el Inóculo

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Patógenos Hemi Biotrofos

SUPERVIVENCIA

VARIABILIDAD GENÉTICA

HOSPEDANTES INÓCULO PRIMARIO

ETAPA PARASÍTICA sobre el CULTIVO – Fase asexual

RASTROJO

SEMILLAS R. Pioli

R. Pioli

R. Pioli

Tapari APS

ETAPA SAPROFÍTICA – Fase sexual- teleomorfo

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Introducción de Fuente de inóculo 1º

Hongos asociados a semillas

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Muchas gracias

SÍNTOMAS EN SEMILLAS causados por EFC y OTROS

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Transmisión

Ciclo S Pl PM S Pl

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Importancia de la Asociación Patógeno / Semilla

Importancia Económica

c- La magnitud del daño puede ser evaluado en diferentes momentos o estadios de desarrollo del cultivo, mediante monitoreos: 1- De emergencia- mortandad de plántulas en pre siembra, durante y posterior a la emergencia. 2- Durante el cultivo, evaluando cuantitativa y cualitativamente las pérdidas. 3- Durante el período de almacenamiento.

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Importancia Epifitiológica

La semilla contaminada o infestada es la semilla que sólo transporta o acarrea los microorganismos superficialmente

La semilla infectada es aquella capaz de transmitir al patógeno a la plántula originada. Esta interacción patógeno semillas puede generar distintos niveles de daño: - Daño actual o individual de la semilla de mala calidad.

- Daño potencial posterior a la siembra y sobre el futuro cultivo.

- La semilla infectada constituye un sustrato efectivo para la supervivencia de los patógenos asegurándoles longevidad.

* La semilla actúa como vehículo de transmisión de patógenos a distancia * Representa la primera introducción y/o migración de nuevas patologías desde lotes contaminados a lotes libres

1º Inóculo colonizador

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II- Infección y Mecanismos de transmisión de enfermedades de semillas

II.a- Concepto de un Ciclo de Transmisión:

Se refiere al proceso de transferencia del patógeno y su posterior establecimiento en la planta originada. Desde la semilla a la planta originada Desde la planta madre a sus semillas Esta asociación semillas - planta madre – semillas – plántula

suele denominarse TRANSMISION

II.b- Importancia:

La transmisión por semillas es un proceso muy eficiente por dos aspectos:

En el momento de la siembra posibilita la distribución homogénea del inóculo.

Favorece la infección precoz de la planta,

Coincide con los momentos de mayor susceptibilidad.

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Patógenos asociados a semillas

Momento de infección

Relación con Cultivo antecesor

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INCIDENCIA DE LOS PATÓGENOS en SEMILLAS y porciones de FRUTOS

ubicadas en posición P, M, D

Comunicaciones Biológicas, 2004; Fitopatología, 2000

DISTAL MEDIA PROXIMAL

SEMILLAS

Porciones

FRUTOS

B. VIAS de PENETRACIÓN e INFECCIÓN

C. TEJIDOS COLONIZADOS: Semillas y/o Frutos

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2- Métodos Indirectos en Medio de cultivo

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PATOLOGÍAS EN SEMILLAS

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Relación entre Incidencia de patógenos en semillas de soja, el poder germinativo,

y el % de semilla infectada y muerta (Pioli et al., 1997)

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V.b- Tasas epidemiológicas - Secuencia de determinación

a- Tasa de Inóculo en Semilla b- Densidad de Inóculo c- Tasa de Transmisión d- Tasa de aumento de inóculo e- Tasa de Restablecimiento del Inóculo f- Tasa de Reducción de la productividad

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Interacciones de Patógenos de ciclo

reproductivo asociados a frutos y

semillas de soja

con insectos

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INTERACCIONES PATÓGENOS de FIN DE CICLO

e INSECTOS

El daño patogénico en semillas está directamente relacionado al nivel de chinche / m2

- A mayor cantidad de chinches se observó una mayor incidencia de bacterias y

Fusarium asociados a la semilla de soja.

- Las semillas con daño severo causado por chinche presentaron mayor incidencia de

Phomopsis spp. y Alternaria spp.

- Cercospora kikuchii fue más frecuente en semilla sana y en ausencia de otros

patógenos.

Congreso Mundial soja. Rev. INTA Oliveros

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Patógenos asociados a frutos y semillas

de especies arbóreas

potenciales Hospedantes secundarios

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Patógenos en frutos y semillas de Especies forestales nativas

su relación con la viabilidad de semillas

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III.d- Factores que afectan los Resultados

El equipamiento: Puede acarrear problemas de contaminación y obstaculizar la identificación o alterando los recuentos.

Técnicas auxiliares: Se relacionan fundamentalmente con las condiciones de limpieza y asepsia.

El Número y Tamaño de la Muestra: El Tamaño y representatividad de la muestra. Los análisis deben ajustarse a las Normas Internacionales fijadas por ISTA. Las condiciones y tiempo de almacenamiento de las muestras.

La semilla: Considerar datos sobre temperatura y humedad de cosecha, acondicionamiento, secado y almacenamiento. Edad de la semilla y la posibilidad de supervivencia del patógeno.

El Patógeno: Formas y etapas de supervivencia en patógenos biotrofos y hemi-biotrofos. Momento de infección y su ubicación en la semilla.

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V.a- Patrones de Tolerancia

Factores que inciden en su determinación:

métodos de análisis de semillas utilizados

importancia económica de la especie

el destino geográfico: que se envíe a zonas que actualmente están libres,

pero donde las condiciones ambientales favorecen al patógeno.

factibilidad de control

determinación de la concentración del inóculo en las muestras de semilla y

en el suelo de los lotes de producción.

Los parámetros considerados para la fijación de Patrones de Tolerancia,

son la secuencia de una serie de determinaciones conocidas

como Tasas epidemiológicas

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V.b- Tasas epidemiológicas - Secuencia de determinación

a- Tasa de Inóculo en Semilla b- Densidad de Inóculo c- Tasa de Transmisión d- Tasa de aumento de inóculo e- Tasa de Restablecimiento del Inóculo f- Tasa de Reducción de la productividad

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Fuentes de inóculo 1º ya establecidas

Hongos asociados a Rastrojo

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Degradación del rastrojo y Evolución de población patógena

Evaluó el efecto de Dos rotaciones M-S-T/S y T/S Dos tipos de labranzas SD y LV Factores climáticos (Tº-HR-Ppt) Micota total y específica asociada sobre el proceso de degradación del rastrojo de trigo a través del tiempo.

Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo

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Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo

Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo

Degradación anual del rastrojo de trigo Período de 12 meses

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PERSPECTIVAS

Estrategias de Control Cultural

y Químico

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En cada Bloque

Colonias y picnidios de P. longicolla

T1-SD T2-LM T3- F1 T4- F2 En cada Bloque

Colonias y picnidios de P. longicolla

Efecto de Tratamientos Culturales y Químicos sobre

Patógenos asociados a Rastrojo

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Tablas 1 y 2. Valores promedio de ufc de PL por g rastrojo de soja, bajo 4 tratamientos diferentes

Letras diferentes indican diferencias significativas entre los grupos, para Duncan con =0,05.

11,0 c1952,2 c4583,2 b7489,5 a

T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD

Tabla 1: Trozos de tallo de mayor grosor

P. longicolla asociado al rastrojo de soja

(ufc / g rastrojo)

11,0 c1952,2 c4583,2 b7489,5 a

T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD

Tabla 1: Trozos de tallo de mayor grosor

P. longicolla asociado al rastrojo de soja

(ufc / g rastrojo)

3624,4 bc426,5 c5525,8 b14209,7 a

T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD

Tabla 2: Trozos de ramificaciones finas

3624,4 bc426,5 c5525,8 b14209,7 a

T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD

Tabla 2: Trozos de ramificaciones finas

UFC – P. longicolla asociado a 2 tipos de residuos

de cosecha de soja

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Rendimiento (kg/ha) en parcelas de Soja

con 4 Tratamientos del Rastrojo

TeSD, TeLM, F1SD, F2SD

403239794082

3616

3200,0

3400,0

3600,0

3800,0

4000,0

4200,0

1 2 3 4

Tratamientos

Ren

dim

ien

to k

g h

a

b *

a aa

RESULTADOS DE RENDIMIENTO

en SD Te, LMTe, SD F1 y SD F2

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Los resultados indicaron:

a) La población patogénica asociada al rastrojo decreció de

manera significativa en aquellas parcelas sometidas a alguna

alternativa de control,

sea cultural (T2-Labranza Mínima)

o químicas (T3-FA y T4-FB)

b) Propuesta sugerida para la aplicación de químicos: es en

estadios vegetativos tempranos del cultivo

para protección de plántulas y

tratamiento de la fuente de inóculo primario: rastrojos

(Backman 1985; FCA 2003-2007).

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Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas

Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas

Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente

Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas

Manejo y aplicación sustentables de las actuales

**

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Estrategias genéticas: Caracterización de

interacciones P-P

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Inoculación y selección

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Estudio de respuestas fisiológicas de defensa vegetal

inducidas por hongos foliares en cultivos de soja y trigo

Beccacece Stella; Galli Nora; Giuntoli Gustavo; Uboldi Luciana;

Zanotti Eric; Pioli Rosanna.

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Objetivos:

Detectar el incremento/disminución de algunos compuestos

vegetales isoflavonoides, proteinas totales y actividad de enzimas

peroxidasas, inducidos en respuesta a la inoculación natural de

patógenos foliares.

Identificar cuál/cuáles podrían ser utilizados como moléculas

antifúngicas endógenas en soja y otras especies (trigo).

Difundir estas nuevas alternativas o herramientas bio-químicas

naturales para minimizar el riesgo de enfermedades de cultivo.

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S: H. Sanas

In: H. Inferctadas Sf: 2 Secciones Foliares

Apical

Basal

S: H. Sanas In: H. Inferctadas Sf: 2 SeccionesFoliares

Apical

Basal

S: H. Sanas In: H. Inferctadas Sf: 2 SeccionesFoliares

Apical

Basal

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Fig. 3b : Comparaci ó n de valores medios

de mg PT / ml Ec en hojas Sanas e

Infectadas

Fig. 4 : Comparaci ó n de valores medios de

mg PT / ml Ec en 2 secciones foliares ( Sf ).

H. Sanas H. Infectadas

1 2

29

32

38

41

44

a

b

mg

.PT

/ m

l.E

c

35

Sf . Apical Sf . Basal

1 2 31

33

35

37

39

41

mg

PT

/ m

l E

c

a

b

Proteinas Totales frente a MOR

Fig. 3b : Comparaci ó n de valores medios

de mg PT / ml Ec en hojas Sanas e

Infectadas

Fig. 4 : Comparaci ó n de valores medios de

mg PT / ml Ec en 2 secciones foliares ( Sf ).

H. Sanas H. Infectadas

1 2

29

32

38

41

44

a

b

mg

.PT

/ m

l.E

c

35

Sf . Apical Sf . Basal

1 2 31

33

35

37

39

41

mg

PT

/ m

l E

c

a

b

Proteinas Totales frente a MOR

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µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles

prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e

Infectadas

Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg

de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la

lámina.

1 2

10

12

14

16

18

H. Infectadas H. Sanas

a

b

µm

ole

s p

rod / m

in.m

g

de

en

z

1 2

11

12

13

14

15

16

a a

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de

en

z

Sec. apicales Sec. basales

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles

prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e

Infectadas

Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg

de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la

lámina.

1 2

10

12

14

16

18

H. InfectadasH. Sanas

a

b

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

1 2

11

12

13

14

15

16

aa

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

Sec. apicales Sec. basales

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles

prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e

Infectadas

Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg

de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la

lámina.

1 2

10

12

14

16

18

1 2

10

12

14

16

18

H. InfectadasH. Sanas

a

b

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

1 2

11

12

13

14

15

16

1 2

11

12

13

14

15

16

aa

µm

ole

s p

rod

/ m

in.m

g

de e

nz

Sec. apicales Sec. basales

CONCLUSIONES CONCLUSIONES

El contenido de Proteínas Totales se incrementó en las hojas con síntomas de la enfermedad MOR respecto a las hojas asintomáticas; y coincide con las respuestas previamente evaluadas sobre hojas expuestas a otras patologías (Beccacece y col., 2009).

La Actividad Peroxidasa, sin embargo, fue inducida y se manifestó diferencialmente en hojas, que aun habiendo estado expuestas almismo ambiente y patógeno C. sojina, no mostraron síntomas de MOR.

Si bien frente a esta enfermedad, la AP fue similar en secciones Apicales y Basales, en evaluaciones previas, la distribución de PT y AP fue heterogénea en la lámina foliar.

En próximos estudios se realizarán proteinogramas en extractos de genotipos con respuesta diferencial a la exposición al patógeno a fin de identificar otras proteínas potencialmente inducidas durante la interacción G. max – C. sojina.

CONCLUSIONES CONCLUSIONES

El contenido de Proteínas Totales se incrementó en las hojas con síntomas de la enfermedad MOR respecto a las hojas asintomáticas; y coincide con las respuestas previamente evaluadas sobre hojas expuestas a otras patologías (Beccacece y col., 2009).

La Actividad Peroxidasa, sin embargo, fue inducida y se manifestó diferencialmente en hojas, que aun habiendo estado expuestas almismo ambiente y patógeno C. sojina, no mostraron síntomas de MOR.

Si bien frente a esta enfermedad, la AP fue similar en secciones Apicales y Basales, en evaluaciones previas, la distribución de PT y AP fue heterogénea en la lámina foliar.

En próximos estudios se realizarán proteinogramas en extractos de genotipos con respuesta diferencial a la exposición al patógeno a fin de identificar otras proteínas potencialmente inducidas durante la interacción G. max – C. sojina.

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• •

Enfermedad Enfermedad

Enfermedad

d.p.i. d.p.i.

d.p.i.

Disminuir el inóculo inicial

y tasa constante Disminuir la tasa

epidémica

Disminuir el tiempo

de exposición

PRÁCTICAS DE MANEJO DE LA ENFERMEDAD

Vanderplank, 1963

a. y c. ESTRATEGIAS CULTURALES

a. b.

c

a. y b. ESTRATEGIAS QUÍMICAS

a. y b. ESTRATEGIAS GENÉTICAS

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Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas

Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas

Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente

Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas

Manejo y aplicación sustentables de las actuales

**

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vía pulverización sobre los órganos

aéreos

Fungicidas

exógenos

Control de las enfermedades fúngicas

Estrategias químicas - Exógenas

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Estructuras de los antifúngicos comerciales más comunes

C

N

O

NN

O

C

C C

H

O

CH3

O

O

H3C

Estrobirulinas Azoxistrobin

Benzimidazoles HN

N

NHOCH3

O

Carbendazim

Triazoles Penconazol

N

N

N

CH

H2C

Cl

Cl

H2C CH2

CH3

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QUÍMICOS NATURALES

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Respuesta endógena

de la planta

O

ON

OCH3

OCH3

N

R4R3

R2

R1

NH

R1

R2

R3

N

R1

R2

R3

N

H3C

H N

NH

H3C

N

N

N

N

CH

H2C

Cl

Cl

H2C CH2

CH3

N

N

N

O

CHCH

HO

CH3C

H3C

CH3

Estrategias genéticas - endógenas

Bio fungicidas – Prod. Químicos Metabolómicas

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Los patógenos fueron aislados y

cultivados en condiciones

adecuadas para promover la

fructificación

APGA

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Cebador: OP-AA01

Gel de poliacrilamida

Cebador: OP-AA06

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Bioensayo

Extractos

EtOH

Dilución en agar (EET)

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Incubación a 28 ºC ( 48 - 72 h)

250 125 100 62,5 50 25 12,5 6,25 3,12 1,56

CIM: concentración inhibitoria mínima

Selección de compuestos naturales anti-fúngicos

Fungicidas endógenos

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Los compuestos más activos fueron las chalconas, particularmente activos frente a P. longicolla, C. truncatum, F. graminearum y N. oryzae.

Las flavanonas y el éster derivado del ácido cafeico mostraron buena actividad frente a P. longicolla y N. oryzae.

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Gracias