enraizamiento de esquejes de té

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

TESIS

EMPLEO DE REGULADORES DE CRECIMIENTO, TIPO AUXINA

PARA ESTIMULAR EL ENRAIZAMIENTO DE ESQUEJES DE TÉ

(Camellia sinensis)

Carlos Ernesto Yatt

A.V.

CONTENIDO

I. INTRODUCCIÓN ............................................................................ 01

II. DELIMITACIÓN DEL PROBLEMA ................................................ 03

III. JUSTIFICACIÓN ............................................................................ 05

IV. OBJETIVOS ................................................................................... 06

4.1 GENERAL ................................................................................ 06

4.2 ESPECÍFICOS .......................................................................... 06

V. HIPOTESIS ..................................................................................... 07

VI. MARCO TEÓRICO ......................................................................... 08

6.1 ANTECEDENTES ..................................................................... 08

6.2 MARCO CONCEPTUAL ........................................................... 11

6.2.1 Historia del Té (Thea sinensis) .................................. 11

6.2.2 Distribución Geográfica del Cultivo de té

(Thea sinensis) .......................................................... 11

6.2.3 Introducción del té a Guatemala ................................ 12

6.2.4 Clasificación Taxonómica del Té ............................... 12

6.2.5 Morfología del Té ...................................................... 12

6.2.6 Composición del Té ................................................... 12

6.2.7 Formas de Propagación del té .................................. 15

6.2.8 Condiciones ecológicas ............................................. 14

6.2.9 Usos del té ................................................................ 15

6.2.10 Los reguladores de Crecimiento y el

Enraizamiento ........................................................... 18

VII. MARCO REFERENCIAL ................................................................ 20

7.1 Ubicación Geográfica ................................................................ 20

7.2 Características Ecológicas ........................................................ 21

7.3 Características Climáticas ......................................................... 21

VIII. METODOLOGÍA ............................................................................. 23

8.1 Diseño Experimental ................................................................. 23

8.2 Modelo Estadístico .................................................................... 23

8.3 Descripción de los Tratamientos ............................................... 24

8.4 Instalaciones ............................................................................. 23

8.5 Material Vegetal ........................................................................ 24

8.6 Manejo del Experimento ............................................................ 26

8.7 Variables Evaluadas .................................................................. 28

8.8 Registro de la Información ......................................................... 30

8.9 Análisis de la Información .......................................................... 23

8.10Presupuesto ............................................................................. 12

IX. RECURSOS ................................................................................... 32

9.1 Recursos Humanos ................................................................... 32

9.2 Recursos Físicos ....................................................................... 32

9.3 Recursos Económicos ............................................................... 32

X. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES .............................................. 33

XI. BIBLIOGRAFÍA .............................................................................. 34

XII. ANEXO ........................................................................................... 36

I. INTRODUCCIÓN

El cultivo de té (Thea sinensis), en la región de Alta Verapaz tiene gran

importancia en cuando al consumo de la bebida de té, la cual posee

características medicinales como lo son fortalecer el cerebro, reanima y aumenta

la energía, es diurético y contribuye a la baja del ácido úrico, baja el colesterol,

etc., es por ello que actualmente presenta una gran demanda, convirtiéndose en

una alternativa más para los agricultores de la región. Existe poca información

sobre su reproducción, lo que ha limitado poder cultivarla extensivamente para

aprovechar sus propiedades.

Se tiene claro que el té es una especie que se puede reproducir tanto

sexual como asexualmente, pero la dificultad de realizarlo de la primera forma

limita poder generar plantaciones extensas en corto tiempo, además de

conservar las características de la planta madre, ventaja que trae consigo el

método de reproducción asexual, principalmente la técnica de esquejes.

Es por ello que dentro de la investigación planteada que se presenta se

tiene como objetivo propagar la planta de té (Thea sinensis), mediante la

utilización de la técnica de esquejes con el empleo de reguladores de

crecimiento tipo Auxina, de está sobre sale decir que es un regulador de

crecimiento que tiene la función en la promoción del enraizamiento , la cual tiene

que ver con la división y crecimiento celular, la atracción de nutrientes y de otras

sustancias al sitio de aplicación, además de las relaciones hídricas y

fotosintéticas de las estacas, entre otros aspectos.

Con ello se pretende poder enraizar los esquejes, utilizando tres distintos

reguladores de crecimiento tipo Auxina, con el fin evaluar el efecto que tienen

sobre los propágulos de té (Thea sinensis), y así generar información que

permita poder definir que regulador de crecimiento, concentración y tiempo de

inmersión, brinda mejores resultados en cuanto a porcentaje de esquejes

enraizados por tratamiento, sobrevivencia, longitud de raíz, número de

raíces/planta, peso seco de raíces, relación costo/beneficio de los tratamientos,

tiempos de enraizamiento de esquejes.

II. DEFINICIÓN DEL PROBLEMA

El té (Thea sinensis), se cultiva en la región de Alta Verapaz a partir de un

manejo agronómico, que inicio en el año de 1,915, lo que indica que la plantas

actualmente cuentan con una edad de 96 años, esto muestra que la plantación

ya es antigua, y según Nosti Nava, cuando la plantación se hace vieja la

producción empieza a decaer, a la vez que es más lenta la circulación de la

savia y las condiciones son cada vez más anormales, caracterizadas por un gran

desarrollo de la madera, mayor pobreza de hojas y menor número de brotes1.

Además de ello se presentan problemas en cuanto a su propagación

sexual y asexual; enfatizando en que la propagación sexual es muy difícil por la

poca capacidad fructífera que la planta posee, los porcentajes de germinación

son bajos, las plántulas crecen muy lentamente, retrasando el inicio del período

de producción, otro aspecto considerable es la gran variabilidad genética, que

trae consigo problemas por la falta de homogeneidad en la plantación incidiendo

en la calidad y productividad del cultivo.

En cuanto a la reproducción asexual utilizando la técnica de esquejes con

y sin el uso de reguladores de crecimiento, se obtienen bajos porcentajes de

enraizamiento en la propagación de la planta de té (Thea sinensis).

Además de ello se carece de información técnica que facilite a los

productores tener elementos para poder buenos resultados al momento de la

propagación del cultivo de té (Thea sinensis).

1 Nosti Nava, Jaime. CACAO, CAFÉ y TÉ. Barcelona, España: Salvat, 1963.

Por lo que se hace necesario, conocer si ¿El empleo de diferentes

reguladores de crecimiento, tipo auxina contribuirá a mejorar los porcentajes de

enraizamiento en la propagación de té (Thea sinensis)?, ¿Qué regulador de

crecimiento, dosis y tiempo de inmersión es el más adecuado para el

enraizamiento de té (Thea sinensis)?, bajo las condiciones ambientales del

municipio de Cobán, A.V.

III. JUSTIFICACIÓN

El Cultivo de té (Thea sinensis), es un arbusto originario de las regiones

de altura del suroeste de China, Mynanmar y del noreste de la India.

Actualmente en Guatemala únicamente se cultiva comercialmente en la parte

alta del municipio de Patulul, Suchitepéquez (Finca los Andes) y en el municipio

de Cobán, Alta Verapaz (Cooperativa Agrícola Integral Chirrepeco R.L.).

La plantación de la Cooperativa Agrícola Integral Chirrepeco, R.L., se

encuentra por llegar a los cien años de edad por lo que se considera una

plantación antigua, incidiendo en la reducción de la producción. Esto crea la

necesidad de generar información que permita propagar las plantas para la

renovación de la plantación de manera eficiente.

Según lo establecido en la poca información disponible sobre la

propagación de té (Thea sinensis), para la renovación de una plantación, la

obtención de plántulas por semilla presenta dificultades por la poca capacidad

fructífera, la semilla no es muy viable, los porcentajes de germinación son bajos

y las plántulas crecen muy lentamente, además asexualmente mediante la

técnica esquejes el cual es considerado el método más económico para la

propagación de la planta de té (Thea sinensis), se presenta un elevado

porcentaje de fracasos al momento de su propagación. Por lo tanto se ha

dirigido la investigación a buscar formas de propagar en forma más rápida y

eficiente, probando diferentes estimuladores de crecimiento tipo auxina, dosis y

tiempos de inmersión para la propagación vegetativa del té (Thea sinensis),

mediante esquejes y así procurar acelerar el período de crecimiento y desarrollo

de las plántulas mejorando con ello el porcentaje de pegue en la propagación de

esta planta.

Con ello se espera contribuir a generar información que sea útil para los

productores de té (Thea sinensis), cuyo cultivo se muestra como una alternativa

más para los productores de la región.

IV. OBJETIVOS

4.1 GENERAL

Evaluar el efecto de tres reguladores de crecimiento tipo Auxina, en la

estimulación del enraizamiento, para la propagación vegetativa de la planta de té

(Thea sinensis), en el municipio de Cobán, A.V.

4.2 ESPECÍFICOS

Definir cual es el regulador de crecimiento que reduzca el tiempo de

enraizamiento en el té (Thea sinensis).

Determinar cual es el regulador de crecimiento de mayor eficiencia en

cantidad de raíces/planta para el enraizamiento té (Thea sinensis).

Especificar cual es el regulador de crecimiento que brinda raíces de

buena calidad en los propágulos de té (Thea sinensis).

Determinar las dosis óptimas de los reguladores de crecimiento en

estudio para el enraizamiento de té (Thea sinensis).

Establecer los tiempos de inmersión que brinden mejores resultados para

el enraizamiento de té (Thea sinensis).

Realizar un análisis económico (Costo/Beneficio) de los tratamientos en

estudio.

V. HIPOTESIS

VI. MARCO TEORICO

6.1 ANTECEDENTES

Son numerosos los autores que han investigado el efecto de

reguladores auxinicos sobre el enraizamiento de diversas especies, aunque

se es necesario resaltar que para el té (Thea sinensis), no existe información

sobre ello, a continuación se presentan diferentes investigaciones realizadas

sobre el efecto de reguladores auxinicos:

En el 2,010, Henry Ruiz-Solsol y Francisco Mesén concluyen que la

propagación vegetativa de Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.) resultó

relativamente sencilla y exitosa, con estaquillas intermedias o basales de 8

cm de longitud, con áreas foliares de 50 cm2 y tratadas con ácido

indolbutírico (AIB) en dosis de 0,15% o 0,20%. Las estaquillas de esta

especie fueron capaces de enraizar sin aplicación de AIB, pero los

porcentajes de enraizamiento, el número de raíces por estaquilla y la longitud

de raíces fueron pobres y significativamente inferiores a los de las estaquillas

tratadas.2

En el 2,007, Delgado Torres, M.F., en una investigación realizan en el

Taique (Desfontainia spinosa, (R. et. Pav.)), concluye que no se presentó

diferencias significativas en el desarrollo radicular ni aéreo según los distintos

tipos de corte realizados a los esquejes (apical y subapical), por lo cual se

infiere que éste factor es de poca importancia para el desarrollo de éstos. La

2 EFECTO DEL ÁCIDO INDOLBUTÍRICO Y TIPO DE ESTAQUILLA

EN EL ENRAIZAMIENTO DE SACHA INCHI (Plukenetia volubilis L.) (En línea). Consultado el 02 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.mag.go.cr/rev_agr/v34n02_259.pdf

http://www.mag.go.cr/rev_agr/v34n02_259.pdf

capacidad de enraizamiento se vio beneficiada con la aplicación de hormona

(AIB), presentando una relación positiva en el porcentaje de enraizamiento

con concentración de AIB. El periodo óptimo de evaluación es a los 95 días

desde el establecimiento del ensayo, revelando porcentajes de enraizamiento

de 38%, 67%, 77% y 82% para los tratamientos testigo (0 ppm de AIB), 1.000

ppm, 2.500 ppm y 4.000 ppm respectivamente.3

También indica que en la producción de raíces y brotes también se

presentó un incremento en sus valores medios a medida que aumentó la

concentración de AIB, sin embargo, esta situación fue perceptible sólo para

los tres primeros tratamientos (testigo, 1.000 y 2.500 ppm), puesto que con la

concentración más alta (4.000 ppm), pese a no ser tóxica y mostrar

resultados favorables, no presentó diferencias significativas con respecto a la

medición 2.500 ppm.4

En el 2,007, Willam Viera y Manuel Suquilanda, concluyeron que: El

enraizador e1 (Ácido Indolbutírico) determinó mayor influencia en la longitud

de brote por estaca con 5.20 cm, número, longitud y peso de raíces con 4.85

raíces, 6.67 cm/ raíz y 2.81 g/raíz. La mejor dosis de aplicación para el

enraizado de estacas de protea fue d3 = alta en las variables, longitud de

brote, con 5.20 cm/brote, número de raíces con 4.75 raíces/estaca y peso de

raíces con 2.59 g. La estaca de 20 cm, alcanzó los mejores resultados en

número y longitud de brotes con 2.26 brotes/estaca, y 5.17 cm brote; número,

longitud y peso de raíces con 4.90 raíces/estaca, 6.10 cm/raíz y 2.61

g/raíces.5

3 Propagación vegetativa mediante esquejes de Taique. (Desfontainia spinosa, (R. et. Pav.)) y

Tepa (Laureliopsis philippiana ((Looser) Schodde). (En línea). Consultado el 23 de Febrero de 2011. Disponible en: http://cybertesis.uach.cl/tesis/uach/2007/fifd352p/doc/fifd352p.pdf 4 Ibíd.

5RESPUESTA DE ESTACAS DE PROTEA (Leucadendron sp.) var. Safari sunset A LA

APLICACIÓN DE TRES ENRAIZADORES A TRES DOSIS. CAYAMBE, PICHINCHA. (En línea). Consultado el 23 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.uce.edu.ec/upload/20090209105954.pdf

http://www.uce.edu.ec/upload/20090209105954.pdf

Así mismo, Kryvenki, (2007) citado por Sivira, S.Y., expone que

evaluando el efecto de tres reguladores de crecimiento (AIB), (ANA), (AIA),

sobre estacas (apical y subapical) de Steviarebaudiana (Hierba dulce),

comprobó que los tratamientos no tuvieron efecto sobre las estacas apicales

y para las subapicales el mejor resultado en cuanto crecimiento de raíces se

logró con la aplicación de 2000 mg/l de AIB y 1000 mg/l de ANA, bajo

condiciones semicontroladas de invernadero en un lapso de 45 a 50 días.6

En El 2006, Sánchez Gavilánez, A.D., Y Valverde Valverde, R.G.,

comentan que la sobrevivencia de las plantas de aliso los porcentajes más

altos a los 150 días se tuvieron en el sustrato combinado (A4) con la Arena el

70%, Turba 20%, y Humus 10% con el 81,40%; El sustrato humus (A3) con

el 73.78%; sustrato turba (A2) con el 73% ; y el sustrato arena (A1) con el

66,33%.7

Ramírez (2004) citado por Sivira, S.Y., evaluó el efecto del AIB y

lesiones en la base y el tipo de estacas de Icaco (Chrysobalanusicaco L.)

presentando en las estacas apicales con lesiones y con 10000 ppm de AIB,

obtuvo un 96% de enraizamiento. En la subapicales sin lesiones con

regulador un 100% de enraizamiento, mientras que en la apicales y

subapicales sin tratamiento de lesiones y AIB no emitieron raices.8

Sivira, S.Y., indica que trabajando bajo condiciones de neblina, Díaz

(2000) evaluó el efecto del tipo de estacas de tallo, dosis de auxinas y dos

sustratos sobre el enraizamiento del garbancillo (Durantarepens), obteniendo

6 Efecto del acidoindolbutirico y el ambiente de propagación en la multiplicación de cinco especies

medicinales. (en línea). Consultado el 18 de Febrero del 2011. disponible en: http://bibagr.ucla.edu.ve/db/bvetucla/edocs/tesis_pdf/sivira_silvia.pdf 7 Evaluación del proceso de multiplicación asexual de Estacas de Aliso (alnus acuminata),

utilizando cuatro sustratos y tres hormonas en el Laguacoto I, Provincia Bolívar. (En línea). Consultado el 24 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.biblioteca.ueb.edu.ec/handle/15001/190 8 Efecto del acidoindolbutirico y el ambiente de propagación en la multiplicación de cinco especies

medicinales. (en línea). Consultado el 18 de Febrero del 2011. disponible en: http://bibagr.ucla.edu.ve/db/bvetucla/edocs/tesis_pdf/sivira_silvia.pdf

http://bibagr.ucla.edu.ve/db/Bvetucla/edocs/tesis_pdf/sivira_silvia.pdf


las mejores respuestas al emplear estaca de madera blanda y estacas de

semidura tratadas con 1000 ppm de AIB.9

En 1996 Piox Mendoza, concluye que en el departamento de Alta

Verapaz solo existe una plantación comercial de té, la cual pertenece a la

Cooperativa Agrícola Integral “Chirrepeco” R.L., que tiene un área total de

54.23 Has. sembradas, además de ello afirma que la poca tecnología

utilizada en el cultivo y la edad de una parte de la plantación (63%) entre 21 a

80 años, están incidiendo en baja productividad del mismo, alcanzando un

promedio de producción de 4.63 quintales de té seco por hectárea. 10

En 1,991, Corado Montepeque, en la evaluación de tres niveles de

acido indolbutirico en tres tipos de esquejes de dos especies de bambú,

concluye que en base a la variables enraizamiento y producción vegetativa

en materia seca, como indicadores de la capacidad de propagación de las

especies de bambú evaluadas, afirma que de los tres niveles de ácido

indolbutírico (AIB), no presentaron efectos en la propagación vegetativa de

G. verticillata y B. tulda. También concluye que las secciones media y apical

de G. verticillata mostraron la mayor capacidad para la propagación

vegetativa evaluada. 11

Osche, J.J., comenta que la marcada variabilidad de las plantas

mezcladas obtenidas por semilla y el mejoramiento potencial en los

rendimientos, como resultado de la selección preliminar en masa: Más o

menos 23,000 plantas en una gran cantidad de plantaciones se dividieron en

9Efecto del acidoindolbutirico y el ambiente de propagación en la multiplicación de cinco especies

medicinales. (en línea). Consultado el 18 de Febrero del 2011. disponible en: http://bibagr.ucla.edu.ve/db/bvetucla/edocs/tesis_pdf/sivira_silvia.pdf. 10

Manuel de Jesús Piox Mendoza. Diagnostico de la Producción de Té (Thea sinensis L.) en el departamento de Alta Verapaz y propuesta para su desarrollo. (Tesis Ing. Agr. Guatemala, URL/Facultad de Ciencias Agrícolas y Ambientales). 1996. 64 11 Ronaldo Corado Montepeque. Evaluación de tres niveles de Acido Indolbutirico en

tres tipos de esquejes de dos especies de Bambú, en San Miguel Panan, Suchitepequez. (Tesis Ing. Agr. Guatemala. USAC/Facultad de Agronomía). 1991. 41


diez grupos iguales y se analizaron para determinar su variabilidad. El

promedio de trece cosechas reveló rendimientos que variaban desde 2.0%

para el grupo menos productivo hasta 21.9% para el más alto; el 62.8% de la

producción total fue contribuida por el 40% de las plantas.12

Otro estudio realizado sobre la floración y la polinización han mostrado

que el porcentaje de frutos con semilla viables producidos con la polinización

cruzada natural es más o menos del 8%. Si se cortan los estambres, el

porcentaje es 11.5%, pero solo se obtiene el 0.8% si se eliminan tanto los

estambres como los pétalos.13

6.2 MARCO CONCEPTUAL

6.2.1 Historia del Té (Thea sinensis)

El té es la bebida más ampliamente usada en el mundo. Original

de China, el té fue un artículo de comercio por más de 1,000 años antes

de que fuese introducida a Europa en el Siglo XVII por los holandeses.14

Puede estimarse que en China fue conocido el té más de dos mil

años antes de Jesucristo, pero sólo como planta medicinal que aliviaba la

fatiga, fortificaba la voluntad y deleitaba la vista; su uso era, en parte, para

combatir el reuma. Ya en el siglo IV se hizo la bebida predilecta de los

habitantes del Yang-Tse-kiang, los cuales lo consumían de extraña

manera, pasando las hojas por vapor, moliéndola en mortero e hirviendo

la pasta con arroz, jengibre, cáscara de naranja y cebolla. 15

12

Ochse, J.J.; Soule JR, M.J.; Dijkman, M.J.; Wlehlburg, C. Cultivo y mejoramiento de plantas tropicales y subtropicales , México: Editorial Limusa, 1974. 13



Nosti Nava, Jaime. CACAO, CAFÉ y TÉ. Barcelona, España: Salvat, 1963.

La introducción del té en Europa la hicieron casi simultáneamente

francés y holandeses, aunque corresponde a estos su divulgación, pues

en 1610 lo llevaron por primera vez a Java y en 1635 a su país, para

después iniciar un activo comercio en que el producto con que se trocaba

era la modesta salvia que los chinos apreciaban también como infusión.16

El té negro llegó a América con los primeros pobladores europeos

en 1492. El té negro se hizo famoso en los Estados Unidos en 1773

cuando los colonos arrojaron té negro en la Bahía de Boston durante la

Fiesta del Té de Boston. Este gesto simbólico fue uno de los primeros

eventos de la Guerra de Independencia de los Estados Unidos contra

Inglaterra.17

Hoy el té se consume en el mundo entero y priva en aquellas

regiones en que el café no ha tenido gran éxito, como en Rusia,

Inglaterra, China, Japón, países norteafricanos, etc. Se consume en

forma de té verde y té negro, ambos derivados de cualquier variedad; el

primero originado de hojas sin fermentar y el segundo de hojas

fermentadas. 18

6.2.2 Distribución Geográfica del Cultivo de té (Thea sinensis)

El árbol de té se encuentra espontaneó en la extensa región

montañosa fronteriza de Assam, Birmania y Toquín con China. Se ha

propagado en Japón, la India, también se ha desarrollado en Holanda en

las Indias Orientales, Java y Sumatra.19

16

Ibid. 17

Té negro – Guía de Suplementos (en línea). Consultado el 13 de Febrero de 2011. Disponible en: http://guiadesuplementos.org/tenegro.htm 18

Nosti Nava, Jaime. CACAO, CAFÉ y TÉ. Barcelona, España: Salvat, 1963. 19


Según Liyanage, M.W., citado por Piox Mendoza, en los Estados

Unidos, se cultiva ésta planta con excelentes resultados en el norte de la

Florida. En América del Sur crece bien en Argentina, Colombia, Brasil y

el Perú. Otros países de Asía cultivan también el té, pero sin alcanzar

gran importancia, como Persia, Malasia, Turquía, Tailandia y Birmia. 20

Según Ochse, J.J., en Africa hay cultivos de té más o menos extensos, en

el antiguo Camerún Inglés, Río Muni, Kenia, Nyassa, Tanganika, Uganda,

Mosambique y Africa del Sur. 21

6.2.3 Introducción del té a Guatemala

En Guatemala, en el año 1,900 se empieza el cultivo en pequeñas

áreas, siendo en la finca Chirrepec, actualmente finca Cooperativa

Agrícola Integral Chirrepeco, R.L., la cual pertenecía al alemán señor

Oscar Majus Kloeffer a quién se le atribuye la introducción del té y

cardamomo a las verapaces.22

Según Castellanos Cambranes, J.C., citado por Piox Mendoza,

informa que en Alta Verapaz el cultivo de té (Th vea sinensis), es donde

se inicia comercialmente este cultivo, en el año de 1,915 en la finca que

actualmente está organizada como Cooperativa Agrícola Integral

Chirrepeco, exportando a Europa toda la producción a granel.23

20

Manuel de Jesús Piox Mendoza. Diagnostico de la Producción de Té (Thea sinensis L.) en el departamento de Alta Verapaz y propuesta para su desarrollo. (Tesis Ing. Agr. Guatemala, URL/Facultad de Ciencias Agrícolas y Ambientales). 1996. 64 21



Manuel de Jesús Piox Mendoza. Diagnostico de la Producción de Té (Thea sinensis L.) en el departamento de Alta Verapaz y propuesta para su desarrollo. (Tesis Ing. Agr. Guatemala, URL/Facultad de Ciencias Agrícolas y Ambientales). 1996. 64

6.2.4 Clasificación Taxonómica del Té

Clasificación científica

Reino: Plantae

División: Magnoliophyta

Clase: Magnoliopsida

Orden: Ericales

Familia: Theaceae

Tribu: Theeae

Género: Camellia

Especie: C. sinensis

Sinonimia: Thea sinensis L.24

6.2.5 Morfología del Té

6.2.5.1 Planta

Son arbustos leñosos o árboles bajos, sumamente

ornamentales, siemprevivos o semisiemprevisos. Cuando crece

libremente alcanza alturas de hasta 10 a 15 metros, con lar corona de

un diámetro de más o menos 5 metros. 25

6.2.5.2 Raíz

Pivotante, ramosa, provista de muchos filamentos capilares

cuando la planta alcanza su mayor desarrollo, llegando a penetrar

hasta 1 metro de profundidad en suelos permeables y 1.5 metros en

suelos pobres de elementos nutritivos.26

24

Camelia sinensis-Wikipedia, la enciclopedia libre (en línea). Consulado el 13 de Febrero de 2011. Disponible en: http://es.wikipedia.org/wiki/Camellia_sinensis 25


Ibid.

http://es.wikipedia.org/wiki/Clasificaci%C3%B3n_cient%C3%ADfica

http://es.wikipedia.org/wiki/Reino_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Plantae

http://es.wikipedia.org/wiki/Divisi%C3%B3n_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Magnoliophyta

http://es.wikipedia.org/wiki/Clase_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Magnoliopsida

http://es.wikipedia.org/wiki/Orden_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Ericales

http://es.wikipedia.org/wiki/Familia_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Theaceae

http://es.wikipedia.org/wiki/Tribu_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Theeae

http://es.wikipedia.org/wiki/G%C3%A9nero_%28biolog%C3%ADa%29

http://es.wikipedia.org/wiki/Camellia

http://es.wikipedia.org/wiki/Especie

6.2.5.3 Hojas

En las ramas las hojas se disponen aisladas, casi alternas,

cortamente pecioladas, con nervio central bastante saliente por el

envés, nervios laterales muy aparentes, que dan al limbo aspecto

ondulado, éste es ovaloblongo, finalmente dentado, con dientes

característicos dirigidos hacia el vértice, que faltan en la parte inferior

de la hoja; el color del limbo es verde, más obscura en el haz que en

el envés.27

6.2.5.4 Flores

Son axilares, aisladas o en flojas inflorescencias de hasta

cuatro flores, blancas o cremas, olorosas, con una o dos brácteas y

dos profilos; sépalos soldados en la base; cinco pétalos imbricados;

numerosos estambres, ligeramente soldados por sus bases entre sí y

con los pétalos; ovario trilocular con estilo simple y estigma trífido. 28

6.2.5.5 Fruto

En forma de cápsula trígona, de epicarpio coriáceo loculicida,

con una a cuatro semillas esféricas, de 10 – 15 mm de diámetro, de

color negruzco, el fruto suele aparecer a los dos años de edad de la

planta y aun antes.29

6.2.6 Composición del Té

Los componentes activos principales de la hoja de té, son el tanino,

la cafeína, aceite esencial, fermentos diversos y complejos, etc. Los

27



Ibid.

taninos del té son substancias muy complejas cuyo estudio no es

definitivo, pero que parecen derivados, en la hoja verde, de l-epicatequina

y de galocatequina y sus productos de condensación, que deben ser

oxidados durante el proceso de fermentación en la fabricación de té

negro. El tanino es el responsable de la coloración especial del té, pues el

oxidante origina flobafenos pardos, solubles en la infusión que contiene el

resto de los taninos de la hoja. 30

6.2.7 Formas de propagación del té

El té se propaga comercialmente por tres métodos semillas,

esquejes e injertos. Los dos últimos son desarrollados a través de la cada

vez mayor presión ejercida para que haya rendimientos más elevados y

uniformidad de producto, debido a que con estos métodos se pueden

conservar los cultivares selectos y no perder las características del

progenitor.

6.2.7.1 Propagación sexual o por semilla

Ochse, J.J., indica que el té es típicamente de polinización

cruzada, siendo heterocigoto en casi todos sus caracteres; de ahí es

prácticamente imposible obtener razas de reproducción pura, aun para

una cantidad limitada de factores. También indica que el ciclo semilla

– planta madura – semilla, es de tres a diez años.31

Las relativamente escasas semillas que produce el té tienen

que ser seleccionadas eligiéndolas en principio de los árboles más

frondosos y sanos; los frutos serán sanos y bien conformados,

completamente maduros y las semillas aparecerán sanas, bien

30


Ochse, J.J.; Soule JR, M.J.; Dijkman, M.J.; Wlehlburg, C. Cultivo y mejoramiento de plantas tropicales y subtropicales , México: Editorial Limusa, 1974.

redondas, de color pardo sin manchas y de la mayor densidad posible,

porque esto es indicio de buenas condiciones germinativas y de que

suministrarán plantas normales. Es necesario resaltar que al momento

de la selección de semillas hay que distinguir las semillas viejas, ya

que ésas son de poca vitalidad, se enrancian y disminuyen de peso

específico.32

La siembra se puede realizar en camas sin pretratamiento; Se

siembran de seis a diez semillas, que quedan a una profundidad de 3 -

5 cm a una distancia de 4 x 4 cm. Las semillas de té con frecuencia

requieren de dos a tres meses antes de que germinen puesto que las

cubiertas de las semillas son prácticamente impermeables a la

humedad33.

6.2.7.2 Propagación asexual o vegetativa

La multiplicación del té por vía asexual tiene interés por ser

planta de poca capacidad fructífera, tanto menor cuando más

seleccionada está y ello obliga a acudir a este método, que tiene

técnicas tan diversas.

Entre los métodos de propagación vegetativa del té podemos

mencionar la multiplicación por estacas, acodos e injertos, el primero

de éstos es el más económico, a continuación se describen a cada

uno de ellos:

a) Multiplicación por estaca: Primeramente se necesita realizar la

selección de los arbustos los cuales tiene que ser sanos

vigorosos. Las estacas se deben tomar de brotes leñosos aún

verdes; se les prepara de 2 a 4 cm de largo con una hoja y una

32


Ibid

yema axilar vegetativa. Las camas para el estacado deben de

ser de más o menos de 1 m de ancho niveladas o inclinadas,

bien sombreadas, cerca de un abastecimiento de agua

cubiertas de malla para protegerlas del viento; generalmente se

les eleva de 10 a 12 cm para proporcionar un mejor drenaje.34

El medio de las camas para el estacado puede ser de

cualquier tipo, siempre y cuando sea suelto y bien drenado; las

mezclas que contienen una proporción elevada de arena han

dado buenos resultados, las estacas se espacian más o menos

a una distancia de 10 cm. 35

b) Multiplicación por Acodos: esté método supone la eliminación

momentánea de un buen productor, si se hace en acodo bajo,

previo rebaje total del arbusto. El rebaje se efectúa en la

estación seca, a una altura del suelo de 8 – 10 cm, y alrededor

del mismo se aporca con buena tierra, quedando el tronco

completamente cubierto. Para mejorar mantener la humedad

de la tierra del acodo, la cual debe ser alta y constante, se

reduce la superficie de evaporación colocando una caja sin

fondo ni tapa de forma que el centro éste ocupado por la cepa,

esta caja tiene dimensiones de 50 x 50 x 25 cm y se rellena de

tierra fértil y fina.36

En la época lluviosa brotan de la cepa nuevos tallos

emisores de raicillas, los cuales a los ocho meses pueden

separarse de la planta madre, para trasladarlos al vivero; en

éste se mantienen hasta la época de trasplante en la próxima

34


Ibid. 36


temporada favorable. El trasplante se realiza rebajando el joven

brote y aun terciando las hojas para evitar la marchitez temporal

que pueda malograr el arraigo.37

c) Multiplicación por Injertos: El injerto también tiene extensa

aplicación en el té. La elección del injerto es función de los

clones seleccionados y en ellos se eligen brotes jóvenes de 2

cm de diámetro para separar las yemas en la forma típica de

estas operaciones; la yema se inserta debajo de la corteza del

patrón, previo un corte de la corteza en T invertida, ligando la

yema con rafia y betún de injertador, que se pueden levantar en

cuanto la yema prende definitivamente. Cuando la rama del

injerto tenga 25 cm de longitud, se rebaja el tronco o rama del

patrón mediante un corte bisel, cuya parte más alta esté del

lado de la yema y a unos 5 cm de ésta.38

6.2.7.3 Ventajas de la Propagación Vegetativa o Asexual

Las ventajas de la propagación vegetativa frente a la sexual, son: 39

- Se conservan mejor las características de los progenitores.

- Se obtiene mayor crecimiento en menor tiempo.

- El manejo a nivel de vivero es más sencillo.

- El costo de producción es menor.

- Se evita pérdidas de plántulas por causas como: damping off,

pájaros, roedores, etc.

- Se evita el riesgo de tener raíces mal formadas por un

deficiente repique.

37

Ibid. 38

Nosti Nava, Jaime. CACAO, CAFÉ y TÉ. Barcelona, España: Salvat, 1963 39

Evaluación del proceso de multiplicación asexual de Estacas de Aliso (alnus acuminata),

utilizando cuatro sustratos y tres hormonas en el Laguacoto I, Provincia Bolívar. (En línea). Consultado el 24 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.biblioteca.ueb.edu.ec/handle/15001/190

6.2.8 Condiciones ecológicas

Efferson, N., citado por Piox Mendoza menciona que la planta

crece y produce en climas de templados a tropicales y en alturas que van

desde el nivel del mar a 2,000 metros. No obstante se adapta mejor en

regiones montañosas con declive suave, buena circulación de aire,

temperaturas moderadas y precipitación anual de 1,200 a 1,400 mm.40

Piox Mendoza también comenta que el cultivo requiere una altitud

ideal de 1,500 metros, una precipitación pluvial de 1,500 a 3,000 mm

anuales, temperatura de 18 a 25 ºC, humedad relativa del 75 a 80% y

luminosidad de 3 a 6 horas diarias durante todo el año.41

Piox Mendoza quien cita a la Dirección General de Servicios

Agricolas, DIGESA, comenta que el té es una planta que puede crecer en

cualquier tipo de suelo con excepción de aquellos con mal drenaje, sin

embargo los mejores suelos son los de naturaleza arcillo-arenoso, rico en

materia orgánica y bien drenados, con un pH de 4.5 a 5.6, siendo ideal de

5.5.42

Los terrenos vírgenes que poseen una buena proporción de

humus proveniente de la descomposición orgánica y con un pH de 5.5

son aptos para el cultivo, mientras que en suelos muy ácidos menores de

4.5 no se desarrolla bien la planta.43

40


Ibid. 42

Ibid 43

Ibid.

6.2.9 Usos del té

Su cultivo y uso data desde tiempos milenarios, antiguamente tenía

uso medicinal, actualmente se consume como una bebida caliente o fría,

el té es hoy la bebida más ampliamente usada en el mundo. Se introdujo

en las cafeterías que se abrieron en Inglaterra alrededor de 1,650 y

gradualmente reemplazó al café como la bebida favorita. Piox Mendoza

citando a Bokuchava, indica que las ventajas resultantes de tomar té

son:44

Fortalece el cerebro.

Reanima y aumenta la energía.

Diurético y contribuye a la baja del ácido úrico.

Baja el colesterol.

Fortalece y protege los dientes evitando la caries.

Evita que el cuerpo absorba metales pesados tales como

plomo, mercurio, etc.

Evita el crecimiento desproporcionado de las células (cáncer).

Ayuda a la digestión.

Mejora la Circulación sanguínea y evita la diabetes.

6.2.10 Los Reguladores de Crecimiento y el Enraizamiento

6.2.10.1 Reguladores de Crecimiento

El crecimiento es el desarrollo mas la diferenciación. En sentido

estricto es el aumento irreversible de tamaño. Cualquier factor que

altere el volumen de la planta de forma reversible no se considera

crecimiento. Se cuantifica con el incremento de los componentes

44

Manuel de Jesús Piox Mendoza. Diagnostico de la Producción de Té (Thea sinensis L.) en el departamento de Alta Verapaz y propuesta para su desarrollo. (Tesis Ing. Agr. Guatemala, URL/Facultad de Ciencias Agrícolas y Ambientales). 1996. 64

citoplasmáticos como proteínas (peso seco), número de células,

crecimiento en longitud y en términos generales, de cualquier

dimensión siempre que probemos que no sea reversible. 45

Un mayor crecimiento implica una mayor división celular. Las

células meristemáticas concretamente soportan el crecimiento, de

manera que siempre que se mantenga el carácter meristemático las

células entrarían en ciclo de multiplicación. Pero en sistemas

biológicos no se mantendrá este estatus, sino que unas células

entrarán en procesos de elongación, otras en diferenciación y en

senescencia, apoptosis... de modo que el crecimiento, además de

aumentar el tamaño implica también la diferenciación y el desarrollo46.

El desarrollo será el conjunto de procesos que determinan el

cambio de formas y aptitudes en un ser vivo. 47

La diferenciación es el compromiso que adquiere la célula a

realizar una función. Tendrá como resultado una determinada

morfogénesis (origen de una morfología determinada).48

Y la morfogénesis es el es el origen de una morfología

determinada que va a ser el resultado de la diferenciación celular.49

Las Unidades del crecimiento son50:

-Incremento del número de células.

-Incremento de biomasa.

45

23. CRECIMIENTO Y DESARROLLO VEGETAL. OBJETIVOS (En línea). Consultado el 05 de

Marzo de 2 011. Disponible en: http://exa.unne.edu.ar/biologia/fisiologia.vegetal/Crecimiento%20y%20desarrollo%20en%20plantas.pdf 46

Ibíd. 47

Ibíd. 48

Ibíd. 49

Ibíd. 50

Ibíd.

http://exa.unne.edu.ar/biologia/fisiologia.vegetal/Crecimiento%20y%20desarrollo%20en%20plantas.pdf

-Incremento de volumen.

-Incremento de longitud.

Primero es necesario definir lo que es una hormona vegetal y

un regulador de crecimiento. Se denomina hormona a cualquier

sustancia orgánica específica, efectiva a bajas concentraciones, y que

es elaborada por las células en una parte del organismo y

transportada a otra parte del mismo, donde ejerce su acción

produciendo un efecto fisiológico específico. El comportamiento de

ciertas sustancias vegetales parecía ser lo suficientemente similar a

las hormonas animales como para justificar el uso del término

hormona vegetal o fitohormona. Numerosos fisiólogos vegetales

utilizan la denominación reguladores de crecimiento o fitorregulador de

manera de incluir tanto los compuestos naturales.51

En si podemos definir entonces que los reguladores de

crecimiento son moléculas con una configuración determinada con la

que se pueden unir a receptores específicos, para transmitir a la célula

las pautas de desarrollo y diferenciación que deben seguir. Son los

encargados de inducir expresiones génicas específicas, y su efecto

dependerá no sólo de su presencia o ausencia, sino de su

concentración y de la sensibilidad de la propia célula. Esta sensibilidad

es la capacidad que tienen las células para reaccionar frente a una

cantidad de regulador, dependiendo esto del número de receptores

disponibles capaces de captar el estímulo a concentraciones bajas,

altas y óptimas.52

51

REGULADORES DE CRECIMIENTO 1. (En línea). Consultado el 05 de Marzo de 2 011. Disponible en: http://www.criba.edu.ar/agronomia/carreras/otras/materias/555/archivos/hormonas-fotosintesis-crecimiento-nutricion.pdf 52


Marzo de 2 011. Disponible en: http://exa.unne.edu.ar/biologia/fisiologia.vegetal/Crecimiento%20y%20desarrollo%20en%20plantas.pdf


Los fitorreguladores pueden ser naturales o sintéticos.

NATURALES

o HORMONAS: fitorregulador natural con acción en un lugar de la

planta distinto de donde se produce.

Conocidas: auxinas, giberelinas, citocininas, etileno, ácido

abscísico, ácido traumático.

Probables: florígeno, antesina, (otras).53

o COFACTORES: fitorregulador natural con acción catalítica y

regulatoria en el metabolismo, pero cuya acción es insuficiente por

sí misma para determinar fenómenos de desarrollo; actúan como

coenzimas. Los más conocidos son: tiamina, ácido nicotínico,

piridoxina.54

o INHIBIDORES: fitorregulador natural que reprime algún proceso

metabólico, ya sea actuando en forma independiente o bien

contrarrestando la acción de una hormona inductora. Pueden ser:

auxinas giberelinas citocininas ácido abscísico dependiendo de la

concentración y también se encuentran el ácidos salicílico,

benzoicos, gálico y cinámico, lactonas (cumarina), fenoles,

piridinas, ácido clorogénico, quinonas y flavonoides.55

53

REGULADORES DE CRECIMIENTO 1. (En línea). Consultado el 05 de Marzo de 2 011.

Disponible en: http://www.criba.edu.ar/agronomia/carreras/otras/materias/555/archivos/hormonas-fotosintesis-crecimiento-nutricion.pdf 54

Ibíd. 55


Disponible en: http://www.criba.edu.ar/agronomia/carreras/otras/materias/555/archivos/hormonas-fotosintesis-crecimiento-nutricion.pdf

SINTETICOS: fitorregulador con estructura similar a la endógena

correspondiente, pero sintetizado artificialmente.

o Con acción similar a las hormonas: auxinas, giberelinas, citocininas

y abscisinas

o Con acción similar a los inhibidores: Cicocel (CCC), carbamatos,

antiauxinas, morfactinas, etc.56

Otra clasificación de los fitorreguladores (reguladores de

crecimiento) y de las fitohormonas (hormonas vegetales) es la siguiente:57

-Compuestos de sintesis

-Poliaminas

-Jasmonatos

-Brasinolidos

Fitorreguladores -Oligosacarinas

-Esteroles Auxinas

-Ácido salicílico Citoquininas

-Fitohormonas Giberelinas

Acido abscisico

Etileno

Las fitohormonas clásicas son:

*AUXINAS: son fitohormonas que favorecen la elongación de la

célula a través de procesos de relajación de la pared.58

*CITOQUINAS: son fitohormonas que regulan la división celular.59

*GIBERELINAS: son fitohormonas que afectan a la elongación de

56

Ibíd. 57



Ibíd. 59

Ibíd.


tallos.60

*ACIDO ABSCISCO: afecta a los procesos de senescencia y

abscisión (caída de las hojas y frutos…) 61

*ETILENO: afecta a la maduración de los frutos.62

Las poliaminas son Fitorreguladores, participan en todos los

procesos de diferenciación en la planta. Los jasmonatos son otros

Fitorreguladores, afectan a procesos de defensa. El resto actúan en

mecanismos de defensa y en procesos de estrés.63

Los reguladores de Crecimiento en el enraizamiento:

Como se mencionó, no todas las plantas tienen la capacidad de

enraizar espontáneamente, por lo que a veces es necesario aplicar

sustancias hormonales que provoquen la formación de raíces. Entre

los reguladores de crecimiento, las fitohormonas específicamente las

auxinas son hormonas reguladoras del crecimiento vegetal y, en dosis

muy pequeñas, regulan los procesos fisiológicos de las plantas. La

función de las auxinas en la promoción del enraizamiento tiene que

ver con la división y crecimiento celular, la atracción de nutrientes y de

otras sustancias al sitio de aplicación, además de las relaciones

hídricas y fotosintéticas de las estacas, entre otros aspectos.64

60

Ibíd. 61

Ibíd. 62

Ibíd. 63



II. LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA (En línea). Consultado el 27 de Febrero de 2 011.

Disponible en: http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_6.htm


http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_6.htm

http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_6.htm

6.2.10.2 AUXINAS:

Es el grupo más conocido de fitorreguladores. F.W. Went en

1926 logró extraer de puntas de coleoptiles de avena un compuesto

capaz de estimular el crecimiento de plántulas decapitadas.

Posteriormente se demostró que si se colocaba un pequeño bloque de

agar impregnado con sustancia proveniente del extremo del coleoptile,

sobre un costado de la plántula, ésta se curvaba hacia el lado

contrario del bloque de agar. Esta curvatura se debe al aumento en la

elongación que ocurre directamente debajo del bloque. 65

Went propuso el nombre de auxina (del griego "auxe"=crecer)

para esta hormona inductora de curvatura. Este factor, posteriormente

resultó ser el ácido indol acético también llamado AIA (que si bien no

es la única auxina de origen endógeno, es la más conocida).

Subsecuentemente se demostró que un gran número de compuestos

sintéticos con variadas estructuras químicas poseían actividad

auxínica. 66

Debido a ello, el uso del término auxina fue ampliado de

manera de incluir todos los compuestos poseedores de efectos

fisiológicos similares a los del AIA. Si bien muchas auxinas sintéticas

difieren mucho del AIA, todas poseen una acción similar debido a que

a pH neutro tienen un anillo cargado positivamente y una cadena,

separada del anillo por una distancia de 5,5 Å, cargada

negativamente. Dicha separación de cargas es requisito esencial para

la actividad auxínica. La carga negativa, a pH neutral se debe a la

65





pérdida de un H+ desde el grupo carboxilo, mientras que la carga

positiva se localiza en el nitrógeno ubicado en el anillo indólico. Las

antiauxinas son inhibidores sintéticos análogos a las auxinas. Su

efecto se basa en inhibir compitiendo con las auxinas por los

receptores específicos.67

Su función biológica es la regulación del crecimiento y

desarrollo de las plantas. Tanto si son sintéticas como naturales son

las responsables de los siguientes procesos:68

1. Dominancia del brote principal e inhibición de la ramificación lateral.

2. Estimulación del crecimiento apical de toda la planta

3. Diferenciación de los vasos conductores (xilema y floema)

4. Inhibición de la caída de las hojas y de los frutos

5. Estimulación de la formación de raíces adventíceas (Importante en la

plantación de esquejes).

6. Tropismos

Las auxinas están implicadas en el control de diversas

funciones en las plantas, como por ejemplo:

a- Curvaturas trópicas

Son curvaturas de los órganos vegetales que pueden explicarse

sobre la base de concentraciones diferenciales de auxinas en distintas

partes. Se define tropismo como el crecimiento diferencial en respuesta a

un estímulo unidireccional. En el fenómeno de fototropismo, la

concentración de auxina en el lado no iluminado del tallo, es mayor que la

concentración en el lado iluminado. En el tallo, la velocidad de crecimiento

67



Hormonas vegetales. (En línea). Consultado el 04 de Marzo de 2 011. Disponible en: http://www.alaquairum.net/hormonas_vegetales.htm

http://www.alaquairum.net/hormonas_vegetales.htm

http://www.alaquairum.net/hormonas_vegetales.htm

es aproximadamente lineal respecto de la concentración de auxina, y por

lo tanto, el lado oscuro crece más que el lado iluminado y así se produce

la curvatura hacia la luz.69

b- Dominancia apical

Si la concentración de auxina excede ciertos niveles, el desarrollo

de las yemas puede quedar inhibido. Si se elimina el ápice de una planta,

se elimina así la fuente productora de auxinas, y desaparece la

dominancia apical, la cual puede ser reimpuesta por aplicación exógena

de la hormona. En este fenómeno la auxina producida por la yema

terminal o apical difunde hacia la base del tallo promoviendo el

alargamiento de las células de éste e inhibiendo, como dijimos, el

desarrollo de las yemas axilares de las hojas (que permanecen en estado

de latencia). 70

c- Abscisión

Significa la separación de partes u órganos de la planta. Puede

tener lugar en hojas, ramas, inflorescencias, flores, pétalos y frutos, y se

debe a la formación de una zona de células especializadas en la base de

los pecíolos, llamada zona de abscisión. El ejemplo más conocido es la

caída de las hojas. En tanto que la producción de auxina por parte de la

hoja permanece en un nivel adecuado, la zona de abscisión no se forma.

Pero cuando esa producción decae por debajo de un nivel crítico, el

cemento intercelular comienza a desaparecer y finalmente las células

quedan separadas, permaneciendo sólo intacto el tejido vascular. Como

69

REGULADORES DE CRECIMIENTO 1. (En línea). Consultado el 05 de Marzo de 2 011. Disponible en: http://www.criba.edu.ar/agronomia/carreras/otras/materias/555/archivos/hormonas-fotosintesis-crecimiento-nutricion.pdf 70

REGULADORES DE CRECIMIENTO 1. (En línea). Consultado el 05 de Marzo de 2 011. Disponible en: http://www.criba.edu.ar/agronomia/carreras/otras/materias/555/archivos/hormonas-fotosintesis-crecimiento-nutricion.pdf

resultado ocurre la ruptura mecánica del pecíolo bajo el impacto del viento

u otra fuerza física.71

Cuando la producción de auxinas disminuye, por envejecimiento

del órgano u otra razón, se forma la zona de abscisión. La eliminación de

la lámina de la hoja es una forma eficaz de interrumpir el suministro de

auxinas. El conocimiento de este fenómeno ha posibilitado el control de la

caída de hojas, flores y frutos por medio de pulverizaciones con hormona

sintética.

d- Enraizamiento

El transporte de las auxinas en los tallos es de tipo polar, es decir,

desde el ápice hacia la base morfológica. En un tallo cortado, las auxinas

se acumulan en la base. Resulta interesante también el hecho de que en

muchas especies se forman raíces en los tallos cortados (hecho

ampliamente utilizado por los horticultores). Como resultado de estas

consideraciones, Went realizó experimentos que demostraron que la

aplicación de auxinas en la base de tallos cortados aumentaba la

iniciación radicular. 72

La diferenciación de raíces en tallos, hojas y raíces utilizando

auxinas ha dado lugar a que se las utilice ampliamente en la propagación

de plantas leñosas y herbáceas. A pesar de que las auxinas estimulan la

formación de los primordios radiculares, luego inhiben su elongación por

lo cual es necesario eliminarlas una vez producida la primera etapa para

permitir un desarrollo radicular activo. No se conoce exactamente como

71





actúan las auxinas en la formación de raíces. Pueden intervenir factores

distintos, como los vinculados con la nutrición (en los tejidos caulinares

son muy importantes los hidratos de carbono y las sustancias

nitrogenadas). Esta sería la razón por la cual el enraizamiento de estacas

tratadas con auxinas se ve facilitado por la presencia de hojas, que

aportan estos factores nutritivos, además de ser fuentes de auxinas. 73

Desde el punto de vista fisiológico, el proceso de enraizamiento es

el resultado de la presencia o ausencia de un conjunto de factores

determinantes (hormonas e inhibidores) y de cofactores de variada

naturaleza química (vitaminas, aminoácidos, purinas, sales minerales,

etc.), que actúan en una determinada relación de concentración.74

En la práctica de vivero, muchas especies se propagan

vegetativamente por trozos de tallos (estacas), raíces u hojas cortadas de

la planta madre con los beneficios de la estabilidad genética y rapidez en

la obtención de nuevas plantas. Los tallos de algunas especies, como los

sauces, normalmente tienen primordios radiculares preexistentes que

desarrollan bajo condiciones favorables. Sin embargo, en otros casos

tales primordios no existen pero pueden desarrollarse bajo condiciones de

cultivo adecuadas.75

73







“Las auxinas generalmente reducen el tiempo de

enraizamiento a un tercio, produciendo al mismo tiempo un sistema

radicular más denso. En otros casos, permiten enraizar estacas de

especies que normalmente no lo hacen con facilidad.”76

Las auxinas más usadas en la práctica son el ácido indol butírico y

el ácido α-naftalén acético. Los preparados comerciales se aplican por

medio de vehículos sólidos o líquidos, siendo los más corrientes:77

a) aplicación de polvos impalpables en la base de las estacas.

b) inmersión de la base de las estacas en soluciones concentradas de

auxinas durante períodos cortos.

c) inmersión en soluciones diluídas durante uno o dos días.

Luego las estacas se plantan en un medio de cultivo adecuado.

e- Acción herbicida

Las auxinas, en concentraciones levemente más altas que las

usadas para estimular el crecimiento, provocaban la muerte de

determinadas especies. Además poseen aspectos selectivos de esta

acción herbicida de las auxinas. Para comprender mejor la importancia de

esta selectividad, recordemos que los productos herbicidas no selectivos

(ClNa, boratos, cloratos, arsenicales, SO4H2) matan por contacto y no

diferencian entre las especies. Los herbicidas selectivos, son absorbidos

por la planta y actúan interfiriendo algún proceso metabólico fundamental,

siendo algunas especies sensibles y otras no.

76





Existen cuatro razones fundamentales que justifican el uso de los

herbicidas selectivos en reemplazo de los no selectivos:78

1) La acción herbicida de las auxinas es selectiva. Esto es, afecta

sólo a algunas especies. Herbicidas similares al 2,4-D son muy efectivos

para matar especies de hoja ancha, pero tienen poco efecto sobre las

gramíneas u otras monocotiledóneas. Por ejemplo, el nabo en los campos

de cereales.

2) El efecto tóxico residual desaparece del suelo en pocas

semanas, en tanto que muchos de los viejos herbicidas arsenicales lo

inutilizaban durante varios años.

3) Las auxinas son económicas por su efectividad a

concentraciones relativamente bajas.

4) Las concentraciones de auxinas usadas habitualmente no son

tóxicas (aparentemente) para los seres humanos y animales. Para lograr

una acción tóxica eficaz, los herbicidas hormonales deben reunir las

siguientes condiciones: a) penetrar en la planta sin dificultades, b) ser

transportados (o movilizados) y c) ejercer su acción tóxica a nivel de

metabolismo celular.

Actualmente se utilizan cientos de herbicidas selectivos, entre los

que se cuentan auxinas sintéticas de la serie fenoxi:79

2,4-D (2,4-dicloro fenoxi acético)

MCPA (4 cloro metil fenoxi acético)

2,4,5-T (2,4,5-tricloro fenoxi acético)

78





Generalmente su acción se basa en competir con la auxina natural

por algún sustrato activo.

Interfieren en el metabolismo del ADN y ARN.

Todos estos efectos que hemos enumerado, en que están

implicadas las auxinas, dependen en gran medida de las velocidades de

producción, almacenaje y degradación de estas hormonas en las

plantas.80

f- Extensibilidad de la pared celular:

Las auxinas no se unen directamente a la pared celular sino que

actúan sobre la membrana plasmática provocando el "relajamiento" de la

matriz de celulosa que forma la pared para permitir el crecimiento de la

célula. El factor que provoca tal relajamiento es una diferencia de pH

causado por la extrusión de H+, y este mecanismo se conoce como teoría

del crecimiento ácido. Aparentemente la auxina estimula la liberación

activa de protones, causando un descenso del pH en la zona de la pared

celular y activando una enzima que causa extensibilidad de la pared por

clivaje de las uniones entre fibrillas. Este parece ser el paso inicial del

proceso de alargamiento celular que inducen las auxinas.81

80





6.2.10.2.1 TIPOS DE AUXINAS

Las principales auxinas que tienen actividad en la generación

de raíces, también conocidas como hormonas de enraizamiento se

encuentran las primeras tres:

a) Ácido Naftalenacético (ANA)

Estructura de la Auxina Sintética:

El Modo de acciones y las funciones: El ANA es también una sustancia

sintética con poder auxinicos y es, junto al AIB, una de las promotoras del

enraizamiento más utilizadas en la actualidad. Posee las mismas ventajas de

estabilidad del AIB y también ha probado ser más efectiva que el AIA. Su

desventaja principal es que generalmente ha mostrado ser más tóxica que el AIB

bajo concentraciones similares. 82

Concentraciones más utilizadas:

Las concentraciones de acido naftalenoacético van a depender de la

especie que se necesite enraizar ya sea para el caso de las especies leñosas,

semileñosas o herbaceas, podemos encontrar dese 50 ppm hasta 10,000 ppm.83

82

Enraizamiento de estacas juveniles de especies forestales: uso de ... - Resultado de la

Búsqueda de libros de Google (En línea). Consultado el 2 de Marzo de 2011. Disponible en: http://books.google.com/books?id=L9IOAQAAIAAJ&pg=PA16&lpg=PA16&dq=UTILIZACI%C3%93N+PARA+EL+ENRAIZAMIENTO+DEL+2,4-D+%28%C3%A1cido+2,4+diclorofenoxiac%C3%A9tico%29,&source=bl&ots=3mdTCM4825&sig=TaRS_6HIQgaLhrcnEDWYBacthr8&hl=es&ei=bVB2TZq2A8PG0QHpy43ZBg&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=1&ved=0CBUQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false 83 Horticultura Revista de Industria Distribución y Socioeconomía ... En línea). Consultado el 2 de

Marzo de 2011. Disponible en: www.mapa.es/ministerio/pags/.../pdf_Hort%2FHort_1989_45_17_27.pdf

http://books.google.com/books?id=L9IOAQAAIAAJ&pg=PA16&lpg=PA16&dq=UTILIZACI%C3%93N+PARA+EL+ENRAIZAMIENTO+DEL+2,4-D+%28%C3%A1cido+2,4+diclorofenoxiac%C3%A9tico%29,&source=bl&ots=3mdTCM4825&sig=TaRS_6HIQgaLhrcnEDWYBacthr8&hl=es&ei=bVB2TZq2A8PG0QHpy43ZBg&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=1&ved=0CBUQ6AEwAA


http://www.mapa.es/ministerio/pags/biblioteca/revistas/pdf_Hort%2FHort_1989_45_17_27.pdf

Para el caso de las Camellias se tiene varias concentraciones

dependiendo del tratamiento a utilizar; ya sea para el caso de tratamiento de

polvo en talco se pueden utilizar de 10 – 12 mg por gramo de talco o ligeramente

menores de ANA. 84

Para el tratamiento en solución concentrada: se prepara una solución

disolviendo la dosis hormonal en alcohol étilico del 50% o acetona al 50% en lo

que se sumerge las bases de las estaquillas durante 5 segundos. En el verano

se utilizan dosis de 1,000 ppm y de 2,000 ppm para variedades difíciles. 85

Y para el tratamiento de solución diluida: la base de la estaquilla se

mantienen en el preparado de 24 a 48 horas. Las concentraciones empleadas

en este caso son de ANA de (50 – 100 mg/litro).86

b) Ácído indolbutírico (IBA)


El Modo de acciones y las funciones: El AIB es una auxina sintética

químicamente similar al AIA que en la mayoría de las especies ha mostrado ser

más efectiva que cualquier otra y es actualmente la de mayor uso como 84Horticultura Revista de Industria Distribución y Socioeconomía ... En línea). Consultado el 2 de


85 Horticultura Revista de Industria Distribución y Socioeconomía ... En línea). Consultado el 2 de

Marzo de 2011. Disponible en: www.mapa.es/ministerio/pags/.../pdf_Hort%2FHort_1989_45_17_27.pdf 86 Horticultura Revista de Industria Distribución y Socioeconomía ... En línea). Consultado el 2 de





sustancia promotora del enraizamiento. Tiene las ventajas de que no es tóxica

en un amplio rango de concentraciones, no es degradada fácilmente por la luz o

microorganismos y al ser insoluble en agua, permanece por más tiemo en el sitio

de aplicación donde puede ejercer un mayor efecto. 87

Concentraciones más utilizadas: En trabajos realizados en el CATIE, la

concentración de 0.2 % de AIB ha dado los mejores resultados en A. acuminata,

B. quinata, Cedrela adorata, E. deglupta, G. arbórea y S. macrophylla. Con

platymiscium pinnatum, la dosis de 0.2% y 0.4 % de AIB fueron las mejores

cuando se utilizó graba o arena como sustrato, respectivamente. Algunas

especies respondieron mejor ante dosis mayores, por ejemplo Terminalia

oblonga, (0.8%), C. alliondora (0.8%-1.6%) y Hyeronima alchorneoides (1.6%),

mientras que A. guachapele enraió igualmente bien con concentraciónes desde

0.05% hasta 0.4% de AIB.88

En el AIB, existen al igual que para el ANA varios tratamientos de

aplicación de la auxina para las camellias, en el tratamiento en polvo las

concentraciones van entre 10,000 a 12,000 ppm, en el tratamiento de solución

diluida las dosis en verano van desde 1,000 ppm (= 1 mg de AIB por litro) y de

2,000 ppm para variedades difíciles. En invierno las dosis suelen ser de 2,500

ppm de AIB, también se pueden utilizar las mezclas de AIB y ANA a partes

iguales en concetraciones similares. Para el tratamiento en solución diluida son

de 50 – 100 ppm de AIB.89

87


Búsqueda de libros de Google (En línea). Consultado el 2 de Marzo de 2011. Disponible en: http://books.google.com/books?id=L9IOAQAAIAAJ&pg=PA16&lpg=PA16&dq=UTILIZACI%C3%93N+PARA+EL+ENRAIZAMIENTO+DEL+2,4-D+%28%C3%A1cido+2,4+diclorofenoxiac%C3%A9tico%29,&source=bl&ots=3mdTCM4825&sig=TaRS_6HIQgaLhrcnEDWYBacthr8&hl=es&ei=bVB2TZq2A8PG0QHpy43ZBg&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=1&ved=0CBUQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false 88

Ibíd. 89

Horticultura Revista de Industria Distribución y Socioeconomía ... En línea). Consultado el 2 de





c) 2,4-D (ácido 2,4 diclorofenoxiacético)


El Modo de acciones y las funciones: El 2,4-D es más conocido por su acción

herbicida, pero en dosis muy bajas también actúa como promotor del

enraizamiento de algunas especies. No se utiliza extensamente porque inhibe el

desarrollo de los brotes y promueve el desarrollo de raíces cortas y retorcidas,

de lento desarrollo, muy inferiores a los sistemas radicales fibrosos y vigorosos

que estimula el AIB. 90

d) 2,4-DB (ácido 2,4 diclorofenoxibutilico)


El Modo de acciones y las funciones: 2,4-DB o 4 - (2,4-diclorofenoxiacético) El

ácido butírico es un herbicida selectivo fenoxi sistémicos utilizados para controlar

muchas malezas de hoja ancha anuales y perennes en alfalfa, maní, soja y otros

cultivos. Su metabolito activo, el 2,4-D, inhibe el crecimiento en las puntas de los

tallos y raíces. Se incluye en la clase de toxicidad III. Se muestra alguna

90


Búsqueda de libros de Google (En línea). Consultado el 2 de Marzo de 2011. Disponible en: http://books.google.com/books?id=L9IOAQAAIAAJ&pg=PA16&lpg=PA16&dq=UTILIZACI%C3%93N+PARA+EL+ENRAIZAMIENTO+DEL+2,4-D+%28%C3%A1cido+2,4+diclorofenoxiac%C3%A9tico%29,&source=bl&ots=3mdTCM4825&sig=TaRS_6HIQgaLhrcnEDWYBacthr8&hl=es&ei=bVB2TZq2A8PG0QHpy43ZBg&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=1&ved=0CBUQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false



evidencia de toxicidad a los perros y gatos, como los cambios en el peso

corporal y la reducción del número de hijos, cuando son alimentados 25 a 80

miligramos por kilogramo de peso corporal durante periodos prolongados.

Pruebas de carcinogenicidad en este rango dado resultados diferentes. 91

e) Ácido 2, 4, 5- triclorofenoxiacético

El Modo de acciones y las funciones: El 2,4,5-T , (nombre químico: ácido 2, 4,

5- triclorofenoxiacético) es una auxina sintética con efectos plaguicidas,

prohibido en todas sus formulaciones y usos por el Convenio de Rótterdam, por

ser dañino para la salud humana y el ambiente.

91

Definiciones en la web para 2,4-DB (En línea). Consultado el 2 de Marzo de 2011. Disponible

en: en.wikipedia.org/wiki/2,4-DB -

http://es.wikipedia.org/wiki/Auxina

http://es.wikipedia.org/wiki/Plaguicida

http://es.wikipedia.org/wiki/Convenio_de_R%C3%B3tterdam

http://es.wikipedia.org/wiki/Salud

http://es.wikipedia.org/wiki/Ambiente

http://www.google.com/search?hl=es&client=firefox-a&rls=org.mozilla:es-AR:official&defl=en&q=define:2,4-DB&sa=X&psj=1&ei=gll2Tbi4L8aI0QGz05jYBg&ved=0CBUQkAE

VII. MARCO REFERENCIAL 7.1 Ubicación Geográfica

La presente investigación se realizará dentro de un invernadero, y

dicha estructura se construirá dentro de la Finca “Sachamach”, que se ubica

en el Centro Universitario del Norte, jurisdicción del municipio de Cobán,

departamento de Alta Verapaz. Dista de la ciudad capital 210 km. Sobre la

ruta CA – 14 y está localizada entre 16º21´ latitud Norte y 90º22´ longitud

Oeste.

7.2 Características Ecológicas

Esta zona de vida según el sistema de Holdridge, se relaciona a la de

un Bosque Muy Húmedo Subtropical (frío) y según la calificación de

Thorthwaite, describe que el área presenta un clima templado, con una

abundante vegetación natural.92

7.3 Características Climáticas

El área experimental se encuentra a una altura de 1,315 msnm. Con

una precipitación pluvial anual de 2,200.70 mm, temperatura media anual de

18.2º C y humedad relativa media anual de 84%.93

92

Cruz, JR. de la. 1976. Clasificación de zonas de vida de Guatemala, basada en el sistema de Holdridge. Guatemala. INAFOR. 42 p. 93

Ibíd.

VIII. METODOLOGÍA

8.1 Diseño Experimental

El diseño estadístico será trifactorial en completo azar, con dieciocho

tratamientos, un testigo y tres repeticiones, obteniendo un total de cincuenta y

siete unidades experimentales. Las dimensiones de cada unidad experimental

será de 0.50 m de ancho por 0.60 m de largo. El distanciamiento será de 0.10 m

entre hilera y 0.10 m entre esqueje. La densidad de esquejes por unidad

experimental será de 30; Ver anexo 2.

La ubicación de los tratamientos en el campo, así como las dimensiones

de los bloques, se presenta en los anexos 1 y 2.

8.2 Modelo Estadístico

Yijkl = U + Hi + Cj + Tk + HCij + HTik + CTjk + HCTijk + Eijkl

Donde:

Yijkl = Variable respuesta de la l-ésima unidad del k – ésimo tiempo

inmersión de la j – ésima concentración en el i – ésimo tipo de regulador de

crecimiento.

U = Condiciones Homogéneas antes de aplicar los tratamientos.

Hi = Efecto del i-ésimo tipo de regulador de crecimiento.

Cj = Efecto de la j-ésima concentración del regulador de crecimiento.

Tk = Efecto del k-ésimo tiempo de concentración en el regulador de

crecimiento.

HCij = Efecto de la interacción de el tipo de regulador de crecimiento y la

concentración del regulador de crecimiento.

HTik = Efecto de la interacción de el tipo de regulador de crecimiento y el

tiempo de inmersión en el regulador de crecimiento.

CTjk = Efecto de la interacción de la concentración del tipo de regulador de

crecimiento y el tiempo de inmersión en el regulador de crecimiento.

HCTijk = Efecto de la interacción de el tipo de regulador de crecimiento, la

concentración del regulador de crecimiento y el tiempo de inmersión en el

regulador de crecimiento.

Eijkl = Error experimental asociado a la l - ésima unidad del k – ésimo tiempo

inmersión de la j – ésima concentración en el i – ésima tipo de regulador de

crecimiento.

8.3 Descripción de los Tratamientos

REGULADORES DE

CRECIMIENTO

DOSIS (ppm)

TIEMPO DE INMERSIÓN

(Horas) TRATAMIENTO

CODIGO

R1 R2 R3

AIB

50 24 T1 T1R1 T1R2 T1R3

48 T2 T2R1 T2R2 T2R3

100 24 T3 T3R1 T3R2 T3R3

48 T4 T4R1 T4R2 T4R3

200 24 T5 T5R1 T5R2 T5R3

48 T6 T6R1 T6R2 T6R3

ANA

50 24 T7 T7R1 T7R2 T7R3

48 T8 T8R1 T8R2 T8R3

100 24 T9 T9R1 T9R2 T9R3

48 T10 T10R1 T10R2 T10R3

200 24 T11 T11R1 T11R2 T11R3

48 T12 T12R1 T12R2 T12R3

2-4-D

25 24 T13 T13R1 T13R2 T13R3

48 T14 T14R1 T14R2 T14R3

50 24 T15 T15R1 T15R2 T15R3

48 T16 T16R1 T16R2 T16R3

75 24 T17 T17R1 T17R2 T17R3

48 T18 T18R1 T18R2 T18R3

TESTIGO ------ --- T19 T19R1 T19R2 T19R3

8.4 Instalaciones

Las instalaciones corresponderán a un invernadero con una dimensión de

12 m de largo por 4 m de ancho, con área de 48 m2, este será construido en

forma de túnel con el fin de crear un ambiente con altas temperaturas, para que

las auxinas reaccionen.

El invernadero estará conformado por una estructura de madera y estará

cubierto en sus paredes y la parte de arriba por Nylon transparente de Calibre 6,

el suelo se agregara piedrín. Ver Anexo (Formato 1).

8.5 Materiales Vegetal

El material vegetal o esquejes serán obtenidos en la plantación de la

Cooperativa Agrícola Integral Chirrepeco, R.L., ubicada en la Finca Chirrepec,

del municipio de Cobán, A.V. Se sabe que las Camellias el tiempo medio de

enraizamiento es de 90 días que puede alargarse a 120 ó 150 en cultivares

difíciles y en estaquillado de invierno, mientras que en verano se puede acortar.

A partir de la segunda semana comienza la formación de callo, y las raíces

comienzan a aparecer a partir de la quinta semana. Algunos cultivares de fácil

enraizamiento están dispuestos para trasplantar a maceta a la decima semana.

8.6 Manejo del Experimento

8.6.1 Preparación de Camas Enraizadoras

Las camas enraizadoras se construirán a partir del suelo y se elaborarán

con tablas, las dimensiones de las camas serán de 3.5 m de largo, 2.5 m de

ancho y 0.25 m de profundidad. Al fondo se revestirá con nylon de color negro.

Sobre ellas se elevaran parales de 0.50 m de altura, de dónde se colocará sarán

para proteger los esquejes de la luz directa del sol.

8.6.2 Elaboración del sustrato

El sustrato será a partir de una mezcla de 80% de Arena + 20% de

Materia Orgánica. La cual se desinfectará con productos químicos, insecticidas y

fungicidas.

8.6.3 Obtención de las Estacas

Se obtendrá el material vegetativo (esquejes), en la Cooperativa

Chirrepeco, R.L. ubicada en Finca Chirrepeco del municipio de Cobán, A.V., el

corte de los esquejes será de 15 centímetros de largo, con una hoja y una yema

axilar vegetativa. Posteriormente se conservaran las estacas en papel periódico

humedeciéndolas hasta la hora de la siembra para evitar la evapotranspiración.

8.6.4 Aplicación del Regulador de Crecimiento

Para la aplicación de cada regulador de crecimiento, se procederá a

colocar cada una de las estacas en recipientes donde estarán cada uno de los

tratamientos previamente preparados, tanto el tipo de regulador de crecimiento

tipo auxina como las dosis a evaluar, posteriormente se dejarán inmersos en los

tiempos de inmersión en estudio.

8.6.5 Siembra de Estacas

Después de ello los propágulos (esquejes) de cada unidad experimental,

se colocarán en sus correspondientes áreas, a una distancia de 0.10 m entre

esqueje y 0.10 m entre hilera, y de los 15 cm de longitud del esqueje se

introducirán 5 cm, con una inclinación de 60 grados.

8.6.6 Limpias, Riegos, Monitoreos

Las limpias se realizarán en forma manual y periódicamente a fin de evitar

el desarrollo de plantas ajenas al experimento en los propagadores; además de

ellos se controlará la humedad del sustrato mediante monitoreos frecuentes

aplicando riegos manuales distribuyendo el agua en forma uniforme en un

período de dos veces por semana de preferencia por la mañana, teniendo

cuidado que todos los tratamientos reciban la misma cantidad.

8.7 Variables Evaluadas

a) Porcentaje de esquejes enraizados por tratamiento (%)

b) Sobrevivencia (%)

c) Longitud de raíz (cm)

d) Número de raíces/planta (unidad)

e) Peso seco de raíces. (gramos)

f) Relación costo/beneficio de los tratamientos.

g) Tiempos de enraizamiento de esquejes. (días)

8.8 Registro de la Información

El registro de la información para cada una de las variables se llevará a

cabo mediante un muestreo destructivo al azar dentro de cada tratamiento en

los intervalos de tiempo de 30, 60 y 90 días.

a. Porcentaje de Enraizamiento: Se recolectara la información a los

30, 60 y 90 días después de la siembra, para lo cual se anotará el

número de esquejes de cada uno de los tratamientos que

produzcan raíces en estos intervalos de tiempo. Está información

se registrará para que posteriormente se determine el porcentaje

de enraizamiento en base a los 10 propágulos sembrados por

unidad experimental e intervalos de tiempo.

b. Porcentaje de Sobrevivencia: Su determinación se realizará a los

30, 60 y 90 días después de la siembra, anotando el número de

propágulos sobrevivientes por unidad experimental, considerando

como propágulo sobreviviente aquel que posea brotes y/o raíces.

El cálculo del porcentaje se realizará en base a los 10 propágulos

sembrados en cada intervalo de tiempo en cada unidad

experimental.

c. Longitud de raíz: Se registrará a los 30, 60 y 90 días en cada uno

de los tratamientos y en las plantas que desarrollen sistema

radicular, la obtención de datos se hará midiendo con una cinta

métrica desde el cuello hasta el extremo y se expresará en

centímetros.

d. Número de raíces/planta: Se realizará un conteo del número de

raíces desarrolladas en cada uno de los intervalos de tiempos (30,

60 y 90 días) de cada tratamiento a evaluar.

e. Peso seco de raíces: Para el registro de esta variable se

procederá a cortar toda la producción vegetativa (aérea y radicular)

de cada esqueje tanto a los 30, 60 y 90 días de la siembra.

Posteriormente se colocara en hojas de papel y se identificara el

sistema radicular por tratamiento, para luego ser llevado al

laboratorio. Luego se secaran en horno a una temperatura de

40ºC -60ºC, por un período de 48 horas. Luego el material seco se

pesara en balanza analítica y se determinará la materia seca por

propágulo para posteriormente determinarlo por tratamiento.

f. Relación costo/beneficio de los tratamientos: se realizará un

registro de los costos directos e indirectos, de cada uno de los

tratamientos con la finalidad de analizar la relación costo/beneficio.

8.9 Análisis dela Información

Luego de registrados los datos de campo y determinada la materia

húmeda y seca en el laboratorio, se procederá a obtener las medias para las

variables; porcentaje de enraizamiento, Sobrevivencia, longitud de raíz, número

de raíces/planta, peso húmedo y seco de raíces, se normalizarán los datos

mediante la transformación arcoseno √ ; Posteriormente a ello se realizará el

análisis de varianza (ANDEVA), para cada una de las variables respuestas, de

acuerdo al modelo matemático presentado. Y en el caso de las variables donde

no exista diferencia significativa al realizar el análisis de varianza, se realizará la

prueba de medias de Tukey al 5% de significancia para determinar el mejor

tratamiento.

8.10 Presupuesto Parcial

Se determinarán los Costos que Varían para cada tratamiento y con los

respectivos resultados de rendimiento y el precio de venta de campo se

determinará el Beneficio Bruto y el Beneficio Neto.

IX. RECURSOS

9.1. Recursos Humanos

Para el siguiente estudio se necesitara de asesoría técnica con lo que se

cuenta con el asesor, y los Ingenieros de Centro Universitario del Norte.

Se contara con el estudiante que llevara a cabo la práctica.

9.2. Recursos Físicos

Instalaciones y Equipo de Laboratorio del Centro Universitario del Norte.

Reguladores de Crecimiento

El terreno para la construcción de un invernadero.

Herramientas y Equipo Agronómicas.

Vehículo.

Cámara Fotográfica

9.3. Recursos Económicos

Los esquejes serán brindados por la Cooperativa Agrícola Integral

Chirrepeco, R.L.. y el estudio será financiado por el estudiante, y adquirirá lo

necesario para poder ejecutar el proyecto y obtener los resultados que se

esperan de la investigación.

X. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES

TIEMPO DE EJECUCIÓN 4 CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES DE MARZO A JUNIO

Mes 1 Mes 2 Mes 3 Mes 4 5 Mes

SEMANA SEMANA SEMANA SEMANA SEMANA

ACTIVIDAD 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4

Medición de Terreno

Construcción Invernadero

Preparación de Camas Enraizadoras

Elaboración del sustrato

Obtención de las Estacas

Aplicación del Regulador de Crecimiento

Siembra de Estacas

Limpias, Riegos, Monitoreo

Control Fitosanitario

Toma de datos

XI. BIBLIOGRAFIA

Camelia sinensis-Wikipedia, la enciclopedia libre (en línea). Consulado el 13 de Febrero de 2011. Disponible en: http://es.wikipedia.org/wiki/Camellia_sinensis Cruz, JR. de la. 1976. Clasificación de zonas de vida de Guatemala, basada en el sistema de Holdridge. Guatemala. INAFOR. 42 p. Diccionario forestal Escrito por S. E. C. F., Sociedad Española de Ciencias Forestales (en línea). Consultado el 18 de Febrero del 2011. Disponible en: http://books.google.com.gt/books?id=Cy-Frn9 k6QC&pg=PA14&dq=Ácido+Indolbutírico&hl=es&ei=MBdPTKWnKsP88 Aat7qzlDQ&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=2&ved=0CCsQ6AEwATgU#v=onpage&q&f=false Efecto del acidoindolbutirico y el ambiente de propagación en la multiplicación de cinco especies medicinales. (en línea). Consultado el 18 de Febrero del 2011. disponible en: http://bibagr.ucla.edu.ve/db/bvetucla/edocs/tesis_pdf/sivira_silvia.pdf EFECTO DEL ÁCIDO INDOLBUTÍRICO Y TIPO DE ESTAQUILLA EN EL ENRAIZAMIENTO DE SACHA INCHI (Plukenetia volubilis L.) (En línea). Consultado el 02 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.mag.go.cr/rev_agr/v34n02_259.pdf Enraizar estacas difíciles. (en línea). Consultado el 17 de Febrero del 2011. Disponible en: http://www.sabelotodo.org/hagalousted/enraizarestacas.html Evaluación del proceso de multiplicación asexual de Estacas de Aliso (alnus acuminata), utilizando cuatro sustratos y tres hormonas en el Laguacoto I, Provincia Bolívar. (En línea). Consultado el 24 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.biblioteca.ueb.edu.ec/handle/15001/190 Manuel de Jesús Piox Mendoza. Diagnostico de la Producción de Té (Thea sinensis L.) en el departamento de Alta Verapaz y propuesta para su desarrollo. (Tesis Ing. Agr. Guatemala, URL/Facultad de Ciencias Agrícolas y Ambientales). 1996. 64 Nosti Nava, Jaime. CACAO, CAFÉ y TÉ. Barcelona, España: Salvat, 1963.

Ochse, J.J.; Soule JR, M.J.; Dijkman, M.J.; Wlehlburg, C. Cultivo y mejoramiento de plantas tropicales y subtropicales , México: Editorial Limusa, 1974.

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http://www.mag.go.cr/rev_agr/v34n02_259.pdf

http://www.sabelotodo.org/hagalousted/enraizarestacas.html

Propagación vegetativa mediante esquejes de Taique. (Desfontainia spinosa, (R. et. Pav.)) y Tepa (Laureliopsis philippiana ((Looser) Schodde). (En línea). Consultado el 23 de Febrero de 2011. Disponible en: http://cybertesis.uach.cl/tesis/uach/2007/fifd352p/doc/fifd352p.pdf RESPUESTA DE ESTACAS DE PROTEA (Leucadendron sp.) var. Safari sunset A LA APLICACIÓN DE TRES ENRAIZADORES A TRES DOSIS. CAYAMBE, PICHINCHA. (En línea). Consultado el 23 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.uce.edu.ec/upload/20090209105954.pdf Ronaldo Corado Montepeque. Evaluación de tres niveles de Acido Indolbutirico en tres tipos de esquejes de dos especies de Bambú, en San Miguel Panan, Suchitepequez. (Tesis Ing. Agr. Guatemala. USAC/Facultad de Agronomía). 1991. 41 Té negro – Guía de Suplementos (en línea). Consultado el 13 de Febrero de 2011. Disponible en: http://guiadesuplementos.org/tenegro.htm Métodos de propagación de Camelia. - Dialnet (en línea). Consultado el 16 de Febrero de 2011. Disponible en: http://www.mapa.es/ministerio/pags/biblioteca/revistas/pdf_Hort/Hort_1989_45_17_27.pdf

Davies, Peter J. Plant Hormone, Phisiology, Biochemistry and Molecular Biology. Holanda: Kluwer Academic Publishers, 1995.

Rojas Garcidueñas M.R., Ramirez Homero. Control Hormonal del Desarrollo de las plantas. México: Editorial Limusa, 1993.

Rojas Garcidueñas, Manuel. Fisiología Vegetal Aplicada. México: Editorial Libros McGRA-HILL. 1979.

Salisbury, Frank B., Ross Cleon W. Fisiología Vegetal. México: Grupo Editorial Iberoamérica S.A. de C.V. 1994.

Bieto, Azcon J., Talon M., Fisiologia y Bioquimica Vegetal. España: Editorial Libros McGRA-HILL. 1993.

http://www.uce.edu.ec/upload/20090209105954.pdf

http://guiadesuplementos.org/tenegro.htm

http://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=2600916

XII. ANEXO

DISTRIBUCIÓN ESPACIAL

3.5 m

2.5m 4 m

12 m

REPETICIÓN 1

T F.O. TIEMPO 30 DÍAS.

TIEMPO 60 DÍAS.

TIEMPO 90 DÍAS.

F.O.

F.O. X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X

17 X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X




















T = Tratamiento F.O.= Factor Orilla.

REPETICIÓN 2


TIEMPO 60 DÍAS.

TIEMPO 90 DÍAS.

F.O.























REPETICIÓN 3


TIEMPO 60 DÍAS.

TIEMPO 90 DÍAS.

F.O.























enraizamiento de esquejes de té

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