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La mayoría de los siguientes aparatos, que puede llevar una sola persona, pueden utilizarse con éxito en cualquier tipo de hábitat.

Lupa de bolsillo. Con un aumento de 8 a 10 x. Reconocimiento e identificación de animales pequeños o estructuras morfológicas de estos.

Pipeta con perilla. Con boca estrecha. Para el trasvase de organismos acuáticos pequeños a recipientes adecuados.

Pinzas. Para la captura de organismos de tamaño mediano y cuerpo duro.

Pincel. Para la captura de organismos pequeños y cuerpo blando.

Raspador (o espátula). De uso universal, empleada para raspar, arrancar plantas, extraer organismos adheridos en sustratos duros, excavar, etc.

Aspirador. Para recoger y transportar pequeños insectos y arácnidos. Es de fácil construcción .

Los organismos que viven en las aguas marinas se dividen de acuerdo a sus hábitos y modos de vida.

organismos

plancton

necton

bentos

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Corresponde a la palabra Griega “errante”. Organismos que viven en la columna de agua y nadan libremente, sus facultades natatorias no son suficientemente vigorosas como para superar el efecto de arrastre ejercido por las corrientes y mareas.

FITOPLANCTON

ZOOPLANCTON

plancton

¿COMO LOS COLECTAMOS?

Existen varios métodos dependiendo de su tamaño.

Clasificación de acuerdo a su tamaño

Femtoplancton 0,02–0,2 micras virus, bacterias

Picoplancton 0,2 – 2 micras Cianobacterias

Nanoplancton 2 – 20 micras Fitoflagelados

Microplancton 20 - 200 micras Diatomeas

Mesoplancton 0,2 – 20 mm Copépodos

Macroplancton 2 – 20 cm Medusas

Megaloplancton 20 – 200 cm 20 – 200 cm

Si los organismos que queremos colectar son muy pequeños, utilizamos botellas.

Estas se bajan abiertas desde una embarcación y se cierran a la profundidad deseada. Existen trenes de

botellas.

Redes de plancton Cuando los organismos son mas grandes se utilizan redes

¿Cómo se utilizan?

Redes tipo bongo

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La observación de los organismos se realiza comúnmente con lupa o microscopio

Son bentónicas todas las especies que viven en relación íntima con el fondo, ya sea para fijarse en él, para excavarlo, para marchar sobre su superficie o para nadar en sus vecindades sin alejarse de él.

bentos

¿Qué grupos lo integran? BACTERIAS.- Se encuentran en la capa superficial del

sustrato

PROTOZOA.- Casi todos foraminifera y radiolarios

PORIFERA.- Son casi todos bentónicos

TURBELLARIA.- Dentro de los platelmintos, sistema litoral

NEMATODA.- Frecuentes en sistemas litorales y poarásitos

MOLLUSCA.- Numerosos representantes en el bentos

ARTROPODA.- Crustáceos (isópoda, amphipoda, decápoda)

¿Cómo realizamos su colecta? La metodología utilizada si es poca profundidad, la observación directa es la mas eficaz.

Si la muestra se quiere obtener de un sustrato rocoso, se puede diseñar un cuadrante, y con una espátula y un raspador se colectan los organismos.

Si la muestra la queremos obtener de un sustrato blando, podemos utilizar un trineo de arrastre de fondo.

Si los organismos se encuentran enterrados en un sustrato blando lo que utilizamos es algún tipo de instrumento que penetre el mismo

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Comprende los seres marinos que nadan, poseen locomotividad suficiente para vencer el efecto de arrastre de las corrientes oceánicas.

CRUSTACEOS MOLUSCOS AVES PECES REPTILES MAMIFEROS

N e c t o n

COLECTA SEGÚN OBJETIVOS INVESTIGACIÓN

Taxonomía

Parámetros biológicos

Parámetros poblacionales

Parámetros ecológicos

Área barrida

Tiempo de captura

Volumen capturado

Especie objetivo

fauna acompañante

ARTES DE PESCA Se clasifican generalmente en 2 grandes categorías:

activas y pasivas

PASIVAS

Son el tipo más antiguo de artes de pesca. Pesca a pequeña escala y pesquerías artesanales

AGALLERAS O DE ENMALLE

fabricadas de fibras sintéticas, normalmente nylon

REDES DE ENMALLE

Trabajan pasivamente, no necesariamente tienen que capturar cardúmenes

Se comenzaron a usar comercialmente a mediados de los 70

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ESPECIES OBJETO DE PESCA

SEDALES Y ANZUELOS El principio general es atraer a los peces al anzuelo y

lograr que muerdan y/o se traguen al anzuelo para capturarlos y retenerlos.

PALANGRES

Esperan pasivamente los peces con un cebo

PALANGRES

El anzuelo, es uno de los útiles que desde hace mas tiempo fabrica el hombre

REDES DE CERCO Tejido de malla que intercepta el paso de los peces

rodeándolos por los lados y por debajo (son de superficie) Para peces que forman cardúmenes o bancos. La red se maniobra desde barco.

ACTIVAS

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REDES DE TIRO

Parte superior con boyas e inferior con plomo. Se maniobra jalando de los extremos.

REDES DE ARRASTRE Comprenden un cuerpo en forma de cono, cerrado por

un copo que se ensancha en la boca mediante alas. Pueden ser remolcadas por 1 o 2 embarcaciones. Son de fondo o media agua.

REDES DE ARRASTRE

Organismos Acuáticos en aguas continentales

Perifiton

Metafiton

Pleuston

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La colecta de insectos acuáticos se lleva a cabo principalmente en cuerpos de agua dulce, excepcionalmente en los litorales marinos.

Puede hacerse de manera directa utilizando redes acuáticas también llamadas redes de bentos.

Las llamadas algas de agua dulce, no están restringidas en todas las situaciones a este medio, sino, que se presentan en los más variados ambientes continentales: superficie de suelos húmedos, lodo, arena fina de las playas, y estuarios, sobre la corteza de los árboles, epifíticas, epizoicas, a bajas temperaturas como en la nieve y en las aguas termales soportando hasta 85°C de temperatura.

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El material necesario para la colección de las algas de aguas dulces y continentales son los siguientes:

Frascos de vidrio de 50 o 100 cc. ó más grandes, dependiendo de las muestras; de boca ancha, con tapa de rosca, de bakelita o material inoxidable. Es preferible emplear corcho.

Bolsas de polietileno de varios tamaños. En muchos casos pueden reemplazar los frascos.

Espátula para el raspado; cucharón, pinzas, una navaja o cuchillo de hoja gruesa y punta fina.

Red de fitoplancton N° 20 ó 25 Fichas de papel resistente al agua, para anotaciones que acompañan a las muestras

en la solución fijadora. Libreta de campo para las anotaciones en el mismo lugar de colección. Ácido acético glacial Glicerina pura. Solución de formol al 5% para la preservación en líquido. Solución fijadora F. A. A. (Formol, ácido acético y alcohol). Formol40%....................................... 10cc. Ácido acético glacial………………. . 5cc. Alcohol etílico 95%.............................50cc. Agua destilada……………………….35cc. Termómetro en grados centígrados. Kit de medir pH. Lupas hasta de 20 aumentos.

Para la obtención de una muestra de fondo de un ambiente de aguas tranquilas, no muy profundas, donde habitan numerosas especies microscópicas, debe usarse un cucharón común que introducido se saca con cuidado, a fin de lograr la mayor cantidad de material. Muchas algas acuáticas desarrollan sobre diferentes sustratos sumergidos: trozos de madera, roca, valvas de moluscos, ramas y raíces viejas de plantas, etc., sobre las cuales forman una capa de color y apariencia características; en estos casos, es conveniente extraer estos sustratos y efectuar un rápido examen de las partes más notorias y usando la espátula se realiza un raspado de las partes más interesantes. Igual procedimiento se efectúa en las caídas de agua, donde las algas forman costras relativamente duras, a veces presentando un aspecto mucilaginoso calcáreo.

Cuando las algas se presentan en la superficie de los suelos húmedos, lodo o en playas de arena fina cerca de las zonas de mareas, formando generalmente una película fina, se toma la capa superficial con parte del sustrato, estas porciones colocadas en los frascos son lavadas con agua, obteniéndose una concentración de algas, a veces, casi pura o una mezcla de algas y animales microscópicos.

Los especimenes acuáticos, grandes, generalmente filamentosos como Cladophora o subaéreos como Trentepohlia deben colectarse en bolsas de polietileno, así se conservan mejor por más de 24 horas.

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La fijación del material se realiza con una solución de formol al 5%, o con una solución F.A.A. (formol, ácido acético y alcohol), siendo recomendable agregar 5cc. de glicerina a cada 100 cc. de la solución fijadora para evitar la evaporación frecuente aún cuando los frascos se encuentren cerrados. Concluida la fijación los frascos se conservan convenientemente numerados, con el número de la colección general o el número particular del colector. En estas condiciones se conservan por bastante tiempo aptas para ser estudiadas en cualquier oportunidad.

Las algas conservadas en líquidos, forman parte de un herbario y en la casilla de los sobres que contiene la colección general cada género o especies está representada por una cartulina que contiene el número del colector.

Algunos autores recomiendan para las colecciones de algas azul-verdes, no dejarlas en ninguna solución, sino secarlas bien al aire libre, colocarlas en sobres de papel, los que se pegan en hojas de montaje y se guardan en el herbario. Tal procedimiento facilita el estudio posterior en vivo, porque se ha comprobado que muchas especies reviven fácilmente aún después de 15 o más años de conservación.

Si los especimenes microscópicos son interesantes y muy escasos, resulta mejor preparar montajes permanentes en solución de gelatina glicerinada:

Gelatina granulada……………. 5 gr. Fenol de cristales……………… 5 gr. Glicerina pura………………... 35 cc. Agua destilada……………….. 30 cc. o jarabe Syrup (karo).

El espécimen elegido debe ser fijado indistintamente en las soluciones indicadas, luego lavado en agua destilada y finalmente incluido en una mezcla de gelatina glicerinada previamente licuada. Después de la semisolidificación de la gelatina que incluye el espécimen sobre el portaobjetos, se limpia el exceso con una cuchilla, cubriendo el borde de la laminilla con una capa de esmalte de uñas incoloro, esto evita el ataque posterior de hongos en los ambientes húmedos. Los preparados definitivos y numerados adecuadamente se disponen en una caja portaláminas. La duración de estas muestras está en relación con el cuidado y el trato que se les prodiga.

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http://www.lasallever.edu.mx/archivos/documentos/colecta_insectos.PDF

http://www.museo.fcnym.unlp.edu.ar/uploads/docs/divulgacion_4.pdf

http://www.inbio.ac.cr/web_herbarios/web/pdf/protocolo-macroalgas.pdf

http://www.chminosil.es/chms/noticias/protocolo_muestreo_actualizado_chms_100611.pdf

http://introbiolii.fcien.edu.uy/CClase%20metodos%20de%20colecta20111004.pdf