alteraciones morfolÓgicas en cÉlulas sanguÍneas en …
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UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOCTECNIA
ALTERACIONES MORFOLÓGICAS EN CÉLULAS SANGUÍNEAS EN PERROS CON ENFERMEDADES
HEMOPARASITARIAS
TESIS DE GRADO
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN Y DESARROLLO
Trabajo de titulación presentado como requisito para la obtención del título de
MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA
AUTOR
NARANJO FRANCO ANGEL ANDRES
TUTOR
LLAGUNO LAZO GLENDA ANGELA
GUAYAQUIL – ECUADOR
2021 PORTADA
2
UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
APROBACIÓN DEL TUTOR
Yo, LLAGUNO LAZO GLENDA ANGELA, docente de la Universidad Agraria del
Ecuador, en mi calidad de Tutor, certifico que el presente trabajo de titulación:
ALTERACIONES MORFOLÓGICAS EN CÉLULAS SANGUÍNEAS EN PERROS
CON ENFERMEDADES HEMOPARASITARIAS, realizado por el estudiante
NARANJO FRANCO ANGEL ANDRES; con cédula de identidad N° 0953555901
de la carrera MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA, Unidad Académica
Guayaquil, ha sido orientado y revisado durante su ejecución; y cumple con los
requisitos técnicos exigidos por la Universidad Agraria del Ecuador; por lo tanto se
aprueba la presentación del mismo.
Atentamente, Firma del Tutor Glenda Llaguno Lazo Profesora Directora de Tesis Facultad de Medicina Veterinaria Y Zootecnia Universidad Agraria del Ecuador
3
UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
APROBACIÓN DEL TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN
Los abajo firmantes, docentes designados por el H. Consejo Directivo como
miembros del Tribunal de Sustentación, aprobamos la defensa del trabajo de
titulación: “ALTERACIONES MORFOLÓGICAS EN CÉLULAS SANGUÍNEAS EN
PERROS CON ENFERMEDADES HEMOPARASITARIAS”, realizado por el
estudiante NARANJO FRANCO ANGEL ANDRES, el mismo que cumple con los
requisitos exigidos por la Universidad Agraria del Ecuador.
Atentamente,
Dr. Emilio Navia Arcos, MSc. PRESIDENTE
Dra. Ivonne España Garcia, MSc. MVZ. Washington Yoong Kuffo EXAMINADOR PRINCIPAL EXAMINADOR PRINCIPAL
Guayaquil, 8 de junio del 2021
4
Dedicatoria
El presente trabajo está dedicado a todas las
personas que confiaron en mí, a mi madre, que nunca
me dejo rendirme en todo este largo camino y
acompañarme en todo momento.
A los docentes que nos acompañaron a lo largo de
esta hermosa carrera y que siempre estuvieron
prestos a compartirnos sus conocimientos sin dudar,
en especial a los que me alentaban a demostrar más
de lo que podía dar.
A los que me vieron empezar esta hermosa etapa
de mi vida y que ahora que la termino ya no están
conmigo, sino en un lugar mejor.
Para todos ellos está dedicada esta tesis, de alguna
forma u otra, les debo ese apoyo incondicional
brindado.
5
Agradecimiento
Agradezco a Dios por mantenerme en este mundo
cuando ya no quería estarlo y demostrar que podía
llegar lejos.
A mi amada familia, mi madre, hermana, abuelo y
tios por sus apoyos y consejos en todos estos años
de estudios.
A mi tutora de tesis Dra. Glenda Llaguno por
dedicarme tiempo para poder darle forma y realizar
este trabajo.
6
Autorización de Autoría Intelectual
Yo NARANJO FRANCO ANGEL ANDRES, en calidad de autor(a) del proyecto
realizado, sobre “ALTERACIONES MORFOLÓGICAS EN CÉLULAS
SANGUÍNEAS EN PERROS CON ENFERMEDADES HEMOPARASITARIAS”
para optar el título de MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA, por la presente
autorizo a la UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR, hacer uso de todos los
contenidos que me pertenecen o parte de los que contienen esta obra, con fines
estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me correspondan, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en
los artículos 5, 6, 8; 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y
su Reglamento.
Guayaquil, 8 de junio del 2021
NARANJO FRANCO ANGEL ANDRES
C.I. 0953555901
7
Índice general
PORTADA .............................................................................................................. 1
APROBACIÓN DEL TUTOR ................................................................................. 2
APROBACIÓN DEL TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN ........................................ 3
Dedicatoria ............................................................................................................ 4
Agradecimiento .................................................................................................... 5
Autorización de Autoría Intelectual .................................................................... 6
Índice general ....................................................................................................... 7
Índice de tabla .................................................................................................... 12
Resumen ............................................................................................................. 14
Abstract ............................................................................................................... 15
1 INTRODUCCIÓN .................................................................................... 17
1.1 Antecedentes del problema ................................................................. 17
1.2 Planteamiento y formulación del problema ........................................ 18
1.2.1 Planteamiento del problema ................................................................ 18
1.2.2 Formulación del problema ................................................................... 18
1.3 Justificación de la investigación ......................................................... 19
1.4 Delimitación de la investigación .......................................................... 19
1.5 Objetivo general .................................................................................... 19
1.6 Objetivos específicos ........................................................................... 19
1.7 Hipótesis ................................................................................................ 20
2 MARCO TEÓRICO ................................................................................. 21
2.1 Estado del arte ...................................................................................... 21
8
2.2 Alteraciones hematológicas encontradas en caballos (Equus
caballus) infectados con Babesia caballi y Theileria equi (Vega Cañizares,
2018) 21
2.3 Bases teóricas ....................................................................................... 21
2.3.1 Sangre .................................................................................................... 21
2.3.2 Composición de la sangre .................................................................... 22
2.3.3 Hemoparásito ........................................................................................ 22
2.3.4 Hemograma ........................................................................................... 22
2.3.5 Eritrocitos .............................................................................................. 23
2.3.6 Anormalidades en la forma del eritrocito ............................................ 23
2.3.6.1 Acantocitos ..................................................................................... 23
2.3.6.2 Dacriocitos ...................................................................................... 24
2.3.6.3 Células diana................................................................................... 24
2.3.6.4 Excentrocitos .................................................................................. 24
2.3.6.5 Equinocitos ..................................................................................... 24
2.3.6.6 Esferocitos ...................................................................................... 25
2.3.6.7 Esquistocitos .................................................................................. 25
2.3.6.8 Estomatocitos ................................................................................. 25
2.3.6.9 Picnocitos ....................................................................................... 26
2.3.6.10 Queratocitos ................................................................................ 26
2.3.7 Anormalidades en el tamaño del eritrocito ......................................... 26
2.3.7.1 Anisocitosis .................................................................................... 26
2.3.7.2 Macrocitosis .................................................................................... 26
2.3.7.3 Microcitosis ..................................................................................... 27
2.3.8 Anormalidades en el color del eritrocito ............................................. 27
9
2.3.8.1 Anisocromasia ................................................................................ 27
2.3.8.2 Policromasia ................................................................................... 27
2.3.8.3 Hipocromasia .................................................................................. 27
2.3.8.4 Hipercromía ..................................................................................... 28
2.3.9 Anormalidades en la distribución eritrocitaria ................................... 28
2.3.9.1 Pilas de moneda ............................................................................. 28
2.3.9.2 Aglutinación .................................................................................... 28
2.3.10 Inclusiones citoplasmáticas eritrocitarias ....................................... 29
2.3.10.1 Cuerpos de Howell – Jolly .......................................................... 29
2.3.10.2 Cuerpos de Heinz ........................................................................ 29
2.3.10.3 Punteado basófilo ....................................................................... 29
2.3.10.4 Inclusión de moquillo .................................................................. 30
2.3.11 Parásitos eritrocitarios ...................................................................... 30
2.3.11.1 Mycoplasma hemocanis ............................................................. 30
2.3.11.2 Babesia spp ................................................................................. 30
2.3.12 Leucocitos .......................................................................................... 31
2.3.13 Alteraciones leucocitarias ................................................................. 31
2.3.13.1 Cuerpos de Dohle ........................................................................ 31
2.3.13.2 Basofília citoplasmática difusa .................................................. 31
2.3.13.3 Neutrófilos hipersegmentados ................................................... 32
2.3.13.4 Neutrofilos de Pelger – Huet y Pseudo – Perlger – Huet ......... 32
2.3.13.5 Vacuolización citoplasmática ..................................................... 32
2.3.13.6 Neutrófilos gigantes .................................................................... 32
2.3.13.7 Núcleos en forma de anillo ......................................................... 33
2.3.13.8 Linfocitos reactivos..................................................................... 33
10
2.3.13.9 Linfocitos granulares .................................................................. 33
2.3.14 Parásitos intracelulares leucocitarios.............................................. 34
2.3.14.1 Ehrlichia / Anaplasma spp .......................................................... 34
2.3.14.2 Hepatozoon canis ........................................................................ 34
2.3.15 Trombocitos ....................................................................................... 34
2.3.16 Alteraciones en plaquetas ................................................................. 34
2.3.16.1 Macroplaquetas ........................................................................... 34
2.3.16.2 Plaquetas activadas .................................................................... 35
2.3.17 Parásitos intracelulares Plaquetares ............................................... 35
2.3.17.1 Anaplasma platys ........................................................................ 35
2.3.18 Otros hemoparásitos presente en la sangre ................................... 35
2.3.18.1 Dirofilaria immitis ........................................................................ 35
2.3.18.2 Trypanosoma cruzi...................................................................... 36
2.4 Marco legal ............................................................................................ 36
3 MATERIALES Y MÉTODOS .................................................................. 37
3.1 Enfoque de la investigación ................................................................. 37
3.1.1 Tipo de investigación ............................................................................ 37
3.1.2 Diseño de investigación ....................................................................... 37
3.2 Metodología ........................................................................................... 37
3.2.1 Variables ................................................................................................ 37
3.2.1.1 Variable independiente .................................................................. 39
3.2.1.2 Variable dependiente ...................................................................... 39
3.2.2 Unidad de análisis ................................................................................. 39
3.2.3 Población ............................................................................................... 39
3.2.4 Selección de muestra ........................................................................... 39
11
3.2.5 Criterios de inclusión ............................................................................ 40
3.2.6 Criterios de exclusión ........................................................................... 40
3.2.7 Recolección de datos ........................................................................... 40
3.2.7.1 Recursos ......................................................................................... 40
3.2.7.2 Métodos y técnicas ......................................................................... 40
3.2.7.3 Análisis estadístico ........................................................................ 41
4. RESULTADOS ....................................................................................... 42
4.1 Frecuencia de alteraciones en células sanguíneas en cuanto a
forma, tamaño, color y distribución. ................................................................ 43
4.1.1 Serie roja ................................................................................................ 43
4.1.1.1 Alteraciones en tamaño ................................................................. 43
4.1.1.2 Alteraciones en forma .................................................................... 43
4.1.1.3 Alteraciones en color ..................................................................... 44
4.1.1.4 Alteraciones en distribución.......................................................... 44
4.1.2 Serie Blanca ........................................................................................... 45
4.1.3 Alteraciones en plaquetas .................................................................... 46
4.2 Determinación del hematocrito en animales hemoparasitádos. ....... 46
4.3 Relación de alteraciónes morfológicas más comúnes en los
diferentes hemoparásitos. ................................................................................. 47
5 DISCUSIÓN ............................................................................................ 52
6 CONCLUSIONES ................................................................................... 54
7 RECOMENDACIONES ........................................................................... 55
8 BIBLIOGRAFÍA ...................................................................................... 56
9 ANEXOS ................................................................................................. 61
12
Índice de tabla
Tabla 1. Operacionalidad de las variables ....................................................... 37
Tabla 2.Frecuencia de alteraciones morfológicas en los registros de perros con
enfermedades hemoparasitarias. ......................................................................... 42
Tabla 3. Frecuencia de hemoparásitos en animales con alteraciones
morfológicas. ........................................................................................................ 42
Tabla 4. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
tamaño presentada en los registros. .................................................................... 43
Tabla 5. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
forma presentada ................................................................................................. 43
Tabla 6. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
cuanto a color presentado .................................................................................... 44
Tabla 7. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
distribución presentada ........................................................................................ 45
Tabla 8. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
leucocitos presentados ......................................................................................... 45
Tabla 9. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en
plaquetas presentadas ......................................................................................... 46
Tabla 10. Tendencia Central de Hematocrito ................................................... 47
Tabla 11. Relación de presencia de alteraciones en color en los diferentes
hemoparásitos ...................................................................................................... 47
13
Tabla 12. Relación de presencia de alteraciones en distribución en los diferentes
hemoparásitos ...................................................................................................... 48
Tabla 13. Relación de presencia de alteraciones en forma en los diferentes
hemoparásitos ...................................................................................................... 49
14
Resumen
Las alteraciones en células sanguíneas hoy en día son muy comunes encontrarlas
en los reportes de la mayoría de hemogramas que se realizan tanto en enfermedad
como de rutina en el paciente, en algunos casos estas alteraciones suelen pasar
desapercibidas por el médico veterinario dejando a un lado la información que estas
alteraciones nos pueden brindar. El objetivo del presente estudio fue determinar la
frecuencia de alteraciones morfológicas en células sanguíneas en perros con
enfermedades hemoparasitárias durante 6 meses del año 2020. Se realizó un
análisis de tipo descriptivo y documental en el cual se analizaron los registros de
laboratorio de pacientes a los que se le realizaron hemograma junto con estudios
de hemoparásitos; que a su vez fueron positivos a los mismos. La alteración
morfológica más común en los eritrocitos fue respecto a su color siendo hipocromía
central la alteración presentada, en los leucocitos la neutrofília tóxica se presentó
en la mayoría de pacientes con alteración en esta línea de células sanguíneas y en
las plaquetas la alteración que más se registró fueron las macro plaquetas, en
cuanto al hematocrito, este tuvo una variación en el cual casi la mitad de los
pacientes tuvieron un porcentaje bajo del mismo.
Palabras clave: Alteraciones, caninos, células, hemoparásitos, morfología.
15
Abstract
Alterations in blood cells nowadays are very common to be found in the reports of
most hemograms that are carried out both in disease and routine in the patient, in
some cases these alterations tend to go unnoticed by the veterinarian leaving aside
the information that these alterations can provide us. The objective of this study was
to determine the frequency of morphological alterations in blood cells in dogs with
haemoparasitic diseases during 6 months of the year 2020. A descriptive and
documentary analysis was carried out in which the laboratory records of patients
were analyzed. Hemogram was performed together with hemoparasite studies;
which in turn were positive to them. The most common morphological alteration in
erythrocytes was regarding their color, being central hypochromia the alteration
presented, in leukocytes, toxic neutrophilia appeared in most patients with alteration
in this line of blood cells and in platelets the alteration that was most frequently
recorded were the macro platelets, in terms of hematocrit, this had a variation in
which almost half of the patients had a low percentage of it.
Keywords: Alterations, canines, cells, hemoparasites, morphology.
16
UNIVERSIDAD AGRARIA DEL ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
APROBACIÓN DEL ABSTRACT
Yo, EVANGELISTA WASHINGTON , docente de la Universidad Agraria del
Ecuador, en mi calidad de ENGLISH TEACHER, CERTIFICO que he procedido a
la REVISIÓN DEL ABSTRACT del presente trabajo de titulación: ALTERACIONES
MORFOLOGICAS EN CELULAS SANGUINEAS EN PERROS CON
ENFERMEDADES HEMOPARASITARIAS, realizado por el estudiante NARANJO
FRANCO ANGEL ANDRES; con cédula de identidad N° 0953555901de la carrera
MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA, Unidad Académica Guayaquil, el
mismo que cumple con los requisitos técnicos exigidos por la Universidad Agraria
del Ecuador; por lo tanto se aprueba la presentación del mismo.
Atentamente, Firma del Docente de Ingles Email institucional
Guayaquil, 16 de abril del 2021
17
1 Introducción
1.1 Antecedentes del problema
En la actualidad gracias a la importancia que se le ha dado al bienestar animal
en estos últimos años y, a la crianza de los animales de compañía, en especial los
perros, ha aumentado el requerimiento de una asistencia especializada en esta
especie como la proporcionada por un médico veterinario ( Solano, k., Rivadeneira,
H., Bernardi, C., 2015).
En la mayoría de los pacientes que se presentan a consulta se necesita la ayuda
de diversos procedimientos de laboratorio clínico para un diagnóstico certero y con
ello tener un mejor enfoque del tratamiento a elegir, siendo el hemograma la
primera opción con el fin de obtener información sobre alteraciones morfológicas
de los componentes celulares de la sangre que tengan relación con diversas
enfermedades (Alcántara, 2014).
El hemograma es un examen de laboratorio en el cual se realiza el recuento de
células sanguíneas como glóbulos blancos o leucocitos, glóbulos rojos o eritrocitos,
plaquetas y el estudio morfológico de las mismas. Este análisis es de suma
importancia para poder apreciar de manera indirecta las células producidas por la
medula ósea (Campuzano Maya, 2020) .
Las alteraciones leucocitarias que mayormente comprometen el hemograma
están relacionadas a los polimorfonucleares – neutrófilos; como ejemplo, es común
ver que exista una leucocitosis junto con una neutrofilia, con sus alteraciones
morfológicas variadas (Territo M. , 2020).
Las alteraciones de la célula roja que se suele reportar en un hemograma se
pueden clasificar de acuerdo a su forma, tamaño, color y distribución, estos a su
18
vez tienen una sub-clasificación respectiva de acuerdo al hallazgo encontrado en
el estudio (Huerta Arogenes & Cela de Julian, 2019).
Los hemoparásitos producen enfermedades, las cuales son ocasionadas por
diversos agentes etiológicos, principalmente protozoos, bacterias del orden
Rickettsiales y Espiroquetas que pueden habitar tanto dentro y fuera de los glóbulos
rojos u otras células sanguíneas (Diaz, 2016).
La utilización del frotis de sangre periférica u extensión es de suma importancia
debida a la ayuda que nos ofrece al diagnóstico de enfermedades hematológicas
con solo poder hacer observación de las características morfológicas de las células
sanguíneas presentes en el frotis (Pita, 2019)
1.2 Planteamiento y formulación del problema
1.2.1 Planteamiento del problema
Hoy en día los análisis de laboratorio están tomando un lugar muy importante al
momento de poder dar un diagnóstico clínico, el médico veterinario hace uso del
hemograma y de técnicas de laboratorio para encontrar hemoparásitos en sangre
como herramienta diagnóstica, esta nos brinda información del recuento
eritrocitario, leucocitario, plaquetas y el reconocimiento del hemoparásito
responsable del cuadro clínico.
En algunos reportes de hemogramas nos brinda información sobre alteraciones
morfológicas en células sanguíneas tanta en forma, tamaño, color y predisposición,
la cual suele pasar desapercibido, el cual nos puede ayudar a encaminar un
diagnóstico certero.
1.2.2 Formulación del problema
¿Cuál es la frecuencia de las alteraciones morfológicas en células sanguíneas
en perros con enfermedades hemoparasitarias más frecuentes?
19
¿Cuál es la frecuencia de las alteraciones en cuanto a forma, tamaño, color y
distribución en las células sanguíneas?
¿Cuál es el rango del hematocrito en animales hemoparasitádos?
¿Cómo se relacionan los hemoparásitos con las alteraciones morfológicas en
las células sanguíneas?
1.3 Justificación de la investigación
Las alteraciones morfológicas en células sanguíneas que podemos presenciar
nos pueden dar pautas para patologías internas, ya sea de origen infeccioso,
inflamatorias con alto grado de toxicidad, endocrinas e incluso neoplásicas, así
como anemias regenerativas o no regenerativas (Merino, 2015). Esa información
resulta necesaria en la actualidad para una buena práctica en la clínica veterinaria.
1.4 Delimitación de la investigación
La investigación se llevó a cabo en el laboratorio clínico Unimevet, ubicado en la
Cdla. Kennedy, Calle Segunda Oeste No. 121 y Fco. Boloña, usando los resultados
de los pacientes a los que se les realizó exámenes de biometría hemática e
investigación de hemoparásitos en los meses de enero, febrero, mayo, junio, julio
y agosto del año 2020.
1.5 Objetivo general
Determinar las alteraciones morfológicas en células sanguíneas en perros con
enfermedades hemoparasitarias más frecuentes.
1.6 Objetivos específicos
Determinar frecuencia de alteraciones en células sanguíneas en cuanto a
forma, tamaño, color y distribución.
Determinar el hematocrito en animales hemoparásitados.
20
Relacionar qué alteración morfológica en las células sanguíneas es la más
común en los diferentes hemoparásitos.
1.7 Hipótesis
Las alteraciones morfológicas que podrían ser más frecuentes son las referentes
a su color, debido a las posibles anemias que causan estos hemoparásitos en sus
cuadros clínicos.
2 Marco teórico
2.1 Estado del arte
2.2 Alteraciones hematológicas encontradas en caballos (Equus caballus)
infectados con Babesia caballi y Theileria equi (Vega Cañizares, 2018)
En un estudio realizado por (Vega Cañizares, 2018), investigó las alteraciones
hematológicas que provocan los hemoparásitos Babesia Caballi y Theileria equi,
ambos agentes etiológicos de la piroplasmosis equina, para ello uso como
herramienta diagnostica el frotis sanguíneo.
Para llevar a cabo el estudio, analizó 58 muestras de sangre de caballos que se
encontraban sanos, los cuales se le realizó frotis sanguíneo para el diagnóstico de
los hemoparásitos anteriormente mencionado, tomando en cuenta también la
valoración hematológica de la serie roja y blanca.
De las muestras analizadas, solo un 19% presento formaciones intraeritrocitarias
que fueron compactibles con los hemoparásitos estudiados, de ese total de
animales positivos, un 10,3% presentó inferioridad en los valores de hematocritos
y de hemoglobina, a parte un 17,1% presentó alteraciones en la serie blanca, dando
valores inferiores al rango normal de la especie, presentando neutrofilia, y
linfocitosis reactiva (Vega Cañizares, 2018).
2.3 Bases teóricas
2.3.1 Sangre
La sangre es un líquido que se encuentra presente en los vertebrados, es
impulsado por el corazón, las cuales diversos metabolitos, enzimas, gases, etc.
usan a la misma como medio de transporte, de manera que sus alteraciones
cuando está presente una patología, nos puede ayudar a poder detectar lesiones
22
existentes o alguna patología y la facilidad de obtener la sangre hace que su
evaluación sea una herramienta diagnóstica rutinaria. (Castillo , 2013)
2.3.2 Composición de la sangre
Las células sanguíneas representan aproximadamente un 35 a 50 %, mientras
que el plasma un 50 a 65 % de la sangre. El plasma a su vez está conformado por
agua en mayor porcentaje, sustratos, minerales, enzimas, hormonas y vitaminas
(Izaguirre Avila & Micheli, Evolución del conocimiento sobre la sangre y su
movimiento. Parte II. El saber sobre su composición., 2005).
Los glóbulos rojos van a ser los encargados de transportar oxígeno y dióxido de
carbono en todo el cuerpo, las plaquetas van a ser responsables de la coagulación
de la sangre y los glóbulos blancos pertenecen al sistema inmunitario y actúan en
la respuesta inmune (Izaguirre Avila & Fernández Tresguerres, Fisiologia Humana
Capitulo 20: Propiedades de la sangre, 2010).
2.3.3 Hemoparásito
Los hemoparásitos son organismos que viven en la sangre y pueden
desarrollarse tanto dentro como fuera de las células sanguíneas, estos organismos
necesitan de un vector artrópodo para llegar a su huésped definitivo (Ortiz, 2014) .
2.3.4 Hemograma
El hemograma es una de las pruebas que más se solicita en el laboratorio clínico
y es tomada en cuenta como una herramienta diagnóstica ya que su interpretación
sirve de ayuda en la realización y seguimiento de terapias, aparte nos ofrece
evidencia de severidad de una enfermedad, pudiendo ser un buen punto para
formulación de diagnósticos diferenciales (Torrens, 2015). También el hemograma
nos brinda información tanto de los eritrocitos como de los leucocitos, determinando
algunas anormalidades en las células sanguíneas (Torrens, 2015).
23
2.3.5 Eritrocitos
De acuerdo con (Weisel JW & Litvinov RI, 2018) los glóbulos rojos son células
sanguíneas que tienen el mayor porcentaje de participación en la composición de
la sangre, su función principal es la de poder transportar oxígeno y Co2, aparte de
transportar enzimas a diferentes partes del organismo.
El recuento nos ayuda a la determinación del número de eritrocitos presentes en
el volumen de la sangre (Becker, 2016). El método que más se suele utilizar es el
recuento por medio de la cámara de Neubauer, pero este método tiene un límite
por su baja precisión, pero últimamente en la mayoría de laboratorios están usando
equipo automatizado, conocidos como los analizadores hematológicos que hacen
recuento mediante citometría, lo cual le da mayor rapidez y precisión e información
de la distribución de los eritrocitos (Wittwer, 2006).
Los eritrocitos en la mayor parte de mamíferos son de forma de discos
bicóncavos, anucleados, con una ligera palidez central, se los conoce como
discocitos y normocitos que puede ser observado de manera fácil en un extendido
de sangre coloreada, usando Guiemsa o Wrigth (Kraft, 2000) .
Para poder describir variaciones de la morfología del eritrocito se utiliza el
término poiquilocitosis, la cual se define como a las diversas alteraciones en
circulación sanguínea, estas alteraciones se pueden clasificar ya sea por forma,
tamaño, color, distribución e inclusiones (Ventimiglia, Rivas, Vildoza, & Orsilles,
2017).
2.3.6 Anormalidades en la forma del eritrocito
2.3.6.1 Acantocitos
Son eritrocitos con proyecciones de forma irregular distribuidas en forma
aleatoria. Su importancia diagnóstica nos indica que pueden observarse en
24
enfermedades de origen hepático, renales y esplénicas, así como en pacientes con
hemangiosarcomas y hemangiomas. También se puede observar en pacientes con
linfoma o coagulación intravascular diseminada “CID” (Valenciano, 2016).
2.3.6.2 Dacriocitos
Son eritrocitos que tienen forma de lagrima o de gota con extremidades
elongadas o puntiagudas. Su importancia diagnóstica es importante ya que se
asocia a menudo a mielofibrosis o aplasia medular (Muñoz & Franco , 2006).
2.3.6.3 Células diana
Son eritrocitos que tienen en medio de la palidez central un pequeño círculo de
hemoglobina, dándole la apariencia de una diana. Su importancia diagnóstica nos
indica que están presentes de forma ocasional, pero un aumento en el número de
las mismas nos puede indicar una anemia regenerativa en su mayor parte por
deficiencia de hierro, enfermedades hepáticas y de origen renal (Campuzano G. ,
2008).
2.3.6.4 Excentrocitos
Estos tipos de células la hemoglobina está localizada a un extremo de la célula,
la cual deja un área pálida sin teñir en la región opuesta. Su presencia se debe al
daño de tipo oxidativo, puede ser por consumo de ajo, cebolla, acetaminofeno,
antagonistas de la Vitamina K e incluso en diabetes mellitus (Campuzano G. ,
2008).
2.3.6.5 Equinocitos
Son eritrocitos con espículas, las mismas están separadas de manera equitativa
en toda la superficie de la membrana de la célula. Su morfología tiene variaciones,
espiculadas irregulares (Tipo I), romas separadas de manera equitativas (Tipo II) y
proyecciones puntiagudas separadas por igual (Tipo III). Su aparición puede ser
25
desde un mal secado de la placa hasta una deshidratación hiponatrémica,
enfermedad renal, picada de abeja o mordedura de serpiente y quimioterapéuticos
(Valenciano, 2016).
2.3.6.6 Esferocitos
Son células pequeñas que su medida es de dos tercios del diámetro normal de
lo que mide un eritrocito. Son de forma esférica, pero sin forma de disco, por lo que
no poseen palidez central, teniendo un color rojo intenso en comparación a los
discocitos. Su presencia moderada – alta se puede observar en cuadros de anemia
hemolítica inmunomediada ´´AHIM’’, un número reducido se puede observar en
anemia hemolítica por cuerpos de Heinz, envenenamiento e incluso
hemoparásitos, intoxicación de Zinc, microangiopatía y neoplasias (Merino, 2015).
2.3.6.7 Esquistocitos
Estos tipos de células son eritrocitos fragmentados o rotos, son de menor
tamaño que los eritrocitos normales, tiene formas irregulares y en ciertas ocasiones
son de forma triangular con proyecciones punteadas. Su aparición se debe a
enfermedades hemolíticas microangiopáticas. También se los llega a observar en
enfermedades como mielofibrosis, anemia por deficiencia de hierro, enfermedad
cardiaca y CID. Los fragmentos pueden transformarse en esferocitos, por esta
razón los esquistocitos van acompañado de los mismos (Muñoz & Franco , 2006).
2.3.6.8 Estomatocitos
Son eritrocitos maduros tanto de color y tamaño normales, pero en su centro se
encuentra una pequeña forma oval pálida. La presencia de este tipo de eritrocitos
es hereditaria en perros de raza Alaskan Malamute y en los de raza Schnauzer
miniatura y estándar. En gatos Abisinios y Somalis en anemia hemolítica recurrente
por un defecto hereditario de los eritrocitos (Willard, 2004).
26
2.3.6.9 Picnocitos
Estas células son de una apariencia contraída, tiene forma irregular y con una
coloración mucho más densa, formados por un daño oxidativo, suelen tener una
pequeña proyección de la membrana, lo que lo hace diferenciar de los esferocitos.
Su aparición nos indica un posible daño oxidativo (Valenciano, 2016).
2.3.6.10 Queratocitos
Son células maduras que va a contener pequeñas áreas circulares en la
periferia, transparentes ya sea intacta o rotas pudiendo ser singulares o simples. A
las intactas se las conoce como células de ampollas y a las que contiene zonas de
una o más proyecciones se les denomina células en casco. Su importancia se debe
a que su aparición se da en un traumatismo en los eritrocitos, enfermedades
hepáticas, neoplasias vasculares, anemia por deficiencia de hierro y ‘’CID’’
(Campuzano G. , 2008).
2.3.7 Anormalidades en el tamaño del eritrocito
2.3.7.1 Anisocitosis
Se le conoce con ese término a los diferentes tamaños en la célula eritrocitaria,
pueden estar presentes en animales sanos y puede variar hasta un tercio de su
tamaño. Su reporte nos puede indicar un posible cuadro de ‘’AHIM’’ y en ocasiones
anemias regenerativas (Willard, 2004).
2.3.7.2 Macrocitosis
Este término se refiere a los eritrocitos que tienen un tamaño mayor a los
eritrocitos normales. Su reporte se ve en cuadros de anemia regenerativas, junto
con reticulocitosis, puede ser anormal si se ve en cuadros de leucemia felina e
incluso hereditaria como en el caso de la macrocitosis de los caniches. También se
27
ha visto en casos de deficiencia de vitamina B12 y en Parasitismo por Giardia
lambia y en tenias (Willard, 2004).
2.3.7.3 Microcitosis
La microcitosis es un término que refiere a los eritrocitos con un tamaño menor
a los eritrocitos normales. Pueden tener origen congénito, hereditario y adquirido.
Se puede observar de manera congénita en casos como la diseritropoyesis de los
Springer Spaniel Ingles, de manera hereditaria en microcitosis de los perros de raza
Akita y Shiba Inu, de manera adquirida se puede observar en anemias por
deficiencia de hierro, alteraciones de medula ósea e incluso en enfermedades
hepáticas congénitas o adquiridas (Muñoz & Franco , 2006).
2.3.8 Anormalidades en el color del eritrocito
2.3.8.1 Anisocromasia
En este término se describe a las diferentes variaciones de hemoglobinización
en los eritrocitos, observándose células hipocrómicas y normocrómicas, puede
verse en los meses siguiente a un tratamiento exitoso para una anemia ferropénica
(Willard, 2004).
2.3.8.2 Policromasia
Se define así a la presencia de eritrocitos de color rojo azulado, en ocasiones
grisáceo, este color es debido a la combinación de la hemoglobina y ribosomas
presentes en el eritrocito, este tipo de célula se los conoce como reticulocitos. Su
reporte nos indica que existe una respuesta regenerativa, ante una anemia
hemorrágica o hemolítica, por parte de la medula ósea (Valenciano, 2016).
2.3.8.3 Hipocromasia
Estos eritrocitos se caracterizan por tener una reducción de su concentración de
hemoglobina, teniendo una palidez central muy marcada aumentando el diámetro
28
de la misma. Estas células es muy común observarlas en anemia por deficiencia
de hierro que suele estar relacionadas por pérdida de sangre leve, por hemorragia
en el tracto gastrointestinal, sangre en orina o pérdida de sangre por parásitos
externos (Willard, 2004).
2.3.8.4 Hipercromía
Se denomina así a los eritrocitos que están con un color intenso, se puede
observar en junto con los aumentos de los valores de concentración media de
hemoglobina corpuscular ‘’CHCM’’ y hemoglobina corpuscular media ‘’HCM’’, su
origen puede ser por artefactos como lipemia, presencia de cuerpos de Heinz y
hemólisis (Valenciano, 2016).
2.3.9 Anormalidades en la distribución eritrocitaria
2.3.9.1 Pilas de moneda
Se le denomina así a la agrupación de eritrocitos secundaria a la asociación
electroestática de los eritrocitos, es muy común encontrarlos en la zona gruesa del
frotis, pero no deben estar por ningún motivo en la monocapa. Su identificación se
da de manera ocasional en animales sanos, el aumento del mismo se puede ver
en perros o gatos que se encuentran debilitados o enfermos y con aumento en la
concentración de globulinas o fibrinógeno. También está relacionado con procesos
inflamatorios, aunque suele verse también en procesos no inflamatorios, como
alteraciones linfoproliferativas. Muestras que sean lipémicas pueden causar esta
alteración (Campuzano G. , 2008).
2.3.9.2 Aglutinación
Es el acúmulo de eritrocitos de forma aleatoria y desorganizada, es evidente en
la parte del cuerpo del frotis y es significativa si se observa en la monocapa. Esta
alteración ocurre por los anticuerpos de los eritrocitos, estos se unen al antígeno
29
de otro eritrocito formando estos acúmulos. Es sugestivo de ‘’AHIM’’ (Valenciano,
2016).
2.3.10 Inclusiones citoplasmáticas eritrocitarias
2.3.10.1 Cuerpos de Howell – Jolly
Son estructuras de forma esférica, homogénea y de un tamaño pequeño, tiene
color azul oscuro, localizándose dentro del citoplasma del glóbulo rojo. Estos
cuerpos resultan de una incompleta expulsión del núcleo del eritroblasto al final del
proceso de eritropoyesis, que en condiciones normales es removido por el bazo.
Pueden reportarse en anemias regenerativas y de manera principal en hipofunción
del bazo, pero también puede verse en tratamientos de quimioterapia, radiación,
glucocorticoides y toxinas eritroides (Pita, 2019).
2.3.10.2 Cuerpos de Heinz
Se manifiestan como proyecciones agregadas, pueden ser grandes o pequeña,
son el resultado de hemoglobina oxidada y que se precipita en la superficie de las
membranas eritrocitarias. Esta alteración aparece en daños oxidativos, resultando
de la desnaturalización y precipitación de la hemoglobina, en gatos es normal, pero
en un bajo número, no más del 5 % del total de los eritrocitos, esto debido a que
los gatos no pueden eliminar estos cuerpos por el bazo que no es sinusoidal. En
perros es anormal encontrar estos cuerpos, unas de las causas de su
descubrimiento es la anemia hemolítica por agentes oxidantes (Weisel JW &
Litvinov RI, 2018).
2.3.10.3 Punteado basófilo
Aparecen cuando los ribosomas se precipitan durante el secado del frotis, de
esta forma se observa un punteado de color negro – azul, que se distribuye dentro
30
el glóbulo rojo. Se pueden observar en anemias regenerativas tanto en perros como
en gatos, también en intoxicaciones por plomo (Valenciano, 2016).
2.3.10.4 Inclusión de moquillo
Se pueden ver como agregados redondeados u ovales de forma irregular
teniendo un color rojo azulado. Pueden observarse en la mayoría de las células
sanguíneas, es muy fácil observarla en el frotis teñido con Diff - Quick donde se las
puede ver con un eosinofìlico (Romero & Guzman, 2014).
2.3.11 Parásitos eritrocitarios
2.3.11.1 Mycoplasma hemocanis
Es un microorganismo gram positivos que infecta al perro y se los puede localizar
en la superficie del eritrocito, formando cadenas de puntos pequeños al observarlos
en el frotis sanguíneo. Comúnmente se presenta en perros que han sido
esplenectomizados, enfermedades esplénicas o inmunosupresión (Willard, 2004).
Últimamente se han descriptos casos concurrentes a otras infecciones
especialmente las transmitidas con vectores tales como Erlichia y Babesia.
También ocurrió haemoplasmosis en perros que recibían tratamientos
inmunosupresores (Perez T. , 2017).
2.3.11.2 Babesia spp
Es un parasito intraeritrocitario protozoario, puede observarse formas grandes
como Babesia canis o su segunda forma, pequeña, como Babesia gibsoni, Babesia
conradae y Babesia microti. En las diferentes formas estos microorganismos van a
teñir de azul claro y su núcleo se teñirá de rojo – morado (Florez Muñoz, Bolás
Fernández, Pinilla León, 2018).
31
2.3.12 Leucocitos
Son células sanguíneas que pertenecen a la serie blanca nucleada de la sangre,
donde van a incluir los neutrófilos, monocitos, eosinófilos, basófilos y linfocitos,
estas células participan en la defensa el organismo, cada uno tiene una morfología
y función (Territo M. , 2020).
El recuento de los leucocitos se realiza en la cámara de Neubauer, ayudando a
la determinación del número aproximado de leucocitos presente en un determinado
volumen de sangre, este proceso se realiza de manera más rápido en contadores
automáticos que en la actualidad se encuentran disponibles (Wittwer, 2006).
Se denomina polimorfonucleares a los neutrófilos, basófilos y eosinófilos por lo
que su núcleo es segmentado, también suelen llamarse granulocitos por la
presencia de gránulos en el citoplasma. Los monocitos son más grandes y con un
núcleo redondeado y un citoplasma de color gris, los linfocitos poseen un núcleo
redondeado y un citoplasma escaso (Ecija Perez & Estepa J, 2013).
2.3.13 Alteraciones leucocitarias
2.3.13.1 Cuerpos de Dohle
Son estructuras que presenta un color azul claro o gris, localizados en los
neutrófilos van a presentar varios tamaños y formas, estas estructuras son
agregados del retículo endoplasmático, retenidas por una neutropoyesis acelerada.
Se presentan en cambio tóxicos (Ecija Perez & Estepa J, 2013).
2.3.13.2 Basofília citoplasmática difusa
Estos cambios ocurren por los ribosomas que quedan dispersos en el
citoplasma, en lugar de ser disueltos durante la maduración. Esta alteración nos va
a indicar una inflamación de origen sistémica, más si es acompañada por neutrofilia
o desviación a la izquierda (Reagan, 1999).
32
2.3.13.3 Neutrófilos hipersegmentados
Son neutrófilos que presentan de cinco a más segmentos nucleares. Esta
alteración está asociada al envejecimiento celular, dicho envejecimiento puede
estar relacionado con la demora en la preparación del frotis (sangre almacenada
varias horas), como también puede ser por una circulación de los neutrófilos en
circulación sanguínea por tiempo prolongado, ya sea por un defecto adquirido
(deficiencia de Vit B12) o por alteraciones hereditarias (macrocitosis de caniches)
(Manascero , 2003).
2.3.13.4 Neutrofilos de Pelger – Huet y Pseudo – Perlger – Huet
Son neutrófilos maduros que se encuentran hiposegmentados por causa de una
deficiencia hereditaria adquirida, en la parte de la segmentación de los granulocitos
lo cual muestra una apariencia de desviación a la izquierda. Si se presentan en un
paciente sano, pero sin embargo cuando se presentan en animales que presentan
síntomas de una enfermedad es muy difícil poder identificarlas. La pseudo Perlger
es muy rara de encontrar a diferencia de la verdadera, la pseudo se resuelve junto
con la enfermedad inflamatoria, mientras que la verdadera no se resuelve a pesar
del tratamiento (Ecija Perez & Estepa J, 2013).
2.3.13.5 Vacuolización citoplasmática
Estos neutrófilos contienen vacuolas espumosas dentro de su citoplasma, estos
cambios se los consideran tóxicos, comúnmente se los observa junto a basofilia
citoplasmática difusa. Este cambio tóxico ocurre de manera secundaria a
inflamación de origen sistémico o de forma arfectual (Reagan, 1999).
2.3.13.6 Neutrófilos gigantes
Son neutrófilos de gran tamaño, lo que es considerado como un cambio tóxico
que afecta su tamaño. Esta alteración se debe a que, durante el proceso de
33
producción, este es demasiado acelerado, haciendo que los neutrófilos se salten
divisiones, resultando en este tipo de alteración. Estas alteraciones están
asociadas con otros cambios tóxicos (Ecija Perez & Estepa J, 2013).
2.3.13.7 Núcleos en forma de anillo
Son células inmaduras con un núcleo en forma de anillo y con presencia de un
agujero en el centro, dándole una forma de rosquilla, su aparición se por
inflamaciones sistémicas, severas o toxemia. Esta alteración es considerada un
cambio tóxico (Campuzano Maya, 2020).
2.3.13.8 Linfocitos reactivos
El cambio principal que identifica a un linfocito reactivo es su cambio en el
citoplasma, son de tamaño más grande que los normales, su citoplasma se va a
teñir de manera más basofílica comparado con la de los linfocitos normales. Este
tipo de linfocitos sugieren un estímulo antigénico sistémico y activo secundario a
procesos no infecciosos o infecciosos, incluso en algunos casos, ambos (Ecija
Perez & Estepa J, 2013).
2.3.13.9 Linfocitos granulares
Estos linfocitos tienen un núcleo más grande de lo normal y una cantidad de
citoplasma un poco más abundante, su color puede ser entre ligero o
moderadamente basofílico y con presencia de gránulos introcitoplasmáticos, estos
gránulos pueden observarse en la región perinuclear o distribuidos en todo el
citoplasma. Un número bajo de estos linfocitos es normal en sangre periférica en
perros o gatos, un aumento de los mismos puede sugerir una estimulación
inmunológica crónica, si no existe enfermedad, se puede sospechar de una
leucemia linfocítica granular (Manascero , 2003).
34
2.3.14 Parásitos intracelulares leucocitarios
2.3.14.1 Ehrlichia / Anaplasma spp
Estos organismos forman unos agregados llamados mórula dentro de una
vacuola citoplasmática, esta mórula son un conjunto de microorganismos que se
tiñe como una inclusión de color azul oscura, pueden observarse dentro de la
misma célula uno o más mórulas (Willard, 2004).
2.3.14.2 Hepatozoon canis
Puede provocar el avistamiento de inclusiones en el frotis, tanto en neutrófilos
como en monocitos caninos, en esta patología a pesar de estar en su forma grave,
las inclusiones en el frotis aparecen de forma escasa, el gametocito de este
organismo no tiene color, pero desplaza al núcleo y el citoplasma de la célula
huésped (Marcondes, 2017).
2.3.15 Trombocitos
Los trombocitos o plaquetas son células sanguíneas de un tamaño pequeño
entre todas las células sanguíneas, suelen ser redondas y pueden presentar una
tinción rosada pálida y granular. Suelen observarse formando agregados
plaquetarios o aglutinaciones, sobre todo en gatos (Campuzano M. , 2008).
Para el recuento de plaquetas se homogeniza en una pipeta diluidora 0,5 de
sangre con oxalato, se deja caer 5 primeras gotas por la consideración de la mala
homogeneización, luego la muestra es puesta en la cámara de Neubauer para su
posterior observación en el microscopio (16 cuadrantes del centro). Al final la
sumatoria de todas las plaquetas contadas se multiplica por 2000 dando como
resultado, plaquetas / microlitro (Perez E. , 2012).
2.3.16 Alteraciones en plaquetas
2.3.16.1 Macroplaquetas
35
Estas células no son extrañas en sangre periférica, sin embargo, si se llega a
observar que son muy numerosas en el frotis sanguíneo, más si vienen
acompañadas por plaquetas fragmentadas y de forma irregular puede indicarnos
trombopoyésis anormal de origen mieloproliferativo o mielofibrosis (Campuzano G.
, 2008).
2.3.16.2 Plaquetas activadas
Este tipo de plaquetas tiene una forma aracnoide o con ´´hilos´´ citoplasmáticos
en su superficie, estas células pueden estar aglutinadas y formar masas que
pueden observarse al borde del frotis (Perez E. , 2012).
2.3.17 Parásitos intracelulares Plaquetares
2.3.17.1 Anaplasma platys
Este patógeno es el único que va a infectar específicamente a las plaquetas,
provocando una trombocitopenia cíclica infecciosa, cursando de una forma
subclínica. Es transmitida por la garrapata marrón del perro, son aerobios obligados
y parásitos intracelulares obligados (Restrepo, 2017).
2.3.18 Otros hemoparásitos presente en la sangre
2.3.18.1 Dirofilaria immitis
La Dirofilaria immitis es un hemoparasito nemátode en el cual el perro, zorro,
lobo y el gato son hospedadores definitivos, y en casos accidentales puede infectar
al hombre, pero no se llega a completar su desarrollo. En el perro, su huésped
principal, la forma adulta se llega a localizar en la arteria pulmonar y también en el
ventrículo derecho y su forma larval está presente en el torrente sanguíneo
(Corimanya, Chavez, Casas, & Diaz, 2009) .
36
El parasito necesita de un huésped intermediario, el cual el mosquito del genero
Culex, Anopheles y Aedes son los más comunes para la infección al huésped
definitivo (Corimanya, Chavez, Casas, & Diaz, 2009) .
2.3.18.2 Trypanosoma cruzi
Es un hemoparásito flagelado que pertenece al orden Kinetoplastidal el mismo
que se transmite por hematófagos. Este hemoparásito se sitúa para poder llevar su
ciclo de vida y reproducción en el tejido cardiaco (Turriago Gómez, Vallejo, & Guhl,
2008) .
Los perros son considerados como reservorios domésticos que pueden incluso
a contribuir en la trasmisión de T.cruzi al ser humano, en especial si habita con los
insectos de la familia Reduviidae, los cuales son los vectores para este parasito
(Turriago Gómez, Vallejo, & Guhl, 2008)
2.4 Marco legal
Según la ley orgánica de sanidad agropecuaria del 2017 publicada oficialmente
bajo la constitución del Ecuador del año 2008, estipula lo siguiente:
Artículo 31. Del diagnóstico y vigilancia. - La agencia realizará acciones para identificar y diagnosticar las enfermedades de notificación obligatoria y control oficial del país, que afecten a la producción animal, la salud pública y el ambiente, las mismas que deben estar en armonía con las directrices establecidas por los instrumentos internacionales ratificados. La autoridad Agraria Nacional coordinara con la agencia, el desarrollo de programas de capacitación, asistencia técnica y campañas de divulgación zoosanitaria y de bienestar animal.
La agencia establecerá y fortalecerá los programas y sistemas de vigilancia epidemiológica y de alerta zoosanitaria para ejecutar acciones de prevención, control y erradicación de enfermedades de control oficial (FAO, 2017).
Es de obligación para el médico veterinario el diagnóstico de enfermedades
producidas por hemoparásitos y sus respectivos vectores, debido al riesgo de zoonosis que existe en el medio en el cual se desempeñan y para la población en general.
3 Materiales y métodos
3.1 Enfoque de la investigación
3.1.1 Tipo de investigación
La presente investigación fue de tipo descriptivo y documental, en el cual se
analizaron los registros de resultados de pacientes caninos a los cuales se les
realizó un estudio biométrico y de hemoparásitos en el laboratorio de diagnóstico
clínico Unimevet.
3.1.2 Diseño de investigación
El diseño de la investigación fue de carácter no experimental, debido a que la
muestra no fue manipulada voluntariamente por el investigador.
3.2 Metodología
3.2.1 Variables
Tabla 1. Operacionalidad de las variables Objetivo
Especifico
Tipo de
variable
Variable Dimensión y Escala
Determinar la
frecuencia de
alteraciones en células
sanguíneas en cuanto a
forma, tamaño, color y
distribución.
Cuantitativo
Dependiente
Cambios en los Eritrocitos
Forma
Tamaño
Color
Inclusiones
Distribución
Cambios en los Leucocitos
Forma
Cambios en las Plaquetas
Forma
Eritrocitos Forma: este tipo de alteración
afecta la forma original del eritrocito, pueden ser:
Ningún cambio de forma (0)
Acantocitos (1)
Dacriocitos (2)
Equinocitos (3)
Esferocitos (4)
Esquistocitos(5)
Poiquilocitosis (6) Tamaño: este tipo de alteración
afecta el tamaño original del eritrocito, pueden ser:
Ningún cambio de tamaño (0)
Anisocitosis (1)
Macrocitosis (2)
Microcitosis(3) Color: este tipo de alteración
afecta el color original del eritrocito, pueden ser:
Ningún cambio de color (0)
38
Policromasia (1)
Anisocromasia (2)
Hipocromasia (3)
Hipercromia(4) Distribución: este tipo de
alteración afecta la distribución original del eritrocito, pueden ser:
Ningún cambio de distribución (0)
Pilas de moneda (1)
Aglutinación (2) Inclusiones: este tipo de
alteración se manifiesta dentro del eritrocito, pueden ser:
Ningún cambio (0)
Cuerpos Howell Jolly (1)
Punteado basófilo. (2)
Leucocitos Forma: este tipo de alteración
afecta la forma original del leucocito, pueden ser:
Ningún cambio de forma (0)
Neutrófilos hipersegmentados (1)
Neutrófilos gigantes (2)
Neutrófilos en forma de anillo (3)
Linfocitos reactivos (4)
Linfocitos granulares (5)
Plaquetas
Forma: este tipo de alteración
afecta la forma original de la plaqueta, pueden ser:
Ningún cambio de forma (0
Macroplaquetas (1)
Plaquetas activadas (2)
Determinar el
hematocrito en animales
hemoparásitos.
Cuantitativa
Dependiente
Hematocrito
Es la proporción de hematíes en
la sangre. En el laboratorio se
maneja un rango de:
37 – 45 %
Relacionar las
alteraciones morfológicas
en las células
sanguíneas con los
Cuali y
cuantitativo
independiente
Hemoparásitos
Los Hemoparásitos son organismos que viven en la sangre y pueden desarrollarse tanto dentro como fuera de las células sanguíneas. Eritrocitos
Mycoplasma hemocanis (1)
Babesia spp (2) Leucocitos
39
Determinación de los tipos de variables, dimensión y escala de los objetivos. Naranjo, 2020
3.2.1.1 Variable independiente
La variable independiente fue el tipo de hemoparásito.
3.2.1.2 Variable dependiente
Las variables dependientes fueron las alteraciones en las células sanguíneas y
el hematócrito.
3.2.2 Unidad de análisis
La unidad de análisis fue cada uno de los resultados de los hemogramas, más
el estudio de hemoparásitos correspondiente.
3.2.3 Población
La población fue representada por todos los caninos que se realizaron exámenes
de biometría y estudios de hemoparásitos correspondientes.
3.2.4 Selección de muestra
De los resultados que se obtuvieron en el periodo de 6 meses del 2020 (enero,
febrero, mayo, junio, julio y agosto) se recogió información de todos los exámenes
positivos a hemoparásitos, con o sin alteraciones morfológicas en las células
sanguíneas.
diferentes
hemoparásitos.
Ehrlichia / Anaplasma spp (3)
Hepatozoon canis (4) Plaquetas
Anaplasma platys (5)
Otros hemoparasitos
Dirofilaria immitis (6)
Trypanosoma Cruzi (7)
40
3.2.5 Criterios de inclusión
Se tomó en cuenta a los pacientes caninos que cuentan con un estudio de
biometría hemática y estudios de hemoparásitos positivos, sin distinción de edad o
sexo.
3.2.6 Criterios de exclusión
Los registros de exámenes pertenecientes a pacientes de razas que tienen
predisposición a presentar alteraciones morfológicas propias de ellos.
3.2.7 Recolección de datos
3.2.7.1 Recursos
Los recursos a disposición con los que se llevó a cabo el estudio son los equipos
de cómputo que se encuentra en el laboratorio Unimevet, los cuales tienen la
información de los resultados de los hemogramas y estudios de hemoparásitos
realizados en el periodo que se va evaluó. Así como se encontró a disposición los
equipos de laboratorio, como son el microscopio, microcentrífuga, pipetas, placas,
cubre y porta objetos, guantes, reactivos y vestimenta protectora.
3.2.7.2 Métodos y técnicas
La información de la investigación fue recolectada de la base de datos del
laboratorio Unimevet, se separó la información de los pacientes que se realizaron
hemograma junto con estudios de hemoparásitos, positivos a los mismos.
Los datos fueron clasificados de acuerdo a la alteración y hematocrito en una
hoja Excel para su posterior análisis.
Los resultados se los obtuvo de manera porcentual, para poder expresar por
medio del mismo de manera gráfica los resultados.
41
3.2.7.3 Análisis estadístico
Los datos fueron recopilados en una base de datos Excel y luego analizados
mediante un software estadístico. Los datos de las variables cuantitativas fueron
expresados en medidas de tendencia central y dispersión (X ± DE) y las variables
categóricas fueron expresadas en proporciones (%). Se determinó la frecuencia
estadística de las alteraciones hematológicas, y para evaluar la relación entre el
tipo de hemoparásito y las alteraciones hematológicas, se realizó un ANOVA. Para
las pruebas inferenciales se tuvo en cuenta un nivel de confianza del 95% y un error
estadístico del 5%.
42
4. Resultados
En el presente estudio de investigación los resultados obtenidos fueron de
acuerdo a la revisión de 115 registros de biometría hemática más estudios de
hemoparásitos positivos, provenientes de la base de datos del laboratorio clínico
veterinario UNIMEVET en el periodo comprendido por 6 meses del año 2020.
Tabla 2.Frecuencia de alteraciones morfológicas en los registros de perros con enfermedades hemoparasitárias.
Alteraciones Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent
Ausencia 28 24.348 24.348 24.348
Presencia 87 75.652 75.652 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 2 se muestra la cantidad de animales con alteraciones y sin
alteraciones morfológicas, teniendo un 24.348% (28/115) sin alteraciones
morfológicas presentes, contrario al 75.652% (87/115) que presentó alteraciones
morfológicas en los reportes de biometrías hemática.
Tabla 3. Frecuencia de hemoparásitos en animales con alteraciones morfológicas.
Hemoparásito Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent
Babesia sp 88 76.522 76.522 76.522
Ehrlichia 17 14.783 14.783 91.304
Ehrlichia-
Babesia sp 3 2.609 2.609 93.913
Microfilaria sp 5 4.348 4.348 98.261
Trypanosoma
sp 2 1.739 1.739 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
43
En la tabla 3 se muestra la frecuencia de hemoparásitos en los animales que
presentaron o no alteraciones morfológicas, de los 115 (100%) animales, 76,522 %
(88/115) presentaron Babesia spp, 14.783% (17/115) presentaron Erlichia, 1.739%
(2/115) presento Trypanosoma, 4.348% (5/115) Presentaron Microfilaria y 2.609%
(3/115) presentaron Babesia junto con Erlichia respectivamente.
4.1 Frecuencia de alteraciones en células sanguíneas en cuanto a forma,
tamaño, color y distribución.
4.1.1 Serie roja
4.1.1.1 Alteraciones en tamaño
Tabla 4. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en tamaño presentada en los registros.
Alteraciones en
tamaño Frequency Percent
Valid
Percent
Cumulative
Percent
Anisocitosis 18 15.652 15.652 15.652
Anisocitosis-
Macrocitosis 3 2.609 2.609 18.261
Macrocitosis 4 3.478 3.478 21.739
Microcitosis 1 0.870 0.870 22.609
Sin alteración tamaño 89 77.391 77.391 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 4 se muestra la frecuencia de las alteraciones morfológicas
respecto al tamaño. De los 115 (100%), 15.652% (18/115) presentó anisocitosis,
0.87% (1/115) presentó microcitosis, 3.478% (4/115) presentó macrocitosis y un
2.609% (3/115) presento anisocitosis junto con macrocitosis.
4.1.1.2 Alteraciones en forma
Tabla 5. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en forma presentada
Forma Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent
Acantocitos 9 7.826 7.826 7.826
Dacriocitos 1 0.870 0.870 8.696
Equinocitos 21 18.261 18.261 26.957
44
Forma Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent
Equinocitos-
Acantocitos 2 1.739 1.739 28.696
Equinocitos-
Poiquilocitosis 1 0.870 0.870 29.565
Leptocitos 3 2.609 2.609 32.174
Sin alteración
forma 78 67.826 67.826 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 5 se muestra la frecuencia de las alteraciones morfológicas
respecto a la forma, los cuales, de los 115 (100%), 18.261% (21/115) presentó
Equinocitos, 0.8070% (1/115) Equinocitos junto con Poiquilocitosis, 1.739% (2/115)
presentó Equinocitos junto con acantocitos, 7.826% (9/115) presentó Acantocitos,
0.870% (1/115) presento Dacriocitos y por último un 2.609% (3/115) presentó
Leptocitos, dejando un 67.826% sin alteraciones en cuanto a la forma.
4.1.1.3 Alteraciones en color
Tabla 6. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en cuanto a color presentado
H. Central Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent
Si 43 37.391 37.391 37.391
no 72 62.609 62.609 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla numero 6 podemos observar la frecuencia de alteraciones
morfológicas en cuanto al color, el cual se muestra que el 37.391% (43/115) de los
animales con alteraciones en color presentaron Hipocromía central, mientras que
el 62.609% (72/115) no presento alteración del color.
4.1.1.4 Alteraciones en distribución
45
Tabla 7. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en distribución presentada
Distribución Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Aglutinación 8 6.957 6.957 6.957
Pilas de moneda 21 18.261 18.261 25.217
Pilas de moneda-
Aglutinación 4 3.478 3.478 28.696
Sin alteración
distribución 82 71.304 71.304 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 7 se muestra la frecuencia de alteraciones en cuanto a la
distribución, teniendo en cuenta que de 115 (100%), se presentó, 18.261% (21/115)
con Pilas de moneda, 6.957% (8/115) con Aglutinación y un 3.478% (4/115) con
Pilas de moneda junto con Aglutinación, dejando un 71.304 % (82/115) sin
alteración en la distribución.
4.1.2 Serie Blanca
Tabla 8. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en leucocitos presentados
Alteraciones en
Leucocitos Frequency Percent
Valid
Percent
Cumulative
Percent
Linfocitos reactivos 4 3.478 3.478 3.478
Neutrófilos en dona 2 1.739 1.739 5.217
Neutrófilos
hipersegmentados 2 1.739 1.739 6.957
Neutrófilos tóxicos 8 6.957 6.957 13.913
Neutrófilos tóxicos –
Linfocitos reactivos 1 0.870 0.870 14.783
Neutrófilos tóxicos –
Neutrófilos en dona 1 0.870 0.870 15.652
Sin alteración leucocitaria 97 84.348 84.348 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
46
En la tabla número 8 se observa la frecuencia de alteraciones leucocitarias, la
cual nos muestras que de 115 (100%), 6.957% (8/115) presento Neutrófilos tóxicos,
1.739% (2/115) presentó neutrófilos hipersegmentados, 1.739% (2/115) presentó
Neutrófilos en forma de anillo, 0.870% (1/115) presentó Neutrófilos en forma de
anillo junto con neutrófilos tóxicos, 0.870% (1/115) presentó Neutrófilos tóxicos
junto con linfocitos reactivos y un 3.478% (4/18) presentó linfocitos reactivos. Un
84.348% (97/115) no presentó alteración alguna respecto a la línea blanca.
4.1.3 Alteraciones en plaquetas
Tabla 9. Porcentajes respectivos de acuerdo a cada alteración morfológica en plaquetas presentadas
Alteraciones en
plaquetas Frequency Percent
Valid
Percent
Cumulative
Percent
Macroplaquetas 8 6.957 6.957 6.957
Sin alteración en
plaquetas 107 93.043 93.043 100.000
Missing 0 0.000
Total 115 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 9 podemos observar que el 6.957 % (8/115) presentaban
alteraciones morfológicas en las plaquetas, manifestaron macroplaquetas,
teniendo un 93.043% (107/115) reportes sin alteraciones en las plaquetas.
4.2 Determinación del hematocrito en animales hemoparasitádos.
El hematocrito en animales hemoparasitádos varió, teniendo resultados tanto
por debajo, encima y en rango respecto a los valores referenciales del laboratorio.
El 57% de los pacientes presentaban un hematocrito en rango, mientras que un
porcentaje del 40% presentaban una disminución del mismo.
En la tabla número 17 podemos observar las diferentes medidas de tendencia
central que se usó para el presente trabajo.
47
Tabla 10. Tendencia Central de Hematocrito
Medidas de Tendencia Central
Número de valores
115
Valor máximo 58
Valor mínimo 7
Promedio 37,95652174
Desviación estándar
10,88729447
Moda 33
Mediana 39
Varianza 118,5331808 Naranjo, 2020
4.3 Relación de alteraciones morfológicas más comunes en los diferentes
hemoparásitos.
Tabla 11. Relación de presencia de alteraciones en color en los diferentes hemoparásitos
Hemoparásito H.
Central Frequency Percent
Valid
Percent
Cumulative
Percent
Babesia sp Si 33 37.500 37.500 37.500
no 55 62.500 62.500 100.000
Missing 0 0.000
Total 88 100.000
Ehrlichia Si 6 35.294 35.294 35.294
no 11 64.706 64.706 100.000
Missing 0 0.000
Total 17 100.000
Ehrlichia-
Babesia sp Si 1 33.333 33.333 33.333
no 2 66.667 66.667 100.000
Missing 0 0.000
Total 3 100.000
Microfilaria sp Si 2 40.000 40.000 40.000
no 3 60.000 60.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 5 100.000
Trypanosoma sp Si 1 50.000 50.000 50.000
no 1 50.000 50.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 2 100.000
Naranjo, 2020
48
En la tabla número 11 podemos observar que en todos los hemoparásitos
encontrados en los reportes, se puede observar que existió al menos un caso de
hipocromía central, siendo Babesia spp. el hemoparásito que más casos de
hipocromía central Tuvo, con una aparición de 33 reportes seguido de Erlichia spp.
Con 6 reportes de hipocromía central.
Tabla 12. Relación de presencia de alteraciones en distribución en los diferentes hemoparásitos
Hemoparásito Distribución Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Babesia sp Aglutinación 6 6.818 6.818 6.818
Pilas de
moneda 16 18.182 18.182 25.000
Pilas de
moneda -
Aglutinación
4 4.545 4.545 29.545
Sin alteración
distribución 62 70.455 70.455 100.000
Missing 0 0.000
Total 88 100.000
Ehrlichia Aglutinación 0 0.000 0.000 0.000
Pilas de
moneda 3 17.647 17.647 17.647
Pilas de
moneda -
Aglutinación
0 0.000 0.000 17.647
Sin alteración
distribución 14 82.353 82.353 100.000
Missing 0 0.000
Total 17 100.000
Ehrlichia-
Babesia sp Aglutinación 0 0.000 0.000 0.000
Pilas de
moneda 1 33.333 33.333 33.333
Pilas de
moneda -
Aglutinación
0 0.000 0.000 33.333
Sin alteración
distribución 2 66.667 66.667 100.000
Missing 0 0.000
Total 3 100.000
Microfilaria Aglutinación 2 40.000 40.000 40.000
Pilas de
moneda 0 0.000 0.000 40.000
49
Hemoparásito Distribución Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Pilas de
moneda -
Aglutinación
0 0.000 0.000 40.000
Sin alteración
distribución 3 60.000 60.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 5 100.000
Trypanosoma
sp Aglutinación 0 0.000 0.000 0.000
Pilas de
moneda 1 50.000 50.000 50.000
Pilas de
moneda -
Aglutinación
0 0.000 0.000 50.000
Sin alteración
distribución 1 50.000 50.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 2 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 12 podemos ver que, respecto a las alteraciones en la
distribución, Babesia spp. tuvo como alteración más frecuente las pilas de moneda.
De igual manera Erlichia y Trypanosoma. Microfilaria tuvo como alteración más
frecuente de distribución a la aglutinación.
Tabla 13. Relación de presencia de alteraciones en forma en los diferentes hemoparásitos
Hemoparásito Forma Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Babesia sp Acantocitos 5 5.682 5.682 5.682
Dacriocitos 1 1.136 1.136 6.818
Equinocitos 14 15.909 15.909 22.727
Equinocitos-
Acantocitos 2 2.273 2.273 25.000
Equinocitos-
Poiquilocitosis 0 0.000 0.000 25.000
Leptocitos 3 3.409 3.409 28.409
Sin alteración
en forma 63 71.591 71.591 100.000
Missing 0 0.000
Total 88 100.000
50
Hemoparásito Forma Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Ehrlichia Acantocitos 3 17.647 17.647 17.647
Dacriocitos 0 0.000 0.000 17.647
Equinocitos 4 23.529 23.529 41.176
Equinocitos-
Acantocitos 0 0.000 0.000 41.176
Equinocitos-
Poiquilocitosis 1 5.882 5.882 47.059
Leptocitos 0 0.000 0.000 47.059
Sin alteración
en forma 9 52.941 52.941 100.000
Missing 0 0.000
Total 17 100.000
Ehrlichia-
Babesia sp Acantocitos 1 33.333 33.333 33.333
Dacriocitos 0 0.000 0.000 33.333
Equinocitos 0 0.000 0.000 33.333
Equinocitos-
Acantocitos 0 0.000 0.000 33.333
Equinocitos-
Poiquilocitosis 0 0.000 0.000 33.333
Leptocitos 0 0.000 0.000 33.333
Sin alteración
en forma 2 66.667 66.667 100.000
Missing 0 0.000
Total 3 100.000
Microfilaria Acantocitos 0 0.000 0.000 0.000
Dacriocitos 0 0.000 0.000 0.000
Equinocitos 3 60.000 60.000 60.000
Equinocitos-
Acantocitos 0 0.000 0.000 60.000
Equinocitos-
Poiquilocitosis 0 0.000 0.000 60.000
Leptocitos 0 0.000 0.000 60.000
Sin alteración
en forma 2 40.000 40.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 5 100.000
Trypanosoma Acantocitos 0 0.000 0.000 0.000
Dacriocitos 0 0.000 0.000 0.000
Equinocitos 0 0.000 0.000 0.000
Equinocitos-
Acantocitos 0 0.000 0.000 0.000
51
Hemoparásito Forma Frequency Percent Valid
Percent
Cumulative
Percent
Equinocitos-
Poiquilocitosis 0 0.000 0.000 0.000
Leptocitos 0 0.000 0.000 0.000
Sin alteración
en forma 2 100.000 100.000 100.000
Missing 0 0.000
Total 2 100.000
Naranjo, 2020
En la tabla número 13 se puede observar que alteración morfológica respecto a
la forma fue la más común en los diferentes hemoparásitos, en Babesia spp la
alteración más común fueron los equinocitos, de igual manera en los
hemoparásitos Erlichia y Microfilaria. Por su parte Trypanosoma no presentó
alteración alguna respecto a la forma.
52
5 Discusión
Eritrocitos
En el presente estudio, en las alteraciones de la línea roja en cuanto a la forma,
el más común fue anisocitosis, seguido de una manifestación mixta de anisocitosis
junto con macrocitosis. Caso que concuerda con el estudio realizado por (Prieto,
2015), en el cual la alteración morfológica en glóbulos rojos que presentaron en
común el grupo de perros estudiados en su investigación fue la anisocitosis.
Leucocitos
En la serie leucocitaria en el presente estudio, tenemos que la alteración que
más se manifestó fueron los linfocitos reactivos, caso contrario, en un estudio
realizado por (Ramirez, 2015), donde se manifestó que la alteración leucocitaria
que se manifestó fueron los monocitos vacuolados, pero se menciona que ambas
alteraciones morfológicas suelen ir acompañadas una con la otra, lo cual nos indica
que existe una relación entre estas alteraciones.
Plaquetas
En la línea plaquetaria, la alteración que más se presentó en el presente estudio
fueron las macroplaquetas, siguiendo el mismo patrón se encuentra el estudio
realizado por (Giorgis, Ronchi, & Jaime, 2017) donde de igual manera se
encuentran con macroplaquetas como la alteración plaquetaria presente en su
investigación.
De igual manera (CELIS, 2018)en un estudio donde muestra los efectos clínicos
de hemoparásitos en animales de compañía, demuestra que las macroplaquetas
son las única alteraciones presenciadas en el transcurso de dicho estudio.
53
Hematocrito
El promedio del hematocrito en el presente estudio fue de 37,95% con una
desviación estándar de 10,88, la cual se encuentra en el rango del estudio, dicho
resultado se contrasta en la literatura que nos dice que en la presencia de
hemoparásitos en la mayoría de casos se presenta anemia y por ende habría una
alteración en el hematocrito. Por su parte (Velastegui, 2015) reporta en su estudio
una desviación estándar 9.58 y un promedio de 42.29% de hematócrito en animales
hemoparásitos.
Las diferencias entre resultados pueden deberse a la variación que existe en los
rangos entre clínicas o laboratorios. En otro estudio realizado por (Viloria, Díaz-
Perez, & Orozco-Sánchez, 2017) muestran que el hematocrito tiende a presentar
valores bajo en los hemoparásitos investigados en caninos.
6 Conclusiones
La anisocitosis representa la alteración de tamaño más frecuente reportada,
mientras tanto los equinocitos como los acantocitos fueron la alteración más
frecuente en cuanto a forma, siendo la hipocromía central la única alteración
reportada en cuanto a color en los eritrocitos. Las pilas de moneda junto a la
aglutinación fueron las alteraciones más frecuentes respecto a la distribución de los
eritrocitos.
La neutrofilia toxica fue la alteración más frecuente respecto a los leucocitos y
en los trombocitos las macroplaquetas fueron las alteraciones más frecuentes.
El hematocrito en su mayoría no presento alteración alguna, sin embargo, casi
la mitad presentaron una disminución del mismo debido a la presencia de
hemoparásitos.
Las alteraciones más frecuentes que se dieron en la mayoría de hemoparásitos
fueron los equinocitos y acantocitos.
7 Recomendaciones
Establecer relaciones con los hallazgos de alteraciones en células sanguíneas y
el cuadro clínico del animal hemoparasitado y establecer manifestaciones clínicas
de las mismas.
Evaluar continuamente el estudio del hematócrito y su comportamiento en
enfermedades hemoparasitárias.
Ampliar el estudio de alteraciones morfológicas, realizando estudios similares en
diferentes servicios de laboratorios.
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9 Anexos
Anexo 1 - cámara para el recuento de eritrocitos y leucocitos
Anexo 2 – observación de frotis sanguíneos y recuento de glóbulos
rojos – blancos
Anexo 3 – frotis sanguíneo para observación de
hemoparásitos
Anexo 4 – registro de datos de laboratorio Unimevet
Anexo 5 – Análisis de Muestras de Sangre
Anexo 6 – observación de frotis en microscopio en lente de 100x