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Práctica No. 3: Prueba de alcaloides en Hygrophyla tyttha

Daniel Felipe Victoria Muñoz 125355, Aida Johanna Rivera Hurtado 125336

Fitoquímica y Farmacognosia, Departamento de Farmacia, Facultad de CienciasUniversidad Nacional de Colombia

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Objetivo general

Determinar la presencia de alcaloides en Hygrophyla tyttha

Objetivos específicos

Comparar los métodos de identificación de alcaloides. Determinar en las semillas de Malus domestica la presencia de glicósidos

cianogenicos.

Marco teórico

No existe una definición exacta para los alcaloides, pero se ha llego al consenso de que

son compuestos orgánicos de origen natural, nitrogenado, encontrándose generalmente

intraciclico, derivados de los aminoácidos, de carácter más o menos básico, de

distribución restringida, con propiedades farmacológicas importantes a dosis bajas que

responden a reacciones comunes de precipitación1.

De acuerdo a las características de esta definición, algunos autores han divido a los

alcaloides en cuatro clases:

1. Alcaloides Verdaderos: Cumplen estrictamente con las características de la

definición de alcaloides: son formados de aminoácidos, tienen siempre un

nitrógeno intraciclico, son de carácter básico y existen en la naturaleza

normalmente en estado de sal.

2. Protoalcaloides: Son aminas simples con nitrógeno extraciclico, de carácter

básico y son pero son productos del metabolismo de los aminoácidos.

3. Pseudoalcaloides: Presentan algunas de las características de la definición de

alcaloide, pero son derivados de aminoácidos.

4. Alacaloides Imperfectos: Son derivados de bases puricas, no precipitan con los

reactivos específicos para alcaloides.

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No son alcaloides aminoácidos, las betalainas, los péptidos, los aminoaucares, las

vitaminas nitrogenadas, porfirinas, algunas bases como la tiamina ampliamente distribuida

en los seres vivos y los alkil aminas de bajo peso molecular, en la siguiente tabla se

muestra la ruta sintética de las clases de alcaloides:

Fig 1. Ruta sintética de los alcaloides1

La función de los alcaloides en las plantas no es aun clara, existen algunas sugerencias

sobre el papel que poseen estos compuestos en las sustancias vegetales como:

Desecho o almacenamiento del nitrógeno sobrante en la planta Sirven como transporte del nitrógeno no metabolizado dentro de la planta Cumplen funciones de protección de la planta, por el mal sabor que poseen estos Reguladores del crecimiento en la planta

Se ha demostrado que la perdida de los alcaloides no impide el desarrollo de la planta, lo

cual sugiere que los alcaloides no son esenciales para la vida de la planta, sin embargo

estos deben participar en secuencias metabólicas y no son solamente producto de

desecho del metabolismo.

La propiedades fisicoquímicas varían dependiendo del alcaloide de que se esté hablando,

las masas de estos pueden varían entre 100 y 900 (coniína C8H17N=127, vincristina

C46H56N4O10=824), la mayoría son incoloros a excepción de los altamente conjugados

como la berberina (amarillo), la sanguinarina (rojo), la urabaina (verde) y las oxoaporfinas

que van de amarillo a rojo, son normalmente solidos a temperatura ambiente, solo las

bases no oxigenadas como la o la coniína, la nicotina y la esparteina que son líquidas2.

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Las técnicas de reconocimiento están basadas en la capacidad que tienen los alcaloides

en estado de sal, que pueden ser fácilmente precipitados con reactivos de yodo, metales

pesados como el bismuto, mercurio, tungsteno, etc., los principales reactivos de

precipitación se describen a continuación3:

REACTIVO COMPOSCION COLOR DE PRECIPITADO

Mayer HgCl2 + KI Crema

Hager C6H3N3O7 (acido pícrico) Amarillo

Valser HgI2 + KI Crema

Ácido Tanico C76H52O46 Amarillo

Bouchardat I2 + KI Rojo Pardo

Dragendorff Bi(NO3) + HNO3 + KI Anaranjado

Reineckato de amonio NH4[Cr(NH3)2(SCN)4].H2O Crema o Blanco

Tabla 1: reactivos de precipitación3

Los reactivos de precipitación utilizados en esta práctica fueron Dragendorff, Mayer,

Valser, Reineckato de amonio, los reactivos yodados (Dragendorff, Mayer, Valser)

precipitan a los alcaloides como poliyodatos complejos, mientras que los reactivos

organonitrados (Reineckato de amonio) forman precipitados cristalinos que se

descomponen por alcalisis. Su preparación se describe a continucacion3

Reactivo de Dragendorff: se prepara mezclando 8g de nitrato de bismuto

pentahidratado en 20 ml de acido nítrico al 30% con una solución de 27.2g de

yoduro de potasio en 50ml de agua, se deja reposar durante 24 h, se decanta y se

afora a 100ml.

Reactivo de Mayer: se prepara mezclando 1.3g de bicloruro de mercurio en 60ml

de agua y 5g de yoduro de potasio, luego se afora a 100ml.

Reactivo de Valser: se prepara mezclando 50ml de una solución al 10% de

yoduro de potasio a la que se le añade 10g de yoduro de mercurio, luego se afora

a 100ml

Reineckato de Amonio: una solución acuosa al 4% de reineckato de amonio se

acidula ligeramente con HCl y se trata con 0.1% p/v de clorhidrato de

hidroxilamina.

Es muy común utilizar también cromatografías en capa delgada, para realizar la

identificación de los alcaloides, en estas también se utilizan los reactivos de precipitación,

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principalmente el reactivo de Dragendorff o uno organonitrado, ya que estos generan una

coloración que nos permite indicar la presencia de cualquiera estos.

En la Brugmansia spp podemos identificar alcaloides de tipo tropanico como la

hiocsiamina, atropina, apoescopolamina y 6β hidroxi 3α tigloiloxitropano4, estos alcaloides

se encuentran principalmente en las flores y poseen las mismas propiedades

farmacológicas, aunque generalmente la hiosciamina es entre 10 y 50 veces más activa

que la atropina, pero esta es mucho más estable; sus efectos están dados principalmente

en el sistema nervioso, tanto en el central como en el autónomo, generando síntomas

como: midriasis, una aceleración a nivel del corazón, vasocontriccion de los vasos

capilares, relajamiento del peristaltismo y una acción espasmolitica neurotopica, todo esto

debido a su acción antagonista sobre la acetilcolina.

Los glucósidos cianogénicos son cianohidrinas unidas a un azúcar cuya hidrólisis

enzimática libera cianuro; este actúa inhibiendo al citocromo oxidasa, enzima de la

cadena respiratoria, que impide la respiración celular, ellos se encuentran ampliamente

distribuidos en los vegetales, pero también los podemos encontrar en hongos, bacterias y

animales, en plantas se encuentran los glucósidos cianogénicos en la raíz de mandioca

principalmente; aunque también en semillas de Malus domestica (manzana), almendras,

duraznos, cerezas, ciruelas, etc., pero en concentraciones muy bajas5

La prueba de identificación más utilizada para los glucósidos cianogenicos es la reacción

de Guinard (para ácido cianhídrico), la cual consiste en que el HCN gaseoso se encuentre

con una tira de papel absorbente impregnada con ácido pícrico y carbonato de sodio, si se

llegase a presentar un viraje desde el color amarillo original a un color rojo ladrillo

podemos indicar la presencia de los glucósidos, entre más fuerte sea el color rojo ladrillo

más cantidad de ácido cianhídrico liberado por lo tanto hay una mayor cantidad de

glucósidos cianogenicos6.

Resultados

En las tablas 2 y 3, se observa las pruebas de tubo, que se realizaron con los reactivos de

Dragendorff, Valser, Meyer y Reinekato de sodio a los extractos de Hygrophila Tytta y

Brugmansia spp. Cada imagen tiene dos tubos de ensayo a la izquierda e extracto sin

ninguna prueba. Con esta imagen se realiza la comparación entre antes de la prueba y

después de la misma.

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ReactivoPruebas de tubo en

comparacion con patronResultado

DragendorffNo precipitado

NEGATIVO

ValserNo precipitado

NEGATIVO

MeyerNo precipitado

NEGATIVO

Reinekato de sodioNo precipitado

NEGATIVO

Tabla 2: Pruebas de tubo y resultado del precipitado del extracto de Brugmansia spp

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ReactivoPruebas de tubo en

comparacion con patronResultado

DragendorffNo precipitado

NEGATIVO

ValserNo precipitado

NEGATIVO

MeyerNo precipitado

NEGATIVO

Reinekato de sodioNo precipitado

NEGATIVO

Tabla 3: Pruebas de tubo y resultado del precipitado del extracto de Hygrophila Tytta.

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Tabla 4 se observa imágenes de la CCD una revelada con reactivo de dragendorff y otra

vista a luz UV, con el reactivo de dragendorff se evidencia la presencia de alcaloides es la

Brugmansia spp.

Revelado Imagen de Cromatografía de capa delgada

Luz UV 365nm

Reactivo de dragendorff

Tabla 4: Cromatografía de capa delgada de los extractos de Hygrophila Tytta, Brugmansia spp y Banisteriopsis Caapi como patrón. La capa es revelada con luz UV y reactivo de dragendorff.

En la figura 2 se observa papel de ácido pícrico con viraje naranja, lo cual evidencia la presencia de glicósidos cianogenicos en las semillas de Malus domestica (manzana).

Fig 2. Observación de ácido pícrico en presencia de glicósidos cianogenicos de las semillas de Malus domestica (manzana).

Brugmansia spp

Hygrophila Tytta

Banisteriopsis Caapi (yage)

Brugmansia spp

Hygrophila Tytta

Banisteriopsis Caapi (yage)

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Discusión de resultados

En las pruebas de tubo para identificación de alcaloides que utilizan los reactivos de

Dragendorff, Mayer, Valser y Reineckato de amonio no se genero el precipitado en el

extracto de Brugmansia spp; en el caso del reineckato de amonio es esperado que no de

un precipitado ya que este reactivo sirve para la identificación de nitrógenos cuaternarios

o N-oxidos5, y según Molina e.t en la Brugmansia spp encontramos alcaloides derivados

del tropano, los que están caracterizados por tener el nitrógeno metilado lo que impide la

formación de un N-oxido y se dificulta su cuaternizacion por el impedimento estérico.

En la CCD revelada con reactivo de Dragendorff se observa manchas naranjas en la

muestra patrón Banisteriopsis Caapi (yage) y en el extracto de Brugmansia spp lo que

demuestra la presencia de alcaloides. Contrastado con las pruebas de tubo, que dieron un

resultado negativo para alcaloides. Esta diferencia entre los métodos de identificación

puede ser explicada por la siguiente hipótesis, en al cual se plantea que los reactivos

utilizados en la práctica pudieron estar alterados o contaminados, ya que son de uso

común por todos los integrantes del laboratorio.

Se observa para Hygrophyla tyttha en la CCD la ausencia de alcaloides, lo que es

confirmado con las pruebas tubo, aunque en la CCD revelada a la luz UV de longitud de

365 nm, se identifica una mancha de color rojo (Tabla 4) la cual se cree que es un

compuesto cromóforo el cual no necesariamente es un alcaloide ya que las pruebas

anteriores dieron negativas.

Los RFs obtenidos en la CCD revelada con reactivo de Dragendorff son diferentes para

los extractos de Brugmansia spp y de Banisteriopsis Caapi, aunque las dos muestran

manchas que nos indican la presencia de alcaloides, esta diferencia de RFs es generada

a que no son los mismos tipos de alcaloides.

El viraje de un color amarillo inicial a un color naranja en la tira de papel absorvente con

ácido pícrico, después de 24 horas, nos indica la presencia de glucósidos cianogenicos,

aunque por ser de color naranja no existe una gran cantidad de estos glucósidos en las

semillas de Malus doméstica, estos resultados tienen correlación con los resultado

mostrados en la literatura6.

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Conclusiones

En Hygrophyla tyttha se evidencio la ausencia de alcaloides, estos fue

confirmado por las diferentes pruebas de tubo y por la CCD revelada con

Dragendorff y luz UV

El método de identificación de CCD es menos susceptible a errores por parte

del experimentador, aunque las pruebas de tubo resultan ser mas útiles a la

hora de identificar la estructura de un alcaloide, es importante tener cuidado en

la pureza de los reactivos requeridos.

En Malus doméstica se evidencio la presencia de glucósidos cianogenicos, en

bajas concentraciones, en concordancia con la reacción de Guinard.

Bibliografía

1. Arango G., alcaloides y compuestos nitrogenados, prácticas de laboratorio de

farmacognosia, Universidad de Antioquia, Facultad de Química Farmacéutica.

2008, pp.1-8.

2. Universidad Nacional de la Patagonia San Juan Bosco. Facultad de ciencias

naturales. Departamento de farmacia. Cátedra de farmacognosia. Libro de trabajo

practico N°8 alcaloides. pp. 110-115

3. Marcanno D., Hasegawa M.; Fitoquimica Organica, 2ª ediccion, Editorial Torinio,

Caracas, 2002, pp. 384-385

4. Molina Y., Estudio etnobotánico y etnofarmacológico de plantas medicinales de

Tambopata, Madre de Dios, Perú, journal of medecine, 1995.

5. Valle P., Florentino B., Toxicología de Alimentos, Instituto Nacional de Salud

Pública, Mexico, D.F.,2000, pp 73-75

6. Cuello J., Didáctica de la Genetica, 1ª edición, publicacions edicions universitat de

Barcelona, Barcelona, 1983, pp 150-151


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