ficha tÉcnica cactoblastis cactorum berg palomilla del...

IDENTIDAD

Nombre: Cactoblastis cactorum Berg (1885).

Sinonimia: Zophodia cactorum Berg

Posición taxonómica: Clase: Insecta Orden: Lepidoptera Familia: Pyralidae Subfamilia: Phycitinae Género: Cactoblastis Especie: cactorum

Nombre común: cactus moth, palomilla del nopal.

Código EPPO (32): CACTCA

Categoría reglamentaria: Plaga cuarentenaria no presente.

Situación en México: Ausente, erradicada (28, 29, 34).

El 10 de agosto de 2006 se confirmó el primer brote de C. cactorum en nopal silvestre (Opuntia stricta) en Isla Mujeres y el 4 de mayo de 2007 se registraron dos capturas de machos en Isla Contoy, ambos lugares pertenecientes al Estado de Quintana Roo. Con las acciones del Programa Emergente contra la palomilla que se implementaron inmediatamente después de las detecciones, se logró completar, en cada caso, el periodo equivalente a tres ciclos biológicos de ausencia de la plaga, estimados con el modelo teórico de Tassan. Lo anterior permitió emitir las declaratorias de erradicación de C. cactorum en Isla Mujeres (28) e Isla Contoy (29), el 26 de marzo de 2009 y el 12 de octubre de 2009, respectivamente. Las notificaciones de erradicación en ambas islas, también fueron realizadas por el Sistema de Alerta Fitosanitaria de la Organización Norteamericana de Protección de Plantas (NAPPO, por sus siglas en inglés) (34). Por lo que, actualmente, se continúa con la campaña contra esta plaga en la fase preventiva.

HOSPEDANTES

Naturaleza del rango de hospedantes

Cactoblastis cactorum es una especie oligófaga (se alimenta de diversas especies) (35). Ha sido colectada en la mayor parte de las especies del género Opuntia (Platyopuntia) (17, 37) y en tres especies de Cylindropuntia, pero solo cuando estas últimas se encuentran creciendo en asociación con especies de Platyopuntia (36). Algunas excepciones de Opuntia son el cactus de árbol grande O. quimilo (donde solo se ha encontrado en plantas pequeñas), así como O. longispina, O. sulphurea y O. pampeana (en estas dos últimas debido a que crecen en el noroeste de los Andes, zona muy seca, fuera del área de distribución natural de C. cactorum) (36). En África, Hawai y Australia, C. cactorum causa daños considerables a lasespecies más pequeñas de Opuntia y daños relativamente menores en especies de árbol y sin espinas como O. ficus-indica, O. streptacantha, O. megacantha y O. rubusta (2, 3). Los tallos gruesos y leñosos de

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Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria SINAVEF, Universidad Autónoma de San Luis Potosí UASLP

Sierra Leona No. 550 Lomas II Sección, San Luis Potosí, S.L.P., 01 (444) 825 60 45 [email protected]

FICHA TÉCNICACactoblastis cactorum

BergPalomilla del Nopal

Dr. Juan Cibrián TovarColegio de Posgraduados

Profesor investigador

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92 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria

plantas de tipo árbol son más resistentes al ataque de las larvas, ya que éstas solo se alimentan de ellos si no hay cladodios suculentos disponibles (36). Además, parece ser que las especies grandes de Opuntia exudan cantidades altas de goma (19; 22; 37), lo cual causa mortalidades altas en larvas de primer instar (36). Entre las especies arbustivas de Opuntia, la mayor parte son dañadas por C. cactorum (36). En el Cuadro 1 se muestran los hospederos reportados a nivel mundial en diversas fuentes.

Cuadro 1. Especies de Opuntia registradas como hospederas de Cactoblastis cactorum a nivel mundial.

Nombre científico Nombre común

Cylindropuntia exaltata A. Berger cholla

Cylindropuntia fulgida (Engelmann) F. M. Knuth 1935 cholla

Cylindropuntia imbricata (Haworth) F. M. Knuth 1935 abrojo, cardón, cardenche, tesajo, tesajo macho, vela de coyote, cholla, xoconostle

Opuntia corallicola (O. spinosissima) (Consolea) cactus semáforo

Opuntia cubensis Britton & Rose 1912 n. d.1

Opuntia rubescens Salm-Dyck ex DC. n. d.

Opuntia aciculata (Griffiths 1916) chenille prickly pear

Opuntia albicarpa Scheinvar nopal tuna blanca, nopal de alfayucan

Opuntia amyclaea (Tenore 1826) nopal rastrero

Opuntia antillana (Britton & Rose 1918) n. d.

Opuntia atrispina (Griffiths 1910) dark-spined prickly pear

Opuntia aurantiaca (Gilles ex Lindley 1833) n. d.

Opuntia aurea (McCabe ex E.M. Baxter 1933) creeping beavertail, yellow beavertailOpuntia aureispina ((S. Brack & K. D. Heil) Pinkava & B. D. Parfitt 1988) golden-spined prickly pear

Opuntia basilaris (Engelmann & Bigelow 1856) nopal cola de castor

Opuntia cardiosperma (K. Schumann 1899) n. d.

Opuntia chisosensis ((M. Anthony) D. J. Ferguson 1986) texas prickly pear

Opuntia chlorotica (Engelmann & Bigelow 1856) clockface prickly pear, flapjack prickly pear, pancake prickly pear

Opuntia cochenillifera ((Linnaeus) P. Miller 1768) n.d.

Opuntia compressa McBride 1922 easter prickly pear cactus

Opuntia curassavica ((Linnaeus) P. Miller 1768) n. d.

Opuntia cymochila (Engelmann & J. M. Bigelow 1856) n. d.

Opuntia dillenii ((Ker Gawler) Haworth 1819) tuna dulce, dildo

Opuntia discolor (Britton & Rose 1919) n. d.

Opuntia edwardsii n. d.

Opuntia elatior (P. Miller 1768) n.d.

Opuntia ellisiana (Griffiths 1910) n. d.n.d.: no determinado.Fuentes: (1, 23, 36, 42).

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Cuadro 1. Continuación…

Nombre científico Nombre común

Opuntia engelmanii (Salm-Dyck ex Engelmann 1850) tuna espinosa del desierto, tuna espinosa de Engelmann

Opuntia ficus-indica ((Linnaeus) P. Miller 1768) tuna de castilla, nopalitos, nopal de castilla

Opuntia fragilis ((Nuttall) Haworth 1819) brittle cactus, fragile prickly pear, loose prickly pear

Opuntia littoralis ((Engelmann) Cockerell 1905) coastal prickly pear, sprawling prickly pear

Opuntia macrocentra (Engelmann 1857) black-spined prickly pear, blunt-spined prickly pear

Opuntia macrorhiza (Engelmann 1850) delicate prickly pear, plains prickly pear

Opuntia megacantha (Salm-Dyck 1834) n. d.

Opuntia microdasys ((Lehmann) Pfeiffer 1837) alas de ángel, orejas de conejo, nopal cegador, nopalillo cegador

Opuntia monacantha (Haworth 1819) nopal parecido a árbol

Opuntia oricola (Philbrick 1964) tuna de chaparral

Opuntia phaeacantha (Engelmann 1849) brown spined prickly pear, densely spined prickly pear

Opuntia pinkavae (B. D. Parfitt 1997) n. d.

Opuntia polyacantha (Haworth 1819) cliff prickly pear, grizzli bear prickly pear, hairy prickly pear

Opuntia pusilla ((Haworth) Haworth 1812) creeping cactus, little prickly pear

Opuntia repens (Bello 1881) n. d.

Opuntia robusta (H. L. Wendland 1835) bartolona, bondota, nopal tapón, nopal comueso, tuna tapón

Opuntia rufida (Engelmann 1857) gema del desierto

Opuntia salmiana (Parmentier ex Pfeiffer 1837) n. d.

Opuntia santa-rita ((Griffiths & Hare) Rose 1908) candle cactus, Santa Rita pricly pear, blunt-spined preacly pear

Opuntia spinulifera (Salm-Dick 1834) n. d.

Opuntia streptacantha (Lemaire 1839) cenizo, chaveño, nopal cardón, nopal hartón, tuna cardona

Opuntia stricta ((Haworth) Haworth 1812) yaaxpakan, coastal prickly pear

Opuntia strigil (Engelman 1857) n. d.

Opuntia tardospina n. d.

Opuntia taylori (Britton & Rose 1908) n. d.

Opuntia tomentosa (Salm-Dyck 1822) nopal de San Gabriel, velvet opuntia

Opuntia triacantha ((Willdenow) Sweet 1829) n. d.

Opuntia tuna ((Linnaeus) P. Miller 1796) n. d.

Opuntia. grahamii n. d.

Opuntia. moniliformis (L.) Haw. ex Steud. n. d.

Opuntia. tortispina n. d.n.d.: no determinado.Fuentes: (1, 23, 36, 42).

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DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA DE LA PALOMILLA (27, 36)Asia: No reportadaÁfrica: Sudáfrica, Santa Elena, Islas Mauricio, Ascensión, República de Zimbabwe y Namibia.América: Haití, Estados Unidos de América, Argentina, Bahamas, República Dominicana, Cuba, Uruguay, Brasil, Paraguay, Hawai, Puerto Rico, St. Kitts, Nevis, Antigua, Islas Vírgenes, Montserrat, Isla Caimán, Jamaica, Granada, Guadalupe, Martinica.Europa: No reportada. Oceanía: Australia, Nueva Caledonia.Distribución en México: Ausente, erradicada (28, 29, 41).

DETECCIÓN E IDENTIFICACIÓN

Signos de presencia de la plaga: Bastones de huevecillos en los cladodios y plantas dañadas, con una gran cantidad de larvas, así como la coloración de instares avanzados (Figuras 1a, 1b y 1c), son los signos más característicos de presencia de la plaga.

Figura 1. Presencia de bastones de huevecillos en los cladodios (a), presencia de larvas neonatas (b), y presencia de instares avanzados (c). Tomado de Vigueras y Portillo (35).

Cuando las larvas gregarias barrenan los cladodios, la planta exuda mucilago de color blanco el cual se mezcla con las heces fecales de las larvas que se alimenta en el interior. Esto ocasiona que los cladodios se colapsen, tomando una coloración que les da la apariencia de papel blancuzco, típica de la infestación por Cactoblastis (35).

Métodos de identificación para inspección: Para estos fines se recomienda el uso de las claves de H. H. Neunzin (20). Las características principales de diagnóstico son:

En huevecillo: la forma de colocarlos sobre los cladodios (apilados, como monedas, formando un bastón) (Figura 1a).En larvas: la coloración de instares avanzados (Figura 1c).En adultos: el patrón alar, el tipo de antena y la genitalia del macho (Figura 2).

MorfologíaHuevo: El huevo es cilíndrico y aplanado con 0.9 mm de ancho y 0.4 mm largo. Inicialmente, es de color crema, después se torna color café oscuro y finalmente, antes de la emergencia de la larva, cambian a color negro. La hembra apila sus huevos como monedas para formar un pequeño bastón que puede ir de 2.8-4.8 cm dependiendo del número de huevos. Este bastón es flexible al inicio, pero endurece cuando están cercanos a la eclosión. (36).

Larva: Las larvas de primer instar (neonatas) de C. cactorum son de 2.5 mm de longitud y presentan un color gris verdoso. Los instares posteriores se tornan de un color salmón que va desde anaranjado a rojo con puntos negros formando bandas transversas. En el último instar, estas bandas transversales se dividen en cuatro bloques separados y nunca se fusionan en la línea media. (18).

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Pupa: La larva madura hila un cocón blanco sedoso dentro del cual pupa, usualmente debajo de rocas, cladodios secos, hojas, siempre cerca o sobre la planta hospedera. El cocón puede ser cubierto con suelo, hojas secas haciendo difícil su detección. La emergencia de adultos se observa empezando la noche. Para distinguir entre los sexos, la pupa debe ser observada en posición ventral, localizar los cinco primeros espiráculos visibles sobre el abdomen. Estos están seguidos por un pequeño espiráculo no funcional en el segmento siguiente. En la hembra, el segmento con el espiráculo no funcional presenta una hendidura como cicatriz genital. En el macho, la hendidura genital se localiza en el siguiente segmento. La hendidura genital puede confundirse con la hendidura anal, la cual se localiza en la parte extrema del abdomen. (20).

Adulto: Los adultos son discretos, con sus alas anteriores de color pardo-grisáceo, con dos bandas transversales onduladas. Las alas presentan un color claro hacia el margen costal. Las alas posteriores son gris-pálido con una banda obscura a lo largo del margen. En la Figura 2a se muestra el patrón alar. Las hembras son de mayor tamaño que los machos, sus alas son claramente más oscuras y los palpos son más prominentes que los de los machos; de estos últimos se muestra su genitalia en la Figura 2b (extraída por calentamiento en solución de KOH al 10 % durante 5-10 minutos, luego enjuagada con agua destilada y alcohol al 70 %). Las antenas en ambos sexos son filiformes y tienen aproximadamente 100 segmentos (21).

Figura 2. Patrón alar (a), genitalia del macho (b) y (c) antena filiforme de Cactoblastis cactorum (20).

Métodos de muestreo. Para la detección o monitoreo, la presencia de una larva en los cladodios, una planta dañada o la presencia de machos en trampas con feromona, serán suficientes para iniciar la alerta y las medidas de combate. Actualmente, se tienen 1739 trampas (Figura 3) que se revisan semanal o catorcenalmente.

Figura 3. Trampa tipo ala utilizada para el monitoreo de la palomilla del nopal en el territorio nacional; en el centro y colgando de la parte de arriba, se observa el septo de caucho (ver arriba) donde se libera la feromona. Río Bravo, Tamaulipas, octubre 2009.

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BIOLOGÍA

La duración del ciclo de vida de C. cactorum varía entre 64 y 180 días, dependiendo de las condiciones ambientales (Cuadro 2), requiriéndose entre 845 y 1,388 grados día para completarlo. La temperatura base para su desarrollo es de 13.3 oC y la máxima de 36 oC, mientras que la óptima se encuentra en el intervalo de 25 a 30 oC (15). La máxima capacidad reproductiva se alcanza a los 26 oC, temperatura a la cual la tasa neta de reproducción (número de hijas hembras producidas por cada hembra) llega a ser de hasta 49.2 (Cuadro 3). Los adultos sobreviven entre 5 (a 34 oC) y 12 días (a 18 oC) (15) (Cuadro 4), tiempo durante el cual las hembras ovipositan entre l8 y 99 huevos (Cuadro 5).

Número de generaciones por año: La palomilla completa tres generaciones anuales en EUA, con picos poblacionales de adultos en los meses de abril, julio y octubre (36, 12).

Cuadro 2. Ciclo de vida en días de C. cactorum a diferentes temperaturas ambientales, en condiciones de laboratorio.Estado de desarrollo 18 ºC 22 ºC 26 ºC 30 ºC 34 ºCHuevo 47.9 29.6 22.5 20.9 22.9Larva 78.39 61.36 33.52 29.89 30.08Pupa 53.46 24.91 16.28 13.88 13.79Completo 179.86 115.96 72.22 64.75 67.04

Fuente: (15).

Cuadro 3. Tasa de reproducción de C. cactorum (número de hijas hembras producidas por hembra). Temperatura 18 ºC 22 ºC 26 ºC 30 ºC 34 ºC

Tasa neta de reproducción (Ro) 8.55 46.24 49.20 43.68 5.95

Fuente: (15).

Cuadro 4. Grados días de desarrollo de de C. cactorum a diferentes temperaturas ambientales. Temperatura 18 ºC 22 ºC 26 ºC 30 ºC 34 ºC

Grados día 845.34 1,008.85 917.19 1,081.32 1,387.73

Fuente: (15).

Cuadro 5. Fecundidad total (número de huevos producidos por hembra) de C. cactorum a diferentes temperaturas ambientales. Temperatura 18 ºC 22 ºC 26 ºC 30 ºC 34 ºC

Huevos/hembra 18.04 96.44 98.76 88.04 12.32

Fuente: (15).

Comportamiento: A diferencia de otras especies, las larvas de C. cactorum atacan juntas una penca de nopal, debido a que no son caníbales. Este comportamiento permite diferenciar a esta especie de otras similares en las que los individuos se encuentran alimentándose de manera solitaria o en grupos de máximamente 3 ó 4 larvas por cladodio. Los adultos son de vida corta y no se alimentan, por lo que su actividad se restringe a periodos cortos. Por ejemplo, la hembra libera su feromona sexual de 5:30 a 6:30 AM, mismo periodo en que el macho inicia la búsqueda de la hembra. La feromona sexual de este insecto consiste de (Z, E)-9,12 tetradecadien-1-ol acetato (54 %); (Z, E)-9,12 tetradecadien-1-ol (42 %) y (Z)-9-tetradecen-1-ol acetato (4 %). La mezcla requiere investigación adicional para determinar si es la correcta o necesita un componente más (11).

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Búsqueda del hospedero: El compuesto volátil nonanal, liberado por plantas de Opuntia stricta, provoca un estímulo electrofisiológico tanto en hembras como en machos de C. cactorum, lo cual lo coloca como candidato a ser un atrayente de este insecto (21). La búsqueda del hospedero es afectada por la concentración de bióxido de carbono (CO2) en el ambiente que rodea al hospedero. Al respecto, Stange (32) señala que, tanto las fluctuaciones rápidas como el aumento en la concentración de este gas, reducen la frecuencia de oviposición de las hembras, debido a que disminuye la percepción de la señal emitida por el hospedero. El mismo autor observó que el aumento en la concentración de CO2 provoca una disminución en el tamaño de los palitos de huevos.

Comportamiento de oviposición: La palomilla tiene la habilidad de localizar plantas pequeñas aisladas. Cuando la densidad de plantas es alta, el patrón de dispersión de la palomilla es bajo, pero cuando el alimento es poco, los patrones de vuelo pueden ser mayores. En Australia, la palomilla coloca la mayoría de sus huevos cerca de los sitios de emergencia, preferentemente sobre cladodios terminales jóvenes, suculentos y con buen desarrollo de espinas. El número de huevos depositados sobre una planta excede el número de larvas que pueden alimentarse de la misma. Esto hace que muchas larvas mueran de hambre, lo que sugiere que la palomilla no se dispersa fácilmente cuando la densidad de plantas es alta. (9).

Mecanismos de movimiento o dispersión: Hight y Carpenter (12) señalan que ocurren tres periodos de vuelos de dispersión en la masa continental de EUA, el primero entre mediados de febrero y finales de mayo, el segundo de mediados de junio a finales de agosto y el último desde inicios de septiembre hasta finales de noviembre. Aparentemente, los únicos meses en que la palomilla no se desplaza grandes distancias es durante diciembre y enero, aunque habría que confirmar esta afirmación. Hight y Carpenter reportan que los desplazamientos de la palomilla por medios naturales van desde 50 hasta 160 km por año, en contraste con estimaciones anteriores que consideraban distancias mucho más cortas (de 6 a 12 km por año).

IMPORTANCIA DE LA PLAGA

Para México el nopal es un recurso importante desde el punto de vista económico, social e histórico (Figura 4). De este cultivo dependen más de 25 mil familias de manera directa e innumerables más de forma indirecta. Contribuye con cerca de 200 millones de dólares al PIB y tiene un significado histórico para los mexicanos en sus símbolos y en su moneda. (30). Por ello, de ocurrir una introducción de Cactoblastis cactorum a nuestro país, los daños impactarían tanto económica como socialmente. En la República Mexicana existe una gran diversidad de cactáceas, muchas de las cuales se encuentran en riesgo de ser afectadas por el ataque de esta plaga. En el cuadro 6 se muestran datos de especies de importancia económica, tales como superficie cultivada y valor de la producción.

Figura 4. Central de Abastos de Milpa Alta, México, 2006.

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Cuadro 6. Superficie cultivada, producción y valor de la producción

Cultivo Superficie sembrada (Ha) Producción (Ton) Valor Producción (Miles de Pesos)

Tuna 54,294.61 393,506.49 1,045,909.48

Nopalitos 12,018.41 683,125.70 1,540,483.70

Nopal forrajero 14,439.75 148,172.79 44,153.51

Total 80,752.77 1,224,804.98 2,630,546.69Fuente: (43).

Control

-El control cultural: Se basa principalmente en remociones manuales de palitos de huevos durante los picos de ovipostura, así como poda y eliminación de cladodios infestados o en su caso de toda la planta; la eliminación se puede hacer asperjando químicos al conjunto de cladodios cortados o por quema, enterrado o trituración de éstos para su uso como forraje (36).

-El control legal: Las Normas Oficiales actualmente existentes en México, aplicables al control legal de C. cactorum son:

a) Norma Oficial Mexicana NOM-006-FITO-1995, por la que se establecen los requisitos mínimos aplicables a situaciones generales que deberán cumplir los vegetales, sus productos y subproductos que se pretendan importar cuando éstos no estén establecidos en una norma oficial específica (24).

b) Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, por la que se establecen los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de material vegetal propagativo (25).

c) NORMA Oficial Mexicana NOM-081-FITO-2001, manejo y eliminación de focos de infestación de plagas, mediante el establecimiento o reordenamiento de fechas de siembra, cosecha y destrucción de residuos (26).

También se encuentra en proceso de elaboración la Norma Oficial Mexicana NOM-084-FITO-2007 (34), la cual regulará específicamente las acciones de prevención, monitoreo, detección y, en su caso, control de la palomilla del nopal.

-El control químico de la palomilla del nopal se puede basar en alguno de los productos propuestos por Leibee y Osborne (6, 14). (Cuadro 7), de los cuales, algunos ya han mostrado buen control en condiciones de laboratorio (Cuadro 8) (4). En México, no se tienen productos autorizados en el cultivo de nopal para el control de plagas, sin embargo, recientemente se evaluaron siete insecticidas (Cuadro 9) bajo un marco de inocuidad de los alimentos (7). De estos productos, el malation al 87.7 % CE a dosis de 1L/200 L de agua mostró buen efecto sobre larvas de Ollycela (=Melitara) nephelepasa. El efecto de los plaguicidas se limita a larvas que aún no penetran el cladodio y a los adultos.

- Técnica del insecto estéril. La liberación de adultos F1 esterilizados con rayos gamma puede servir para erradicar brotes de palomilla del nopal siempre y cuando se detecten oportunamente (36) y las poblaciones sean reducidas, como sucedió en Isla Contoy, donde se realizaron liberaciones durante el 2008 (44).

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Cuadro 7. Insecticidas sugeridos para su evaluación contra Cactoblastis cactorum basados en etiquetas actuales contra lepidópteros que barrenan tejidos de plantas.

Insecticida Cultivo registrado Clase de Insecticida Característica de Interés

Seguridad Ambiental

Benzoato de emamectin Vegetales Avermectina Bajo

Abamectina Ornamentales Avermectina Bajo

Espinosad Vegetales, ornamentals, frutas Espinosina Muy bajo

Indoxacarb Vegetales Muy bajo

Fenoxicarb Ornamentales Actividad en Homóptera Bajo

Imidacloprid Ornamentales, frutas, vegetales cloronicotinilos Sistemático Muy bajo

Acefato Ornamentales, frutas, vegetales Órganofosforado Sistemático Bajo

Dimetoato Ornamentales Organofosforado Sistemático Medio

Methidathion Ornamentales Organofosforado Medio

Fuente: (14).

Cuadro 8. Efecto de diferentes insecticidas (% de supervivencia1 media ± DE) sobre huevos con 1 y 28 días de edad y larvas de primer instar de Cactoblastis cactorum.

Pruebas con huevos Pruebas con larvas

Producto Huevo 1 d Huevo 28 d Cladodio con 24 h de postratamiento

Cladodio con 30 días de postratamiento

Control (H2O) 80 ± 20.8 a 85 ± 11.0 a 64 ± 44.4 a 81 ± 9.4 a

Cypermethrin 0 c 0 c 0 c 0 c

Emamectin Benzoate 5.8 ± 7.4 c 0.6 ± 1.9 c 0 c 7.9 ± 25.0 c

Abamectin 4.3 ± 9.1 c 3.3 ± 8.4 c 0 c 85.6 ± 8.5 a

Spinosad 0 c 0 c 0 c 0 c

Azadirachtin 52.7 ± 35.1 b 85.5 ± 11.5 a 54.6 ± 30.2 ab 43.6 ± 40.5 b

Fenoxycarb 8.6 ± 27.1 c 40.3 ± 35.4 b 64.0 ± 35.2 a 73.9 ± 13.4 a

Imidacloprid 0 c 0.6 ± 1.9 c 0 c 3.6 ± 10.2 c

Acephate 38.9 ± 33.4 b 39.7 ± 37.0 b 35.4 ± 38.7 b 87.3 ± 10.2 a

B. thuringiensis ------------ ----------------- 0 c 0 c1Promedios en cada columna seguidos por la misma letra no son significativamente diferentes Waller-Duncan K-ratio t-test (P ≤ 0.05). Fuente: (4).

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Cuadro 9. Insecticidas evaluados contra plagas de nopal-tuna y sus respectivos intervalos de seguridad en Nopaltepec, Edo. México.

Plaguicida Intervalo de Seguridad (días)Malatión 4Clorpirifos 17Permetrina 4Diazinón 10Dimetoato 16Abamectina 2Spinosad 5

Fuente: (7)

Control biológico: los organismos más prometedores son protozoarios del género Nosema (33), y Bacillus thuringiensis (4) los cuales parecen ser patógenos eficientes para el manejo de Cactoblastis. Referente al control macrobiológico se han mencionado a las hormigas como depredadoras naturales de larvas de la palomilla de nopal y algunos parasitoides de larvas como Pseudochaeta sp. (Tachinidae) que ataca larvas de segundo a cuarto instar, así como Apanteles alexenderi parasitoides de larvas de quinto instar. (16)

Riesgo fitosanitario: Reporte epidemiológico.

El brote más cercano a nuestro país de la palomilla del nopal se localiza en Lafourché, Estado de Louisiana, en los Estados Unidos de América (Figura 5a y 5b).

Figura 5a. Localización actual de los brotes de Cactoblastis cactorum más próximos a México (puntos en azul). Fuente (38).

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Figura 5b- Localización actual de los brotes de Cactoblastis cactorum más próximos a México (puntos en azul). ). Fuente (38).

En la República Mexicana existe una gran diversidad de cactáceas, muchas de las cuales se encuentran en riesgo de ser afectadas por el ataque de esta plaga. Algunos de los hospederos potenciales para nuestro país se destacan en el Cuadro 10.

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Figura 6. Áreas de alta vulnerabilidad a Cactoblastis cactorum en México. Áreas en rojo: zonas con clima similar a los sitios de distribución nativa de la palomilla. Áreas en azul: riqueza de especies de Platyopuntia (Cactaceae); las zonas más oscuras representan mayor número de especies Fuente (46).

Figura 7. Distribución potencial de Opuntia dillenii en México (46).

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Con el fin de detectar oportunamente la presencia de algún brote de Cactoblastis cactorum en México, se opera una red de 1227 trampas cebadas con feromona sexual atrayente de machos de dicha especie (Cuadro 11). Estas se encuentran distribuidas en la zona del Golfo, desde la Península de Yucatán hasta el Estado de Tamaulipas. Las revisiones de estas trampas se realizan semanalmente en los Estados de Quintana Roo y Campeche, y cada 14 días en Yucatán, Tabasco, Veracruz y Tamaulipas. De un viaje realizado en octubre de 2009, se pudo observar que el personal localizado en Quintana Roo, Yucatán y Campeche es suficiente para colocar y revisar las trampas semanalmente. En tanto que en los Estados de Tamaulipas y Veracruz, se cuenta únicamente con dos profesionales para revisar cerca de 400 trampas distribuidas a lo largo de más de 1000 Km, por lo que se recomienda aumentar al doble el personal asignado a la Campaña de Monitoreo de la Palomilla del Nopal en dichos Estados. Esta recomendación se hace con carácter urgente debido a la cercanía de brotes de la palomilla ubicados en Lafourché, Louisiana, EUA. Así mismo, se recomienda colocar puntos de monitoreo permanente y trampeo en los Estados de Nuevo León y Coahuila, que colindan con la frontera sur de Estados Unidos de América.

Cuadro 11. Red de trampeo de la palomilla del nopal en México.

Estado/zona No. de trampas

Frec. de rev. Georreferenciadas Observaciones

CAMPECHE 125 semanal si

Sin cambios significativos en ubicación.Norte 42 semanal si

Sur 83 semanal si

QUINTANA ROO 387 semanal siHay cambios en las claves de las trampas, lo cual confunde; solo se reportan coordenadas de una serie (o fecha), por lo que no se puede saber si hubo cambios en la ubicación. núm. variable de trampas: se reportan datos para 82 trampas, pero en otro documento se dan coordenadas para 432.

Cancún 109 semanal si

Isla Mujeres 112 semanal si

Isla Contoy 84 semanal si

Resto del edo. 82 semanal si

YUCATÁN 242 catorcenal si Las coordenadas de las trampas varían en diferentes fechas.

TABASCO 100 catorcenal si Solo se reporta una fecha de revisión, por lo que no se puede saber si hay cambios de ubicación.

TAMAULIPAS 237 catorcenal si Solo se reporta una fecha de revisión, por lo que no se puede saber si hay cambios de ubicación.

VERACRUZ 136 catorcenal no Solo se reportan datos en un informe mensual; no se reportan coordenadas de las trampas.

SAN LUIS POTOSÍ 0 No se reporta trampeo

TOTAL 1,227

Info

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BIBLIOGRAFIA

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17Producto 4

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25) SAGARPA (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación). 1998. Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, por la que se establecen los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de material vegetal propagativo. Publicada en el Diario oficial de la Federación el 18 de agosto de 1998. México, D. F.

26) SAGARPA (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación). 2002. NORMA Oficial Mexicana NOM-081-FITO-2001, Manejo y eliminación de focos de infestación de plagas, mediante el establecimiento o reordenamiento de fechas de siembra, cosecha y destrucción de residuos. Publicada en el Diario oficial de la Federación el 18 de septiembre de 2002. México, D. F.

27) SAGARPA (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación). 2003. NORMA Oficial Mexicana de Emergencia NOM-EM-040-FITO-2003, por la que se implementa el sistema para prevenir la introducción, diseminación y establecimiento de la Palomilla del Nopal (Cactoblastis cactorum Berg) en el territorio nacional. Diario Oficial de la Federación, 28 de abril de 2003. México, D. F.

28) SAGARPA (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación). 2009. ACUERDO mediante el cual se declara erradicado el brote de palomilla del nopal (Cactoblastis cactorum Berg.) en Isla Mujeres, Municipio de Isla Mujeres, Estado de Quintana Roo. Diario Oficial de la Federación, 26 de marzo de 2009. México, D. F.

Info

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29) SAGARPA (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación). 2009a. ACUERDO mediante el cual se declara erradicado el brote de palomilla del nopal (Cactoblastis cactorum Berg.) en Isla Contoy, Municipio de Isla Mujeres, Estado de Quintana Roo. Diario Oficial de la Federación, 12 de octubre de 2009. México, D.F.

30) Sánchez, A.H., J. Cibrián-Tovar, J. Osorio y C. Aldama. 2007. Impacto económico y social en caso de introducción y establecimiento de la palomilla del nopal, Cactoblastis cactorum en México. Organismo Internacional de Energía Atómica (OIEA) y la Dirección General de Sanidad Vegetal, México. 43p.

31) Simmonson, S. E.; T.J. Sttohlgren; L.Tyler; W.P. Gregg; R. Muir and L.J. Garret. 2005. Preliminary assessment of the potencial impacts and risk of the invasive cactus moth, Cactoblastis cactorum Berg, in the U.S. and México. Final Report to the International Atomic Energy Agency. 32p.

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