diagnóstico de laboratorio de la infección por especies
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National Center for Emerging and Zoonotic Infectious Diseases
Diagnóstico de laboratorio de la infección por especies del género Candida:
convencional y nuevas tecnologías
Taller Teórico-Práctico “Fortalecimiento de la Vigilancia de la Resistencia a los Antimicrobianos en Mesoamérica y el Caribe de habla latina”
San José, Costa Rica Julio 15 – 18, 2019
Diego H. Caceres BSc, MScCDC, Mycotic Diseases Branch
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Análisis microbiológico:
Bacterias y hongos son microbios,
pero, no son lo mismo
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Micosis oportunistas con distribución mundial, ya que sus agentes causales son hongos ambientales o hacen parte de la microbiota humana.
Géneros:CandidaAspergillus
CryptococcusPneumocistisMucolaresFusariumPenicillum
Otros mohos hialinos y demateaceosemergentes
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En todas partes…
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Detalles que marcan la diferencia.Factores que afectan el desempeño analítico
Calidad de la muestra
Procesamiento de la muestra
– Pre-tratamiento
– Cultivo
– Incubación
Interpretación de los resultados
– Contaminación, infección o enfermedad activa
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Pre-tratamiento
Concentración:
– Centrifugación 3.500 rpm por 15 min
Muestras respiratorios con abundante moco pueden ser tratadas, algunas alternativas:
– N-acetil-L-cisteína y citrato de sodio
– Perlas de vidrio
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Siembra
Muestras estériles:
– 2 Sabouraud
– 1 Mycosel
– 1 Agar semilla de girasol
– 1 CHROMagar Candida
Muestras no estériles:
– 2 Mycosel
– 1 Sabouraud
– 1 Agar semilla de girasol
– 1 CHROMagar Candida
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Muestras estériles
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Muestras no estériles
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Análisis microscópico
Examen directo:• Fresco•Tinta china
Coloraciones especiales:• Wright• Giemsa• Gram• Plata metenamina
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Incubación
24°C x 6 semanas
– Mínimo lecturas semanales
37°C x 6 semanas
– Mínimo lecturas semanales
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Interpretación
Colonias puros en el sitio de siembra
Presencia de la misma colonia en múltiples medios de cultivo
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Interpretación
Ser cuidadoso al revisar cultivos procedentes de muestras no estériles
Presencia de la misma colonia en múltiples medios de cultivo
Correlacionar con microscopia
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Infección
ContaminaciónColonización
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1. Evaluar la capacidad de diagnóstico por el laboratorio
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2. Acceso a información
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3. Personal correctamente entrenado
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Diagnóstico
Histopatología Historias clínicas
Microbiología Biomarcadores Registros de farmacia
Control de calidad
Herramientas estadísticas
Laboratorio Sistemas de información
Personal entrenado
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Candida spp
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Enfermedad por especies del genero Candida
Parte de la microbiota humana
Oportunista y puede llegar a causar
infecciones:
• Superficiales
• Mucosas
• Invasoras
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Candidemia: la enfermedad del enfermo
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Candidemia
Factores de riesgo:
Diabetes e inmunosupresión
Hospitalización prolongada (UCI)
Presencia CVC
Uso de antibiótico de amplio espectro
Alimentación parenteral
Cirugía reciente
Falla renal y hemodialisis
https://www.cdc.gov/fungal/diseases/candidiasis/invasive/risk-prevention.html
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Métodos microbiológicos
Ampliamente disponibles, pero…
No es un diagnóstico rápido• Aislamiento • Identificación
Sensibilidad variable (hemocultivos 50%)• Fase pre-analítica• Fase analítica• Fase post-analítica
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Métodos microbiológicos convencionales
=ó
Microscopía Cultivos¿?
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Métodos microbiológicos convencionales: Medios cromogénicos
Verde: C. albicans/C. dubliniensis
Azul: C. Tropicalis
Crema a purpura: C. parasilosis, C. glabrata, C. krusei, C. haemulonii, C. auris, C. rugose, etc…
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Métodos microbiológicos fenotípicos: Asimilación de azucares
• Identificación basada en metabolismo de azulares
•Métodos ampliamente disponible
•Rápidos, económicos y con buenaconcordancia
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Sistemas automatizados
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Diagnóstico molecular
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Comercial (RUO) C. albicans/C. glabrata PNA FISH ® y Yeast Traffic Light™ PNA FISH®
hibridización in situ, para la identificación de Candidadirectamente de hemocultivos.
C. albicans y/o C. parapsilosis
C. tropicalis
C. glabrata y/o C. krusei
http://www.advandx.com/products/pna-fish/candida/
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MALDI-TOF: desorción/ionización láser asistida por matriz
Microflex® (Bruker)
VITEK MS bioMérieux
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Comercial (FDA) BioFire FilmArray®
Método totalmente automatizado de PCR en tiempo real. Puede diagnosticar
hasta 83 patógenos.
Panel de hemocultivos: C. albicans, C. glabrata, C. krusei, C. tropicalis y C.
parapsilosis
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Comercial (FDA) T2MR Candida Panel
PCR que se combina con resonancia magnética. Detecta 5 especies de Candidaen muestras de sangre total.
• 91% sensibilidad, 99% especificidad.
• 4.3 horas para resultados.
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Comercial (CE-IVD)LightCycler® SeptiFast Test MGRADE
PCR tiempo real a partir sangre total, para la identificación de 6 especies de hongos:
Candida albicans
Candida tropicalis
Candida parapsilosis
Candida krusei
Candida glabrata
Aspergillus fumigatus
Amplificación de un región multicopia
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Ensayo colorimétrico basado en zimógenos de proteasas
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Ensayo colorimétrico basado en zimógenos de proteasas
Prueba colorimétrica basada en zimógenos de proteasas para la detección cualitativa de (1→3)-β-D-glucano en el suero.
Limulus polyphemusCangrejo de herradura
![Page 36: Diagnóstico de laboratorio de la infección por especies](https://reader035.vdocuments.mx/reader035/viewer/2022070723/62c538a6b409f730a34251f1/html5/thumbnails/36.jpg)
Ensayo colorimétrico basado en zimógenos de proteasas (1→3)-β-D-glucano activa el factor G El factor G activado, activa la coagulante, la cual divide la
para-nitroanilida (pNA) del sustrato de péptido cromógeno
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Fungitell®
Alto valor predictivo negativo
Detección de hongos con presencia
de (1→3)-β-D-glucano
– No mucorales y Cryptococcus spp
Alto riesgo de contaminación
exógena
Costoso
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¿Porque debemos se cuidadosos con las especies raras de microorganismos?
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Candida auris:“El hongo que se cree bacteria”
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C. auris: primer reporte publicado, 2009 (Japón)
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Global emergence of C. auris
2009 2010 2011 2012 2013 2014 2015 2016 2017
Japan
South Korea
India
KenyaKuwait
South Africa
U.K.Israel
PakistanAustralia
Venezuela
USASpain
PanamaColombia
First isolate identifiedauris as “ear”
Oldest isolate identified (1996)
Chowdhary et al., 2017
ChinaCanadaNorway
Germany
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South Americanclade
African clade
South Asianclade
East Asianclade
C. auris ha emergido de forma simultanea, pero, independiente
Lockhart, S., et al. Clinical Infectious Dis, 2016, Oct 20
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C. auris representa nuevos retos
1. Identificación errónea
Principalmente como C. haemulonii
2. Resistencia a antifúngicos
>90% FCZ, 35% AmpB
>40% MDR
3. Transmisión en ambientes hospitalarios
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1. Identificación errónea
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Identificación errónea
Se confunde por otras especias con métodos fenotípicos (API, Microscan, VITEK-2 versionas anteriores 8.01)
Las más comunes son: C. haemulonii, Rhodotorula glutinis, C. albicans, Candida spp.
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¿Como se identifica correctamente C. auris?
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MALDI-TOF: desorción/ionización láser asistida por matriz
Microflex® (Bruker)
VITEK MS bioMérieux
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Identificación molecular
Dos PCRs Tiempo real:
1. Específica para C. auris.2. Para especies del complejo C. haemulonii.
Validación in-vitro; 100% concordancia con la secuenciación de cultivos puros.
Pendiente validación en muestras clínicas y ambientales.
Kordalewska M, et al. J Clin Microbiol. 2017 Aug;55(8):2445-2452.
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Identificación molecular
Secuencias blanco universales: gen que codifica el rRNA. Incluye 4 genes; 18S
(subunidad pequeña), 5.8S y 28S (subunidad larga) y 5S. Las regiones ITS y
D1/D2 (28S), son las regiones filogenéticamente mas variables (útiles para
identificar especie).
Interpretative criteria for identification of bacteria and fungi by DNA target sequencing; aproved guidelines. CLSI MM18A, 2008
Lockhart, S., et al. Clinical Infectious Dis, 2016, Oct 20
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Identificación molecular
Interpretative criteria for identification of bacteria and fungi by DNA target sequencing; aproved guidelines. CLSI MM18A, 2008
Lockhart, S., et al. Clinical Infectious Dis, 2016, Oct 20
Análisis del genoma completo (WGS):
• Muy diferentes entre regiones geográficas (>40K-400K SNPs)
• Muy parecidos entre países de la región geográfica (<70 SNPs)
*SNPs (Single nucleotide polymorphisms)
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2. Resistencia a antifúngicos
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Resistencia a antifúngicos
FCZ >90% AnfoB ≈50% EQUI ≈7%
41% MDR 4% resistentes a todos los antifúngicos
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3. Trasmisión hospitalarios: colonización
![Page 54: Diagnóstico de laboratorio de la infección por especies](https://reader035.vdocuments.mx/reader035/viewer/2022070723/62c538a6b409f730a34251f1/html5/thumbnails/54.jpg)
Persistencia medioambiental
Candida auris puede sobrevivir al menos durante 2 semanas en superficies de plástico
RM Welsh et al J Clin Microbiol 55:2996 –3005.
![Page 55: Diagnóstico de laboratorio de la infección por especies](https://reader035.vdocuments.mx/reader035/viewer/2022070723/62c538a6b409f730a34251f1/html5/thumbnails/55.jpg)
Conclusiones
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Diagnosticando enfermedades en el siglo XXI
Utilizando tecnología de siglos anteriores…Cuando es posible
Mrs. Shirley, USA
Karen, Colombia
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Debemos se cuidadosos con las especies raras de microorganismos
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![Page 59: Diagnóstico de laboratorio de la infección por especies](https://reader035.vdocuments.mx/reader035/viewer/2022070723/62c538a6b409f730a34251f1/html5/thumbnails/59.jpg)
Vigilancia y notificación
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Vigilar
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Trabajo en red
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Piense en hongos!!!
Fungal Disease Awareness WeekSeptember 23–27, 2019
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For more information, contact CDC1-800-CDC-INFO (232-4636)TTY: 1-888-232-6348 www.cdc.gov
The findings and conclusions in this report are those of the authors and do not necessarily represent the official position of the Centers for Disease Control and Prevention.
NO hay áreas libres de micosis...
Pero, si hay áreas libres de micólogos.
Diego H. Caceres: [email protected]